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WO2022168870A1 - 細胞培養用マイクロキャリア及び細胞の培養方法 - Google Patents
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WO2022168870A1 - 細胞培養用マイクロキャリア及び細胞の培養方法 - Google Patents

細胞培養用マイクロキャリア及び細胞の培養方法 Download PDF

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WO2022168870A1 PCT/JP2022/004061 JP2022004061W WO2022168870A1 WO 2022168870 A1 WO2022168870 A1 WO 2022168870A1 JP 2022004061 W JP2022004061 W JP 2022004061W WO 2022168870 A1 WO2022168870 A1 WO 2022168870A1
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resin
meth
microcarrier
microcarriers
cell culture
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PCT/JP2022/004061
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French (fr)
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聡 羽根田
博貴 井口
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Sekisui Chemical Co Ltd
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Sekisui Chemical Co Ltd
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Publication date
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C12N5/0075—General culture methods using substrates using microcarriers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2531/00—Microcarriers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/30—Synthetic polymers

Definitions

  • the present invention relates to cell culture microcarriers.
  • the present invention also relates to a method for culturing cells using the microcarriers for cell culture.
  • ECM Extracellular matrix
  • microcarriers made of synthetic resin are also known.
  • Patent Document 1 discloses a microcarrier for cell culture comprising a polymeric microcarrier base formed from a copolymer of a mixture of specific monomers and a polypeptide conjugated to the microcarrier base. there is The microcarrier has an equilibrium moisture content of greater than 75% in the microcarrier base portion.
  • a substrate particle and a coating layer that coats the outer surface of the substrate particle are provided, and the coating layer comprises a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton,
  • the coating layer comprises a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton
  • a microcarrier for cell culture hereinafter sometimes referred to as a microcarrier
  • the water absorption is 10% by weight or less.
  • the average particle size is 1000 ⁇ m or less.
  • the polyvinyl alcohol derivative skeleton is a polyvinyl acetal skeleton.
  • the specific gravity is 1 g/cm 3 or more and 1.2 g/cm 3 or less.
  • the substrate particles are resin particles.
  • the substrate particles contain a polymer of monomers having ethylenically unsaturated groups.
  • the polymer of monomers having ethylenically unsaturated groups is an acrylic resin, a divinylbenzene polymer, or a divinylbenzene copolymer.
  • the peptide portion has a cell-adhesive amino acid sequence.
  • a cell culture method comprising the step of adhering cells to the cell culture microcarriers described above.
  • the cell culture microcarrier according to the present invention comprises substrate particles and a coating layer that coats the outer surface of the substrate particles, and the coating layer comprises a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton. and a peptide moiety.
  • the microcarrier for cell culture according to the present invention has an average particle size of 300 ⁇ m or more and a CV value of the particle size of 10% or less. Since the microcarrier for cell culture according to the present invention has the above configuration, it is possible to suppress adhesion between microcarriers due to cell aggregates.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view schematically showing a cell culture microcarrier according to one embodiment of the present invention.
  • a cell culture microcarrier (hereinafter sometimes abbreviated as "microcarrier") according to the present invention comprises a substrate particle and a coating layer that coats the outer surface of the substrate particle, and the coating layer is , a resin having a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton and a peptide portion.
  • the microcarrier according to the present invention has an average particle size of 300 ⁇ m or more and a CV value of the particle size of 10% or less.
  • microcarrier according to the present invention has the above configuration, it is possible to suppress adhesion between microcarriers due to cell aggregates.
  • microcarriers with a relatively small average particle size have been used as microcarriers for cell culture.
  • a relatively small average particle size for example, microcarriers with an average particle size of about 100 ⁇ m to 200 ⁇ m
  • the specific surface area of the microcarriers can be increased, and the area to which cells can adhere can be increased.
  • cell clumps are formed between microcarriers, and the microcarriers may adhere to each other via the formed cell clumps, resulting in decreased cell culture efficiency. do.
  • the microcarriers according to the present invention have a relatively large average particle size and relatively uniform particle sizes.
  • the microcarrier according to the present invention comprises substrate particles and a coating layer containing a specific resin. Adhesion between microcarriers due to cell masses can be suppressed by adopting the configuration described above in the microcarriers according to the present invention.
  • the microcarrier according to the present invention can enhance the adhesiveness between the microcarrier and cells.
  • cell clusters can be formed with a uniform thickness on the surface of each microcarrier, and the surface area of each microcarrier covered with cell clusters can be increased. Therefore, the microcarrier according to the present invention can maintain high cell culture efficiency.
  • microcarrier according to the present invention does not require the use of natural polymer materials such as extracellular matrix (ECM), it is inexpensive, has small lot-to-lot variations, and is excellent in safety.
  • ECM extracellular matrix
  • the average particle size of the microcarriers is 300 ⁇ m or more. When the average particle size of the microcarriers is less than 300 ⁇ m, cell clusters are formed between the microcarriers, and the microcarriers are easily adhered via the cell clusters.
  • the average particle size of the microcarriers is preferably 350 ⁇ m or more, more preferably 400 ⁇ m or more, still more preferably 500 ⁇ m or more, particularly preferably 600 ⁇ m or more, preferably 1500 ⁇ m or less, more preferably 1000 ⁇ m or less, further preferably 800 ⁇ m or less, especially It is preferably 700 ⁇ m or less.
  • the average particle size of the microcarriers is preferably 350 ⁇ m to 1500 ⁇ m, more preferably 400 ⁇ m to 1000 ⁇ m, even more preferably 500 ⁇ m to 800 ⁇ m, particularly preferably 600 ⁇ m to 700 ⁇ m. When the average particle size is at least the lower limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • cell clusters can be formed with a more uniform thickness on the surface of each microcarrier. Further, when the average particle size is equal to or less than the upper limit, the area to which cells can adhere can be further increased.
  • the particle diameter of the microcarriers means the diameter when the microcarriers are spherical, and when the microcarriers have a shape other than a spherical shape, it is assumed that the microcarriers have a volume equivalent to a spherical shape. means diameter.
  • the average particle size of the microcarriers is preferably the number average particle size.
  • the average particle size of the microcarriers can be obtained by observing 50 arbitrary microcarriers with an electron microscope or an optical microscope and calculating the average particle size of each microcarrier, or by using a particle size distribution analyzer. . In observation with an electron microscope or an optical microscope, the particle size of each microcarrier is obtained as the particle size of the equivalent circle diameter. In observation with an electron microscope or an optical microscope, the average particle size of arbitrary 50 microcarriers in equivalent circle diameter is almost equal to the average particle size in equivalent sphere diameter. In the particle size distribution analyzer, the particle size of one microcarrier is obtained as the particle size in the equivalent sphere diameter.
  • the average particle size of the microcarriers is preferably calculated using a particle size distribution analyzer.
  • the coefficient of variation (CV value) of the particle size of the microcarriers is 10% or less.
  • the coefficient of variation (CV value) of the particle size of the microcarriers is preferably 8% or less, more preferably 5% or less, and even more preferably 3% or less. When the coefficient of variation (CV value) is equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • the coefficient of variation (CV value) of the particle size of the microcarriers may be 0% or more, 0.1% or more, or 1% or more.
  • the coefficient of variation (CV value) of the particle size of the microcarriers may be 0% or more and 10% or less, may be 0.1% or more and 8% or less, or may be 0.1% or more and 5% or less. It may be 1% or more and 3% or less.
  • the coefficient of variation (CV value) of the particle size of the microcarriers is calculated as follows.
  • CV value (%) ( ⁇ /Dn) ⁇ 100 ⁇ : standard deviation of particle size of microcarriers Dn: average particle size of microcarriers
  • Examples of methods for reducing the coefficient of variation (CV value) of the particle size of the microcarriers include a dry classification method and a wet classification method.
  • the shape of the microcarrier is not particularly limited.
  • the shape of the microcarriers may be spherical, may be other than spherical, or may be flat.
  • the spherical shape is not limited to a true spherical shape, and includes a substantially spherical shape, and includes, for example, a shape having an aspect ratio (major axis/minor axis) of 1.5 or less.
  • the specific gravity of the microcarrier is preferably 1 g/cm 3 or more, more preferably 1.05 g/cm 3 or more, preferably 1.2 g/cm 3 or less, and more preferably 1.15 g/cm 3 or less.
  • the specific gravity is equal to or higher than the lower limit, the microcarriers are preferably precipitated, and the collection efficiency can be enhanced.
  • the specific gravity is equal to or less than the above upper limit, it is possible to improve the swirlability of the stirring blade.
  • the specific gravity of the microcarriers is measured using a true hydrometer.
  • the water absorption rate of the microcarriers is preferably 10% by weight or less, more preferably 5% by weight or less, and even more preferably 1% by weight or less. If the water absorption rate is equal to or lower than the upper limit, the state of the surface of the microcarriers is less likely to change during adhesion of cells, so that variations in the initial fixation rate after seeding the cells can be reduced. Moreover, when the water absorption is equal to or less than the upper limit, the cells are less likely to be detached from the microcarriers in the culture medium.
  • the lower limit of the water absorption rate of the microcarriers is not particularly limited. The water absorption rate of the microcarrier may be 0% by weight or more, or may be 0.001% by weight or more.
  • the water absorption rate of the microcarrier can be measured as follows.
  • a coating layer is produced using a highly hydrophobic material.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view schematically showing a cell culture microcarrier according to one embodiment of the present invention.
  • the coating layer 3 is arranged on the surface of the substrate particles 2 and is in contact with the surfaces of the substrate particles 2 .
  • the coating layer 3 covers the entire outer surface of the substrate particles 2 .
  • the coating layer 3 contains a resin having a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton and a peptide portion.
  • (meth)acrylate means one or both of “acrylate” and “methacrylate”
  • (meth)acrylic means one or both of “acrylic” and “methacrylic”. means.
  • the material of the substrate particles is not particularly limited.
  • the material of the substrate particles is preferably an organic material.
  • the substrate particles preferably contain a resin.
  • the substrate particles are preferably resin particles because they are easy to manufacture. Only one kind of material for the substrate particles may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination. Only one kind of the resin may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • organic material examples include polyolefin resin, acrylic resin, polycarbonate, polyamide, phenol formaldehyde resin, melamine formaldehyde resin, benzoguanamine formaldehyde resin, urea formaldehyde resin, phenol resin, melamine resin, benzoguanamine resin, urea resin, epoxy resin, Unsaturated polyester resin, saturated polyester resin, polyethylene terephthalate, polysulfone, polyphenylene oxide, polyacetal, polyimide, polyamideimide, polyetheretherketone, polyethersulfone, divinylbenzene polymer, divinylbenzene copolymer and the like.
  • polystyrene resin examples include polyethylene, polypropylene, polystyrene, polyvinyl chloride, polyvinylidene chloride, polyisobutylene, and polybutadiene.
  • acrylic resin examples include (meth)acrylic acid, methyl (meth)acrylate, ethyl (meth)acrylate, butyl (meth)acrylate, t-butyl (meth)acrylate, and 2-ethylhexyl (meth)acrylate. , octyl (meth)acrylate, isopropyl (meth)acrylate, and propyl (meth)acrylate.
  • the acrylic resin may be a homopolymer of the above monomers, a copolymer of the above monomers, or a copolymer of the above monomers and other monomers.
  • acrylic resin examples include polymethyl methacrylate and polymethyl acrylate.
  • the material of the substrate particles is preferably a polymer obtained by polymerizing one or more polymerizable monomers having an ethylenically unsaturated group.
  • the resin is preferably a polymer of monomers having ethylenically unsaturated groups.
  • the substrate particles preferably contain a polymer of a monomer having an ethylenically unsaturated group. In this case, the specific gravity of the substrate particles can be adjusted satisfactorily, and as a result, the specific gravity of the microcarriers can be adjusted within a suitable range.
  • polymers of monomers having ethylenically unsaturated groups include acrylic resins, divinylbenzene polymers, and divinylbenzene copolymers. Only one kind of the monomer having an ethylenically unsaturated group may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • the polymer of the monomer having an ethylenically unsaturated group is preferably an acrylic resin, a divinylbenzene polymer, or a divinylbenzene copolymer.
  • the specific gravity of the substrate particles can be adjusted satisfactorily, and as a result, the specific gravity of the microcarriers can be adjusted within a suitable range.
  • the polymer of the monomer having the ethylenically unsaturated group preferably has a crosslinked structure.
  • the specific gravity of the substrate particles can be adjusted satisfactorily, and as a result, the specific gravity of the microcarriers can be adjusted within a suitable range.
  • Examples of methods for forming the crosslinked structure include the following methods. (1) A method of polymerizing a polymerizable component containing a monomer having two or more ethylenically unsaturated groups. (2) A method of forming a crosslinked structure by reacting a polymer of a monomer having an ethylenically unsaturated group with a crosslinking agent.
  • examples of the monomer having two or more ethylenically unsaturated groups include divinylbenzene, polyfunctional (meth)acrylate, triallyl(iso)cyanurate, triallyl trimellitate, diallyl phthalate, and diallyl acrylamide. Only one kind of the monomer having two or more ethylenically unsaturated groups may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • the polymerizable component may contain another monomer having an ethylenically unsaturated group.
  • monomers having ethylenically unsaturated groups include styrene, monofunctional (meth)acrylates, (meth)acrylic acid, acrylonitrile, and vinyl chloride.
  • Other monomers having ethylenically unsaturated groups may be used alone or in combination of two or more.
  • Examples of the polymer obtained by the above method (1) include a copolymer of divinylbenzene and styrene, and a copolymer of polyfunctional (meth)acrylate and monofunctional (meth)acrylate.
  • a polymer is obtained by polymerizing a polymerizable component containing a monomer having an ethylenically unsaturated group and a functional group containing an active hydrogen in the molecule, and then a cross-linking agent is added.
  • Examples of functional groups containing active hydrogen include hydroxyl groups, carboxyl groups, amino groups, and phenol groups.
  • monomers having an ethylenically unsaturated group and a functional group containing active hydrogen in the molecule include hydroxyl group-containing (meth)acrylates, (meth)acrylic acid, and amino group-containing (meth)acrylates.
  • the monomer having an ethylenically unsaturated group and a functional group containing active hydrogen in the molecule only one kind may be used, or two or more kinds may be used in combination.
  • the cross-linking agent is not particularly limited as long as it can react with the functional group containing the active hydrogen, and examples thereof include polyfunctional isocyanate compounds and polyfunctional epoxy compounds. Only one kind of the crosslinking agent may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • the substrate particles can be obtained, for example, by polymerizing a monomer having the ethylenically unsaturated group.
  • the polymerization method is not particularly limited, and includes known methods such as radical polymerization, ionic polymerization, polycondensation (condensation polymerization, polycondensation), addition condensation, living polymerization, and living radical polymerization.
  • Other polymerization methods include suspension polymerization in the presence of a radical polymerization initiator.
  • the substrate particles preferably contain a divinylbenzene polymer, a divinylbenzene copolymer, a polystyrene resin, or an acrylic resin, and more preferably contain a divinylbenzene polymer, a divinylbenzene copolymer, or an acrylic resin.
  • the substrate particles are preferably divinylbenzene polymer particles, divinylbenzene copolymer particles, polystyrene resin particles, or acrylic resin particles, and divinylbenzene polymer particles, divinylbenzene copolymer particles, or acrylic resin particles. is more preferable. In this case, the specific gravity of microcarriers can be suitably controlled.
  • the content of the resin is preferably 80% by weight or more, more preferably 90% by weight or more, even more preferably 95% by weight or more, still more preferably 97% by weight or more, and even more preferably 97% by weight or more. It is preferably 99% by weight or more, most preferably 100% by weight (total amount).
  • the content of the resin may be 100% by weight or less, or may be less than 100% by weight.
  • the average particle size of the substrate particles is preferably 300 ⁇ m or more, more preferably 350 ⁇ m or more, still more preferably 400 ⁇ m or more, still more preferably 500 ⁇ m or more, particularly preferably 600 ⁇ m or more, preferably 1500 ⁇ m or less, more preferably 1000 ⁇ m or less. , more preferably 800 ⁇ m or less, particularly preferably 700 ⁇ m or less.
  • the average particle diameter of the substrate particles is preferably 300 ⁇ m or more and 1500 ⁇ m or less, more preferably 350 ⁇ m or more and 1000 ⁇ m or less, still more preferably 400 ⁇ m or more and 1000 ⁇ m or less, still more preferably 500 ⁇ m or more and 800 ⁇ m or less, and particularly preferably 600 ⁇ m or more and 700 ⁇ m or less.
  • the average particle size is at least the lower limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • the average particle size is equal to or less than the upper limit, cell clusters can be formed with a more uniform thickness on the surface of each microcarrier.
  • the particle diameter of the substrate particles means the diameter when the substrate particles are spherical, and when the substrate particles have a shape other than a spherical shape, it is assumed to be a true sphere equivalent to its volume. means the diameter when
  • the average particle size of the substrate particles is preferably the number average particle size.
  • the average particle size of the substrate particles can be obtained by observing 50 arbitrary substrate particles with an electron microscope or an optical microscope and calculating the average particle size of each substrate particle, or by using a particle size distribution measuring device. is required. In observation with an electron microscope or an optical microscope, the particle size of each base particle is obtained as the particle size of the equivalent circle diameter. In observation with an electron microscope or an optical microscope, the average particle size of arbitrary 50 substrate particles in the equivalent circle diameter is approximately equal to the average particle size in the equivalent sphere diameter. In the particle size distribution analyzer, the particle size of one base particle is determined as the particle size in terms of equivalent sphere diameter. The average particle diameter of the substrate particles is preferably calculated using a particle size distribution analyzer.
  • the microcarrier includes substrate particles and a coating layer that coats the outer surface of the substrate particles.
  • the coating layer contains a resin having a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton and a peptide portion (hereinafter sometimes referred to as "resin X").
  • the resin X has a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylic acid ester skeleton and a peptide portion.
  • the resin X is a synthetic resin.
  • the coating layer contains resin X. Only one kind of the resin X may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • the resin X may have a polyvinyl alcohol derivative skeleton and a peptide moiety, may have a poly(meth)acrylic acid ester skeleton and a peptide moiety, or may have a polyvinyl alcohol derivative skeleton and a poly(meth)acrylate moiety. It may have an acrylate skeleton and a peptide portion.
  • the resin X having the polyvinyl alcohol derivative skeleton it is preferable that the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the peptide portion are linked via a linker portion. Therefore, the resin X having a polyvinyl alcohol derivative skeleton preferably has a polyvinyl alcohol derivative skeleton, a peptide portion, and a linker portion.
  • the poly(meth)acrylic acid ester skeleton and the peptide portion may be bonded via a linker portion, or directly without the linker portion. may be combined.
  • the resin X having a poly(meth)acrylate skeleton may have a poly(meth)acrylate skeleton, a peptide portion, and a linker portion.
  • the polyvinyl alcohol derivative skeleton is a skeleton portion derived from a polyvinyl alcohol derivative.
  • the polyvinyl alcohol derivative is a compound derived from polyvinyl alcohol.
  • the polyvinyl alcohol derivative is preferably a polyvinyl acetal resin, and the polyvinyl alcohol derivative skeleton is preferably a polyvinyl acetal skeleton. That is, the resin X preferably has a polyvinyl acetal skeleton and the peptide portion.
  • Each of the polyvinyl alcohol derivative and the polyvinyl acetal resin may be used alone, or two or more thereof may be used in combination.
  • the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton preferably have an acetal group, a hydroxyl group, and an acetyl group in their side chains.
  • the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton may not have an acetyl group, for example.
  • the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton may not have an acetyl group by binding all of the acetyl groups of the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton to the linker.
  • Polyvinyl acetal resin can be synthesized by acetalizing polyvinyl alcohol with aldehyde.
  • the aldehyde used for acetalization of polyvinyl alcohol is not particularly limited.
  • Examples of the aldehyde include aldehydes having 1 to 10 carbon atoms.
  • the aldehyde may or may not have a chain aliphatic group, a cyclic aliphatic group, or an aromatic group.
  • the aldehyde may be a chain aldehyde or a cyclic aldehyde. Only one kind of the aldehyde may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • the aldehyde is preferably formaldehyde, acetaldehyde, propionaldehyde, butyraldehyde, or pentanal, more preferably butyraldehyde. Therefore, the polyvinyl acetal resin is more preferably a polyvinyl butyral resin, the polyvinyl acetal skeleton is more preferably a polyvinyl butyral skeleton, and the resin X more preferably has a polyvinyl butyral skeleton.
  • the degree of acetalization of the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton is preferably 40 mol% or more, more preferably 50 mol% or more, preferably It is 90 mol % or less, more preferably 85 mol % or less.
  • the degree of acetalization is equal to or higher than the lower limit, the fixation of cells can be further enhanced, and the cells can grow efficiently. Solubility in a solvent can be made favorable as the said degree of acetalization is below the said upper limit.
  • the hydroxyl content (hydroxyl group amount) of the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton is preferably 15 mol% or more, more preferably 20 mol% or more, and more preferably 45 mol% or less, and more preferably. is 30 mol % or less, more preferably 25 mol % or less.
  • the degree of acetylation (acetyl group content) of the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton is preferably 1 mol% or more, more preferably 2 mol% or more, and more preferably 5 mol% or less, and more preferably. is 4 mol % or less.
  • the degree of acetylation is at least the lower limit and at most the upper limit, the reaction efficiency between the polyvinyl acetal resin and the linker can be enhanced.
  • the degree of acetalization, the degree of acetylation and the amount of hydroxyl groups of the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the polyvinyl acetal skeleton can be measured by 1 H-NMR (nuclear magnetic resonance spectrum).
  • the poly(meth)acrylic acid ester skeleton is a skeleton portion derived from poly(meth)acrylic acid ester.
  • the above poly(meth)acrylic acid ester is obtained by polymerizing a (meth)acrylic acid ester.
  • the poly(meth)acrylic acid ester skeleton has a skeleton derived from (meth)acrylic acid ester. Only one type of the poly(meth)acrylic acid ester may be used, or two or more types may be used in combination.
  • Examples of the (meth)acrylic acid esters include (meth)acrylic acid alkyl esters, (meth)acrylic acid cyclic alkyl esters, (meth)acrylic acid aryl esters, polyethylene glycol (meth)acrylates, and phosphorylcholine (meth)acrylates. etc. Only one type of the (meth)acrylic acid ester may be used, or two or more types may be used in combination.
  • Examples of the (meth)acrylic acid alkyl esters include methyl (meth)acrylate, ethyl (meth)acrylate, n-propyl (meth)acrylate, isopropyl (meth)acrylate, n-butyl (meth)acrylate, and isobutyl (meth)acrylate.
  • t-butyl (meth)acrylate n-octyl (meth)acrylate, isooctyl (meth)acrylate, 2-ethylhexyl (meth)acrylate, nonyl (meth)acrylate, isononyl (meth)acrylate, decyl (meth)acrylate, isodecyl (meth)acrylate, lauryl (meth)acrylate, stearyl (meth)acrylate, isotetradecyl (meth)acrylate and the like.
  • the (meth)acrylic acid alkyl ester may be substituted with a substituent such as an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms and a tetrahydrofurfuryl group.
  • a substituent such as an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms and a tetrahydrofurfuryl group.
  • Examples of such (meth)acrylic acid alkyl esters include methoxyethyl acrylate, tetrahydrofurfuryl acrylate, and the like.
  • Examples of the (meth)acrylic acid cyclic alkyl esters include cyclohexyl (meth)acrylate and isobornyl (meth)acrylate.
  • Examples of the (meth)acrylic acid aryl ester include phenyl (meth)acrylate and benzyl (meth)acrylate.
  • polyethylene glycol (meth)acrylates examples include methoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-diethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy -diethylene glycol (meth)acrylate, hydroxy-diethylene glycol (meth)acrylate, methoxy-triethylene glycol (meth)acrylate, ethoxy-triethylene glycol (meth)acrylate, and hydroxy-triethylene glycol (meth)acrylate.
  • Examples of the (meth)phosphorylcholine acrylate include 2-(meth)acryloyloxyethylphosphorylcholine and the like.
  • the resin X having a poly(meth)acrylic acid ester skeleton preferably has a structural unit derived from a (meth)acrylate compound (A) represented by the following formula (A1) or (A2).
  • the poly(meth)acrylate skeleton preferably has a structural unit derived from a (meth)acrylate compound (A) represented by the following formula (A1) or (A2).
  • the (meth)acrylate compound (A) may contain a (meth)acrylate compound represented by the following formula (A1), and contains a (meth)acrylate compound represented by the following formula (A2). It may contain both a (meth)acrylate compound represented by the following formula (A1) and a (meth)acrylate compound represented by the following formula (A2).
  • the (meth)acrylate compound (A) contains both a (meth)acrylate compound represented by the following formula (A1) and a (meth)acrylate compound represented by the following formula (A2)
  • the following formula R in (A1) and R in the following formula (A2) may be the same or different.
  • each of the (meth)acrylate compound represented by the following formula (A1) and the (meth)acrylate compound represented by the following formula (A2) may be used alone, or two or more may be used in combination.
  • R represents a hydrocarbon group having 2 or more and 18 or less carbon atoms.
  • R represents a hydrocarbon group having 2 or more and 18 or less carbon atoms.
  • Each of R in the above formula (A1) and R in the above formula (A2) may be an aliphatic hydrocarbon group or an aromatic hydrocarbon group. From the viewpoint of improving the solubility of the resin X having a poly(meth)acrylic acid ester skeleton, each of R in the above formula (A1) and R in the above formula (A2) is an aliphatic hydrocarbon group. is preferred.
  • the aliphatic hydrocarbon group may be linear, may have a branched structure, may have a double bond, or may not have a double bond.
  • Each of R in the above formula (A1) and R in the above formula (A2) may be an alkyl group or an alkylene group.
  • the number of carbon atoms of R in the above formula (A1) and the number of carbon atoms of R in the above formula (A2) are each preferably 4 or more, more preferably 6 or more, still more preferably 8 or more, particularly preferably 10 or more, and preferably is 16 or less, more preferably 14 or less, and most preferably 12.
  • the number of carbon atoms is equal to or higher than the lower limit, the hydrophobicity of the resin X can be further increased, and therefore the water absorption of the microcarrier can be further decreased.
  • coatability can be improved when the material of the coating layer is arranged on the surface of the substrate particles. In particular, when the number of carbon atoms is 12, the water absorption of the microcarrier can be further reduced and the coatability can be further improved.
  • the (meth)acrylic acid alkyl ester is preferably the (meth)acrylate compound (A).
  • the resin X having a poly(meth)acrylic acid ester skeleton may have a skeleton derived from a monomer other than the (meth)acrylic acid ester.
  • Examples of monomers other than the above (meth)acrylic acid esters include (meth)acrylamides and vinyl compounds. Monomers other than the (meth)acrylic acid ester may be used alone or in combination of two or more.
  • Examples of the (meth)acrylamides include (meth)acrylamide, N-isopropyl(meth)acrylamide, N-tert-butyl(meth)acrylamide, N,N'-dimethyl(meth)acrylamide, (3-(meth)acrylamide propyl)trimethylammonium chloride, 4-(meth)acryloylmorpholine, 3-(meth)acryloyl-2-oxazolidinone, N-[3-(dimethylamino)propyl](meth)acrylamide, N-(2-hydroxyethyl) ( meth)acrylamide, N-methylol(meth)acrylamide, 6-(meth)acrylamidohexanoic acid, and the like.
  • vinyl compounds examples include ethylene, allylamine, vinylpyrrolidone, maleic anhydride, maleimide, itaconic acid, (meth)acrylic acid, and vinylamine.
  • the peptide portion is a structural portion derived from a peptide.
  • the peptide portion has an amino acid sequence.
  • the peptide constituting the peptide portion may be an oligopeptide or a polypeptide. Only one kind of the above peptides may be used, or two or more kinds thereof may be used in combination.
  • the number of amino acid residues in the peptide portion is preferably 3 or more, more preferably 4 or more, still more preferably 5 or more, preferably 10 or less, more preferably 8 or less, still more preferably 6 or less. is.
  • the number of amino acid residues is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the adhesion to cells after seeding can be further enhanced, and the cell proliferation rate can be further enhanced.
  • the number of amino acid residues in the peptide portion may exceed 10 or may exceed 15.
  • the peptide portion preferably has a cell-adhesive amino acid sequence.
  • the cell-adhesive amino acid sequence refers to an amino acid sequence whose cell-adhesive activity has been confirmed by the phage display method, sepharose beads method, or plate coating method.
  • the phage display method for example, the method described in "The Journal of Cell Biology, Volume 130, Number 5, September 1995 1189-1196" can be used.
  • Sepharose beads method for example, the method described in "Protein, Nucleic Acid, Enzyme, Vol. 45, No. 15 (2000) 2477” can be used.
  • the plate coating method for example, the method described in "Protein, Nucleic Acid, Enzyme, Vol. 45, No. 15 (2000) 2477” can be used.
  • cell-adhesive amino acid sequences include the RGD sequence (Arg-Gly-Asp), the YIGSR sequence (Tyr-Ile-Gly-Ser-Arg), the PDSGR sequence (Pro-Asp-Ser-Gly-Arg), HAV sequence (His-Ala-Val), ADT sequence (Ala-Asp-Thr), QAV sequence (Gln-Ala-Val), LDV sequence (Leu-Asp-Val), IDS sequence (Ile-Asp-Ser), REDV sequence (Arg-Glu-Asp-Val), IDAPS sequence (Ile-Asp-Ala-Pro-Ser), KQAGDV sequence (Lys-Gln-Ala-Gly-Asp-Val), and TDE sequence (Thr-Asp- Glu) and the like.
  • amino acid sequences for cell adhesion include ⁇ Pathophysiology, Vol. 66, 1992”, and the like.
  • the peptide portion may have only one type of the cell-adhesive amino acid sequence, or may have two or more types.
  • the cell-adhesive amino acid sequence preferably has at least one of the cell-adhesive amino acid sequences described above, and more preferably has at least an RGD sequence, a YIGSR sequence, or a PDSGR sequence. ) to have at least the RGD sequence.
  • the adhesion to cells after seeding can be further enhanced, and the growth rate of cells can be further enhanced.
  • X represents Gly, Ala, Val, Ser, Thr, Phe, Met, Pro, or Asn.
  • the peptide portion may be linear or may have a cyclic peptide backbone. From the viewpoint of further enhancing cell proliferation, the peptide portion preferably has a cyclic peptide skeleton.
  • the cyclic peptide skeleton is a cyclic skeleton composed of a plurality of amino acids. From the viewpoint of more effectively exerting the effect of the present invention, the cyclic peptide skeleton is preferably composed of 4 or more amino acids, more preferably composed of 5 or more amino acids, and 10 It is preferably composed of the following amino acids.
  • the content of the peptide moiety is preferably 0.1 mol% or more, more preferably 1 mol% or more, still more preferably 5 mol% or more, particularly preferably 10 mol% or more, and preferably 60 mol%. % or less, more preferably 50 mol % or less, still more preferably 35 mol % or less, and particularly preferably 25 mol % or less.
  • the content rate (mol %) of the peptide portion is the amount of the peptide portion with respect to the sum of the amounts of the respective structural units constituting the resin X.
  • the content of the peptide portion can be measured, for example, by NMR, FT-IR or LC-MS.
  • the linker portion is a structural portion derived from a linker.
  • the linker portion is usually located between the polyvinyl alcohol derivative skeleton or the poly(meth)acrylic acid ester skeleton and the peptide portion.
  • the polyvinyl alcohol derivative skeleton or the poly(meth)acrylic acid ester skeleton and the peptide portion are bonded via the linker portion.
  • the linker portion is formed by a linker (cross-linking agent). Only one type of the linker may be used, or two or more types may be used in combination.
  • the linker is preferably a compound having a functional group capable of binding to the peptide, more preferably a compound having a functional group capable of condensing with the carboxyl group or amino group of the peptide.
  • Examples of functional groups that can be condensed with the carboxyl group or amino group of the peptide include a carboxyl group, a thiol group, an amino group, a hydroxyl group, a cyano group, and the like.
  • the linker is preferably a compound having a carboxyl group or an amino group, more preferably a compound having a carboxyl group.
  • examples of the linker having a carboxyl group include (meth)acrylic acid and carboxyl group-containing acrylamide.
  • a carboxylic acid (carboxylic acid monomer) having a polymerizable unsaturated group as the linker having a carboxyl group, the carboxylic acid monomer can be polymerized by graft polymerization at the time of introduction of the linker. can increase the number of carboxyl groups that can be formed.
  • the linker is preferably (meth)acrylic acid, more preferably acrylic acid.
  • the linker When obtaining a resin X having a poly(meth)acrylic acid ester skeleton, the linker preferably has a functional group capable of bonding with the (meth)acrylic acid ester.
  • a vinyl group, a (meth)acryloyl group, an allyl group, etc. are mentioned as a functional group which can be couple
  • the linker more preferably has a (meth)acryloyl group as a functional group capable of binding to the (meth)acrylic ester, and is a compound having a carboxyl group or an amino group and a (meth)acryloyl group. Preferably.
  • Examples of the linker for obtaining the resin X having a poly(meth)acrylate skeleton include (meth)acrylic acid, itaconic acid, and acrylamide.
  • the linker is preferably (meth)acrylic acid or itaconic acid, more preferably (meth)acrylic acid.
  • the weight average molecular weight of the resin X is preferably 10,000 or more, more preferably 50,000 or more, preferably 1,200,000 or less, and more preferably 600,000 or less.
  • the weight-average molecular weight is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • the weight-average molecular weight is equal to or less than the upper limit, the extensibility of cells during cell culture can be more effectively enhanced.
  • the weight average molecular weight of the resin X having a polyvinyl alcohol derivative skeleton is preferably 10,000 or more, more preferably 50,000 or more, preferably 1,200,000 or less, and more preferably 600,000 or less.
  • weight-average molecular weight is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • weight-average molecular weight is equal to or less than the upper limit, the extensibility of cells during cell culture can be more effectively enhanced.
  • the weight-average molecular weight of the resin X having a poly(meth)acrylate skeleton is preferably 10,000 or more, more preferably 50,000 or more, preferably 1,200,000 or less, and more preferably 600,000 or less.
  • the weight-average molecular weight is not less than the lower limit and not more than the upper limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • the weight-average molecular weight is equal to or less than the upper limit, the extensibility of cells during cell culture can be more effectively enhanced.
  • the weight average molecular weight of resin X can be measured, for example, by the following method.
  • the above resin X is dissolved in tetrahydrofuran (THF) to prepare a 0.2% by weight solution of resin X.
  • THF tetrahydrofuran
  • API system manufactured by Waters
  • the coating layer may contain only the resin X.
  • the coating layer may contain components other than the resin X.
  • components other than the resin X include resins other than the resin X, and the like.
  • Components other than the resin X include polyvinyl alcohol derivatives such as polyvinyl acetal resin, poly(meth)acrylic acid ester, polyolefin resin, polyether resin, polyvinyl alcohol resin, polyester, epoxy resin, polyamide resin, polyimide resin, polyurethane resin. , polycarbonate resins, cellulose, and polypeptides. Only one component other than the resin X may be used, or two or more components may be used in combination.
  • the coating layer may have only a layer containing the resin X.
  • the coating layer may have a layer containing no resin X and a layer containing resin X.
  • the coating layer has a layer that does not contain resin X and a layer that contains resin X, in the coating layer, the layer that does not contain resin X is located on the substrate particle side, and the layer that contains resin X is located on the substrate particle side. It is preferably positioned outside the layer that does not contain the resin X. In this case, the adhesiveness between microcarriers and cells can be further enhanced.
  • the resin X is preferably present at least on the outer surface of the microcarrier.
  • the outermost layer of the microcarrier is preferably a layer containing the resin X. In this case, the adhesion between microcarriers and cells can be further enhanced.
  • the content of the resin X in 100% by weight of the layer containing the resin X is preferably 90% by weight or more, more preferably 95% by weight or more, still more preferably 97.5% by weight or more, and particularly preferably 99% by weight. More preferably, it is 100% by weight (total amount). When the content of the resin X is equal to or higher than the lower limit, the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • the surface area (coverage) covered by the coating layer is preferably 50% or more, more preferably 70% or more, still more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more, particularly preferably 99% or more, most preferably 100%.
  • the coverage is equal to or higher than the lower limit, the adhesiveness between the microcarriers and cells can be further enhanced, and the effects of the present invention can be exhibited more effectively.
  • the coverage may be 100% or less, less than 100%, or 99% or less.
  • the above coverage can be obtained by observing the microcarriers with an electron microscope or an optical microscope and calculating the percentage of the surface area covered with the coating layer to the projected area of the substrate particles.
  • the thickness of the coating layer is preferably 10 nm or more, more preferably 50 nm or more, preferably 1 ⁇ m or less, and more preferably 500 nm or less.
  • the thickness of the coating layer is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the adhesion between microcarriers and cells can be further enhanced.
  • the effect of this invention can be exhibited further effectively as the thickness of the said coating layer is more than the said minimum and below the said upper limit.
  • the thickness of the coating layer can be measured by observing the cross section of the microcarrier using, for example, a scanning electron microscope (SEM). Regarding the thickness of the coating layer, it is preferable to calculate the average value of the thickness of the coating layer at any five locations as the thickness of the coating layer of one microcarrier. More preferably, it is calculated as the thickness of the coating layer of the carrier. The thickness of the coating layer is preferably obtained by calculating the average value of the thickness of the coating layer of each microcarrier for 50 arbitrary microcarriers.
  • SEM scanning electron microscope
  • Examples of methods for obtaining the resin X having the polyvinyl alcohol derivative skeleton include the following methods.
  • a polyvinyl alcohol derivative (for example, polyvinyl acetal resin) is reacted with a linker to obtain a reactant in which the polyvinyl acetal resin and the linker are bonded.
  • the obtained reactant is reacted with the peptide to obtain a resin X having a polyvinyl alcohol derivative skeleton (polyvinyl acetal skeleton).
  • Examples of methods for obtaining the resin X having the poly(meth)acrylic acid ester skeleton include the following methods.
  • An acrylic resin is obtained by polymerizing a monomer containing a (meth)acrylic acid ester.
  • the obtained acrylic resin, peptide, and optional linker are reacted to obtain a resin X having a poly(meth)acrylic acid ester skeleton.
  • Examples of methods for obtaining the resin X having the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the poly(meth)acrylic acid ester skeleton include the following methods.
  • a resin having a polyvinyl alcohol derivative skeleton and a poly(meth)acrylic acid ester skeleton is obtained by the following method (i), (ii) or (iii).
  • Polyvinyl acetal resin is synthesized using polyvinyl alcohol copolymerized with acrylic acid ester.
  • Polyvinyl acetal resin is synthesized using polyvinyl alcohol and polyvinyl alcohol copolymerized with acrylic acid ester.
  • the resin obtained by the method (i), (ii) or (iii) above, a peptide, and an optional linker are reacted to form the polyvinyl alcohol derivative skeleton and the poly(meth)acrylic acid.
  • a resin X having an ester skeleton is obtained.
  • Examples of methods for obtaining microcarriers by arranging the coating layer on the surface of the substrate particles include the following method (1) and method (2).
  • Method (1) Resin X obtained by the above method is dissolved in a solvent to obtain a resin X-containing liquid.
  • a layer (coating layer) containing the resin X is formed on the outer surface of the substrate particles by spraying the resin X-containing liquid onto the substrate particles or by separating the substrate particles impregnated with the resin X-containing liquid.
  • a microcarrier can be made that comprises:
  • Method (2) Prepare a resin (resin X before peptide bonding) that does not have a polyvinyl alcohol derivative skeleton or a poly(meth)acrylate ester skeleton. This resin is dissolved in a solvent to obtain a resin-containing liquid. A layer not containing resin X (polyvinyl alcohol derivative or a layer containing poly(meth)acrylic acid ester) is arranged. The obtained particles are reacted with the polyvinyl alcohol derivative or poly(meth)acrylic acid ester contained in the layer not containing resin X by the method described above, the peptide, and the optionally used linker. In this manner, a microcarrier having a layer containing no resin X and a layer containing resin X as coating layers on the outer surface of the substrate particles can be produced.
  • microcarriers are used for culturing cells.
  • the above cells include animal cells such as humans, mice, rats, pigs, cows and monkeys.
  • examples of the above-mentioned cells include somatic cells, such as stem cells, progenitor cells and mature cells.
  • the somatic cells may be cancer cells.
  • the above stem cells include mesenchymal stem cells (MSC), iPS cells, ES cells, Muse cells, embryonic cancer cells, embryonic germ stem cells, mGS cells, and the like.
  • the above-mentioned mature cells include nerve cells, cardiomyocytes, retinal cells, hepatocytes, and the like.
  • Three-dimensional culture is a culture method in which cells are cultured with thickness in the vertical direction, as opposed to two-dimensional culture in which cells are cultured on a flat surface such as a plate.
  • microcarriers are preferably used for serum-free medium culture. Since the microcarrier contains the resin X, it is possible to increase the adhesion of cells even in a serum-free medium culture that does not contain feeder cells or adhesion proteins, and in particular, the initial colonization rate after seeding cells is further improved. can be enhanced. Moreover, since the microcarrier contains the resin X, the effects of the present invention can be exhibited even in serum-free medium culture.
  • the microcarrier preferably does not substantially contain animal-derived raw materials. By not containing animal-derived raw materials, it is possible to provide microcarriers that are highly safe and have little variation in quality during production.
  • the expression "substantially free of animal-derived raw materials” means that the amount of animal-derived raw materials in the microcarrier is 3% by weight or less.
  • the content of animal-derived raw materials in the microcarrier is preferably 1% by weight or less, most preferably 0% by weight. That is, the microcarriers most preferably do not contain any animal-derived materials.
  • Cells can be cultured using the above microcarriers.
  • a method for culturing cells according to the present invention is a method for culturing cells using the microcarriers described above. Examples of the cells include the cells described above.
  • the method for culturing cells preferably includes a step of adhering cells to the microcarriers.
  • the cells may be cell clusters.
  • the cell mass can be obtained by adding a cell detachment agent to a confluent culture vessel and homogenizing the cells by pipetting.
  • the cell detachment agent is not particularly limited, ethylenediamine/phosphate buffer solution is preferable.
  • the size of the cell aggregates is preferably 50 ⁇ m to 200 ⁇ m.
  • the structural unit content in the obtained resin was measured by 1H-NMR (nuclear magnetic resonance spectrum) after dissolving the synthetic resin in DMSO-d6 (dimethylsulfoxide).
  • Example 1 Production of Substrate Particles A 800 parts by weight of divinylbenzene (purity 57%) and 200 parts by weight of styrene were mixed to obtain a mixture. 20 parts by weight of benzoyl peroxide was added to the resulting mixture and stirred until uniformly dissolved to obtain a monomer mixture. 4000 parts by weight of a 2% by weight aqueous solution of polyvinyl alcohol having a molecular weight of about 1700 dissolved in pure water was placed in a reactor. Next, the obtained monomer mixed solution was put into the reactor and stirred for 4 hours to adjust the particle size of the droplets of the monomer to a predetermined particle size.
  • the substrate particles A are resin particles of a divinylbenzene copolymer (denoted as DVB in the table).
  • n-butyraldehyde was added to precipitate white particulate polyvinyl acetal resin (polyvinyl butyral resin).
  • 35% by weight hydrochloric acid was added so that the concentration of hydrochloric acid was 1.8% by weight, then the mixture was heated to 50° C. and held at 50° C. for 2 hours.
  • polyvinyl butyral resin is washed with water and dried to form a polyvinyl acetal resin (polyvinyl butyral resin, average polymerization degree 1700, acetalization degree (butyralization degree) 70 mol%, hydroxyl group content 27 mol %, degree of acetylation 3 mol %).
  • Linker Part 99 parts by weight of the obtained polyvinyl acetal resin and 1 part by weight of acrylic acid (linker) were dissolved in 300 parts by weight of THF (tetrahydrofuran), and in the presence of a photoradical polymerization initiator, ultraviolet light was applied.
  • a linker portion was formed by reacting for 20 minutes under irradiation and graft-copolymerizing the polyvinyl acetal resin and acrylic acid.
  • Resin X having a polyvinyl alcohol derivative skeleton (polyvinyl acetal skeleton) obtained by the above-described method is described as Resin X1.
  • Resin X1 has an amino acid sequence of Gly-Arg-Gly-Asp-Ser as the peptide portion.
  • Example 2 (1) Production of Base Particle B A polymerization reaction was carried out in the same manner as in Example 1 to obtain particles. By classifying the obtained particles, base particles B having an average particle size of 350 ⁇ m and a CV value of the particle size of 1% were obtained.
  • Example 3 (1) Production of Substrate Particles C A polymerization reaction was carried out in the same manner as in Example 1 to obtain particles. By classifying the obtained particles, base particles C having an average particle size of 900 ⁇ m and a CV value of the particle size of 1% were obtained.
  • Example 4 (1) Production of Substrate Particle D A polymerization reaction was carried out in the same manner as in Example 1 to obtain particles. By classifying the obtained particles, base particles D having an average particle size of 600 ⁇ m and a CV value of the particle size of 8% were obtained.
  • Example 6 (1) Production of Substrate Particles E A polymerization reaction was carried out in the same manner as in Example 1 to obtain particles. By classifying the obtained particles, base particles E having an average particle size of 1500 ⁇ m and a CV value of the particle size of 1% were obtained.
  • Base particles A were used as the base particles.
  • Resin X having a poly(meth)acrylic acid ester skeleton obtained by the above-described method is indicated as Resin X3.
  • Resin X3 has an amino acid sequence of Arg-Gly-Asp-Phe-Lys (cyclic peptide backbone) as the peptide portion.
  • Example 8 (1) Preparation of Substrate Particles F Micropearl GS-L300 (manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd., average particle diameter 300 ⁇ m, particle diameter CV value 7%, polyfunctional acrylic resin particles) was prepared. By classifying these particles, base particles F having an average particle size of 300 ⁇ m and a CV value of the particle size of 1% were obtained.
  • the substrate particles F are resin particles of an acrylic resin (described as ACR in the table).
  • Example 2 Production of Substrate Particles H A polymerization reaction was carried out in the same manner as in Example 1 to obtain particles. By classifying the obtained particles, base particles H having an average particle size of 100 ⁇ m and a CV value of the particle size of 1% were obtained.
  • Thickness of Coating Layer A cross section of the obtained microcarrier was observed with a scanning electron microscope. The thickness of the coating layer was measured for each of 50 arbitrary microcarriers, and the average value was taken as the thickness of the coating layer of the microcarrier.
  • TeSR E8 medium manufactured by STEM CELL
  • ROCK-Inhibitor Y27632
  • Confluent 253G1 h-iPS cells and 1 mL of 0.5 mM ethylenediaminetetraacetic acid/phosphate buffer solution were added to a ⁇ 35 mm dish and allowed to stand at room temperature for 5 minutes. After removing the ethylenediaminetetraacetic acid/phosphate buffer solution, a cell suspension was obtained by pipetting with 1 mL of liquid medium. 1.0 ⁇ 10 4 cells of the obtained cell suspension were seeded in a culture plate containing 1 mL of liquid medium.
  • microcarriers after culturing for 5 days were photographed with a phase-contrast microscope.
  • the adhesion between microcarriers by cell clusters was determined according to the following criteria.
  • the uniform coverage of cells adhering to the microcarriers was determined according to the following criteria.
  • AA Among 20 microcarriers, the number of microcarriers in which 90% or more of the surface of the microcarriers is coated with cell masses is 10 or more A: Not applicable to the above "AA”, and 20 microcarriers The number of microcarriers in which 70% or more and less than 90% of the surface of the microcarriers is coated with cell masses is 10 or more. B: Not falling under the above “AA” and “A”, Out of 20 microcarriers, the number of microcarriers in which 50% or more and less than 70% of the microcarrier surface is coated with cell masses is 10 or more. C: The above “AA”, “A” and “B” Not applicable, and the number of microcarriers in which less than 50% of the microcarrier surface is covered with cell masses is 10 or more out of 20 microcarriers

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Abstract

細胞塊によるマイクロキャリア間の接着を抑えることができる細胞培養用マイクロキャリアを提供する。　本発明に係る細胞培養用マイクロキャリアは、基材粒子と、前記基材粒子の外表面を被覆する被覆層とを備え、前記被覆層が、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂を含み、平均粒子径が３００μｍ以上であり、粒子径のＣＶ値が１０％以下である。

Description

細胞培養用マイクロキャリア及び細胞の培養方法
　本発明は、細胞培養用マイクロキャリアに関する。また、本発明は、上記細胞培養用マイクロキャリアを用いた細胞の培養方法に関する。
　学術分野、創薬分野及び再生医療分野等の研究開発において、ヒト、マウス、ラット、ブタ、ウシ及びサル等の動物細胞が用いられている。細胞の培養方法として、マイクロキャリアを用いる方法が知られている。従来、マイクロキャリアの材料として、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が用いられている。
　また、下記の特許文献１に示すように、合成樹脂により作製されたマイクロキャリアも知られている。
　下記の特許文献１には、特定のモノマーの混合物の共重合物から形成されたポリマー性マイクロキャリアベース部と、マイクロキャリアベース部に共役したポリペプチドとを備える細胞培養用マイクロキャリアが開示されている。このマイクロキャリアでは、上記マイクロキャリアベース部の平衡含水率が７５％を超える。
ＷＯ２０１０／１３８７０２Ａ１
　特許文献１に記載のような従来のマイクロキャリアを用いて細胞を培養すると、マイクロキャリア間で細胞塊が形成され、形成された細胞塊を介してマイクロキャリア間が接着することがある。この場合、細胞塊が団子状になり、細胞の培養効率が低下する。
　本発明の目的は、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着を抑えることができる細胞培養用マイクロキャリアを提供することである。また、本発明は、上記細胞培養用マイクロキャリアを用いた細胞の培養方法を提供することも目的とする。
　本発明の広い局面によれば、基材粒子と、前記基材粒子の外表面を被覆する被覆層とを備え、前記被覆層が、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂を含み、平均粒子径が３００μｍ以上であり、粒子径のＣＶ値が１０％以下である、細胞培養用マイクロキャリア（以下、マイクロキャリアと記載することがある）が提供される。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、吸水率が１０重量％以下である。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、平均粒子径が１０００μｍ以下である。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、前記ポリビニルアルコール誘導体骨格が、ポリビニルアセタール骨格である。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、比重が１ｇ／ｃｍ３以上１．２ｇ／ｃｍ３以下である。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、前記基材粒子が、樹脂粒子である。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、前記基材粒子が、エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体を含む。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、前記エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体が、アクリル樹脂、ジビニルベンゼン重合体、又はジビニルベンゼン共重合体である。
　本発明に係るマイクロキャリアのある特定の局面では、前記ペプチド部が、細胞接着性のアミノ酸配列を有する。
　本発明の広い局面によれば、上述した細胞培養用マイクロキャリアに細胞を接着させる工程を備える、細胞の培養方法が提供される。
　本発明に係る細胞培養用マイクロキャリアは、基材粒子と、上記基材粒子の外表面を被覆する被覆層とを備え、上記被覆層が、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂を含む。本発明に係る細胞培養用マイクロキャリアでは、平均粒子径が３００μｍ以上であり、粒子径のＣＶ値が１０％以下である。本発明に係る細胞培養用マイクロキャリアでは、上記の構成が備えられているので、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着を抑えることができる。
図１は、本発明の一実施形態に係る細胞培養用マイクロキャリアを模式的に示す断面図である。
　以下、本発明の詳細を説明する。
　（細胞培養用マイクロキャリア）
　本発明に係る細胞培養用マイクロキャリア（以下、「マイクロキャリア」と略記することがある）は、基材粒子と、上記基材粒子の外表面を被覆する被覆層とを備え、上記被覆層が、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂を含む。本発明に係るマイクロキャリアでは、平均粒子径が３００μｍ以上であり、粒子径のＣＶ値が１０％以下である。
　本発明に係るマイクロキャリアでは、上記の構成が備えられているので、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着を抑えることができる。
　従来、細胞培養用マイクロキャリアとして、平均粒子径の比較的小さいマイクロキャリア（例えば、平均粒子径が１００μｍ～２００μｍ程度のマイクロキャリア）が用いられている。平均粒子径の小さいマイクロキャリアを用いることで、マイクロキャリアの比表面積を大きくすることができ、細胞が接着可能な面積を増やすことができる。しかしながら、平均粒子径の小さい従来のマイクロキャリアでは、マイクロキャリア間で細胞塊が形成され、形成された細胞塊を介してマイクロキャリア間が接着することがあり、結果として、細胞の培養効率が低下する。
　これに対して、本発明に係るマイクロキャリアは、平均粒子径が比較的大きく、かつ粒子径が比較的揃っている。また、本発明に係るマイクロキャリアは、基材粒子と特定の樹脂を含む被覆層とを備える。本発明に係るマイクロキャリアでは、上述した構成の採用によって、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着を抑えることができる。また、本発明に係るマイクロキャリアでは、マイクロキャリアと細胞との接着性を高めることができる。さらに、本発明に係るマイクロキャリアでは、各マイクロキャリアの表面上にて均一な厚みで細胞塊を形成させることができ、また、各マイクロキャリアが細胞塊で覆われる表面積を増加させることができる。従って、本発明に係るマイクロキャリアでは、細胞の培養効率を高く維持することができる。
　また、本発明に係るマイクロキャリアでは、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）等の天然高分子材料を材料として用いる必要がないため、安価であり、ロット間のばらつきが小さく、安全性に優れる。
　上記マイクロキャリアの平均粒子径は３００μｍ以上である。上記マイクロキャリアの平均粒子径が３００μｍ未満であると、マイクロキャリア間で細胞塊が形成されて、細胞塊を介してマイクロキャリア間が接着しやすい。
　上記マイクロキャリアの平均粒子径は、好ましくは３５０μｍ以上、より好ましくは４００μｍ以上、更に好ましくは５００μｍ以上、特に好ましくは６００μｍ以上、好ましくは１５００μｍ以下、より好ましくは１０００μｍ以下、更に好ましくは８００μｍ以下、特に好ましくは７００μｍ以下である。上記マイクロキャリアの平均粒子径は、好ましくは３５０μｍ以上１５００μｍ以下、より好ましくは４００μｍ以上１０００μｍ以下、更に好ましくは５００μｍ以上８００μｍ以下、特に好ましくは６００μｍ以上７００μｍ以下である。上記平均粒子径が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。上記平均粒子径が上記上限以下であると、各マイクロキャリアの表面上にて、より一層均一な厚みで細胞塊を形成させることができる。また、上記平均粒子径が上記上限以下であると、細胞が接着可能な面積をより一層増やすことができる。
　上記マイクロキャリアの粒子径は、上記マイクロキャリアが真球状である場合には直径を意味し、上記マイクロキャリアが真球状以外の形状である場合には、その体積相当の真球と仮定した際の直径を意味する。
　上記マイクロキャリアの平均粒子径は、数平均粒子径であることが好ましい。上記マイクロキャリアの平均粒子径は、任意のマイクロキャリア５０個を電子顕微鏡又は光学顕微鏡にて観察し、各マイクロキャリアの粒子径の平均値を算出することや、粒度分布測定装置を用いて求められる。電子顕微鏡又は光学顕微鏡での観察では、１個当たりのマイクロキャリアの粒子径は、円相当径での粒子径として求められる。電子顕微鏡又は光学顕微鏡での観察において、任意の５０個のマイクロキャリアの円相当径での平均粒子径は、球相当径での平均粒子径とほぼ等しくなる。粒度分布測定装置では、１個当たりのマイクロキャリアの粒子径は、球相当径での粒子径として求められる。上記マイクロキャリアの平均粒子径は、粒度分布測定装置を用いて算出することが好ましい。
　本発明の効果を発揮させる観点から、上記マイクロキャリアの粒子径の変動係数（ＣＶ値）は１０％以下である。
　上記マイクロキャリアの粒子径の変動係数（ＣＶ値）は、好ましくは８％以下、より好ましくは５％以下、更に好ましくは３％以下である。上記変動係数（ＣＶ値）が上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。なお、上記マイクロキャリアの粒子径の変動係数（ＣＶ値）は、０％以上であってもよく、０．１％以上であってもよく、１％以上であってもよい。上記マイクロキャリアの粒子径の変動係数（ＣＶ値）は、０％以上１０％以下であってもよく、０．１％以上８％以下であってもよく、０．１％以上５％以下であってもよく、１％以上３％以下であってもよい。
　上記マイクロキャリアの粒子径の変動係数（ＣＶ値）は、以下のようにして算出される。
　ＣＶ値（％）＝（ρ／Ｄｎ）×１００
　ρ：マイクロキャリアの粒子径の標準偏差
　Ｄｎ：マイクロキャリアの平均粒子径
　上記マイクロキャリアの粒子径の変動係数（ＣＶ値）を小さくする方法としては、乾式分級する方法、及び湿式分級する方法等が挙げられる。
　上記マイクロキャリアの形状は、特に限定されない。上記マイクロキャリアの形状は、球状であってもよく、球状以外の形状であってもよく、扁平状等の形状であってもよい。なお、球状は、真球状に限定されず、略球状も含み、例えば、アスペクト比（長径／短径）が１．５以下である形状も含む。
　上記マイクロキャリアの比重は、好ましくは１ｇ／ｃｍ３以上、より好ましくは１．０５ｇ／ｃｍ３以上、好ましくは１．２ｇ／ｃｍ３以下、より好ましくは１．１５ｇ／ｃｍ３以下である。上記比重が上記下限以上であると、マイクロキャリアが好適に沈降し回収効率を高めることができる。上記比重が上記上限以下であると、撹拌翼による旋回性を向上させることができる。
　上記マイクロキャリアの比重は、真比重計を用いて測定される。
　上記マイクロキャリアの吸水率は、好ましくは１０重量％以下、より好ましくは５重量％以下、更に好ましくは１重量％以下である。上記吸水率が上記上限以下であると、細胞の接着時にマイクロキャリアの表面の状態が変化しにくくなるため、細胞播種後の初期定着率のばらつきを小さくすることができる。また、上記吸水率が上記上限以下であると、培地中で細胞がマイクロキャリアから剥離しにくくなる。なお、上記マイクロキャリアの吸水率の下限は、特に限定されない。上記マイクロキャリアの吸水率は、０重量％以上であってもよく、０．００１重量％以上であってもよい。
　上記マイクロキャリアの吸水率は、以下のようにして測定できる。
　１００℃のオーブンで８時間乾燥させたマイクロキャリアを用意する。このマイクロキャリア１００．０ｍｇを、温度３７℃及び相対湿度９５％ＲＨの環境下で２４時間放置する。放置後のマイクロキャリアの重量を測定する。下記式により、マイクロキャリアの吸水率を算出する。
　吸水率（重量％）＝（Ｗ２－Ｗ１）／Ｗ１×１００
　Ｗ１：放置前のマイクロキャリアの重量（ｍｇ）
　Ｗ２：放置後のマイクロキャリアの重量（ｍｇ）
　上記マイクロキャリアの吸水率を小さくする方法としては、例えば、疎水性の大きい材料を用いて被覆層を作製することが挙げられる。
　以下、図面を参照しつつ、本発明を具体的に説明する。
　図１は、本発明の一実施形態に係る細胞培養用マイクロキャリアを模式的に示す断面図である。
　図１に示す細胞培養用マイクロキャリア１は、基材粒子２と、基材粒子２の外表面を被覆する被覆層３とを備える。被覆層３は、基材粒子２の表面上に配置されており、基材粒子２の表面に接している。被覆層３は、基材粒子２の外表面全体を被覆している。被覆層３は、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂を含む。
　以下、マイクロキャリアの他の詳細について説明する。
　なお、本明細書において、「（メタ）アクリレート」は「アクリレート」と「メタクリレート」との一方又は双方を意味し、「（メタ）アクリル」は「アクリル」と「メタクリル」との一方又は双方を意味する。
　（基材粒子）
　上記基材粒子の材料は特に限定されない。上記基材粒子の材料は、有機材料であることが好ましい。上記基材粒子は、樹脂を含むことが好ましい。製造が容易であることから、上記基材粒子は、樹脂粒子であることが好ましい。上記基材粒子の材料は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。上記樹脂は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記有機材料（樹脂）としては、ポリオレフィン樹脂、アクリル樹脂、ポリカーボネート、ポリアミド、フェノールホルムアルデヒド樹脂、メラミンホルムアルデヒド樹脂、ベンゾグアナミンホルムアルデヒド樹脂、尿素ホルムアルデヒド樹脂、フェノール樹脂、メラミン樹脂、ベンゾグアナミン樹脂、尿素樹脂、エポキシ樹脂、不飽和ポリエステル樹脂、飽和ポリエステル樹脂、ポリエチレンテレフタレート、ポリスルホン、ポリフェニレンオキサイド、ポリアセタール、ポリイミド、ポリアミドイミド、ポリエーテルエーテルケトン、ポリエーテルスルホン、ジビニルベンゼン重合体、並びにジビニルベンゼン共重合体等が挙げられる。
　上記ポリオレフィン樹脂としては、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリ塩化ビニル、ポリ塩化ビニリデン、ポリイソブチレン、及びポリブタジエン等が挙げられる。
　上記アクリル樹脂としては、（メタ）アクリル酸、（メタ）アクリル酸メチル、（メタ）アクリル酸エチル、（メタ）アクリル酸ブチル、（メタ）アクリル酸ｔ－ブチル、（メタ）アクリル酸２－エチルヘキシル、（メタ）アクリル酸オクチル、（メタ）アクリル酸イソプロピル、及び（メタ）アクリル酸プロピル等のモノマーの重合体が挙げられる。上記アクリル樹脂は、上記モノマーの単独重合体であってもよく、上記モノマーの共重合体であってもよく、上記モノマーとその他のモノマーとの共重合体であってもよい。上記アクリル樹脂としては、ポリメチルメタクリレート及びポリメチルアクリレート等が挙げられる。
　上記基材粒子の材料は、エチレン性不飽和基を有する重合性単量体を１種又は２種以上重合させた重合体であることが好ましい。上記樹脂は、エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体であることが好ましい。上記基材粒子は、エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体を含むことが好ましい。この場合には、基材粒子の比重を良好に調整することができ、その結果、マイクロキャリアの比重を好適な範囲に調整することができる。
　上記エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体としては、例えば、アクリル樹脂、ジビニルベンゼン重合体、及びジビニルベンゼン共重合体等が挙げられる。上記エチレン性不飽和基を有するモノマーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体は、アクリル樹脂、ジビニルベンゼン重合体、又はジビニルベンゼン共重合体であることが好ましい。この場合には、基材粒子の比重を良好に調整することができ、その結果、マイクロキャリアの比重を好適な範囲に調整することができる。
　上記基材粒子が上記エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体を含む場合、上記エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体は、架橋構造を有することが好ましい。この場合には、基材粒子の比重を良好に調整することができ、その結果、マイクロキャリアの比重を好適な範囲に調整することができる。
　上記架橋構造を形成する方法としては、例えば、以下の方法が挙げられる。（１）エチレン性不飽和基を２個以上有するモノマーを含む重合性成分を重合する方法。（２）エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体と架橋剤とを反応させて架橋構造を形成する方法。
　上記（１）の方法において、上記エチレン性不飽和基を２個以上有するモノマーとしては、例えば、ジビニルベンゼン、多官能（メタ）アクリレート、トリアリル（イソ）シアヌレート、トリアリルトリメリテート、ジアリルフタレート、及びジアリルアクリルアミド等が挙げられる。上記エチレン性不飽和基を２個以上有するモノマーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　また、上記（１）の方法において、上記重合性成分は、エチレン性不飽和基を有する他のモノマーを含んでもよい。上記エチレン性不飽和基を有する他のモノマーとしては、例えば、スチレン、単官能（メタ）アクリレート、（メタ）アクリル酸、アクリロニトリル、塩化ビニル等が挙げられる。上記エチレン性不飽和基を有する他のモノマーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記（１）の方法によって得られる重合体としては、例えば、ジビニルベンゼンとスチレンとの共重合体、及び多官能（メタ）アクリレートと単官能（メタ）アクリレートとの共重合体等が挙げられる。
　上記（２）の方法としては、例えば、分子内にエチレン性不飽和基と活性水素を含む官能基とを有するモノマーを含む重合性成分を重合して重合体を得て、次いで、架橋剤を用いて重合体間を架橋する方法が挙げられる。
　上記活性水素を含む官能基としては、例えば、水酸基、カルボキシル基、アミノ基、及びフェノール基等が挙げられる。分子内にエチレン性不飽和基と活性水素を含む官能基とを有するモノマーとしては、例えば、水酸基含有（メタ）アクリレート、（メタ）アクリル酸、及びアミノ基含有（メタ）アクリレート等が挙げられる。上記分子内にエチレン性不飽和基と活性水素を含む官能基とを有するモノマーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記架橋剤としては、上記活性水素を含む官能基と反応可能であれば特に限定されず、例えば、多官能イソシアネート化合物、多官能エポキシ化合物等が挙げられる。上記架橋剤は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記基材粒子は、例えば、上記エチレン性不飽和基を有するモノマーを重合させることによって得ることができる。上記の重合方法としては特に限定されず、ラジカル重合、イオン重合、重縮合（縮合重合、縮重合）、付加縮合、リビング重合、及びリビングラジカル重合等の公知の方法が挙げられる。また、他の重合方法としては、ラジカル重合開始剤の存在下での懸濁重合が挙げられる。
　上記基材粒子は、ジビニルベンゼン重合体、ジビニルベンゼン共重合体、ポリスチレン樹脂、又はアクリル樹脂を含むことが好ましく、ジビニルベンゼン重合体、ジビニルベンゼン共重合体、又はアクリル樹脂を含むことがより好ましい。上記基材粒子は、ジビニルベンゼン重合体粒子、ジビニルベンゼン共重合体粒子、ポリスチレン樹脂粒子、又はアクリル樹脂粒子であることが好ましく、ジビニルベンゼン重合体粒子、ジビニルベンゼン共重合体粒子、又はアクリル樹脂粒子であることがより好ましい。この場合には、マイクロキャリアの比重を好適に制御することができる。
　上記基材粒子１００重量％中、上記樹脂の含有量は、好ましくは８０重量％以上、より好ましくは９０重量％以上、より一層好ましくは９５重量％以上、更に好ましくは９７重量％以上、更に一層好ましくは９９重量％以上、最も好ましくは１００重量％（全量）である。なお、上記基材粒子１００重量％中、上記樹脂の含有量は、１００重量％以下であってもよく、１００重量％未満であってもよい。
　上記基材粒子の平均粒子径は、好ましくは３００μｍ以上、より好ましくは３５０μｍ以上、より一層好ましくは４００μｍ以上、更に好ましくは５００μｍ以上、特に好ましくは６００μｍ以上、好ましくは１５００μｍ以下、より好ましくは１０００μｍ以下、更に好ましくは８００μｍ以下、特に好ましくは７００μｍ以下である。上記基材粒子の平均粒子径は、好ましくは３００μｍ以上１５００μｍ以下、より好ましくは３５０μｍ以上１０００μｍ以下、より一層好ましくは４００μｍ以上１０００μｍ以下、更に好ましくは５００μｍ以上８００μｍ以下、特に好ましくは６００μｍ以上７００μｍ以下である。上記平均粒子径が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。上記平均粒子径が上記上限以下であると、各マイクロキャリアの表面上にて、より一層均一な厚みで細胞塊を形成させることができる。
　上記基材粒子の粒子径は、上記基材粒子が真球状である場合には直径を意味し、上記基材粒子が真球状以外の形状である場合には、その体積相当の真球と仮定した際の直径を意味する。
　上記基材粒子の平均粒子径は、数平均粒子径であることが好ましい。上記基材粒子の平均粒子径は、任意の基材粒子５０個を電子顕微鏡又は光学顕微鏡にて観察し、各基材粒子の粒子径の平均値を算出することや、粒度分布測定装置を用いて求められる。電子顕微鏡又は光学顕微鏡での観察では、１個当たりの基材粒子の粒子径は、円相当径での粒子径として求められる。電子顕微鏡又は光学顕微鏡での観察において、任意の５０個の基材粒子の円相当径での平均粒子径は、球相当径での平均粒子径とほぼ等しくなる。粒度分布測定装置では、１個当たりの基材粒子の粒子径は、球相当径での粒子径として求められる。上記基材粒子の平均粒子径は、粒度分布測定装置を用いて算出することが好ましい。
　（被覆層）
　上記マイクロキャリアは、基材粒子と、基材粒子の外表面を被覆する被覆層とを備える。上記被覆層は、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂（以下、「樹脂Ｘ」と記載することがある）を含む。上記樹脂Ｘは、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する。上記樹脂Ｘは、合成樹脂である。上記被覆層は、樹脂Ｘを含む。上記樹脂Ｘは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記樹脂Ｘは、ポリビニルアルコール誘導体骨格とペプチド部とを有していてもよく、ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格とペプチド部とを有していてもよく、ポリビニルアルコール誘導体骨格とポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格とペプチド部とを有していてもよい。
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格を有する樹脂Ｘでは、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格と上記ペプチド部とが、リンカー部を介して結合していることが好ましい。したがって、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格を有する樹脂Ｘは、ポリビニルアルコール誘導体骨格と、ペプチド部と、リンカー部とを有することが好ましい。
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘでは、上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と上記ペプチド部とが、リンカー部を介して結合していてもよく、リンカー部を介さずに直接結合していてもよい。上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘは、ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部と、リンカー部とを有していてもよい。
　＜ポリビニルアルコール誘導体骨格＞
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格は、ポリビニルアルコール誘導体に由来する骨格部分である。上記ポリビニルアルコール誘導体は、ポリビニルアルコールによって誘導される化合物である。マイクロキャリアと細胞との接着性をより一層高める観点からは、上記ポリビニルアルコール誘導体は、ポリビニルアセタール樹脂であることが好ましく、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格は、ポリビニルアセタール骨格であることが好ましい。すなわち、上記樹脂Ｘは、ポリビニルアセタール骨格と、上記ペプチド部とを有することが好ましい。上記ポリビニルアルコール誘導体及び上記ポリビニルアセタール樹脂は、それぞれ１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格は、側鎖にアセタール基と、水酸基と、アセチル基とを有することが好ましい。ただし、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格は、例えば、アセチル基を有していなくてもよい。例えば、ポリビニルアルコール誘導体骨格及びポリビニルアセタール骨格のアセチル基の全てが、上記リンカーと結合することによって、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格がアセチル基を有していなくてもよい。
　ポリビニルアセタール樹脂は、ポリビニルアルコールをアルデヒドによりアセタール化することによって合成することができる。
　ポリビニルアルコールのアセタール化に用いられる上記アルデヒドは、特に限定されない。上記アルデヒドとしては、例えば、炭素数が１～１０のアルデヒドが挙げられる。上記アルデヒドは、鎖状脂肪族基、環状脂肪族基又は芳香族基を有していてもよく、有していなくてもよい。上記アルデヒドは、鎖状アルデヒドであってもよく、環状アルデヒドであってもよい。上記アルデヒドは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　マイクロキャリアと細胞との接着性をより一層高める観点からは、上記アルデヒドは、ホルムアルデヒド、アセトアルデヒド、プロピオンアルデヒド、ブチルアルデヒド、又はペンタナールであることが好ましく、ブチルアルデヒドであることがより好ましい。したがって、上記ポリビニルアセタール樹脂は、ポリビニルブチラール樹脂であることがより好ましく、上記ポリビニルアセタール骨格は、ポリビニルブチラール骨格であることがより好ましく、上記樹脂Ｘは、ポリビニルブチラール骨格を有することがより好ましい。
　上記樹脂Ｘにおいて、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格のアセタール化度（ポリビニルブチラール樹脂の場合にはブチラール化度）は、好ましくは４０モル％以上、より好ましくは５０モル％以上、好ましくは９０モル％以下、より好ましくは８５モル％以下である。上記アセタール化度が上記下限以上であると、細胞の定着性をより高めることができ、細胞が効率よく増殖する。上記アセタール化度が上記上限以下であると、溶剤への溶解性を良好にすることができる。
　上記樹脂Ｘにおいて、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格の水酸基の含有率（水酸基量）は、好ましくは１５モル％以上、より好ましくは２０モル％以上、好ましくは４５モル％以下、より好ましくは３０モル％以下、更に好ましくは２５モル％以下である。
　上記樹脂Ｘにおいて、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格のアセチル化度（アセチル基量）は、好ましくは１モル％以上、より好ましくは２モル％以上、好ましくは５モル％以下、より好ましくは４モル％以下である。上記アセチル化度が上記下限以上及び上記上限以下であると、ポリビニルアセタール樹脂とリンカーとの反応効率を高めることができる。
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格及び上記ポリビニルアセタール骨格のアセタール化度、アセチル化度及び水酸基量は、１Ｈ－ＮＭＲ（核磁気共鳴スペクトル）により測定することができる。
　＜ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格＞
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格は、ポリ（メタ）アクリル酸エステルに由来する骨格部分である。上記ポリ（メタ）アクリル酸エステルは、（メタ）アクリル酸エステルを重合することにより得られる。上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格は、（メタ）アクリル酸エステルに由来する骨格を有する。上記ポリ（メタ）アクリル酸エステルは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記（メタ）アクリル酸エステルとしては、（メタ）アクリル酸アルキルエステル、（メタ）アクリル酸環状アルキルエステル、（メタ）アクリル酸アリールエステル、（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類、（メタ）アクリル酸ホスホリルコリン等が挙げられる。上記（メタ）アクリル酸エステルは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記（メタ）アクリル酸アルキルエステルとしては、メチル（メタ）アクリレート、エチル（メタ）アクリレート、ｎ－プロピル（メタ）アクリレート、イソプロピル（メタ）アクリレート、ｎ－ブチル（メタ）アクリレート、イソブチル（メタ）アクリレート、ｔ－ブチル（メタ）アクリレート、ｎ－オクチル（メタ）アクリレート、イソオクチル（メタ）アクリレート、２－エチルヘキシル（メタ）アクリレート、ノニル（メタ）アクリレート、イソノニル（メタ）アクリレート、デシル（メタ）アクリレート、イソデシル（メタ）アクリレート、ラウリル（メタ）アクリレート、ステアリル（メタ）アクリレート、及びイソテトラデシル（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸アルキルエステルは、炭素数１～３のアルコキシ基及びテトラヒドロフルフリル基等の置換基で置換されていてもよい。このような（メタ）アクリル酸アルキルエステルの例としては、メトキシエチルアクリレート、テトラヒドロフルフリルアクリレート等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸環状アルキルエステルとしては、シクロヘキシル（メタ）アクリレート、及びイソボルニル（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸アリールエステルとしては、フェニル（メタ）アクリレート、及びベンジル（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類としては、例えば、メトキシ－ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ－ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ－ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ－ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ－ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ－ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ－トリエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ－トリエチレングリコール（メタ）アクリレート、及びヒドロキシ－トリエチレングリコール（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸ホスホリルコリンとしては、２－（メタ）アクリロイルオキシエチルホスホリルコリン等が挙げられる。
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘは、下記式（Ａ１）又は下記式（Ａ２）で表される（メタ）アクリレート化合物（Ａ）に由来する構造単位を有することが好ましい。上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格は、下記式（Ａ１）又は下記式（Ａ２）で表される（メタ）アクリレート化合物（Ａ）に由来する構造単位を有することが好ましい。これにより、被覆層の疎水性を大きくすることができ、したがって、マイクロキャリアの吸水率をより一層小さくすることができる。そのため、細胞播種後の初期定着率のばらつきを小さくすることができ、また、培地中で細胞がマイクロキャリアから剥離しにくくなる。上記（メタ）アクリレート化合物（Ａ）は、下記式（Ａ１）で表される（メタ）アクリレート化合物を含んでいてもよく、下記式（Ａ２）で表される（メタ）アクリレート化合物を含んでいてもよく、下記式（Ａ１）で表される（メタ）アクリレート化合物と、下記式（Ａ２）で表される（メタ）アクリレート化合物との双方を含んでいてもよい。上記（メタ）アクリレート化合物（Ａ）が、下記式（Ａ１）で表される（メタ）アクリレート化合物と下記式（Ａ２）で表される（メタ）アクリレート化合物との双方を含む場合に、下記式（Ａ１）中のＲと下記式（Ａ２）中のＲとは、同一であってもよく、異なっていてもよい。上記（メタ）アクリレート化合物（Ａ）は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。また、下記式（Ａ１）で表される（メタ）アクリレート化合物及び下記式（Ａ２）で表される（メタ）アクリレート化合物はそれぞれ、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
　上記式（Ａ１）中、Ｒは、炭素数が２以上１８以下の炭化水素基を表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
　上記式（Ａ２）中、Ｒは、炭素数が２以上１８以下の炭化水素基を表す。
　上記式（Ａ１）中のＲ及び上記式（Ａ２）中のＲはそれぞれ、脂肪族炭化水素基であってもよく、芳香族炭化水素基であってもよい。上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘの溶解度を良好にする観点からは、上記式（Ａ１）中のＲ及び上記式（Ａ２）中のＲはそれぞれ、脂肪族炭化水素基であることが好ましい。上記脂肪族炭化水素基は、直鎖状であってもよく、分岐構造を有していてもよく、二重結合を有していてもよく、二重結合を有していなくてもよい。上記式（Ａ１）中のＲ及び上記式（Ａ２）中のＲはそれぞれ、アルキル基であってもよく、アルキレン基であってもよい。
　上記式（Ａ１）中のＲの炭素数及び上記式（Ａ２）中のＲの炭素数はそれぞれ、好ましくは４以上、より好ましくは６以上、更に好ましくは８以上、特に好ましくは１０以上、好ましくは１６以下、より好ましくは１４以下であり、最も好ましくは１２である。上記炭素数が上記下限以上であると、樹脂Ｘの疎水性をより一層大きくすることができ、したがって、マイクロキャリアの吸水率をより一層小さくすることができる。上記炭素数が上記上限以下であると、被覆層の材料を基材粒子の表面へ配置する際の塗工性を高めることができる。特に、上記炭素数が１２であると、マイクロキャリアの吸水率を更により一層小さくができ、かつ、塗工性を更により一層高めることができる。
　上記（メタ）アクリル酸アルキルエステルは、上記（メタ）アクリレート化合物（Ａ）であることが好ましい。
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘは、（メタ）アクリル酸エステル以外のモノマーに由来する骨格を有していてもよい。
　上記（メタ）アクリル酸エステル以外のモノマーとしては、（メタ）アクリルアミド類及びビニル化合物等が挙げられる。上記（メタ）アクリル酸エステル以外のモノマーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記（メタ）アクリルアミド類としては、（メタ）アクリルアミド、Ｎ－イソプロピル（メタ）アクリルアミド、Ｎ－ｔｅｒｔ－ブチル（メタ）アクリルアミド、Ｎ，Ｎ’－ジメチル（メタ）アクリルアミド、（３－（メタ）アクリルアミドプロピル）トリメチルアンモニウムクロリド、４－（メタ）アクリロイルモルホリン、３－（メタ）アクリロイル－２－オキサゾリジノン、Ｎ－［３－（ジメチルアミノ）プロピル］（メタ）アクリルアミド、Ｎ－（２－ヒドロキシエチル）（メタ）アクリルアミド、Ｎ－メチロール（メタ）アクリルアミド、及び６－（メタ）アクリルアミドヘキサン酸等が挙げられる。
　上記ビニル化合物としては、エチレン、アリルアミン、ビニルピロリドン、無水マレイン酸、マレイミド、イタコン酸、（メタ）アクリル酸、及びビニルアミン等が挙げられる。
　＜ペプチド部＞
　上記ペプチド部は、ペプチドに由来する構造部分である。上記ペプチド部は、アミノ酸配列を有する。上記ペプチド部を構成するペプチドは、オリゴペプチドであってもよく、ポリペプチドであってもよい。上記ペプチドは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記ペプチド部のアミノ酸残基の数は、好ましくは３個以上、より好ましくは４個以上、更に好ましくは５個以上、好ましくは１０個以下、より好ましくは８個以下、更に好ましくは６個以下である。上記アミノ酸残基の数が上記下限以上及び上記上限以下であると、播種後の細胞との接着性をより一層高めることができ、細胞の増殖率をより一層高めることができる。ただし、上記ペプチド部のアミノ酸残基の数は１０個を超えていてもよく、１５個を超えていてもよい。
　上記ペプチド部は、細胞接着性のアミノ酸配列を有することが好ましい。なお、細胞接着性のアミノ酸配列とは、ファージディスプレイ法、セファローズビーズ法、又はプレートコート法によって細胞接着活性が確認されているアミノ酸配列をいう。上記ファージディスプレイ法としては、例えば、「The Journal of Cell Biology, Volume 130, Number 5, September 1995 1189-1196」に記載の方法を用いることができる。上記セファローズビーズ法としては、例えば「蛋白質　核酸　酵素　Ｖｏｌ．４５　Ｎｏ．１５　（２０００）　２４７７」に記載の方法を用いることができる。上記プレートコート法としては、例えば「蛋白質　核酸　酵素　Ｖｏｌ．４５　Ｎｏ．１５　（２０００）　２４７７」に記載の方法を用いることができる。
　上記細胞接着性のアミノ酸配列としては、例えば、ＲＧＤ配列（Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ）、ＹＩＧＳＲ配列（Ｔｙｒ－Ｉｌｅ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ａｒｇ）、ＰＤＳＧＲ配列（Ｐｒｏ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ）、ＨＡＶ配列（Ｈｉｓ－Ａｌａ－Ｖａｌ）、ＡＤＴ配列（Ａｌａ－Ａｓｐ－Ｔｈｒ）、ＱＡＶ配列（Ｇｌｎ－Ａｌａ－Ｖａｌ）、ＬＤＶ配列（Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｖａｌ）、ＩＤＳ配列（Ｉｌｅ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ）、ＲＥＤＶ配列（Ａｒｇ－Ｇｌｕ－Ａｓｐ－Ｖａｌ）、ＩＤＡＰＳ配列（Ｉｌｅ－Ａｓｐ－Ａｌａ－Ｐｒｏ－Ｓｅｒ）、ＫＱＡＧＤＶ配列（Ｌｙｓ－Ｇｌｎ－Ａｌａ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ）、及びＴＤＥ配列（Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｇｌｕ）等が挙げられる。また、上記細胞接着性のアミノ酸配列としては、「病態生理、第９巻　第７号、５２７～５３５頁、１９９０年」、及び「大阪府立母子医療センター雑誌、第８巻　第１号、５８～６６頁、１９９２年」に記載されている配列等も挙げられる。上記ペプチド部は、上記細胞接着性のアミノ酸配列を１種のみ有していてもよく、２種以上有してもよい。
　上記細胞接着性のアミノ酸配列は、上述した細胞接着性のアミノ酸配列の内の少なくともいずれかを有することが好ましく、ＲＧＤ配列、ＹＩＧＳＲ配列、又はＰＤＳＧＲ配列を少なくとも有することがより好ましく、下記式（１）で表されるＲＧＤ配列を少なくとも有することが更に好ましい。この場合には、播種後の細胞との接着性をより一層高め、細胞の増殖率をより一層高めることができる。
　Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｘ　　　・・・式（１）
　上記式（１）中、Ｘは、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｐｈｅ、Ｍｅｔ、Ｐｒｏ、又はＡｓｎを表す。
　上記ペプチド部は、直鎖状であってもよく、環状ペプチド骨格を有していてもよい。細胞増殖性をより一層高める観点からは、上記ペプチド部は、環状ペプチド骨格を有することが好ましい。上記環状ペプチド骨格とは、複数個のアミノ酸より構成された環状骨格である。本発明の効果を一層効果的に発揮させる観点からは、上記環状ペプチド骨格は、４個以上のアミノ酸により構成されることが好ましく、５個以上のアミノ酸により構成されることがより好ましく、１０個以下のアミノ酸により構成されることが好ましい。
　上記樹脂Ｘにおいて、上記ペプチド部の含有率は、好ましくは０．１モル％以上、より好ましくは１モル％以上、更に好ましくは５モル％以上、特に好ましくは１０モル％以上、好ましくは６０モル％以下、より好ましくは５０モル％以下、更に好ましくは３５モル％以下、特に好ましくは２５モル％以下である。上記ペプチド部の含有率が上記下限以上であると、播種後の細胞との接着性をより一層高めることができ、細胞の増殖率をより一層高めることができる。また、上記ペプチド部の含有率が上記上限以下であると、製造コストを抑えることができる。なお、上記ペプチド部の含有率（モル％）は、樹脂Ｘを構成する各構造単位の物質量の総和に対する上記ペプチド部の物質量である。
　上記ペプチド部の含有率は、例えばＮＭＲ、ＦＴ－ＩＲ又はＬＣ－ＭＳにより測定することができる。
　＜リンカー部＞
　上記リンカー部は、リンカーに由来する構造部分である。上記リンカー部は、通常、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格又は上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と上記ペプチド部との間に位置する。上記ポリビニルアルコール誘導体骨格又は上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と上記ペプチド部とが、上記リンカー部を介して結合している。上記リンカー部は、リンカー（架橋剤）によって形成される。上記リンカーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記リンカーは、上記ペプチドと結合可能な官能基を有する化合物であることが好ましく、上記ペプチドのカルボキシル基又はアミノ基と縮合可能な官能基を有する化合物であることがより好ましい。
　上記ペプチドのカルボキシル基又はアミノ基と縮合可能な官能基としては、カルボキシル基、チオール基、アミノ基、水酸基及びシアノ基等が挙げられる。
　ペプチドと良好に反応させる観点からは、上記リンカーは、カルボキシル基又はアミノ基を有する化合物であることが好ましく、カルボキシル基を有する化合物であることがより好ましい。
　ポリビニルアルコール誘導体骨格を有する樹脂Ｘを得る場合、上記カルボキシル基を有するリンカーとしては、（メタ）アクリル酸及びカルボキシル基含有アクリルアミド等が挙げられる。上記カルボキシル基を有するリンカーとして重合性不飽和基を有するカルボン酸（カルボン酸モノマー）を用いることにより、リンカーの導入時にグラフト重合により該カルボン酸モノマーを重合させることができるため、ペプチドと反応させることができるカルボキシル基の個数を増やすことができる。
　ポリビニルアルコール誘導体とペプチドとを良好に結合させる観点からは、上記リンカーは、（メタ）アクリル酸であることが好ましく、アクリル酸であることがより好ましい。
　ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘを得る場合、上記リンカーは、（メタ）アクリル酸エステルと結合可能な官能基を有することが好ましい。上記（メタ）アクリル酸エステルと結合可能な官能基としては、ビニル基、（メタ）アクリロイル基及びアリル基等が挙げられる。上記リンカーは、上記（メタ）アクリル酸エステルと結合可能な官能基として、（メタ）アクリロイル基を有することがより好ましく、カルボキシル基又はアミノ基を有し、かつ（メタ）アクリロイル基を有する化合物であることが好ましい。
　ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘを得る場合の上記リンカーとしては、（メタ）アクリル酸、イタコン酸、及びアクリルアミド等が挙げられる。
　ポリ（メタ）アクリル酸エステルとペプチドとを良好に結合させる観点からは、上記リンカーは、（メタ）アクリル酸又はイタコン酸であることが好ましく、（メタ）アクリル酸であることがより好ましい。
　＜被覆層の他の詳細＞
　上記樹脂Ｘの重量平均分子量は、好ましくは１万以上、より好ましくは５万以上、好ましくは１２０万以下、より好ましくは６０万以下である。上記重量平均分子量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。上記重量平均分子量が上記上限以下である場合、細胞培養に際しての細胞の伸展性をより一層効果的に高めることができる。
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格を有する樹脂Ｘの重量平均分子量は、好ましくは１万以上、より好ましくは５万以上、好ましくは１２０万以下、より好ましくは６０万以下である。上記重量平均分子量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。上記重量平均分子量が上記上限以下である場合、細胞培養に際しての細胞の伸展性をより一層効果的に高めることができる。
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘの重量平均分子量は、好ましくは１万以上、より好ましくは５万以上、好ましくは１２０万以下、より好ましくは６０万以下である。上記重量平均分子量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。上記重量平均分子量が上記上限以下である場合、細胞培養に際しての細胞の伸展性をより一層効果的に高めることができる。
　なお、上記樹脂Ｘの重量平均分子量は、例えば以下の方法にて測定することができる。上記樹脂Ｘをテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）に溶解し、樹脂Ｘの０．２重量％溶液を調製する。次に、ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）測定装置（ＡＰＣシステム、Ｗａｔｅｒｓ社製）を用いて、以下の測定条件により評価する。
　カラム：ＨＳＰｇｅｌ　ＨＲ　ＭＢ－Ｍ　６．０×１５０ｍｍ
　流量：０．５ｍＬ／ｍｉｎ
　カラム温度：４０℃
　注入量：１０μＬ
　検出器：ＲＩ、ＰＤＡ
　標準試料：ポリスチレン
　上記被覆層は、上記樹脂Ｘのみを含んでいてもよい。上記被覆層は、上記樹脂Ｘ以外の成分を含んでいてもよい。上記樹脂Ｘ以外の成分としては、樹脂Ｘ以外の樹脂等が挙げられる。上記樹脂Ｘ以外の成分としては、ポリビニルアセタール樹脂等のポリビニルアルコール誘導体、ポリ（メタ）アクリル酸エステル、ポリオレフィン樹脂、ポリエーテル樹脂、ポリビニルアルコール樹脂、ポリエステル、エポキシ樹脂、ポリアミド樹脂、ポリイミド樹脂、ポリウレタン樹脂、ポリカーボネート樹脂、セルロース、及びポリペプチド等が挙げられる。上記樹脂Ｘ以外の成分は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記被覆層は、樹脂Ｘを含む層のみを有していてもよい。上記被覆層は、樹脂Ｘを含まない層と、樹脂Ｘを含む層とを有していてもよい。上記被覆層が樹脂Ｘを含まない層と、樹脂Ｘを含む層とを有する場合に、被覆層において、上記樹脂Ｘを含まない層が基材粒子側に位置し、上記樹脂Ｘを含む層が上記樹脂Ｘを含まない層の外側に位置することが好ましい。この場合には、マイクロキャリアと細胞との接着性をより一層高めることができる。
　上記樹脂Ｘは、上記マイクロキャリアの外表面に少なくとも存在することが好ましい。上記マイクロキャリアの最外層は、上記樹脂Ｘを含む層であることが好ましい。この場合には、マイクロキャリアと細胞との接着性をより一層高めることができる。
　上記樹脂Ｘを含む層１００重量％中、上記樹脂Ｘの含有量は、好ましくは９０重量％以上、より好ましくは９５重量％以上、更に好ましくは９７．５重量％以上、特に好ましくは９９重量％以上、最も好ましくは１００重量％（全量）である。上記樹脂Ｘの含有量が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。
　上記基材粒子の全表面積１００％中、上記被覆層により覆われている表面積（被覆率）は、好ましくは５０％以上、より好ましくは７０％以上、より一層好ましくは９０％以上、更に好ましくは９５％以上、特に好ましくは９９％以上、最も好ましくは１００％である。上記被覆率が上記下限以上であると、マイクロキャリアと細胞との接着性をより一層高めることができ、また、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。上記被覆率は、１００％以下であってもよく、１００％未満であってもよく、９９％以下であってもよい。
　上記被覆率は、マイクロキャリアを電子顕微鏡又は光学顕微鏡にて観察し、被覆層により覆われている表面積の、基材粒子の投影面積に対する百分率を算出することにより求められる。
　上記被覆層の厚みは、好ましくは１０ｎｍ以上、より好ましくは５０ｎｍ以上、好ましくは１μｍ以下、より好ましくは５００ｎｍ以下である。上記被覆層の厚みが上記下限以上及び上記上限以下であると、マイクロキャリアと細胞との接着性をより一層高めることができる。また、上記被覆層の厚みが上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
　上記被覆層の厚みは、例えば走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）を用いて、マイクロキャリアの断面を観察することにより測定できる。上記被覆層の厚みについては、任意の被覆層の厚み５箇所の平均値を１個のマイクロキャリアの被覆層の厚みとして算出することが好ましく、被覆層全体の厚みの平均値を１個のマイクロキャリアの被覆層の厚みとして算出することがより好ましい。上記被覆層の厚みは、任意のマイクロキャリア５０個について、各マイクロキャリアの被覆層の厚みの平均値を算出することにより求めることが好ましい。
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格を有する樹脂Ｘを得る方法としては、例えば、以下の方法が挙げられる。
　ポリビニルアルコール誘導体（例えばポリビニルアセタール樹脂）と、リンカーとを反応させて、ポリビニルアセタール樹脂とリンカーとが結合した反応物を得る。得られた反応物と、ペプチドとを反応させて、ポリビニルアルコール誘導体骨格（ポリビニルアセタール骨格）を有する樹脂Ｘを得る。
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘを得る方法としては、例えば、以下の方法が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸エステルを含むモノマーを重合させたアクリル樹脂を得る。得られたアクリル樹脂と、ペプチドと、必要に応じて用いられるリンカーとを反応させて、ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘを得る。
　上記ポリビニルアルコール誘導体骨格と上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格とを有する樹脂Ｘを得る方法としては、例えば、以下の方法が挙げられる。
　以下の（ｉ）、（ｉｉ）又は（ｉｉｉ）の方法により、ポリビニルアルコール誘導体骨格とポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格とを有する樹脂を得る。（ｉ）アクリル酸エステルが共重合されたポリビニルアルコールを用いてポリビニルアセタール樹脂を合成する。（ｉｉ）ポリビニルアルコールと、アクリル酸エステルが共重合されたポリビニルアルコールとを用いてポリビニルアセタール樹脂を合成する。（ｉｉｉ）ポリビニルアセタール樹脂にアクリル酸エステルをグラフト共重合させる。上記（ｉ）、（ｉｉ）又は（ｉｉｉ）の方法により得られた樹脂と、ペプチドと、必要に応じて用いられるリンカーとを反応させて、上記ポリビニルアルコール誘導体骨格と上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格とを有する樹脂Ｘを得る。
　上記基材粒子の表面に上記被覆層を配置して、マイクロキャリアを得る方法としては、例えば、以下の方法（１）及び方法（２）等が挙げられる。
　方法（１）：上述の方法により得られた樹脂Ｘを溶媒に溶解し、樹脂Ｘ含有液を得る。上記樹脂Ｘ含有液を基材粒子に噴霧したり、上記樹脂Ｘ含有液に含浸させた基材粒子を分離したりして、基材粒子の外表面に、樹脂Ｘを含む層（被覆層）を備えるマイクロキャリアを作製することができる。
　方法（２）：ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有さない樹脂（ペプチド結合前の樹脂Ｘ）を用意する。この樹脂を溶媒に溶解し、樹脂含有液を得る。上記樹脂含有液を基材粒子に噴霧したり、上記樹脂含有液に含浸させた基材粒子を分離したりして、基材粒子の外表面上に、樹脂Ｘを含まない層（ポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル酸エステルを含む層）が配置された粒子を得る。得られた粒子に対して、上述した方法により、樹脂Ｘを含まない層に含まれるポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル酸エステルと、ペプチドと、必要に応じて用いられるリンカーとを反応させる。このようにして、基材粒子の外表面に、被覆層として、樹脂Ｘを含まない層と樹脂Ｘを含む層とを備えるマイクロキャリアを作製することができる。
　（マイクロキャリアの他の詳細）
　上記マイクロキャリアは、細胞を培養するために用いられる。
　上記細胞としては、ヒト、マウス、ラット、ブタ、ウシ及びサル等の動物細胞が挙げられる。また、上記細胞としては、体細胞等が挙げられ、例えば、幹細胞、前駆細胞及び成熟細胞等が挙げられる。上記体細胞は、癌細胞であってもよい。
　上記幹細胞としては、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）、ｉＰＳ細胞、ＥＳ細胞、Ｍｕｓｅ細胞、胚性がん細胞、胚性生殖幹細胞、及びｍＧＳ細胞等が挙げられる。
　上記成熟細胞としては、神経細胞、心筋細胞、網膜細胞及び肝細胞等が挙げられる。
　上記マイクロキャリアは、細胞の三次元培養に用いられることが好ましい。三次元培養とは、プレートなどの平面上で細胞を培養する二次元培養に対して、縦方向にも厚みを持たせて細胞を培養する培養方法である。
　上記マイクロキャリアは、無血清培地培養に用いられることが好ましい。上記マイクロキャリアは上記樹脂Ｘを含むので、フィーダー細胞や接着タンパク質を含まない無血清培地培養であっても、細胞の接着性を高めることができ、特に、細胞播種後の初期定着率をより一層高めることができる。また、上記マイクロキャリアは上記樹脂Ｘを含むので、無血清培地培養であっても、本発明の効果を発揮することができる。
　上記マイクロキャリアは、動物由来の原料を実質的に含まないことが好ましい。動物由来の原料を含まないことにより、安全性が高く、かつ、製造時に品質のばらつきが少ないマイクロキャリアを提供することができる。なお、「動物由来の原料を実質的に含まない」とは、マイクロキャリア中における動物由来の原料が、３重量％以下であることを意味する。上記マイクロキャリアでは、マイクロキャリア中における動物由来の原料が、１重量％以下であることが好ましく、０重量％であることが最も好ましい。すなわち、上記マイクロキャリアは、動物由来の原料を全く含まないことが最も好ましい。
　（細胞の培養方法）
　上記マイクロキャリアを用いて細胞を培養することができる。本発明に係る細胞の培養方法は、上述したマイクロキャリアを用いる細胞の培養方法である。上記細胞としては、上述した細胞が挙げられる。
　上記細胞の培養方法は、上記マイクロキャリアに細胞を接着させる工程を備えることが好ましい。上記細胞は、細胞塊であってもよい。上記細胞塊は、コンフルエントになった培養容器に細胞剥離剤を添加し、ピペッティングにより均一に破砕処理することで得ることができる。細胞剥離剤としては、特に限定されないが、エチレンジアミン／リン酸緩衝溶液が好ましい。細胞塊の大きさは５０μｍ～２００μｍであることが好ましい。
　以下に実施例及び比較例を掲げて本発明を更に詳しく説明する。本発明はこれら実施例のみに限定されない。
　なお、得られた樹脂における構造単位の含有率は、合成樹脂をＤＭＳＯ－ｄ６（ジメチルスルホキサイド）に溶解した後、１Ｈ－ＮＭＲ（核磁気共鳴スペクトル）により測定した。
　（実施例１）
　（１）基材粒子Ａの作製
　ジビニルベンゼン（純度５７％）８００重量部と、スチレン２００重量部とを混合し、混合液を得た。得られた混合液に過酸化ベンゾイル２０重量部を加えて、均一に溶解するまで撹拌し、モノマー混合液を得た。分子量約１７００のポリビニルアルコールを純水に溶解させた２重量％水溶液４０００重量部を、反応釜に入れた。次いで、反応釜に、得られたモノマー混合液を入れ、４時間撹拌することで、モノマーの液滴が所定の粒径になるように、粒径を調整した。次いで、８５℃の窒素雰囲気下で９時間反応を行い、モノマー液滴の重合反応を行って、粒子を得た。得られた粒子を熱水、メタノール及びアセトンのそれぞれにて各数回洗浄した後、分級操作を行って、平均粒子径６００μｍ、粒子径のＣＶ値１％の基材粒子Ａを得た。基材粒子Ａは、ジビニルベンゼン共重合体（表ではＤＶＢと記載）の樹脂粒子である。
　（２）ポリビニルアセタール樹脂の作製
　撹拌装置を備えた反応機に、イオン交換水２７００ｍＬ、平均重合度１７００、鹸化度９９モル％のポリビニルアルコールを３００重量部投入し、撹拌しながら加熱溶解し、溶液を得た。得られた溶液に、触媒として、塩酸濃度が０．２重量％となるように３５重量％塩酸を添加した。次いで、温度を１５℃に調整し、撹拌しながらｎ－ブチルアルデヒド２２重量部を添加した。次いで、ｎ－ブチルアルデヒド１４８重量部を添加し、白色粒子状のポリビニルアセタール樹脂（ポリビニルブチラール樹脂）を析出させた。析出してから１５分後に、塩酸濃度が１．８重量％になるように３５重量％塩酸を添加した後、５０℃に加熱し、５０℃で２時間保持した。次いで、溶液を冷却し、中和した後、ポリビニルブチラール樹脂を水洗し、乾燥させて、ポリビニルアセタール樹脂（ポリビニルブチラール樹脂、平均重合度１７００、アセタール化度（ブチラール化度）７０モル％、水酸基量２７モル％、アセチル化度３モル％）を得た。
　（３）リンカー部の形成
　得られたポリビニルアセタール樹脂９９重量部と、アクリル酸（リンカー）１重量部とをＴＨＦ（テトラヒドロフラン）３００重量部に溶解し、光ラジカル重合開始剤の存在下で、紫外線照射下で２０分間反応させ、ポリビニルアセタール樹脂とアクリル酸とをグラフト共重合させることにより、リンカー部を形成した。
　（４）リンカー部を形成したポリビニルアセタール樹脂被覆粒子の作製
　リンカー部を形成したポリビニルアセタール樹脂１重量部をブタノール１９重量部に溶解させた。得られた溶液に基材粒子Ａを１重量部加えて撹拌後、濾過して純水にて洗浄し、６０℃で５時間真空乾燥することで、リンカー部を形成したポリビニルアセタール樹脂被覆粒子を得た。
　（５）マイクロキャリアの作製
　Ｇｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒのアミノ酸配列を有する直鎖状のペプチド（アミノ酸残基数５個）を用意した。このペプチド１重量部と、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（縮合剤）１重量部とを、カルシウム及びマグネシウムの双方を含まないリン酸緩衝生理食塩水に該ペプチドの終濃度が１ｍＭとなるよう添加し、ペプチド含有液を作製した。得られたペプチド含有液２０重量部に、リンカー部を形成したポリビニルアセタール樹脂被覆粒子を１重量部加えることでリンカー部のカルボキシル基と、ペプチドのＧｌｙのアミノ基とを脱水縮合した。得られた懸濁液を濾過して純水にて洗浄し、６０℃で５時間真空乾燥することでマイクロキャリアを得た。なお、表中では、上述の方法により得られたポリビニルアルコール誘導体骨格（ポリビニルアセタール骨格）を有する樹脂Ｘを、樹脂Ｘ１と記載した。樹脂Ｘ１は、ペプチド部として、Ｇｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒのアミノ酸配列を有する。
　（実施例２）
　（１）基材粒子Ｂの作製
　実施例１と同様にして重合反応を行い、粒子を得た。得られた粒子に対して分級操作を行うことにより、平均粒子径３５０μｍ、粒子径のＣＶ値１％の基材粒子Ｂを得た。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｂを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（実施例３）
　（１）基材粒子Ｃの作製
　実施例１と同様にして重合反応を行い、粒子を得た。得られた粒子に対して分級操作を行うことにより、平均粒子径９００μｍ、粒子径のＣＶ値１％の基材粒子Ｃを得た。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｃを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（実施例４）
　（１）基材粒子Ｄの作製
　実施例１と同様にして重合反応を行い、粒子を得た。得られた粒子に対して分級操作を行うことより、平均粒子径６００μｍ、粒子径のＣＶ値８％の基材粒子Ｄを得た。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｄを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（実施例５）
　（１）基材粒子
　基材粒子として、基材粒子Ａを用いた。
　（２）アクリル樹脂の作製
　アクリル酸ブチル２９重量部と、アクリル酸２－ヒドロキシエチル３重量部と、アクリル酸１重量部とをテトラヒドロフラン３０重量部に溶解させてアクリルモノマー溶液を得た。得られたアクリルモノマー溶液にＩｒｇａｃｕｒｅ１８４（ＢＡＳＦ社製）１重量部を溶解させ、得られた液をＰＥＴフィルム上に塗布した。塗布物を２５℃にて、ＵＶコンベア装置（アイグラフィックス社製「ＥＣＳ３０１Ｇ１」）を用い、波長３６５ｎｍの光を積算光量２０００ｍＪ／ｃｍ２で照射することでアクリル樹脂溶液を得た。得られたアクリル樹脂溶液を８０℃で３時間真空乾燥し、アクリル樹脂を得た。なお、得られたアクリル樹脂はリンカー部を有する。得られたアクリル樹脂の重量平均分子量は約１０万であった。
　（３）アクリル樹脂被覆粒子の作製
　得られたアクリル樹脂１重量部をブタノール１９重量部に溶解させた。この溶液に基材粒子Ａを１重量部加えて撹拌後、濾過して純水にて洗浄し、６０℃で５時間真空乾燥することでアクリル樹脂被覆粒子を得た。
　（４）マイクロキャリアの作製
　得られたアクリル樹脂被覆粒子を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを得た。なお、表中では、上述の方法により得られたポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘを、樹脂Ｘ２と記載した。樹脂Ｘ２は、ペプチド部として、Ｇｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒのアミノ酸配列を有する。
　（実施例６）
　（１）基材粒子Ｅの作製
　実施例１と同様にして重合反応を行い、粒子を得た。得られた粒子に対して分級操作を行うことにより、平均粒子径１５００μｍ、粒子径のＣＶ値１％の基材粒子Ｅを得た。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｅを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（実施例７）
　基材粒子として、基材粒子Ａを用いた。
　（２）アクリル樹脂の作製
　アクリル酸ドデシル１０重量部と、アクリル酸２．７重量部とをテトラヒドロフラン２７重量部に溶解させてアクリルモノマー溶液を得た。得られたアクリルモノマー溶液にＩｒｇａｃｕｒｅ１８４（ＢＡＳＦ社製）０．０５７５重量部を溶解させ、得られた液をＰＥＴフィルム上に塗布した。塗布物を２５℃にて、ＵＶコンベア装置（アイグラフィックス社製「ＥＣＳ３０１Ｇ１」）を用い、波長３６５ｎｍの光を積算光量２０００ｍＪ／ｃｍ２で照射することで（メタ）アクリル共重合体溶液を得た。得られた（メタ）アクリル共重合体溶液を８０℃で３時間真空乾燥し、リンカー部を有するアクリル樹脂を得た。
　（３）アクリル樹脂被覆粒子の作製
　得られたアクリル樹脂１重量部をブタノール１９重量部に溶解させた。この溶液に基材粒子１重量部を加えて撹拌後、濾過して純水にて洗浄し、６０℃で５時間真空乾燥することでアクリル樹脂被覆粒子を得た。
　（４）マイクロキャリアの作製
　得られたアクリル樹脂被覆粒子を用いた。また、ペプチドとしてＡｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｐｈｅ－Ｌｙｓのアミノ酸配列を有する環状のペプチド（アミノ酸残基数５個、ＡｒｇとＬｙｓとが結合することにより環状骨格を形成、ＰｈｅはＤ体）を用意した。このペプチドを用いて、アクリル樹脂のアクリル酸に由来する構造単位におけるカルボキシル基と、ペプチドのＬｙｓのアミノ基とを脱水縮合させたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを得た。なお、表中では、上述の方法により得られたポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂Ｘを、樹脂Ｘ３と記載した。樹脂Ｘ３は、ペプチド部として、Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｐｈｅ－Ｌｙｓのアミノ酸配列（環状ペプチド骨格）を有する。
　（実施例８）
　（１）基材粒子Ｆの作製
　ミクロパールＧＳ－Ｌ３００（積水化学工業社製、平均粒子径３００μｍ、粒子径のＣＶ値７％、多官能アクリル樹脂粒子）を用意した。この粒子に対して分級操作を行うことにより、平均粒子径３００μｍ、粒子径のＣＶ値１％の基材粒子Ｆを得た。基材粒子Ｆは、アクリル樹脂（表ではＡＣＲと記載）の樹脂粒子である。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｆを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（比較例１）
　（１）基材粒子Ｇの作製
　実施例１と同様にして重合反応を行い、粒子を得た。得られた粒子に対して分級操作を行うことにより、平均粒子径６００μｍ、粒子径のＣＶ値１５％の基材粒子Ｇを得た。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｇを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（比較例２）
　（１）基材粒子Ｈの作製
　実施例１と同様にして重合反応を行い、粒子を得た。得られた粒子に対して分級操作を行うことにより、平均粒子径１００μｍ、粒子径のＣＶ値１％の基材粒子Ｈを得た。
　（２）マイクロキャリアの作製
　得られた基材粒子Ｈを用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロキャリアを作製した。
　（評価）
　（１）マイクロキャリアの平均粒子径及び粒子径の変動係数（ＣＶ値）
　得られたマイクロキャリアを走査型電子顕微鏡にて観察した。任意の５０個のマイクロキャリアの円相当径での平均粒子径及び粒子径の変動係数（ＣＶ値）を算出した。
　（２）被覆層の厚み
　得られたマイクロキャリアの断面を走査型電子顕微鏡にて観察した。任意の５０個のマイクロキャリアのそれぞれについて被覆層の厚みを測定し、その平均値をマイクロキャリアの被覆層の厚みとした。
　（３）マイクロキャリアの比重
　得られたマイクロキャリアの比重を、乾燥状態及びアルゴンガス雰囲気下で真比重計（島津製作所社製「アキュピックＩＩ」）を用いて測定した。
　（４）マイクロキャリアの吸水率
　得られたマイクロキャリアを１００℃のオーブンで８時間乾燥させた。このマイクロキャリア１００．０ｍｇを秤量し、温度３７℃及び相対湿度９５％ＲＨの環境下で２４時間放置した。放置後のマイクロキャリアの重量を測定し、下記式によりマイクロキャリアの吸水率を算出した。
　吸水率（重量％）＝（Ｗ２－Ｗ１）／Ｗ１×１００
　Ｗ１：放置前のマイクロキャリアの重量（ｍｇ）
　Ｗ２：放置後のマイクロキャリアの重量（ｍｇ）
　（５）細胞の培養評価
　１２ウェルプレート（コーニング社製、平底の処理無し）の１ウェル内に、得られたマイクロキャリア８０ｍｇを秤量し、培養プレートを得た。
　以下の液体培地及びＲＯＣＫ（Ｒｈｏ結合キナーゼ）特異的阻害剤を用意した。
　ＴｅＳＲ　Ｅ８培地（ＳＴＥＭ　ＣＥＬＬ社製）
　ＲＯＣＫ－Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（Ｙ２７６３２）
　φ３５ｍｍディッシュに、コンフルエント状態になったｈ－ｉＰＳ細胞２５３Ｇ１と、０．５ｍＭエチレンジアミン四酢酸／リン酸緩衝溶液１ｍＬとを加え、室温で５分静置した。エチレンジアミン四酢酸／リン酸緩衝溶液を除去した後、液体培地１ｍＬでピペッティングすることにより細胞懸濁液を得た。１ｍＬの液体培地を入れた培養プレートに得られた細胞懸濁液を細胞数１．０×１０４ｃｅｌｌｓ播種した。
　５日間培養後のマイクロキャリアを位相差顕微鏡で撮影した。
　細胞接着が見られた任意の２０個のマイクロキャリアにおいて、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着を以下の基準で判定した。
　＜マイクロキャリア間の接着の判定基準＞
　ＡＡ：マイクロキャリア２０個中、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着が観察されるマイクロキャリアの個数が５個未満である
　Ａ：マイクロキャリア２０個中、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着が観察されるマイクロキャリアの個数が５個以上、８個未満である
　Ｂ：マイクロキャリア２０個中、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着が観察されるマイクロキャリアの個数が８個以上、１０個未満である
　Ｃ：マイクロキャリア２０個中、細胞塊によるマイクロキャリア間の接着が観察されるマイクロキャリアの個数が１０個以上である
　細胞接着が見られた任意の２０個のマイクロキャリアにおいて、マイクロキャリアへ接着した細胞の均一被覆性を以下の基準で判定した。
　＜細胞の均一被覆性の判定基準＞
　ＡＡ：マイクロキャリア２０個中、マイクロキャリアの表面の９割以上が細胞塊で被覆されているマイクロキャリアの個数が１０個以上である
　Ａ：上記「ＡＡ」に該当せず、かつ、マイクロキャリア２０個中、マイクロキャリアの表面の７割以上、９割未満が細胞塊で被覆されているマイクロキャリアの個数が１０個以上である
　Ｂ：上記「ＡＡ」及び「Ａ」に該当せず、かつ、マイクロキャリア２０個中、マイクロキャリア表面の５割以上、７割未満が細胞塊で被覆されているマイクロキャリアの個数が１０個以上である
　Ｃ：上記「ＡＡ」、「Ａ」及び「Ｂ」に該当せず、かつ、マイクロキャリア２０個中、マイクロキャリア表面の５割未満が細胞塊で被覆されているマイクロキャリアの個数が１０個以上である
　詳細及び結果を下記の表１，２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　１…細胞培養用マイクロキャリア
　２…基材粒子
　３…被覆層

Claims (10)

  1. 　基材粒子と、
    　前記基材粒子の外表面を被覆する被覆層とを備え、
    　前記被覆層が、ポリビニルアルコール誘導体骨格又はポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格と、ペプチド部とを有する樹脂を含み、
    　平均粒子径が３００μｍ以上であり、
    　粒子径のＣＶ値が１０％以下である、細胞培養用マイクロキャリア。
  2. 　吸水率が１０重量％以下である、請求項１に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  3. 　平均粒子径が１０００μｍ以下である、請求項１又は２に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  4. 　前記ポリビニルアルコール誘導体骨格が、ポリビニルアセタール骨格である、請求項１～３のいずれか１項に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  5. 　比重が１ｇ／ｃｍ３以上１．２ｇ／ｃｍ３以下である、請求項１～４のいずれか１項に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  6. 　前記基材粒子が、樹脂粒子である、請求項１～５のいずれか１項に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  7. 　前記基材粒子が、エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体を含む、請求項１～６のいずれか１項に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  8. 　前記エチレン性不飽和基を有するモノマーの重合体が、アクリル樹脂、ジビニルベンゼン重合体、又はジビニルベンゼン共重合体である、請求項７に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  9. 　前記ペプチド部が、細胞接着性のアミノ酸配列を有する、請求項１～８のいずれか１項に記載の細胞培養用マイクロキャリア。
  10. 　請求項１～９のいずれか１項に記載の細胞培養用マイクロキャリアに細胞を接着させる工程を備える、細胞の培養方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023127780A1 (ja) * 2021-12-27 2023-07-06 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材料

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6410979A (en) * 1987-07-03 1989-01-13 Mitsubishi Chem Ind Microcarrier for cultivating cell
JPH0739376A (ja) * 1993-08-04 1995-02-10 Kansai Paint Co Ltd 微生物固定化用担体
JP2012527901A (ja) * 2009-05-28 2012-11-12 コーニング インコーポレイテッド 細胞培養用の合成マイクロキャリア
WO2021024943A1 (ja) * 2019-08-02 2021-02-11 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材及び細胞培養用容器

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0531562A1 (de) * 1991-09-11 1993-03-17 Doerr, Hans-Wilhelm, Prof. Dr. med. Kultivierung von Säugetierzellen
US9296988B2 (en) * 2009-06-19 2016-03-29 The Regents Of The University Of California Three-dimensional cell adhesion matrix
EP2459701A1 (en) * 2009-07-28 2012-06-06 Corning Inc. Synthetic microcarriers for culturing cells
US20110207216A1 (en) * 2010-02-25 2011-08-25 Arthur Winston Martin Synthetic Peptide (Meth) Acrylate Microcarriers
US20120052579A1 (en) * 2010-08-27 2012-03-01 Simon Kelly Shannon Peptide-modified microcarriers for cell culture
KR101611806B1 (ko) * 2013-09-26 2016-04-11 세키스이가가쿠 고교가부시키가이샤 열팽창성 마이크로 캡슐
WO2019131978A1 (ja) * 2017-12-27 2019-07-04 積水化学工業株式会社 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
CN115926568B (zh) * 2019-05-15 2025-05-09 积水化学工业株式会社 由细胞培养用支架材料形成的树脂膜、细胞培养用载体和细胞培养用容器
IL294641B2 (en) * 2019-10-31 2024-11-01 Evonik Operations Gmbh A process for preparing nanoparticles or microparticles containing a carrier polymer and one or more biologically active components
JPWO2022050418A1 (ja) * 2020-09-07 2022-03-10
JP7542909B2 (ja) * 2020-09-15 2024-09-02 エルジー・ケム・リミテッド 細胞培養用マイクロキャリア、その製造方法およびこれを用いた細胞培養組成物
US20230034857A1 (en) * 2020-09-15 2023-02-02 Lg Chem, Ltd. Microcarrier for cell culture and method for preparing the same
JP7813732B2 (ja) * 2021-02-03 2026-02-13 積水化学工業株式会社 細胞培養用マイクロキャリア及び細胞の培養方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6410979A (en) * 1987-07-03 1989-01-13 Mitsubishi Chem Ind Microcarrier for cultivating cell
JPH0739376A (ja) * 1993-08-04 1995-02-10 Kansai Paint Co Ltd 微生物固定化用担体
JP2012527901A (ja) * 2009-05-28 2012-11-12 コーニング インコーポレイテッド 細胞培養用の合成マイクロキャリア
WO2021024943A1 (ja) * 2019-08-02 2021-02-11 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材及び細胞培養用容器

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023127780A1 (ja) * 2021-12-27 2023-07-06 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材料

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