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JP3476933B2 - Method for producing polysaccharide-producing cell and cell for producing polysaccharide - Google Patents
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JP3476933B2 - Method for producing polysaccharide-producing cell and cell for producing polysaccharide - Google Patents

Method for producing polysaccharide-producing cell and cell for producing polysaccharide

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JP3476933B2
JP3476933B2 JP30552094A JP30552094A JP3476933B2 JP 3476933 B2 JP3476933 B2 JP 3476933B2 JP 30552094 A JP30552094 A JP 30552094A JP 30552094 A JP30552094 A JP 30552094A JP 3476933 B2 JP3476933 B2 JP 3476933B2
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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、多糖類高生産性細胞の
製造方法および多糖類生産用細胞に関する。さらに詳し
くは、本発明は、細胞外に多糖類を分泌する植物細胞の
カルスを継代培養して多糖類生産性細胞を製造する方法
の改良、そしてその改良方法により得られる多糖類生産
用細胞に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for producing a high-polysaccharide-producing cell and a polysaccharide-producing cell. More specifically, the present invention provides an improved method for producing a polysaccharide-producing cell by subculturing callus of a plant cell secreting extracellular polysaccharide, and a polysaccharide-producing cell obtained by the improved method. Regarding

【0002】[0002]

【従来の技術】多糖類を生産する植物としては多くの種
類のものが知られている。そのような植物から多糖類を
取得するには、従来では、天然の、又は栽培した植物の
種子、果実、茎、幹、葉、根、塊茎、あるいは塊根等か
らの抽出またはタッピング等による方法が利用されてい
た。しかし、それらの天然の植物または栽培植物は、自
然環境や天候の影響を受け易く、従って生産量や価格が
安定しないという欠点がある。このため、それらの植物
の細胞または組織を液体培地にて培養することによっ
て、細胞や組織を増殖させ、同時に多糖類を生産させ
て、培地中に排出させる方法が提案されている。
2. Description of the Related Art Many types of plants that produce polysaccharides are known. In order to obtain a polysaccharide from such a plant, conventionally, a method by extraction or tapping from a seed of natural or cultivated plant, fruit, stem, stem, leaf, root, tuber, or tuberous root, etc. It was used. However, these natural plants or cultivated plants have a drawback that they are easily affected by the natural environment and the weather, and thus the production amount and the price are not stable. Therefore, a method has been proposed in which cells or tissues of these plants are cultured in a liquid medium to grow the cells or tissues and simultaneously produce a polysaccharide, which is then discharged into the medium.

【0003】上記の細胞の組織培養による多糖類の製造
方法は、自然環境や天候の影響を受けないため、安定に
生産することができ、有利な方法ということができる
が、これまでに知られている方法では、培養細胞から生
産される多糖類の収量が低いという大きな問題がある。
このため、培養条件を変えることによって多糖類の生産
量を向上させることを目的とした研究が行なわれてい
る。
The above-mentioned method for producing a polysaccharide by culturing cells in a tissue is not affected by the natural environment or the weather and can be stably produced, which is an advantageous method. However, it has been known so far. However, the method has a big problem that the yield of polysaccharide produced from cultured cells is low.
For this reason, studies have been conducted to improve the production amount of polysaccharides by changing the culture conditions.

【0004】たとえば、特開平5−207888号公報
に記載の発明では、ポリアンテス属のチューベロースか
ら誘導されるカルスなどの植物細胞を液体培地にて培養
する際に、その液体培地に一定範囲の量の金属塩を存在
させることによって、液体培地の粘度の上昇を抑制し、
これにより多糖類の生産量の向上を図っている。すなわ
ち、多糖類生産用細胞は一般に、対象の植物からカルス
を誘導した後、このカルスを継代培養することにより増
殖させて多数の細胞として取得し、この増殖した多糖類
生産用細胞を大量の液体培地にて培養して多糖類を生産
させ、細胞外に分泌させ、最後に、この細胞外に分泌さ
れた多糖類を細胞から分離して、目的の多糖類を取得す
る方法に利用されるが、この公報に記載の発明では、多
糖類の生産培地に金属塩を存在させて、液体培地の粘度
の上昇を抑制する方法が利用されている。そして、この
ようにして多糖類生産性細胞の多糖類生産のための液体
培地の粘度の上昇が抑制される結果、培養液の拡散、混
合が良好になり、多糖類の生産性が向上する他、カルス
や細胞と目的物を含有する上澄液との分離も容易となり
生産性が向上するとされている。
[0004] For example, in the invention described in JP-A-5-207888, when a plant cell such as callus derived from tuberose of the genus Polyantes is cultured in a liquid medium, a certain range of amount of the medium is added to the liquid medium. The presence of the metal salt suppresses the increase in the viscosity of the liquid medium,
This aims to improve the production amount of polysaccharides. That is, a polysaccharide-producing cell is generally obtained by inducing callus from a target plant and then proliferating by subculture of this callus to obtain a large number of cells, and a large amount of this expanded polysaccharide-producing cell. It is used in a method of culturing in a liquid medium to produce a polysaccharide, secreting it extracellularly, and finally separating the extracellularly secreted polysaccharide from the cell to obtain the desired polysaccharide. However, in the invention described in this publication, a method is used in which a metal salt is present in a polysaccharide production medium to suppress an increase in viscosity of the liquid medium. Then, as a result of suppressing the increase in the viscosity of the liquid medium for the polysaccharide production of the polysaccharide-producing cells in this way, the diffusion of the culture solution, the mixing is improved, and the productivity of the polysaccharide is improved. It is said that the separation of callus or cells from the supernatant containing the target substance is facilitated and the productivity is improved.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、細胞外に多
糖類を分泌する植物細胞のカルスを継代培養して多糖類
生産性細胞を製造する公知の方法を改良することによ
り、更に多糖類を高生産性で生産する多糖類生産用細胞
を得る方法を提供することを目的とする。
The present invention further improves the known method for producing polysaccharide-producing cells by subculturing callus of plant cells secreting extracellular polysaccharides to produce polysaccharide-producing cells. It is an object of the present invention to provide a method for obtaining a polysaccharide-producing cell that produces a saccharide with high productivity.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明は、細胞外に多糖
類を分泌する植物細胞のカルスを液体培地で継代培養し
て多糖類生産性細胞を製造する方法において、該継代培
養の途中で培地成分組成中の炭素源成分、窒素源成分、
金属塩、もしくは植物ホルモンのうちの少なくともいず
れかの濃度を20%以上増加させるような変化をさせた
液体培地で培養する操作が含まれることを特徴とする多
糖類高生産性細胞の製造方法にある。なお、継代培養の
途中での液体培地中の成分組成の変化が複数種の成分の
濃度増加であることが望ましい。
The present invention provides a method for producing a polysaccharide-producing cell by subculturing callus of a plant cell secreting extracellular polysaccharides in a liquid medium. On the way, carbon source component , nitrogen source component in the medium component composition,
A method for producing a high-polysaccharide-producing cell, which comprises an operation of culturing in a liquid medium changed so as to increase the concentration of at least one of metal salts and plant hormones by 20% or more. is there. It should be noted that changes in the composition of the components in the liquid medium during the subculture may be due to
Concentration increase der Rukoto is desirable.

【0007】 本発明のカルスは、ポリアンテス属植物
(特に、ポリアンテス属のチューベロース植物)の細胞
から誘導されたものであることが好ましい。
The callus of the present invention is a plant of the genus Polyantes
(In particular, Poriantesu genus Chu bellows plants) is preferably one derived from cells.

【0008】すなわち、本発明の発明者の研究により、
細胞外に多糖類を分泌する植物細胞のカルスを液体培地
にて継代培養して多糖類生産性細胞を得る際に、その継
代培養の途中で、その液体培地のいずれかの成分の濃度
を変化(変動)させることによって、多糖類生産性が顕
著に向上した多糖類生産性細胞が得られることが判明し
た。本発明は、本発明者によるこの新規な知見に基づい
て完成されたものである。
That is, according to the research conducted by the inventor of the present invention,
When callus of plant cells secreting extracellular polysaccharides is subcultured in a liquid medium to obtain polysaccharide-producing cells, the concentration of any component of the liquid medium during the subculture It was found that a polysaccharide-producing cell having a markedly improved polysaccharide productivity can be obtained by changing (changing) the value. The present invention has been completed based on this novel finding by the present inventor.

【0009】本発明の多糖類高生産性細胞の製造方法に
おいて使用される植物の細胞については、それが多糖類
を生産する種類のものである限り特に制限はなく、例え
ば、アオイ科植物のオクラ、セリ科植物のニンジン、シ
ソ科植物のハッカなど各種の植物を用いることができ
る。ただし、本発明では、特に、細胞としてポリアンテ
ス属(Polianthes L.)の植物の細胞、特
にポリアンテス属のチューベロース(Polianth
es tuberosa L.)植物より誘導されたカ
ルスを利用する場合において有利に利用できるため、以
下の記載では、このポリアンテス属のチューベロース植
物の細胞のカルスを例にとって本発明を説明する。
The plant cells used in the method for producing a high-polysaccharide-producing cell of the present invention are not particularly limited as long as they are of a type capable of producing a polysaccharide. For example, okra of a mallow family plant. It is possible to use various plants such as carrots of the Apiaceae plant and mint of the Lamiaceae plant. However, in the present invention, in particular, as a cell, a plant cell of the genus Polyanthes (Polianthes L.), particularly tuberose (Polyanthes) of the genus Polyanthes, is used.
es tuberosa L. Since the present invention can be advantageously used when using a callus derived from a plant, the present invention will be described in the following with reference to the callus of cells of a tuberose plant of the genus Polyantes.

【0010】ポリアンテス属のチューベロース植物から
得られるカルスは、アラビノース、マンノース、ガラク
トース、キシロースおよびグルクロン酸を構成成分とす
る酸性ヘテロ多糖を生産することで知られている。そし
て、その継代培養は、公知の基本培地、例えば、ムラシ
ゲ・スクーグ(Murasige−Skoog)の培
地、リンスマイヤー・スクーグ(Linsmaier−
Skoog)の培地、ガンボルグ(Gamborg)の
培地、ホワイト(White)の培地、ニッチ・ニッチ
(Nitach−Nitach)の培地、ツレッケ(T
ulecke)の培地などを利用して行なわれる。なか
でも、ムラシゲ・スクーグの培地やリンスマイヤー・ス
クーグの培地の使用が好ましい。これらの培地には通常
少量の金属塩が含まれている。
Callus obtained from tuberose plants of the genus Polyantes is known to produce acidic heteropolysaccharides whose constituents are arabinose, mannose, galactose, xylose and glucuronic acid. Then, the subculture is carried out by using a known basic medium, for example, Murashige-Skoog medium, Linsmeier-Skoog medium.
Skoog's medium, Gamborg's medium, White medium, Niche-Nitach medium, Trekke (T
ulecke) medium or the like. Among them, it is preferable to use Murashige-Skoog's medium or Rinsmeier-Skoog's medium. These media usually contain small amounts of metal salts.

【0011】これらの継代培養用の培地には更に植物ホ
ルモンや炭素源等の公知の各種の添加剤が添加されてい
てもよい。添加する植物ホルモンの種類や濃度は多糖類
の生産性に影響を及ぼす。例えば2,4−ジクロロフェ
ノキシ酢酸(2,4−D)、α−ナフタレン酢酸(NA
A)、インドール酢酸(IAA)、インドール酪酸(I
BA)などのオーキシン類;カイネチン、ベンジルアデ
ニン(BA)、ジメチルアミノプリン(2IP)などの
サイトカイニン類;ジベレリンA3 (GA3 )などのジ
ベレリン類などを使用することができる。このなかで、
2,4−DまたはNAAを単独で、あるいはNAAとB
Aまたはカイネチンとを組合せて用いることが好まし
い。それらの場合の濃度は2,4−DまたはNAAを単
独で用いる場合には、5×10-4Mから1×10-7Mの
範囲の濃度、特に5×10-5Mから5×10-6Mの範囲
の濃度が、NAAとBAまたはNAAとカイネチンとを
組合せて用いる場合には、NAAの濃度は1×10-4
から1×10-7Mの範囲の濃度、特に1×10-4Mから
5×10-6Mの範囲の濃度、そしてBA又はカイネチン
の濃度は5×10-5Mから1×10-9M、特に1×10
-6Mから1×10-7Mの範囲の濃度が好ましい。
Various well-known additives such as plant hormones and carbon sources may be added to these subculture media. The type and concentration of the added plant hormone affect the productivity of polysaccharides. For example, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), α-naphthalene acetic acid (NA
A), indole acetic acid (IAA), indole butyric acid (I
Auxins such as BA); cytokines such as kinetin, benzyladenine (BA), and dimethylaminopurine (2IP); gibberellins such as gibberellin A 3 (GA 3 ) and the like can be used. In this
2,4-D or NAA alone or NAA and B
It is preferable to use A or kinetin in combination. In those cases, the concentration of 2,4-D or NAA alone is in the range of 5 × 10 −4 M to 1 × 10 −7 M, particularly 5 × 10 −5 M to 5 × 10 5. When the concentration of NAA and BA or the combination of NAA and kinetin is used in the range of −6 M, the concentration of NAA is 1 × 10 −4 M.
To 1 × 10 −7 M, particularly 1 × 10 −4 M to 5 × 10 −6 M, and BA or kinetin concentration of 5 × 10 −5 M to 1 × 10 −9. M, especially 1 × 10
A concentration in the range of -6 M to 1 x 10 -7 M is preferred.

【0012】炭素源としては、グルコース、フラクトー
ス、マンノース、キシロース、サッカロース、ラムノー
ス、フコース、デンプンなどが用いられる。多糖類の生
産量は、添加する炭素源の種類にはあまり大きく影響さ
れるものではなく、通常はサッカロースなどの少糖類が
炭素源として用いられる。一般に、炭素源の量も多糖類
の生産量にあまり影響を与えるものではないが、通常は
1〜6重量%の範囲の濃度で用いられる。
As the carbon source, glucose, fructose, mannose, xylose, sucrose, rhamnose, fucose, starch and the like are used. The production amount of polysaccharides is not significantly affected by the type of carbon source to be added, and normally oligosaccharides such as sucrose are used as a carbon source. In general, the amount of carbon source does not significantly affect the production amount of polysaccharides, but it is usually used at a concentration in the range of 1 to 6% by weight.

【0013】本発明では、上記の継代培養に使用する液
体培地に、10〜180mM(特に20〜100mM)
の範囲内の濃度の金属塩を添加して、液体培地の全金属
塩含有量を30〜200mMとして(特に40〜150
mM)として使用することが好ましい。この金属塩の添
加により、継代培養されたカルスから得られる細胞の多
糖類生産能は更に増大する。
In the present invention, the liquid medium used for the above subculture contains 10 to 180 mM (particularly 20 to 100 mM).
Metal salt in a concentration within the range of 30 to 200 mM (particularly 40 to 150 mM) in the liquid medium.
It is preferred to use it as mM). Addition of this metal salt further increases the ability of cells obtained from subcultured callus to produce polysaccharides.

【0014】金属塩としては、ナトリウム、カリウムな
どのアルカリ金属、カルシウム、マグネシウム、バリウ
ムなどのアルカリ土類金属、そして鉄、亜鉛、アルミニ
ウムなど金属のような一〜三価の金属の塩化物、硫酸
塩、炭酸塩、リン酸塩、硝酸塩が用いられる。具体的な
金属塩の例としては、塩化ナトリウム、塩化カリウム、
塩化カルシウム、塩化バリウム、塩化マグネシウム、塩
化鉄、塩化亜鉛、塩化アルミニウム、硫酸ナトリウム、
硫酸カリウム、硫酸カルシウム、硫酸マグネシウム、硫
酸バリウム、硫酸亜鉛、硫酸第一鉄、硫酸第二鉄、硫酸
アルミニウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸カ
ルシウム、炭酸バリウム、炭酸マグネシウム、リン酸ナ
トリウム、リン酸カリウム、リン酸カルシウム、リン酸
マグネシウム、リン酸バリウム、硝酸ナトリウム、硝酸
カリウム、硝酸カルシウム、硝酸マグネシウム、硝酸バ
リウムなどを挙げることができる。
Examples of the metal salt include alkali metals such as sodium and potassium, alkaline earth metals such as calcium, magnesium and barium, and chlorides of 1 to 3 valent metals such as metals such as iron, zinc and aluminum, and sulfuric acid. Salts, carbonates, phosphates, nitrates are used. Examples of specific metal salts include sodium chloride, potassium chloride,
Calcium chloride, barium chloride, magnesium chloride, iron chloride, zinc chloride, aluminum chloride, sodium sulfate,
Potassium sulfate, calcium sulfate, magnesium sulfate, barium sulfate, zinc sulfate, ferrous sulfate, ferric sulfate, aluminum sulfate, sodium carbonate, potassium carbonate, calcium carbonate, barium carbonate, magnesium carbonate, sodium phosphate, potassium phosphate , Calcium phosphate, magnesium phosphate, barium phosphate, sodium nitrate, potassium nitrate, calcium nitrate, magnesium nitrate, barium nitrate and the like.

【0015】なお、継代培養時に金属塩を添加する場
合、必ずしも毎回の継代培養用液体培地に行なう必要は
ないが、多糖類生産能の顕著な向上のためには、多くの
回の継代培養用液体培地に金属塩を存在させることが好
ましい。また、それぞれの回の継代培養用培地中の金属
塩濃度を変動させることも多糖類生産能の顕著な向上の
ためには有効である。
When a metal salt is added during subculture, it is not always necessary to add it to the subculture liquid medium each time, but in order to significantly improve the polysaccharide-producing ability, many times of subculture are performed. It is preferable to allow a metal salt to be present in the subculture liquid medium. Further, varying the metal salt concentration in the subculture medium at each time is also effective for significantly improving the polysaccharide-producing ability.

【0016】 本発明のカルスの継代培養は、通常20
〜30℃の範囲で15〜30日間程度の培養(振とう
養が好ましい)を数回(回数に特に制限はないが、通常
は3回以上、10回以下)実施することにより行なわれ
る。そして、本発明の多糖類高生産能を示す細胞の製造
においては、その継代培養の途中で、糖成分(炭素源成
分)、窒素源成分、金属塩、植物ホルモンなどの液体培
地成分の濃度を20%以上増加させる方法により行なわ
れる。上記のような継代培養の液体培地の成分組成の変
化により生成する細胞は、多糖類生産用培地において高
い多糖類生産能を示す。
The subculture of the callus of the present invention is usually 20
(There is no particular limit to the number of times, usually more than three times, more than 10 times) several times on the order of 15 to 30 days of culture (preferably shaking culture <br/> nutrient is) in the range of to 30 ° C. embodiment be Performed by. And, in the production of cells having high polysaccharide production ability of the present invention, the concentration of a liquid medium component such as a sugar component (carbon source component), a nitrogen source component, a metal salt, and a plant hormone in the course of the subculture. Is increased by 20% or more . The cells produced by the change in the component composition of the subculture liquid medium as described above show a high polysaccharide-producing ability in the polysaccharide-producing medium.

【0017】本発明のカルス(細胞)の継代培養方法に
おいて用いられる培養装置、培養槽などについては特に
制限はない。培養槽としては縦型ドラム、横型ドラム、
回転ドラムなど各種のタイプのものを用いることができ
る。ただし、振とう可能な培養槽の使用が好ましい。培
養装置には通常は撹拌装置が付設され使用されるが、液
体培地が培養槽の内部で循環移動するようにしてあれ
ば、撹拌装置の設置と使用は必ずしも必要ではない。
There are no particular restrictions on the culture device, culture tank, etc. used in the callus (cell) subculture method of the present invention. As a culture tank, vertical drum, horizontal drum,
Various types such as a rotating drum can be used. However, it is preferable to use a shaken culture tank. A stirring device is usually attached to the culture device and used, but the installation and use of the stirring device are not always necessary as long as the liquid medium is circulated and moved inside the culture tank.

【0018】本発明の継代培養により得られる多糖類生
産能の向上した細胞はそのまま多糖類生産用細胞とし
て、公知の培養条件にて培養し、工業的あるいは実験室
的な多糖類の生産に利用できる。その際の液体培地とし
ては、上記の継代培養に利用した液体培地と同様な組
成、あるいは特に多糖類の生産に適した液体培地(特に
同様に金属塩を含む液体培地)を利用することが好まし
い。
The cells with improved polysaccharide-producing ability obtained by the subculture of the present invention are directly used as polysaccharide-producing cells under known culture conditions for industrial or laboratory production of polysaccharides. Available. As the liquid medium at that time, it is possible to use the same composition as the liquid medium used for the above subculture, or a liquid medium particularly suitable for the production of polysaccharides (particularly, a liquid medium containing a metal salt as well). preferable.

【0019】[0019]

【実施例】【Example】

[実施例1] (1)カルスの誘導:開花2〜7日前のチューベロース
のつぼみを切り取り、70%エタノール溶液で1分間滅
菌し、更に1%次亜塩酸ナトリウム溶液で10分間滅菌
した後、滅菌水で洗浄した。滅菌処理された外植片を適
当な大きさに切り、カルス誘導用培地に接種した。カル
ス誘導用培地には、基本培地として0.8%の寒天を含
むリンスマイヤー・スクーグの培地(L−S培地)を用
いた。植物ホルモンとしてはオーキシンとして10-5
のNAAとサイトカイニンとして10-6MのBAを添加
した。炭素源としては3%サッカロースを添加した。こ
の培地を0.1N−KOHでpH5.7に調整したの
ち、オートクレーブを用いて120℃、1.2気圧で1
5分間滅菌した。培養は電照下25±1℃で行なった。
30〜60日間の培養の後、それぞれの外植片からはカ
ルスが誘導されていることが確認された。
[Example 1] (1) Induction of callus: Tubulose buds 2 to 7 days before flowering were cut out, sterilized with 70% ethanol solution for 1 minute, and further sterilized with 1% sodium hypochlorite solution for 10 minutes, and then sterilized. It was washed with water. The sterilized explant was cut into an appropriate size and inoculated into a callus induction medium. As a callus induction medium, a Rinsmeier-Skoog medium (LS medium) containing 0.8% agar was used as a basic medium. As a plant hormone, 10 -5 M as an auxin
NAA and 10 −6 M BA as cytokinin were added. 3% sucrose was added as a carbon source. This medium was adjusted to pH 5.7 with 0.1N-KOH and then autoclaved at 120 ° C. and 1.2 atm for 1 hour.
Sterilized for 5 minutes. The culture was performed at 25 ± 1 ° C. under illumination.
After culturing for 30 to 60 days, it was confirmed that callus was induced from each explant.

【0020】(2)カルスの継代培養第一期:上記の工
程で誘導されたカルスを誘導培地と同一の培地を用いて
同一条件下で30日間培養する継代培養単位工程を20
回(各回毎にカルスは新しい培地に移される;20代の
継代培養)を行なった。
(2) Callus subculture 1st stage: 20 subculture unit steps in which the callus induced in the above step is cultured for 30 days under the same conditions using the same medium as the induction medium.
Times (callus is transferred to fresh medium each time; 20 subcultures).

【0021】(3)カルスの継代培養第二期:500ミ
リリットル容の三角フラスコに、基本培地(L−S培地
に、4 w/v%スクロース及び10-5Mの2,4−Dを添
加したもの)を100mLを仕込み、この培地にカルス
を接種量20 w/v%で接種して、26℃、90rpmで
4日間振とう培養し、その培地中の多糖類生産量を調べ
た。次に、この培養により生成した細胞を、L−S培地
に8 w/v%スクロースと10-5Mの2,4−Dを添加し
た糖成分増加液体培地に移植し、2時間振とうした。次
いで、液体培地から細胞を分離し、再度基本培地に移植
させた。その後、前記の糖成分増加液体培地移植の後に
基本培地に移植した細胞の多糖類生産能を調べるため
に、6日後、7日後、そして10日後の培地中の多糖類
生産量を調べた。また、対照として基本培地のみを利用
し、同様に継代培養して対照用の細胞を得て、その途中
で同様に多糖類生産量を調べた。
(3) Second stage of subculture of callus: In a 500 ml Erlenmeyer flask, a basic medium (LS medium, 4 w / v% sucrose and 10 −5 M 2,4-D was added). 100 mL of the added) was added, and callus was inoculated into this medium at an inoculation rate of 20 w / v%, and the mixture was cultured with shaking at 26 ° C. and 90 rpm for 4 days to examine the amount of polysaccharide produced in the medium. Next, the cells produced by this culture were transplanted to a liquid medium containing increased sugar components in which 8 w / v% sucrose and 10 −5 M 2,4-D were added to the L-S medium and shaken for 2 hours. . Then, the cells were separated from the liquid medium and transplanted to the basal medium again. Then, in order to examine the polysaccharide production ability of the cells transplanted to the basic medium after the above-mentioned transplantation of the sugar component-increasing liquid medium, the polysaccharide production amount in the medium after 6 days, 7 days, and 10 days was examined. Further, using only the basic medium as a control, cells were subcultured in the same manner to obtain control cells, and the production amount of polysaccharide was similarly examined during the process.

【0022】その結果を、図1にグラフとして示す。こ
のグラフは、最初の4日間の振とう培養による培地中の
多糖類濃度を基準(1とした)とし、各測定時の培地中
の多糖類濃度の相対量を表わすものである。
The results are shown as a graph in FIG. This graph shows the relative amount of the polysaccharide concentration in the medium at each measurement, with the polysaccharide concentration in the medium in the first 4 days of shaking culture as a reference (1).

【0023】[実施例2]実施例1の(3)のカルスの
継代培養第二期で、基本培地として、L−S培地に5 w
/v%スクロース、10-5Mの2,4−D及び50mMの
塩化カリウムを添加したものを用い、途中の細胞の糖成
分増加液体培地への移植を、スクロース濃度が12 w/v
%のスクロース水溶液に2時間浸漬させることによって
行なった以外は同様にして継代培養を行なった。この糖
成分増加液体培地移植の後に基本培地に移植した細胞の
多糖類生産能を調べるために、その移植後14日目の培
地中の多糖類生産量を調べた。そして、同時に細胞の増
殖率も調べた。また、対照として基本培地のみを利用
し、同様に継代培養して対照用の細胞を得て、その途中
で同様に多糖類生産量を調べた。また、同時に細胞の増
殖率も調べた。
[Example 2] In the second stage of subculture of callus in (3) of Example 1, 5 w was added to LS medium as a basic medium.
/ v% sucrose, 10 -5 M 2,4-D and 50 mM potassium chloride were added, and cells in the middle were transplanted to a liquid medium with an increased sugar component, and the sucrose concentration was 12 w / v.
Subculture was carried out in the same manner except that it was immersed in an aqueous sucrose solution of 2% for 2 hours. In order to examine the polysaccharide production ability of cells transplanted to the basic medium after the transplantation of the liquid medium with increased sugar component, the production amount of polysaccharides in the medium 14 days after the transplantation was examined. At the same time, the cell growth rate was also examined. Further, using only the basic medium as a control, cells were subcultured in the same manner to obtain control cells, and the production amount of polysaccharide was similarly examined during the process. At the same time, the cell growth rate was also examined.

【0024】その結果を、図2に棒グラフとして示す。
このグラフは、基本培地のみを用いた対照による多糖類
生産量を基準(100%)とした棒グラフである。図2
の結果から、本発明に従って継代培養の途中で糖濃度の
変化した培地で一時的に培養したカルス(細胞)が、細
胞の増殖を伴なうことなく、高い多糖類生産能を示すよ
うに変化することが明らかである。
The results are shown as a bar graph in FIG.
This graph is a bar graph with reference to the production amount of polysaccharide by the control using only the basal medium (100%). Figure 2
From the results, it was confirmed that callus (cells) temporarily cultured in a medium having a changed sugar concentration in the course of subculturing according to the present invention showed a high polysaccharide-producing ability without cell proliferation. Obviously it will change.

【0025】[実施例3]実施例2で、基本培地とし
て、L−S培地に4 w/v%スクロース及び10-5Mの
2,4−Dを添加したものを用い、途中の細胞の糖成分
増加液体培地への移植を、スクロース濃度が8 w/v%の
スクロース水溶液に2時間浸漬させることによって行な
った以外は同様にして継代培養を行なった。そして、上
記の糖濃度変動処理を施した細胞の多糖類生産能を同様
にして調べた。なお、この糖濃度増加培地による繰り返
し処理の影響を調べるために、基本培地に細胞を移植し
たのちに更に、その細胞について2日目と4日目にも同
様な糖成分変動処理を行なった。そして、上記の糖濃度
変動処理を施した細胞の多糖類生産能を同様にして調べ
た。また、対照として基本培地のみを利用し、同様に継
代培養して対照用の細胞を得て、その途中で同様に多糖
類生産量を調べた。また、同時に細胞の増殖率も調べ
た。
[Example 3] In Example 2, as the basal medium, L-S medium supplemented with 4 w / v% sucrose and 10 -5 M 2,4-D was used. Subculture was carried out in the same manner except that the transplantation into the liquid medium with increased sugar component was carried out by immersing in a sucrose aqueous solution having a sucrose concentration of 8 w / v% for 2 hours. Then, the polysaccharide-producing ability of the cells subjected to the above-mentioned sugar concentration varying treatment was similarly examined. In order to investigate the effect of the repeated treatment with the medium having an increased sugar concentration, after transplanting the cells to the basic medium, the cells were further subjected to the same sugar component fluctuation treatment on the second and fourth days. Then, the polysaccharide-producing ability of the cells subjected to the above-mentioned sugar concentration varying treatment was similarly examined. Further, using only the basic medium as a control, cells were subcultured in the same manner to obtain control cells, and the production amount of polysaccharide was similarly examined during the process. At the same time, the cell growth rate was also examined.

【0026】その結果を、図3に棒グラフとして示す。
このグラフは、基本培地のみを用いた対照による多糖類
生産量を基準(100%)とした棒グラフである。図3
の結果から、継代培養の途中で糖濃度の変化した培地で
繰り返し培養したカルス(細胞)が高い多糖類生産能を
示すように変わることがわかる。
The results are shown as a bar graph in FIG.
This graph is a bar graph with reference to the production amount of polysaccharide by the control using only the basal medium (100%). Figure 3
From the results, it can be seen that callus (cells) repeatedly cultured in a medium having a changed sugar concentration during the subculture changes so as to show a high polysaccharide-producing ability.

【0027】[実施例4]実施例1の(3)のカルスの
継代培養第一期で得られたカルスを、500ミリリット
ル容の三角フラスコに仕込んだ基本培地(L−S培地
に、4 w/v%スクロース、10-5Mの2,4−D及び5
0mMの塩化カリウムを添加したもの)200mLに、
接種量10 w/v%で接種して、26℃、90rpmで4
日間振とう培養し、その培地中の多糖類生産量を調べ
た。
[Example 4] Callus obtained in the first stage of subculture of callus of (3) of Example 1 was mixed with a basic medium (LS medium containing 4 w / v% sucrose, 10 -5 M 2,4-D and 5
200 mL with 0 mM potassium chloride added)
Inoculate at 10 w / v% and incubate at 26 ° C and 90 rpm for 4
After shaking culture for one day, the production amount of polysaccharide in the medium was examined.

【0028】次に、この培養により生成した細胞を三つ
の部分に分け、それぞれを下記の成分変動培地に2時間
浸漬させた。 (a)培地成分中のスクロース濃度のみを高濃度(1.
5倍)としたもの。 (b)培地成分中の窒素源(KNO3 、NH4 NO3
のみを高濃度(3倍)としたもの。 (c)全培地成分の濃度を高濃度(2.0倍)としたも
の。 上記の処理をした後、細胞を基本培地に移植して2週間
上記と同様な条件で継代培養を行なった。次いで、再度
上記の成分変動培地での処理を行なった。そして、この
ような成分変動培地処理をそれぞれについて合計5回実
施することにより、その処理による細胞の多糖類生産能
の変動を前記と同様な方法で調べた。また、対照として
基本培地のみを利用し、同様に継代培養して対照用の細
胞を得て、その途中で、同様に多糖類生産量を調べた。
Next, the cells produced by this culture were divided into three parts, and each was immersed in the following component varying medium for 2 hours. (A) Only high sucrose concentration in the medium components (1.
5 times). (B) Nitrogen source (KNO 3 , NH 4 NO 3 ) in medium components
Only high concentration (3 times). (C) A high concentration (2.0 times) of the concentration of all medium components. After the above treatment, the cells were transferred to a basal medium and subcultured for 2 weeks under the same conditions as above. Then, the treatment with the above-mentioned component varying medium was performed again. Then, by performing such a component varying medium treatment a total of 5 times, the variation in the polysaccharide production ability of the cells due to the treatment was examined by the same method as described above. In addition, as a control, only the basal medium was used, and subculture was performed in the same manner to obtain control cells, and in the middle of the process, the polysaccharide production amount was similarly examined.

【0029】上記の(a)、(b)、(c)の結果をそ
れぞれ、図4、図5そして図6に棒グラフとして示す。
これらのグラフは、基本培地のみの継代培養による細胞
の多糖類生産能を100%とし、各測定時の培地中の多
糖類濃度の相対量を表わすものである。図4、図5、そ
して図6の結果から、継代培養の途中で糖濃度、窒素源
濃度、あるいは全成分濃度などが変化した培地で繰り返
し培養したカルス(細胞)が高い多糖類生産能を示すよ
うになることがわかる。
The results of the above (a), (b) and (c) are shown as bar graphs in FIGS. 4, 5 and 6, respectively.
These graphs show the relative amount of polysaccharide concentration in the medium at each measurement, with the polysaccharide production ability of the cells obtained by subculturing only the basal medium as 100%. From the results of Fig. 4, Fig. 5, and Fig. 6, the callus (cells) that had been repeatedly cultivated in the medium in which the sugar concentration, the nitrogen source concentration, or the concentration of all components changed during the subculture had a high polysaccharide-producing ability. You can see that it becomes as shown.

【0030】[0030]

【発明の効果】本発明に従って、継代培養の途中で糖濃
度、窒素源濃度、あるいは全成分濃度などが変化した培
地で処理した細胞は、従来の培地の組成変動なしに継代
培養した細胞に比較して高い多糖類生産能を示すように
なる。従って、本発明の製造方法を利用して製造した多
糖類生産性細胞は、工業的に多糖類を生産する場合に特
に有利に使用できる。
INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, cells treated with a medium in which sugar concentration, nitrogen source concentration, total component concentration, etc. were changed during the subculture, cells subcultured without changing the composition of the conventional medium. It has a higher polysaccharide-producing ability than that of Therefore, the polysaccharide-producing cell produced by using the production method of the present invention can be particularly advantageously used when industrially producing a polysaccharide.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】本発明に従って培地中の糖濃度を変化させた培
地での処理を伴なって継代培養した細胞と従来の方法に
より継代培養した細胞における多糖類生産性の推移の例
を示すグラフである。
FIG. 1 shows an example of transition of polysaccharide productivity in cells subcultured with treatment with a medium in which the sugar concentration in the medium is changed according to the present invention and cells subcultured by a conventional method. It is a graph.

【図2】本発明に従い培地中の糖濃度を変化させた培地
での処理を伴なって継代培養した細胞と従来の方法によ
り継代培養した細胞による多糖類生産性の変動を示す他
の例のグラフである。
FIG. 2 shows other changes in the polysaccharide productivity of cells subcultured with treatment with a medium having a different sugar concentration in the medium according to the present invention and cells subcultured by a conventional method. It is an example graph.

【図3】本発明に従い培地中の糖濃度を変化させた培地
での繰り返し処理を伴なって継代培養した細胞と従来の
方法により継代培養した細胞による多糖類生産性の変動
を示す他の例のグラフである。
FIG. 3 shows changes in the polysaccharide productivity of cells subcultured by repeated treatment with a medium in which the sugar concentration in the medium is changed according to the present invention and cells subcultured by a conventional method. It is a graph of the example of.

【図4】本発明に従い培地中の糖濃度を変化させた培地
での繰り返し処理を伴なって継代培養した細胞と従来の
方法により継代培養した細胞による多糖類生産性の変動
を示す他の例のグラフである。
FIG. 4 shows changes in the polysaccharide productivity of cells subcultured by repeated treatment with a medium in which the sugar concentration in the medium is changed according to the present invention and cells subcultured by a conventional method. It is a graph of the example of.

【図5】本発明に従い培地中の窒素成分濃度を変化させ
た培地での処理を伴なって継代培養した細胞と従来の方
法により継代培養した細胞による多糖類生産性の変動の
例を示すグラフである。
FIG. 5: Example of variation in polysaccharide productivity by cells subcultured with treatment with a medium having a different nitrogen component concentration in the medium according to the present invention and cells subcultured by a conventional method It is a graph shown.

【図6】本発明に従い培地中の全成分濃度を変化させた
培地での処理を伴なって継代培養した細胞と従来の方法
により継代培養した細胞による多糖類生産性の変動の例
を示すグラフである。
FIG. 6 shows an example of variation in polysaccharide productivity by cells subcultured with treatment with a medium in which the concentrations of all components in the medium are changed according to the present invention and cells subcultured by a conventional method. It is a graph shown.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 生賀 裕 茨城県鹿島郡波崎町土合本町1−8762− 23 (56)参考文献 特開 平4−53495(JP,A) 特開 平5−207888(JP,A) (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12N 5/04 BIOSIS/WPI(DIALOG)─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (72) Inventor Yutaka Iga 1-8762-23 Doihonhonmachi, Hasaki-cho, Kashima-gun, Ibaraki Prefecture (56) Reference JP-A-4-53495 (JP, A) JP-A-5-207888 (JP, A) (58) Fields investigated (Int.Cl. 7 , DB name) C12N 5/04 BIOSIS / WPI (DIALOG)

Claims (5)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 細胞外に多糖類を分泌する植物細胞のカ
ルスを液体培地で継代培養して多糖類生産性細胞を製造
する方法において、該継代培養の途中で培地成分組成
の炭素源成分、窒素源成分、金属塩、もしくは植物ホル
モンの濃度を20%以上増加させるような変化をさせた
液体培地で培養する操作が含まれることを特徴とする多
糖類高生産性細胞の製造方法。
1. A method for the callus of the plant cells that secrete polysaccharides extracellularly producing polysaccharide producing cells subcultured in liquid media, media component composition in the middle of該継subculture
Of a high-polysaccharide-producing cell, characterized in that it comprises an operation of culturing in a liquid medium in which the concentration of the carbon source component, the nitrogen source component, the metal salt, or the phytohormones is increased by 20% or more. Production method.
【請求項2】 液体培地中に30〜200mMの金属塩
が含まれている請求項1に記載の多糖類高生産性細胞の
製造方法。
2. A metal salt of 30 to 200 mM in a liquid medium.
The method for producing a high-polysaccharide-producing cell according to claim 1, which comprises:
【請求項3】 継代培養の途中での液体培地中の成分組
成の変化が複数種の成分の濃度増加である請求項1もし
くは2に記載の多糖類高生産性細胞の製造方法。
Wherein a concentration increase is claim plural kinds of component change in the chemical composition is in a liquid medium in the middle of subculture 1 if
A method for producing a high-polysaccharide-producing cell according to item 2 .
【請求項4】 カルスがポリアンテス属植物の細胞から
誘導されたものである請求項1乃至3のうちのいずれか
項に記載の多糖類高生産性細胞の製造方法。
4. Callus derived from cells of a Polyanthes plant
4. Any one of claims 1 to 3, which is induced .
The method for producing a high-polysaccharide-producing cell according to the item.
【請求項5】 カルスがポリアンテス属のチューベロー
ス植物より誘導されたものである請求項1乃至4のうち
のいずれかの項に記載の多糖類高生産性細胞の製造方
法。
5. A tubero of the genus Polyanthes with callus.
The method for producing a high-polysaccharide-producing cell according to any one of claims 1 to 4, which is derived from a plant .
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