JP4425892B2 - Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof - Google Patents
Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof Download PDFInfo
- Publication number
- JP4425892B2 JP4425892B2 JP2006215304A JP2006215304A JP4425892B2 JP 4425892 B2 JP4425892 B2 JP 4425892B2 JP 2006215304 A JP2006215304 A JP 2006215304A JP 2006215304 A JP2006215304 A JP 2006215304A JP 4425892 B2 JP4425892 B2 JP 4425892B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- hole
- glass
- sensor chip
- cell electrophysiological
- sensor
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
本発明は、細胞の活動によって発生する物理化学的変化を測定するために用いられる細胞内電位あるいは細胞外電位等の細胞電気生理現象を測定するための細胞電気生理センサおよびその製造方法に関するものである。 The present invention relates to a cell electrophysiological sensor for measuring a cell electrophysiological phenomenon such as an intracellular potential or an extracellular potential used for measuring a physicochemical change generated by a cell activity, and a method for producing the same. is there.
電気生理学におけるパッチクランプ法は、細胞膜に存在するイオンチャンネルを測定する方法として知られており、このパッチクランプ法によってイオンチャンネルの様々な機能が解明されてきた。そして、イオンチャンネルの働きは細胞学において重要な関心ごとであり、これは薬剤の開発にも応用されている。 The patch clamp method in electrophysiology is known as a method for measuring an ion channel existing in a cell membrane, and various functions of the ion channel have been elucidated by this patch clamp method. And the action of ion channels is an important concern in cytology, which has also been applied to drug development.
しかし、一方でパッチクランプ法は測定技術に微細なマイクロピペットを1個の細胞に高い精度で挿入するという極めて高い能力を必要としているため、熟練作業者が必要であり、高いスループットで測定を必要とする場合には適切な方法でない。 However, on the other hand, the patch clamp method requires an extremely high ability to insert a fine micropipette into a single cell with high precision in the measurement technique, so it requires skilled workers and requires high throughput. Is not an appropriate method.
このため、微細加工技術を利用した平板型プローブの開発がなされており、これらは個々の細胞についてマイクロピペットの挿入を必要とせず、減圧を行うだけで自動に細胞を固定・測定を行うことができ、自動化システムとして適している。 For this reason, flat-type probes using microfabrication technology have been developed, and these do not require the insertion of a micropipette for each individual cell, and can automatically fix and measure cells simply by reducing the pressure. It is suitable as an automation system.
例えば、平板のデバイスに複数の貫通孔を設け、ここに接着した細胞の連続層を含み、電極で電位依存性のイオンチャンネル活性を測定する技術を開示している(特許文献1参照)。 For example, a technique is disclosed in which a plate-like device is provided with a plurality of through-holes and includes a continuous layer of cells adhered thereto, and a voltage-dependent ion channel activity is measured with an electrode (see Patent Document 1).
また、使用時に物体がオリフィスをシールし、これによって電気的に絶縁された電極間のインピーダンスの変化によって、媒体中の物体の電気的測定を行う装置について開示している(特許文献2参照)。
しかしながら、前記従来の技術においては、複数の細胞の電気生理現象を一括して測定することは可能であるが、測定対象の細胞数を増加させていくとセンサチップがより多数個となり構造が複雑になるという課題があった。 However, in the conventional technique, it is possible to measure the electrophysiological phenomenon of a plurality of cells at once, but as the number of cells to be measured increases, the number of sensor chips becomes larger and the structure becomes complicated. There was a problem of becoming.
本発明は、前記従来の課題を解決するもので、測定対象の細胞数が増えた場合であっても、生産性に優れた効率的な細胞電気生理センサの構造を実現し、漏れ電流が少ない状態で高精度に測定することができる細胞電気生理センサおよびその製造方法を提供することを目的とする。 The present invention solves the above-described conventional problems, and realizes an efficient structure of a cell electrophysiological sensor excellent in productivity even when the number of cells to be measured is increased, and has a small leakage current. It is an object of the present invention to provide a cell electrophysiological sensor that can be measured with high accuracy in a state and a method for manufacturing the same.
前記従来の課題を解決するために、本発明は、第一の貫通孔を有するウエルと、このウエルの下方に当接した第二の貫通孔を有した保持プレートと、この保持プレートの下方に液体の流入口と流出口を両端に備えた空洞を有した流路プレートを当接し、前記第二の貫通孔の内部に第三の貫通孔を備えたダイアフラムを有したセンサチップを当接した細胞電気生理センサであって、前記保持プレートを親水性を有するガラスとし、センサチップをシリコンとし、前記センサチップと保持プレートをガラス溶着によって接合した構成とするものである。 In order to solve the conventional problem, the present invention provides a well having a first through hole, a holding plate having a second through hole in contact with the lower part of the well, and a lower part of the holding plate. A flow path plate having a cavity having a liquid inlet and an outlet at both ends is contacted, and a sensor chip having a diaphragm having a third through hole is contacted inside the second through hole. In the cell electrophysiological sensor, the holding plate is made of glass having hydrophilicity, the sensor chip is made of silicon, and the sensor chip and the holding plate are joined by glass welding.
本発明の細胞電気生理センサおよびその製造方法は、センサチップを保持プレートに挿入する際、セルフアライメント性に優れるとともに、ガラス溶着にて接合することから、隙間からの液漏れによる漏れ電流を減少させることができることによって、高精度に測定することができるとともに生産性に優れた細胞電気生理センサおよびその製造方法を実現するものである。 The cell electrophysiological sensor of the present invention and the method for manufacturing the same are excellent in self-alignment when the sensor chip is inserted into the holding plate and are joined by glass welding, thereby reducing leakage current due to liquid leakage from the gap. Therefore, it is possible to realize a cell electrophysiological sensor that can measure with high accuracy and is excellent in productivity, and a manufacturing method thereof.
(実施の形態1)
以下、本発明の実施の形態1における細胞電気生理センサおよびその製造方法について、図面を参照しながら説明する。
(Embodiment 1)
Hereinafter, the cell electrophysiological sensor and the manufacturing method thereof according to Embodiment 1 of the present invention will be described with reference to the drawings.
図1は本発明の実施の形態1における細胞電気生理センサの断面図であり、図2は図1の要部拡大断面図である。また、図3はセンサチップをガラス溶着によって固着保持する方法を説明するための上面図であり、図4はその断面図である。 1 is a cross-sectional view of a cell electrophysiological sensor according to Embodiment 1 of the present invention, and FIG. 2 is an enlarged cross-sectional view of a main part of FIG. FIG. 3 is a top view for explaining a method of fixing and holding the sensor chip by glass welding, and FIG. 4 is a sectional view thereof.
図1および図2において、1は樹脂よりなるウエルであり、このウエル1に細胞外液18を貯留しておくための第一の貫通孔5を形成している。この第一の貫通孔5は断面形状をテーパー状に形成しておくことによって、電解液などの液体または細胞などを投入するときに効率が良い。
In FIG. 1 and FIG. 2, reference numeral 1 denotes a well made of resin, and a first through
また、前記ウエル1の下方には第二の貫通孔6を設けた親水性を有するガラスよりなる保持プレート2を当接しており、この保持プレート2の第二の貫通孔6の内部には、少なくとも一つの第三の貫通孔7を有したダイアフラム9を備えたシリコンよりなるセンサチップ4がセットされている。このセンサチップ4はシリコンウエハをエッチング加工することによって形成することができる。例えば、シリコンウエハをエッチング加工することによってキャビティ10を形成し、その後第三の貫通孔7を形成することによって、ダイアフラム9の厚みを10〜100μm、第三の貫通孔7の開口径を1〜3μmφの寸法形状で半導体プロセスなどの微細加工技術を用いて一体的に加工することによってセンサチップ4を形成することができる。そして、この第三の貫通孔7の開口径は細胞20の大きさによって適宜選択することができる。
In addition, a
なお、キャビティ10または第三の貫通孔7を形成する順序はどちらが先であっても構わない。
Note that the order in which the
このように、シリコンをセンサチップ4の構成材料とすることによって、半導体プロセスを用いて効率よく高精度に作製することができるとともに、その生産設備も入手が容易である。 Thus, by using silicon as a constituent material of the sensor chip 4, it can be efficiently and accurately manufactured using a semiconductor process, and its production equipment is easily available.
さらに、前記保持プレート2の下方には、その両端に液体を流出入させるための空洞8を有した流路プレート3を当接して細胞電気生理センサを構成しており、第三の貫通孔7の上面に細胞20を密着保持し、この細胞20の電気生理現象を測定することができるようになっている。そして、前記空洞8には流出口17から吸引ポンプなどを用いて吸引することによって細胞内液19を充填することができる。
Furthermore, a cell electrophysiological sensor is configured below the
また、ウエル1と流路プレート3は樹脂で構成しておくと生産性の観点から都合が良く、特に熱可塑性樹脂を用いることが好ましい。これにより、これらの材料は射出成型などの手段を用いることによって生産性良く、高均質な成形体を得ることができ、それぞれの接合も効率良くできる。さらに好ましくは、これらの熱可塑性樹脂はポリカーボネート(PC)、ポリエチレン(PE)、オレフィンポリマー、ポリメタクリル酸メチルアセテート(PMMA)のいずれか、またはこれらの組み合わせを用いることである。これらの材料は、紫外線硬化型の接着剤を用いることによって容易にガラスからなる保持プレート2と接合することができる。さらに好ましくは、これら熱可塑性樹脂が環状オレフィンポリマー、線状オレフィンポリマー、またはこれらが重合した環状オレフィンコポリマー、またはポリエチレン(PE)からなる熱可塑性樹脂が作業性、製造コスト、材料の入手性の観点から好ましい。特に、環状オレフィンコポリマーは透明性、アルカリ・酸などの無機系薬剤に対する耐性が強く、本発明の製造方法もしくは使用環境に適している。またこれらの材料は紫外線を透過させることができるため、紫外線硬化型の接着剤を用いる時に効果を発揮する。
Further, it is convenient from the viewpoint of productivity that the well 1 and the flow path plate 3 are made of resin, and it is particularly preferable to use a thermoplastic resin. Accordingly, these materials can be produced with high productivity by using means such as injection molding, and a highly homogeneous molded body can be obtained. More preferably, these thermoplastic resins are polycarbonate (PC), polyethylene (PE), olefin polymer, polymethyl methacrylate acetate (PMMA), or a combination thereof. These materials can be easily joined to the
そして、この第三の貫通孔7の直径は5μm以下が望ましく、細胞20を保持するために最適な大きさの貫通孔となっている。このように、センサチップ4と、保持プレート2を別々に作製しておいて、この保持プレート2の第二の貫通孔6にセンサチップ4をはめ込むことによって効率よく細胞電気生理センサを作製することができる。特に、不良のセンサチップ4があった場合においても、センサチップ4の交換を容易に行うことができる。
The diameter of the third through
これに対して、例えば保持プレート2をシリコン基板から一体的に作製した場合、コストもかかり、歩留まりも悪くなるとともに、一部のセンサチップに不良が生じた場合であっても、リペア性も有しない構成となる。
On the other hand, for example, when the
一方、保持プレート2を樹脂で形成し、シリコンで形成したセンサチップ4を直接第二の貫通孔6の内部へ挿入固着した場合、前記センサチップ4は微小形状であることからその取り扱いが難しく、保持プレート2に形成した微小形状の第二の貫通孔6の内部へ挿入する際、乾燥状態で行うと静電気などの影響でセンサチップ4をうまく所定の位置へ挿入して固定することが難しかった。
On the other hand, when the
この課題を克服するために、センサチップ4を純水などに浸漬しておいて、その状態で第二の貫通孔6へ挿入するとセンサチップ4の水の表面張力の作用によるセルフアライメント性を利用することによって、非常に効率良く作業ができることが分かった。そのため、微細加工によって作製したセンサチップ4は酸、アルカリなどの化学処理、あるいはプラズマ、UVなどの物理処理による清浄化を行った後、親水性を保持しておくために純水中へ浸漬しておくことが好ましい。
In order to overcome this problem, when the sensor chip 4 is immersed in pure water or the like and inserted into the second through-
そして、保持プレート2の第二の貫通孔6の内部へ挿入して組み立てる直前に、センサチップ4を純水中より取り出し、第二の貫通孔6の入り口へセンサチップ4の一部を挿入する。
The sensor chip 4 is taken out from the pure water just before being inserted into the second through
このとき、センサチップ4の表面とキャビティ10の内部には純水が十分に付着充填した状態とし、第二の貫通孔6の内壁面は親水性を有したガラスを用いて形成しておくことにより、このセンサチップ4は水の表面張力の作用によって図2に示した位置に均一にセルフアライメントすることを見いだした。
At this time, the surface of the sensor chip 4 and the inside of the
この作用を利用することによって、簡単にセンサチップ4の配置を均一に配置することが可能となっている。特に、マトリックス状に第二の貫通孔6を配置した複数のセンサチップ4を有する細胞電気生理センサを生産するときに非常に効率的に第二の貫通孔6の内部へセンサチップ4を配置することができる。
By utilizing this action, it is possible to easily arrange the sensor chips 4 uniformly. In particular, when producing a cell electrophysiological sensor having a plurality of sensor chips 4 in which the second through-
なお、センサチップ4の方向によるセルフアライメントの影響は無く、ダイアフラム9の面が上下いずれの面を向いていたとしても、センサチップ4は保持プレート2の一平面に沿うようにセルフアライメントすることが分かっている。
Note that there is no influence of self-alignment due to the direction of the sensor chip 4, and the sensor chip 4 can be self-aligned along one plane of the
これに対して、乾燥した状態でセンサチップ4を第二の貫通孔6の内部へ挿入する従来の方法では、静電気などによってセンサチップ4が飛散させられてしまうことがあり、作業性があまり良くなく、挿入したセンサチップ4の挿入位置もばらつきがあり、整列配置に多くの時間を要していた。
On the other hand, in the conventional method in which the sensor chip 4 is inserted into the second through
また、親水性を高めるためには保持プレート2を構成するガラス組成に二酸化ケイ素を含んでいることが好ましい。
Moreover, in order to improve hydrophilicity, it is preferable that the glass composition which comprises the holding |
その後、このセンサチップ4が所定の位置から動かないように静置させるためには、センサチップ4と第二の貫通孔6が横方向に水平になるように固定(図1において、90度回転させた状態)した後、熱処理炉などへ入れる。
Thereafter, in order to keep the sensor chip 4 from moving from a predetermined position, the sensor chip 4 and the second through-
そして、約100℃にて付着した水を乾燥させた後、ガラスが溶着する所定の温度まで加熱をしてセンサチップ4と保持プレート2をガラス溶着によって接合する。これによって、生産性の高い細胞電気生理センサを実現することができる。
And after drying the water adhering at about 100 degreeC, it heats to the predetermined temperature which glass welds, and the sensor chip 4 and the holding |
なお、熱処理炉を用いた例について説明してきたが、ヒータなどによる局部加熱、あるいは近赤外レーザなどによる局部加熱などによってセンサチップ4の近傍のみを加熱することによって溶着することができる。 Although an example using a heat treatment furnace has been described, welding can be performed by heating only the vicinity of the sensor chip 4 by local heating using a heater or the like, or local heating using a near infrared laser or the like.
また、センサチップ4の外壁面と第二の貫通孔6の内壁面との隙間を50μm以下とすることによって確実に溶着接合を行うことができる。50μmを超える隙間を有していると、ガラスによる溶着接合の確実性が低下するという問題があった。
In addition, welding and joining can be reliably performed by setting the gap between the outer wall surface of the sensor chip 4 and the inner wall surface of the second through-
さらにまた、接合性、作業温度および信頼性の観点から、例えば保持プレート2をホウケイ酸ガラス(コーニング;#7052、#7056)、またはホウケイ酸鉛ガラス(#8161)などを用いることが好ましい。
Furthermore, it is preferable to use, for example, borosilicate glass (Corning; # 7052, # 7056) or lead borosilicate glass (# 8161) as the holding
そして、本実施の形態1における第二の貫通孔6の内壁面は親水性を有していることが重要である。
And it is important that the inner wall surface of the 2nd through-
また、センサチップ4と保持プレート2を接合するために都合の良い温度はガラスの軟化点以上とすることが好ましく、500〜900℃の範囲であることがより望ましい。500℃より低いガラスを保持プレート2に用いると強度が不十分であり、900℃を越えると作業性が悪くなるからである。
Moreover, it is preferable that the temperature convenient for joining the sensor chip 4 and the holding
また、親水性を付与するために第二の貫通孔6の内壁面を化学的、あるいは物理的な処理を行って親水性を高めておいても良い。あるいは、さらに親水性を高めるための親水性膜などを形成することによっても、よりその効果を高めることができる。さらに、別の親水性を付与する方法としては、酸素プラズマによる炭素化合物の除去、紫外線照射による有機物の分解除去、あるいは硫酸、過酸化水素などによる湿式処理などによる炭素原子を含む有機物質の分解除去が非常に効果的であり、生産性にも優れている。
In order to impart hydrophilicity, the inner wall surface of the second through-
そして、少なくとも第二の貫通孔6の内壁面の親水性は、接触角表示で10度以下が好ましい。その接触角とは、固体表面の上に純水などの液滴を乗せ,平衡になった状態で、液滴表面と固体表面のなす角度をいう。そして、その測定方法は一般的にθ/2法を用いることができる。その方法は液滴の左右端点と頂点を結ぶ直線の、固体表面に対する角度から接触角を求めることができる。または分度器などを用いて測ることも可能である。
The hydrophilicity of at least the inner wall surface of the second through
また、図1に示すように第一の電極14と第二の電極15を設けているが、これらの電極14,15は細胞の電気生理現象によって発生する電気的指標、例えば電位、電流などを測定するためのものであるが、これらの形状、材質は特に限定するものではない。
In addition, as shown in FIG. 1, a
次に、本発明の細胞電気生理センサを用いて細胞の電気生理活動を測定する方法について簡単に述べる。 Next, a method for measuring cell electrophysiological activity using the cell electrophysiological sensor of the present invention will be briefly described.
まず、ウエル1に細胞外液18を充填し、細胞内液19をウエル1の流入口16から流出口17にかけて吸引することで空洞8に充填する。ここで、細胞外液18とはK+イオンが4mM程度、Na+イオンが145mM程度、Cl-イオンが123mM程度添加された電解液であり、細胞内液19とは、例えば哺乳類筋細胞の場合、代表的にはK+イオンが155mM、Na+イオンが12mM程度、Cl-イオンが4.2mM程度添加された電解液である。この状態で、ウエル1の内部に設置した第一の電極14と空洞8の内部に設置した第二の電極15との間で、100kΩ〜10MΩ程度の導通抵抗値を観測することができる。これは細胞内液19あるいは細胞外液18が浸透し、第一の電極14と第二の電極15の間で電気回路が形成されるからである。
First, the
次にウエル1側から細胞20を投入する。なお、センサチップ4を第二の貫通孔6の内部に設置する方向として、ダイアフラム9が第一の貫通孔5側へ近くなるように配置しても良い。この選択は測定する細胞20の性質によって最適に決定されるべきである。
Next, the
そして最後に、ウエル1の流入口16または流出口17の一方を減圧すると、細胞20は第三の貫通孔7に引き付けられ、細胞20が第三の貫通孔7を塞ぐことによって、ウエル1側と空洞8側の電気抵抗がGΩ以上の十分に高い状態となる(ギガシールと呼ぶ)。このギガシールの状態において、細胞20の電気生理活動によって細胞内外の電位が変化した場合には、わずかな電位差あるいは電流であっても高精度な測定が可能となる。
Finally, when one of the
以上のように構成した細胞電気生理センサについて、以下にその製造方法を説明する。 The manufacturing method of the cell electrophysiological sensor configured as described above will be described below.
まず始めに、図3および図4に示すようにセンサチップ4はフォトリソグラフィー、ドライエッチング等の半導体加工技術を用いて、シリコンウエハなどからダイアフラム9を形成した後、このダイアフラム9に第三の貫通孔7を形成する。そして、個片化することによって一括して多数のセンサチップ4を作製することができる。
First, as shown in FIG. 3 and FIG. 4, the sensor chip 4 forms a
その後、必要に応じて親水性を高めるために、酸素の介在した雰囲気中でのシリコンの熱酸化処理、あるいはCVD、スパッタ法などの薄膜プロセスを用いてシリコン化合物を成膜して親水性を高めることも可能である。その後、このセンサチップ4を純水中に浸漬して保管する。 Thereafter, in order to increase the hydrophilicity as necessary, the silicon compound is formed using a thin film process such as thermal oxidation of silicon in an oxygen-mediated atmosphere or CVD or sputtering to increase the hydrophilicity. It is also possible. Thereafter, the sensor chip 4 is immersed in pure water and stored.
一方、保持プレート2は、厚みが0.75mmのホウケイ酸ガラスを準備し、その後、例えばエッチング加工によって穴開けを行い第二の貫通孔6を形成する。
On the other hand, for the holding
その後、必要に応じて第二の貫通孔6の内壁面の親水性を確認し、保持プレート2を水平に保持した後、前記純水中に保管していたセンサチップ4を取り出し、センサチップ4に純水が付着した状態で、保持プレート2の上面から第二の貫通孔6の入り口へセンサチップ4の一部を挿入する。挿入されたセンサチップ4は純水の表面張力の相互作用によって図3および図4に示すような位置にセルフアライメントによって静置する。
Thereafter, if necessary, the hydrophilicity of the inner wall surface of the second through
なお、センサチップ4を挿入する方向として上下の位置関係を反転させた状態でも同様のようにセルフアライメントすることを確認している。また、セルフアライメントする位置は下から挿入した場合には、図4の保持プレート2の下面側でセルフアライメントすることも確認している。
It has been confirmed that self-alignment is performed in the same manner even when the vertical positional relationship is reversed in the direction in which the sensor chip 4 is inserted. It has also been confirmed that when the self-alignment position is inserted from below, self-alignment is performed on the lower surface side of the holding
その後、保持プレート2を90度回転させて、センサチップ4と第二の貫通孔6が水平方向になるように固定する(第二の貫通孔6の内壁面でセンサチップ4を支えるように配置させる)。このような位置関係とすることによって、純水が無くなることによって水の表面張力が無くなり、センサチップ4が動きやすくなることを防止するためである。
Thereafter, the holding
このような配置をしたまま、熱処理炉へ入れ、加熱する。加熱の方法は適宜最適な条件を設定することができるが、特に乾燥させるための熱処理条件とガラスによって溶着接合するための熱処理条件とが重要である。乾燥させるための熱処理条件としては80〜120℃の範囲が好ましい。そして、前記ホウケイ酸ガラス(コーニング;#7052、#7056)を用いた場合の溶着接合温度としては700〜750℃の条件が好ましい。 With such an arrangement, it is placed in a heat treatment furnace and heated. Optimum conditions can be set as appropriate for the heating method. In particular, heat treatment conditions for drying and heat treatment conditions for welding by glass are important. The heat treatment conditions for drying are preferably in the range of 80 to 120 ° C. And as a welding joining temperature at the time of using the said borosilicate glass (Corning; # 7052, # 7056), the conditions of 700-750 degreeC are preferable.
そして、この乾燥処理と溶着接合処理は一括して行うことが好ましい。一括して行うことによってセンサチップ4の動きを抑制することができる。 And it is preferable to perform this drying process and welding joining process collectively. The movement of the sensor chip 4 can be suppressed by carrying out all at once.
このとき、センサチップ4と第二の貫通孔6の隙間は50μm以下であればガラス溶着による接合が可能であることを確認している。例えば、センサチップ4の外形が700μmとし、第二の貫通孔6の内径を750μmとしてガラス溶着を行った結果、効率良く確実にガラス溶着による接合を行うことができた。そのときの溶着温度は718℃で10秒以下の熱処理条件によって行うことができた。
At this time, if the gap between the sensor chip 4 and the second through-
その後、薄膜技術、めっき技術などによって配線パターンを形成し、さらにAgとAgClを混合した電極をディスペンスまたはスクリーン印刷等の手法により第一の電極14と第二の電極15を形成する。なお、エッチング加工などによる穴開けと、電極形成の工程順序は違っていてもよい。
Thereafter, a wiring pattern is formed by a thin film technique, a plating technique, etc., and further, a
次に、ウエル1と流路プレート3はアクリル樹脂などを用いて射出成型などによって作製し、図1に示したような形状を有する構成とすることができる。 Next, the well 1 and the flow path plate 3 can be manufactured by injection molding using an acrylic resin or the like to have a shape as shown in FIG.
次に、保持プレート2とウエル1の接合を行う。この接合の方法としては紫外線硬化型接着剤による接合が好ましい。
Next, the holding
その後、流路プレート3の接合を行い、図1に示すような細胞電気生理センサを作製することができる。 Thereafter, the flow path plate 3 is joined, and a cell electrophysiological sensor as shown in FIG. 1 can be produced.
なお、保持プレート2と流路プレート3を同時に保持プレート2に一括して接合することも可能であり、いずれかの方法を適宜採用することができる。
Note that the holding
そして、前記接着剤は紫外線硬化型の接着剤を用いることが好ましく、保持プレート2を紫外線光が透過するガラスとすることによって、いずれの方向からでも紫外線を照射し、紫外線硬化型樹脂を用いて接合することが可能となり、紫外線照射時に確実に接着剤を硬化させることができ、確実に保持プレート2と、ウエル1あるいは流路プレート3との接合を行うことによって液漏れの少ない構造を実現することができ、これによって細胞20の測定を確実に行うことができる細胞電気生理センサを実現することができる。
The adhesive is preferably an ultraviolet curable adhesive, and the holding
本発明の細胞電気生理センサおよびその製造法は、複数の細胞を一括して効率よく測定できる細胞の電気生理現象の測定に有用である。 The cell electrophysiological sensor and the method for producing the same of the present invention are useful for measuring the electrophysiological phenomenon of a cell that can efficiently measure a plurality of cells collectively.
1 ウエル
2 保持プレート
3 流路プレート
4 センサチップ
5 第一の貫通孔
6 第二の貫通孔
7 第三の貫通孔
8 空洞
9 ダイアフラム
14 第一の電極
15 第二の電極
16 流入口
17 流出口
18 細胞外液
19 細胞内液
20 細胞
DESCRIPTION OF SYMBOLS 1
Claims (9)
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2006215304A JP4425892B2 (en) | 2006-08-08 | 2006-08-08 | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof |
| US12/301,307 US8445263B2 (en) | 2006-07-06 | 2007-06-27 | Device for cellular electrophysiology sensor, cellular electrophysiology sensor using the device, and method for manufacturing the cellular electrophysiology sensor device |
| PCT/JP2007/062887 WO2008004476A1 (en) | 2006-07-06 | 2007-06-27 | Device for cellular electrophysiology sensor, cellular electrophysiology sensor using the device, and method for manufacturing the cellular electrophysiology sensor device |
| EP07767689.8A EP2037258A4 (en) | 2006-07-06 | 2007-06-27 | DEVICE FOR ELECTROPHYSIOLOGICAL CELLULAR SENSOR, ELECTROPHYSIOLOGICAL CELL SENSOR USING THE DEVICE, AND METHOD FOR MANUFACTURING THE DEVICE FOR ELECTROPHYSIOLOGICAL CELLULAR SENSOR |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2006215304A JP4425892B2 (en) | 2006-08-08 | 2006-08-08 | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2008039625A JP2008039625A (en) | 2008-02-21 |
| JP2008039625A5 JP2008039625A5 (en) | 2009-11-26 |
| JP4425892B2 true JP4425892B2 (en) | 2010-03-03 |
Family
ID=39174799
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2006215304A Expired - Fee Related JP4425892B2 (en) | 2006-07-06 | 2006-08-08 | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4425892B2 (en) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP5777045B2 (en) * | 2008-09-02 | 2015-09-09 | 国立研究開発法人産業技術総合研究所 | Cell detection method and microarray chip used in the method |
| JP2010101819A (en) * | 2008-10-27 | 2010-05-06 | Panasonic Corp | Cell electrophysiological sensor |
-
2006
- 2006-08-08 JP JP2006215304A patent/JP4425892B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2008039625A (en) | 2008-02-21 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US7927474B2 (en) | Cell electrophysiological sensor | |
| US20090281410A1 (en) | Device for cellular electrophysiology sensor, cellular electrophysiology sensor using the device, and method for manufacturing the cellular electrophysiology sensor device | |
| DK2394156T3 (en) | Device and method for electrochemical measurement of biochemical reactions as well as method of preparation for the device. | |
| US9506870B2 (en) | Flow-channel device for detecting light emission | |
| JP5797926B2 (en) | Fluid handling apparatus, manufacturing method thereof, and fluid handling system | |
| JP2013536407A (en) | Chip assembly for use in microfluidic analysis systems | |
| JP5375609B2 (en) | Biosensor | |
| JP4425891B2 (en) | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof | |
| JP4425892B2 (en) | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof | |
| US9234791B2 (en) | Light emission detection device having a flow path formed by a depression of a detection side substrate and method of manufacturing the same | |
| JP2009195107A (en) | Cellular electrophysiological sensor | |
| CN112378972A (en) | Mark-free biosensor with high stability and manufacturing method thereof | |
| JP4868067B2 (en) | Cell electrophysiological sensor chip, cell electrophysiological sensor using the same, and method for manufacturing cell electrophysiological sensor chip | |
| JP4462241B2 (en) | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof | |
| JP5109617B2 (en) | Cell electrophysiology measurement device | |
| JP4821319B2 (en) | Cell electrophysiological sensor array and manufacturing method thereof | |
| JP4973618B2 (en) | Cell electrophysiological sensor manufacturing method and manufacturing apparatus | |
| WO2009081521A1 (en) | Process for producing cell electrophysiological sensor and apparatus for producing the cell electrophysiological sensor | |
| JP2009291135A (en) | Cellular electrophysiological sensor | |
| Ali et al. | Leakage-free nucleic acid biochip featuring bioinert photocurable inhibitor | |
| JP2010008399A (en) | Cell electrophysiologic sensor and its manufacturing method | |
| JP4670713B2 (en) | Cell electrophysiological sensor and cell electrophysiological measurement method using the same | |
| JP5011961B2 (en) | Cell electrophysiological sensor and manufacturing method thereof | |
| WO2020095849A1 (en) | Cell culturing chip and production method therefor | |
| JP4816111B2 (en) | Micropipette and cell measurement system using the same |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20090610 |
|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20090610 |
|
| RD01 | Notification of change of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7421 Effective date: 20090714 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20091008 |
|
| A871 | Explanation of circumstances concerning accelerated examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A871 Effective date: 20091008 |
|
| A975 | Report on accelerated examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971005 Effective date: 20091106 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20091110 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20091209 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121218 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121218 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131218 Year of fee payment: 4 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |