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JP4428620B2 - メタン酸化菌保持担体の製造方法、製造装置並びにメタン発生抑制方法 - Google Patents
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メタン酸化菌保持担体の製造方法、製造装置並びにメタン発生抑制方法 Download PDF

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Description

本発明は、地球温暖化ガスの一つであるメタンを酸化分解する細菌を保持する担体の製造方法、製造装置並びにメタン発生抑制方法に関する。詳細には、メタンを酸化分解する細菌群を多孔質担体に付着・繁殖させることからなるメタン酸化菌保持担体の製造方法、製造装置並びにメタン発生抑制方法に関する。
メタン(CH)は地球温暖化を引き起こす温室効果ガスであるが、大気中に約1.7ppm存在し、その主要な発生源は、自然湿地や海洋の他に、水田などの農地、廃棄物処分場、反芻動物、バイオマス燃焼などであると考えられている。メタンは一分子あたりの温暖化ポテンシャルでは二酸化炭素の約21倍であり、わずかな濃度の上昇が温暖化に大きく作用するといわれている。このため、国連気候変動枠組条約第3回締約国会議(COP3)において採択された京都議定書では、メタンは基準年を1990年として二酸化炭素換算での総排出量を少なくとも5wt%削減することが数値目標として定められ、工業、農林業など主な排出源での対応策が求められている。
メタン発生を抑制する技術は主に水田で検討されており、メタンの原料となる稲藁の施用法、中干しなど水管理などが提案されている。また、メタンを活性炭や木炭などの多孔質剤に吸着させること(特許文献1)、鋼業の産業副産物である転炉スラグや使用済みの使い捨てカイロ等の含鉄資材を水田に施用してメタン放出を抑制することが提案されている(非特許文献1)。しかし、湿地や廃棄物最終処分場などの広大な面積の発生源や高濃度のメタンが発生する堆肥化施設などに適用してメタン発生を抑制するには、中長期的に十分な効果が得られなかったり、残留する含鉄資材の問題があり、実用的な技術はほとんど知られていない。
一方、近年、微生物の分解能を利用した環境修復技術(バイオレメディエーション)が注目されており、石油類や農薬、重金属などの汚染物質で実用化されている。また、トリクロロエチレンやPCBなどの有害な化学物質などに付いても実証研究に対する取り組みがなされており、これら汚染物質の除去に微生物が利用可能であることが報告されている。しかし、従来は単一の細菌を使用することがほとんどであり、さらに土壌などの汚染源に直接、分解微生物を散布することから、環境中に存在する多くの捕食者により捕食され、十分な浄化効果が得られないことが多い。このため、有用な細菌を多孔質材に吸着させて、増殖させること(特許文献2)、さらに農薬などの汚染物質に汚染された土壌から汚染物質を分解しうる微生物を集積し、多孔質材に保持させることが提案されている(特許文献3)。
しかし、これらの微生物を用いる先行技術は液状物質に対するものであり、メタンなどのガス状の汚染物質に適用することができない。また、メタンについては、酸化・分解する微生物の分離・同定する方法が報告されているに過ぎず(非特許文献1)、これらの微生物を用いて自然環境や人工施設からのメタンの発生を抑制することは全く知られていない。
特開2001−17859号公報 特開平8−252086号公報 特開平11−318435号公報 Nutrient Cycling in Agroecosystems, Vol.64, pp.193-201 (2002) Appl. Environ. Microbiol., Vol.65 (11), pp.4887-4897 (1999)
従って、本発明の課題は、メタンの発生源が広範囲であったり、高濃度のメタン発生が起こるなどの、メタンの発生抑制が困難な環境に対しても適用可能であり、メタン発生または放出を抑制しうる資材の製造方法および製造装置並びにメタン発生抑制方法を提供することである。
本発明者等は、上記課題を解決するため鋭意研究を行ったところ、メタンを酸化分解する細菌を多孔質担体に付着・繁殖させて該担体に保持させ得ることを見出し、本発明を完成させた。
従って、本発明は、多孔質担体にメタン酸化能を有する細菌を含有する培養液を混合し、次いでメタンを含有する空気を循環させて前記細菌を多孔質に付着させ、繁殖させることからなるメタン酸化菌を保持する担体の製造方法に関する。なお、多孔質担体にメタン酸化能を有する細菌を含有する培養液を混合する前に、多孔質担体に培養液を吸収させるようにしてもよい。なお、本発明において、メタンの酸化および酸化分解は、いずれもメタンを二酸化炭素と水に分解することを意味する。故に、メタンを酸化分解する細菌、およびメタン酸化菌は同じ細菌群を意味する。
また、本発明は、内側容器と外側容器との2重容器から成り、前記内側容器は導入口と排気口とを備えると共に前記導入口にメタンを含む空気を当該内側容器内に導入し前記排気口から排出させる送風手段を備え、前記外側容器は前記内側容器との間に前記内側容器から排出されたメタンを含む空気を前記導入口へ還流させる流路を形成し、前記内側容器内にメタン酸化菌を含む養液を散布した多孔質担体を収納すると共に、前記内側容器内の前記多孔質担体を通過するメタンを含む空気の循環流を形成することを特徴とするメタン酸化菌保持担体製造装置に関する。
さらに本発明は、上述のメタン酸化菌保持担体の製造方法により得られたメタン酸化菌を保持する担体を、散布または配置させることからなるメタン発生を抑制する方法に関する。
1.メタン酸化菌
メタンを酸化分解する細菌は、メタン酸化菌(Methanotroph)またはメタン資化菌と称される微生物であり、陸域の湖沼や河川、牧草地、広葉樹の森林の土壌や水中に広く生息していることが知られている。本発明においてはメタンを炭素源として用いることができ、メタンを最終的に二酸化炭素と水に分解しうる細菌であれば特に限定されない。そのような微生物は、非特許文献2に記載されており、例えばMethylococcus属、Methylopsphaera属、Methylomonas属、Methylomicrobium属、Methylobacter属、Methylosinus属、Methylocystis属およびMethanotrophic属の細菌が挙げられ、好ましくはHyphomicrobium methylovorum、Hyphomicrobium facilis、これらと同じクラスターに属するHyphomicrobium sp.S4として単離された菌株、タイプII メタン酸化細菌と分類されるT2-06株、T2-07株、T2-17株およびこれらと系統的に近縁であり、且つメタン酸化能を有する細菌などである。
2.メタン酸化菌の取得
これらのメタン酸化菌は、湿地、湖沼や河川、水田、畑地、牧草地、広葉樹の森林の土壌や水中に広く生息しており、陸域に比べて種類は少ないものの海水や海底の泥土中でも生息が確認されている。メタン酸化菌は、メタン発生量の多い水田、湖沼の湿地、農業用水路の河岸湿地などから土壌を採取し、メタンを唯一の炭素源として培養することにより得ることができるが、本発明の目的のためにはよりメタン酸化分解能の高いメタン酸化菌または適用する場所の土壌から得られたメタン酸化菌を選択することが好ましい。
メタン酸化菌の選択は、メタン酸化菌がメタンを二酸化炭素と水に分解することから、メタンの消費と二酸化炭素の発生を指標として行うことができる。また、メタン酸化菌の培養は、八木ら(国立環境研究所特別研究報告SR−31−2000、2000年)によるクロロエチレンおよびクロロエタン分解菌の分離方法に準じて行うことができる。具体的には、次のように実施することができる。ガスバイアルビンにメタン酸化菌の培養に適する無機塩液体培地を入れ、さらに土壌を添加し、バイアルビンをで密閉する。次いで、ガスバイアルビンのヘッドスペースの空気を一部引き抜いた後、炭素源としてメタンを添加する。これを30℃の定温恒温器内で振とう培養する。一定期間培養した後、ヘッドスペースから空気を採取し、メタン濃度をガスクロマトグラフで測定する。メタン濃度の減少が認められたものについて、その液体培地を液体培地を含むガスバイアルビンに添加して、2回目の振とう培養を行う。この培養において、メタン濃度の減少が大きいメタン酸化菌を選び、さらに新しい液体培地に植え継いで3回目の集積培養を行い、メタン濃度の減少が大きいメタン酸化菌を選ぶ。
3.多孔質担体
本発明において、多孔質担体は、前述のメタン酸化菌を保持しうる、すなわちメタン酸化菌を吸着させ、増殖させうるものであれば特に限定されないが、例えば木炭、活性炭などの他に、パーライト、軽石材、ゼオライトなどの多孔質鉱石が挙げられるが、木炭、活性炭が好ましい。本発明の多孔質担体を環境に適用する場合、循環型社会構築の一環として、ダム流木や建築廃材などの木質廃棄物、間伐材などを有効利用することが求められているため、本発明ではこれら木質廃棄物や間伐材を原料とした木炭を用いてもよい。この場合、例えばこれらの木質を粒経1〜100mm、好ましくは粒径5〜10mm程度にチップ化し、通常300〜1000℃、好ましくは400℃以上で炭化することにより多孔質資材を得ることができる。また、本発明の多孔質担体をウシなどの反芻動物に適用する場合、生体に影響を与えないもの、例えば木炭やゼオライトなどの多孔質担体を用いることが好ましい。
4.メタン酸化菌を保持する多孔質担体
メタン酸化菌が繁殖する多孔質担体を製造する際には、コストなどの実用化の観点から、できるだけ少量のメタン酸化菌を効率的に多孔質全体に付着させ、繁殖させることが好ましい。そこで、多孔質担体チップ状とし、その上部にメタン酸化菌を含む養液を加え、メタンを含む空気を循環することで、木炭への付着と繁殖を促進させる。多孔質担体として木炭を例にしてその方法を説明する。
(1)木炭に無機塩類培地を噴霧し、含水率80%程度まで十分に湿らせる。
(2)密閉可能な容器に(1)の木炭を入れ、上部からメタン酸化菌を含む培養液を添加する。
(3)真空ポンプで内部の空気を抜き、メタンと空気の割合が1:9の混合ガスを注入する。
(4)ファン等を稼動させ、メタンを含む空気を循環させる。
(5)容器内の温度を30℃程度に維持して静置する。
尚、メタン酸化菌の繁殖においては、初期メタン濃度が5〜45vol%、雰囲気温度が20〜40℃の範囲、酸素濃度が少なくとも5vol%望ましくは8vol%以上に維持される環境が適しており、上述の条件に限られるものではない。
以上の操作終了後、内部のメタン濃度と二酸化炭素を経時的に測定し、メタン濃度が検出限界以下まで低下した時点で空気の循環を停止する。ここで、容器から取り出した木炭を用いて、以下の方法でメタン酸化菌の付着と繁殖の状態、メタン除去能力を確認することができる。
まず、容器から取り出した木炭を十分に混合し、一定量を無作為にピックアップしてガスバイアルビンに入れて密閉する。次に空気を一部引き抜いた後、その代わりにメタンを注入し、ガスバイアルビンは30℃の恒温器内に静置する。24時間問隔でサンプリングし、ガスクロマトグラフでメタンと二酸化炭素の濃度を測定することにより確認することができる。例えば、所望されるメタン除去能が得られない場合、用いたメタン酸化菌のメタン分解能はその分離の際に確認されているため、メタン酸化菌の付着と繁殖の状態が不十分であることが考えられる。
5.メタン発生の抑制
本発明のメタン酸化能を有する細菌を保持多孔質担体を水田、湿地、廃棄物処分場または堆肥化施設に配置、散布あるいは埋設する。埋設する場合、メタン酸化菌は好気性細菌であるため、該担体中が好気的条件になるようにする必要がある。配置、散布または埋設する量は、メタンの発生を抑制すべき条件、該細菌のメタン酸化・分解能によって異なるが、例えば1mあたり、100g〜50kg、好ましくは2kg〜25kg程度である。例えば水田や湿地の場合、100g/m程度でも十分なメタン抑制効果を得られるが、廃棄物処分場などでは約1〜20cm、好ましくは約5〜10cmの層を形成させるため、層の厚さに応じて必要量は多くなる。
本発明のメタン酸化菌保持担体の製造方法並びに装置によれば、少量のメタン酸化菌を効率的に木炭あるいはその他の多孔質担体の全体に付着・繁殖させることができ、低コストでメタン酸化菌保持担体を大量生産可能となる。そして、このメタン酸化菌保持担体により、メタン発生源が広範囲にわたる廃棄物最終処分場や湿地、水田などからのメタン発生を効率よく、低コストで抑制することができる。さらに、多孔質材として木炭という自然素材、特にダム流木や建築廃材などの木質廃棄物、間伐材を原料とした木炭が利用できることから環境への負荷が小さい。
下記の実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例のみに限定されるものではない。
1.メタン酸化菌の採取および培養
本実施例におけるメタン酸化菌群は、水田、手賀沼湿地、農業用水路の河岸湿地の土壌(黒色の表層から約5cmの深さまで10cm×10cm程度)から以下の方法で採取・集積培養し、メタン分解能力の高いものを選択した。
30mLのガスバイアルビンに表1に示すメタン酸化菌用無機塩液体培地を入れ、さらに土壌を0.1g添加し、ブチルゴム栓をアルミシールで密閉し、炭素源としてメタンを10mL添加した。それぞれのガスバイアルビンは、30℃の定温恒温器内で振とう培養(回転数:120rpm)した。1週間後に、その液体培地を1mL採取し、新しい液体培地10mLを入れたガスバイアルビンに添加して、再度メタンを添加して振とう培養を行った。この操作を繰り返して、4回目の集積培養を行った。集積したメタン酸化細菌群のメタン分解能力を図1に示す。これらのメタン酸化菌のメタン除去能力では、手賀沼湿地A区で実験開始から3日目に検出限界以下までメタン濃度が低下し、水田区と用水湿地A、B区、手賀沼湿地B区のメタン濃度が約50%しか低下していないのに比べ、高い除去効果を示した。同様に、二酸化炭素濃度でも、手賀沼湿地A区は他の区に比べ高い濃度を示した。
2.木炭を用いたメタン酸化細菌群の付着・繁殖
実施例1で得られた5種類のメタン酸化菌の中で除去能力の高かった手賀沼湿地A区のメタン酸化菌群を用いて、木炭への付着・繁殖を試みた。木炭はダム流木(広葉樹と針葉樹の割合が7:3)のチップを原料とした木炭を用いた。木炭の比表面積を表2に示す。実験に使用した木炭は、篩で粒径5mm〜10mmに選別し、蒸留水で十分に洗浄した後、100℃で24時間乾燥した。木炭への付着・繁殖実験の接種源として、メタン酸化菌が集積した液体培地1mLを新しい液体培地10mLに入れ、3mLのメタンを加えて1週間増殖させた養液を作成した。作成した養液中の生菌数(cfuで表す)は、0.14×1010cfu MPN/mLと推定された。
メタン酸化菌が繁殖する木炭を作成する場合、実用化の観点から、できるだけ少量のメタン酸化菌を効率的に木炭全体に付着・繁殖させることが望ましい。そこで、木炭はチップ状とし、その上部にメタン酸化菌を含む養液を加え、メタンを含む空気を循環することで、木炭への付着と繁殖を促進できると考え、実験的規模のメタン酸化菌保持担体製造装置(図2)を試作した。
このメタン酸化菌保持担体製造装置は、内側容器1と外側容器2との2重容器から成り、内側容器1は導入口3と排気口4とを備えると共に導入口3にメタンを含む空気5を当該内側容器1内に導入し排気口4から排出させる送風手段6を備え、外側容器2は内側容器1との間に内側容器1から排出されたメタンを含む空気5を導入口3へ還流させる流路7を形成し、内側容器1内にメタン酸化菌を含む養液8を散布した多孔質担体9を収納すると共に、内側容器1内の多孔質担体9を通過するメタンを含む空気5の循環流を形成するようにしている。ここで、内側容器1の大きさは、100mm(W)×100mm(D)×200mm(H)で、導入口3を塞ぐ蓋部分に送風手段6としての12Vのシロッコファンを取り付けてあり、容器1の下部に5mmの穴からなる排気口4を4個設けた構造とした。この内側容器1を外側容器2としての真空ポリカーボネイトデシケータ(容量2.4L)に収めて二重容器とし、デシケータ2と内側容器1との間にメタンを含む空気の循環流を形成可能とする流路・スペースを形成する。このメタン酸化菌保持担体製造装置を用いて、以下の手順で実験を実施した。
(1)木炭に無機塩類培地を噴霧し、含水率80%程度まで十分に湿らせる。
(2)内側容器1に多孔質担体9としての木炭チップを20g入れ、上部からメタン酸化菌を含む養液8を1mLを滴下させて加える。
(3)内側容器1をデシケータ2内に静置する。
(4)図示していない真空ポンプでデシケータ2内の空気を抜き、メタンと空気の割合が1:9の混合ガスを注入する。
(5)シロッコファン6を稼動させ、メタンを含む空気5を内側容器1内に送り込む。
(6)デシケータ2を30℃の恒温器(図示省略)内に静置する。
以上の操作終了後、デシケータ2内のガスを採取口10から抽出して、メタン濃度と二酸化炭素濃度を経時的に測定し、メタン濃度が検出限界以下まで低下した時点でシロッコファン6を止めて空気5の循環を停止し、内側容器1をデシケータ2から取り出した。内側容器1から取り出した木炭9を用いて、メタン除去能力を調べた結果を図3に示す。容器1から木炭(多孔質担体)9をランダムに1gずつ採取し5サンプルを作成した。そして、3mLのメタンを含む空気と木炭を30mLのガスバイアルビンに入れ、密閉後30℃の恒温器内に静置した。メタンと二酸化炭素濃度をガスクロマトグラフで経時的に測定した。その結果、いずれの木炭においても、実験開始からメタン濃度は急速に低下し、2日目には1%以下、7日目には検出限界以下になることが判明した。また、二酸化炭素濃度もメタン濃度の低下に伴って、2日目には約4%、7日目には5%に達した。このことから、ガスバイアルビンに注入したメタンは、木炭に付着・繁殖したメタン酸化菌によって除去されたことが確認された。さらに、SEM電子顕微鏡による分解木炭の写真撮影にいより、木炭の孔隙内にメタン酸化菌が繁殖しているのが確認された(図4)。また、木炭の含水率は、実験開始時には約80%であったが、終了時には40%に低下し、空気の循環により乾燥したことで取り扱いが容易になった。
3.メタン酸化・分解能の評価
実施例2で得られた木炭の重量を変えて、メタンの除去効果を調べた結果を図5に示す。3mLのメタンを含む空気と重量を変えた木炭を30mLのガスバイアルビンに入れ、密閉した後30℃の恒温器内に静置した。メタン濃度をガスクロマトグラフで測定し、検出されなくなった場合は再びメタンを含む空気を入れる操作を濃度の減少が認められなくなるまで継続した。その結果、木炭によって除去されたメタン量は、木炭の重量に比例して増加することが判明した。すなわち、分解木炭は、1gあたり約6.1mgのメタン除去能力を有することが示された。木炭のみによる重量1gあたりのメタン除去量は約4.7×10-4mg/gであったことから、メタン酸化菌の繁殖により木炭の除去能力が約13,000倍に高まった。
メタン酸化菌を保持する木炭によるメタン除去速度を調べた結果を図6に示す。2mLのメタンを含む空気と木炭1gを20mLの試験管に入れ、密閉した後30℃の恒温器内に静置した。メタン濃度をガスクロマトグラフで経時的に測定した。この結果、実験開始時のメタン濃度は約2.5mg CH(容量比:15%)であったが、6時間後には初期濃度の75%、15時間後には約40%、26時間後にはほぼ検出限界以下に低下したことが判明した。メタン濃度は、時間に反比例して減少することから、メタン酸化菌を保持する木炭によるメタンの除去速度は、0.091mgCH/hr/gと算出された。また、メタン酸化菌を保持する木炭の異なる温度条件におけるメタン除去率を図7に示す。実験開始から7日目のメタン除去率は、温度が5℃では約5%で、温度が高くなると除去率も増加し、10℃で約30%、15℃で約50%であった。実験開始5日目に比べて、7日目のメタン除去率が増加したことから、メタン酸化菌は活動していると考えられる。一方、温度が20℃から40℃では、メタン除去率は5日目で100%に達し、注入したメタンはすべて除去された。しかし、温度を50℃に設定するとメタンの除去率は小さく、ほとんど除去されなかった。以上のことから、木炭で繁殖したメタン酸化菌は20〜40℃が生育適温と考えられ、15℃以下ではメタン除去能力が低下し、50℃以上では分解能力を失うと推測された。尚、異なる温度条件におけるメタン酸化菌繁殖木炭のメタン除去に関する実験は、3mLのメタンを含む空気と木炭1gを20mLの試験管に入れ、密閉した後、5,10,15,20,30,40,50℃の恒温器内に静置した。メタン濃度を5日目と7日目にガスクロマトグラフで測定し、初期濃度に対する減少した割合を除去率とした。
4.メタン酸化細菌群の同定
木炭に付着・繁殖したメタン酸化菌群の菌種を同定するために、この木炭をすりつぶし、表1の液体培地で培養したものからゲノムDNAを抽出し、これを鋳型としてPCRを行い、16S rRNA遺伝子領域を増幅した。プライマーには、細菌全般に保存性の高い27F(5’-GAGTTTGATCMTGGCTCA-3’;配列番号1)と1544R(5’-AGAAAGGAGGTGATCCAGCC-3’;配列番号2)というプライマーを用いた。アガロースゲル電気泳動にて、目的領域の増幅を確認後、このPCR産物のクローニングを行った。ベクターには、pGEMT-easy(プロメガ)を用い、常法にて、TAクローニングを行い、大腸菌にエレクトロポレーションによって、導入した。
出現したコロニーは、ベクターに存在するM13のプライマーセット
M13前方プライマー:5’-GTTTTCCCAGTCACGACGTT-3’(配列番号3)
M13後方プライマー:5’-GGAAACAGCTATGACCATGA-3’;(配列番号4)
で直接増幅し、インサートの確認を行った。目的産物の増幅が確認できたものについて、M13前方プライマーを用いて、シーケンスを行い、メタン酸化菌と考えられるMet16、21、31という3検体を選択し、全長をカバーするようなシークエンスを行った。得られた配列データを元にアッセンブルを行い、全長の配列を決定し、16S rRNA遺伝子の塩基配列を用いて、相同性検索、系統樹の作製を行い、非特許文献2の方法に準じて菌種の推定を行った。相同性検索は、GenBankのデータベースに対するBLAST検索を用た。マルチプルアライメントおよび系統樹の作製には、ClustalXとTreeviewを用いた。
以上の結果、Met16は、Hyphomicrobium methylovorum、Hyphomicrobium facilisと同じクラスターに属する菌株で、Hyphomicrobium sp.S4として単離された株と系統的に非常に近い株と同定された。さらに、Met21株とMet31株は、タイプII メタン酸化細菌[Methanotroph]と分類された配列データが高い相同性を持っており、Met21株は、T2−06株と近縁、Met31株は、T2−07株やT2−17株と近縁であると判断された。
尚、上述の実施形態は本発明の好適な実施の一例ではあるがこれに限定されるものではなく本発明の要旨を逸脱しない範囲において種々変形実施可能である。例えば、図2に例示するメタン酸化菌保持担体製造装置は、便宜上実験に適した構造を採っているが、工業的実施に際してはこれに限られない。即ち、外側容器2は実験上メタン濃度を正確に測定する必要があるのでデシケータを利用しているが、必ずしもデシケータでなくとも良く、単にメタンを含む空気が漏洩しない程度の密封容器であれば足りるし、繁殖のための温度も恒温器などを使って30℃一定に保温する必要はなく、20℃〜40℃の範囲であればその間で変動しても、あるいは任意の温度で一定温度に管理されていても効率的に繁殖させ得る。また、メタンを含む空気の酸素濃度も、少なくとも5vol%程度あれば繁殖可能であり、望ましくは8vol%以上に維持することであるが、空気には通常24vol%の酸素が含まれているので5〜45vol%の範囲でメタンを含めての密閉状態下での循環使用に際しても酸素濃度は8vol%以上に維持することが可能である。さらに、内側容器1の大きさや導入口3および排気口4の位置や大きさ、数などは図示の実施例のものに限られず、メタン酸化菌保持担体の製造規模に応じて適宜選定される。また、送風手段6として、本実施例ではシロッコファンを用いているがこれに限られずメタン酸化菌の繁殖に適した送風量を確保できる手段であればどのようなものでも実施可能である。
水田、手賀沼湿地、農業用水路の河岸湿地から採取した土壌から得られたメタン酸化菌群のメタン分解能力を示すグラフであり、(A)はメタン濃度の変化を、(B)は二酸化炭素濃度の変化をそれぞれ示す。 メタン酸化菌群を木炭に付着・繁殖させるための装置の概略図である。 メタン酸化菌群を付着・繁殖させた木炭のメタン分解能力を示すグラフであり、(A)はメタン濃度の変化を、(B)は二酸化炭素濃度の変化をそれぞれ示す。 メタン酸化菌が木炭の孔隙で繁殖しているSEM写真である。 分解木炭の重量とメタン分解量との関係を示すグラフである。 分解木炭によるメタンの分解速度を表すグラフである。 異なる温度条件下での分解木炭のメタン分解能力を示すグラフである。
符号の説明
1 内側容器
2 外側容器
3 導入口
4 排気口
5 メタンを含む空気
6 送風手段
7 還流路
8 メタン酸化菌を含む養液
9 多孔質担体

Claims (6)

  1. 多孔質担体にメタン酸化能を有する細菌を含有する培養液を散布あるいは添加して混合し、次いでメタンを含有する空気を前記多孔質担体を通過させるように循環させて前記細菌を多孔質に付着させ、繁殖させることからなるメタン酸化菌保持担体の製造方法。
  2. 前記多孔質担体に前記メタン酸化能を有する細菌を含有する培養液を散布あるいは添加して混合する前に、前記多孔質担体に培養液を吸収させる請求項1記載の方法。
  3. 前記多孔質担体が、木炭、活性炭、パーライト、軽石材またはゼオライトから選択される請求項1記載の方法
  4. 前記多孔質担体は、木質材料を粒径1〜100mm程度にチップ化し、300℃〜1000℃で炭化して得られる木炭である請求項3記載の方法
  5. 内側容器と外側容器との2重容器から成り、前記内側容器は導入口と排気口とを備えると共に前記導入口にメタンを含む空気を当該内側容器内に導入し前記排気口から排出させる送風手段を備え、前記外側容器は前記内側容器との間に前記内側容器から排出されたメタンを含む空気を前記導入口へ還流させる流路を形成し、前記内側容器内にメタン酸化菌を含む養液を散布した多孔質担体を収納すると共に、前記内側容器内の前記多孔質担体を通過するメタンを含む空気の循環流を形成することを特徴とするメタン酸化菌保持担体製造装置
  6. 請求項1〜4のいずれか1つに記載のメタン酸化菌保持担体の製造方法により製造されたメタン酸化菌保持担体を、メタン発生源に散布または配置させることからなるメタン発生抑制方法
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