JP2934889B2

JP2934889B2 - 溶剤希釈微小担体の製造方法

Info

Publication number: JP2934889B2
Application number: JP1506883A
Authority: JP
Inventors: ファウンティン，マイクル、ダブルュー
Original assignee: FUAUNTEIN PHARM Inc
Current assignee: FUAUNTEIN PHARM Inc
Priority date: 1988-06-08
Filing date: 1989-06-08
Publication date: 1999-08-16
Anticipated expiration: 2014-08-16
Also published as: HK1007498A1; IL90561A; EP0372070A1; EP0372070A4; CA1340241C; IL90561A0; EP0372070B1; WO1989011850A1; NO180771C; AU2719492A; NO180771B; NO900591D0; DE68927669D1; ATE147622T1; KR900701257A; NO900591L; JPH02504642A; DE68927669T2; AU628355B2; ES2013531A6

Description

【発明の詳細な説明】技術的分野本発明は客分子（パツセンジヤー分子:passenger mol
ecules）を両親媒性担体構造物中に取り込む技術に関す
る。

発明の背景関心のある種種な材料（“客分子”）を捕え込むこと
のできる脂質ベースの小胞を開発するために先行技術で
数多くの試みがなされている。公知の方法では一般に、
捕えられる材料を保持しておく内部空間をもつ脂質２重
層よりなり、リポゾームとして知られている一般に球形
の小胞に帰着した。これらの小胞は機械的攪拌、例えば
超音波処理または押出しを採用している方法により形成
されていた。有機溶剤中の脂質を混合した後、得られる
混合物を乾燥し、ついで客分子の周りをその脂質２重層
が取り囲むように、捕えられるべき客分子と機械的に攪
拌し、再水和する。

この方法により形成されるリポゾームは一般に寸法が
不均一で、生体内への適用のための殺菌が困難である。
これらのリポゾームの安定性即ち貯蔵期間はしばしば非
常に制限される。客分子の捕捉効率は一般に制限されて
いる。この方法は一般に毒性のある、生体適合性のない
溶剤を必要とする。先行の方法はその場でのエーロゾル
化またリポゾームの形成に適用できない。この方法によ
り形成される賦形薬は一般に、それが熱に不安定である
ので、濾過によつてのみ無菌化が出来るかもしれない。
さらに先行の方法は或る客分子の捕捉に対しては受容出
来る程には適応性がない。

本発明の要約両親媒性賦形薬（以下“溶剤希釈微小担体”または
“SDMC"と称す）が、球状２重層によりつくられる空間
内ではなくて、客分子を２重層それ自体の中に捕捉、ま
たは２重層の成分と会合して捕捉することになる方法に
より製造できることが発見された。この方法において
は、溶剤が両親媒性の材料と客分子とに混合される。そ
れから少量の水を加えて混濁した溶液を形成させる。そ
れから追加の溶剤を加え、光学的に透明な溶液、また
“形成された溶液”と称す、を形成させる。組織化の段
階は、前の段階の後直にまたは同時に行う。この組織化
にはエーロゾル化、水性溶液への希釈あるいは乾燥と再
水和とが含まれていてもよい。この両親媒性賦形薬また
は溶剤希釈微小担体（SDMC）はその組織化方法の採用に
より形成される。この方法で形成される賦形薬は実質的
な寸法の均一性を示し、無菌化濾過、加熱または紫外線
照射により殺菌できる。

この方法は、形成された溶液を製造した後で、延期し
てもよく、その溶液は組織化段階を行うことを希望する
まで有効である。

この新規の方法により形成されるSDMCは広範な範囲の
客分子を捕捉すると云う点で独特である。そのSDMCは広
範な適用範囲をもつている。SDMCを含有するエーロゾル
は例えば客分子が殺虫剤である場合大面積に適用するの
に有利である。他方、エーロゾルはまた薬物および化粧
剤例えば抗生剤またはヘアースプレーの送り出しに適用
できる。この発明の方法はまたその場でのSDMC形成にも
用い得る。形成された溶液またはSDMCは例えば包帯材料
表面に吸着させ、乾燥させてもよい。そのSDMCを水和さ
せると所望の部位に客分子を送り出す。

発泡体包帯材料とSDMCとよりなる持続放出創傷保護包
帯もまた発見された。

発明の詳細な記述以下の実施例において、溶剤希釈微小担体（SDMC）
は、少くとも１つの両親媒性材料例えば界面活性剤〔例
えば生物適合性であり、良好な混合性のある界面活性剤
例えば、これに限定されないが、Tween、Triton、硫酸
ドデシルナトリウム（SDS）、硫酸ラウリルナトリウム
およびオクチルグルコオキシドナトリウム〕、燐脂質、
燐脂質混合物、極性脂質、ステロール、ステロールエス
テル、中性脂質、脂肪酸または他の２重層形成材料を、
客分子（SDMC中に溶解しようとする材料）と共に適当な
溶剤中に溶解することにより調製する。両親媒性材料の
種種な混合物を用いてもよい。ある場合には、燐脂質の
商業的調製物を選ぶのが便利である。大豆ホスフアチド
混合物約75〜97％を包含する調製物を用いてもよい。例
えば、大豆ホスフアチド混合物75〜80％、残りは大豆油
および大豆ホスフアチド混合物95〜97％、残りは大豆油
の商業的調製物が入手できる。これらの特性を持つ商業
的調製物は、例えば商品名称Alcolec S、Alcolec X-tra
AおよびAlcolec LKEの下に販売されている。適当な溶
剤は両親媒性材料と客分子とを溶解できるものから選択
する。一般に、最も好ましい溶剤は低分子量の炭化水素
例えばエタノール、プロパノール、ブタノール、イソプ
ロパノール、クロロホルム、アセトン、塩化メチレンま
たはプロピールグリコールなどである。更にその溶剤は
SDMCの特別な所期の用途にも適当でなければならない。
若し、SDMCが生体内例えば血管内混合物（i.v混合物）
中に用いられるのであれば、溶剤はその適用において毒
性を惹起せずに用いられなければならず、そして一般に
生体適合性で容易に混合できなければならない。他の適
用例えば殺虫剤適用においては溶剤の毒性は重大ではな
くて揮発性がより重要になる。そのような場合にはエー
ロゾル化に際し直に溶剤が揮発することが望ましい。そ
の場での形成、例えば包帯材料を後での再水和のために
含浸する場合は、溶剤が非可燃性であること、速に蒸発
することおよびマトリツクス中に残渣を残留させないこ
とが重要である。塩化メチレンはそのような適用のため
の適当な溶剤の１例である。ある情況においては溶剤の
混合物が適当であつてもよい。客分子は一般に形成され
る２重層中に保持されるかまたはその２重層と会合でき
るどんな材料でもよい。客分子例えば殺菌剤、抗炎症
剤、駆虫剤、染料、放射性標識剤、放射線不透明化合
物、螢光化合物、免疫調節化合物、殺虫剤、蛋白質、糖
タンパク質、リポ蛋白質、ホルモン、神経伝搬剤、抗腫
瘍剤、成長因子、毒素、鎮痛剤、麻酔剤、モノ−および
ポリ−サツカリド、催眠剤、触媒および酵素は用いても
よい物質群の例である。客分子は親油性であることが非
常に好ましいが、若し、それが２重層と会合を形成でき
る（即ち脂質の極性短基）ならば、親水性材料を用いて
もよい。化粧剤または化粧成分例えばヘヤースプレー、
着色剤、染料などはしばしばSDMC中にカプセル化するの
に非常に適している。うがい剤、咽喉スプレー、消毒ス
プレーなどに用いられる薬物もまたSDMCカプセル化の候
補であつてもよい。i.v.混合物または他の挿入法のため
の薬剤または抗腫瘍剤は開示された方法を用いてSDMC中
にカプセル化されてもよい。毒性のある薬剤を含有する
SDMC賦形薬はSDMCを、例えば部位特異性モノクロナール
抗体とカツプリングさせることにより患者に効果的に投
与してもよいと想像される。別に、カプセル化だけで、
カプセル化されない形では投与できない或る薬剤の投与
を効率的または効果的な方法で投与してもよい。

２重層形成材料と客分子と溶剤との混合に引続き、濁
つた溶液形成のため水を約4:1（溶剤対水）から約10:1
（溶剤対水）の比で加える。それから追加の溶剤を約1
5:1（溶剤対水）から約100:1（溶剤対水）までの比ある
いは形成された溶液が光学的に透明になるまで加える。
追加の溶剤は一般的には第１の段階で用いたと同じもの
であるが、所望の結果を達成するのに適当な溶剤の混合
物または異る溶剤であつてもよい。

組織化の段階は直にあるいは形成された溶液の不定の
期間の貯蔵の後のいずれかに行う。組織化段階はエーロ
ゾル化水性溶液への希釈あるいは乾燥と再水和であつて
もよい。エーロゾル化は例えば通常に他の表面に非加圧
型ヘヤースプレー、昆虫殺虫剤などを適用するのに用い
るであろう噴霧器またはトリガーポンプ中に前記の如く
形成された材料を入れることにより簡単に行われる。形
成された溶液を噴霧するに当り、溶液がノズルから離れ
る時、溶液は空気と混合し、揮発性溶剤は蒸発する。

組織化に関する希釈の方法は形成された溶液のアリコ
ートを水の中に希釈する。希釈の時、SDMCが形成され
る。好ましい適当な希釈比は１対10（形成された溶液１
部対水９部）である。希釈比は約1:5から約1:100までに
及んでもよい。

組織化の乾燥と再水和の形は形成された溶液を表面例
えば包帯ガーゼ、タンポン、発泡体保護包帯、避妊用ス
ポンジなどにおき、溶剤を非常に速く蒸発させることに
より行つてもよい。含浸されたガーゼの水和に際し、そ
の場でSDMCが形成され、客分子を例えば創傷の適当な部
位に輸送する機能を遂行できる。

この方法で形成されるSDMC賦形薬は小胞の存在を測定
する光散乱技術を用いて評価してもよい。この技術はSD
MCの寸法の評価にも用いることができる。種種な器機が
細胞または他の粒子の寸法測定および計算のために商業
的に入手できる。Coutler Electronics、Hialeah、Flor
idaから入手できるCoutler粒子分析機はこれに関し有用
であつた。特にCoutler NM4AM多角微小粒子分析機を採
用して成功した。小胞寸法はまた標準のカラムクロマト
グラフィー技術を用いて評価してもよい。SDMCはまたSD
MC調製物の効力を客分子の標準的商業的調製物と比較し
て検査することにより分析する。SDMCについては客分子
の効力に関する標準的検査を用いることにより関心ある
分子がうまくカプセル化していることが判つた。例え
ば、殺虫剤は昆虫を殺す効力、抗生剤は標準的微生物学
的検定における効力が検査される。

SDMCは実質的な寸法均一性を示すことが判つた。その
寸法は客分子と用いた両親媒性材料の本質とによると信
ぜられ、それは１つのSDMCの調製物内において、寸法範
囲が非常にせまいことで示される。この特性は、生体内
薬物放出を含むSDMCのいくかの適用において重要なこと
であると信じられる。

SDMCはまた無菌性が要求される用途への利用を広げ
る、加熱殺菌とコバルト照射殺菌に対し安定であると検
査された。

光学的に透明な溶液は数ケ月の貯蔵安定性があり、そ
れはSDMC形成を後日まで延期させ得る。組織化段階は最
終利用者により多くの適用例えばエーロゾル化による殺
虫剤適用に行われてもよい。

SDMCを発泡体包帯材料中に用いる持続放出創傷保護包
帯が公開された。本発明に適している発泡体包帯材料は
好ましくは、３次元網状組織を形成するためポリオレフ
インと他のポリマー（通常アリール含有ポリマー）との
混合物よりなる橋かけされた発泡体である。この材料の
商業的に入手できる発泡体の例はW.R.Grace ＆ Company
（Lexington,Mass.02173）で市販されているHypol FM
P2002およびWinfield Laboratories,Icn.（P.O.Box8326
16,Richardson,Texas75081）で市販されているKontour
無菌スポンジである。他の発泡体包帯材料もSDMCを載せ
え、創傷部位において動物に無毒であり得る限り用いて
もよく、それが疎水性であつてもよいが好ましくは親水
性である。

持続放出創傷保護包帯を用いる創傷処置方法は治療に
少くとも30分から約７日までを要する創傷の処置に適し
ている。薬物は処置期間に亘り徐徐に放出される。非接
着性の保護包帯材料を発泡体包帯材料に先立つて創傷に
適用されてもよい。

非接着性保護包帯はSDMCが発泡体保護包帯から創傷部
位にまで通過するのに充分な大きさの寸法の孔をマトリ
ツクス中に配置した生体適合性の合成または天然に存在
する繊維から作られるべきである、そのような創傷保護
包帯は幾つかの会社から商業的に入手できる。この型の
保護包帯の例はWinfield Laboratories,Inc.（Richards
on,Texas75083）から入手できるN-Terface間置表面材
料である。

以下の実施例は本発明を具体的に説明しようとするも
ので、その種種な変更態様はその技術に熟練した者には
明らかであり、そのような変更態様は添付の請求範囲に
属するものとして及ぶものとすること、そして実施例は
本発明をよりよく理解する目的のために提出するもの
で、その範囲を限定するものとは解釈しないと理解すべ
きである。

実施例1:ゲンタマイシン含有SDMC 大豆レシチン200mgの試料を無水エタノール5ml中のゲ
ンタマイシンベース20mgと室温で溶解する。水2mlをそ
の溶液に添加するとそれは濁つた懸濁液となる。無水ア
ルコール6mlをその懸濁液に加え、光学的に透明な溶液
を作る。最後の溶液1mlを水性溶液10mlに希釈してSDMC
を形成する。得られた乳白色のSDMC懸濁液をSepharose
CL 4Bカラムを通すクロマトグラフイーによる分離によ
つて特徴づける。そのSDMCは、E.coliの増殖を阻止する
一般的に受入れられているゲンタマイシンベース含有SD
MCの生物検定により測定されるごとく、出発ゲンタマイ
シンベースの事実上100％を捕捉していることが判つ
た。

実施例2:ビタミンＡ含有SDMC 大豆レシチン100mgを無水エタノール2.5ml中のレチノ
ール（ビタミンＡ）10mgと室温で溶解する。水1mlをそ
の溶液に添加し、濁つた（曇つた）懸濁液となる。無水
エタノール3mlをその懸濁液に加え、光学的に透明な溶
液を作る。最終溶液1mlを水性溶液10mlに希釈すること
によりSDMCを形成する。

実施例3:ビタミンＥ含有SDMC ビタミンＡをビタミンＥ（α−トコフエノール）と置
換えることを除き、実施例２の操作に従う。

実施例4:ビタミンD2含有SDMC ビタミンＡをビタミンD2（エルゴカルチフエロール）
と置き換えることを除き、実施例２の操作に従う。

実施例5:ビタミンD3含有SDMC ビタミンＡをビタミンD3（コレカルチフエロール）と
置き換えることを除き、実施例２の操作に従う。

実施例6:ビタミンＫ含有SDMC ビタミンＡをビタミンＫ（２−メチル−３−フイチル
−1,4−ナフトキノン、３−フイチルメナジオン）と置
き換えることを除き、実施例２の操作に従う。

実施例7:スタロール含有SDMC ビタミンＡをスチロール（コレステロール）と置き換
えることを除き、実施例２の操作に従う。

実施例8:殺虫剤含有SDMC 大豆レシチン1gを混合ピレトリン0.2％ w/vとピペロ
ニルブトキシド2.0％ w/vを含有する300mlの溶液（石油
留出物）の中に溶解する。20mlの水をその溶液に添加
し、濁つた（曇りをおびた）懸濁液にする。その懸濁液
に石油留出物300mlを加え、光学的に透明な溶液とす
る。SDMCをトリガーポリプを用い空中において溶液のエ
ーロゾル化及び溶液1mlの水10ml中への希釈により形成
させる。これらの調製物の効力は、SDMCをトリガー噴霧
器を用いてエーロゾル化する場合、あるいは溶液を直接
昆虫にかけた場合、のみ、蟻およびペーパーウオスプを
殺す能力によつて示される。

実施例9:動物浸液としてのSDMC ピペロニルブトキシドとピレトリンとをマラチオンで
置き換えることを除き、実施例８の操作に従う。希釈し
て（200mlを水70lに）て得られた溶液は濁つた溶液で、
それは犬ののみ用浸液として用いられる。

実施例10:植物殺虫噴霧液としてのSDMC ピペロニルブトキシドの出発濃度を0.2％ w/v、混合
ピレトリンのそれを0.02％ w/vと置き換えることを除
き、実施例８の操作に従う。得られた溶液は殺虫能を持
つことが証明され、SDMCを形成するエーロゾル化に際し
て植物の葉を損傷しない。

実施例11:はつか油含有SDMC 大豆レシチン200mgを無水エタノール中のはつか油
（１％ w/v溶液）5ml中に溶解する。水1.5mlを溶液に加
え、濁らせる。その濁つた懸濁液に無水エタノール5ml
を添加して溶解する。水に1:10で希釈すると、SDMCの乳
白濁懸濁液を生ずる。はつか油の捕捉はそのSDMCを単に
溶液中にあるはつか油と比較する食味検定評価により示
される。その評価で、単に溶液中にあるはつか油に較
べ、SDMCの使用により長続きするはつか風味を示した。

実施例12:バニラ含有SDMC はつか油をバニラで置き換えるほか、実施例11の操作
に従う。

実施例13:パインアツプル油含有SDMC はつか油をパインアツプル油に代えるほか、実施例11
の操作の従う。

実施例14:アンズ油含有SDMC はかつ油をアンズ油にかえるほかは実施例11中の操作
に従う。

実施例15:オレンヂ抽出物含有SDMC はつか油をオレンヂ抽出物にかえるほか、実施例11中
の操作に従う。

実施例16:洗顔クレンザー含有SDMC 大豆レシチン200mgをイソプロピルアルコール10ml中1
0％ w/vのサリチル酸に溶解する。水1mlを添加し曇りを
おびた濁つた懸濁液を形成させる。イソプロピルアルコ
ール10mlをその懸濁液に添加し、光学的に透明な溶液と
する。その溶液（1ml）を水10ml中に希釈し、乳白のSDM
C懸濁液とする。その材料を検査して、皮膚面へ良好な
接触時間を示すことが判つた。

実施例17:芳香物質含有SDMC アルコールベースの香料10mlに大豆レシチン200mgを
溶解する。水1mlを溶液に添加し、曇りをおびた懸濁液
とする。その懸濁液を無水エタノール10mlの添加により
溶解する。トリガーポンプを用いるエーロゾル化および
水に1:10w/vでの希釈によりSDMCを形成させる。そのSDM
Cを皮膚へ適用して検査する。その芳香物質は、標準の
調製物が検知するより長く嗅覚により検知できることが
判つた。

実施例18:うがい薬中のSDMC 大豆レシチン300mgを、はつか油1.0％ w/v含有する70
％ w/vアルコール38B 30ml中に溶解する。水3mlをその
溶液に添加し、曇りをおびた懸濁液とする。70％ w/vア
ルコール38B 30mlを懸濁液に加え溶液を形成させる。う
がい薬はうがいする際の唾液への希釈およびうがいに先
立つての溶液の水への1:10 v/vの希釈により検査する。
その結果は、SDMCを欠くうがい薬と比較して、はつか油
のSDMCの風味が口の中に長く残ることが示されている。

実施例19:ヘアースプレーとしてのSDMC 商業的に入手できる液体ヘアースプレー20mlに大豆レ
シチン200mgを添加する。その溶液に水2mlを加え、曇り
をおびた懸濁液とする。商業的に入手できる液体ヘアー
スプレー20mlを懸濁液に加え、光学的に透明な溶液とす
る。その溶液をフインガーポンプを用いエーロゾル化す
ると、ヘアースプレーとしての効果が見られる。

実施例20:SDMC形成溶液の安定性実施例８における記述の如く形成した光学的に透明な
溶液を15ケ月室温に貯蔵し、それが、エーロゾル化また
は水への希釈に際し、蟻、のみおよびペーパーウオスプ
を殺すことで殺虫剤として活性な乳白濁のSDMC懸濁液と
なる光学的に透明な溶液であることを示した。

実施例21:ガーゼパツト保護包帯中のSDMC 実施例１の操作に従い希釈した場合ゲンタマイシンを
捕捉しているSDMCの乳白懸濁液を形成する透明な溶液を
生成させる。その懸濁液をガーゼパツト上にエーロゾル
化する。SDMCをその表面に形成させ、乾燥させる。乾燥
後一般に受入れられている実験室操作を用いる生物検定
でその包帯材料を検査し、活性なゲンタマイシンベース
の存在することが判つた。SDMCがエーロゾル化されてい
るその包帯材料が水で飽和させ、放置する。その水を除
去し、E.Coliを用いる生物検定で検査した場合活性なゲ
ンタマイシンベースを含有するSDMCの乳白懸濁液を生成
させる。

実施例22:タンポン中の殺菌SDMC ガーゼパツトの代りにタンポンを用いる他、実施例21
中に用いたのと同じ操作をする。

実施例23:PCMX（ポリ−クロロ−メタキシレノール）の
捕捉エタノール185mlに水18.5mlを加える。Tween洗剤295m
lをエタノール／水混合物に加える。大豆レシチン50ml
を前記溶液に加える。PCMX165gを加え、攪拌して黄色透
明な溶液を形成させる。その透明黄色のPCMX溶液を水中
1:10に希釈する。この希釈液は安定化したPCMXを含有す
る溶剤希釈微小担体の光学的に濁つた溶液を作る。

実施例24:殺菌うがい薬 70％エタノール含有の商業的うがい薬200mlに、エタ
ノール45mlと大豆レシチン2gとPCMX0.5gと水5mlとを含
有する溶液を添加する。その溶液を混合し、PCMX0.2％
を含有する最終溶液を作る。得られたうがい薬の殺菌活
性を検査し、それが商業的うがい薬およびSDMCを欠くが
PCMXを含有するうがい薬の両者を越えて増加しているこ
とが判つた。

実施例25:テトラクロルデカオキシド用の静脈内混合剤注射用静脈溶液（i.v.混合剤）を調製する。エタノー
ル50mlにテトラクロルデカオキシド（TCDO）6.9×10⁸I.
U.と大豆レシチン5gとを溶解する。水（5ml）をそのエ
タノール溶液に加え、濁つた溶液を形成させる。エタノ
ール50mlを加えその濁つた溶液を透明にする。TCDO溶液
を0.9％ w/v食塩水１中に滴下してSDMCを調製する。
食塩水中において分散して生じたSDMCを、小胞の存在を
検知するため光散乱を用いて分析した。Coulter NM4AM
多角微小粒子分析器（Coulter Electronics,Hialeah,Fl
orida）を光散乱技術に関する製作者指図書に従つて使
用した。殺菌活性を評価し、E.Coliを使う一般に受入れ
られる実験室的技術を用いて、希釈後少くとも４日間は
殺菌活性が存在することが判つた。

実施例26:i.v.混合剤中のゲンタマイシンゲンタマイシンのi.v.混合剤をTCDOをゲンタマイシン
0.1gで置き換え、実施例25に記述したように調製する。

実施例27:発泡体創傷保護包帯中のゲンタマイシンSDMC 塩化メチレン50mlの溶液に大豆レシチン10gとゲンタ
マイシンベース0.1gと水5mlとを添加する。更に塩化メ
チレン50mlを加える。商業的外科用発泡体創傷包帯の上
に前記溶液をそそぎ、塩化メチレンを蒸発させる。SDMC
形成溶液を含有するスポンジ材料を水と混合し、実施例
25に記載のような光散乱を用いて評価する。発泡体材料
から出てくるSDMCの寸法は約190mm乃至200mm（平均寸法
180）である。SDMC形成溶液をもつ発泡体材料を、E.Col
iを用いる生物検定で検査して、標準の殺菌検査操作に
よる測定のように、活性のゲンタマイシンベースがある
ことが判つた。

実施例28:発泡体創傷保護包帯中のスルフアダイアジン
銀SDMC ゲンタマイシンベースの代りにスルフアダイアジン銀
（１％ w/w）を加えることを除き、実施例27中のような
操作を繰返えす。平均粒子寸法は約210nmであることが
判つた。

実施例29:発泡体創傷保護包帯中のTCDO 実施例27におけるゲンタマイシンに関しての記述のよ
うに、TCDO 6.9×10⁷I.U.を発泡体創傷保護包帯に含浸
させる。平均粒子寸法は220nmであることが判つた。

実施例30:発泡体創傷保護包帯中のメトプレン含有SDMC メトプレン（0.2％ w/w）でゲンタマイシンを置き換
えることを除き、実施例27の操作を繰返えす。

実施例31:発泡体創傷保護包帯中のフイブロネクチン大豆レシチン10gとフイブロネクチン50mgとを実施例2
7におけるごとく発泡体中に含浸させる。SDMCは平均寸
法190nmをもつ他のSDMCの寸法構造と一致する。

実施例32:客分子活性の経時安定性室温で30日間貯蔵および70℃で１時間後の2.5％ PCMX
含有SDMCの殺菌活性をE.Coli菌株Y1089のローンの中央
に、形成した溶液20μｌを点在させることにより検査す
る。（ローンはY1089を30℃、Luri Broth（LB）肉汁
中、600nmにおける光学濃度0.1になるまで増殖させるこ
とによつて作る）。E.Coli懸濁液20μｌをLB平板培地の
中央に点在させ、無菌の接種用ループでひろげる。検査
される平均培地を、殺菌効果が見え、E.Coliの融合性の
ローンで測定できるまで30℃で18時間保つ。

PCMXの捕捉（カプセル化）に用いられた少量の残留溶
剤と他の成分とは微生物増殖には抑制効果がないこと
（増殖抑制の領域が見られないこと）が示された。

カプセル化されていないPCMXの３％溶液を同じ方法で
点在させると、SDMCと比較して、増殖抑制の8mmの領域
ができることが判つた。カプセル化されたPCMXは25mmの
領域を作つた。カプセル化されたPCMXの、細菌増殖の抑
制能の著しい減少は、30日間古い、あるいは加温処理さ
れたSDMC（70℃で１時間加熱した30日古いSDMC）を用い
ての操作と比較を行つた場合でも認められない。

実施例33:PCMX SDMC活性とPCMXの商業的調製物のそれと
の比較客分子としてPCMX（2.5％）を含有するSDMCの殺菌活
性を、PCMXの商業的調製物〔Ultradex（Dexide Inc.）
（３％）〕と比較する。２つの溶液を、標準の制菌およ
び殺菌検定技術を用いてLB肉汁中1:2v/vに希釈する（全
体積1ml）。これらの２つの抗菌調製物を希釈後、E.Col
i Y1089の0.1 O.D.溶液0.1mlを各希釈試験管に添加す
る。凡ての試験管を30℃で18時間培養する。培養後、無
菌の接種用ループを用い少量の肉汁を採り、LB平板培地
に画線培養することにより細菌の増殖を検査する。30
℃、18時間平板培地を培養した後、各希釈における増殖
抑制を、Y1089の増殖について平板培地の検査で測定す
る。Ultradex（３％）の細菌増殖抑制は1:64v/vの希釈
で停止した。2.5％ PCMX SDMC調製物は希釈1:1024まで
増殖を抑制した。従つて、その調製物はUltradex 3％溶
液より16〜32倍よい殺菌活性を持つている。

実施例34: 2.5％ PCMXを用いてうがい薬を調合する。PCMXのない
うがい薬の抗菌活性を検査し、そのうがい薬が70％エタ
ノールを含有していても、標準平板培地抑制検定を用い
てE.Coliの抑制はなかつた。そのうがい薬中のPCMX 2.0
％溶液を調製し、検査すると、SDMCカプセル化調製物の
0.2％溶液によつてのみ作られる25mmの領域に対し、19m
mの領域が得られることが判つた。

実施例35: 新しいカプセル化５％ PCMX懸濁液を、E.Coli平板培
地抑制検定を用いて検査する。遊離のPCMXは約20mmの領
域をもつのに比較し、対照平板培地は細菌抑制の領域を
示さない。５％遊離PCMX懸濁液は20mm領域内で細菌の完
全な抑制を達成しない。SDMC調製物は、これに反し、薬
剤の溶解と表面への分布により、35mm領域で細菌の増殖
の完全な抑制を示す。

実施例36:SDMCの寸法分布と時間的及び熱的安定性 PCMX 2.5％含有の溶剤希釈微小担体の寸法分布は前記
のようなCoulter NM4AM多角微細粒子分析器を用いて検
査する。バツチＡはバツチＢと同じ日に調製し、表Ｉに
見られる如く、SDMCの寸法は可成り均一で、経時的に安
定であり、70℃で１時間加熱した後でも安定である。

実施例37:膣スポンジ避妊具中のSDMC 客分子としてエストロゲンまたはエストロゲン様化合
物を用いることを除き、実施例２に記載の如くSDMCを調
製する。他に、殺精子剤例えばノノキシノール−９を客
分子として用いることもできる。

実施例38:発泡体創傷保護包帯からのトブラマイシンSDM
Cの持続放出ジクロロメタン75mlの溶液に大豆レシチン10gと、水5
ml中のトブラマイシン硫酸塩200mgとを添加する。振盪
して混合し、その4mlを１″×１″の発泡体包帯材料の
両側に塗布し、空気乾燥させる。水8ml中にトブラマイ
シン硫酸塩20mgを含む溶液4mlを追加の発泡体包帯材料
片（１″×１″）10個の両側に塗布し、空気乾燥させ
る。その発泡体包帯片を格子状支持物上に置き、水5ml
でぬらし、発泡体保護包帯を通して下においた容器中に
流出した溶離液2mlを集める。その発泡体保護包帯を次
次にぬらし、溶離液2mlを集める。溶離液の殺菌活性
を、E.Coli菌株Y-1089を用いる標準の細胞抑制検定で測
定する。その結果を表IIに示す。

実施例39:発泡体創傷保護包帯からのSDMCの持続放出ジクロロメタン75ml溶液に大豆レシチン10gと痕跡量
の¹⁴C−ジパルミトイルホスフアチジルコリン（DPPC）
と水5mlとを添加する。振盪してその溶液を混合し、そ
の4mlを１″×１″の発泡体包帯材料の両側に塗布し、
空気乾燥させる。その発泡体包帯を格子状支持物上にお
き、水5mlでぬらし、溶離液2mlを集める。溶離液を液シ
ンチレーション計数技術により検定する。その結果は各
流体適用後均一量（１〜３％）のSDMCが集められること
が示されている。結果は、その発泡体包帯からSDMCを出
しつくすには25回以上の流体の適用が必要であることを
示している。

実施例40:発泡体創傷保護包帯から溶離する時の、SDMC
へのトブラマイシンの捕捉ジクロロメタン75ml溶液に、大豆レシチン10g（痕跡
量の³H−ホスフアチジルコリン）と水5ml中のトブラマ
イシン硫酸塩200mgとを加える。振盪によりその溶液を
混合し、その4mlを１″×１″発泡体包帯材料の両側に
塗布し、空気乾燥させる。その包帯材料を実施例１の如
く格子状支持物の上におき、水5mlでぬらす。初めの９
回のぬらしの溶離液はすてる。10回目のぬらしの後、溶
離液を集めSephadex G-150カラムを通過させる。カラム
により排除され、カラム床により包含された材料を、E.
Coli菌株Y-1089を用いる標準の殺菌検定によりトブラマ
イシンに関して検査する。排除されたその材料は濁り度
測定とレーザー光散乱分析にかける。SDMCの寸法は前に
観察された0.15〜0.3mと１致し、トブラマイシンに関し
て検定すると、その抗生剤が、発泡体包帯材料から溶離
するSDMC中に捕捉されていることを示した。SDMC中に捕
捉されていなかつたか、あるいは発泡保護包帯からある
いはSephadexカラムを通過中SDMCからもれた、包含され
た量は少量（全トブラマイシンの10％以下）である。

実施例41:発泡体包帯材料を離れた時のSDMC捕捉材料の
安定性ジクロロメタン50ml溶液に大豆レシチン10gとテトラ
クロルデカオキシド（“TCDO"）6.0×10⁷I.U.と水5mlと
を加え、追加のジクロロメタン50mlを加え、得られた溶
液を振盪して混合する。溶液4mlを１″×１″発泡体包
帯材料の各側面に塗布し、空気乾燥させる。追加の１″
×１″発泡体包帯材料に、5.0×10⁶I.U.のTCDOを含有す
る溶液8ml（各面に4ml）塗布する。その包帯材料を格子
状支持物上におき、水5mlで湿らせ、SDMC捕捉TCDOスポ
ンジとTCDOだけを含浸させたスポンジとの両方からアリ
コート2mlを集める。そのアリコートに対し直に殺菌活
性を分析し、室温に貯蔵する。次次に（48時間）アリコ
ートのTCDO活性を検定する。各アリコートに保持されて
いる初めの活性に対する百分率を表IIIに示す。

実施例42:湿潤包帯環境中におけるSDMC捕捉材料の安定
性発泡包帯材料を実施例４における如く（TCDOかSDMC捕
捉TCDOかの何れかを用い）調製する。その発泡体材料を
支持格子上におき、水5mlでぬらす。４日間の間４時間
および12時間の間隔で2mlの溶離液を集める。各補集時
間における初めの殺菌活性に対する百分率を、標準の殺
菌検定を用いて測定する。その結果を表IVに示す。

実施例43:滲透圧に対するSDMCの安定性ジクロロメタン25ml溶液に大豆レシチン5gと水5mlと
を加える。追加のジクロロメタン25mlを添加し、得られ
る溶液を振盪して混合する。溶液4mlを１″×１″発泡
体包帯材料の両側に塗布し、空気乾燥させる。その発泡
体包帯を格子状支持物上に置き、5mlの水を用いてぬら
し、溶離液のアリコート2mlを集める。空のSDMCを含有
する溶離液アリコートにスクロースまたは水の濃度を増
加させ乍ら加え、そのSDMCを増大する滲透圧の下にお
く。SDMCの変化をレーザー光散乱分析を用いて監視す
る。その結果を表Ｖに示す。

実施例44:界面活性剤の負荷に対するSDMCの安定性実施例６における如くSDMCを調製する。空のSDMC含有
溶離液に対し水または増大させた量のTween 20（商業的
界面活性剤）を加える。SDMCの寸法に対する影響をレー
ザー光散乱分析を用いて監視する。結果を表VIに示す。

実施例45:乾燥したトブラマイシンSDMC形成発泡体創傷
保護包帯の熱安定性ジクロロメタン50ml溶液に大豆レシチン10gと水5ml中
のトブラマイシン200mgとを加える。追加のジクロロメ
タン50mlを加え、振盪して溶液を混合する。その溶液4m
lを１″×１″発泡体創傷包帯材料に加え、それを空気
乾燥させる。その材料について、高圧液体クロマトグラ
フイーにより残留ジクロロメタンを分析し、検出される
ような残留ジクロロメタンを含有しないことが判つた。
その１″×１″の発泡体創傷材料を別別に熱融着した袋
中に入れ、室温で２ケ月貯蔵する。２ケ月の終りにその
包装を開き、SDMC形成発泡体創傷包帯の代表的な第１試
料を取り出し、格子状支持物上におき、水5mlでぬら
す。SDMC捕捉のトブラマイシン含有する溶離液2mlを第
１試料から集める。SDMC形成発泡体創傷包帯の第２代表
試料を３日間＋70℃に加熱する。SDMC形成発泡体創傷包
帯の第３代表試料を３日間−70℃に冷凍し、それから室
温と平衡させる。３つの影響を与えた発泡体創傷保護包
帯を格子状支持物上におき、水5mlでぬらし、SDMCに捕
捉されているトブラマイシン含有溶離液2mlを集める。
凡ての試料について、実施例３で説明した如く、捕捉さ
れたトブラマイシンの分析を行う。その結果を表VIIに
示す。

実施例46:乾燥したスルフアダイアジン銀SDMC形成発泡
体創傷保護包帯の熱安定性エタノール（192ml）中の大豆レシチン10％ w/v溶液
にメチルパラベン418gを加え、振盪して混合する。得ら
れた溶液にスルフアダイアジン銀4.8gを加え、振盪して
混合する。Tween 20・120mlをその溶液に加え、それを
振盪して混合する。それからジクロロメタン（720ml）
をその溶液に加え、振盪して混合する。この溶液16mlを
４″×４″発泡体創傷包帯材料の両側にかける。これを
空気乾燥させる。この４″×４″発泡体創傷包帯材料を
１″×１″の４角の片に切る。１″×１″片の１つの代
表試料を格子状支持物上におき、水5mlでぬらす。SDMC
スルフアダイアジン銀含有の溶離液2mlをあつめる。
１″×１″の発泡体創傷包帯材料片の第２の試料を３日
間＋70℃に加熱する。１″×１″片の第３の代表試料は
３日間−85℃に冷凍し、後室温に平衡させる。これら負
荷をかけた発泡体創傷保護包帯を格子の上に置き、上記
の如く処置する。角１″×１″正方形検査片に水2mlを
各10回かけた後溶離液を集める。凡ての試料について標
準の微生物学的技術を用いてスルフアダイアジン銀殺菌
活性を分析する。その結果を表VIIIに示す。

実施例47:湿潤発泡体創傷包帯材料からのSDMC捕捉トブ
ラマイシンの経時的持続放出トブラマイシン硫酸塩含有発泡体創傷包帯材料を実施
例１に示す如く調製する。その材料を格子支持物上にお
き、室温に保ち、ホイル膜でつつむ。９日間12時間毎
に、水5mlをその発泡体包帯材料にそそぎ、溶離液を集
める。SDMC捕捉トブラマイシン含有の試料2mlを標準殺
菌検定を用い、トブラマイシン抗生活性について検定す
る。その結果を表IXに示す。

実施例48:湿潤発泡体創傷包帯材料からのSDMC捕捉ゲン
タマイシンの経時的持続放出ゲンタマイシン硫酸塩を含有する発泡体創傷包帯材料
を実施例１に示すように調製する。材料を調製してから
それを格子状支持物上におき、室温に支持する。凡てを
ホイル膜で包む。９日間12時間毎に、水5mlをその発泡
体包帯材料にそそぎ、溶離液を集める。SDMC捕捉のゲン
タマイシン含有試料2mlを、標準殺菌検定を用いゲンタ
マイシン抗生活性について検定する。その結果を表Ｘに
示す。

実施例49:発泡体創傷保護包帯中のポリミキシンB SDMC
の調製と殺菌ジクロロメタン125mlの溶液に、ポリミキシンB500,00
0単位（水性溶液10ml）を加える。得られた溶液を振盪
して混合する。大豆レシチン（Alcolecx-tra A）20mlを
加え、得られた溶液を振盪して混合する。上記の溶液4m
lを１″×１″の発泡体創傷包帯材料の両側に加え、そ
れを空気乾燥させる。その材料を熱融着袋の中に入れ、
コバルト照射（3.2メガラト）を使用して殺菌する。得
られた材料を格子状支持物上におき、水5mlでぬらし、S
DMC捕捉ポリミキシンＢ含有溶離液2mlを集め検査する。
その溶離液は、標準の殺菌検定技術により測定して、照
射後完全に活性な、捕捉された抗生剤を含有していた。

実施例50:発泡体創傷保護包帯中のカナマイシンSDMCの
調製と殺菌ジクロロメタン125mlの溶液に水性溶液10ml中のカナ
マイシン硫酸塩1gを加える。得られた溶液に大豆レシチ
ン（Alcolec S）20mlを加える。その溶液を振盪して混
合する。その溶液4mlを１″×１″発泡体創傷保護包帯
の各側面に適用し、それを空気乾燥する。この材料をホ
イル熱融着袋に入れ、コバルト照射（3.2メガラド）の
使用により殺菌する。実施例12に記載の如く、その材料
について抗生活性を検定する。標準の殺菌検定技術を用
いると、照射後でも、溶離液は完全に活性で、捕捉され
ている抗生剤を含有している。

実施例51:SDMC捕捉スルフアダイアジン銀の、湿潤発泡
体創傷包帯からの経時的持続放出実施例９に記載のように発泡体創傷包帯材料を調製す
る。その材料を格子状支持物において、それを室温に保
持し、ホイル膜で覆う。７日間12時間毎に、水5mlをそ
の発泡体包帯材料上にそそぎ、溶離液を集める。SDMC捕
捉スルフアダイアジン銀を含有する試料2mlについて、
標準の微生物学的技術を用いてスルフアダイアジン銀の
殺菌活性を検定する。その結果を表XIに示す。

実施例52:SDMCに捕捉されているセホキシチンの調製と
殺菌水中の10％ w/v NaCl溶液15mlにセホキシチン4gを加
える。その混合物を振盪し、得られた、セホキシチンを
捕捉しているSDMCをコバルト照射（2.5メガラド）を用
いて殺菌する。標準の微生物学的技術を用い、セホキシ
チンの殺菌活性に関してそのSDMCを検定すると、４℃で
１週間貯蔵および照射殺菌共に、セホキシンを捕捉して
いて、その活性を保持していることが判つた。

実施例53:SDMCに捕捉されているアマカシンの調製と殺
菌 10％（w/v）大豆レシチン（Alcolec LKE粒状物）15ml
の溶液に、アマカシン硫酸塩2gを含有する水中0.95％
（w/v）NaClを85ml加える。その混合物を振盪し、得ら
れるSDMC捕捉アマカシンをコバルト照射（2.5メガラ
ド）を用いて殺菌する。標準の微生物学的方法を用い、
アマカシンの殺菌活性に関しそのSDMCを検定すると、４
℃貯蔵および照射殺菌共に、アマカシンを捕捉してい
て、その抗生剤の活性は維持されていることが判つた。

実施例54:カナマイシン捕捉SDMCの調製燐酸カリウム0.05Mの溶液（pH7.0）40mlに、トブラマ
イシン硫酸塩1gを加える。エタノール中の大豆レシチン
10％（w/v）溶液3mlをトブラマイシン含有溶液に加え
る。得られたSDMC含有混合物をかきまわし、SDMCにトブ
ラマイシンを捕捉させる。体積調節のため、0.05M燐酸
カリウム57mlを加え、得られる懸濁液を無菌のガラス瓶
中に0.45μｍフイルターを通過させる。

実施例55:安定なシクロスポリン混合剤の調製エタノール中10％（w/v）大豆レシチン溶液2mlにシク
ロスポリン3mgを加える。その溶液をかきまわして混合
する。SDMCを形成させるため、上記溶液のアリコート50
μｌを水450μｌと混合する。得られた、シクロスポリ
ン含有SDMCをレーザー光散乱を用いて分析し、径が約20
0μｍであることが判つた。この混合剤を室温で１ケ年
貯蔵し、上記の如く検査する。その結果、１ケ年の貯蔵
においてもこの混合剤中のSDMCの寸法は不変（径200μ
ｍ）で、シクロスポリンの沈澱が起こらないことが判つ
た。

実施例56:ラツトの軟組織感染の処置に対する、ゲンタ
マイシン硫酸塩を含有する新規の創傷保護包帯包装品の
利用軟組織感染のモデルはSprague Dawleyラツトで制定す
る。ラツトを麻酔させ、paraspinus筋を曝露している背
部から３×3cm4角の皮膚を切り取る。Pseudomonas aero
qinosaを１×10⁸cfu/ml含有する懸濁液1.5mlを全体積1m
lのParaspinus筋の表面筋膜中に注入する。創傷は非接
着性の保護包帯材料（Winfield Laboratories,Richards
on,Texas75083より入手できるN-terface介在表面仕上
げ材料）を用いて覆い、大豆レシチン0.5gとゲンタマイ
シン2mgとより成るSDMC形成溶液を含浸させて調製した
発泡体創傷包帯材料または予め乾燥させてある創傷保護
包帯材料の何れかを１″×１″の発泡体材料（実施例１
で記載の如く調製）上に適用する。凡ての場合、包帯材
料は40匹のラツトに対しては無菌水5ml、SDMCゲンタマ
イシンを受入れている無菌水5ml（40匹のラツト）ある
いはゲンタマイシン硫酸塩330μｇを含有する無菌水5ml
（40匹のラツト）の何れかを用いて湿らせる。３日間の
間12時間毎に上述のように動物を再三湿らせる。３日間
の間24時間毎に10匹のラツトの群を犠牲にし、組織1.5
〜3gが得られるようparaspinus筋を取り出す。筋組織1g
当りの、P.aeroqinosaの集落形成単位（CFU）を標準の
微生物学的技術を用いて測定する。各処置群に対する結
果を表XIIに示す。

実施例57:ラツトの軟組織感染の処置に対する、スルフ
アダイアジン銀を含有する新規の創傷保護包帯包装品の
利用軟組織感染のモデルは、実施例17に記載の如くSpragu
e Dawleyラツトで制定する。凡ての動物は次に述べるこ
とを除いて、実施例17記載の如く処置される。処置群
は、１）発泡体創傷保護包帯（無菌水で湿らせる）を受
けた動物40匹、２）１％スルフアダイアジン銀（30mg）
（Silvadeneクリーム）を３日間日に２回創傷に適用
され、洗い落し、再適用させてスルフアダイアジン銀3g
を受けた動物（40匹）および３）スルフアダイアジン銀
30mgと大豆レシチン0.5gとからなるSDMC形成溶液（実施
例９に記載の如く調製）を含浸させた予め乾燥させた発
泡体創傷材料を受けた動物から成る。各処置群の結果を
表XIIIに示す。

実施例58:混合細菌性腹膜炎の結果起る致死的細菌敗血
症の処置のためのSDMC捕捉セホキシチンの利用混合細菌感染から起る致死的敗血症のモデルはSpragu
e Dawleyラツトで制定する。ラツトを麻酔し、腹部で正
中線切開を行う。バリウム溶液を用い腹腔を刺戟し、人
糞材料1gをその腹腔内に移植する。動物を外科的に閉じ
る。４日間の研究期間中０時間、４時間、そして次に24
時間間隔で、尾部血管から血液試料を採る。40匹の動物
群に感染が制定される。10匹の動物群では無処置で開始
する。10匹の動物群では、外科的縫合の際セホキシチン
1.5mg/kgをi.m.で投与する。10匹の動物群では、外科的
縫合の際腹腔中にセホキシチン1.5mg/kgを投与する。10
匹の動物群では、外科的縫合の際、SDMC捕捉セホキシチ
ン1.5mg/kgを投与する。10匹の動物群では外科的縫合の
際i.p.で空のSDMCを投与する。この研究の結果を費用XI
Vで示す。

実施例59:SDMC捕捉セホキシチン使用による、混合細菌
腹膜炎から生じた致死的敗血症の予防混合細菌感染から生ずる致死的敗血症のモデルは実施
例58に記載の如くSprague Dawleyラツトで制定する。各
処置群の死亡率を表XVに報告する。

実施例60:腹膜内投与によるSDMC捕捉トブラマイシン硫
酸塩の初期血清血液水準の低下 SDMC捕捉トブラマイシンの血清血液水準に及ぼす影響
評価のため、SDMCを次のように調製する。即ち、トブラ
マイシン硫酸塩1gを含有する0.95％食塩水溶液40mlに10
％（w/v）大豆レシチン（Alcolec LKE粒状物）3mlを加
える。SDMCに捕捉されたトブラマイシンが形成され、そ
の懸濁液をかきまわして混合する。0.95％食塩水60mlを
追加して加え、その懸濁液をかきまわす。５匹の動物群
が、i.p.で食塩水1ml、i.p.で水性のトブラマイシン硫
酸塩（10mg）あるいはSDMC捕捉トブラマイシン（10mg）
の何れかを受ける。動物は処置前、および処置後の４時
間目と24時間目に尾部血管より採血される。標準の検定
技術を用い７つのトブラマイシン水準を測定する。実験
の結果を表XVIに示す。

実施例61:SDMCカプセル化による、メトプレンの紫外線
劣化に対する安定化 90％工業級メトプレンを次のようにしてSDMC内にカプ
セル化する。大豆レシチン（Alcolec X-tra^A）10mlにTw
een 20 1mlとメトプレン1mlとを加える。上記の混合物
にエタノール5mlを加え、かきまわす。得られる混合物
に、水85mlを加え、かきまわして混合する。SDMC内への
メトプレンのカプセル化による紫外線保護を評価するた
め、標準化されているのみの卵の孵化の研究を環境表面
（カーペツト、1ft.×1ft.方形）で行う。カーペツト試
料は無処理、揮発性推進剤中に適用されている１％メト
プレンあるいはSDMC中に捕捉されているメトプレンの何
れかをうける。のみの卵をカーペツト試料に入れ、初め
のメトプレン活性に対する百分率を、孵化したのみの卵
の百分率の関数として測定する。研究期間中毎日、凡て
のカーペツト試料を紫外線に曝露する。引続く３ケ月カ
ーペツト試料にのみの卵を再混入させる。各実験群につ
いて、メトプレンの活性の百分率を表XVIIに示す。

実施例62:SDMCへのプロペタムホスのカプセル化による
臭気の減少プロペタムホスを次の方法でSDMC中にカプセル化す
る。大豆レシチン（エタノール中10％ w/v）10mlにTwee
n 20 1mlとプロペタムホス1mlとを加える。上記の混合
物に水90mlを加え、かきまわして混合する。エタノール
中の等量のプロペタムホスと比較した場合、不快な臭気
の顕著な減少が見られる。

実施例63:レチン酸含有SDMC 大豆レシチン100mgの試料を室温でエタノール中のレ
チン酸30mgで溶解する。水1mlをその溶液に加え、濁つ
た（曇つた）懸濁液を生じさせる。無水エタノール3ml
をその懸濁液に加え、光学的に透明な溶液を作る。最後
の溶液1mlを10mlの水性溶液に希釈してSDMCを形成させ
る。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.⁶，ＤＢ名) A61K 9/127 A61K 9/107

Claims

(57)【特許請求の範囲】

【請求項１】（ａ）適当な溶剤中で、２重層を形成する
材料を客分子と混合し、（ｂ）濁った懸濁液を形成する量の水を添加し、（ｃ）光学的に透明な溶液を形成する量の溶剤を添加
し、そして、（ｄ）前記の光学的に透明な溶液を、空気または水と混
合するか、またはその代りに表面に塗布し乾燥させそし
てその表面を再水和することにより、該溶液を組織して
溶剤希釈微小担体賦形薬を形成する、段階を包含する溶剤希釈微小担体賦形薬の製造方法。
【請求項２】前記の水の量が約4:1（溶剤対水）から約1
0:1（溶剤対水）である、前項（１）に記載の方法。
【請求項３】前記の追加される溶剤の量が約15:1（溶剤
対水）から約100:1（溶剤対水）である、前項（１）に
記載の方法。
【請求項４】前記の光学的に透明な溶液をエーロゾル化
によって空気と混合する、前項（１）に記載の方法。
【請求項５】前記の光学的に透明な溶液を過剰量の水中
へ希釈することによつて水と混合する、前項（１）に記
載の方法。
【請求項６】（ａ）適当な溶剤中で、２重層を形成する
材料を客分子と混合し、（ｂ）濁った懸濁液を形成する量の水を添加し、（ｃ）光学的に透明な溶液を形成する量の追加の溶剤を
添加し、（ｄ）前記の光学的に透明な溶液を表面に塗布し、それ
を乾燥させ、そして（ｅ）前記表面を再水和して溶剤希釈微小担体賦形薬を
形成させる、段階を包含する、溶剤希釈微小担体賦形薬の製造方法。
【請求項７】段階（ｄ）の表面が発泡体包帯である、前
項（６）に記載の方法。
【請求項８】（ａ）適当な溶剤中で、２重層を形成する
材料を客分子と混合し、（ｂ）濁った懸濁液を形成する量の水を添加し、そして（ｃ）光学的に透明な溶液を形成する量の追加の溶剤を
添加する、段階を包含する方法により形成される、光学的に透明な
溶液。
【請求項９】（ａ）適当な溶剤中で、２重層を形成する
材料を客分子と混合し、（ｂ）濁った懸濁液を形成する量の水を添加し、（ｃ）光学的に透明な溶液を形成する量の追加溶剤を添
加し、そして（ｄ）前記の光学的に透明な溶液を、空気または水と混
合するか、またはその代りに表面に塗布し乾燥させそし
てその表面を再水和することにより、該溶液を組織し
て、溶剤希釈微小担体賦形薬を形成する段階を包含する方法により形成された溶剤希釈微小担体
賦形薬。