ES2387666B2

ES2387666B2 - Procedimiento para la obtención a gran escala de inóculo miceliar de basidiomicetos mejorado

Info

Publication number: ES2387666B2
Application number: ES201231240A
Authority: ES
Inventors: Mª de la Consolación JIMÉNEZ AGUILAR
Original assignee: Universidad Politecnica de Madrid
Current assignee: Universidad Politecnica de Madrid
Priority date: 2012-07-31
Filing date: 2012-07-31
Publication date: 2013-01-24
Anticipated expiration: 2032-07-31
Also published as: WO2014020215A1; ES2387666A1

Abstract

Adición a la patente de invención P200930246, que describe la aplicación del procedimiento patentado a la producción de Ascomicetos. La producción a gran escala de Ascomicetos resulta de gran interés comercial, y en particular de importantes especies pertenecientes a los géneros Tuber, Terfezia o Morchella, como son, entre otras, Tuber melanosporum ?trufa negra? o ?trufa de Périgord?, Tuber magnatum ?trufa blanca del Piamonte?, Terfezia arenaria ?trufa del desierto? o Morchella esculenta ?colmenilla?.

Description

Campo Técnico de la Invención

La presente invención pertenece al campo técnico de la Agrobiotecnología, y en concreto a la producción a gran escala de micelio en cultivo puro de especies de hongos superiores de la división Ascomicetos.

Antecedentes

Hasta el momento no hay referencias acerca de la producción a gran escala de inóculo micelial de especies fúngicas pertenecientes a la división Ascomicetos; muchas de ellas sin embargo de gran importancia por ser las especies más demandadas y que alcanzan los precios más elevados en el mercado.

Existía gran interés en encontrar un procedimiento sencillo, rápido y económico de obtención de micelio en cultivo puro de las citadas especies, para su utilización en la micorrización de plantas, con certificación de origen, destinadas a la producción en vivero o plantación, así como a la recuperación de la producción micológica en zonas naturales.

Así pues, la presente solicitud de Patente de Adición pretende solventar la ausencia de la patente parental de esta otra gran división de los hongos superiores, ya que, Ascomicetos y Basidiomicetos son las dos divisiones de hongos superiores pertenecientes al subreino Neomycota del reino Fungi.

En principio, las divisiones de hongos a los que se podría aplicar un procedimiento para la obtención a gran escala de inóculo miceliar similar al recogido por la patente de invención P200930246 para los Basidiomicetos tendrían que presentar una organización miceliar similar, circunstancia que se cumple en la familia de los Ascomicetos, aunque sin los estudios experimentales este hecho no constituiría a priori una garantía de éxito.

La presente invención proporciona un procedimiento para la obtención in vitro de micelio fúngico en cultivo puro, aislado, tanto de los cuerpos fructíferos de especies fúngicas de interés, como de secciones de raicillas de plantas micorrizadas con dichas especies fúngicas.

La invención es una adición a la Patente de Invención P200930246 por “Procedimiento para la Obtención a Gran Escala de Inóculo Miceliar de Basidiomicetos”, que comprende las etapas: aislamiento del micelio fúngico de especies de hongos Ascomicetos, preferiblemente de los géneros Tuber, Terfezia, o Morchella y más preferiblemente a partir de cuerpos fructíferos de los hongos; inoculación del micelio aislado en la etapa anterior en un medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM); purificación del micelio en medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM); desarrollo del micelio purificado en la etapa anterior en un medio de cultivo BiotinaAneurina-Ácido Fólico (BAF) modificado y obtención del micelio fúngico purificado.

En una realización preferible de la invención, dicho hongo del género Tuber es Tuber melanosporum, y en otra realización preferible dicho hongo del género Terfezia es Terfezia arenaria. En una realización preferible más de la invención dicho medio líquido BAF modificado presenta un pH de 6,5.

Los resultados de los ejemplos muestran un extraordinario desarrollo y una gran cantidad de micelio obtenido. A los 5 días de cultivo se obtuvo por término medio un crecimiento de 1:103 del micelio en cultivo puro, ya dispuesto para la inoculación de las plantas a micorrizar.

Descripción de las figuras

Las figuras muestran dos perspectivas diferentes del sistema utilizado para la purificación del micelio fúngico.

La figura 1 corresponde a una placa de Petri de un diámetro de 9 cm (1) en cuyo fondo se coloca de forma centrada una placa (2) de 5 cm de diámetro, que se muestra con trazo discontinuo. Como resultado de esta configuración entre ambas placas se La figura 2 muestra el espacio central (4) que queda cuando, una vez enfriado el medio, se retira la placa interpuesta. En dicho espacio vacío central es donde se sitúa el inóculo del micelio, que se desarrolla hasta alcanzar la sección periférica (3) donde se encuentra el medio para la purificación, liberándose así de la posible presencia de bacterias, las cuales quedan retenidas en la sección central de las placas, al no poder desarrollarse por ausencia de nutrientes.

Ejemplos

Con la intención de mostrar la presente invención de un modo ilustrativo aunque en ningún modo limitante, se aportan los siguientes ejemplos.

Ejemplo 1: Preparación del inóculo miceliar de Tuber melanosporum, Terfezia arenaria y Morchella esculenta.

Se aislaron en cámara de flujo laminar pequeñas secciones de la parte más interna del himenio del píleo de carpóforos maduros de cada especie por separado, a los que se les había eliminado previamente la pellis. Seguidamente, se inocularon dichas secciones en condiciones de máxima asepsia en cámara de flujo laminar en placas Petri de plástico de 5 cm de diámetro, previamente esterilizadas en autoclave. A estas placas Petri se les había adicionado con anterioridad medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM) con composición/litro de medio de 0,5 g de Ca(NO3)2 4H2O; 0,2 g de PO4KH2 ; 0,1 g de SO4Mg 7H2O; 0,1g de KCl; 5,0 g de sacarosa; 3,5 g de avena en polvo; 0,1 g de extracto de levadura y 8,0 g de agar. Las placas inoculadas se mantuvieron en cámara a 20ºC hasta que el micelio se desarrolló llegando a ocupar toda la superficie de la placa. Posteriormente, el micelio obtenido en ambos casos se sometió a un proceso de purificación con objeto de eliminar la posibilidad de existencia de contaminación bacteriana, utilizando para ello placas Petri de 9 cm de diámetro en las que el medio de cultivo MOM tal cual anteriormente descrito se dispuso solamente en una sección circular periférica de 2 cm (placas de 5 cm de diámetro introducidas dentro de las placas Petri de 9 cm). En la parte central de estas placas se colocaron secciones de 1x1cm del medio sólido de crecimiento MOM conteniendo el micelio fúngico. Estas placas se mantuvieron en cámara a 20ºC hasta que el micelio se desarrolló ocupando toda la superficie de la placa.

Ejemplo 2: Cultivo del inóculo miceliar

Una vez purificado el micelio de cada especie según el Ejemplo 1 se transfirió una pequeña porción para su desarrollo a gran escala a medio de cultivo líquido BAF 5 modificado. En todos los experimentos se partió de un inóculo micelial de tamaño similar con un peso medio de unos 10 mg, que se incubó en matraces erlenmeyer conteniendo medio de cultivo líquido BAF modificado con una composición/litro de medio: 0,1 g de Cl2Ca; 0,5 g de PO4KH2; 0,5 g de SO4Mg 7H2O; 0,005 g de SO4Mn; 0,001 g de SO4Zn; 0,01 g de Cl3Fe 7H2O; 2,0 g de peptona; 0,0005 g de tiamina;

10 0,00001 g de biotina; 0,05 g de inositol; 0,0001 g de ácido fólico; 5,0-20,0 g de glucosa, y 0,2 g de extracto de levadura; el cultivo se mantuvo bajo condiciones controladas: 25 ºC, oscuridad, pH 6,5 y agitación constante a 120 rpm durante todos los días del cultivo ininterrumpidamente.

15 Ejemplo 3: Obtención de micelio de Tuber melanosporum en cultivo puro

Los resultados del crecimiento miceliar en medio nutritivo líquido BAF de la especie Tuber melanosporum durante catorce días sin nuevos aportes de medio nutritivo, se muestran en la tabla I. El crecimiento se mantiene hasta el día 14 en que, a causa del agotamiento de los nutrientes del medio de cultivo, se observa un cierto descenso del

20 mismo, que evidencia el inicio de procesos de lisis celular. Por ello, después de estos 14 días se requirió un nuevo aporte de medio nutritivo para la reanudación del crecimiento del micelio.

Tabla I

Peso medio del micelio (gr)

Especie: día 0 día 3 día 5 día 8 día 12 día 14

T.melanosporum: 0,0081 5,1681 7,9722 10,9754 12,1732 11,7312

25 De estos datos se deduce que a los cinco días el crecimiento del micelio en cultivo puro fue de 1:103, lo que se corresponde con una producción a gran escala.

Ejemplo 4: Obtención de micelio de Terfezia arenaria en cultivo puro

30 El crecimiento miceliar en medio nutritivo líquido BAF de la especie Terfezia arenaria durante catorce días sin nuevos aportes de medio nutritivo, se muestra en la tabla II.

En este ejemplo también se mantiene el crecimiento constante hasta el día 14 en que se observa un cierto descenso del mismo, que evidencia el inicio de los procesos de lisis celular. A partir de los 14 días se requirió un nuevo aporte de medio nutritivo para la reanudación del crecimiento del micelio.

Tabla II

Peso medio del micelio (gr)

Especie: día 0 día 3 día 5 día 8 día 12 día 14

T.arenaria: 0,0111 4,9051 7,6351 9,2431 10,3065 10,0271

Al igual que en la especie anterior, de los datos expuestos en la tabla se deduce que a los cinco días el crecimiento fue de 1:7x102, lo que indica también un extraordinario

10 desarrollo, si bien, un poco menor que en el ejemplo anterior.

Ejemplo 5: Obtención de micelio de Morchella esculenta en cultivo puro

El crecimiento miceliar en medio nutritivo líquido BAF de la especie Morchella esculenta. El crecimiento se mantiene, asimismo, hasta el día 14 en que se observa un

15 cierto descenso del mismo, que evidencia el inicio de procesos de lisis celular. Después de estos 14 días se requirió, igualmente, un nuevo aporte de medio nutritivo para la reanudación del crecimiento del micelio.

Tabla III

Peso medio del micelio (gr)

Especie: día 0 día 3 día 5 día 8 día 12 día 14

M.esculenta: 0,0078 4,6273 7,6895 10,7395 12,6912 12,0161

20 De los datos expuestos en la tabla se deduce que a los cinco días el crecimiento fue de 1:103, lo que se corresponde igualmente con una producción a gran escala similar a la del Ejemplo 3.

Claims

REIVINDICACIONES

1.

Adición a la Patente de Invención P200930246 por “Procedimiento para la Obtención a Gran Escala de Inóculo Miceliar de Basidiomicetos”, que comprende las etapas:

a) aislamiento del micelio fúngico de especies de hongos ascomicetos, b) inoculación del micelio aislado en la etapa a) en un medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM), c) purificación del micelio en medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM), d) desarrollo del micelio purificado en la etapa c) en un medio de cultivo Biotina-Aneurina-Ácido Fólico (BAF) modificado, y e) obtención del micelio fúngico purificado.
2.

Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 1, caracterizada por que dicho aislamiento del micelio fúngico de la etapa a) se realiza a partir de cuerpos fructíferos de hongos.
3.

Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 2, caracterizado por que el hongo de ascomicetos a partir del cual se obtiene el micelio es de los géneros Tuber, Terfezia, o Morchella.
4.

Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 3, caracterizado por que dicho hongo del género Tuber es Tuber melanosporum.
5.

Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 3, caracterizado por que dicho hongo del género Terfezia es Terfezia arenaria.
6.

Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 1, caracterizado por que dicho medio líquido BAF modificado de la etapa d) presenta un pH de 6,5.