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JP2643801B2 - ホスファターゼの検出方法 - Google Patents
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JP2643801B2 - ホスファターゼの検出方法 - Google Patents

ホスファターゼの検出方法

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JP2643801B2
JP2643801B2 JP5277499A JP27749993A JP2643801B2 JP 2643801 B2 JP2643801 B2 JP 2643801B2 JP 5277499 A JP5277499 A JP 5277499A JP 27749993 A JP27749993 A JP 27749993A JP 2643801 B2 JP2643801 B2 JP 2643801B2
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  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は,ホスファターゼ検出用
の蛍光物質に関するものであり,例えば,インサイチュ
ハイブリダイゼーションでゲノム解析のための遺伝子の
染色体マッピングをホスファターゼを利用して作成する
場合や,組織中もしくは細胞中の酸ホスファターゼ及び
アルカリホスファターゼを検出する場合に,極めて有用
なものである。
【0002】
【従来技術】組織もしくは細胞中のRNA,又は染色体
DNAのインサイチュハイブリダイゼーションや特異的
抗原の検出には,RNA又は染色体DNAと結合した上
記抗原に,蛍光物質と結合させた抗体を結合させ,この
蛍光物質の蛍光を検出する蛍光抗体法がよく用いられて
いる。しかし,一つの抗体に結合できる蛍光物質の数は
数分子から数十分子と限られているために,これによっ
て感度が制限されている。かかる蛍光抗体法としては,
例えばFITC結合抗体を用いる方法がある。
【0003】感度の飛躍的向上のためには,抗体に酵素
を結合させる酵素抗体法が望ましい。酵素抗体法とは,
酵素と結合させた抗体を,RNAや染色体DNAと結合
させた抗原に結合させた後,蛍光基質を酵素と反応させ
て蛍光物質を生成させ,この蛍光物質によって発生する
蛍光を検出することにより,RNAや染色体DNAと結
合した特異的抗原の検出を行うものである。
【0004】酵素による蛍光基質の分解反応には制限が
ない。このため,例えば,アルカリホスファターゼによ
る蛍光基質の分解反応を利用した場合では,1分間に約
10万分子の蛍光基質と反応する。そのため,上記蛍光
抗体法を利用した場合と比べて,蛍光感度を一万倍以上
に向上させることができる。
【0005】
【解決しようとする課題】しかしながら,上記FITC
結合抗体による蛍光抗体法は,励起光による褪色が速
く,室内の一般的な照明環境のもとでは数秒で消失して
しまう。そのため,蛍光が発生した直後に該蛍光を検出
しなければならない。更に,作業は暗室で行わなければ
ならず,作業性がよくない。また,励起光の観察には,
高価なレーザ顕微鏡が必要であり,汎用性が乏しい。
【0006】また,FITC結合抗体による蛍光は,感
度及び解像度がよくない。そのため,RNAや染色体D
NAの特定塩基配列部位の存在位置を知るに当たって,
FITC結合抗体により発光した染色体上のDNAを撮
影した画像と,染色体全体を撮影した画像とを,画像処
理により重ね合わせなければならないという問題があ
る。
【0007】そこで,これらの問題を解決するために
E.J.M.Speelらは,蛍光基質である市販のN
aphthol−AS/MX−phosphate及び
アゾ色素であるFast Red TRによる蛍光を検
出する酵素抗体法を試みた。この方法は,インサイチュ
ハイブリダイゼーションにおいて,Naphthol−
AS/MX−phosphateとFast Red
TRとをカップリングさせて,蛍光物質の組織もしくは
染色体への沈着能を向上させるものである(The H
istopchemical Journal,vo
l.24,1992.第9回国際組織化学会議要旨集5
62頁)。
【0008】このE.J.M.Speelらの方法で
は,この沈着能の向上によって,上記従来のFITC蛍
光抗体法と比べて褪色が遅くなることは確認できた。し
かし,その反面,上記E.J.M.Speelらの方法
では,感度の面で従来法である上記FITC蛍光抗体法
をこえることができず,問題の部分的解決に留まった。
そこで,本発明はかかる従来の問題点に鑑み,強い蛍光
を長時間発生させることができ,操作性に優れたホスフ
ァターゼの検出方法を提供しようとするものである。
【0009】
【課題の解決手段】本発明は,ホスファターゼに,下記
の「化1」の一般式に示す2′−ナフトールAS類リン
酸体を反応させて,該2′−ナフトールAS類リン酸体
にジアゾニウム塩をカップリングさせてアゾ色素を得る
色素生成工程と,該アゾ色素に励起光を照射する励起工
程と,励起光の照射により発生する蛍光を検出する検出
工程よりなり,上記2′−ナフトールAS類リン酸体の
2′置換基X1 は,フェニル基,メチル基,イソプロピ
ル基,又はメトキシ基のいずれかであることを特徴とす
るホスファターゼの検出方法にある。
【0010】
【化1】
【0011】本発明において,上記2′−ナフトールA
S類リン酸体のナフタレン環と上記ジアゾニウム塩と
は,ホスファターゼ存在下で,上記カップリング反応に
より,アゾ色素を生成する(図1〜図3参照)。このア
ゾ色素は,一般に上記2′−ナフトールAS類リン酸体
の脱リン酸体とジアゾニウム塩とからなるカップリング
生成物である。また,アゾ色素は,安定な化合物であ
り,強い蛍光を発する蛍光物質である。
【0012】上記「2′−ナフトールAS類リン酸体」
とは,上記化1式におけるベンゼン環の2′位(オルト
位)にのみフェニル基等の上記置換基X1 が結合してお
り,3′位及び5’位(メタ位)及び4′位(パラ位)
には置換基が結合していないものをいう。
【0013】例えば,上記ベンゼン環の2′位にフェニ
ル基が結合した2′−ナフトールAS類リン酸体は,3
−ヒドロキシ−N−2′−ビフェニル−2−ナフタレン
カルボキシアミドホスフェートエステル(3−Hydr
oxy−N−2′−biphenyl−2−napht
halenecarboxamide phospha
te ester,以下HNPPと称する)である。こ
の化学構造式を下記「化2」に示す。
【0014】
【化2】
【0015】このHNPPは,ホスファターゼの存在下
で,ジアゾニウム塩,例えば2−ビフェニルジアゾニウ
ムクロライドと,図1のように反応し,発色性のアゾ色
素を生成する。また,HNPPは,ホスファターゼの存
在下で,ジアゾニウム塩としての4−クロロ−2−トル
エンジアゾニウムクロライドと,図2のように反応し,
発色性のアゾ色素を生成する。
【0016】また,例えば,上記ベンゼン環の2′位に
メチル基が結合した2′−ナフトールAS類リン酸体
は,3−ヒドロキシ−N−2′−メチルフェニル−2−
ナフタレンカルボキシアミドホスフェートエステル(3
−Hydroxy−N−2′−methylpheny
l−2−naphthalenecarboxamid
e phosphate ester,以下HNMPP
という。)である。この化学構造式を下記「化3」に示
す。
【0017】
【化3】
【0018】このHNMPPは,ホスファターゼの存在
下でジアゾニウムクロライドと,図3のように反応し,
発色性のアゾ色素を生成する。尚,その他の2′−ナフ
トールAS類については,上記と同様であり,その名称
表示は省略する。
【0019】また,上記2′−ナフトールAS類リン酸
体としては,化4式に示すごとく,ナフタレン環の7位
に,以下に示す置換基X2 を有しているものを用いるこ
ともできる。上記置換基X2 としては,H,Br,フェ
ニル基(C6 5 ),メチル基(CH3 ),イソプロピ
ル基(CH2 (CH3 )CH3 )等がある。
【0020】
【化4】
【0021】上記ホスファターゼは,一般に,組織中も
しくは細胞中に存在しているホスファターゼ,或いは後
述する核酸プローブに標識されたホスファターゼを対象
とする。上記組織としては,例えば,腎臓組織又は肝臓
組織等がある。上記染色体としては,組織内に存在する
内因性のものでも,また組織外に取り出した外因性のも
のでもよい。
【0022】また,上記ホスファターゼは,例えば,核
酸プローブ上にある。該核酸プローブは,組織もしくは
細胞中のRNA,または染色体DNAとハイブリダイゼ
ーションさせることができる。即ち,まず,ホスファタ
ーゼにより標識された核酸プローブを,組織中もしくは
細胞中のRNA,又は染色体DNAの特定塩基配列部位
とハイブリダイゼーションさせる。次いで,この特定塩
基配列部位とハイブリダイゼーションしなかった上記核
酸プローブを除去する。
【0023】次に,上記ホスファターゼに2′−ナフト
ールAS類リン酸体を反応させ,該2′−ナフトールA
S類リン酸体をジアゾニウム塩とカップリングさせて,
アゾ色素を得る。その後,上記アゾ色素に励起光を照射
することにより,アゾ色素から発生する蛍光を検出す
る。これにより,上記RNA又は染色体DNAの特定塩
基配列部位を検出することができる。
【0024】また,上記核酸プローブと上記ホスファタ
ーゼとを結合するに当たっては,一般に,ホスファター
ゼには抗体を,核酸プローブには抗原をそれぞれ結合さ
せた後,この抗体と抗原とを反応させることが行われ
る。また,本発明においては,ホスファターゼとして,
アルカリホスファターゼや酸性ホスファターゼのどちら
にも適用することができる。
【0025】上記ジアゾニウム塩は,2─ビフェニルジ
アゾニウムクロライド,4─メトキシ─2─ビフェニル
ジアゾニウムクロライド,3─ビフェニルジアゾニウム
クロライド,4─メトキシ─3─ビフェニルジアゾニウ
ムクロライド,2─トルエンジアゾニウムクロライド,
4─クロロ─2─トルエンジアゾニウムクロライド,3
─ブロモ─6─トルエンジアゾニウムクロライド,3─
ブロモ─4─トルエンジアゾニウムクロライド,2─メ
トキシベンゼンジアゾニウムクロライド,2,4─ジメ
トキシベンゼンジアゾニウムクロライド,3─クロロ─
4,6─ジメトキシベンゼンジアゾニウムクロライド,
2─ブロモベンゼンジアゾニウムクロライド,3─アセ
トアミドベンゼンジアゾニウムクロライド,ナフタレン
ジアゾニウムクロライド,3─ヒドロキシ─2─ナフタ
レンジアゾニウムクロライド,2─アントラセンジアゾ
ニウムクロライド,2’,4’−ジメトキシ─4─スチ
ルベンジアゾニウムクロライド,ベンゾチアゾールジア
ゾニウムクロライド,5─ジエチルアミノスルフォニル
─2─メトキシベンゼンジアゾニウムクロライド,4─
メトキシ─2─ニトロジアゾニウムクロライド,2─メ
トキシ─4─ニトロベンゼンジアゾニウム塩,p−ニト
ロベンゼンジアゾニウムテトラフルオロボーレイト,2
─メトキシ─5─クロロベンゼンジアゾニウムクロライ
ド,及び2─メトキシ─3─ジベンゾフランジアゾニウ
ム塩のグループから選ばれたいずれか1種以上のジアゾ
ニウム化合物等である。
【0026】
【作用及び効果】本発明の検出方法によれば,2′−ナ
フトールAS類リン酸体は,ホスファターゼ存在下でジ
アゾニウム塩と結合し,アゾ色素を生成する。このアゾ
色素は,安定な構造を有し,従来の蛍光物質よりも強い
蛍光を発する。また,その蛍光時間も約30分間以上で
あり,長時間に渡って蛍光し続ける。それ故,ホスファ
ターゼを高感度で検出することができ,例えば組織中や
細胞中のRNA,又は染色体DNAをより高感度に検出
することができる。
【0027】特に,ジアゾニウム塩として,ビフェニル
ジアゾニウムクロライド系のジアゾニウム塩を用いた場
合には,より感度を向上させることができる。従って,
本発明の検出方法によれば,通常の照射光の下で操作す
ることができ,作業性が良い。また,蛍光検出を暗室で
行う必要もない。上記の効果は,上記アゾ色素が,安定
な構造を有し,細胞,組織,又は染色体への沈着能に優
れた物質であるためであると推定される。
【0028】また,強い励起光源下においても褪色が少
ないため,特性的解析のみでなく,定量的解析にも適用
することができる。さらに,2′−ナフトールAS類リ
ン酸体は,ホスファターゼとの反応前では,無蛍光であ
るので,反応液中で容易に発光シグナルを検出して,ホ
スファターゼの有無を容易に確認することができる。
【0029】また,上記RNA,染色体DNAに核酸プ
ローブをハイブリダイゼーションさせた後,本発明のホ
スファターゼの検出方法を行なうことにより,RNAや
染色体DNAの特定塩基配列部位の存在位置を知ること
ができる。また,RNAや染色体DNAの特定塩基配列
部位の存在位置を知るに当たって,該特定塩基配列部位
を染色体全体像とともに,同一の撮影画像に写し出すこ
とができる。そのため,画像処理が容易である。また,
励起光のディフュージョンが少なく,画像が鮮明であ
る。また,励起光の観察には,一般的な蛍光顕微鏡を用
いることができる。
【0030】また,ジアゾニウム塩の種類を選択するこ
とにより,蛍光シグナルの波長を変えることができる。
そのため,数種の核酸プローブを用いる多色蛍光検出系
にも利用することができる。例えば,FITCプローブ
と一緒に用いる場合にはHNPP及び4−クロロ−2−
トルエンジアゾニウムクロライドを使用し,一方TRI
TCプローブと一緒に用いる場合にはHNPP及びp−
ニトロベンゼンジアゾニウムテトラフルオロボーレイト
を,それぞれ使用する。このとき,前者は赤色に,後者
は黄色に発色する。
【0031】こうして生成した蛍光性のアゾ色素は,従
来の蛍光物質よりも強い蛍光を有するとともに,組織も
しくは染色体への沈着能に優れた物質であるため,組織
中もしくは細胞中のRNA,又は染色体DNAを,より
高感度に検出できる。従って,本発明によれば,インサ
イチュハイブリダイゼーションにおいて,ホスファター
ゼで標識された組織中もしくは細胞中のRNA,又は染
色体DNAを,より高感度に検出することができる。以
上のごとく,本発明によれば,強い蛍光を長時間発生さ
せることができ,操作性に優れた,ホスファターゼの検
出方法を提供することができる。
【0032】
【実施例】
実施例1 本例においては,マウス腎臓凍結組織標本中のホスファ
ターゼに,2′−ナフトールAS類リン酸体としての前
記HNPPを反応させ,更に該HNPPに2−ビフェニ
ルジアゾニウムクロライドを結合させてアゾ色素を得
た。該アゾ色素に励起光を照射し,該励起光の照射によ
り発生する蛍光を検出した。以下,これを詳説する。
【0033】 2−ビフェニルジアゾニウムクロライ
ドの調製 まず,o−アミノビフェニル500mg(0.0030
mol)を13.6%塩酸2.4ml(4モル当量)に
溶かし,超音波処理を10分したのち,氷温に保つ。氷
温下25%亜硝酸ナトリウム水溶液0.8ml(1モル
当量)を攪拌しながらゆっくり滴下する。滴下後,氷温
下で2時間攪拌したのち,飽和塩化亜鉛0.6mlを氷
温下で,攪拌しながら加える。これにより,ジアゾニウ
ムクロライドの塩化亜鉛ダブル塩が析出する。
【0034】次いで,時々攪拌しながら,0℃で2時間
放置する。次いで,吸引濾過し,coldエーテルで洗
い,風乾する。これにより,2−ビフェニルジアゾニウ
ムクロライド塩化亜鉛ダブル塩650mgを得た。
【0035】反応溶液の調製 次に,pH8のトリス塩酸バッファー(Tris−HC
l 100mM,NaCl 100mM,MgCl2
50mM)にHNPPを100μg/mlの濃度で溶か
した基質溶液と,上記2−ビフェニルジアゾニウムクロ
ライド塩化亜鉛ダブル塩をジメチルホルムアミドに25
0μg/mlの濃度で溶かしたジアゾニウム溶液とを混
合し,反応溶液を調製した。
【0036】マウス腎臓凍結組織標本上でのホスファ
ターゼの検出 次に,マウスより腎臓を摘出して−15℃で凍結させた
後,厚さ約10ミクロンに切って凍結組織切片を作成し
た。次に,この凍結組織切片を−15℃のアセトンに数
時間以上浸したのち,4℃の4%パラホルムアミド中で
20分間スライドグラス上に固定し,リン酸バッファー
(NaCl 130mM,Na2 HPO4 7mM,N
aH2 PO4 30mM)で5分ずつ三回洗い,4℃の
リン酸バッファー中で保存した。
【0037】次に,上記反応溶液中に,上記凍結組織切
片をのせたスライドグラスを浸し,室温にて約5分間反
応を行った。反応後,水で三回洗い,よく水を切った
後,グリセロールを滴下して封入した。
【0038】次に,蛍光顕微鏡で,スライドグラス上の
組織切片より発せられる蛍光シグナルの観察を行ったと
ころ,図4(写真,顕微鏡倍率:100倍,絞り:開
口,露出時間:30秒)に,偏平状又は粒状の島部分で
示されるように,強い赤色の蛍光が検出された。
【0039】実施例2 本例においては,ジアゾニウム塩として,実施例1にお
いて用いた2−ビフェニルジアゾニウムクロライドに代
えて,下記のジアゾニウム塩をそれぞれ用い,このもの
と前記HNPPとを用いて,実施例1と同様にして,マ
ウス腎臓凍結組織中のホスファターゼを検出した。
【0040】即ち,本例に用いたジアゾニウム塩は,下
記の各種のものである。4─メトキシ─2─ビフェニル
ジアゾニウムクロライド,3─ビフェニルジアゾニウム
クロライド,4─メトキシ─3─ビフェニルジアゾニウ
ムクロライド,2─トルエンジアゾニウムクロライド,
4─クロロ─2─トルエンジアゾニウムクロライド,3
─ブロモ─6─トルエンジアゾニウムクロライド,3─
ブロモ─4─トルエンジアゾニウムクロライド,
【0041】2─メトキシベンゼンジアゾニウムクロラ
イド,2,4─ジメトキシベンゼンジアゾニウムクロラ
イド,3─クロロ─4,6─ジメトキシベンゼンジアゾ
ニウムクロライド,2─ブロモベンゼンジアゾニウムク
ロライド,3─アセトアミドベンゼンジアゾニウムクロ
ライド,ナフタレンジアゾニウムクロライド,
【0042】3─ヒドロキシ─2─ナフタレンジアゾニ
ウムクロライド,2─アントラセンジアゾニウムクロラ
イド,2’,4’−ジメトキシ─4─スチルベンジアゾ
ニウムクロライド,ベンゾチアゾールジアゾニウムクロ
ライド,5─ジエチルアミノスルフォニル─2─メトキ
シベンゼンジアゾニウムクロライド,
【0043】4─メトキシ─2─ニトロジアゾニウムク
ロライド,2─メトキシ─4─ニトロベンゼンジアゾニ
ウム塩,p−ニトロベンゼンジアゾニウムテトラフルオ
ロボーレイト,2─メトキシ─5─クロロベンゼンジア
ゾニウムクロライド,及び2─メトキシ─3─ジベンゾ
フランジアゾニウムクロライド。
【0044】そして,この結果を全て同じ条件(顕微鏡
倍率:100倍,絞り:開口,露出時間:30秒)で撮
像したところ,実施例1と同様に,極めて強い赤色の蛍
光が検出できることがわかった。上記各種ジアゾニウム
塩を用いた場合の,上記ホスファターゼの検出結果を図
5〜図15に示した。
【0045】即ち,図5には4─メトキシ─2─ビフェ
ニルジアゾニウムクロライドを,図6には3─ビフェニ
ルジアゾニウムクロライドを,図7には4─メトキシ─
3─ビフェニルジアゾニウムクロライドを,図8には4
─クロロ─2─トルエンジアゾニウムクロライドを,図
9には2─トルエンジアゾニウムクロライドを用いた場
合に示した。
【0046】また,同様に,図10には3─ブロモ─6
─トルエンジアゾニウムクロライドを,図11には3─
ブロモ─4─トルエンジアゾニウムクロライドを,図1
2には2─メトキシベンゼンジアゾニウムクロライド
を,図13には2,4─ジメトキシベンゼンジアゾニウ
ムクロライドを,図14にはベンゾチアゾールジアゾニ
ウムクロライドを,図15には2─メトキシ─3─ジベ
ンゾフランジアゾニウムクロライドを用いた場合につい
て示した。
【0047】図5〜図15のうち,図7と図12は,上
記撮影写真をトレースしたものである。他の図は,上記
撮影写真である。上記の各図から知られるように,ホス
ファターゼの存在する位置には,極めて強い赤色の蛍光
が検出された。即ち,上記の図7,図12においては,
黒線で囲まれた偏平状或いは粒状の島部分が上記蛍光部
分を示している。また,他の写真においては,粒状,偏
平状等に白色がかって見える部分が上記蛍光部分を示し
ている。また,写真では差異を検出しにくいが,図5〜
図7に示すように,ビフェニルジアゾニウムクロライド
系のジアゾニウム塩を用いた場合には,バックグラウン
ドが低く,特に明確に判断することができる。
【0048】実施例3 本例においては,マウス腎臓凍結組織中のホスファター
ゼを検出した。そして,実施例1で用いたHNPPと2
−ビフェニルジアゾニウムクラロイドとを混合した反応
溶液の代わりに,HNPPとFast Red B(g
reen)(SIGMA社製)〔2−メトキシ−4−ニ
トロベンゼンジアゾニウムクロライド〕とを用いて反応
溶液を調製した。反応溶液中のHNPPの濃度は100
μg/ml,上記Fast Red B(green)
の濃度は2.5mg/mlとした。
【0049】その他については,実施例1と同様にマウ
ス腎臓凍結組織標本上でのホスファターゼの検出を行っ
た。蛍光顕微鏡でスライドグラス上の組織切片より発せ
られる蛍光シグナルの観察を行ったところ,図16(写
真,顕微鏡倍率:100倍,絞り:開口,露出時間:3
0秒)に,偏平状又は粒状の島部分で示されるように,
強い黄色の蛍光が検出された。
【0050】実施例4 本例においては,キイロショウジョウバエ唾線染色体標
本における特異的DNA配列(in situ)の検出
を行った。即ち,まず,Drosophila mel
anogasterの3齢幼虫より唾線を取り出し,ス
ライドグラス上に展開し,検体DNAを0.07NのN
aOH溶液中でアルカリ変性させた。次に,G6PD
(Glucose−6−Phosphate Dehy
drogenase)遺伝子配列の一部を核酸プローブ
としてハイブリダイゼーションを行った。
【0051】核酸プローブはランダムプライム法により
ディゴキシゲニンで標識した。ハイブリダイゼーション
後の洗いののち,仔ウシ血清アルブミンによりブロッキ
ング処理を行ない,ベーリンガーマンハイム社のプロト
コールに従い,アルカリホスファターゼ標識抗ディゴキ
シゲニン抗体を,ディゴキシゲニンに,結合させた。
【0052】次に,余分な抗体を洗った後,HNPP及
びFast Red TR〔4−クロロ−2−メチルベ
ンゼンジアゾニウムクロライド〕の入った反応溶液(H
NPP:100μm,Fast Red TR:2.5
mg/ml)へ上記スライドグラスを浸し,37℃で2
時間反応させたところ,染色体上に赤色のバンドが検出
された。
【0053】比較例1 本比較例においては,実施例1で用いたHNPPの代わ
りに,同量のNaphthol AS−MX Phos
phate〔3−ヒドロキシ−N,2′,4′−ジメチ
ルフェニルナフタレンカルボキシアミドホスフェートエ
ステル〕を用いて基質溶液を調製し,その他は実施例1
と同様に,マウス腎臓凍結組織標本上でのホスファター
ゼの検出を行った。結果は図17の写真に示すように,
蛍光が実施例1と比較して著しく弱いものであった。
ち,図17は,上記ホスファターゼの検出結果として,
実施例1と同様に撮影写真をトレースしたものである。
同図において,黒線で囲まれた偏平状或いは粒状の島部
分が上記ホスファターゼの蛍光部分を示している。
【0054】比較例2 本比較例においては,実施例1で用いたHNPPの代わ
りに,同量のNaphthol AS−BI Phos
phate〔7−ブロモ−3−ヒドロキシ−N,2′−
メトキシフェニルナフタレンカルボキシアミドホスフェ
ートエステル〕を用いて基質溶液を調製し,その他は実
施例1と同様に,マウス腎臓凍結組織標本上でのホスフ
ァターゼの検出を行った。結果は,比較例1と同様に蛍
光が著しく弱いものであった。
【0055】実施例5 本例においては,3−ヒドロキシ−N−2′−ビフェニ
ル−2−ナフタレンカルボキシアミドホスフェートエス
テル(HNPP)と,2−ビフェニルジアゾニウムクロ
ライドとを合成し,これらを用いてマウス腎臓凍結組織
中のホスファターゼを検出した。以下,これを詳説す
る。
【0056】HNPPの合成法 まず,2−ヒドロキシ−3−ナフトエ酸18g(0.1
mol)と脱水キシレン200mlと2−アミノビフェ
ニル15g(0.09mol)とを,ジムロート冷却管
を付けた300cc容量ナス型フラスコに入れ,80℃
で10分間攪拌する。
【0057】次いで,三塩化リン(0.03mol)を
加え,この混合物を2時間還流する。その後,その反応
液を熱いままデカンテーションして上清液を取る。次い
で,この上清液を4℃で冷却し,沈澱物を析出される。
次いで,この沈澱物を濾過し,キシレンにより洗い,更
に蒸留水で洗う。次に,この沈澱物を3%塩酸水溶液に
入れ,加熱した後濾過し,冷却し,沈澱物を析出され
る。その後,この沈澱物を熱水で洗い,乾燥する。次い
で,この沈澱物を再結晶化させて,化学式「化5」で表
される3−ヒドロキシ−N−2′−ビフェニル−2−ナ
フタレンカルボキシアミドを得た。
【0058】
【化5】
【0059】次いで,この3−ヒドロキシ−N−2′−
ビフェニル−2−ナフタレンカルボキシアミド5.09
g(0.015mol)をジオキサン200mlに溶か
し,五塩化リン15.6g(0.075mol)を加え
て,50℃で1時間攪拌する。そして,400mlの氷
冷水にゆっくり流し込み,結晶化させ,これを濾過す
る。
【0060】次に,この濾過された結晶を十分乾燥させ
た後,できるだけ微量のN,N′−ジメチルホルムアミ
ドに溶解させる。そして,この溶液を0.2N炭酸ナト
リウム水溶液に注ぎ,そのまま0℃で2時間攪拌する。
次いで,この溶液中の結晶を2回吸引濾過して除去し
た。次に,0.45μmのろ過紙のついたミニカップ
(ミリポア社製)で再度吸引濾過し,その濾液に3N塩
酸を加え,再結晶化させた。次に,この結晶を含む懸濁
液を濾過し,十分蒸留水で洗った後,乾燥させて,上記
化3式に示すHNPP(3−ヒドロキシ−N−2′−ビ
フェニル−2−ナフタレンカルボキシアミドホスフェー
トエステル)1.4gを得た。
【0061】 2−ビフェニルジアゾニウムクロライ
ドの合成法 まず,o−アミノビフェニル500mgを13.6%塩
酸に懸濁させ,超音波処理を10分間行なった後,氷温
下に保つ。次いで,氷温下で25%亜硝酸ナトリウム水
溶液812μlを加え,0℃で2時間攪拌した。そして
攪拌しながら,飽和塩化亜鉛水溶液600μlを加え
て,さらに0℃で時々攪拌しながら2時間放置し,結晶
を析出させた。次いで,この結晶を濾過して,冷エーテ
ルで洗った後,十分風乾して,2−ビフェニルジアゾニ
ウムクロライド塩化亜鉛ダブル塩650mgを得た。
【0062】 反応溶液の調製 次に,pH8のトリス塩酸バッファー中に,上記HNP
P及び2─ビフェニルジアゾニウムクロライドを溶解さ
せて,反応溶液を調製した。この反応溶液において,H
NPPは2.5×10-4mol/リットル,2─ビフェ
ニルジアゾニウムクロライドは8.8×10-4mol/
リットルである。
【0063】 マウス腎臓凍結組織標本上でのホスフ
ァターゼの検出 次に,マウスより腎臓を摘出し,−15℃で凍結させ凍
結組織切片を作成した。−15℃のアセトンに数時間以
上浸したのち,4℃の4%パラホルムアミド中で20分
間スライドグラス上に固定し,リン酸バッファーで5分
ずつ3回洗い,4℃のリン酸バッファー中で保存した。
【0064】次に,上記凍結組織切片をのせたスライド
グラスを上記反応溶液中に浸し,室温にて約5分間反応
を行った。反応後,水で三回洗い,よく水を切った後,
グリセロールで封入した。次に,蛍光顕微鏡により,凍
結組織切片中のホスファターゼの蛍光シグナルの観察を
行ったところ,図18に,偏平状又は粒状の島部分で示
されるように,強い赤色の蛍光が検出された。
【0065】この際に,比較のため,市販のNapht
hol AS−MX Phosphate及びNaph
thol AS−BI Phosphateと比較した
が,前者の蛍光はHNPPを用いた場合に比べ著しく弱
かった。また,後者においては,更に弱く検出が困難で
あった。
【0066】実施例6 本例においては,以下に示す〜の各ジアゾニウム塩
を用いて,実施例5と同様にマウス腎臓凍結組織中のア
ルカリフォスファターゼを検出した。 Fast Red TR(red)〔4−クロロ−2
−メチルベンゼンジアゾニウムクロライド〕, Fast Red B(green)〔2−メトキシ
−4−ニトロベンゼンジアゾニウムクロライド〕, Fast Red GG(green)〔4−ニトロ
ベンゼンジアゾニウムクロライド〕,
【0067】Fast Bordaux GP(re
d)〔4−メトキシ−2−ニトロベンゼンジアゾニウム
クロライド〕, Fast Red ITR(green)〔5−ジエ
チルアミノスルホニル−2−メトキシベンゼンジアゾニ
ウムクロライド〕, Naphthanil Diazo Red RC
(red)〔5−クロロ−2−メトキシベンゼンジアゾ
ニウムクロライド〕, Naphthtalene diazouium s
alt, 3−methoxydibenzofuran di
azoumium salt。 その結果,実施例5と同様に強い蛍光が検出された。
【0068】実施例7 本例においては,マウス肝臓凍結組織標本上でのホスフ
ァターゼの検出を行った。即ち,まず,pH8のトリス
塩酸バッファー中に,実施例5と同様のHNPP及び2
−ビフェニルジアゾニウムクロライドを溶解させて,反
応溶液を調製した。
【0069】また,マウスより肝臓を摘出し,液体窒素
で凍結させ凍結組織切片を作成した。−70℃のアセト
ンに一晩浸したのち,4℃で保存した。次に,上記凍結
組織切片を95%エタノールに浸し,スライドグラス上
にのせ,これを乾燥させた。次に,このスライドグラス
を上記反応溶液中に浸し,37℃にて約5分間反応を行
った。反応後,このスライドグラスを水で洗い,水で封
入した。
【0070】次に,蛍光顕微鏡により,図19に示すご
とく,凍結組織切片中のホスファターゼの蛍光シグナル
の観察を行ったところ,強い赤色の蛍光が検出された。
図19は,上記組織の顕微鏡写真(倍率100倍)をト
レースしたものである。同図中,黒い曲線状部分が,上
記ホスファターゼの蛍光部分を示している。この際に,
比較例のため,市販のNaphthol AS−MX
Phosphate及びNaphthol AS−BI
Phosphateと比較した。前者の蛍光はHNP
Pを用いた場合に比べ,著しく弱かった。また,後者の
場合には,更に蛍光が弱く,検出困難であった。
【0071】実施例8 本例においては,ヒト中期染色体標本上でのヒトのαサ
テライトDNAの検出(マルチコピーの検出)を行っ
た。即ち,まず,ヒト末梢血リンパ球より作成した中期
染色体標本を,75℃で10分間加熱して変性させた。
次に,PCRによりビオチン標識したヒトのαサテライ
トDNAを作成し,これを核酸プローブとして上記中期
染色体にハイブリダイゼーション(in situ)を
行った。次に,上記核酸プローブをハイブリダイゼーシ
ョンさせた上記中期染色体を洗った。
【0072】次に,この中期染色体に,脱脂粉乳水溶液
を用いてブロッキング処理を施し,アルカリホスファタ
ーゼ標識抗ビチオン抗体を結合させた。次に,余分な抗
体を除去し,HNPP及び2−ビフェニルジアゾニウム
クロライドを溶解させた反応溶液中において,室温雰囲
気中で30分間反応させた。染色体はヘキスト−キナク
リンで対比染色した。次に,蛍光顕微鏡を用いて,上記
染色体の観察を行ったところ,図20に示すごとく,染
色体のセントロメア領域に強い赤色の蛍光シグナルが検
出できた。また,同一の撮影画像上で,鮮明な染色体の
青い蛍光分染パターンが検出できた。即ち,上記図20
は,上記染色体に顕微鏡写真をトレースしたものであ
る。同図中,長尺状部分2(斜線部分)は染色体の蛍光
分染パターンを示す。また,長尺状部分2の中に示され
る黒丸1は,染色体中のセントロメア領域の赤い蛍光シ
グナルを示す。
【0073】実施例9 本例においては,ヒト染色体標本上でのヒトのc−my
c遺伝子の検出(シングルコピーの検出)を行った。即
ち,まず,ヒトの末梢血リンパ球より作成した染色体標
本を,75℃で10分間加熱して変性させた。次に,ニ
ックトランスレーションによりビオチン標識したヒトの
c−myc遺伝子(2.4kb)を核酸プローブとし
て,上記変性染色体標本にハイブリダイゼーション(i
n situ)させた。次に,実施例8と同様に処理を
行った後,HNPP100μg/ml及び2−ビフェニ
ルジアゾニウムクロライド250μg/mlを溶解させ
た反応溶液中において,室温下で30分間ずつ4回繰り
返し反応させた。染色体はヘキスト−キナクリンで対比
染色した。
【0074】次に,蛍光顕微鏡を用いて,上記染色体を
観察したところ,図21に示すごとく,第8染色体に強
い赤色の蛍光シグナルが検出できた。また,同一の撮影
画像上に鮮明な緑色の染色体の蛍光分染パターンが検出
できた。即ち,上記図21は,上記第8染色体の顕微鏡
写真をトレースしたものである。同図中,偏平部分4
(斜線部分)は第8染色体の緑色の蛍光分染パターンを
示す。また,偏平部分4の中に示される黒丸3は,赤色
の蛍光シグナルを示す。また,本例においては,2.4
kbという短鎖の核酸プローブを特定塩基配列部位にハ
イブリダイゼーションさせて,該特定塩基配列部位を検
出することができた。
【0075】実施例10 本例においては,HNMPP(3─ヒドロキシ─N−
2’─メチルフェニル─2─ナフタレンカルボキシアミ
ドホスフェート)を合成し,これを用いて実施例5と同
様にマウス腎臓凍結組織標本上でのホスファターゼの検
出を行った。
【0076】即ち,まず,2─ヒドロキシ─3─ナフト
エ酸5g(0.027mol)と脱水キシレン40ml
と2─アミノトルエン(0.023mol)をジムロー
ト冷却管を付けた300cc容量ナス型フラスコに入
れ,80℃で10分間攪拌する。次いで,三塩化リン
(0.01mol)を加える。そして,この混合物を2
時間還流する。次に,その反応液を熱いままデカンテー
ションして上清液を取る。次いで,この上清液を4℃に
冷却し,析出した沈澱物を濾過する。
【0077】次に,この沈澱物をキシレン,次いで蒸留
水で洗浄する。次いで,この沈澱物を3%塩酸水溶液に
入れ,加熱した後,これを濾過し,冷却する。次いで,
濾別された沈澱物を熱水で洗い,乾燥する。次に,この
沈澱物を再結晶して,以下に示す化学式「化6」で表さ
れる3─ヒドロキシ─N−2’─メチルフェニル─2─
ナフタレンカルボキシアミドを得た。
【0078】
【化6】
【0079】次に,この3─ヒドロキシ─N−2’─メ
チルフェニル─2─ナフタレンカルボキシアミド5g
(0.015mol)をジオキサン200mlに溶か
し,五塩化リン15.6g(0.075mol)を加え
て,50℃で1時間攪拌する。そして,400mlの氷
冷水中にゆっくり流し込み,結晶化させ,その結晶を濾
過する。次に,この結晶を充分乾燥させ,できるだけ微
量のN,N’−ジメチルホルムアミドに溶解させる。次
に,この溶液を0.2N炭酸ナトリウム水溶液に注ぎ,
そのまま0℃で2時間攪拌する。
【0080】次に,この炭酸ナトリウム水溶液中の結晶
を2回吸引濾過して除去し,さらにミニカップ(ミリポ
ア社製)で吸引濾過する。次に,その濾液に3N塩酸を
加え,結晶化させる。次に,この懸濁液を濾過し,十分
蒸留水で洗った後,乾燥させる。これにより,前記化3
式で表される3─ヒドロキシ─N−2’─メチルフェニ
ル─2─ナフタレンカルボキシアミドホスフェート80
0mgを得た。
【0081】次に,得られた3−ヒドロキシ−N−2’
−メチルフェニル−2−ナフタレンカルボキシアミドホ
スフェートを用いて,実施例5と同様にしてマウス腎臓
凍結組織標本上でのホスファターゼの検出を行った。そ
の結果,図22に,偏平状又は粒状の島部分で示される
ように,マウス腎臓凍結組織切片中のホスファターゼの
蛍光シグナルが強い赤色の蛍光として検出された。
【0082】実施例11 本例においては,7─ブロモ─3─ヒドロキシ─N−
2’─ビフェニル─2─ナフタレンカルボキシアミドホ
スフェートエステルを合成し,これを用いて実施例5と
同様にマウス腎臓凍結組織標本上でのホスファターゼの
検出を行った。
【0083】即ち,まず,塩化シアヌール5gをアセト
ン100mlに溶かした後,ナフトールAS−BI(S
igma製)10gを加え,更に10%仮性ソーダ24
mlを加え,3時間攪拌した。そして,3%仮性ソーダ
500mlを勢いよく注ぎ入れ,60℃で5時間攪拌し
た後,更に一晩室温で攪拌する。
【0084】次に,この溶液を濾過し,その濾液中のア
セトンをエバポレーターで除去した。次いで,この溶液
に濃塩酸を加える。そして,析出してきた結晶を酢酸エ
チルで抽出し,脱水した後,乾燥する。これにより,7
─ブロモ─3─ヒドロキシ─N−2─ナフタレンカルボ
ン酸を得た。
【0085】次に,この7─ブロモ─3─ヒドロキシ─
N−2─ナフタレンカルボン酸5g(0.027mo
l)と脱水キシレン40mlと2─アミノビフェニル
(0.023mol)とを,ジムロート冷却管を付けた
100ml容量ナス型フラスコに入れ,80℃で10分
間攪拌する。
【0086】次いで,三塩化リン(0.01mol)を
加え,この混合物を2時間還流する。次に,この反応液
を熱いままデカンテーションして上清液を取る。次い
で,この上清液を4℃に冷却し,沈澱物を析出させる。
そして,この沈澱物を濾過し,キシレン,次いで蒸留水
で洗う。次に,この沈澱物を3%塩酸水溶液に入れ,加
熱した後,濾過し,冷却する。次に,沈澱物を熱水で洗
い,乾燥する。次に,この沈澱物を再結晶して,化学式
「化7」で表される7─ブロモ─3─ヒドロキシ─N−
2’─ビフェニル─2─ナフタレンカルボキシアミドを
得た。
【0087】
【化7】
【0088】次に,この7─ブロモ─3─ヒドロキシ─
N−2’─ビフェニル─2─ナフタレンカルボキシアミ
ド4g(0.01mol)をジオキサン120mlに溶
かし,五塩化リン11.26g(0.05mol)を加
えて,50℃で1時間攪拌する。そして,250mlの
氷冷水にゆっくり流し込み,結晶化させ,その結晶を濾
過する。この結晶を十分乾燥させた後,できるだけ微量
のN,N’─ジメチルホルムアミドに溶解させる。
【0089】次いで,この溶液を0.2N炭酸ナトリウ
ム水溶液に注ぎ,そのまま0℃で2時間攪拌する。そし
て,その間に析出した結晶を2回吸引濾過した。次い
で,ミニカップ(ミリポア社製)で吸引濾過し,そのろ
液にNHClを加え,結晶化させた。次に,この懸濁液
を吸引濾過し,得られた結晶を乾燥させた。これによ
り,「化8」で表される7─ブロモ─3─ヒドロキシ─
N−2’─ビフェニル─2─ナフタレンカルボキシアミ
ドホスフェートエステル1.19gを得た。
【0090】
【化8】
【0091】次に,得られた7−ブロモ−3−ヒドロキ
シ−N−2’−ビフェニル−2−ナフタレンカルボキシ
アミドホスフェートエステルを用いて,実施例5と同様
にしてマウス腎臓凍結組織標本上でのホスファターゼの
検出を行った。その結果,実施例5の同様に,図23
,偏平状又は粒状の島部分で示されるように,マウス
腎臓凍結組織切片中のホスファターゼの蛍光シグナルが
強い赤色の蛍光として検出された。
【0092】実施例12 本例においては,実施例5と同様の方法により,マウス
腎臓凍結組織標本中のホスファターゼを検出した場合の
diffusion度合及びアゾ色素の比蛍光強度,励
起波長(λex),蛍光波長(λem)を測定した。本
検出方法においては,図24に示すごとく,2′−ナフ
トールAS類リン酸体としてHNPPを2種類のジアゾ
ニウム塩と反応させた(試料1,2)。これらのジアゾ
ニウム塩は,ベンゼン環の2位モノ置換体である。
【0093】また,比較例として,ジアゾニウム塩にお
けるベンゼン環の4位の水素(H)が塩素(Cl)に置
換されたもの(試料3)と,2位及び5位の水素がC6
5とOCH3 に置換されたもの(試料4)と,2位及
び4位の水素がCH3 とBrに置換されたもの(試料
5)とについても,上記と同様の測定を行なった。
【0094】その結果を図25に示した。図25中,
「X3 」は,図24に示すごとく,アゾ色素において,
アゾ基に結合したベンゼン環及び該ベンゼン環の側鎖を
示す。「Ph」はC6 5 (フェニル基)を示す。「λ
ex」は,励起波長を示す。「λem」は,蛍光波長を
示す。「比FL」は,相対比蛍光強度を示し,次の実施
例13における試料6を1とし,本例の試料1〜5と比
較した。また,「diffusion」は,組織標本中
での蛍光領域の拡散を示し,「△」は中程度の拡散を,
「×」は拡散の程度が大きいことを示す。
【0095】同図より,本発明にかかる試料1,2のよ
うに,ベンゼン環の2位にフェニル基又はメチル基を有
するジアゾニウム塩は,比FLが高く,diffusi
onも全くなかった。それに比較して試料3〜5は,比
FLも弱くdiffusionも見られた。この結果か
ら2位のみへのモノ置換が構造的に良いことが分かる。
【0096】実施例13 本例においては,実施例10にかかる方法により,マウ
ス腎臓凍結標本中のホスファターゼを検出した場合のd
ifusion度合い,及びアゾ色素の励起波長,蛍光
波長,相対比蛍光強度を測定した。本検出方法において
は,図26に示すごとく,2′−ナフトールAS類リン
酸体としてHMNPPを2種類のジアゾニウム塩と反応
させた(試料6,7)。
【0097】また,比較例として,ジアゾニウム塩にお
けるベンゼン環の4位の水素基がClに置換されたもの
(試料8)と,2位及び5位の水素がC6 5 とOCH
3 に置換されたもの(試料9)と,2位及び4位の水素
基がCH3 とBrに置換されたもの(試料10)とにつ
いても,上記と同様の測定を行った。
【0098】その結果を,実施例12の図25と同様
に,図27に示した。また,「比FL」は,試料6を1
とし,他の試料7〜10と比較した。同図より,本発明
のように,ジアゾニウム塩のベンゼン環の2位がフェニ
ル基,メチル基であるものはdiffusionが少な
かった。それに比べて比較例としての試料8〜9は,か
なりdiffusionしていた。この結果より2位の
みへのモノ置換が構造的には良いことが分かる。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の,HNPPと2−ビフェニルジアゾニ
ウムクロライドとの反応を示す説明図。
【図2】本発明の,HNPPと4−クロロ−2−トルエ
ンジアゾニウムクロライドとの反応を示す説明図。
【図3】本発明の,HNMPPとジアゾニウム塩との反
応を示す説明図。
【図4】実施例1の,HNPPとジアゾニウム塩(2−
ビフェニルジアゾニウムクロライド)とを用いることに
より,ホスファターゼが検出されたマウス腎臓組織の顕
微鏡写真(倍率100倍)に示された,生物の形態写
真。
【図5】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(4−
メトキシ−2−ビフェニルジアゾニウムクロライド)と
を用いることにより,ホスファターゼが検出されたマウ
ス腎臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,
生物の形態写真。
【図6】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(3−
ビフェニルジアゾニウムクロライド)とを用いることに
より,ホスファターゼが検出されたマウス腎臓組織の顕
微鏡写真(倍率100倍)に示された,生物の形態写
真。
【図7】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(4−
メトキシ−3−ビフェニルジアゾニウムクロライド)と
を用いることにより,ホスファターゼが検出されたマウ
ス腎臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,
生物の形態説明図。
【図8】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(4−
クロロ−2−トルエンジアゾニウムクロライド)とを用
いることにより,ホスファターゼが検出されたマウス腎
臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,生物
の形態写真。
【図9】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(2−
トルエンジアゾニウムクロライド)とを用いることによ
り,ホスファターゼが検出されたマウス腎臓組織の顕微
鏡写真(倍率100倍)に示された,生物の形態写真。
【図10】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(3
−ブロモ−6−トルエンジアゾニウムクロライド)とを
用いることにより,ホスファターゼが検出されたマウス
腎臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,生
物の形態写真。
【図11】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(3
−ブロモ−4−トルエンジアゾニウムクロライド)とを
用いることにより,ホスファターゼが検出されたマウス
腎臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,生
物の形態写真。
【図12】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(2
−メトキシベンゼンジアゾニウムクロライド)とを用い
ることにより,ホスファターゼが検出されたマウス腎臓
組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,生物の
形態説明図。
【図13】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩
(2,4−ジメトキシベンゼンジアゾニウムクロライ
ド)とを用いることにより,ホスファターゼが検出され
たマウス腎臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示さ
れた,生物の形態写真。
【図14】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(ベ
ンゾチアゾールジアゾニウムクロライド)とを用いるこ
とにより,ホスファターゼが検出されたマウス腎臓組織
の顕微鏡写真(倍率100倍)に示された,生物の形態
写真。
【図15】実施例2の,HNPPとジアゾニウム塩(2
−メトキシ−3−ジベンゾフランジアゾニウムクロライ
ド)とを用いることにより,ホスファターゼが検出され
たマウス腎臓組織の顕微鏡写真(倍率100倍)に示さ
れた,生物の形態写真。
【図16】実施例3の,HNPPとジアゾニウム塩(F
ast Red B(green))とを用いることに
より,ホスファターゼが検出されたマウス腎臓組織の顕
微鏡写真(倍率100倍)に示された,生物の形態写
真。
【図17】比較例1の,Naphthol AS/MX
Phosphateとジアゾニウム塩(2−ビフェニ
ルジアゾニウムクロライド)とを用いることにより,ホ
スファターゼが検出されたマウス腎臓組織の顕微鏡写真
(倍率100倍)に示された,生物の形態説明図。
【図18】実施例5の,HNPPと2−ビフェニルジア
ゾニウムクロライドとを用いることにより,ホスファタ
ーゼが検出されたマウス腎臓凍結組織の顕微鏡写真(倍
率100倍)に示された,生物の形態写真。
【図19】実施例7の,HNPPと2−ビフェニルジア
ゾニウムクロライドとを用いることにより,ホスファタ
ーゼが検出されたマウス肝臓凍結組織の顕微鏡写真(倍
率100倍)に示された,生物の形態説明図。
【図20】実施例8の,HNPPと2−ビフェニルジア
ゾニウムクロライドとを用いることにより,ホスファタ
ーゼが検出されたヒト中期染色体におけるαサテライト
DNA(マルチコピー)の顕微鏡写真(倍率100倍)
に示された,生物の形態説明図。
【図21】実施例9の,HNPPと2−ビフェニルジア
ゾニウムクロライドとを用いることにより,ホスファタ
ーゼが検出されたヒト染色体における単一コピー遺伝子
(c−myc,cDNA 2.4kb)の顕微鏡写真
(倍率100倍)に示された,生物の形態説明図。
【図22】実施例10の,HNMPP(3−ビドロキシ
−N−2′−メチルフェニル−2−ナフタレンカルボキ
シアミドホスフェート)と2−ビフェニルジアゾニウム
クロライドとを用いることにより,ホスファターゼが検
出されたマウス腎臓凍結組織の顕微鏡写真(倍率100
倍)に示された,生物の形態写真。
【図23】実施例11の,7−ブロモ−3−ヒドロキシ
−N−2′−ビフェニル−2−ナフタレンカルボキシア
ミドホスフェートエステルと2−ビフェニルジアゾニウ
ムクロライドとを用いることにより,ホスファターゼが
検出されたマウス腎臓凍結組織の顕微鏡写真(倍率10
0倍)に示された,生物の形態写真。
【図24】実施例12の,HMPPと各種ジアゾニウム
塩との反応を示す説明図。
【図25】実施例12の,HMPPと各種ジアゾニウム
塩とを用いてマウス腎臓凍結組織中のホスファターゼの
diffusion度合い,アゾ色素のλex,λem
の値を示す説明図。
【図26】実施例13の,HMNPPと各種ジアゾニウ
ム塩との反応を示す説明図。
【図27】実施例13の,HMNPPと各種ジアゾニウ
ム塩とを用いてマウス腎臓凍結組織中のホスファターゼ
のdiffusion度合い,アゾ色素のλex,λe
mの値を示す説明図。

Claims (6)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 ホスファターゼに,下記の「化1」の一
    般式に示す2′−ナフトールAS類リン酸体を反応させ
    て,該2′−ナフトールAS類リン酸体にジアゾニウム
    塩をカップリングさせてアゾ色素を得る色素生成工程
    と,該アゾ色素に励起光を照射する励起工程と,励起光
    の照射により発生する蛍光を検出する検出工程よりな
    り,上記2′−ナフトールAS類リン酸体の2′置換基
    1 は,フェニル基,メチル基,イソプロピル基,又は
    メトキシ基のいずれかであることを特徴とするホスファ
    ターゼの検出方法。 【化1】
  2. 【請求項2】 請求項1において,上記ホスファターゼ
    は,組織中もしくは細胞中に存在していることを特徴と
    するホスファターゼの検出方法。
  3. 【請求項3】 請求項1,又は2において,上記ホスフ
    ァターゼは,核酸プローブ上にあることを特徴とするホ
    スファターゼの検出方法。
  4. 【請求項4】 請求項3において,上記核酸プローブ
    は,組織中もしくは細胞中のRNA,又は染色体DNA
    とハイブリダイゼーションしていることを特徴とするホ
    スファターゼの検出方法。
  5. 【請求項5】 請求項1において,上記ジアゾニウム塩
    は,2─ビフェニルジアゾニウムクロライド,4─メト
    キシ─2─ビフェニルジアゾニウムクロライド,3─ビ
    フェニルジアゾニウムクロライド,4─メトキシ─3─
    ビフェニルジアゾニウムクロライド,2─トルエンジア
    ゾニウムクロライド,4─クロロ─2─トルエンジアゾ
    ニウムクロライド,3─ブロモ─6─トルエンジアゾニ
    ウムクロライド,3─ブロモ─4─トルエンジアゾニウ
    ムクロライド,2─メトキシベンゼンジアゾニウムクロ
    ライド,2,4─ジメトキシベンゼンジアゾニウムクロ
    ライド,3─クロロ─4,6─ジメトキシベンゼンジア
    ゾニウムクロライド,2─ブロモベンゼンジアゾニウム
    クロライド,3─アセトアミドベンゼンジアゾニウムク
    ロライド,ナフタレンジアゾニウムクロライド,3─ヒ
    ドロキシ─2─ナフタレンジアゾニウムクロライド,2
    ─アントラセンジアゾニウムクロライド,2’,4’−
    ジメトキシ─4─スチルベンジアゾニウムクロライド,
    ベンゾチアゾールジアゾニウムクロライド,5─ジエチ
    ルアミノスルフォニル─2─メトキシベンゼンジアゾニ
    ウムクロライド,4─メトキシ─2─ニトロジアゾニウ
    ムクロライド,2─メトキシ─4─ニトロベンゼンジア
    ゾニウム塩,p−ニトロベンゼンジアゾニウムテトラフ
    ルオロボーレイト,2─メトキシ─5─クロロベンゼン
    ジアゾニウムクロライド,及び2─メトキシ─3─ジベ
    ンゾフランジアゾニウム塩のグループから選ばれたいず
    れか1種以上のジアゾニウム化合物であることを特徴と
    するホスファターゼの検出方法。
  6. 【請求項6】 請求項1において,上記2′−ナフトー
    ルAS類リン酸体は,そのナフタレン環の7位に,B
    r,フェニル基,メチル基,及びイソプロピル基のグル
    ープから選ばれたいずれかの置換基を有することを特徴
    とするホスファターゼの検出方法。
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