JP3720764B2 - Cultured artificial bone or cultured artificial joint, and method for producing cultured artificial bone or cultured artificial joint - Google Patents
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Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、高い骨再生能力を有する培養人工骨または培養人工関節、および該培養人工骨または培養人工関節の製造方法に関する。本発明の培養人工骨を生体内に移植すれば、確実且つ短期間に骨を再生させることが可能であり、また本発明の培養人工関節を生体内に移植すれば、より早期に骨との接合が実現できる。
【０００２】
【従来の技術】
近年、骨髄細胞を培養して、骨再生のための培養人工骨をつくる研究が行われている。一般に培養人工骨は、図１に示されるようにしてつくられる。すなわち、まず骨髄細胞を採取し、それをＴ−７５flaskで１０日間初期培養する。初期培養後、細胞をトリプシン処理により剥し、その細胞をリン酸カルシウム多孔体ブロックに接着させる。接着させた細胞とリン酸カルシウム多孔体ブロックをＣＯ2インキュベータ内で１時間培養する。その後、活性化成長因子デキサメサゾン（Dexamethasone）を添加して２週間培養し、培養人工骨を得る。
【０００３】
このような培養人工骨は、従来のセラミックス人工骨では骨欠損の修復適応が困難であった骨欠損の大きい症例や比較的血流の悪い部分への適応が考えられており、また培養人工関節では、より早期に骨との接合が可能と考えられている。しかし、このような骨髄培養技術では、セラミックス表面（界面）や人工関節接合部に骨を形成するには不充分であり、より確実に骨を形成できる培養方法および培養人工骨または培養人工関節が求められている。
【０００４】
このような背景から、骨欠損の重症度が高い症例に対しては、より骨形成能の高い移植用材料、すなわち高い骨誘導活性を有する移植用材料が望まれている。これを背景として、リン酸カルシウム系のセラミックス材料を担体として骨髄細胞を培養した、細胞組込み型人工骨の研究や、より早期に骨結合する培養人工関節の研究が行われている。
【０００５】
吉川らは、ヒト培養骨髄細胞を多孔質ハイドロキシアパタイト（ＨＡＰ）に播種し、骨形成培地で３週間培養後、これをヌードマウス腹腔内に移植し、２ヶ月後に摘出、組織学的、生化学的定量的に評価し、有意な骨形成を確認し報告している（日整会誌73(3), S672）。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明において、多孔体に骨髄細胞が組み込まれた培養人工骨または培養人工関節を作製するにあたり、以下のような問題点を見出した。
【０００７】
まず、骨髄細胞が組み込まれた培養人工骨または培養人工関節において、骨髄細胞は、多孔体の中心部まで侵入させて増殖させることが必要であるが、使用する多孔体のサイズが大きくなると、骨髄細胞が中心部に入っていくのが困難となる。また、細胞が多孔体の中心部まで侵入しても、血管が中心部まで行き渡らないと、酸素分圧が低下して骨芽細胞として機能しない問題がある。
【０００８】
また、骨髄細胞の培養において、デキサメサゾンなどを含む培地で培養すると、骨様組織が形成され、その骨基質には骨形成誘導タンパク（ＢＭＰ）活性があることが報告されている（Bone formation in vitro by stromal cells obtained from marrow of young adult rats, Cell Tissue Res., 254, 317-330 (1988)）。しかし、デキサメサゾンだけで骨を再生させるのは充分ではない。
【０００９】
上記事情に鑑み、本発明は、高い骨再生能力を有し、確実且つ短期間に骨再生が可能な培養人工骨または培養人工関節を提供することを目的とする。
【００１０】
【課題を解決するための手段】
本発明では、担体となる多孔体の構造、および骨髄細胞の培養条件について検討を重ね、以下の発明を完成させるに至った。
【００１１】
▲１▼本発明の培養人工骨または培養人工関節は、気孔の連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体に、培養骨組織が組み込まれていることを特徴とする。
【００１２】
▲２▼本発明の培養人工骨または培養人工関節は、多孔体に、間葉系の幹細胞が女性ホルモン様物質の作用により骨組織化されて組み込まれていることを特徴とする。
【００１３】
▲３▼本発明の培養人工骨または培養人工関節は、多孔体に、間葉系の幹細胞が重層培養により骨組織化されて組み込まれていることを特徴とする。
【００１４】
上記▲１▼〜▲３▼の特徴の幾つかを併せもっている培養人工骨または培養人工関節が、本発明の範囲に包含されることはいうまでもなく、このような培養人工骨または培養人工関節において、本発明の効果はより顕著なものとなる。
【００１５】
▲４▼本発明の培養人工骨または培養人工関節の製造方法は、間葉系の幹細胞を、多孔体上で、女性ホルモン様物質の存在下で培養する工程を含むことを特徴とする。
【００１６】
▲５▼本発明の培養人工骨または培養人工関節の製造方法は、間葉系の幹細胞を、多孔体上で培養する第一の工程と、
前記培養後の間葉系の幹細胞が付着している多孔体上に、間葉系の幹細胞を重層させて培養する第二の工程とを含み、
該第二の工程が少なくとも１回以上繰り返されることを特徴とする。
【００１７】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の培養人工骨および培養人工関節を詳細に説明する。
【００１８】
なお、本明細書全体にわたって、細胞を組み込んでいない人工骨（例えばセラミックス人工骨等）と区別する意味において、細胞を多孔体に組み込んで培養した本発明のような人工骨を「培養人工骨」と称する。同様に、細胞を組み込んでいない人工関節（例えば金属で構成される人工関節等）と区別する意味において、細胞を多孔体に組み込んで培養した本発明のような人工関節を「培養人工関節」と称する。
【００１９】
▲１▼本発明の培養人工骨および培養人工関節は、気孔の連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体に、培養骨組織が組み込まれていることを特徴とする。
【００２０】
まず、培養骨組織を形成するための材料となる細胞は、間葉系の幹細胞であって骨組織に分化可能な細胞であれば特に限定されず、例えば、間葉系の幹細胞であって骨組織に分化可能な細胞を含む骨髄細胞や、末梢血の幹細胞を使用することができる。これら骨組織に分化可能な細胞は、生体から採取することにより入手することができる。例えば、骨髄細胞は、変形性腰椎症患者より手術中全身麻酔下で腸骨より骨髄液を採取することにより入手することができる。
【００２１】
以下、間葉系の幹細胞として骨髄細胞を使用した場合を例に説明するが、本発明が、骨髄細胞を使用することに限定されないことはいうまでもない。
【００２２】
本発明において多孔体とは、生体適合性を有する多孔性のセラミックスや、コラーゲン、ポリ乳酸、また多孔性のメタル等であり、多数の気孔を有するものであれば、これらに特に限定されない。多孔体は、骨髄細胞が増殖して培養骨組織を形成するための足場として機能し得る。
【００２３】
多孔体として、一般に、アパタイトやβ−リン酸三カルシウム（β−ＴＣＰ）などのリン酸カルシウム系セラミックス、コラーゲン、ポリ乳酸等を使用することができる。また、リン酸カルシウム系セラミックスとコラーゲンを組合せたり、リン酸カルシウム系セラミックスとポリ乳酸を組合せたりしてもよい。β−リン酸三カルシウム、コラーゲン、ポリ乳酸は生分解性で、生体に吸収される特徴を有し、アパタイトはその強度が強いという特徴を有する。当業者であれば、培養人工骨を移植する部位等に応じて、適切な種類の多孔体を適宜選んで使用することができる。
【００２４】
本発明において多孔体は、骨髄細胞が通過可能なサイズの多数の気孔を有し、多くの気孔は、互いに連通している。２つの気孔が連通している様子を図２に示す。気孔と気孔が連通した際の接続部分を連通孔という（図２参照）。なお、図２には２つの気孔のみを示すが、実際の多孔体は、無数の気孔を有し、この無数の気孔が連続し連なっている。ここでいう「気孔」が、セラミックスの焼成により必然的に生じる0.1〜１μｍ程度の気孔を指すものではないことは、文脈上、明らかである。
【００２５】
連通孔は、任意の形状を有していてよいが、気孔同士を連通させた際、円形になることが多い。連通孔の直径は、少なくとも骨髄細胞が通過可能なサイズであることが好ましく、２０μｍ以上であることが好ましい。より好ましくは、連通孔の直径は、２０μｍ以上、５００μｍ以下である。なお、連通孔が正円でないとき、直径は、最大径を意味する。
【００２６】
本発明において使用する多孔体は、気孔の連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上であればよいが、好ましくは、多孔体に存在する全ての連通孔のうち４０％以上の連通孔が直径２０μｍ以上であり、より好ましくは８０％以上の連通孔が直径２０μｍ以上である。また、本発明において多孔体は、任意の気孔率を有するものを使用することができ、好ましくは約３０〜９０％の間の任意の気孔率を有するものを使用することができる。
【００２７】
気孔の連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体は、公知の手法により作製することができる。例えば、リン酸カルシウム系セラミックスは、リン酸カルシウム微粉末に、適切な解こう剤（例えばポリアクリル酸アンモニウム塩）と起泡剤（例えばポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル）を添加して発泡スラリーを調製し、これを乾燥、焼成することにより作製することができる（日本国特許第2597355号参照）。直径２０μｍ以上の連通孔を有する種々の多孔体の作製法については、後述の実施例１の記載を参照されたい。
【００２８】
多孔体の大きさ、形等は、生体内の移植部位に合わせて、所望の大きさ、形に作製することができる。多孔体の気孔に骨髄細胞が入り込んで増殖し、培養骨組織を形成するためには、例えば、５mm×５mm×５mmのブロック状のものを使用することができる。これらブロック状の多孔体は、これらを複数個組合せて用いて移植部位に適合させることができる。
【００２９】
上述のとおり作成された、連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体に、骨髄細胞を播種し培養することにより、本発明の培養人工骨および培養人工関節は作製され得る。以下に培養人工骨を製造する例を示す。
【００３０】
培養は、図１に示すとおり行うことができる。まず、骨髄細胞を採取し、培養フラスコに移し、ＭＥＭ系培地に10〜15％のＦＢＳ（Fetal Bovine Serum）を加えたものを用いて、約10日間、５％ＣＯ2の雰囲気下、37℃で培養する（初期培養）。次にトリプシン処理により骨髄細胞を培養フラスコから剥した後、ブロック状の多孔質セラミックスに播種する。細胞を播種されたブロック状の多孔質セラミックスは、ＭＥＭ系培地に10〜15％のＦＢＳを加えたものを培地として用いて、１〜３時間、５％ＣＯ2の雰囲気下、37℃で培養する。播種する細胞濃度は、５mm×５mm×５mmのブロックに対して、１mLの培地あたり100万個以上必要である。その後、ＭＥＭ系培地に10〜15％のＦＢＳを加えたものをベースに、supplementとして10-8Ｍのデキサメサゾン、10ｍＭのβ−glycerophosphate、50μg/ｍLのアスコルビン酸を加えたものを培地として用いて、２日おきに培地を交換しながら、約２週間、５％ＣＯ2の雰囲気下、37℃で培養する。得られたブロックは、生体内の骨欠損部に移植するために使用することができる。
【００３１】
上述したような連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体（上記製造例においては多孔質セラミックス）を、骨髄細胞を培養するための足場として用いた場合、連通孔を有していない多孔体や、全ての連通孔の直径が２０μｍ未満である多孔体を用いた場合と比べて、以下の利点を有する。
【００３２】
すなわち、連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体を用いることにより、骨髄細胞は連通孔を通って増殖し、多孔体の中心部まで侵入することが可能となる。また、気孔の連通孔の直径が２０μｍ以上であることにより、骨髄細胞を培養する培養液も浸透しやすく、骨髄細胞の増殖に好都合である。
【００３３】
これにより、骨髄細胞は、多孔体の中心部に行き渡るまで網目状に増殖することができ、多孔体に培養骨組織が組み込まれた状態の培養人工骨を作製することが可能となる。この培養人工骨は、従来の人工骨と比べて、骨再生能力が高いため、生体内に移植された際には、短期間で確実に骨を形成することができる。
【００３４】
▲２▼また、本発明の培養人工骨および培養人工関節は、多孔体に、骨髄細胞が女性ホルモン様物質の作用により骨組織化されて組み込まれていることを特徴とする。以下、培養人工骨を製造する場合を例に説明する。
【００３５】
多孔質セラミックスに骨髄細胞を播種して培養し、培養人工骨を作製する際に女性ホルモン様物質を作用させると、骨髄細胞の増殖や分化が誘導され得ることを本発明において新たに見出した。
【００３６】
女性ホルモン様物質としては、女性ホルモン様活性を示す物質であれば特に限定されず、例えば、イソフラボン、エストロゲン、エストリオール、エストラジオール等を使用することができる。
【００３７】
なお、女性ホルモン様物質は、骨髄細胞の増殖や分化を誘導することが可能な任意の時期に添加すればよく、例えば、多孔体に骨髄細胞を接着させて培養する際に添加されていてもよいし、多孔体に骨髄細胞を接着させる前の初期培養時に予め添加されていてもよい。多孔体上で骨髄細胞を培養する際に女性ホルモン様物質が添加されていることが好ましい。
【００３８】
女性ホルモン様物質は、培養液中、骨髄細胞の分化、増殖を活性化し得る濃度で添加され、好ましくは10-6〜10-8 Ｍの濃度で添加される。
【００３９】
ここで使用する多孔体も、上述のとおり、生体適合性を有する多孔体であって、骨髄細胞が増殖するための足場として機能し得るものであれば特に限定されないが、上述の、気孔の連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体を使用することが好ましい。
【００４０】
このように、女性ホルモン様物質の作用により、骨髄細胞の増殖、分化が誘導されると、骨髄細胞は、より活性化した骨組織化された状態で多孔体に組み込まれる。これにより、多孔体に培養骨組織が組み込まれた状態の培養人工骨を作製することが可能となる。この培養人工骨は、従来の人工骨と比べて、骨再生能力が高いため、生体内に移植された際には、短期間で確実に骨を形成することができる。
【００４１】
▲３▼更に、本発明の培養人工骨および培養人工関節は、多孔体に、骨髄細胞が重層培養により骨組織化されて組み込まれていることを特徴とする。以下、培養人工骨を製造する場合を例に説明する。
【００４２】
多孔質セラミックスに骨髄細胞を播種して培養し、培養人工骨を作製する際に、重層培養を行うことにより、骨髄細胞が骨組織化され易いことを本発明において新たに見出した。
【００４３】
すなわち重層培養とは、多孔体に骨髄細胞を播種して所定の期間（例えば１週間）培養した後、更に骨髄細胞を播種して所定の期間（例えば１週間）培養することにより、細胞組織を重層化して培養することをいう。本発明において、細胞を重層する回数は、２回以上であればよく、好ましくは２〜３回である。重層化する細胞は、初期培養細胞や継代培養細胞であってもよい。
【００４４】
ここで使用する多孔体も、上述のとおり、生体適合性を有する多孔体であって、骨髄細胞が増殖するための足場として機能し得るものであれば特に限定されないが、上述の、気孔の連通孔の少なくとも一つが直径２０μｍ以上である多孔体を使用することが好ましい。また、重層培養を、女性ホルモン様物質を添加して行うことも好ましい。
【００４５】
このように重層培養を行うことにより、骨髄細胞の骨組織化が促進され、多孔体に活性化された培養骨組織が組み込まれた状態の培養人工骨を作製することが可能となる。この培養人工骨は、従来の人工骨と比べて、骨再生能力が高いため、生体内に移植された際には、短期間で確実に骨を形成することができる。
【００４６】
また、以上では培養人工骨を製造する例を示したが、同様の製造方法を人工関節の骨接合部に応用することで、より早期に人工関節を骨と結合させることができ、早期のリハビリ、社会復帰が可能となる。
【００４７】
▲４▼ 更に本発明は、間葉系の幹細胞を、多孔体上で、女性ホルモン様物質の存在下で培養する工程を含むことを特徴とする、培養人工骨または培養人工関節の製造方法を提供する。
【００４８】
▲５▼ また本発明は、培養人工骨または培養人工関節の製造方法であって、間葉系の幹細胞を、多孔体上で培養する第一の工程と、前記培養後の間葉系の幹細胞が付着している多孔体上に、間葉系の幹細胞を重層させて培養する第二の工程とを含み、該第二の工程が少なくとも１回以上繰り返されることを特徴とする方法を提供する。
【００４９】
本発明の培養人工骨または培養人工関節の製造方法については、上述の培養人工骨の説明を適宜参照されたい。本発明の培養人工骨または培養人工関節の製造方法を用いれば、骨再生能力の高い培養人工骨や骨結合能力の高い培養人工関節を、短時間に製造することが可能である。
【００５０】
【実施例】
（実施例１）
１．アパタイト
炭酸カルシウム粉末とリン酸水素カルシウム２水和物をモル比で２：３の割合で秤量し、純水とともにボールミルポットに入れ、約１日ボールミルで混合粉砕した。得られたスラリーを約80℃で乾燥し、その後、750℃で焼成した。得られた粉末は、焼結性に優れた高純度なアパタイトセラミックスであった。
【００５１】
この粉末に、純水とアクリル酸アンモニウム系の解こう材とポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル系の界面活性剤を添加し、混合攪拌して発泡スラリーを調製した。この発泡スラリーを乾燥させ、その後1150℃で焼成して、アパタイトの多孔質セラミックスを得た。この多孔質セラミックスは、気孔率が70〜85％の範囲にあり、気孔径は100〜500μｍおよび１〜0.1μｍの２つの領域に分布があるものであった。
【００５２】
２．β−ＴＣＰ（β-tricalcium phosphate）
炭酸カルシウム粉末とリン酸水素カルシウム２水和物をモル比で１：２の割合で秤量し、純水とともにボールミルポットに入れ、約１日ボールミルで混合粉砕した。得られたスラリーを約80℃で乾燥し、その後、750℃で焼成した。得られた粉末は、焼結性に優れた高純度なβ−ＴＣＰセラミックスであった。
【００５３】
この粉末に、純水とアクリル酸アンモニウム系の解こう材とポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル系の界面活性剤を添加し、混合攪拌して発泡スラリーを調製した。この発泡スラリーを乾燥させ、その後1050℃で焼成して、β−ＴＣＰの多孔体セラミックスを得た。この多孔質セラミックスは、気孔率が70〜85％の範囲にあり、気孔径は100〜500μｍおよび１〜0.1μｍの２つの領域に分布があるものであった。
【００５４】
３．ポリ乳酸
ポリ乳酸は、塩化ベンゼンで可溶化し、約40℃に加熱し、ドラフターに24時間放置し、塩化ベンゼンを揮発させたものを用いた。
【００５５】
４．コラーゲン
コラーゲンは、高研製コラーゲンスポンジを用いた。
【００５６】
５．リン酸カルシウムとコラーゲンの組合せ
リン酸カルシウムとコラーゲンの組合せは、上記リン酸カルシウム750℃焼成品とコラーゲンに水を加え、ジルコニア製ポットミルで湿式混合させたものをプレス成形し、機械的に孔あけしたものを用いた。
【００５７】
６．リン酸カルシウムとポリ乳酸の組合せ
リン酸カルシウムとポリ乳酸の組合せは、気孔率が90％の多孔体に、塩化ベンゼンで可溶化したポリ乳酸を部分的にしみ込ませたものを用いた。
【００５８】
７．メタル
メタルは、ロータス型（蓮根型）タイプにした一方向に孔が連通しているもの、あるいは、人工関節に用いられるたわし状の網目の連通した構造をしているポーラスメタルを用いた。これらには、チタン合金、SUS304、310等が用いられる。
【００５９】
（実施例２）
実施例１で作製した、β−ＴＣＰの多孔質セラミックス等を足場材料として、骨髄由来骨形成細胞を播種し、インビトロで培養し、培養能力に関し検討した。
【００６０】
手術中全身麻酔下で、腸骨より骨髄液３ｍLを採取した。骨髄液にヘパリン１ｍLを加え凝固しないようにし、さらに５ｍLの0.25％トリプシンを加え攪拌し、室温で３分間静置した。培養液（牛胎児血清を含む）40ｍLを加えて、遠心分離（900 rpm、５分間）し、上澄みを除去し、骨髄細胞をトリプシンで洗浄した。沈殿した骨髄細胞に標準培養液（MEMに抗生剤、牛胎児血清を含む）20ｍLを加えて、２個のＴ７５フラスコで初期培養した。２週間後トリプシン処理し、培養浮遊液を作製した。この培養浮遊液を２分割し、一方は重層化培養による効果を調べるために使用し、一方は女性ホルモン活性を示すGenisteinの効果を検討するために使用した。
【００６１】
ａ．重層化培養による活性化培養骨の作製
初期培養した細胞浮遊液を、35ｍｍの培養皿に播種し、骨形成培地（上記の標準培養液に、10ｎＭ dexamethasone, 10ｍＭ beta-glycerophosphate, 82μg/mL ascorbic acid phosphateを含む）で培養した。１週間後、該培養により得られた培養組織の上に、継代培養しておいた骨髄細胞の細胞浮遊液を再播種し、細胞を重層化して培養した。さらに１週間後、重層化培養により得られた培養組織の上に、継代培養しておいた骨髄細胞の細胞浮遊液を再々播種し、細胞を重層化して培養した。さらに１週間後（合計３週間後）、培養により得られた培養組織のアルカリフォスファターゼ活性を測定した。
【００６２】
コントロール群では、単層で３週間培養した。骨形成細胞活性を示すアルカリフォスファターゼ活性の測定結果は、コントロール群では、18.5(PN micromol)であったのに対し、重層培養群では、29.0(PN micromol)であった。培養骨組織を重層化することにより、骨形成細胞が58％高い活性を有する培養骨を作製することができた。
【００６３】
ｂ．女性ホルモン活性を示すGenistein添加培養による活性化培養骨の作製
Genisteinは、大豆に含まれるイソフラボンの一種であるが、女性ホルモン様活性を示す。通常生体の女性ホルモンは、投与されると乳癌の発生率を上昇させたり、女性性器に対する作用により不正出血をおこしたりなどの副作用があるが、このGenisteinには、発癌性や女性性器に対する副作用がないことが報告されており、極めて副作用のすくない女性ホルモン剤として注目されている。
【００６４】
初期培養したヒト細胞浮遊液を６well plateに播種し、上記の骨形成培地に、Genisteinを最終濃度10-5、10-6、10-7、10-8Ｍとなるように添加し、培養した。２週後に、培養組織の骨形成細胞活性を示すアルカリフォスファターゼ活性と、細胞の増殖能を示すＤＮＡ量を測定した。
【００６５】
アルカリフォスファターゼ活性は、Genisteinの最終濃度が０（コントロール）、10-5、10-6、10-7、10-8Ｍである各添加群において、それぞれ1.0±0.5、0.9±0.2、0.71±0.5、2.4±0.2、2.3±0.5（PN micromol）であった。ＤＮＡ測定値は、それぞれ54±７、34±３、34±８、64±５、65±４（mg）であった。Genisteinの最終濃度が10-7、10-8Ｍである添加群において、コントロールより2.3ないし2.4倍の骨形成細胞活性を示し、ＤＮＡ量も19ないし20％増加した。Genisteinを最終濃度10-7、10-8Ｍで添加して培養することにより、細胞増殖が促進され、数倍高い骨再生活性を有する培養骨を作製できることが示された。
【００６６】
以上、ａ，ｂの実施例より、培養液に女性ホルモン活性を示す骨形成促進因子を加えて培養することと、培養骨組織を重層化する培養方法を併用することにより、さらに高い骨再生活性を有する培養骨の作製が可能になる。この活性化した培養骨を人工骨や人工関節材料上に培養することにより、より高い骨再生能力をもつ培養人工骨、培養人工関節材料の作製が可能である。
【００６７】
【発明の効果】
以上説明したように、本発明の培養人工骨または培養人工関節は、骨髄細胞が骨組織にまで分化した状態で多孔体に組み込まれており、従来の培養人工骨または培養人工関節より骨組織が高度に組織化されている点で優れている。実際、本発明において、本発明の培養人工骨または培養人工関節が、従来の培養人工骨または培養人工関節より高い骨形成活性を有していることが示されている。従って、本発明の培養人工骨または培養人工関節を用いれば、生体に移植した際に骨を形成する能力が高く、短期間に確実に骨形成することが可能である。
【００６８】
また、本発明の培養人工骨または培養人工関節の製造方法を用いれば、骨再生能力の高い培養人工骨または培養人工関節を、短時間に製造することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【図１】 培養人工骨の一般的な作成方法を示す図。
【図２】 気孔と気孔が連通する様子を示す、多孔体の部分断面図。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a cultured artificial bone or cultured artificial joint having high bone regeneration ability, and a method for producing the cultured artificial bone or cultured artificial joint. If the cultured artificial bone of the present invention is transplanted in vivo, it is possible to regenerate the bone reliably and in a short period of time, and if the cultured artificial joint of the present invention is transplanted in vivo, the bone can be regenerated earlier. Bonding can be realized.
[0002]
[Prior art]
In recent years, research has been conducted on culturing bone marrow cells to produce cultured artificial bones for bone regeneration. In general, a cultured artificial bone is produced as shown in FIG. That is, first, bone marrow cells are collected and initially cultured with T-75flask for 10 days. After the initial culture, the cells are detached by trypsin treatment, and the cells are adhered to the calcium phosphate porous block. The adhered cells and the calcium phosphate porous block are cultured in a CO2 incubator for 1 hour. Thereafter, the activated growth factor dexamethasone is added and cultured for 2 weeks to obtain cultured artificial bone.
[0003]
Such cultured artificial bones are considered to be applied to cases with large bone defects and relatively poor blood flow, where it was difficult to repair bone defects with conventional ceramic artificial bones. Therefore, it is considered possible to join the bone earlier. However, such bone marrow culture technology is insufficient to form bone on the ceramic surface (interface) or artificial joint joint, and there is a culture method and cultured artificial bone or cultured artificial joint that can form bone more reliably. It has been demanded.
[0004]
From such a background, a transplant material having a higher bone forming ability, that is, a transplant material having a high osteoinductive activity is desired for a case having a high severity of bone defect. Against this background, research on cell-embedded artificial bones in which bone marrow cells are cultured using a calcium phosphate ceramic material as a carrier, and research on cultured artificial joints that are bone-bonded earlier.
[0005]
Yoshikawa et al. Disseminated human cultured bone marrow cells in porous hydroxyapatite (HAP), cultured in osteogenic medium for 3 weeks, transplanted into the abdominal cavity of nude mice, and removed 2 months later, histologically, biochemical It is evaluated quantitatively, and significant bone formation is confirmed and reported (Nikkeikai 73 (3), S672).
[0006]
[Problems to be solved by the invention]
In the present invention, the following problems have been found in producing a cultured artificial bone or cultured artificial joint in which bone marrow cells are incorporated into a porous body.
[0007]
First, in a cultured artificial bone or a cultured artificial joint in which bone marrow cells are incorporated, it is necessary for the bone marrow cells to penetrate into the center of the porous body and proliferate. However, if the size of the porous body used increases, It becomes difficult for cells to enter the center. In addition, even if cells invade to the center of the porous body, if the blood vessels do not reach the center, there is a problem that the oxygen partial pressure is reduced and the cells do not function as osteoblasts.
[0008]
Further, when bone marrow cells are cultured in a medium containing dexamethasone or the like, a bone-like tissue is formed, and it is reported that the bone matrix has bone formation-inducing protein (BMP) activity (Bone formation in vitro). by stromal cells obtained from marrow of young adult rats, Cell Tissue Res., 254, 317-330 (1988)). However, it is not enough to regenerate bone with dexamethasone alone.
[0009]
In view of the above circumstances, an object of the present invention is to provide a cultured artificial bone or a cultured artificial joint that has a high bone regeneration capability and can reliably perform bone regeneration in a short time.
[0010]
[Means for Solving the Problems]
In the present invention, the structure of the porous body serving as a carrier and the culture conditions of bone marrow cells have been repeatedly studied, and the following invention has been completed.
[0011]
(1) The cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is characterized in that cultured bone tissue is incorporated in a porous body having at least one of pore communication holes having a diameter of 20 μm or more.
[0012]
{Circle around (2)} The cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is characterized in that mesenchymal stem cells are incorporated into a porous body by being bone-organized by the action of a female hormone-like substance.
[0013]
{Circle around (3)} The cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is characterized in that mesenchymal stem cells are incorporated into a porous body by bone organization by multi-layer culture.
[0014]
Needless to say, a cultured artificial bone or cultured artificial joint having some of the features of the above (1) to (3) is also included in the scope of the present invention. In the joint, the effect of the present invention becomes more remarkable.
[0015]
(4) The method for producing a cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is characterized by including a step of culturing mesenchymal stem cells on a porous material in the presence of a female hormone-like substance.
[0016]
(5) The method for producing a cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention comprises a first step of culturing mesenchymal stem cells on a porous body,
A second step of culturing the mesenchymal stem cells on the porous body to which the mesenchymal stem cells after the culture are adhered,
The second step is repeated at least once.
[0017]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, the cultured artificial bone and cultured artificial joint of the present invention will be described in detail.
[0018]
In addition, throughout the present specification, an artificial bone like the present invention in which cells are incorporated into a porous body and cultured in the sense of distinguishing them from artificial bones that do not incorporate cells (such as ceramic artificial bones) is referred to as “cultured artificial bone”. Called. Similarly, in the sense of distinguishing from an artificial joint in which cells are not incorporated (for example, an artificial joint made of metal, etc.), an artificial joint such as the present invention in which cells are cultured in a porous body and cultured is referred to as a “cultured artificial joint”. Called.
[0019]
(1) The cultured artificial bone and cultured artificial joint of the present invention are characterized in that the cultured bone tissue is incorporated in a porous body having at least one pore communicating hole having a diameter of 20 μm or more.
[0020]
First, the cells used as a material for forming the cultured bone tissue are not particularly limited as long as they are mesenchymal stem cells and can be differentiated into bone tissue. Bone marrow cells containing cells that can differentiate into tissues and stem cells of peripheral blood can be used. These cells that can differentiate into bone tissue can be obtained by collecting them from a living body. For example, bone marrow cells can be obtained from patients with degenerative lumbar spondylosis by collecting bone marrow fluid from the iliac bone under general anesthesia during surgery.
[0021]
Hereinafter, the case where bone marrow cells are used as mesenchymal stem cells will be described as an example, but it goes without saying that the present invention is not limited to using bone marrow cells.
[0022]
In the present invention, the porous body is a porous ceramic having biocompatibility, collagen, polylactic acid, porous metal or the like, and is not particularly limited as long as it has a large number of pores. The porous body can function as a scaffold for the growth of bone marrow cells to form cultured bone tissue.
[0023]
In general, calcium phosphate ceramics such as apatite and β-tricalcium phosphate (β-TCP), collagen, polylactic acid, and the like can be used as the porous body. Alternatively, calcium phosphate ceramics and collagen may be combined, or calcium phosphate ceramics and polylactic acid may be combined. β-tricalcium phosphate, collagen, and polylactic acid are biodegradable and have a characteristic of being absorbed by the living body, and apatite has a characteristic of high strength. A person skilled in the art can appropriately select and use an appropriate type of porous body according to the site to which the cultured artificial bone is transplanted.
[0024]
In the present invention, the porous body has a large number of pores of a size through which bone marrow cells can pass, and the many pores communicate with each other. A state in which the two pores communicate with each other is shown in FIG. A connection portion when the pores communicate with each other is referred to as a communication hole (see FIG. 2). Although only two pores are shown in FIG. 2, an actual porous body has innumerable pores, and these innumerable pores are continuously connected. It is clear from the context that the “pores” here do not refer to pores of about 0.1 to 1 μm that are inevitably generated by firing ceramics.
[0025]
The communication hole may have an arbitrary shape, but often has a circular shape when the pores communicate with each other. The diameter of the communication hole is preferably at least a size through which bone marrow cells can pass, and is preferably 20 μm or more. More preferably, the diameter of the communication hole is 20 μm or more and 500 μm or less. When the communication hole is not a perfect circle, the diameter means the maximum diameter.
[0026]
The porous body used in the present invention may have at least one pore communication hole having a diameter of 20 μm or more, but preferably 40% or more of all the communication holes existing in the porous body have a diameter of 20 μm or more. More preferably, 80% or more of the communication holes have a diameter of 20 μm or more. In the present invention, as the porous body, those having an arbitrary porosity can be used, and those having an arbitrary porosity of preferably about 30 to 90% can be used.
[0027]
A porous body in which at least one of the pore communication holes has a diameter of 20 μm or more can be produced by a known method. For example, calcium phosphate ceramics are prepared by adding a suitable peptizer (for example, polyacrylic acid ammonium salt) and a foaming agent (for example, polyoxyethylene alkylphenyl ether) to calcium phosphate fine powder to prepare a foamed slurry. It can be produced by drying and baking (see Japanese Patent No. 2597355). Refer to the description of Example 1 described later for the method of producing various porous bodies having communication holes having a diameter of 20 μm or more.
[0028]
The size, shape, and the like of the porous body can be produced in a desired size and shape according to the implantation site in the living body. For example, a 5 mm × 5 mm × 5 mm block-shaped material can be used in order to grow bone marrow cells by entering the pores of the porous body to form a cultured bone tissue. These block-like porous bodies can be adapted to the transplant site using a combination of a plurality of these porous bodies.
[0029]
The cultured artificial bone and cultured artificial joint of the present invention can be produced by seeding and culturing bone marrow cells in a porous body having at least one communication hole having a diameter of 20 μm or more prepared as described above. An example of producing cultured artificial bone is shown below.
[0030]
The culture can be performed as shown in FIG. First, bone marrow cells are collected, transferred to a culture flask, and 10 to 15% FBS (Fetal Bovine Serum) is added to a MEM medium medium at 37 ° C. in an atmosphere of 5% CO 2 for about 10 days. Incubate (initial culture). Next, bone marrow cells are peeled off from the culture flask by trypsin treatment, and then seeded on block-shaped porous ceramics. The block-shaped porous ceramics seeded with cells are cultured at 37 ° C. in an atmosphere of 5% CO 2 for 1 to 3 hours using a MEM medium medium containing 10 to 15% FBS as a medium. . The concentration of cells to be seeded is required to be 1 million or more per 1 mL of medium for a 5 mm × 5 mm × 5 mm block. Then, based on MEM medium supplemented with 10-15% FBS, supplemented with 10 -8 M dexamethasone, 10 mM β-glycerophosphate, 50 μg / mL ascorbic acid was used as the medium. Incubate at 37 ° C. in an atmosphere of 5% CO 2 for about 2 weeks while changing the medium every two days. The obtained block can be used for transplantation into a bone defect in vivo.
[0031]
When a porous body (porous ceramic in the above production example) in which at least one of the communication holes as described above has a diameter of 20 μm or more is used as a scaffold for culturing bone marrow cells, the porous body does not have a communication hole. Compared to the case of using a body or a porous body having a diameter of all communication holes of less than 20 μm, it has the following advantages.
[0032]
That is, by using a porous body in which at least one of the communication holes has a diameter of 20 μm or more, bone marrow cells can proliferate through the communication holes and enter the center of the porous body. Moreover, when the diameter of the pore communication holes is 20 μm or more, the culture medium for culturing bone marrow cells can easily permeate, which is convenient for the growth of bone marrow cells.
[0033]
As a result, bone marrow cells can be grown in a mesh pattern until reaching the center of the porous body, and a cultured artificial bone in a state where the cultured bone tissue is incorporated into the porous body can be produced. Since this cultured artificial bone has a higher bone regeneration ability than conventional artificial bones, when transplanted into a living body, bones can be reliably formed in a short period of time.
[0034]
{Circle around (2)} The cultured artificial bone and cultured artificial joint of the present invention are characterized in that bone marrow cells are incorporated into the porous body by bone organization by the action of a female hormone-like substance. Hereinafter, the case where a cultured artificial bone is manufactured will be described as an example.
[0035]
It was newly found in the present invention that proliferation and differentiation of bone marrow cells can be induced when a female hormone-like substance is allowed to act upon seeding and culturing bone marrow cells on porous ceramics to produce cultured artificial bone.
[0036]
The female hormone-like substance is not particularly limited as long as it is a substance exhibiting female hormone-like activity. For example, isoflavones, estrogens, estriol, estradiol and the like can be used.
[0037]
The female hormone-like substance may be added at any time that can induce the proliferation and differentiation of bone marrow cells. For example, the female hormone-like substance may be added when the bone marrow cells are adhered to a porous body and cultured. Alternatively, it may be added in advance during the initial culture before the bone marrow cells are adhered to the porous body. It is preferable that a female hormone-like substance is added when culturing bone marrow cells on the porous body.
[0038]
The female hormone-like substance is added in a culture solution at a concentration that can activate the differentiation and proliferation of bone marrow cells, and is preferably added at a concentration of 10 −6 to 10 −8 M.
[0039]
The porous body used here is not particularly limited as long as it is a biocompatible porous body and can function as a scaffold for the growth of bone marrow cells as described above. It is preferable to use a porous body in which at least one of the holes has a diameter of 20 μm or more.
[0040]
Thus, when the proliferation and differentiation of bone marrow cells are induced by the action of the female hormone-like substance, the bone marrow cells are incorporated into the porous body in a more activated bone organization state. This makes it possible to produce a cultured artificial bone in a state where the cultured bone tissue is incorporated into the porous body. Since this cultured artificial bone has a higher bone regeneration ability than conventional artificial bones, when transplanted into a living body, bones can be reliably formed in a short period of time.
[0041]
(3) Further, the cultured artificial bone and cultured artificial joint of the present invention are characterized in that bone marrow cells are incorporated into a porous body by bone tissue formation by multi-layer culture. Hereinafter, the case where a cultured artificial bone is manufactured will be described as an example.
[0042]
It has been newly found in the present invention that bone marrow cells can be easily organized into bone by cultivating a multi-layer culture when seeding bone marrow cells on porous ceramics and culturing them to produce cultured artificial bone.
[0043]
In other words, the multi-layer culture is a method in which bone marrow cells are seeded in a porous body and cultured for a predetermined period (for example, one week), and then further seeded with bone marrow cells and cultured for a predetermined period (for example, one week). This refers to culturing in layers. In the present invention, the number of times of layering the cells may be 2 or more, and preferably 2 to 3 times. The cells to be stratified may be initial culture cells or subculture cells.
[0044]
The porous body used here is not particularly limited as long as it is a biocompatible porous body and can function as a scaffold for the growth of bone marrow cells as described above. It is preferable to use a porous body in which at least one of the holes has a diameter of 20 μm or more. In addition, it is also preferable to carry out multi-layer culture by adding a female hormone-like substance.
[0045]
By performing multi-layer culture in this manner, bone organization of bone marrow cells is promoted, and it becomes possible to produce a cultured artificial bone in a state where the cultured bone tissue activated in the porous body is incorporated. Since this cultured artificial bone has a higher bone regeneration ability than conventional artificial bones, when transplanted into a living body, bones can be reliably formed in a short period of time.
[0046]
In the above, an example of producing a cultured artificial bone has been shown. However, by applying the same production method to the osteosynthesis part of the artificial joint, the artificial joint can be combined with the bone at an earlier stage, and early rehabilitation can be performed. It will be possible to return to society.
[0047]
(4) Furthermore, the present invention provides a method for producing a cultured artificial bone or a cultured artificial joint, comprising a step of culturing mesenchymal stem cells on a porous body in the presence of a female hormone-like substance. provide.
[0048]
(5) The present invention also relates to a method for producing a cultured artificial bone or a cultured artificial joint, the first step of culturing mesenchymal stem cells on a porous body, and the mesenchymal stem cells after culturing. And a second step of culturing mesenchymal stem cells in a layered manner on a porous body to which is attached, wherein the second step is repeated at least once. .
[0049]
For the production method of the cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention, refer to the explanation of the above-mentioned cultured artificial bone as appropriate. By using the method for producing a cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention, a cultured artificial bone having a high bone regeneration ability or a cultured artificial joint having a high bone binding ability can be produced in a short time.
[0050]
【Example】
(Example 1)
1. Apatite calcium carbonate powder and calcium hydrogen phosphate dihydrate were weighed at a molar ratio of 2: 3, put into a ball mill pot together with pure water, and mixed and ground in a ball mill for about 1 day. The resulting slurry was dried at about 80 ° C. and then calcined at 750 ° C. The obtained powder was a high-purity apatite ceramic excellent in sinterability.
[0051]
To this powder, pure water, an ammonium acrylate peptizer and a polyoxyethylene alkylphenyl ether surfactant were added, mixed and stirred to prepare a foamed slurry. The foamed slurry was dried and then fired at 1150 ° C. to obtain apatite porous ceramics. This porous ceramic had a porosity in the range of 70 to 85%, and the pore diameter was distributed in two regions of 100 to 500 μm and 1 to 0.1 μm.
[0052]
2. β-TCP (β-tricalcium phosphate)
The calcium carbonate powder and calcium hydrogen phosphate dihydrate were weighed in a molar ratio of 1: 2, put into a ball mill pot together with pure water, and mixed and ground in a ball mill for about 1 day. The resulting slurry was dried at about 80 ° C. and then calcined at 750 ° C. The obtained powder was high-purity β-TCP ceramics excellent in sinterability.
[0053]
To this powder, pure water, an ammonium acrylate peptizer and a polyoxyethylene alkylphenyl ether surfactant were added, mixed and stirred to prepare a foamed slurry. The foamed slurry was dried and then fired at 1050 ° C. to obtain a β-TCP porous ceramic. This porous ceramic had a porosity in the range of 70 to 85%, and the pore diameter was distributed in two regions of 100 to 500 μm and 1 to 0.1 μm.
[0054]
3. Polylactic acid polylactic acid was solubilized with benzene chloride, heated to about 40 ° C., left in a drafter for 24 hours, and volatilized benzene chloride was used.
[0055]
4). As collagen collagen, a collagen sponge manufactured by Koken Co., Ltd. was used.
[0056]
5. Combination of calcium phosphate and collagen The combination of calcium phosphate and collagen was obtained by adding water to the above-mentioned calcium phosphate 750 ° C. and collagen, wet-mixing them with a zirconia pot mill, and mechanically perforating them.
[0057]
6). Combination of calcium phosphate and polylactic acid As a combination of calcium phosphate and polylactic acid, a porous material having a porosity of 90% was partially impregnated with polylactic acid solubilized with benzene chloride.
[0058]
7. The metal metal used was a lotus type (lotus root type) with holes communicating in one direction, or a porous metal having a structure with a scouring mesh used for artificial joints. For these, titanium alloy, SUS304, 310 or the like is used.
[0059]
(Example 2)
Using β-TCP porous ceramics produced in Example 1 as a scaffold material, bone marrow-derived bone-forming cells were seeded, cultured in vitro, and examined for culture ability.
[0060]
During the operation, 3 mL of bone marrow fluid was collected from the iliac bone under general anesthesia. 1 mL of heparin was added to the bone marrow so as not to coagulate, 5 mL of 0.25% trypsin was further added and stirred, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 3 minutes. 40 mL of a culture solution (including fetal bovine serum) was added, centrifuged (900 rpm, 5 minutes), the supernatant was removed, and the bone marrow cells were washed with trypsin. To the precipitated bone marrow cells, 20 mL of a standard culture solution (MEM containing antibiotics and fetal calf serum) was added, and initial culture was performed in two T75 flasks. Two weeks later, trypsinization was performed to prepare a culture suspension. This culture suspension was divided into two parts, one was used to examine the effect of stratified culture, and the other was used to examine the effect of Genistein showing female hormone activity.
[0061]
a. Preparation of activated cultured bone by stratified culture Initially cultured cell suspension is seeded in a 35 mm culture dish, and osteogenic medium (in the above standard culture solution, 10 nM dexamethasone, 10 mM beta-glycerophosphate, 82 μg / mL ascorbic acid (including phosphate). After 1 week, the cell suspension of bone marrow cells that had been subcultured was reseeded on the cultured tissue obtained by the culture, and the cells were layered and cultured. One week later, the cell suspension of the bone marrow cells that had been subcultured was seeded again on the cultured tissue obtained by the stratification culture, and the cells were stratified and cultured. Further, after 1 week (after 3 weeks in total), the alkaline phosphatase activity of the cultured tissue obtained by culturing was measured.
[0062]
In the control group, the cells were cultured in a monolayer for 3 weeks. The measurement result of alkaline phosphatase activity showing osteogenic cell activity was 18.5 (PN micromol) in the control group, whereas it was 29.0 (PN micromol) in the multilayer culture group. By stratifying the cultured bone tissue, it was possible to produce a cultured bone having 58% higher activity of osteogenic cells.
[0063]
b. Production of activated cultured bones with Genistein-added culture showing female hormone activity
Genistein is a kind of isoflavone contained in soybean, but exhibits female hormone-like activity. In general, when female hormones are administered, there are side effects such as increasing the incidence of breast cancer and causing abnormal bleeding due to effects on female genitals, but Genistein has carcinogenicity and side effects on female genitals. It has been reported that there are no female side effects, and it has attracted attention as a female hormone agent with very few side effects.
[0064]
Initially cultured human cell suspension was seeded on a 6-well plate, and Genistein was added to the above osteogenic medium to final concentrations of 10 −5 , 10 −6 , 10 −7 , and 10 −8 M, and cultured. . Two weeks later, alkaline phosphatase activity indicating osteogenic cell activity of the cultured tissue and the amount of DNA indicating cell proliferation ability were measured.
[0065]
Alkaline phosphatase activity was 1.0 ± 0.5, 0.9 ± 0.2, and 0.71 ± 0.5 in each of the addition groups having final Genistein concentrations of 0 (control), 10 −5 , 10 −6 , 10 −7 , and 10 −8 M, respectively. 2.4 ± 0.2, 2.3 ± 0.5 (PN micromol). The measured DNA values were 54 ± 7, 34 ± 3, 34 ± 8, 64 ± 5, and 65 ± 4 (mg), respectively. In the addition group where the final concentration of Genistein was 10 −7 and 10 −8 M, the osteogenic cell activity was 2.3 to 2.4 times that of the control, and the amount of DNA was also increased by 19 to 20%. It was shown that by adding and culturing Genistein at final concentrations of 10 −7 and 10 −8 M, cell growth was promoted and cultured bone having several times higher bone regeneration activity could be produced.
[0066]
As described above, according to the examples of a and b, by further adding a bone formation promoting factor exhibiting female hormone activity to the culture medium and culturing, and using a culture method for stratifying the cultured bone tissue, higher bone regeneration activity It becomes possible to produce cultured bones having By culturing the activated cultured bone on an artificial bone or an artificial joint material, it is possible to produce a cultured artificial bone or cultured artificial joint material having higher bone regeneration ability.
[0067]
【The invention's effect】
As described above, the cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is incorporated into a porous body in a state in which bone marrow cells have differentiated into bone tissue, and the bone tissue is more than the conventional cultured artificial bone or cultured artificial joint. Excellent in that it is highly organized. In fact, in the present invention, it is shown that the cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention has higher osteogenic activity than the conventional cultured artificial bone or cultured artificial joint. Therefore, when the cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is used, the ability to form bone when transplanted into a living body is high, and bone formation can be reliably performed in a short time.
[0068]
Moreover, if the method for producing a cultured artificial bone or cultured artificial joint of the present invention is used, it is possible to produce a cultured artificial bone or cultured artificial joint having a high bone regeneration ability in a short time.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a view showing a general method for producing a cultured artificial bone.
FIG. 2 is a partial cross-sectional view of a porous body showing how pores communicate with each other.
Claims (5)
前記培養後の間葉系の幹細胞が付着している多孔体上に、間葉系の幹細胞を重層させて、１０-7〜１０-8Ｍのゲニステインの存在下で培養する第二の工程とを含み、
該第二の工程が少なくとも１回以上繰り返されることを特徴とする、培養人工骨または培養人工関節の製造方法。A first step of culturing mesenchymal stem cells on a porous body in the presence of 10 −7 to 10 −8 M genistein ;
A second step in which mesenchymal stem cells are layered on the porous body to which the mesenchymal stem cells after culture are attached, and cultured in the presence of 10 −7 to 10 −8 M genistein ; Including
A method for producing a cultured artificial bone or a cultured artificial joint, wherein the second step is repeated at least once.
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