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JP4107849B2 - Anthrax detection reagent - Google Patents
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JP4107849B2 - Anthrax detection reagent - Google Patents

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Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、炭疽菌の保有する莢膜、菌体及び芽胞を認識する抗体を用いた炭疽菌の検出方法及びそのキットに関する。この試薬は炭疽菌による感染症及び炭疽菌を用いたテロリズム等の対策に有効に利用されるものである。
【0002】
【従来の技術】
炭疽菌(Bacillus athracis)はバシラス属に属する通性嫌気性のグラム陽性の芽胞形成菌であり、環境により芽胞や莢膜を形成し、あるいは芽胞も莢膜も形成しない栄養型としても存在する。本菌は人畜共通伝染病である炭疽を引き起こすことが知られており、動物では世界各地で発生しており、人では家畜を取り扱う者が感染することがある。また、本菌は生物兵器として使用されたことがあると共に、本菌の芽胞を用いたテロリズムの発生もおきている。
【0003】
人に感染した場合は、感染経路により、皮膚炭疽、腸炭疽及び肺炭疽に分類されており、肺炭疽は死亡率が高いことが知られている。
炭疽の診断においては、炭疽菌を分離し、同定することがもっとも確実な方法である。菌の同定は従来、莢膜染色、免疫沈降試験(アスコリー熱沈降反応)、生化学的性状試験、遺伝子を用いたPCRなどが用いられてきた。
【0004】
しかし、これらの方法では、炭疽菌の類縁種であるバシラス・セリウス(Bacillus cereus)等との判別は必ずしも容易ではなかった。また、これらの方法は数時間から一日以上の時間を必要とすることと、特殊な装置を必要とすることから、より短時間に且つ簡便に同定する方法が望まれていた。さらに、テロリズムで炭疽菌の芽胞を郵便等で送付される事件もあり、いち早く送付物が炭疽菌であることを同定する必要があることから、短時間に、簡便に同定できる試薬が望まれていた。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、炭疽菌をそのライフサイクル中のステージに拘わりなく、特異的に、簡便に、短時間に検出するための抗体、炭疽菌を特異的に簡便に、簡便に短時間に検出する方法及びキットを提供することを目的とする。具体的には、炭疽菌の莢膜、菌体及び芽胞を認識する抗体、該抗体を用いた免疫学的検出法、該抗体を含む検出キットを提供することを目的とする。
【0006】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、莢膜を形成した炭疽菌、栄養型の炭疽菌及び芽胞を形成した炭疽菌のライフサイクル中の各ステージの菌体を抗原としてウサギを免疫し、それぞれに対する抗体を得て、本発明を完成するに至った。
【0007】
すなわち、本発明は、以下の通りである。
(1) 炭疽菌に対する抗体であって、炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体からなる群から選ばれる抗体、
(2) 炭疽菌に対する抗体を含む抗体組成物であって、炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体からなる群から選ばれる2種類の抗体を含む抗体組成物、
(3) 炭疽菌に対する抗体を含む抗体組成物であって、炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体の総てを含む抗体組成物、
(4) (1)〜(3)のいずれかの抗体または抗体組成物を用いて炭疽菌を検出することを特徴とする炭疽菌の検出方法、および
(5) (1)〜(3)のいずれかの抗体または抗体組成物を含む、炭疽菌を検出するためのキット。
【0008】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の抗体または抗体組成物は、炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体からなる群から選ばれる少なくとも1種類の抗体を含む抗体または抗体組成物である。ここで、「抗体組成物」とは、1種以上の抗体を含む抗体混合物をいう。本明細書において、抗体という場合、1種類の抗体だけではなく、抗体組成物も含む。
【0009】
炭疽菌は環境により莢膜や芽胞を形成する。莢膜を形成した炭疽菌、芽胞を形成した炭疽菌及びこれらの莢膜や芽胞を形成していない炭疽菌をそれぞれホルマリンで不活化し、免疫原として用いることができる。この際、莢膜を形成した炭疽菌、芽胞を形成した炭疽菌及びこれらの莢膜や芽胞を形成していない炭疽菌を別々に免疫原として用いてもよいし、混合して免疫原として用いてもよい。不活化した菌株を、PBS等の緩衝液に、0.5〜1.5mg/ml、好ましくは1mg/mlの濃度で浮遊させて免疫原を調製することができる。免疫原は、市販のフロイント完全アジュバント、フロイント不完全アジュバント、BCG、水酸化アルミニウムゲル、百日咳ワクチン等の適当なアジュバントと共に投与するのが望ましい。また被免疫動物はウサギ、ヒツジ、馬、豚等が利用可能であるが通常はウサギが汎用される。ウサギの場合、約3kgのものを使用する。調製した免疫原は、動物の皮下、腹腔内、静脈内、筋肉内、皮内等いずれのルートを通しても投与することができる。免疫の間隔は特に限定されないが、例えば1〜2週間隔で2から5回免疫するのが望ましい。また一回当たりの投与量も限定されないが、例えば上述のように調製した免疫原を適当なアジュバントと混合し、1ml〜数mlの量を投与すればよい。最終免疫後、3〜10日後に、被免疫動物から血液を採取し、冷蔵室等に静置し、血餅を発生させた後、遠心分離等で血清部分を分離することにより抗体を得ることができる。
【0010】
莢膜を形成した炭疽菌、芽胞を形成した炭疽菌及びこれらの莢膜や芽胞を形成していない炭疽菌のそれぞれを免疫原として得た抗体を混ぜれば、ステージに拘わらず炭疽菌を検出することができる抗体組成物として用いることができる。また、炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体の2種類を必要に応じて混合して抗体組成物として用いてもよい。または、莢膜を形成した炭疽菌、芽胞を形成した炭疽菌及びこれらの莢膜や芽胞を形成していない炭疽菌を混合して免疫原として得た抗体は、そのままでステージに拘わらず炭疽菌を検出することができる抗体組成物として用いることができる。さらに、莢膜を形成した炭疽菌、芽胞を形成した炭疽菌及びこれらの莢膜や芽胞を形成していない炭疽菌の2種類を混合して免疫原として用いてもよい。
【0011】
また、本発明に使用する抗体としては、上記免疫原をマウスに免疫後、公知の細胞融合法により取得するモノクローナル抗体も使用することができる。モノクローナル抗体は、例えば、ケーラーとミルステインの方法(Kohler, G. and Milstein, C., Nature, 256, 495-497, 1975)等の公知の方法により作製し得る。上記炭疽菌免疫原で免疫したマウスの脾細胞またはリンパ節細胞とマウスのミエローマ細胞との細胞融合により得られるハイブリドーマを作製し、該ハイブリドーマの培養上清又は該ハイブリドーマを腹腔内に投与したマウスの腹水から調製することができる。被免疫動物は、マウスに限定されずラット、モルモット等も利用可能である。ミエローマ細胞は、一般に被免疫動物と同種の動物より得られたものを用いるが、異種間でも可能な場合がある。また、免疫されていない動物の脾細胞またはリンパ節をin vitroで免疫して、感作細胞を得ることもできる。ハイブリドーマのスクリーニングは、種々の免疫化学的方法で実施することができ、例えばELISA法、ウエスタンブロット法等が利用できる。
【0012】
この際、炭疽菌の芽胞のみに特異的に反応するモノクローナル抗体、炭疽菌の莢膜のみに特異的に反応するモノクローナル抗体および炭疽菌の莢膜および芽胞を除く菌体のみに特異的に反応するモノクローナル抗体を別々に用いれば、ライフサイクル中の各ステージの炭疽菌を検出することができ、これらを混合した抗体組成物として用いれば、ステージに拘わらず炭疽菌を検出することができる。また、必要に応じてこれらのモノクローナル抗体の2種類を混合して用いてもよい。
【0013】
抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、DEAEセルロース等の陰イオン交換体を利用するイオン交換クロマトグラフィー、分子量や構造によってふるいわける分子ふるいクロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー等の公知の方法を適宜に選択して、またはこれらを組み合わせることにより精製することができる。
【0014】
このようにして得られた抗炭疽菌抗体を用いて炭疽菌を検出することが可能である。炭疽菌の検出はイムノブロット法、酵素免疫測定法(EIA、ELISA)、放射線免疫測定法(RIA)、蛍光抗体法、凝集反応を利用した方法、イムノクロマトグラフィー法等の当業者に知られた方法により行うことができる。この際、試料として、例えば患者検体から分離培養された細菌、炭疽菌であると疑われる粉末状物質等を用いることができるが、これらに限定されるものではない。
【0015】
例えば、凝集反応を利用した方法においては、炭疽菌抗体を感作した担体を用いて炭疽菌を検出することができる。炭疽菌抗体を感作する担体としては、不溶性で、非特異的な反応を起こさず、かつ安定である限り、いかなる担体を使用してもよい。例えば、ラテックス粒子、ベントナイト、コロジオン、カオリン、固定羊赤血球、金コロイド粒子、セレニウムコロイド粒子等を使用することができるが、ラテックス粒子を使用するのが好ましい。ラテックス粒子としては、例えば、ポリスチレンラテックス粒子、スチレン−ブタジェン共重合体ラテックス粒子、ポリビニルトルエンラテックス粒子等を使用することができるが、ポリスチレンラテックス粒子を使用するのが好ましい。ラテックス粒子を使用する場合は、特別な処理をしなくても容易に抗体を担体に感作できるとともに、対象菌株と担体の反応により生じる凝集像が明瞭となり、対象菌株の担体に対する反応性を容易かつ精度よく判別できる点でさらに有利である。
【0016】
抗炭疽菌抗体を担体に感作する方法は、特に限定されない。例えば抗炭疽菌抗体を担体に物理的に吸着させてもよいし、化学的に結合させてもよい。より具体的には、例えば、抗炭疽菌抗体と担体とを混和した後、30〜37℃で1〜2時間加温振盪することにより、抗体を担体に感作させることができる。担体に感作する抗体の量は、使用する単体の粒径に応じて適宜設定することができる。抗体を担体に感作した後、担体表面上の未感作部分をウシ血清アルブミン、ヒト血清アルブミン、ウサギ血清アルブミン、卵白アルブミン等でブロッキングするのが好ましい。抗炭疽菌抗体を感作した担体は対象菌株と反応させる時まで媒体分散液として保持しておくのが好ましい。この際、媒体としては、例えば、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液等を使用することができる。抗炭疽菌抗体を感作した担体の含有量は、通常、媒体分散液に対して0.2〜0.5重量%とすることができるが、0.25〜0.3重量%とするのが好ましい。媒体中には、必要に応じてウシ血清アルブミン、ゼラチン、アラビアゴム等を添加してもよい。このように調製した抗炭疽菌抗体感作担体を対象菌株と反応させ、凝集の有無またはその程度により対象菌株と抗炭疽菌抗体との反応性を判別し、炭疽菌を検出することができる。
【0017】
また、酵素免疫測定法(EIA)においては、抗炭疽菌抗体をマイクロプレート、樹脂ビーズ、磁性化ビーズ等の担体に物理吸着や化学結合により固相化する。固相化量は、特に限定されないが担体がマイクロプレートの場合、1ウエル当たり数ngから数十μgが望ましい。固相化は固相化すべき抗体を適切な緩衝液に溶解し、担体と接触させて行うことができる。例えば、マイクロタイターウエルを用いる場合、抗体溶液をマイクロタイタープレートのウエルに分注し一定時間置くことにより固相化することができる。抗体を固相化した後は、アッセイ中の非特異的結合を防ぐためにウシ血清アルブミン、ヒト血清アルブミン、ウサギ血清アルブミン、卵白アルブミン等を含んだブロッキング溶液を用いてブロッキングを行うのが好ましい。次いで、固相化担体と試料を反応させ、洗浄後、炭疽菌を認識する標識した抗体を反応させる。標識はβ−D−ガラクトシダーゼ、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼやグルコースオキシダーゼ等の酵素を用いて行うことができる。例えば、酵素免疫測定法(EIA)においては、多数のウエル(例えば、96穴)を有するマイクロタイタープレートに抗体を固相化させ、ウエル中で抗原抗体反応を行わせることにより一度に大量測定が可能になる。また用いる抗体及び試料菌体の使用量を非常に少なくすることも可能である。さらに、全自動EIA測定装置などの自動測定機器を用いることも可能になる。
【0018】
本発明は、炭疽菌の検出を可能にするキットの提供をも目的とするが、該キットは少なくとも抗炭疽菌抗体を含む。該キットが酵素免疫測定法に基づく場合は、抗体を固相化した担体を含んでいてもよく、抗体があらかじめ担体に結合していてもよい。該キットがラテックス等の担体を用いた凝集法に基づく場合は、抗体が吸着した担体を含んでいてもよい。また、該キットは適宜、ブロッキング溶液、反応溶液、反応停止液、試料を処理するための試薬等を含んでいてもよい。
【0019】
以上のように、本発明の抗炭疽菌抗体は炭疽菌の莢膜、菌体及び芽胞の抗体を含むのでほとんど全ての炭疽菌と反応することから、分離された細菌を迅速に炭疽菌と鑑別し、炭疽菌を検出することができ、生化学的性状を調べる時間と労力を大幅に省略することができる。また遺伝子を利用したPCRのように検体の前処理や特殊な装置を必要としないため安価にもつながる。
以下、実施例により、本発明を具体的に説明する。但し、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【0020】
【実施例】
実施例1 免疫抗原の調製
炭疽菌パスツール2苗株の単一コロニーをトリプトソイブロス5mlに接種し37℃で培養して前培養菌とした。
栄養形菌体の作製はトリプトソイブロス100mlに前培養菌を1ml加え、4時間37℃で振盪培養した。培養液を7000rpm、15分間遠心分離し、沈渣を20mlの生理食塩液で2回洗浄し、100mlの生理食塩液に再懸濁した後、最終濃度が0.5%になるようにホルマリンを加えて不活化した。菌が不活化されたことを確認後、生理食塩液で2回洗浄し、抗原液とした。
【0021】
芽胞菌体の作製はトリプトソイブロス100mlに前培養菌を1ml加え、24時間、37℃で振盪培養した。培養液を7000rpm、15分間遠心分離し、沈渣を20mlの生理食塩液で2回洗浄し、100mlの生理食塩液に再懸濁し、37℃で7日間静置培養し、最終濃度が0.5%になるようにホルマリンを加えて不活化した。菌が不活化されたことを確認後、生理食塩液で2回洗浄し、抗原液とした。
【0022】
莢膜形成菌体の作製はNBY寒天培地の5枚に前培養菌の0.1mlを塗抹し、20%炭酸ガス培養器にて24時間培養した。菌体を集め、生理食塩液10mlに浮遊させ、最終濃度が0.5%になるようにホルマリンを加えて不活化した。菌が不活化されたことを確認後、生理食塩液で2回洗浄し、抗原液とした。
【0023】
実施例2 抗体の作製
抗原液1mlに等量の不完全フロインドアジュバントを加え免疫原を作製した。免疫はウサギの背中の数箇所に皮下接種して行った。接種間隔は1週間おきに4回接種し、最終接種後1週間目に一部採血し、ウエスタンブロッティングにより抗体価の上昇を確認した。確認後ブースターを1週間おきに2回行い、その後1週間目に50ml採血し、その後1週間目に再度ブースターを行い、その後1週間目に採血した。これを2回繰り返した後、全採血し、全てをプールして抗体を作製した。
【0024】
このようにして作製した抗体の5mlにリン酸緩衝液を5ml加えて希釈したものに飽和硫安液を10ml加えて塩析を行った。沈渣を10mlのリン酸緩衝液に溶解し、再度飽和硫安液を10ml加えて塩析し、沈渣を2mlのリン酸緩衝液に溶解した。それをセファデックスG-25カラムを用いて脱塩し、精製抗体とした。
【0025】
実施例3 ラテックス凝集法による炭疽菌の検出
▲1▼炭疽菌抗体感作ラテックスの調製
担体として直径0.3μmのポリスチレン製球形粒子(ラテックス:市販品)を用いた。実例2で得られた炭疽菌抗体とラテックス粒子を各々リン酸緩衝生理食塩液(pH7.0)に溶解し、抗体とラテックス粒子の重量比が1:10となるように抗体を担体に固定化した。これをリン酸緩衝生理食塩液で洗浄し、ウシ血清アルブミンでブロッキングを行ったものを抗体感作ラテックスとした。
▲2▼検体の培養
炭疽菌を血液寒天培地に培養し検体とした。
▲3▼スライド凝集反応
紙製のスライド板のサークル内に、▲1▼で調製した抗体感作ラテックッスの25μlを滴下し、これに▲2▼で培養した検体の微量を加え混和した。1分間攪拌後、肉眼的に凝集の有無を観察し、凝集の認められたものを陽性、認められなかったものを陰性とした。
【0026】
実施例4 抗体感作ラテックス試薬の特異性
炭疽菌のほかに同じバシラス属に属する納豆菌(Bacillus natto)、枯草菌(Bacillus subtilis)及びセレウス菌(Bacillus cereus)を血液寒天培地に培養し、その菌体の微量を用いて実施例3▲3▼のとおり試験を行った。
結果を表1に示した。炭疽菌は全て本感作ラテックスで陽性を示した。一方炭疽菌以外の納豆菌、枯草菌、セレウス菌は全て陰性と判定された。
【0027】
【表1】

Figure 0004107849
【0028】
【発明の効果】
本発明の炭疽菌抗体を用いることにより、簡便、安価かつ迅速に炭疽菌の検出ができる。さらに、莢膜を形成した炭疽菌、栄養型の炭疽菌及び芽胞を形成した炭疽菌のライフサイクル中のステージに拘わりなく、特異的に、簡便に、短時間に検出することができる。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for detecting Bacillus anthracis using an antibody that recognizes the capsule, cells and spores possessed by Bacillus anthracis and a kit thereof. This reagent is effectively used for measures against infections caused by Bacillus anthracis and terrorism using Bacillus anthracis.
[0002]
[Prior art]
Bacillus athracis is a facultative anaerobic Gram-positive spore-forming bacterium belonging to the genus Bacillus, and forms a spore or capsule by the environment, or exists as a trophozoite that does not form a spore or capsule. This bacterium is known to cause anthrax, a common infectious disease of humans and livestock. It occurs in animals all over the world, and humans who handle livestock can be infected. In addition, this bacterium has been used as a biological weapon, and terrorism using the spore of this bacterium has also occurred.
[0003]
When humans are infected, they are classified into skin anthrax, intestinal anthrax, and lung anthrax depending on the route of infection, and lung anthrax is known to have a high mortality rate.
In the diagnosis of anthrax, the most reliable method is to isolate and identify anthrax. For identification of bacteria, capsular staining, immunoprecipitation test (Ascory thermal precipitation reaction), biochemical property test, PCR using genes, and the like have been used.
[0004]
However, it is not always easy to distinguish these methods from Bacillus cereus, which is an anthracnose species of Bacillus anthracis. In addition, since these methods require several hours to more than a day and special devices are required, a method for identifying in a shorter time and simply has been desired. In addition, there are cases where anthrax spores are sent by mail etc. due to terrorism, and it is necessary to quickly identify that the delivery is Bacillus anthracis, so a reagent that can be easily identified in a short time is desired. It was.
[0005]
[Problems to be solved by the invention]
The present invention relates to an antibody for detecting anthrax specifically, simply and in a short time regardless of the stage in its life cycle, and a method for specifically and simply detecting anthrax in a short time. And to provide a kit. Specifically, an object of the present invention is to provide an antibody that recognizes an anthrax capsule, fungus body and spore, an immunological detection method using the antibody, and a detection kit containing the antibody.
[0006]
[Means for Solving the Problems]
The present inventors immunized rabbits with antigens of the cells of each stage in the life cycle of anthrax that formed capsules, vegetative anthrax and anthrax that formed spores, and obtained antibodies against each. The present invention has been completed.
[0007]
That is, the present invention is as follows.
(1) An antibody against anthrax, an antibody selected from the group consisting of an antibody against an anthrax capsule, an antibody against an anthrax spore, and an antibody against an anthrax cell that does not contain the capsule and spore,
(2) An antibody composition comprising an antibody against anthrax, selected from the group consisting of an antibody against an anthrax capsule, an antibody against an anthrax spore, and an antibody against an anthrax cell that does not contain the capsule and spore. An antibody composition comprising two types of antibodies;
(3) An antibody composition comprising an antibody against anthrax, comprising an antibody against an anthrax capsule, an antibody against an anthrax spore, and an antibody against an anthrax cell that does not contain the capsule and spore Composition,
(4) An anthrax detection method characterized by detecting anthrax using the antibody or antibody composition of any one of (1) to (3), and (5) of (1) to (3) A kit for detecting Bacillus anthracis comprising any antibody or antibody composition.
[0008]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in detail.
The antibody or antibody composition of the present invention comprises at least one antibody selected from the group consisting of an antibody against an anthrax capsule, an antibody against an anthrax spore, and an antibody against an anthrax cell that does not contain the capsule and spore. An antibody or antibody composition comprising. Here, the “antibody composition” refers to an antibody mixture containing one or more antibodies. In the present specification, the term “antibody” includes not only one kind of antibody but also an antibody composition.
[0009]
Anthrax forms capsules and spores depending on the environment. The anthrax that formed the capsule, the anthrax that formed the spore, and the anthrax that did not form the capsule or spore can be inactivated with formalin and used as an immunogen. At this time, the anthrax that formed the capsule, the anthrax that formed the spore, and these anthrax that did not form the capsule or spore may be used separately as an immunogen, or mixed and used as an immunogen. May be. An immunogen can be prepared by suspending the inactivated strain in a buffer solution such as PBS at a concentration of 0.5 to 1.5 mg / ml, preferably 1 mg / ml. The immunogen is desirably administered with a suitable adjuvant such as commercially available Freund's complete adjuvant, Freund's incomplete adjuvant, BCG, aluminum hydroxide gel, pertussis vaccine and the like. Rabbits, sheep, horses, pigs and the like can be used as immunized animals, but rabbits are generally used. For rabbits, use about 3 kg. The prepared immunogen can be administered through any route such as subcutaneous, intraperitoneal, intravenous, intramuscular, or intradermal routes of animals. The interval between immunizations is not particularly limited. For example, immunization is preferably performed 2 to 5 times at intervals of 1 to 2 weeks. The dose per administration is not limited, but for example, the immunogen prepared as described above may be mixed with an appropriate adjuvant and administered in an amount of 1 ml to several ml. Three to ten days after the final immunization, blood is collected from the immunized animal, left in a refrigerator, etc., and a blood clot is generated. Then, an antibody is obtained by separating the serum part by centrifugation or the like. Can do.
[0010]
Detecting anthrax, regardless of stage, by mixing antibodies obtained from immunogens of anthrax that formed capsules, anthrax that formed spores, and anthrax that did not form these capsules or spores Can be used as an antibody composition. Further, an antibody composition may be used by mixing two kinds of antibodies against an anthrax capsule, an antibody against an anthrax spore, and an antibody against an anthrax bacterium containing no capsule and spore as necessary. Alternatively, anthrax that forms capsules, anthrax that forms spores, and antibodies obtained as an immunogen by mixing these anthrax that do not form capsules or spores remain as they are regardless of stage. Can be used as an antibody composition capable of detecting. Furthermore, two types of Bacillus anthracis having formed a capsule, Bacillus anthracis forming spores, and Bacillus anthracis not forming these capsules and spores may be mixed and used as an immunogen.
[0011]
Moreover, as an antibody used in the present invention, a monoclonal antibody obtained by a known cell fusion method after immunizing a mouse with the above immunogen can also be used. The monoclonal antibody can be prepared by a known method such as the method of Kohler and Milstein (Kohler, G. and Milstein, C., Nature, 256, 495-497, 1975). A hybridoma obtained by cell fusion of a spleen cell or lymph node cell of a mouse immunized with the above anthrax immunogen and a myeloma cell of a mouse was prepared, and a culture supernatant of the hybridoma or a mouse administered with the hybridoma intraperitoneally It can be prepared from ascites. Immunized animals are not limited to mice, and rats, guinea pigs, and the like can also be used. Myeloma cells are generally obtained from the same species as the immunized animal, but may be possible between different species. Sensitized cells can also be obtained by immunizing in vitro spleen cells or lymph nodes of non-immunized animals. Hybridoma screening can be performed by various immunochemical methods such as ELISA and Western blotting.
[0012]
In this case, monoclonal antibody that reacts specifically only with anthrax spores, monoclonal antibody that reacts specifically only with anthrax capsule, and only cells that exclude the anthrax capsule and spores. If a monoclonal antibody is used separately, the anthrax of each stage in a life cycle can be detected, and if these are used as a mixed antibody composition, anthrax can be detected regardless of the stage. Moreover, you may mix and use two types of these monoclonal antibodies as needed.
[0013]
When antibody purification is required, known methods such as ammonium sulfate salting-out, ion exchange chromatography using anion exchangers such as DEAE cellulose, molecular sieve chromatography based on molecular weight and structure, hydroxyapatite chromatography, etc. The method can be appropriately selected, or can be purified by combining them.
[0014]
It is possible to detect Bacillus anthracis using the thus obtained anti-Anthrax antibody. Methods known to those skilled in the art such as immunoblotting, enzyme immunoassay (EIA, ELISA), radioimmunoassay (RIA), fluorescent antibody method, method using agglutination, immunochromatography, etc. Can be performed. At this time, as the sample, for example, bacteria separated and cultured from a patient specimen, a powdery substance suspected to be anthrax, and the like can be used, but are not limited thereto.
[0015]
For example, in a method using an agglutination reaction, anthrax can be detected using a carrier sensitized with an anthrax antibody. As a carrier for sensitizing the anthrax antibody, any carrier may be used as long as it is insoluble, does not cause a nonspecific reaction, and is stable. For example, latex particles, bentonite, collodion, kaolin, fixed sheep erythrocytes, gold colloid particles, selenium colloid particles and the like can be used, but it is preferable to use latex particles. As latex particles, for example, polystyrene latex particles, styrene-butadiene copolymer latex particles, polyvinyltoluene latex particles, and the like can be used, and polystyrene latex particles are preferably used. When latex particles are used, the antibody can be easily sensitized to the carrier without any special treatment, and the aggregated image generated by the reaction between the target strain and the carrier becomes clear, and the reactivity of the target strain to the carrier is easy. Further, it is further advantageous in that it can be discriminated accurately.
[0016]
The method for sensitizing the anti-anthrax antibody to the carrier is not particularly limited. For example, the anthrax antibody may be physically adsorbed on a carrier or chemically bound. More specifically, for example, after mixing an anthrax antibody and a carrier, the antibody can be sensitized to the carrier by heating and shaking at 30 to 37 ° C. for 1 to 2 hours. The amount of the antibody sensitized to the carrier can be appropriately set according to the particle size of the single substance used. After sensitizing the antibody to the carrier, the non-sensitized portion on the carrier surface is preferably blocked with bovine serum albumin, human serum albumin, rabbit serum albumin, ovalbumin or the like. The carrier sensitized with the anthrax antibody is preferably retained as a medium dispersion until it is reacted with the target strain. At this time, as the medium, for example, a phosphate buffer, a glycine buffer, or the like can be used. The content of the carrier sensitized with the anti-anthrax antibody can usually be 0.2 to 0.5% by weight, preferably 0.25 to 0.3% by weight, based on the medium dispersion. Bovine serum albumin, gelatin, gum arabic and the like may be added to the medium as necessary. The anti-anthrax antibody-sensitized carrier thus prepared can be reacted with the target strain, and the reactivity between the target strain and the anti-anthrax antibody can be determined based on the presence or absence of the aggregation or the degree thereof, thereby detecting anthrax.
[0017]
In enzyme immunoassay (EIA), an anthrax antibody is immobilized on a carrier such as a microplate, resin beads, or magnetic beads by physical adsorption or chemical bonding. The amount of the solid phase is not particularly limited, but when the carrier is a microplate, it is preferably several ng to several tens of μg per well. The immobilization can be performed by dissolving the antibody to be immobilized in an appropriate buffer and bringing it into contact with a carrier. For example, in the case of using a microtiter well, the antibody solution can be immobilized by dispensing into a well of a microtiter plate and placing it for a certain period of time. After immobilizing the antibody, it is preferable to perform blocking using a blocking solution containing bovine serum albumin, human serum albumin, rabbit serum albumin, ovalbumin and the like in order to prevent non-specific binding during the assay. Next, the immobilized carrier and the sample are reacted, and after washing, a labeled antibody that recognizes anthrax is reacted. The labeling can be performed using an enzyme such as β-D-galactosidase, peroxidase, alkaline phosphatase or glucose oxidase. For example, in enzyme immunoassay (EIA), a large amount of measurement can be performed at once by immobilizing an antibody on a microtiter plate having a large number of wells (eg, 96 wells) and causing an antigen-antibody reaction in the well. It becomes possible. It is also possible to reduce the amount of antibody used and the amount of sample cells used. Furthermore, it is possible to use an automatic measuring device such as a fully automatic EIA measuring device.
[0018]
The present invention is also aimed at providing a kit that enables detection of anthrax, but the kit contains at least an anthrax antibody. When the kit is based on an enzyme immunoassay, an antibody-immobilized carrier may be included, and the antibody may be bound to the carrier in advance. When the kit is based on an agglutination method using a carrier such as latex, the kit may contain a carrier on which an antibody is adsorbed. The kit may appropriately contain a blocking solution, a reaction solution, a reaction stop solution, a reagent for treating the sample, and the like.
[0019]
As described above, the anti-anthrax antibody of the present invention contains anthrax capsular, bacterial and spore antibodies and reacts with almost all anthrax, so that the isolated bacteria can be quickly distinguished from anthrax. Thus, anthrax can be detected, and the time and labor required for examining the biochemical properties can be largely omitted. In addition, unlike PCR using genes, sample pretreatment and special equipment are not required, leading to low costs.
Hereinafter, the present invention will be described specifically by way of examples. However, the present invention is not limited to these examples.
[0020]
【Example】
Example 1 Preparation of immunizing antigen A single colony of 2 seedlings of Bacillus anthracis Pasteur was inoculated into 5 ml of tryptic soy broth and cultured at 37 ° C. to prepare a preculture.
Preparation of vegetative cells was carried out by adding 1 ml of precultured bacteria to 100 ml of tryptosoy broth and shaking culture at 37 ° C. for 4 hours. The culture solution is centrifuged at 7000 rpm for 15 minutes, the sediment is washed twice with 20 ml of physiological saline, resuspended in 100 ml of physiological saline, and then added with formalin to a final concentration of 0.5%. It was activated. After confirming that the bacteria were inactivated, the cells were washed twice with physiological saline to obtain an antigen solution.
[0021]
The spore cells were prepared by adding 1 ml of precultured bacteria to 100 ml of tryptic soy broth, followed by shaking culture at 37 ° C. for 24 hours. The culture solution is centrifuged at 7000 rpm for 15 minutes, and the sediment is washed twice with 20 ml of physiological saline, resuspended in 100 ml of physiological saline, and statically cultured at 37 ° C. for 7 days to a final concentration of 0.5%. It was inactivated by adding formalin. After confirming that the bacteria were inactivated, the cells were washed twice with physiological saline to obtain an antigen solution.
[0022]
For preparation of capsular cells, 0.1 ml of the preculture was smeared on 5 NBY agar media and cultured in a 20% carbon dioxide incubator for 24 hours. The cells were collected, suspended in 10 ml of physiological saline, and inactivated by adding formalin to a final concentration of 0.5%. After confirming that the bacteria were inactivated, the cells were washed twice with physiological saline to obtain an antigen solution.
[0023]
Example 2 Preparation of Antibody An immunogen was prepared by adding an equal volume of incomplete Freund's adjuvant to 1 ml of antigen solution. Immunization was performed by inoculating several places on the back of the rabbit subcutaneously. The inoculation interval was inoculated four times every other week, and a part of blood was collected one week after the final inoculation, and the increase in antibody titer was confirmed by Western blotting. After confirmation, a booster was performed twice every other week, 50 ml of blood was collected in the first week, a booster was performed again in the first week, and blood was collected in the first week. After repeating this twice, the whole blood was collected and pooled to prepare antibodies.
[0024]
Salting out was performed by adding 10 ml of a saturated ammonium sulfate solution to 5 ml of the antibody thus prepared and adding 5 ml of a phosphate buffer solution to dilute. The precipitate was dissolved in 10 ml of phosphate buffer, 10 ml of saturated ammonium sulfate solution was added again for salting out, and the precipitate was dissolved in 2 ml of phosphate buffer. It was desalted using a Sephadex G-25 column to obtain a purified antibody.
[0025]
Example 3 Detection of Bacillus anthracis by latex agglutination method (1) Preparation of latex sensitized with Bacillus anthracis antibody Polystyrene spherical particles (latex: commercially available) having a diameter of 0.3 μm were used. The anthrax antibody and latex particles obtained in Example 2 are each dissolved in phosphate buffered saline (pH 7.0), and the antibody is immobilized on a carrier so that the weight ratio of antibody to latex particles is 1:10. did. This was washed with phosphate buffered saline and blocked with bovine serum albumin to obtain antibody-sensitized latex.
(2) Culture of specimen Anthrax was cultured on a blood agar medium to prepare a specimen.
(3) 25 μl of the antibody-sensitized latex prepared in (1) was dropped into a circle of a slide plate made of slide agglutination reaction paper, and a small amount of the sample cultured in (2) was added and mixed. After stirring for 1 minute, the presence or absence of agglomeration was visually observed, and those in which agglomeration was observed were positive and those in which agglomeration was not recognized were negative.
[0026]
Example 4 Specificity of antibody-sensitized latex reagent In addition to Bacillus anthracis, Bacillus natto, Bacillus subtilis and Bacillus cereus belonging to the same genus Bacillus were cultured in a blood agar medium. The test was conducted as in Example 3 (3) using a trace amount of cells.
The results are shown in Table 1. All anthrax were positive in this sensitized latex. On the other hand, natto, Bacillus subtilis, and Bacillus cereus other than Bacillus anthracis were all determined to be negative.
[0027]
[Table 1]
Figure 0004107849
[0028]
【The invention's effect】
By using the anthrax antibody of the present invention, anthrax can be detected simply, inexpensively and rapidly. Furthermore, regardless of the stage in the life cycle of the anthrax that formed the capsule, the vegetative anthrax, and the anthrax that formed the spore, it can be detected specifically, simply, and in a short time.

Claims (3)

炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体の総てをラテックス粒子に感作させてなる抗体感作ラテックスを用いる、炭疽菌のライフサイクル中のステージに拘りなく、かつセレウス菌および枯草菌と判別して、炭疽菌を検出するラテックス凝集法。Using an antibody-sensitized latex that sensitizes latex particles with antibodies against anthrax capsule, antibodies against anthrax spores, and antibodies against anthrax and spore-free cells. Latex agglutination method that detects Bacillus anthracis regardless of the stage in the life cycle and distinguishes it from Bacillus cereus and Bacillus subtilis. ラテックス粒子がポリスチレンラテックス粒子、スチレン−ブタジェン共重合体ラテックス粒子、およびポリビニルトルエンラテックス粒子からなる群から選択される請求項1に記載の炭疽菌を検出するラテックス凝集法。The latex agglutination method for detecting anthrax according to claim 1, wherein the latex particles are selected from the group consisting of polystyrene latex particles, styrene-butadiene copolymer latex particles, and polyvinyltoluene latex particles. 炭疽菌の莢膜に対する抗体、炭疽菌の芽胞に対する抗体ならびに莢膜および芽胞を含まない炭疽菌菌体に対する抗体の総てをラテックス粒子に感作させてなる、炭疽菌のライフサイクル中のステージに拘りなく、かつセレウス菌および枯草菌と判別して、炭疽菌を検出するための抗体感作ラテックスを含むラテックス凝集法キットであって、炭疽菌のライフサイクル中のステージに拘りなく、かつセレウス菌および枯草菌と判別して、炭疽菌を検出するためのラテックス凝集法キット。At the stage in the life cycle of Bacillus anthracis, the antibody against the anthrax capsule, the antibody against the anthrax spore, and the antibody against the anthrax without capsular and spore are sensitized to latex particles. A latex agglutination method kit containing an antibody-sensitized latex for detecting Bacillus anthracis, which is distinguished from Bacillus cereus and Bacillus subtilis, regardless of the stage in the life cycle of Bacillus anthracis, and Bacillus cereus And a latex agglutination method kit for detecting Bacillus anthracis discriminated from Bacillus subtilis.
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