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JP2895641B2 - Animal cell growth promoter and animal cell growth method using the same - Google Patents
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JP2895641B2 - Animal cell growth promoter and animal cell growth method using the same - Google Patents

Animal cell growth promoter and animal cell growth method using the same

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JP2895641B2
JP2895641B2 JP3033805A JP3380591A JP2895641B2 JP 2895641 B2 JP2895641 B2 JP 2895641B2 JP 3033805 A JP3033805 A JP 3033805A JP 3380591 A JP3380591 A JP 3380591A JP 2895641 B2 JP2895641 B2 JP 2895641B2
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、2‐(9‐メチルデシ
ル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾルシンを含有す
る動物細胞増殖促進及びそれを使用した動物細胞増殖
方法に関する。
The present invention relates to 2- (9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) animal cell growth promoting agent containing the resorcin and on animal cell growth method using the same.

【0002】[0002]

【従来の技術】細胞の増殖は単に栄養分を補給するだけ
では行え得ず細胞増殖因子が存在しなければならない。
従来、この目的で動物細胞の増殖に使用されてきたのは
主として牛胎児血清等の血清である。しかしながら、血
清中には複数の細胞増殖因子が存在すると推定されてお
り、その大多数は未知の成分である。従って、血清中の
特定の成分の含有量を検査して製品の細胞増殖活性を決
定することは、現時点では不可能であり、製品によって
品質が一定しないという問題がある。また、単離、精製
された細胞増殖因子も存在するが、極めて高価であり、
これを多量に使用するのは現実的ではない。それ故、化
学構造が特定されている結果、品質の検査が容易であ
り、且つ、安価に供給し得る細胞増殖促進の開発が望
まれているのである。
2. Description of the Related Art Cell growth cannot be achieved by merely supplementing nutrients, and cell growth factors must be present.
Conventionally, serum such as fetal calf serum has been mainly used for growing animal cells for this purpose. However, it is estimated that there are multiple cell growth factors in serum, the majority of which are unknown components. Therefore, it is not possible at present to determine the cell proliferation activity of a product by examining the content of a specific component in serum, and there is a problem that the quality is not constant depending on the product. There are also isolated and purified cell growth factors, which are extremely expensive,
It is not practical to use this in large quantities. Therefore, as a result of the fact that the chemical structure is specified, there is a demand for the development of a cell growth promoter that can be easily inspected for quality and can be supplied at low cost.

【0003】本発明の主題である2‐(9‐メチルデシ
ル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾルシンは、Che
m. Ber. 112, 1841−1848 (1979) に開示されている
が、その細胞増殖促進作用については一切言及されてい
ない。
[0003] The subject of the present invention, 2- (9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcinol, is
m. Ber. 112, 1841-1848 (1979), but makes no mention of its cell growth promoting action.

【0004】[0004]

【発明が解決すべき課題】本発明の目的は、安定した品
質を有し、且つ、安価に供給し得る動物細胞増殖促進
及びそれを使用した動物細胞増殖方法を提供することに
ある。
SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to provide an animal cell growth promoting agent having a stable quality and which can be supplied at a low cost, and an animal cell growing method using the same. It is in.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明は、2‐(9‐メ
チルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾルシン
を含有する動物細胞増殖促進、及び培地中に2‐(9
‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾル
シンを添加する動物細胞増殖方法の発明である。
The present invention SUMMARY OF] is 2- (9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) animal cell growth promoting agent containing resorcinol, and in the medium 2- (9
The present invention relates to a method for growing animal cells, which comprises adding (-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcinol.

【0006】本発明者らは、血清に代わる、または血清
と共に使用することにより血清の使用量を減少させるこ
とのできる物質を鋭意探究したところ、公知物質である
2‐(9‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチ
ル)レゾルシン(以下、活性物質という)にそのような
作用があることを見出し、本発明を完成するに至った。
本発明の活性物質は、従来、抗生物質としての作用につ
いて検討された物質であるが、かかる物質に細胞増殖促
進作用が確認されたことは極めて意外であった。
The present inventors have intensively searched for a substance which can reduce the amount of serum used in place of or in combination with serum, and found that a known substance, 2- (9-methyldecyl) -5, was used. -It has been found that-(4-methylpentyl) resorcinol (hereinafter referred to as an active substance) has such an effect, and the present invention has been completed.
The active substance of the present invention has been conventionally studied for its action as an antibiotic, but it was extremely surprising that such substance was confirmed to have a cell growth promoting action.

【0007】以下、本発明を詳しく説明する。本発明の
活性物質によって増殖が促進される動物細胞としては、
例えば、マウス‐マウスハイブリドーマ(4E2,NS
‐1,2A5)、マウスミエローマ(NS‐1,P3V
1)、マウス白血病細胞P388等の浮遊性細胞、マウ
ス繊維芽細胞NIH3T3細胞、Hela細胞、L‐9
29、BALB3T3細胞、KB細胞等の付着性細胞、
好ましくはマウス繊維芽細胞NIH3T3細胞が挙げら
れる。
Hereinafter, the present invention will be described in detail. Animal cells whose growth is promoted by the active substance of the present invention include:
For example, mouse-mouse hybridomas (4E2, NS
-1,2A5), mouse myeloma (NS-1, P3V
1), floating cells such as mouse leukemia cell P388, mouse fibroblast NIH3T3 cells, Hela cells, L-9
29, adherent cells such as BALB3T3 cells, KB cells,
Preferably, mouse fibroblast NIH3T3 cells are used.

【0008】本発明の方法に使用することのできる培地
は、増殖される動物細胞との相性を有するものであれ
ば、特に限定されず、市販の基本培地であっても、ま
た、これらを適宜改変したものであってもよい。具体的
な基本培地としては、例えば、MEM培地、イスコフ培
地、RPM11640培地、Ham's F‐12培地、ダル
ベッコ変法イーグル培地、ダルベッコ改変MEM培地、
10%FBS加イスコフ改変ダルベッコ培地、好ましく
はダルベッコ変法イーグル培地が挙げられ、これらは単
独で使用しても2種以上を組み合わせて使用してもよ
い。通常、これら培地には、無菌状態を維持するため、
適当な抗性物質が添加され、また、pHを一定に維持す
るため、適当な緩衝剤が添加される。添加される抗性物
質の具体例としては、例えば、ペニシリン、ストレプト
マイシン等が挙げられ、添加量はペニシリンの場合に
は、100,000UNIT/L、ストレプトマイシンの場
合には、100mg/Lが好ましい。これらは単独で使
用しても2種以上を組み合わせて使用してもよい。ま
た、緩衝剤の具体例としては、炭酸水素ナトリウム等が
挙げられる。
[0008] The medium that can be used in the method of the present invention is not particularly limited as long as it has compatibility with animal cells to be grown. It may be modified. Specific basic media include, for example, MEM medium, Iskov medium, RPM11640 medium, Ham's F-12 medium, Dulbecco's modified Eagle medium, Dulbecco's modified MEM medium,
Iskov-modified Dulbecco's medium supplemented with 10% FBS, preferably Dulbecco's modified Eagle's medium, may be used alone or in combination of two or more. Usually, these media contain
Appropriate antimicrobial substances are added and appropriate buffers are added to maintain the pH constant. Specific examples of the added antimicrobial substance include, for example, penicillin, streptomycin and the like. The amount of addition is preferably 100,000 UNIT / L for penicillin and 100 mg / L for streptomycin. These may be used alone or in combination of two or more. Further, specific examples of the buffer include sodium hydrogen carbonate and the like.

【0009】活性物質の添加量は、培養する動物細胞に
あわせて選定するのが望ましいが、十分な細胞増殖促進
作用を発揮し得、且つ、培養系に悪影響を及ぼさない量
であれば、特に限定されない。一般的には、例えば、培
養液中の濃度が0.05〜5mg/ml、好ましくは
0.1〜1.0mg/mlとなる量が添加される。ダル
ベッコ変法イーグル培地中でマウス繊維芽細胞NIH3
T3細胞を増殖する場合は、0.1〜1.0mg/ml
で良好な結果が得られる。活性物質の添加に際しては、
溶液で添加するのが好ましく、使用する溶媒は、活性物
質を溶解する溶媒であって、且つ、培養液中と相溶性の
ある溶媒であれば特に限定されない。具体的には、メタ
ノール、ジメチルスルホキシド、アセトン、好ましくは
アセトンが挙げられる。これらは単独で使用しても2種
以上を組み合わせて使用してもよい。かかる溶媒は、培
養液全量に対して2重量%以下の濃度となるよう使用す
るのが好ましい。
The amount of the active substance to be added is preferably selected according to the animal cells to be cultured. Not limited. Generally, for example, an amount is added so that the concentration in the culture solution becomes 0.05 to 5 mg / ml, preferably 0.1 to 1.0 mg / ml. Mouse fibroblast NIH3 in Dulbecco's modified Eagle's medium
When growing T3 cells, 0.1 to 1.0 mg / ml
Gives good results. When adding the active substance,
The solvent is preferably added as a solution, and the solvent used is not particularly limited as long as it is a solvent that dissolves the active substance and is compatible with the culture solution. Specifically, methanol, dimethyl sulfoxide, acetone, and preferably acetone are mentioned. These may be used alone or in combination of two or more. Such a solvent is preferably used so as to have a concentration of 2% by weight or less based on the total amount of the culture solution.

【0010】本発明は特定の活性物質に関するものであ
るが、かかる物質が主要な有効成分となっている限り、
本発明の目的を損なわない範囲で、任意に他の補助成分
を含んでも差し支えない。代表的な補助成分としては、
例えば、低密度リポ蛋白質等の栄養剤、インシュリン、
トランスフェリン、リノレイン酸、セレニウム、牛血清
アルブミン等の栄養補助剤等が挙げられる。
The present invention relates to certain active substances, but as long as such substances are the main active ingredients,
Other auxiliary components may be optionally included as long as the object of the present invention is not impaired. Representative auxiliary ingredients include:
For example, nutrients such as low-density lipoprotein, insulin,
Nutritional supplements such as transferrin, linoleic acid, selenium, and bovine serum albumin.

【0011】本発明の活性物質の製造は、有機化学的合
成法及び微生物を利用した生物学的方法のいずれによっ
ても行うことができる。前者の方法としては、例えば、
Chem. Ber. 112, 1841−1848 (1979) に記載された方法
がある。これは、3,5‐ジメトキシベンズアルデヒド
を3‐メチルブチルマグネシウムブロマイドとのグリニ
ャール反応に付し、生成物を水素化して、5‐(4‐メ
チルペンチル)レゾルシンジメチルエーテルを製造し、
次いで、これをN‐メチルホルムアニリドでホルミル化
して、4‐(4‐メチルペンチル)‐2,6‐ジメトキ
シベンズアルデヒドとし、8‐メチルノニルマグネシウ
ムブロマイドとのグリニャール反応及び水素化反応を経
て本発明の活性物質のエーテル体を得、これを加水分解
する方法である。一方、後者の方法は、サイトファーガ
・ヤンソニエ(Cytophaga Jhnsonae )(AJ1258
9)(FERM P‐12001)を生産菌とし、これ
をカジトン培地中で培養し、得られた菌体から目的物質
を適当な溶媒で抽出する方法である。いずれの方法にお
いても、得られた活性物質を更に精製して使用する等は
任意である。
The production of the active substance of the present invention can be carried out by either an organic chemical synthesis method or a biological method using a microorganism. As the former method, for example,
Chem. Ber. 112, 1841-1848 (1979). This involves subjecting 3,5-dimethoxybenzaldehyde to a Grignard reaction with 3-methylbutylmagnesium bromide and hydrogenating the product to produce 5- (4-methylpentyl) resorcinol dimethyl ether,
Next, this is formylated with N-methylformanilide to give 4- (4-methylpentyl) -2,6-dimethoxybenzaldehyde, which is subjected to a Grignard reaction with 8-methylnonylmagnesium bromide and a hydrogenation reaction of the present invention. This is a method in which an ether form of the active substance is obtained and hydrolyzed. On the other hand, the latter method is based on Cytophaga Jhnsonae (AJ1258).
9) This is a method in which (FERM P-12001) is used as a production bacterium, which is cultured in a kazitone medium, and the target substance is extracted from the obtained cells with an appropriate solvent. In any method, it is optional to further purify and use the obtained active substance.

【0012】本発明の活性物質を使用した動物細胞の増
殖は、例えば、以下のようにして行うことができる。ま
ず、血清を含有する培地中、本発明の活性物質を用いて
増殖しようとする細胞をセミコンフルエント(Semiconf
luent )の状態まで生育(第1次培養)させる。次い
で、これを同血清を含有する培地中に5,000〜5
0,000個/ml、好ましくは10,000〜30,
000個/mlの濃度で播種し、第2次培養に付する。
ここで、第1次培養及び第2次培養において培地中に含
有せしめる血清としては、牛胎児血清、馬血清、牛血
清、ヒト血清、好ましくは牛胎児血清を挙げることがで
きる。第1次培養における培地中での血清の濃度は、5
〜20%、好ましくは8〜12%であり、これに対し、
第2次培養に使用する血清の濃度は第1次培養における
使用量の5〜20%、好ましくは10%である。例え
ば、ダルベッコ変法イーグル培地でマウス繊維芽細胞N
IH3T3細胞を増殖する場合、第1次培養における牛
胎児血清の濃度が10%である場合に第2次培養では1
%でよい。この第2次培養を常法により約2〜24時間
行った段階で、本発明の活性物質を、好ましくは溶液で
添加する。溶液で添加する場合には、活性物質の溶解に
使用した溶媒の濃度が上述のように培養液全量に対して
2重量%以下のになるよう、添加すべき活性物質の量と
溶解性とを考慮する必要がある。活性物質の添加は、一
括添加、逐次添加のいずれであってもよい。活性物質添
加後の培養条件は特別なものではなく、例えば、温度3
6〜37℃、pH7.1〜7.4、好ましくは5%CO
2 下で行えばよい。培養後は、その細胞の使用目的に応
じて常法により処理すればよい。尚、本発明の活性物質
は、単層培養、懸濁培養、更にそれらの改良法のいずれ
にも適用できることはいうまでもよい。
The propagation of animal cells using the active substance of the present invention can be carried out, for example, as follows. First, cells to be proliferated using the active substance of the present invention in a medium containing serum are semiconfluent (Semiconfluent).
luent) (primary culture). Then, this was added to a medium containing the same serum for 5,000 to 5 times.
10,000 / ml, preferably 10,000-30,
The cells are seeded at a concentration of 000 cells / ml and subjected to a secondary culture.
Here, examples of the serum to be contained in the medium in the primary culture and the secondary culture include fetal calf serum, horse serum, bovine serum, human serum, and preferably fetal calf serum. The serum concentration in the medium in the primary culture was 5
-20%, preferably 8-12%, whereas
The concentration of serum used in the secondary culture is 5 to 20%, preferably 10%, of the amount used in the primary culture. For example, mouse fibroblasts N in Dulbecco's modified Eagle's medium
When the IH3T3 cells are expanded, the concentration of the fetal bovine serum in the primary culture is 10% and the concentration in the secondary culture is 1%.
% May be sufficient. At the stage where this secondary culture is carried out for about 2 to 24 hours by a conventional method, the active substance of the present invention is added, preferably in the form of a solution. When the solution is added as a solution, the amount of the active substance to be added and the solubility are adjusted so that the concentration of the solvent used for dissolving the active substance is 2% by weight or less based on the total amount of the culture solution as described above. It needs to be considered. The addition of the active substance may be either batch addition or sequential addition. The culture conditions after the addition of the active substance are not particularly limited.
6-37 ° C, pH 7.1-7.4, preferably 5% CO
You can do it under 2 . After culturing, the cells may be treated according to a conventional method according to the purpose of use. It goes without saying that the active substance of the present invention can be applied to any of monolayer culture, suspension culture, and further improved methods thereof.

【0013】本発明の活性物質は、動物細胞の増殖を促
進するものであり、これを培地に添加することにより、
血清の使用量を減少させることができるものである。例
えば、上述のダルベッコ変法イーグル培地でのマウス繊
維芽細胞NIH3T3細胞の増殖の場合に、本発明の活
性物質の使用により、10%血清下と同等の細胞増殖を
行うのに、約1/10の牛胎児血清で済む。
[0013] The active substance of the present invention promotes the growth of animal cells.
The use of serum can be reduced. For example, in the case of the growth of mouse fibroblast NIH3T3 cells in the above Dulbecco's modified Eagle's medium, the use of the active substance of the present invention requires about 1/10 Of fetal calf serum.

【0014】[0014]

【実施例】実施例1 活性物質の製造 容量0.5Lの坂口フラスコに2%カジトン培地(Difc
o 社製;0.2%MgCl2 、pH7.2))0.1L
を張り込み、サイトファーガ・ヤンソニエ(AJ125
89)(FERM P‐12001)を1白金耳接種し
て、28℃で40時間振盪培養した。次いで、この培養
液全量を同培地1Lを張り込んだ容量5Lの坂口フラス
コに移し、28℃で2日間振盪培養した。得られた種母
液を同培地20Lを張り込んだ容量30Lのジャーファ
ーメンターに接種し、回転数210rpmの撹拌下、
0.25V/V/分の流速で通気しながら、28℃で2
4時間培養し、遠心分離して菌体220g(湿菌体量)
を得た。この間、培地のpHは7.2から8.3に上昇
した。
EXAMPLES Example 1 Production of Active Substance A 2% kadington medium (Difc) was placed in a 0.5 L Sakaguchi flask.
o 0.2% MgCl 2 , pH 7.2)) 0.1 L
And the site ferga Jansonnier (AJ125
89) One loopful of (FERM P-12001) was inoculated and cultured with shaking at 28 ° C for 40 hours. Next, the entire amount of the culture was transferred to a 5 L Sakaguchi flask into which 1 L of the same medium had been placed, and cultured with shaking at 28 ° C. for 2 days. The obtained seed mother liquor was inoculated into a jar fermenter having a capacity of 30 L in which 20 L of the same medium had been placed, and the mixture was stirred at a rotation speed of 210 rpm.
While venting at a flow rate of 0.25 V / V / min.
After culturing for 4 hours, centrifuged and the cells 220 g (wet cell mass)
I got During this time, the pH of the medium rose from 7.2 to 8.3.

【0015】得られた菌体を室温にてアセトン中に一夜
浸漬し、菌体中の産生物を抽出した。抽出後、これを濾
過して不溶物を除去したのち、減圧下にアセトンを留去
し、酢酸エチルに再溶解した。この溶液を再度、濾過、
濃縮し、粗抽出物約2gを得た。次いで、該粗抽出物を
シリカゲル(ワコーゲルC‐200;和光純薬社製)を
担体とした2回のカラムクロマトグラフィー(展開溶
媒:1回目;クロロホルム、2回目;n‐ヘキサン:酢
酸エチル=15:1)に付したあと、更にセファデック
スLH‐20を用いてカラムクロマトグラフィー(展開
溶媒;クロロホルム:メタノール=1:1)に付し、淡
黄色油状物約30mgを得た。
The obtained cells were immersed in acetone at room temperature overnight to extract the products in the cells. After extraction, this was filtered to remove insolubles, then acetone was distilled off under reduced pressure, and the residue was redissolved in ethyl acetate. This solution was filtered again,
Concentration gave about 2 g of crude extract. Then, the crude extract was subjected to two column chromatography using silica gel (Wakogel C-200; manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) as a carrier (developing solvent: first; chloroform, second; n-hexane: ethyl acetate = 15). : 1), and further subjected to column chromatography (developing solvent; chloroform: methanol = 1: 1) using Sephadex LH-20 to obtain about 30 mg of a pale yellow oil.

【0016】この物質の1 H‐NMR、13C‐NMR、
IR、FAB‐MS及びEI‐MSの各スペクトルか
ら、2‐(9‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペン
チル)レゾルシンであることを確認した。 測定結果:1 H‐NMR 溶媒;重クロロホルム、第1
図参照13 C‐NMR 溶媒;重クロロホルム、第2、3図参照 IR KBrディスク法、第4図参照 高分解能FAB‐MS:m/z=349.3095(M
+H) EI‐MS:m/e=348実施例2 動物細胞の培養 容量50mlの無菌ボトルに牛胎児血清10%を含有し
たダルベッコ変法イーグル培地〔日水製薬(株)製〕5
mlを張り込み、これにマウス繊維芽細胞NIH3T3
細胞を50,000個接種して、37℃、5%CO2
pH7.2の条件で48時間培養した。次いで、牛胎児
血清1%を含有した同培地5mlを張り込んだシャーレ
に、セミコンフルエントまで生育した細胞を20,00
0個/mlの濃度で播き、37℃、5%CO2 、pH
7.2の条件で培養した。2時間後、このシャーレに2
‐(9‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)
レゾルシンを50マイクログラム/mlの濃度で含有す
るメタノール溶液0.1mlを上積添加した。これを3
7℃、5%CO2 、pH7.2の条件で20時間培養し
た。 培養後、培養液全量中での濃度が1マイクロキュ
リー/mlになるように、トリチウムチミジンのPBS
(−)バッファー溶液を添加し、更に、37℃、5%C
2 、pH7.2の条件で1時間培養した。培養後、培
地を除去し、1NNaOH2.5mlを添加して細胞を
溶解した。1時間静置後、6NHCl0.5mlを添加
して液を酸性(pH3)にした。この沈澱物をワットマ
ンGF/cのガラスフィルターで濾取し、5%TCA、
次いでエタノールで洗浄し、乾燥した。 得られた沈澱
物をトルエンの液体シンチレーター用カクテルに入れ、
細胞に取り込まれたトリチウムチミジンの量を測定し
た。
1 H-NMR, 13 C-NMR,
Each spectrum of IR, FAB-MS, and EI-MS confirmed that it was 2- (9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcinol. Measurement results: 1 H-NMR solvent; deuterated chloroform, first
See FIG. 13 C-NMR solvent; deuterated chloroform, see FIGS. 2 and 3 IR KBr disk method, see FIG. 4 High resolution FAB-MS: m / z = 349.3095 (M
+ H) EI-MS: m / e = 348 Example 2 Culture of animal cells Dulbecco's modified Eagle's medium containing 10% fetal bovine serum in a 50 ml sterile bottle [manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.] 5
ml of mouse fibroblast NIH3T3.
50,000 cells were inoculated at 37 ° C., 5% CO 2 ,
Culture was performed for 48 hours under the condition of pH 7.2. Then, cells grown to semi-confluency were placed in a Petri dish filled with 5 ml of the same medium containing 1% fetal calf serum for 20,000 hours.
Seed at a concentration of 0 cells / ml, 37 ° C, 5% CO 2 , pH
The cells were cultured under the conditions of 7.2. Two hours later, this petri dish has 2
-(9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl)
0.1 ml of a methanol solution containing resorcin at a concentration of 50 microgram / ml was added in an upper volume. This is 3
The cells were cultured at 7 ° C., 5% CO 2 , and pH 7.2 for 20 hours. After the cultivation, the tritium thymidine in PBS was adjusted to a concentration of 1 microCurie / ml in the total amount of the culture solution.
(-) A buffer solution was added, and further, at 37 ° C., 5% C
The cells were cultured for 1 hour under the conditions of O 2 and pH 7.2. After the culture, the medium was removed, and 2.5 ml of 1N NaOH was added to lyse the cells. After standing for 1 hour, 0.5 ml of 6N HCl was added to make the solution acidic (pH 3). The precipitate was collected by a Whatman GF / c glass filter, and 5% TCA,
Then washed with ethanol and dried. Put the resulting precipitate in a liquid scintillator cocktail of toluene,
The amount of tritiated thymidine incorporated into the cells was measured.

【0017】第5図は、ダルベッコ変法イーグル培地中
でマウス繊維芽細胞NIH3T3細胞を増殖した場合
の、培養液中の活性物質の濃度とトリチウムチミジンの
取り込み量の関係を図示したものである。
FIG. 5 shows the relationship between the concentration of the active substance in the culture solution and the amount of tritiated thymidine when the mouse fibroblasts NIH3T3 cells were grown in Dulbecco's modified Eagle's medium.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】重クロロホルムを溶媒として測定した2‐(9
‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾル
シンの1 H‐NMRスペクトルチャートである。
FIG. 1: 2- (9) measured using deuterated chloroform as a solvent
1 is a 1 H-NMR spectrum chart of (-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcinol.

【図2】重クロロホルムを溶媒として測定した2‐(9
‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾル
シンの13C‐NMRスペクトルチャートである。
FIG. 2: 2- (9) measured using deuterated chloroform as a solvent
It is a 13 C-NMR spectrum chart of (-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcin.

【図3】重クロロホルムを溶媒として測定した2‐(9
‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾル
シンの13C‐NMRスペクトルチャート及びその部分拡
大チャートである。
FIG. 3 shows 2- (9) measured using deuterated chloroform as a solvent.
It is a 13 C-NMR spectrum chart of (-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcin and a partially enlarged chart thereof.

【図4】KBrディスク法で測定した2‐(9‐メチル
デシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾルシンのI
Rスペクトルチャートである。
FIG. 4. I of 2- (9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcinol measured by KBr disk method
It is an R spectrum chart.

【図5】ダルベッコ変法イーグル培地中でマウス繊維芽
細胞NIH3T3細胞を増殖した場合の、培養液中の2
‐(9‐メチルデシル)‐5‐(4‐メチルペンチル)
レゾルシンの濃度とトリチウムチミジンの取り込み量の
関係を図示したものである。
FIG. 5 shows the results obtained by growing mouse fibroblast NIH3T3 cells in Dulbecco's modified Eagle medium in culture medium.
-(9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl)
2 is a diagram illustrating the relationship between the concentration of resorcinol and the amount of tritiated thymidine incorporated.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 藤岡 耕太郎 大阪府東大阪市御厨栄町1丁目5番7号 ハウス食品工業株式会社内 (72)発明者 瀬戸 治男 東京都八王子市上野町100 (56)参考文献 Chemische Bericht e,Vol.112,No.5,p.1841 −1848(1979) (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12N 5/06 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuing on the front page (72) Inventor Kotaro Fujioka 1-5-7 Mikitei Sakaecho, Higashiosaka-shi, Osaka House Foods Industry Co., Ltd. (72) Inventor Haruo Seto 100 Uenocho, Hachioji-shi, Tokyo (56) References Chemische Berichte, Vol. 112, no. 5, p. 1841 -1848 (1979) (58) Field surveyed (Int. Cl. 6 , DB name) C12N 5/06

Claims (5)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 2‐(9‐メチルデシル)‐5‐(4‐
メチルペンチル)レゾルシンを含有する動物細胞増殖促
(1) 2- (9-methyldecyl) -5- (4-
Animal cell growth promoting agent containing methylpentyl) resorcinol.
【請求項2】 2‐(9‐メチルデシル)‐5‐(4‐
メチルペンチル)レゾルシンを含有するマウス繊維芽細
胞NIH3T3細胞増殖促進
2. 2- (9-methyldecyl) -5- (4-
Mouse fibroblast NIH3T3 cell growth promoting agent containing methylpentyl) resorcinol.
【請求項3】 培地中に2‐(9‐メチルデシル)‐5
‐(4‐メチルペンチル)レゾルシンを添加する動物細
胞増殖方法。
3. 2- (9-methyldecyl) -5 in a medium.
-A method for growing animal cells, wherein (4-methylpentyl) resorcin is added.
【請求項4】 培地がダルベッコ変法イーグル培地であ
る、請求項3記載の方法。
4. The method according to claim 3, wherein the medium is Dulbecco's modified Eagle medium.
【請求項5】 培地中における2‐(9‐メチルデシ
ル)‐5‐(4‐メチルペンチル)レゾルシンの濃度が
0.1mg/ml〜1.0mg/mlである、請求項3
または4記載の方法。
5. The medium according to claim 3, wherein the concentration of 2- (9-methyldecyl) -5- (4-methylpentyl) resorcin in the medium is 0.1 mg / ml to 1.0 mg / ml.
Or the method of 4.
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