JP4256497B2 - Anti-angiitis agent - Google Patents
Anti-angiitis agent Download PDFInfo
- Publication number
- JP4256497B2 JP4256497B2 JP22268898A JP22268898A JP4256497B2 JP 4256497 B2 JP4256497 B2 JP 4256497B2 JP 22268898 A JP22268898 A JP 22268898A JP 22268898 A JP22268898 A JP 22268898A JP 4256497 B2 JP4256497 B2 JP 4256497B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- seq
- amino acid
- acid sequence
- peptide
- thrombomodulin
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【0001】
【産業上の利用分野】
本発明は、トロンビンによるプロテインCの活性化を促進する作用を有し、かつそのアミノ酸配列中に配列番号1に記載のアミノ酸配列を有しているペプチドを有効成分とする血管炎治療剤に関する。
【0002】
【従来の技術】
トロンビンと特異的に結合し、トロンビンによるプロテインCの活性化を著しく促進する作用を有するペプチドは、トロンボモジュリンとして知られている(以下、このペプチドをトロンボモジュリンと記することがある)。
一方、プロテインCは、血液凝固線溶系において重要な役割を演じているビタミンK依存性のたん白質であり、トロンビンの作用により活性化され、活性型プロテインCとなる。この活性型プロテインCは、生体内で血液凝固系因子の活性型第五因子、および活性型第八因子を失活させ、また血栓溶解作用を有するプラスミノーゲンアクチベーターの産生に関与していることが知られている[鈴木宏治、医学のあゆみ、第125巻、901頁(1983年)]。
【0003】
したがって、トロンボモジュリンは、このトロンビンによるプロテインCの活性化を促進して抗血液凝固作用と血栓溶解作用を示す活性型プロテインCを大量に生産せしめるものであり、抗血液凝固剤又は血栓溶解剤として有用であるとされている。
従来、トロンボモジュリンは、ヒトを始めとする種々の動物種の血管内皮細胞上に発現している糖たん白質として発見取得されたが、発明者らのグループは、初めてヒトトロンボモジュリンのクローニングに成功した。即ち、遺伝子工学的手法を用いてヒト肺cDNAライブラリーから、シグナルペプチドを含むヒトトロンボモジュリン前駆体の遺伝子をクローニングし、そしてトロンボモジュリンの全遺伝子配列を解析し、18アミノ酸残基のシグナルペプチドを含む575残基のアミノ酸配列が明らかにされている[特開平1−6219号公報]。シグナルペプチドが切断されたマチュアなトロンボモジュリンは、そのマチュアなペプチドのN末端側よりN末端領域(1−226番目)、6つのEGF様構造をもつ領域(227−462番目)、O型糖鎖付加領域(463−498番目)、膜貫通領域(499−521)、そして細胞質内領域(522−557番目)の5つの領域から構成されており、そして全長のトロンボモジュリンと同じ活性を有する部分(即ち、最小活性単位)は、6つのEGF様構造をもつ領域のうちN末端側から4、5、6番目のEGF様構造からなる部分(以下、TME456と略すことがある)であることが知られている[M.Zushiら、J.Biol.Chem.,246,10351−10353(1989)]。
【0004】
少なくとも、膜貫通領域を含有しないように調製されたトロンボモジュリンにおいては、界面活性剤の非存在下でも綺麗に溶解することができる性質(以下、可溶性ということがある)を有し、例えば、N末端領域と6つのEGF様構造をもつ領域とO型糖鎖付加領域の3つの領域からなる(即ち、配列番号2の19〜516位のアミノ酸配列からなる)トロンボモジュリン(以下、TMD123と略することがある)は、組換え技術の応用により取得できること、そしてその組換え体トロンボモジュリンは、天然のトロンボモジュリンの活性を有していることが確認されている[特開平1−6219号公報]。
【0005】
因みに、遺伝子においては、自然の変異または取得時の変異により、多くのケースで認められる通り、ヒトにおいても多形性の変異が見つけられており、上述の575残基のアミノ酸配列からなるヒトトロンボモジュリン前駆体の第473位のアミノ酸においてValであるものと、Alaであるものが現在確認されている。このアミノ酸をコードする塩基配列においては、第1418位において、それぞれTとCとの変異に相当する[Wenら、Biochemistry 26:4350−4357(1987)]。しかし、活性及び物性においては、全く相違なく、両者は実質的に同一と考えることができる。したがって、上述の配列番号2のアミノ酸配列からなるトロンボモジュリンは、配列番号3のアミノ酸配列からなるトロンボモジュリンの多形性のペプチドであり、実質的に同一と判断できる。
【0006】
トロンボモジュリンは、従来血栓症およびDICなどの凝固亢進を伴う疾患の治療、予防に有効であることが動物実験により証明されている[K.Gomiら,Blood,75:1396−1399(1990)]。また、血栓症やDICなどの凝固亢進を伴う疾患以外の疾患に対する適用として、肝臓障害[特開平8−3065号広報]、吸収性骨疾患[特開平8−303786号広報]、創傷治癒[特開平9−20677号広報]などが挙げられる。しかし、血管炎に効果のあることについては記載がない。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】
従来より、より有効な血管炎治療剤の提供が求められていた。
【0008】
【課題を解決するための手段】
血管炎は、血管壁自体を炎症の場とし、血管壁の炎症と壊死を主な病変とする疾患であり、単一の疾患ではなく病因学的にも病態学的にも多様な疾患群であり、必ずしも十分な治療法が確立されていなかった。近年、血管炎は、宿主の免疫異常による自己免疫を基盤とするII,IIIあるいはIV型アレルギーにより発症すると考えられ、血管炎の分類とそれぞれの発症機序の関連性が示唆されている[宮崎龍彦ら,臨床科学,33:1441−1449(1997)]。
【0009】
本発明における血管炎としては、代表的には、アレルギー性肉芽腫性血管炎、顕微鏡的多発動脈炎、ベーチェット病、抗リン脂質抗体症候群、全身性エリテマトーデス等が挙げられ、その他に、高安動脈炎、炎症性腹部大動脈瘤、側頭動脈炎、結節性多発動脈炎、川崎病、Wegener肉芽腫症、Churg−Strauss症候群、過敏性血管炎、Schonlein−Henoch紫斑病などが例示される。
【0010】
これらの血管炎の治療には、ステロイドや免疫抑制剤が優先的に用いられる。血管炎治療の主たる薬剤であるステロイド剤は、病状が初期の場合や免疫抑制剤を併用することによって病状が軽減され寛解することがある。しかし、ステロイド剤の投薬中止直後あるいは一定期間後に病状が再燃することが多く、その場合ステロイド剤の大量投与や長期投与が行われるようになる。ステロイド剤の長期投与は、高脂血症や高血圧さらに血管の線維化を惹起し、虚血性心疾患を生ずる例が増加している[北本清,別冊 日本臨床,領域別症候群15:185−187(1993)]。また、免疫抑制剤では、貧血、白血球および血小板減少や肝機能障害、感染症などの副作用が報告されている。これらのことから副作用を伴わずに血管炎を寛解させる薬剤が臨床現場で必要とされている。
【0011】
本発明者らは血管炎の治療方法を鋭意種々検討した結果、驚くべきことに、配列番号1の19−140のアミノ酸配列を含むトロンボモジュリンが、血管炎の治療剤として有効であることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、トロンビンによるプロテインCの活性化を促進する作用を有し、かつ配列番号1の19−140のアミノ酸配列を有しているペプチドを有効成分とする血管炎治療剤である。
【0012】
前述の通り、本発明でトロンボモジュリンとは、トロンビンに結合し、トロンビンによるプロテインCの活性化を促進する作用を有する物質であり、本発明の血管炎治療剤として用いることのできるトロンボモジュリンとしては、上記のトロンボモジュリンとしての活性を有し、かつそのアミノ酸配列中に配列番号1の19−140のアミノ酸配列を有していれば特に限定されない。さらに好ましくは、可溶性トロンボモジュリンである。可溶性トロンボモジュリンとしては、上記のトロンボモジュリンとしての活性を有し、界面活性剤の非存在下でも容易に溶解し得る物質であり、例えば、注射用蒸留水に対して、少なくとも1mg/ml、好ましくは3mg/mlの溶解性が得られるものが好ましい。
【0013】
また、トロンビンによるプロテインCの活性化を促進する作用を示すためには、例えば、ヒト型のトロンボモジュリンにおいてこの作用の中心部位として知られている配列番号8の19−132のアミノ酸配列を該ペプチド中に包含していることが好ましく、この配列番号8の19−132のアミノ酸配列は、トロンビンによるプロテインCの活性化を促進する作用を有する限り自然または人工的に変異していてもよく、すなわち配列番号8の19−132のアミノ酸配列の1つまたは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加していても良い。許容される変異の程度は、活性を有するか否かであり特に限定されないが、例えばアミノ酸として50%、好ましくは70%、特に好ましくは80%、さらに好ましくは90%または95%以上であることが例示される。後述の通り、これらの変異については通常の遺伝子操作技術を用いれば容易に取得可能である。配列番号1の19−140のアミノ酸配列のC末端に、上述の配列番号8の19−132のアミノ酸配列またはその変異したアミノ酸配列が結合していることが好ましい。例えば、配列番号10の19−254のアミノ酸配列、又は配列番号12の19−254のアミノ酸配列が好ましい例として挙げられる。
【0014】
また、本発明に用いることのできるトロンボモジュリンとしては、例えば、配列番号3または配列番号5のアミノ酸配列をコードするDNAをベクターにより宿主細胞にトランスフェクトして調製された形質転換細胞により取得されるペプチドが挙げられる。この形質転換細胞により取得されるペプチドとしては、配列番号3の19−516位のアミノ酸配列からなるペプチドが好ましい例として挙げられる。その他に宿主細胞によっては、シグナル部分がそのままや、前記配列番号3の17−516位のアミノ酸配列からなるペプチド、又はそれらの混合物であってもよい。勿論これらのペプチドは極めて溶解性が高いもので、前述の溶解性を十分に有するものである。本発明において、上記の配列番号3および配列番号5の19−516位のアミノ酸配列からなるペプチドは特に好ましい。またその他に、配列番号2および配列番号3の245−480位のアミノ酸配列からなるペプチドも例示される。
【0015】
さらに、これらのペプチドは、前記のアミノ酸配列を有すればよいのであって、糖鎖が付いていても、又付いていなくともよく、特に限定されるものではない。また、宿主細胞の種類により、糖鎖の種類や、付加位置や付加の程度は相違するものであり、いずれも用いることができる。前述の通り、遺伝子操作により取得することに特定されるものではないが、遺伝子操作により取得する場合には、発現に際して用いることができるシグナル配列としては、上述の配列番号8の1−18のアミノ酸配列からなる塩基配列や、配列番号8の1−16のアミノ酸配列からなる塩基配列、その他公知のシグナル配列、例えば、ヒト組織プラスミノーゲン活性化因子(tPA)のシグナル配列を利用することができる(国際公開88/9811号公報)。
【0016】
これらのペプチドを製造するに際して用いることのできる宿主細胞としては、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、COS−1細胞、COS−7細胞、VERO(ATCC CCL−81)細胞、BHK細胞、イヌ腎由来MDCK細胞、ハムスターAV−12−664細胞等が、またヒト由来細胞としてHeLa細胞、WI38細胞、ヒト293細胞等が挙げられる。CHO細胞においては、DHFR−CHO細胞がさらに好ましい。
【0017】
また、遺伝子操作の過程やペプチドの製造過程において、大腸菌等の微生物も多く使われ、それぞれに適した宿主−ベクター系を使用することが好ましく、上述の宿主細胞においても、適宜のベクター系を選択することができる。
遺伝子組換え技術に用いるトロンボモジュリンの遺伝子は、クローニングされており、そしてトロンボモジュリンの遺伝子組換え技術を用いた製造例が開示されており、さらにはその精製品を得るための精製方法も知られている[特開平1−6219,特開平2−255699,特開平5−213998,特開平5−310787,特開平7−155176,J.Biol.Chem.,264:10351−10353(1989)]。したがって本発明のトロンボモジュリンは、上記の報告に記載されている方法を用いることにより、あるいはそれらに記載の方法に準じることにより製造することができる。例えば特開平1−6219号では、全長のトロンボモジュリンをコードするDNAを含むプラスミドpsV2TMJ2を含む、Escherichia coli K−12 strain DH5(ATCC 寄託番号67283号)を開示しているが、出願人らは、再度、同じ菌株(Escherichia coli DH5/psV2TMJ2)を生命研に寄託した(FERM BP−5570)。この全長のトロンボモジュリンをコードするDNAを原料として、公知の遺伝子操作技術によって、本発明のトロンボモジュリンを調製することができる。
【0018】
本発明に用いられる可溶性トロンボモジュリンは、従来公知の方法またはそれに準じて調製すればよいが、例えば、前記山本らの方法[特開平1−6219号実施例参照]、または特開平5−213998号公報を参考にすることができる。すなわちヒト由来のトロンボモジュリン遺伝子を遺伝子操作技術により、例えば、配列番号3のアミノ酸配列をコードするDNAとなし、さらに必要に応じた改変を行うことも可能である。この改変としては、例えば、配列番号5のアミノ酸配列をコードするDNAとなすために、配列番号3のアミノ酸配列の第473位のアミノ酸をコードするコドン(特に、第1418位の塩基)に、メソッド イン エンザイモロジー[Method in Enzymology,100:468(1983年),アカデミックプレス(Academic Press)]に記載の方法に従って、部位特異的変異を行う。例えば、配列番号4の塩基配列を含むDNA断片および配列番号7に示された塩基配列を有する変異用合成DNAを用い、上記部位特異的変異を行い、配列番号5のアミノ酸配列をコードするDNA(具体的には、配列番号6の塩基配列よりなる)となすことができる。このようにして、調製したDNAを、例えばチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞に組み込んで、形質転換細胞とし、適宜選択し、この細胞を培養して得た培養液から、公知の方法により精製された可溶性トロンボモジュリンが製造できる。前述の通り配列番号3のアミノ酸配列をコードするDNAを前記宿主細胞にトランスフェクトすることが好ましい。本発明に用いられるトロンボモジュリンの生産方法は、上記の方法に限定されるものではなく、すなわち、尿や血液、その他体液等から抽出精製することでも可能であるし、またトロンボモジュリンを生産する組織またはこれら組織培養液等から抽出精製することも、また必要によりさらに蛋白分解酵素により切断処理することも可能である。
【0019】
次いで上記により取得された培養上清、または培養物からのトロンボモジュリンの単離精製方法は、公知の手法[堀尾武一編集;蛋白質・酵素の基礎実験法]に準じて行なうことができる。例えば、トロンボモジュリンと逆の電荷を持つ官能基を固定化したクロマトグラフィー担体と、トロンボモジュリンの間の相互作用を利用したイオン交換クロマトグラフィーの使用も好ましい。また、トロンボモジュリンとの特異的親和性を利用したアフィニティークロマトグラフィーも好ましい例として挙げられる。吸着体の好ましい例として、トロンボモジュリンのリガンドであるトロンビンやトロンボモジュリンの抗体を利用する例が挙げられる。これらの抗体としては、適宜の性質、或いは適宜のエピトープを認識するトロンボモジュリンの抗体を利用することができ、例えば、特公平5−42920号公報、特開昭64−45398号公報、特開平6−205692号公報などに記載された例が挙げられる。また、トロンボモジュリンの分子量サイズを利用した、ゲル濾過クロマトグラフィーや限外濾過が挙げられる。そしてまた、疎水性基を固定化したクロマトグラフィー担体と、トロンボモジュリンのもつ疎水性部位との間の疎水結合を利用した疎水性クロマトグラフィーが挙げられる。これらの手法は適宜組み合わせることができる。精製の程度は、使用目的等により選択できるが、例えば電気泳動、好ましくはSDS−PAGEの結果が単一バンドとして得られるか、もしくは単離精製品のゲル濾過HPLCまたは逆相HPLCの結果が単一のピークになるまで純粋化することが望ましい。
【0020】
精製法を具体的に例示すれば、トロンボモジュリン活性を指標に精製する方法が挙げられ、例えばイオン交換カラムのQ−セファロースFFで培養上清または培養物を粗精製しトロンボモジュリン活性を有する画分を回収し、ついでアフィニティーカラムのDIP−TB(diisopropylphosphorylthrombin agarose)で主精製しトロンボモジュリン活性が強い画分を回収し、回収画分を濃縮し、ゲルろ過にかけトロンボモジュリン活性画分を純品として取得する精製方法[五味ら;Blood、75、1396−1399、1990]が挙げられる。指標とするトロンボモジュリン活性としては、例えばトロンビンによるプロテインC活性化の促進活性が挙げられる。その他に、好ましい精製法を例示すると以下の通りである。
【0021】
トロンボモジュリンと良好な吸着条件を有する適当なイオン交換樹脂を選定し、イオン交換クロマト精製を行なう。特に好ましい例としては、0.18M NaClを含む0.02Mトリス塩緩衝液(pH7.4)で平衡化したQ−セファロースFFを用いる方法である。適宜洗浄後、例えば0.3M NaCl含む0.02Mトリス塩酸緩衝液(pH7.4)で溶出し粗精製品のトロンボモジュリンを得ることができる。
【0022】
次に、例えばトロンボモジュリンと特異的親和性を持つ物質を樹脂に固定化しアフィニティークロマト精製を行なうことができる。好ましい例としてDIP−トロンビン−アガロースカラムの例と、抗トロンボモジュリンモノクローナル抗体カラムの例が挙げられる。DIP−トロンビン−アガロースカラムは、予め、例えば、100mM NaClおよび0.5mM塩化カルシウムを含む20mMトリス緩衝液(pH7.4)で平衡化せしめ、上記の粗精製品をチャージして、適宜の洗浄を行い、例えば、1.0M NaCl及び0.5mM塩化カルシウムを含む20mMトリス緩衝液(pH7.4)で溶出し精製品のトロンボモジュリンを取得することができる。また抗トロンボモジュリンモノクローナル抗体カラムにおいては、予めCNBrにより活性化したセファロース4B(ファルマシア社)に、抗トロンボモジュリンモノクローナル抗体を溶解した0.5MNaCl含有0.1MNaHCO3緩衝液(pH8.3)に接触させ、セファロース4Bに抗トロンボモジュリンモノクローナル抗体をカップリングさせた樹脂を充填したカラムを、予め例えば1.0M NaCl含む20mMリン酸塩緩衝液(pH7.3)で平衡化し、適宜の洗浄の後、例えば、0.3M NaCl含む100mMグリシン塩酸緩衝液(pH3.0)にて溶出せしめる方法が例示される。溶出液は適当な緩衝液で中和し、高純度精製品として取得することもできる。これらは、限外濾過により濃縮することが好ましい。
【0023】
さらに、ゲル濾過による緩衝液交換を行なうことも好ましい。例えば、50mM NaClを含む20mMリン酸塩緩衝液(pH7.3)で平衡化せしめたSepahcryl S−300カラムもしくはS−200カラムに、限外濾過により濃縮した高純度精製品をチャージし、50mM NaClを含む20mMリン酸塩緩衝液(pH7.3)で展開分画し、トロンビンによるプロテインCの活性化の促進活性の確認を行ない活性画分を回収し緩衝液交換した高純度精製品を取得することができる。
【0024】
かくして取得された精製された可溶性トロンボモジュリンを、塩化水銀を投与して白血球破壊性血管炎を発症させたBrown Norwayラットに投与したところ、腸に対する障害を抑制し、さらに抗好中球細胞質抗体(以下、ANCAと略することがある)の1つである抗ミエロパーオキダーゼ抗体(以下、MPO−ANCAと略することがある)の増加を抑制した。
【0025】
近年、ANCAの血管炎における病因的意義が示唆されている。ANCAには、プロテイナーゼ−3を対応抗原とし、細胞質がびまん性に染色されるcytoplasmic ANCA(以下、c−ANCAと略することがある)とミエロパーオキシダーゼを対応抗原とし、核の周辺のみが染色されるperinuclear ANCA(以下、p−ANCAと略することがある)の2つのサブタイプに分類されている。
【0026】
c−ANCAは、Wegener肉芽腫症の病因に関わっているとともに、c−ANCAの検出が診断に有用であることが知られている[矢野哲朗ら,臨床科学,33,1395−1404(1997)]。一方、p−ANCAは、顕微鏡的多発動脈炎、壊死性半月体形成性腎炎、アレルギー性肉芽腫性血管炎、悪性リウマチ、血管ベーチェット病、白血球破壊性皮膚血管炎において高頻度に陽性となることが知られている[宮崎龍彦ら,臨床科学,33,1441−1449(1997)]。
【0027】
p−ANCAのうち、ミエロパーオキシダーゼ(以下、MPOと略することがある)を抗原とするMPO−ANCAは、特に顕微鏡的多発動脈炎で高率に検出されており、同抗体の早期診断の必要性と疾患活動の指標としての有用性が確立している。さらに、顕微鏡的多発動脈炎では、腹部臓器における血管炎が観察され、しばしば重篤であることが報告されている[竹内健ら,臨床科学,33,1388−1394(1997)]。
【0028】
塩化水銀を投与したBrown Norwayラットは、ポリクローナルにB細胞が活性化されるため、抗糸球体基底膜抗体、抗DNA抗体を産生する自己免疫病モデルとして知られていた。最近、塩化水銀を投与したBrown Norwayラットは、腸管など腹部臓器で壊死性血管炎を発症し、さらに血管炎で高率に検出されるp−ANCAを産生することが報告された[V.L.M.Esnaultら,Lab.Invest.,67,114−120(1992)]。従って、本モデルは、壊死性血管炎に分類される顕微鏡的多発動脈炎やアレルギー性肉芽腫性血管炎の病態を示しているといえる。
【0029】
さらに、可溶性トロンボモジュリンをMRL/lprマウスに投与したところ、血管炎の指標となる尿蛋白および抗二本鎖DNA(以下、抗ds−DNAと略することがある)抗体価の上昇を有意に抑制した。
MRL/lprマウスは、遺伝的な欠損によりヒトの全身性エリテマトーデスに類似した病態像を自然発症する。その病態像は、CD4+ T細胞とMac−2+活性化マクロファージの病変局所への集簇を特徴とする肉芽腫性動脈炎であり、マクロファージの浸潤に伴う外弾性板の破壊と中膜変性が観察される。その結果、局所に抗ds−DNA抗体などの免疫複合体が沈着し、免疫複合体型腎炎を発症する[伊藤美津子ら,日本臨床,52,24−28(1994)]。MRL/lprが示す蛋白尿および抗ds−DNA抗体陽性は、全身性エリテマトーデスの分類基準[E.M.Tanら,Arthritis. Rheum.,25,1271−1277(1982)]に挙げられていることから、MRL/lprマウスが全身性エリテマトーデスを発症するモデル動物であるといえる。
【0030】
これらのモデル動物に対する効果から、本発明の改善剤は血管炎の治療剤として有用であることが確認された。
本発明の血管炎治療剤を製造するに際しては、有効量のトロンボモジュリンを医薬上許容される担体と混合する公知の方法により調製すればよい。担体としては、水溶性の担体が好ましく、例えば、ショ糖、グリセリン等や、その他の無機塩のpH調整剤等を添加剤として加えて調製することができる。さらに必要に応じて、特開平6−321805号公報、特開平1−6219号公報等に開示される通り、アミノ酸、塩類、糖質、界面活性剤、アルブミン、ゼラチン等を添加しても良いし、また、防腐剤を添加することも好ましく、例えば、パラ安息香酸エステル類が好ましい例として挙げられ、パラ安息香酸メチルが特に好ましい例として挙げられる。防腐剤の添加量は、通常0.01〜1.0%が例示され、好ましくは0.1〜0.3%が挙げられる。
【0031】
これらの添加方法は特に限定されないが、凍結乾燥とする場合には、通常予想される通り、例えば、添加物を直接トロンボモジュリン含有溶液に添加したり、またはあらかじめ添加物を水、注射用蒸留水あるいは適当な緩衝液に溶解して互いに添加混合する方法にて溶液を調製し、凍結乾燥する方法が挙げられる。
本発明の血管炎治療剤としては、注射液の形態で提供されても、また凍結乾燥製剤を使用時に溶解して使用する形態で提供されてもよい。
【0032】
また、例えば製剤化工程においては、アンプルまたはバイアルに、水、注射用蒸留水あるいは適当な緩衝液1mlあたり0.05〜15mg、好適には0.1〜5mgのトロンボモジュリン及び上記添加物を含有する溶液を、例えば0.5〜10ml充填し、凍結乾燥するか、またはそのままに水溶液注射用製剤として調製できる。このような製剤は、例えば1日1〜3回投与として0.01〜100mg含有した注射用水溶液として得ればよい。
【0033】
本発明の血管炎治療剤は、非経口投与法、例えば静脈内投与、筋肉内投与、皮下投与などによって投与することが望ましい。また経口投与、直腸内投与、鼻内投与、舌下投与なども可能である。
本発明の血管炎治療剤の投与量は、患者の年齢、体重、疾患の程度、投与経路などによっても異なるが、一般的に0.001〜20mg/kgの範囲であり、一日あたり一回または必要に応じて数回投与する。投与間隔は、2日に1回、3日に1回とすることも可能である。
【0034】
このトロンボモジュリンの急性毒性を調べたところ、各群5匹の雌雄SDラットを用いて、トロンボモジュリン量として180mg/kgの用量で静脈内投与しても死亡例は1例も見られなかった。
【0035】
【実施例】
以下、実施例および参考例により本発明を具体的に説明するが、本発明は何らこれらによって限定されるものではない。
【0036】
【参考例1】
本実施例で用いる可溶性トロンボモジュリンの生産
実施例に用いる可溶性トロンボモジュリンは、前記山本らの方法(特開平1−6219号の実施例10に記載の方法)に従って行った。すなわち配列番号3のアミノ酸配列をコードするDNA(具体的には、配列番号4の塩基配列よりなる)を、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞にトランスフェクションして、この形質転換細胞の培養液より定法の精製法にて、精製された可溶性トロンボモジュリンTMD123を取得した。同様に、配列番号1のアミノ酸配列をコードするDNA(具体的には、配列番号2の塩基配列よりなる)を用いることにより配列番号1の19−122のアミノ酸を少なくとも有するペプチド(以下、TME123と略すことがある)を取得した。同様に、配列番号8のアミノ酸配列をコードするDNA(具体的には、配列番号9の塩基配列よりなる)を用いることにより、配列番号8のアミノ酸配列の19−132のアミノ酸を少なくとも有するペプチド(以下、TME456と略することがある)を、さらに配列番号1のアミノ酸配列のC末端に配列番号8の19−132のアミノ酸を結合したペプチド(具体的には、配列番号10のアミノ酸配列からなる)をコードするDNA(具体的には、配列番号11の塩基配列よりなる)を用いて配列番号10のアミノ酸配列の19−254のアミノ酸を少なくとも有するペプチド(以下、TMD2と略することがある)を取得した。
【0037】
また、配列番号11の塩基配列を含むDNA断片および配列番号7に示された塩基配列を有する変異用合成DNAを用いて前述の部位特異的変異を行い、配列番号12のアミノ酸配列をコードするDNA(具体的には、配列番号13の塩基配列よりなる)を取得した。このDNA配列をCHO細胞にトランスフェクションし、上述の方法にて配列番号12のアミノ酸配列の19−254のアミノ酸を少なくとも有するペプチド(以下、TMD2Mと略すことがある)を取得した。
【0038】
【実施例1】
塩化水銀投与Brown Norwayラットにおける効果
10週齢のBrown Norwayラット(Charles River)を7群に分け、第1群には生理食塩水、第2群には1mg/mlのTMD123、第3群には2.5mg/mlのTME123、第4群には2.5mg/mlのTME456、第5群には5mg/mlのTMD2、第6群には5mg/mlのTMD2M投与群とした。TMD123は1週間に1回、それ以外の可溶性トロンボモジュリンは1日に1回の皮下投与とし、それぞれ1回あたり2ml/kgの用量で2週間投与した。さらに第1群、第2群、第3群、第4群、第5群および第6群は、塩化水銀[HgCl2](和光純薬工業製)を1mg/mlとなるように蒸留水で調製した溶液を、1回あたり1mg/kgの用量で薬物投与開始日から2日に1回、2週間皮下投与した。第7群は無処置コントロール群とした。
【0039】
塩化水銀溶液の投与を開始してから14日後、塩化水銀投与による白血球破壊性血管炎に対するTMの効果を病理組織学的検査により検討した。すなわち、投与翌日に摘出した小腸および大腸を10%ホルマリン溶液で固定した後、常法に従いパラフィン包埋、薄切、ヘマトキシリン・エオジン染色後検鏡した。Qasimら[F.J.Qasimら,Lab.Invest.,72,183−190(1995)]による、塩化水銀投与Brown Norwayラットの消化管組織における血管炎の分類に従い、5段階[score0:正常、score1:血管周辺への好中球の浸潤、score2:軽度の血管炎、score3:壊死性血管炎、score4:白血球破壊性血管炎]に評価した。各個体の小腸および大腸における血管炎のscoreを合計し、各群で比較した。
【0040】
また、臓器摘出直前に採血を行い、血清中のMPO−ANCA抗体価をELISA法[F.J.Qasimら,Lab.Invest.,72,183−190(1995)]に準じて測定した。96穴プレート(Nunc製)に、0.1Mほう酸緩衝液(pH8.5)を用いて5μg/mlとなるように溶解して調製したMPO(Calbiochem製)を0.05mlずつ各ウェルに加え、4℃で一晩放置してコーティングした。Dulbecco’s phosphate−buffered saline(以下、PBSと略することがある)(Gibco BRL製)にTween20(Sigma製)を0.1%含む溶液で洗浄後、ウシ胎児血清アルブミン(以下、BSAと略することがある)を2%含むPBSを0.1mlずつ各ウェルに加え、37℃で2時間放置してさらにコーティングした。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、0.1%Tween20および1%BSAを含むPBSで20倍に希釈した各群のラット血清を0.05mlずつ加え、37℃で2時間放置することにより血清中の抗MPO抗体を結合させた。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、0.1%Tween20を含むPBSで希釈したアルカリフォスファターゼ標識ヒツジ抗ラットイムノグロブリン抗体(ベーリンガー・マンハイム製)を0.1mlずつ加え、37℃で2時間放置した。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、p−Nitrophenyl Phosphate(pNPP) Liquid Substrate System(Sigma製)を0.1mlずつ各ウェルに加えて37℃で保温した。0.05mlの3N水酸化ナトリウム溶液を加えて発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー(Molecular Device製)で405nmの吸光度を測定し、血清無添加のウェルで得られた吸光度をバックグラウンドとして差し引いた値をMPO−ANCA抗体価とした。
【0041】
結果は表1に示される通り、TMD123投与群、TMD2投与群およびTMD2M投与群では血管炎scoreの有意な改善が認められた。TME456投与群では血管炎scoreの改善傾向が観察されたが有意なものではなく、TME123投与群は、生理食塩水投与群と差がなかった。また、表2に示される通り、塩化水銀の投与によりMPO−ANCA産生が認められるが、TMD123投与群、TMD2投与群およびTMD2M投与群におけるMPO−ANC抗体価は、生理食塩水投与群と比較して有意に抑制された。TME456投与群およびTME123投与群ではMPO−ANCA抗体価の抑制効果は観察されなかった。プロテインC活性化を促進するトロンボモジュリンとしての活性を有するTME456に配列番号1のアミノ酸配列を付加することにより、消化管組織における血管炎scoreの上昇を有意に抑制しことから、本発明の改善剤が血管炎の治療剤として有用であることが確認された。また、本モデルは、上述の通りp−ANCAが高値を示すアレルギー性肉芽腫性血管炎および顕微鏡的多発動脈炎のモデルと考えることもできるため、TMがアレルギー性肉芽腫性血管炎、顕微鏡的多発動脈炎に対する治療剤として有用であることを明示するものである。
【0042】
【実施例2】
MRL−1/lprマウスにおける効果
6週齢の雌性MRL−1/lprマウス(日本SLC)を7群に分け、第1群には生理食塩水、第2群には0.2mg/mlのTMD123、第3群には0.5mg/mlのTME123、第4群には0.5mg/mlのTME456、第5群には1mg/mlのTMD2、第6群には1mg/mlのTMD2M投与群とした。TMD123は1週間に1回、それ以外の可溶性トロンボモジュリンは1日に1回の皮下投与とし、それぞれ1回あたり10ml/kgの用量で14週間投与した。第7群は無処置コントロール群とした。
【0043】
薬物投与開始14週間後に採尿を行い、尿中の蛋白量をエームス尿検査試験紙(N−マルティスティックスSG−L,バイエル・三共製)を用いて測定した。試験紙の呈色を添付の比色表と比較することにより、グレード0(検出限界以下),1(−30mg/dl),2(30−100mg/dl),3(100−300mg/dl),4(300−1000mg/dl),5(1000mg/dl以上)の6段階で評価し、グレード2以上を陽性と判定した。
【0044】
また薬物投与開始時と14週間後に採血を行い、血清中の抗dsDNA抗体価をELISA法[Z.Amouraら,Arthris.Rheum.,37巻,1684ー1688頁,1994年]を用いて測定した。ポリ−L−リジンプレコート96穴プレート(セルタイトPL,住友ベークライト製)に、PBSを用いて3.75ug/mlとなるように溶解して調製したラムダファージ二本鎖DNA(Sigma製)を0.1mlずつ各ウェルに加え、37℃で2時間放置後、4℃で一晩放置してコーティングした。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、ウシ胎児血清を10%含むPBSを0.1mlずつ各ウェルに加え、37℃で2時間放置してさらにコーティングした。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、0.1%Tween20を含むPBSで100倍に希釈した各群のマウス血清を0.1mlずつ加え、37℃で2時間放置することにより血清中の抗ds−DNA抗体を結合させた。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、0.1%Tween20を含むPBSで100倍に希釈したペルオキシダーゼ標識ヤギ抗gamma抗血清(Sigma製)を0.1mlずつ加え、37℃で2時間放置した。0.1%Tween20を含むPBSで洗浄後、ATBS緩衝液(ベーリンガー・マンハイム製)で1mg/mlとなるようにATBSタブレット(ベーリンガー・マンハイム製)を溶解して調製した発色溶液を0.1mlずつ各ウェルに加えて37℃で保温した。0.05mlの0.05%アジ化ナトリウム溶液を加えて発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー(Molecular Device製)で405nmの吸光度を測定し、血清無添加のウェルで得られた吸光度をバックグラウンドとして差し引いた値を抗ds−DNA抗体価とした。
【0045】
結果は表3に示される通り、TMD123投与群、TMD2投与群およびTMD2M投与群では尿蛋白量が有意に減少した。TME456投与群では尿蛋白量の減少傾向が観察されたが有意なものではなく、TME123投与群では尿蛋白量の減少は観察されなかった。また、表4に示される通り、MRL/lprマウスは、抗ds−DNA抗体の産生が認められるが、TMD123投与群、TMD2投与群およびTMD2M投与群における抗ds−DNA抗体価は、有意に抑制された。TME456投与群およびTME123投与群では抗ds−DNA抗体価の抑制効果は観察されなかった。プロテインC活性化を促進するトロンボモジュリンとしての活性を有するTME456に配列番号1のアミノ酸配列を付加することにより、血管炎の指標となる尿蛋白および抗ds−DNA抗体価の上昇を有意に抑制しことから、本発明の改善剤が血管炎の治療剤として有用であることが確認された。また、本モデルは、前述の通り全身性エリテマトーデスのモデルと考えることもできるため、TMが全身性エリテマトーデスに対する治療剤として有用であることも明示するものである。
【0046】
【表1】
【0047】
【表2】
【0048】
【表3】
【0049】
【表4】
【0050】
【発明の効果】
本発明によれば、血管炎に対する有用な治療剤が提供できる。
【0051】
【配列表】
【0052】
【0053】
【0054】
【0055】
【0056】
[0001]
[Industrial application fields]
The present invention relates to a therapeutic agent for vasculitis which has an action of promoting the activation of protein C by thrombin and has as its active ingredient a peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 in its amino acid sequence.
[0002]
[Prior art]
A peptide that specifically binds to thrombin and has the effect of significantly promoting the activation of protein C by thrombin is known as thrombomodulin (hereinafter, this peptide may be referred to as thrombomodulin).
On the other hand, protein C is a vitamin K-dependent protein that plays an important role in the blood coagulation / fibrinolysis system, and is activated by the action of thrombin to become active protein C. This active protein C inactivates the active factor VIII and VIII of the blood coagulation factor in vivo and is involved in the production of plasminogen activator having a thrombolytic action. [Koji Suzuki, History of Medicine, Vol. 125, 901 (1983)].
[0003]
Therefore, thrombomodulin promotes the activation of protein C by thrombin to produce a large amount of active protein C exhibiting anticoagulant action and thrombolytic action, and is useful as an anticoagulant or thrombolytic agent. It is said that.
Conventionally, thrombomodulin was discovered and obtained as a glycoprotein expressed on vascular endothelial cells of various animal species including human, but the inventors' group succeeded in cloning human thrombomodulin for the first time. That is, the gene of a human thrombomodulin precursor containing a signal peptide was cloned from a human lung cDNA library using a genetic engineering technique, and the entire gene sequence of thrombomodulin was analyzed, and 575 containing a signal peptide of 18 amino acid residues. The amino acid sequence of the residue has been clarified [Japanese Patent Laid-Open No. 1-6219]. The mature thrombomodulin from which the signal peptide has been cleaved has an N-terminal region (1-226) from the N-terminal side of the mature peptide, a region having six EGF-like structures (227-462), and an O-type glycosylation. A region (463-498th), a transmembrane region (499-521), and an intracytoplasmic region (522-557), and a portion having the same activity as the full-length thrombomodulin (ie, (Minimum active unit) is known to be a portion consisting of the 4th, 5th and 6th EGF-like structures from the N-terminal side of the region having 6 EGF-like structures (hereinafter sometimes abbreviated as TME456). [M. Zushi et al. Biol. Chem. , 246, 10351-10353 (1989)].
[0004]
At least thrombomodulin prepared so as not to contain a transmembrane region has a property (hereinafter sometimes referred to as “soluble”) that can be neatly dissolved even in the absence of a surfactant. A thrombomodulin (hereinafter, abbreviated as TMD123) consisting of three regions, ie, a region having six EGF-like structures and an O-type glycosylation region (ie, consisting of amino acid sequences 19 to 516 of SEQ ID NO: 2). And the recombinant thrombomodulin has been confirmed to have the activity of natural thrombomodulin [Japanese Patent Laid-Open No. 1-6219].
[0005]
Incidentally, in genes, polymorphic mutations have been found in humans as observed in many cases due to natural mutations or mutations at the time of acquisition, and human thrombomodulin consisting of the amino acid sequence of 575 residues described above. The amino acid at position 473 of the precursor is currently identified as Val and Ala. In the base sequence encoding this amino acid, it corresponds to a mutation between T and C at position 1418, respectively [Wen et al., Biochemistry 26: 4350-4357 (1987)]. However, there is no difference in activity and physical properties, and both can be considered substantially the same. Therefore, the thrombomodulin consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 described above is a polymorphic peptide of thrombomodulin consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3, and can be judged to be substantially the same.
[0006]
Thrombomodulin has been proven by animal experiments to be effective in the treatment and prevention of diseases associated with hypercoagulation such as thrombosis and DIC [K. Gomi et al., Blood, 75: 1396-1399 (1990)]. In addition, as an application for diseases other than diseases associated with hypercoagulation such as thrombosis and DIC, liver disorders [JP-A-8-3065 PR], absorptive bone disease [JP-A-8-303786 PR], wound healing [special [Publication No. 9-20877]. However, there is no description about the effect on vasculitis.
[0007]
[Problems to be solved by the invention]
Conventionally, provision of a more effective vasculitis therapeutic agent has been demanded.
[0008]
[Means for Solving the Problems]
Vasculitis is a disease in which the blood vessel wall itself is the place of inflammation and inflammation and necrosis of the blood vessel wall are the main lesions. It is not a single disease but a diverse group of diseases, both etiologically and pathologically. Yes, not enough treatment has been established. In recent years, vasculitis is thought to develop due to type II, III, or IV allergy based on autoimmunity due to host immune abnormalities, and it has been suggested that the classification of vasculitis and the respective pathogenic mechanisms are related [Miyazaki. Tatsuhiko et al., Clinical Science, 33: 1441-1449 (1997)].
[0009]
Representative examples of the vasculitis in the present invention include allergic granulomatous vasculitis, microscopic polyarteritis, Behcet's disease, antiphospholipid antibody syndrome, systemic lupus erythematosus and the like. Examples include inflammatory abdominal aortic aneurysm, temporal arteritis, polyarteritis nodosa, Kawasaki disease, Wegener's granulomatosis, Churg-Strauss syndrome, hypersensitivity vasculitis, Schonlein-Henoch purpura and the like.
[0010]
Steroids and immunosuppressants are preferentially used for the treatment of these vasculitis. Steroids, which are the main drugs for the treatment of vasculitis, may be ameliorated by reducing the medical condition when the medical condition is early or when an immunosuppressant is used in combination. However, the medical condition often relapses immediately after the steroid administration is stopped or after a certain period of time, and in such a case, large-scale administration or long-term administration of the steroid is performed. Long-term administration of steroids causes hyperlipidemia, hypertension, and vascular fibrosis, resulting in an increasing number of cases of ischemic heart disease [Kiyoshi Kitamoto, separate volume, Japanese clinical, regional syndrome 15: 185-187. (1993)]. In addition, side effects such as anemia, leukocyte and thrombocytopenia, liver dysfunction, and infection have been reported for immunosuppressants. Therefore, a drug that ameliorates vasculitis without side effects is needed in the clinical field.
[0011]
As a result of diligent investigations on methods for treating vasculitis, the present inventors have surprisingly found that thrombomodulin comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 19-140 is effective as a therapeutic agent for vasculitis, The present invention has been completed.
That is, the present invention is a vasculitis therapeutic agent having an action of promoting the activation of protein C by thrombin and having as an active ingredient a peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 19-140.
[0012]
As described above, thrombomodulin in the present invention is a substance having an action of binding to thrombin and promoting the activation of protein C by thrombin, and the thrombomodulin that can be used as the vasculitis therapeutic agent of the present invention includes Is not particularly limited as long as it has an activity as a thrombomodulin and has the amino acid sequence of 19-140 of SEQ ID NO: 1 in its amino acid sequence. More preferred is soluble thrombomodulin. The soluble thrombomodulin is a substance that has the activity as the above thrombomodulin and can be easily dissolved even in the absence of a surfactant. For example, it is at least 1 mg / ml, preferably 3 mg with respect to distilled water for injection. Those having a solubility of / ml are preferred.
[0013]
In order to show the action of promoting the activation of protein C by thrombin, for example, the amino acid sequence 19-132 of SEQ ID NO: 8 known as the central site of this action in human type thrombomodulin is contained in the peptide. The amino acid sequence of 19-132 of SEQ ID NO: 8 may be naturally or artificially mutated as long as it has an action of promoting the activation of protein C by thrombin. One or more amino acids of the amino acid sequence of No. 8 19-132 may be substituted, deleted, or added. The degree of mutation allowed is not particularly limited depending on whether or not it has activity. For example, it is 50%, preferably 70%, particularly preferably 80%, more preferably 90% or 95% or more as an amino acid. Is exemplified. As will be described later, these mutations can be easily obtained using ordinary gene manipulation techniques. It is preferable that the amino acid sequence of 19-132 of SEQ ID NO: 8 or a mutated amino acid sequence thereof is bonded to the C-terminus of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19-140. For example, the amino acid sequence of 19-254 of SEQ ID NO: 10 or the amino acid sequence of 19-254 of SEQ ID NO: 12 is a preferred example.
[0014]
Examples of the thrombomodulin that can be used in the present invention include a peptide obtained by a transformed cell prepared by transfecting a host cell with DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 or SEQ ID NO: 5 Is mentioned. A preferred example of the peptide obtained by this transformed cell is a peptide consisting of the amino acid sequence at positions 19 to 516 of SEQ ID NO: 3. In addition, depending on the host cell, the signal portion may be used as it is, or it may be a peptide comprising the amino acid sequence at positions 17 to 516 of SEQ ID NO: 3, or a mixture thereof. Of course, these peptides have extremely high solubility, and have sufficient solubility as described above. In the present invention, peptides consisting of the amino acid sequences at positions 19 to 516 of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 5 are particularly preferred. Other examples include peptides consisting of the amino acid sequences at positions 245 to 480 of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3.
[0015]
Furthermore, these peptides only need to have the amino acid sequence described above, and may or may not have a sugar chain, and are not particularly limited. Further, depending on the type of host cell, the type of sugar chain, the addition position and the degree of addition differ, and any of them can be used. As described above, it is not specified to be obtained by genetic manipulation, but when obtained by genetic manipulation, the signal sequence that can be used for expression is the amino acid 1-18 of SEQ ID NO: 8 described above. A nucleotide sequence consisting of the sequence, a nucleotide sequence consisting of the amino acid sequence of 1-16 of SEQ ID NO: 8, and other known signal sequences such as the signal sequence of human tissue plasminogen activator (tPA) can be used. (International Publication No. 88/9811).
[0016]
Examples of host cells that can be used in producing these peptides include Chinese hamster ovary (CHO) cells, COS-1 cells, COS-7 cells, VERO (ATCC CCL-81) cells, BHK cells, and canine kidney-derived MDCK. Cells, hamster AV-12-664 cells and the like, and human-derived cells include HeLa cells, WI38 cells, human 293 cells and the like. Among CHO cells, DHFR-CHO cells are more preferable.
[0017]
In addition, microorganisms such as Escherichia coli are often used in the process of gene manipulation and peptide production, and it is preferable to use a host-vector system suitable for each, and an appropriate vector system is selected for the above host cells. can do.
The gene of thrombomodulin used in the gene recombination technique has been cloned, and an example of production using the gene recombination technique of thrombomodulin is disclosed, and further, a purification method for obtaining the purified product is also known. [JP-A-1-6219, JP-A-2-255699, JP-A-5-213998, JP-A-5-310787, JP-A-7-155176, J. Pat. Biol. Chem. , 264: 10351-10353 (1989)]. Therefore, the thrombomodulin of the present invention can be produced by using the methods described in the above reports or by following the methods described therein. For example, Japanese Patent Laid-Open No. 1-6219 discloses Escherichia coli K-12 strain DH5 (ATCC Deposit No. 67283) containing plasmid psV2TMJ2 containing DNA encoding full-length thrombomodulin. The same strain (Escherichia coli DH5 / psV2TMJ2) was deposited with Life Research Institute (FERM BP-5570). Using the DNA encoding this full-length thrombomodulin as a raw material, the thrombomodulin of the present invention can be prepared by a known gene manipulation technique.
[0018]
Soluble thrombomodulin used in the present invention may be prepared by a conventionally known method or a method similar thereto. For example, the method of Yamamoto et al. [See Examples of JP-A-1-6219] or JP-A-5-213998 Can be helpful. That is, a human-derived thrombomodulin gene can be made into a DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3, for example, by genetic manipulation techniques, and further modified as necessary. As the modification, for example, in order to obtain a DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5, a codon encoding the amino acid at position 473 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 (in particular, the base at position 1418) is used as a method. Site-specific mutation is carried out according to the method described in In Enzymology [Method in Enzymology, 100: 468 (1983), Academic Press]. For example, using the DNA fragment containing the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 4 and the synthetic DNA for mutation having the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 7, the above-mentioned site-specific mutation is performed, and the DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 ( Specifically, it consists of the base sequence of SEQ ID NO: 6. Thus, the prepared DNA was incorporated into, for example, Chinese hamster ovary (CHO) cells to be appropriately selected as transformed cells, and purified from a culture solution obtained by culturing the cells by a known method. Soluble thrombomodulin can be produced. As described above, the host cell is preferably transfected with DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3. The method for producing thrombomodulin used in the present invention is not limited to the above-mentioned method, that is, it can be extracted and purified from urine, blood, other body fluids, etc. It can be extracted and purified from tissue culture medium or the like, and if necessary, further cleaved with a proteolytic enzyme.
[0019]
Subsequently, the method for isolating and purifying thrombomodulin from the culture supernatant or the culture obtained as described above can be performed in accordance with a known method [edited by Takeichi Horio; basic experimental method for proteins and enzymes]. For example, it is also preferable to use a chromatographic support on which a functional group having a charge opposite to that of thrombomodulin is immobilized and ion exchange chromatography utilizing an interaction between thrombomodulin. A preferred example is affinity chromatography using specific affinity with thrombomodulin. Preferable examples of the adsorbent include an example using an antibody of thrombin or thrombomodulin which is a ligand of thrombomodulin. As these antibodies, antibodies having appropriate properties or thrombomodulin that recognize appropriate epitopes can be used. For example, Japanese Patent Publication No. 5-42920, Japanese Patent Application Laid-Open No. 64-45398, Japanese Patent Application Laid-Open No. Examples described in Japanese Patent No. 205692 are listed. Further, gel filtration chromatography and ultrafiltration using the molecular weight size of thrombomodulin can be mentioned. In addition, hydrophobic chromatography using a hydrophobic bond between a chromatographic carrier on which a hydrophobic group is immobilized and a hydrophobic site of thrombomodulin can be mentioned. These methods can be appropriately combined. The degree of purification can be selected depending on the purpose of use. For example, electrophoresis, preferably SDS-PAGE results can be obtained as a single band, or isolated purified products can be obtained by gel filtration HPLC or reverse phase HPLC. It is desirable to purify until one peak is reached.
[0020]
A specific example of the purification method is a method of purification using thrombomodulin activity as an indicator. For example, a culture supernatant or a culture is roughly purified with Q-Sepharose FF of an ion exchange column, and a fraction having thrombomodulin activity is recovered. Then, a purification method in which the main fraction is collected by affinity purification using DIP-TB (diisopropylphosphotrophine agarose) on an affinity column, the fraction having strong thrombomodulin activity is collected, the collected fraction is concentrated, and subjected to gel filtration to obtain a pure product of thrombomodulin activity [ Gomi et al .; Blood, 75, 1396-1399, 1990]. Examples of the thrombomodulin activity used as an index include activity of promoting protein C activation by thrombin. Other preferred purification methods are as follows.
[0021]
Select an appropriate ion exchange resin with thrombomodulin and good adsorption conditions, and perform ion exchange chromatography purification. A particularly preferred example is a method using Q-Sepharose FF equilibrated with 0.02 M Tris salt buffer (pH 7.4) containing 0.18 M NaCl. After appropriate washing, elution with, for example, 0.02 M Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing 0.3 M NaCl can give a crude product thrombomodulin.
[0022]
Next, for example, a substance having specific affinity for thrombomodulin can be immobilized on a resin and subjected to affinity chromatography purification. Preferred examples include a DIP-thrombin-agarose column and an anti-thrombomodulin monoclonal antibody column. The DIP-thrombin-agarose column is pre-equilibrated with, for example, 20 mM Tris buffer (pH 7.4) containing 100 mM NaCl and 0.5 mM calcium chloride, charged with the above crude product, and washed appropriately. For example, the purified thrombomodulin can be obtained by eluting with 20 mM Tris buffer (pH 7.4) containing 1.0 M NaCl and 0.5 mM calcium chloride. In the anti-thrombomodulin monoclonal antibody column, Sepharose 4B (Pharmacia) previously activated with CNBr is contacted with 0.1 M NaHCO3 buffer (pH 8.3) containing 0.5 M NaCl in which the anti-thrombomodulin monoclonal antibody is dissolved. A column packed with a resin in which an anti-thrombomodulin monoclonal antibody is coupled to the column is previously equilibrated with, for example, 20 mM phosphate buffer (pH 7.3) containing 1.0 M NaCl, and after appropriate washing, for example, 0.3 M A method of elution with 100 mM glycine hydrochloride buffer (pH 3.0) containing NaCl is exemplified. The eluate can be neutralized with an appropriate buffer and obtained as a highly purified product. These are preferably concentrated by ultrafiltration.
[0023]
Furthermore, it is also preferable to perform buffer exchange by gel filtration. For example, a Sephcryl S-300 column or S-200 column equilibrated with 20 mM phosphate buffer (pH 7.3) containing 50 mM NaCl is charged with a high-purity purified product concentrated by ultrafiltration, and 50 mM NaCl is charged. Development with a 20 mM phosphate buffer solution (pH 7.3) containing, and confirming the activity of promoting the activation of protein C by thrombin, and collecting the active fraction to obtain a high-purity purified product with exchanged buffer solution be able to.
[0024]
The purified soluble thrombomodulin thus obtained was administered to Brown Norway rats that had developed leukocyte destructive vasculitis by administration of mercuric chloride to suppress damage to the intestine and further to anti-neutrophil cytoplasmic antibodies (hereinafter referred to as “antineutrophil cytoplasmic antibodies”). , An increase in anti-myeloperoxidase antibody (hereinafter may be abbreviated as MPO-ANCA), which is one of them.
[0025]
In recent years, the etiological significance of ANCA in vasculitis has been suggested. For ANCA, proteinase-3 is used as the corresponding antigen, cytoplasmic ANCA (hereinafter sometimes abbreviated as c-ANCA) whose cytoplasm is diffusely stained and myeloperoxidase is used as the corresponding antigen, and only the periphery of the nucleus is stained. Are classified into two subtypes of periclear ANCA (hereinafter sometimes abbreviated as p-ANCA).
[0026]
c-ANCA has been implicated in the pathogenesis of Wegener's granulomatosis and detection of c-ANCA is known to be useful for diagnosis [Tetsuro Yano et al., Clinical Science, 33, 1395-1404 (1997). ]. On the other hand, p-ANCA is frequently positive in microscopic polyarteritis, necrotizing crescent-forming nephritis, allergic granulomatous vasculitis, malignant rheumatism, vascular Behcet's disease, leukocyte-destructive dermatovasculitis [Tatsuhiko Miyazaki et al., Clinical Science, 33, 1441-1449 (1997)].
[0027]
Among p-ANCA, MPO-ANCA with myeloperoxidase (hereinafter sometimes abbreviated as MPO) as an antigen has been detected at a high rate, particularly in microscopic polyarteritis. Usefulness as an indicator of necessity and disease activity has been established. Furthermore, in microscopic polyarteritis, vasculitis in the abdominal organ is observed and is often reported to be severe [Takeuchi Take et al., Clinical Science, 33, 1388-1394 (1997)].
[0028]
Brown Norway rats administered with mercuric chloride have been known as autoimmune disease models that produce anti-glomerular basement membrane antibodies and anti-DNA antibodies because B cells are activated polyclonally. Recently, Brown Norway rats administered with mercuric chloride have been reported to develop necrotizing vasculitis in abdominal organs such as the intestine and to produce p-ANCA that is detected at high rates in vasculitis [V. L. M.M. Esnault et al., Lab. Invest. 67, 114-120 (1992)]. Therefore, it can be said that this model shows a pathological condition of microscopic polyarteritis or allergic granulomatous vasculitis classified into necrotizing vasculitis.
[0029]
Furthermore, when soluble thrombomodulin was administered to MRL / lpr mice, urinary protein and anti-double-stranded DNA (hereinafter sometimes abbreviated as anti-ds-DNA), which are indicators of vasculitis, were significantly suppressed. did.
MRL / lpr mice spontaneously develop pathological features similar to human systemic lupus erythematosus due to genetic defects. The pathologic feature is granulomatous arteritis characterized by the confluence of CD4 + T cells and Mac-2 + activated macrophages to the lesion, and observation of destruction of the outer elastic lamina and intima degeneration associated with macrophage infiltration Is done. As a result, immune complexes such as anti-ds-DNA antibodies are deposited locally to develop immune complex nephritis [Mitoko Ito et al., Japanese Clinical Practice, 52, 24-28 (1994)]. Proteinuria and anti-ds-DNA antibody positivity indicated by MRL / lpr is a classification standard for systemic lupus erythematosus [E. M.M. Tan et al., Arthritis. Rheum. , 25, 1271-1277 (1982)], it can be said that MRL / lpr mice are model animals that develop systemic lupus erythematosus.
[0030]
From the effects on these model animals, it was confirmed that the improving agent of the present invention is useful as a therapeutic agent for vasculitis.
In producing the therapeutic agent for vasculitis of the present invention, it may be prepared by a known method in which an effective amount of thrombomodulin is mixed with a pharmaceutically acceptable carrier. The carrier is preferably a water-soluble carrier, and can be prepared by adding, for example, sucrose, glycerin, or other inorganic salt pH adjusters as additives. Further, if necessary, amino acids, salts, carbohydrates, surfactants, albumin, gelatin and the like may be added as disclosed in JP-A-6-321805 and JP-A-1-6219. Moreover, it is also preferable to add a preservative, for example, a parabenzoate ester is mentioned as a preferable example, and a methyl parabenzoate is mentioned as a particularly preferable example. The amount of preservative added is typically 0.01 to 1.0%, preferably 0.1 to 0.3%.
[0031]
Although these addition methods are not particularly limited, in the case of freeze-drying, for example, as normally expected, for example, the additive is directly added to the thrombomodulin-containing solution, or the additive is preliminarily added to water, water for injection or A method of preparing a solution by dissolving in an appropriate buffer and adding and mixing each other, and freeze-drying can be mentioned.
The vasculitis therapeutic agent of the present invention may be provided in the form of an injection solution, or may be provided in a form in which a freeze-dried preparation is dissolved at the time of use.
[0032]
For example, in the formulation step, ampules or vials contain 0.05 to 15 mg, preferably 0.1 to 5 mg of thrombomodulin and the above-mentioned additives per ml of water, distilled water for injection or a suitable buffer solution. The solution can be filled, for example, 0.5 to 10 ml, lyophilized, or prepared as an aqueous solution injection formulation as it is. Such a preparation may be obtained, for example, as an aqueous solution for injection containing 0.01 to 100 mg as 1 to 3 times a day.
[0033]
The therapeutic agent for vasculitis of the present invention is desirably administered by a parenteral administration method such as intravenous administration, intramuscular administration, subcutaneous administration and the like. Oral administration, rectal administration, intranasal administration, sublingual administration and the like are also possible.
The dose of the therapeutic agent for vasculitis of the present invention varies depending on the patient's age, weight, degree of disease, administration route, etc., but is generally in the range of 0.001 to 20 mg / kg, and once a day. Or administer several times as needed. The dosing interval can be once every two days and once every three days.
[0034]
When the acute toxicity of this thrombomodulin was examined, even if it was intravenously administered at a dose of 180 mg / kg using 5 male and female SD rats per group, no death was observed.
[0035]
【Example】
EXAMPLES Hereinafter, although an Example and a reference example demonstrate this invention concretely, this invention is not limited by these at all.
[0036]
[Reference Example 1]
Production of soluble thrombomodulin used in this example
Soluble thrombomodulin used in Examples was carried out according to the method of Yamamoto et al. (Method described in Example 10 of JP-A-1-6219). That is, DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 (specifically, consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4) is transfected into Chinese hamster ovary (CHO) cells, and a standard method is performed from the culture solution of the transformed cells. Purified soluble thrombomodulin TMD123 was obtained by the purification method described above. Similarly, by using DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (specifically, consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2), a peptide having at least 19-122 amino acids of SEQ ID NO: 1 (hereinafter referred to as TME123) Acquired). Similarly, by using DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8 (specifically, consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 9), a peptide having at least 19-132 amino acids of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8 ( Hereinafter, it may be abbreviated as TME456), and further comprises a peptide (specifically, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10) in which the amino acids 19-132 of SEQ ID NO: 8 are linked to the C-terminus of the amino acid sequence of SEQ ID NO: ), A peptide having at least amino acids 19-254 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10 (hereinafter sometimes abbreviated as TMD2). Acquired.
[0037]
Further, DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 12 by performing the above-mentioned site-specific mutation using a DNA fragment comprising the base sequence of SEQ ID NO: 11 and a synthetic DNA for mutation having the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 (Specifically, it consists of the base sequence of SEQ ID NO: 13). This DNA sequence was transfected into CHO cells, and a peptide having at least amino acids 19-254 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 12 (hereinafter sometimes abbreviated as TMD2M) was obtained by the method described above.
[0038]
[Example 1]
Effects in Mercury Chloride-treated Brown Norway Rats
Ten-week-old Brown Norway rats (Charles River) were divided into 7 groups, saline in the first group, 1 mg / ml TMD123 in the second group, 2.5 mg / ml TME123 in the third group, Group 4 was 2.5 mg / ml TME456, Group 5 was 5 mg / ml TMD2, and Group 6 was 5 mg / ml TMD2M. TMD123 was administered subcutaneously once a week, and the other soluble thrombomodulin was administered subcutaneously once a day, each at a dose of 2 ml / kg for 2 weeks. Further, the first group, the second group, the third group, the fourth group, the fifth group and the sixth group were prepared with distilled water so that mercury chloride [HgCl2] (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was 1 mg / ml. The resulting solution was subcutaneously administered once every two days from the start of drug administration at a dose of 1 mg / kg once. Group 7 was an untreated control group.
[0039]
Fourteen days after the start of administration of the mercury chloride solution, the effect of TM on leukocyte destructive vasculitis caused by mercury chloride administration was examined by histopathological examination. That is, the small intestine and large intestine excised on the day after administration were fixed with a 10% formalin solution, followed by paraffin embedding, slicing, and hematoxylin / eosin staining according to conventional methods. Qasim et al. [F. J. et al. Qasim et al., Lab. Invest. , 72, 183-190 (1995)] according to the classification of vasculitis in the digestive tract tissue of Brown Norway rats administered with mercury chloride [score0: normal, score1: infiltration of neutrophils around blood vessels, score2: Mild vasculitis, score3: necrotizing vasculitis, score4: leukocyte destructive vasculitis]. The score of vasculitis in the small and large intestines of each individual was summed and compared in each group.
[0040]
In addition, blood was collected immediately before organ removal, and the MPO-ANCA antibody titer in the serum was determined by ELISA [F. J. et al. Qasim et al., Lab. Invest. 72, 183-190 (1995)]. 0.05 ml of MPO (manufactured by Calbiochem) prepared by dissolving in a 96-well plate (manufactured by Nunc) using 0.1 M borate buffer (pH 8.5) to a concentration of 5 μg / ml was added to each well. The coating was left at 4 ° C. overnight. After washing with a solution containing 0.1% Tween 20 (manufactured by Sigma) in Dulbecco's phosphate-buffered saline (hereinafter abbreviated as PBS) (manufactured by Gibco BRL), fetal bovine serum albumin (hereinafter abbreviated as BSA). PBS containing 2%) was added to each well, and the coating was further allowed to stand at 37 ° C. for 2 hours. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, add 0.05 ml of each group of rat serum diluted 20-fold with PBS containing 0.1% Tween 20 and 1% BSA, and let stand at 37 ° C. for 2 hours. To bind anti-MPO antibody in the serum. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, 0.1 ml of alkaline phosphatase-labeled sheep anti-rat immunoglobulin antibody (Boehringer Mannheim) diluted with PBS containing 0.1% Tween 20 was added and incubated at 37 ° C. for 2 hours. I left it alone. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, 0.1 ml of p-nitrophenyl phosphate (pNPP) Liquid Substrate System (manufactured by Sigma) was added to each well and incubated at 37 ° C. After 0.05 ml of 3N sodium hydroxide solution was added to stop the color reaction, the absorbance at 405 nm was measured with a microplate reader (Molecular Device), and the absorbance obtained in the serum-free well was used as the background. The subtracted value was designated as MPO-ANCA antibody titer.
[0041]
As a result, as shown in Table 1, significant improvement in vasculitis score was observed in the TMD123 administration group, the TMD2 administration group, and the TMD2M administration group. An improvement tendency of vasculitis score was observed in the TME456 administration group, but this was not significant, and the TME123 administration group was not different from the physiological saline administration group. In addition, as shown in Table 2, production of MPO-ANCA was observed by administration of mercury chloride, but the MPO-ANC antibody titers in the TMD123 administration group, TMD2 administration group and TMD2M administration group were compared with those in the physiological saline administration group. Was significantly suppressed. In the TME456 administration group and the TME123 administration group, the effect of suppressing the MPO-ANCA antibody titer was not observed. By adding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 to TME456 having activity as a thrombomodulin that promotes protein C activation, the increase in vasculitis score in the gastrointestinal tissue is significantly suppressed. It was confirmed to be useful as a therapeutic agent for vasculitis. Moreover, since this model can also be considered as a model of allergic granulomatous vasculitis and microscopic polyarteritis in which p-ANCA has a high value as described above, TM is allergic granulomatous vasculitis, microscopically. It is clearly shown that it is useful as a therapeutic agent for polyarteritis.
[0042]
[Example 2]
Effects in MRL-1 / lpr mice
Six-week-old female MRL-1 / lpr mice (Japan SLC) were divided into 7 groups, physiological saline for the first group, 0.2 mg / ml TMD123 for the second group, and 0. 5 mg / ml TME123, the fourth group was 0.5 mg / ml TME456, the fifth group was 1 mg / ml TMD2, and the sixth group was 1 mg / ml TMD2M. TMD123 was administered subcutaneously once a week, and other soluble thrombomodulin was administered subcutaneously once a day, each at a dose of 10 ml / kg for 14 weeks. Group 7 was an untreated control group.
[0043]
Urine was collected 14 weeks after the start of drug administration, and the amount of protein in the urine was measured using an Ames urine test paper (N-martistics SG-L, manufactured by Bayer Sankyo). Grade 0 (below detection limit), 1 (-30 mg / dl), 2 (30-100 mg / dl), 3 (100-300 mg / dl) by comparing the color of the test paper with the attached colorimetric table , 4 (300-1000 mg / dl), 5 (1000 mg / dl or higher), grade 2 or higher was determined as positive.
[0044]
Blood was collected at the start of drug administration and 14 weeks later, and the anti-dsDNA antibody titer in the serum was determined by ELISA [Z. Amoura et al., Arthriss. Rheum. 37, 1684-1688, 1994]. A lambda phage double-stranded DNA (manufactured by Sigma) prepared by dissolving in a poly-L-lysine pre-coated 96-well plate (Celtite PL, manufactured by Sumitomo Bakelite Co., Ltd.) to 3.75 ug / ml using PBS 1 ml each was added to each well and allowed to stand at 37 ° C. for 2 hours and then allowed to stand overnight at 4 ° C. for coating. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, 0.1 ml of PBS containing 10% fetal bovine serum was added to each well and allowed to stand at 37 ° C. for 2 hours for further coating. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, 0.1 ml of each group of mouse serum diluted 100-fold with PBS containing 0.1% Tween 20 was added and left at 37 ° C. for 2 hours. Anti-ds-DNA antibody was conjugated. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, 0.1 ml each of peroxidase-labeled goat anti-gamma antiserum (manufactured by Sigma) diluted 100-fold with PBS containing 0.1% Tween 20 was added and left at 37 ° C. for 2 hours. did. After washing with PBS containing 0.1% Tween 20, 0.1 ml each of the coloring solution prepared by dissolving ATBS tablet (Boehringer Mannheim) to 1 mg / ml with ATBS buffer (Boehringer Mannheim) In addition to each well, it was incubated at 37 ° C. After 0.05 ml of 0.05% sodium azide solution was added to stop the color reaction, the absorbance at 405 nm was measured with a microplate reader (Molecular Device), and the absorbance obtained in the serum-free well was measured. The value subtracted as the background was taken as the anti-ds-DNA antibody titer.
[0045]
As shown in Table 3, the amount of urine protein was significantly decreased in the TMD123 administration group, the TMD2 administration group, and the TMD2M administration group. A decrease in urine protein was observed in the TME456 administration group, but this was not significant, and no decrease in urine protein was observed in the TME123 administration group. As shown in Table 4, MRL / lpr mice produced anti-ds-DNA antibodies, but the anti-ds-DNA antibody titers in the TMD123 administration group, TMD2 administration group and TMD2M administration group were significantly suppressed. It was done. No inhibitory effect on the anti-ds-DNA antibody titer was observed in the TME456 administration group and the TME123 administration group. Addition of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 to TME456, which has activity as a thrombomodulin that promotes protein C activation, can significantly suppress the increase in urinary protein and anti-ds-DNA antibody titers that are indicators of vasculitis From these results, it was confirmed that the improving agent of the present invention is useful as a therapeutic agent for vasculitis. Moreover, since this model can also be considered as a model of systemic lupus erythematosus as described above, it is also clearly shown that TM is useful as a therapeutic agent for systemic lupus erythematosus.
[0046]
[Table 1]
[0047]
[Table 2]
[0048]
[Table 3]
[0049]
[Table 4]
[0050]
【The invention's effect】
According to the present invention, a useful therapeutic agent for vasculitis can be provided.
[0051]
[Sequence Listing]
[0052]
[0053]
[0054]
[0055]
[0056]
Claims (6)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22268898A JP4256497B2 (en) | 1998-08-06 | 1998-08-06 | Anti-angiitis agent |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22268898A JP4256497B2 (en) | 1998-08-06 | 1998-08-06 | Anti-angiitis agent |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2000053582A JP2000053582A (en) | 2000-02-22 |
| JP4256497B2 true JP4256497B2 (en) | 2009-04-22 |
Family
ID=16786364
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP22268898A Expired - Fee Related JP4256497B2 (en) | 1998-08-06 | 1998-08-06 | Anti-angiitis agent |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4256497B2 (en) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU2001245319A1 (en) * | 2000-03-28 | 2001-10-08 | Eli Lilly And Company | Methods of treating diseases with activated protein c |
| WO2002096947A2 (en) * | 2001-05-25 | 2002-12-05 | Vlaams Interuniversitair Instituut Voor Biotechnologie Vzw | The lectin-like domain of thrombomodulin and its therapeutic use |
-
1998
- 1998-08-06 JP JP22268898A patent/JP4256497B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2000053582A (en) | 2000-02-22 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP2869920B2 (en) | Deoxyribonucleic acid for producing tissue factor protein | |
| ES2387394T3 (en) | Inflammation treatment procedure | |
| JP3542127B2 (en) | Human interferon-β2 / interleukin-6 receptor | |
| JP2879079B2 (en) | Growth hormone receptor | |
| JP2935709B2 (en) | Nucleic acids and methods for the synthesis of novel fusion polypeptides with phospholipid anchor domains | |
| JP3484189B2 (en) | Human C3b / C4b receptor (CR1) | |
| KR20150121715A (en) | Csf1 therapeutics | |
| US5451399A (en) | [ALA IL-8]77 and [SER IL-8]72 as Leukocyte adhesion inhibitors | |
| WO1991007483A2 (en) | Mammalian pancreatic cholesterol esterase | |
| US5766593A (en) | Anti-inflammatory CD14 peptides | |
| JP2018529729A (en) | Treatment of bile acid disorders | |
| WO2018032639A1 (en) | Activated human blood-clotting factor vii fusion protein, and manufacturing method and application of same | |
| JP5208135B2 (en) | Recombinant leukocyte inhibitory factor and hirugen chimeric protein and drug composition thereof | |
| JP2007525972A (en) | Anti-angiogenic peptides from the N-terminus of endostatin | |
| CN102584976A (en) | Human serum amyloid A1 and preparation method and application thereof | |
| JP2718827B2 (en) | Secreted Mac-2-binding glycoprotein | |
| JP4256497B2 (en) | Anti-angiitis agent | |
| JPH03155787A (en) | Ebzd protein expression system | |
| KR20000053277A (en) | Soluble polypeptides | |
| JP2005516016A (en) | Cleavage agents for specific delivery to the lesion site | |
| CA2208699A1 (en) | Anti-inflammatory cd14 polypeptides | |
| JP2013253079A (en) | BIOLOGICALLY ACTIVE Fc FUSION PROTEIN OF HUMAN URINARY TRYPSIN INHIBITOR, AND PREPARATION METHOD AND APPLICATION THEREOF | |
| WO1991004276A1 (en) | Isolated, physiologically active human thrombomodulin polypeptide | |
| RU2799764C2 (en) | Medicinal product for the therapeutic treatment and/or improvement of the condition of sepsis associated with coagulopathy | |
| AU2019366008B2 (en) | Drug for treating and/or improving septicemia associated with coagulation abnormality |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20050228 |
|
| RD02 | Notification of acceptance of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7422 Effective date: 20070626 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20080617 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20080815 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20081021 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20081212 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20090113 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20090130 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120206 Year of fee payment: 3 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120206 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130206 Year of fee payment: 4 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140206 Year of fee payment: 5 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |