JP4477285B2 - Anti-inflammatory agent, PGE2 production inhibitor, IL-1α production inhibitor and IL-6 production inhibitor - Google Patents
Anti-inflammatory agent, PGE2 production inhibitor, IL-1α production inhibitor and IL-6 production inhibitor Download PDFInfo
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Description
【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、抗炎症剤、PGE2産生抑制剤、IL−1α産生抑制剤及びIL−6産生抑制剤に関する。
【0002】
【従来の技術】
一般に炎症は生体に何らかの害をもたらす侵襲が加わったり、損傷が生じた際に、その損傷部位を修復、再生しようとする生体の防御反応である。生体はこの防御反応によって、組織や細胞の損傷の広がりを抑え、損傷の原因を排除し、組織を修復しようとするが、一方で、過度の痛み、腫れ、かゆみ及び発熱等が起こり、組織の損傷が逆に増幅されることがある等、かえって生体にとって好ましくない症状が発生することもある。
故に、過度の炎症を抑制することは患者の苦痛を軽減し、損傷の治療を早めるために必要であり、その炎症抑制手段として、抗炎症効果のある抗炎症剤の投与が行われている。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】
ところが、これまで開発されてきた抗炎症剤は優れた効果を有するが、その大部分が目的とする抗炎症作用以外に強い生理作用を併有することが知られている。
【0004】
そこで本発明は、抗炎症作用をもつと同時に安全性の高い抗炎症剤を提供することを課題とする。
【0005】
【課題を解決するための手段】
本発明者らによって初めて、カルノシン酸、カルノソール、及びノバラ抽出物が優れた抗炎症作用を有し、特に炎症反応のケミカルメディエーターであるPGE2(プロスタグロンジンE2)及び炎症性サイトカインであるIL−1α(インターロイキン−1α)及びIL−6(インターロイキン−6)の産生を有効に抑制すると同時に生体に対しては安全であることが見出され、本発明が完成された。
【0006】
即ち本発明の抗炎症剤は、カルノシン酸、カルノソール、及びノバラ抽出物から選ばれる少なくとも1種を含有することを特徴とする。又、本発明によれば、カルノシン酸、カルノソール、及びノバラ抽出物から選ばれる少なくとも1種を含有するPGE2産生抑制剤、IL−1α産生抑制剤及びIL−6産生抑制剤が提供される。
【0007】
本発明の抗炎症剤に使用されるサクラダソウは、キキョウ科Pratia属(銅錘玉帯草属)に属し、匍匐性の多年草の植物である。
サクラダソウ抽出物は、サクラダソウを乾燥し、細切し、水、エタノール等の親水性有機溶剤、又はこれらの混合物に浸漬し、得られた液をろ過して得られる。該抽出物は、茎葉部、果実部、毛状根部等に分けることができ、茎葉部及び果実部が特に好ましく用いられる。
ローズマリー抽出物、サクラ抽出物、ソテツ抽出物、ノバラ抽出物、イチゴ抽出物、ユキノシタ抽出物、クズ抽出物、レモングラス抽出物及びユキヤナギ抽出物も、サクラダソウ抽出物と同様にして得ることができる。また、カルノシン酸及びカルノソールはローズマリーから単離される。
【0008】
抗炎症剤中のサクラダソウ抽出物、ローズマリー抽出物、カルノシン酸、サクラ抽出物、ソテツ抽出物、カルノソール、ノバラ抽出物、イチゴ抽出物、ユキノシタ抽出物、クズ抽出物、レモングラス抽出物及びユキヤナギ抽出物から選ばれる少なくとも1種の配合量は、特に限定されるものではないが、乾燥固形物重量で、総量を基準として0.0001〜20.0重量%が好ましく、更に好ましくは0.0005〜5.0重量%である。
該配合量が0.0001重量%未満であると、本発明の効果が充分に得られず、一方20.0重量%を超えても、その増量に見合った効果の向上は認められない。
【0009】
本発明の抗炎症剤は、皮膚外用剤として、例えば、ローション類、乳液類、クリーム類、軟膏類、パック類等の剤型とすることができる。
【0010】
本発明の抗炎症剤には、色素、防腐剤、界面活性剤、香料、顔料等を適宜配合することができる。
【0011】
【実施例】
以下、本発明を実施例に基づいてさらに詳しく説明する。ただし本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。なお、以下の調製例及び実施例中%とあるのは、特にことわらない限り重量%を示す。
【0012】
調製例1
〔サクラダソウ抽出物の調製〕
サクラダソウは、茎葉培養系により大量増殖させて得た。得られたサクラダソウを自然乾燥し、茎葉部、果実部及び毛状根部に分け、それぞれ細切し、50%エタノール水溶液あるいは水に一晩浸漬し、ろ紙でろ過して、抽出物として得た。
【0013】
〔サクラダソウ抽出物の分画〕
得られた茎葉部の50%エタノール抽出物を、エバポレーターにより糊状になるまで濃縮した。この濃縮エキスに水及びヘキサンを同量ずつ加え、分液ロートで分配した。
水層は遠心分離により沈殿と上清とに分け、沈殿物は濃縮乾固後50%エタノールに溶解又は分散させ、50%エタノールを溜去後、凍結乾燥した。ヘキサン層はヘキサンを溜去後、50%エタノールに溶解、エタノール溜去後、凍結乾燥した。
【0014】
実施例1
(サクラダソウ抽出物のPGE2産生抑制効果)
〔重層表皮細胞の作成(液層培養法)〕
HuMedia−KG2(Kurabo)を用いてセミコンフルエントに増殖させた凍結正常ヒト表皮細胞(初代、新生児包皮由来:NHEK(F)CASCADE、3次培養)を96ウェル培養プレート(IWAKI)に60,000cells/well)ずつ播種した。24時間培養し、細胞が接着していることを確認した後、表皮細胞の分化を促すために1.2mMCa2+を含むK110typeII添加剤+(K110II(+)、Kyokuto)に培地交換した。1.2mMCa2+/K110II(+)で7日間培養し、重層表皮細胞とした。途中2日毎に培地交換した。
【0015】
サクラダソウ抽出物のPGE2産生抑制効果については、以下の実験によって確認した。
得られた重層表皮細胞の培地を吸引除去して、1.2mMCa2+/K110II(−)200μlで細胞を洗浄し、同培地200μlで2時間プレインキュベートした。その後、培地を吸引除去し、UVB(紫外線B領域)を照射した。UVBランプはTOSHIBA FL20SE、照射装置はデルマレイ照射装置(エーザイ)を使用し、ランプ点灯約1時間後より照射を開始した。照射強度は0.5mW/cm2になるよう高さを調整し、50mJ/cm2のUVBを照射した。なお、照射中、マイクロプレートのフタははずした。
UVB照射後、茎葉部及び果実部から採取したサクラダソウ抽出物(水抽出物及び50%エタノール抽出物)をそれぞれ含む1.2mMCa2+/K110II(−)200μl(サクラダソウ濃度:1μg/ml、10μg/ml、100μg/ml)を加え、培養した。24時間培養後、上清を回収し、該上清中のPGE2をPGE2 EIA system(BIOTRAK)を用いて定量した。吸光度測定にはマイクロプリートリーダEL312e(BIO−TEK INSTRUMENTS INC)を用いた。
結果を図1に示す。
なお、図1中、Aは茎葉部の50%エタノール抽出物、Bは茎葉部の水抽出物、Cは果実部の50%エタノール抽出物及びDは果実部の水抽出物に関する結果を示す。
【0016】
図1のA及びBから明らかなように、サクラダソウ茎葉部の50%エタノール抽出物は、該サクラダソウ抽出物を加えない場合はPEG2の産生量が約20ng/ml mediumであったのが、サクラダソウ抽出物濃度が10μg/mlで約17ng/ml mediumに、100μg/ml濃度で約10ng/ml mediumに減少した。サクラダソウ茎葉部の水抽出物は、該サクラダソウ抽出物を加えない場合はPEG2の産生量が約20ng/ml mediumであったのが、サクラダソウ抽出物濃度が10μg/ml濃度で約15ng/ml mediumに、100μg/ml濃度で約10ng/ml mediumに減少した。即ちサクラダソウ茎葉部は、50%エタノール抽出物及び水抽出物どちらもPGE2産生抑制効果を有していた。
又同様に、C及びDから明らかなように、果実部の50%エタノール抽出物は、該サクラダソウ抽出物を加えない場合はPEG2の産生量が約21ng/mlmediumであったのが、100μg/ml濃度で約16ng/ml mediumに減少し、水抽出物は、該サクラダソウ抽出物を加えない場合、PEG2の産生量が約21ng/ml mediumであったのが、100μg/ml濃度で約18ng/ml mediumに減少し、これもPGE2産生抑制効果を有していた。
特に茎葉部の抽出物の活性は、100μg/ml濃度で約50%の抑制率が得られ、サクラダソウ抽出物を含有しない場合に比べてPGE2産生抑制効果が非常に優れていた。
尚、「ng/ml medium」とは、培地1ml中に産生されるPGE2の産生量である。
【0017】
実施例2
(サクラダソウ茎葉部の50%エタノール抽出物の水画分及びヘキサン画分のPGE2産生抑制効果)
サクラダソウの茎葉部の50%エタノール抽出物(SAL700)、サクラダソウの茎葉部の50%エタノール抽出物−水層画分(SAL701)、サクラダソウの茎葉部の50%エタノール抽出物−水層沈殿(SAL702)及びサクラダソウの茎葉部の50%エタノール抽出物−ヘキサン層画分(SAL703)について、サクラダソウ濃度25μg/ml、50μg/ml、100μg/ml、200μg/mlで、実施例1と同様にしてPGE2産生抑制効果の試験を行った。
結果を図2に示す。
なお、図2中、AはSAL700、BはSAL701、CはSAL702及びDはSAL703に関する結果を示す。
【0018】
図2から明らかなように、サクラダソウ茎葉部の50%エタノール抽出物は、水層画分で、該サクラダソウ抽出物を含まない場合はPEG2の産生量が約6μg/mlであったのが、サクラダソウ濃度が100μg/mlで約3.5μg/mlに、200μg/mlで約2μg/mlに減少した。又、水層沈殿では、該サクラダソウ抽出物を含まない場合、PEG2の産生量が約5μg/mlであったのが、サクラダソウ濃度が200μg/mlで約3μg/mlに減少した。又、ヘキサン画分では、サクラダソウ抽出物を含まない場合、PEG2の産生量が約7.5μg/mlであったのが、サクラダソウ濃度が200μg/mlで約4μg/mlに減少した。即ち水画分であってもヘキサン画分であってもPGE2産生抑制効果を有していた。特に水画分は高い効果を示した。
【0019】
実施例3
(サクラダソウ抽出物中の3種類のフラボノイドのPGE2産生抑制効果)
サクラダソウ抽出物から単離された3種類のフラボノイド〔リナリン(linarin)、ジオスミン(diosmin)及びルテオリン 7−O−グルコシド(luteolin 7−O−glucoside)〕について、実施例1と同様にして、フラボノイド濃度0.1μg/ml、1μg/ml、10μg/ml、100μg/mlで、PGE2産生抑制効果の試験を行った。
結果を図3に示す。
なお、図3中、Aはリナリン、Bはジオスミン、Cはルテオリン 7−O−グルコシドに関する結果を示す。
【0020】
図3から明らかなように、リナリンについては、無添加の場合、PEG2の産生量が約6μg/mlであったのが、リナリン濃度が0.1μg/mlで約5μg/mlに、1μg/mlで約4μg/mlに、10μg/mlで約3μg/mlに、100μg/mlで約1.5μg/mlに減少し、ジオスミンについては、無添加の場合、PEG2の産生量が約4μg/mlであったのが、ジオスミン濃度が10μg/mlで約2μg/mlに、100μg/mlで約1μg/mlに減少し、ルテオリン 7−O−グルコシドについては、無添加の場合、PEG2の産生量が約7μg/mlであったのが、ルテオリン 7−O−グルコシド濃度が1μg/mlで約5μg/mlに、10μg/mlで約3μg/mlに、100μg/mlで約0.5μg/mlに減少した。即ち、試験に使用した3種のフラボノイドはどれも、茎葉部50%エタノール抽出物のSAL701に比べて、1/10から1/20の低い濃度でも、PGE2産生抑制効果を示すことが確かめられた。
【0021】
実施例4
(サクラダソウ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
HuMedia−KG2(Kurabo)を用いてセミコンフルエントに増殖させた凍結正常ヒト表皮細胞(NHEK(F)CASCADE、3次培養)を96ウェル培養プレート(IWAKI)に60,000cells/well)ずつ播種した。24時間培養し、細胞が接着していることを確認した後、サクラダソウ抽出物を含む0.6mMCa2+/K110II(+)で培地交換を行い72時間培養した。途中48時間で同培地で培地交換を行った。72時間培養後、サクラダソウ抽出物及び50μg/mlLPSを含む同培地にて培地交換し、そのまま1時間培養することにより、表皮細胞をLPS刺激した。刺激後の培養上清を回収し、該上清中のIL−1α量を(h)IL−1α ELISA system(BIOTRAK)を用いて定量した。
結果を図4に示す。
なお図4中、Aは茎葉部の50%エタノール抽出物、Bは果実部の50%エタノール抽出物及びCは毛状根部のエタノール抽出物に関する結果を示す。
【0022】
図4から明らかなように、茎葉部50%エタノール抽出物を使用する場合、0.5μg/ml濃度で約25pg/mlと50%の抑制率、5μg/ml濃度で約20pg/mlと60%の抑制率であった。又果実部50%エタノール抽出物は0.5μg/ml濃度及び5μg/ml濃度で約30pg/mlと50%の抑制率であった。毛状根部エタノール抽出物は、0.5μg/ml濃度及び5μg/ml濃度で約25pg/mlと60%の抑制率であった。
【0023】
実施例5
(サクラダソウ抽出物のIL−6産生抑制効果)
マウスマクロファージRAW264.7を24ウェル培養プレート(IWAKI)に1.0×105cells/wellずつ播種した。培地には10容量%FBSを含むDMEM(10容量%FBS/DMEM)を使用し、24時間培養した。細胞の状態を確認した後、培地を吸引除去し、サクラダソウ抽出物を含む10容量%FBS/DMEM450μlを加え、続いてLPS(リポサッカライド、シグマ社製)50μlで刺激した。細胞刺激24時間後、培養上清を回収し、該上清中のIL−6量を(m)IL−6 ELISA system(BIOTRAK)を用いて測定した。
結果を図5に示す。
なお図5中、Aは茎葉部の50%エタノール抽出物、Bは果実部の50%エタノール抽出物、Cは果実部の水抽出物、Dは毛状根部のエタノール抽出物に関する結果を示す。
【0024】
図5から明らかなように、茎葉部50%エタノール抽出物の場合、濃度依存的に効果が認められ、1μg/mlの濃度で約10ng/mlと抑制率は57%であった。果実部50%エタノール抽出物及び水抽出物は、0.05〜1μg/mlにおいて約25%の程度の抑制率が得られた。毛状根部エタノール抽出物は、0.05〜1μg/mlにおいて濃度依存的に効果が認められた。
【0025】
実施例6
(細胞毒性試験)
サクラダソウ抽出物の細胞生育への影響を検討するため、alamarBlue Assayを行った。すなわち培養上清を除去後、10%alamarBlueを含む1.2mMCa2+/K110II(+)200μlを加え、2時間インキュベーションした。上清の550nm及び630nmにおける吸光度を測定した。数値は、サクラダソウ抽出物無添加群の吸光度を100%として示した。
結果を図6に示す。
なお図6中、Aは茎葉部の50%エタノール抽出物、Bは茎葉部の水抽出物、Cは果実部の50%エタノール抽出物、Dは果実部の水抽出物、Eは毛状根部のエタノール抽出物及びFは毛状根部の水抽出物に関する結果を示す。
【0026】
図6から明らかなように、サクラダソウの茎葉部、果実部及び毛状根部の各抽出物も、1〜100μg/mlにおいて細胞毒性及び細胞増殖作用は確認されなかった。
【0027】
調製例2
〔ローズマリー抽出物の調製〕
ローズマリーの茎葉部を自然乾燥し、細切し、50%エタノール水溶液に一晩浸漬し、ろ紙でろ過して抽出物を得た。
【0028】
実施例7
(ローズマリー抽出物のPGE2産生抑制効果)
ローズマリー50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図7に示す。
【0029】
図7から明らかなように、ローズマリー50%エタノール抽出物は、該ローズマリー抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約7ng/ml mediumであったのを、ローズマリー抽出物濃度0.5%溶液で約6ng/ml mediumに、1.0%溶液で約5ng/ml mediumに減少させた。従ってローズマリー50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0030】
実施例8
(ローズマリー抽出物のIL−1α産生抑制効果)
ローズマリー50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図8に示す。
【0031】
図8から明らかなように、ローズマリー50%エタノール抽出物は、該ローズマリー抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、ローズマリー抽出物濃度0.1%溶液で約25pg/mlに、1.0%溶液で約20pg/mlに減少させた。従ってローズマリー50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0032】
実施例9
(ローズマリー抽出物のIL−6産生抑制効果)
ローズマリー50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図9に示す。
【0033】
図9から明らかなように、ローズマリー50%エタノール抽出物は、該ローズマリー抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、ローズマリー抽出物濃度0.5%溶液で約19ng/mlに、1.0%溶液で約17ng/mlに、2.0%溶液で約6ng/mlに減少させた。従ってローズマリー50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0034】
調製例3
〔カルノシン酸の調製〕
ローズマリーを酢酸エチルで抽出し、その抽出液をエーテルと1N水酸化ナトリウム溶液で振盪分配後、水酸化ナトリウム層を分取し、2N塩酸で中和後、エーテルで抽出した。エーテル抽出エキスはシリカゲルクロマトグラフィー(ベンゼン−アセトン(10:1))に通し、ベンゼンで再結晶を行うと、無色粉末が析出した。
析出した無色粉末を除いた残りのベンゼン溶液をポリアミド処理後、微量のベンゼンに溶解し、ヘキサンを加えて再結晶を行い、無色針状晶のカルノシン酸を得た。
【0035】
実施例10
(カルノシン酸のPGE2産生抑制効果)
カルノシン酸を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図10に示す。
【0036】
図10から明らかなように、カルノシン酸は、該カルノシン酸を含まない場合はPGE2産生量が約7ng/ml mediumであったのを、カルノシン酸濃度10μM(μmol/l、以下同)溶液で約3.5ng/ml mediumに、10μM溶液で約2ng/ml mediumに減少させた。従ってカルノシン酸は優れたPGE2産生抑制効果を有していた。
【0037】
実施例11
(カルノシン酸のIL−1α産生抑制効果)
カルノシン酸を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図11に示す。
【0038】
図11から明らかなように、カルノシン酸は、該カルノシン酸を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、カルノシン酸濃度10μM溶液で約20pg/mlに、20μM溶液で約12pg/mlに、40μM溶液で約10pg/mlに減少させた。従ってカルノシン酸は優れたIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0039】
実施例12
(カルノシン酸のIL−6産生抑制効果)
カルノシン酸を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図12に示す。
【0040】
図12から明らかなように、カルノシン酸は、該カルノシン酸を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、カルノシン酸濃度10μM溶液で約20ng/mlに、20μM溶液で約15ng/mlに、40μM溶液で約5ng/mlに減少させた。従ってカルノシン酸は優れたIL−6産生抑制効果を有していた。
【0041】
調製例4
〔サクラ抽出物の調製〕
サクラの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、サクラ50%エタノール抽出物を得た。
【0042】
実施例13
(サクラ抽出物のPGE2産生抑制効果)
サクラ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図13に示す。
【0043】
図13から明らかなように、サクラ50%エタノール抽出物は、該サクラ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約7.5ng/ml mediumであったのを、サクラ抽出物濃度0.5%溶液で約7ng/ml mediumに、1.0%溶液で約5.5ng/ml mediumに減少させた。従ってサクラ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0044】
実施例14
(サクラ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
サクラ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図14に示す。
【0045】
図14から明らかなように、サクラ50%エタノール抽出物は、該サクラ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、サクラ抽出物濃度0.5%溶液で約40pg/mlに、2.0%溶液で約30pg/mlに減少させた。従ってサクラ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0046】
実施例15
(サクラ抽出物のIL−6産生抑制効果)
サクラ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図15に示す。
【0047】
図15から明らかなように、サクラ50%エタノール抽出物は、該サクラ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約22ng/mlであったのを、サクラ抽出物濃度1.0%溶液で約17ng/mlに、2.0%溶液で約11ng/mlに減少させた。従ってサクラ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0048】
調製例5
〔ソテツ抽出物の調製〕
ソテツの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、ソテツ50%エタノール抽出物を得た。
【0049】
実施例16
(ソテツ抽出物のPGE2産生抑制効果)
ソテツ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図16に示す。
【0050】
図16から明らかなように、ソテツ50%エタノール抽出物は、該ソテツ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約2ng/ml mediumであったのを、ソテツ抽出物濃度1.0%溶液で約1ng/ml mediumに、2.0%溶液で約0.8ng/ml mediumに減少させた。従ってソテツ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0051】
実施例17
(ソテツ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
ソテツ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図17に示す。
【0052】
図17から明らかなように、ソテツ50%エタノール抽出物は、該ソテツ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約49pg/mlであったのを、ソテツ抽出物濃度2.0%溶液で約40pg/mlに減少させた。従ってソテツ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0053】
実施例18
(ソテツ抽出物のIL−6産生抑制効果)
ソテツ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図18に示す。
【0054】
図18から明らかなように、ソテツ50%エタノール抽出物は、該ソテツ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、ソテツ抽出物濃度0.5%溶液で約20ng/mlに、2.0%溶液で約9ng/mlに減少させた。従ってソテツ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0055】
調製例6
〔カルノソールの調製〕
ローズマリーを酢酸エチルで抽出し、その抽出物をエーテルと1N水酸化ナトリウム溶液で振盪分配後、水酸化ナトリウム層を分取し、2N塩酸で中和後、エーテルで抽出した。エーテル抽出エキスはシリカゲルクロマトグラフィー(ベンゼン−アセトン(10:1)に通し、ベンゼンで再結晶を行い、得られた無色粉末を更にメタノールで再結晶し、無色針状晶カルノソールを得た。
【0056】
実施例19
(カルノソールのPGE2産生抑制効果)
カルノソールを用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図19に示す。
【0057】
図19から明らかなように、カルノソールは、該カルノソールを含まない場合はPGE2産生量が約7ng/ml mediumであったのを、カルノソール濃度10μM溶液で約3.5ng/ml mediumに減少させた。従ってカルノソールは優れたPGE2産生抑制効果を有していた。
【0058】
実施例20
(カルノソールのIL−1α産生抑制効果)
カルノソールを用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図20に示す。
【0059】
図20から明らかなように、カルノソールは、該カルノソールを含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、カルノソール濃度10μM溶液で約21pg/mlに、20μM溶液で約16pg/mlに減少させた。従ってカルノソールは優れたIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0060】
実施例21
(カルノソールのIL−6産生抑制効果)
カルノソールを用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図21に示す。
【0061】
図21から明らかなように、カルノソールは、該カルノソールを含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、カルノソール濃度10μM溶液で約19ng/mlに、20μM溶液で約17ng/mlに、40μM溶液で約11ng/mlに減少させた。従ってカルノソールは優れたIL−6産生抑制効果を有していた。
【0062】
調製例7
〔ノバラ抽出物の調製〕
ノバラの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、ノバラ50%エタノール抽出物を得た。
【0063】
実施例22
(ノバラ抽出物のPGE2産生抑制効果)
ノバラ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図22に示す。
【0064】
図22から明らかなように、ノバラ50%エタノール抽出物は、該ノバラ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約7ng/ml mediumであったのを、ノバラ抽出物濃度0.1%溶液で約5.5ng/ml mediumに、0.5%溶液で約3ng/ml mediumに減少させた。従ってノバラ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0065】
実施例23
(ノバラ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
ノバラ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図23に示す。
【0066】
図23から明らかなように、ノバラ50%エタノール抽出物は、該ノバラ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、ノバラ抽出物濃度0.1%溶液で約42pg/mlに、0.5%溶液で約36pg/mlに減少させた。従ってノバラ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0067】
実施例24
(ノバラ抽出物のIL−6産生抑制効果)
ノバラ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図24に示す。
【0068】
図24から明らかなように、ノバラ50%エタノール抽出物は、該ノバラ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、ノバラ抽出物濃度0.5%溶液で約18ng/mlに、1.0%溶液で約14ng/mlに、2.0%溶液で約4ng/mlに減少させた。従ってノバラ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0069】
調製例8
〔イチゴ抽出物の調製〕
イチゴの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、イチゴ50%エタノール抽出物を得た。
【0070】
実施例25
(イチゴ抽出物のPGE2産生抑制効果)
イチゴ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図25に示す。
【0071】
図25から明らかなように、イチゴ50%エタノール抽出物は、該イチゴ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約7.5ng/ml mediumであったのを、イチゴ抽出物濃度1.0%溶液で約6ng/ml mediumに、2.0%溶液で約4.5ng/ml mediumに減少させた。従ってイチゴ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0072】
実施例26
(イチゴ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
イチゴ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図26に示す。
【0073】
図26から明らかなように、イチゴ50%エタノール抽出物は、該イチゴ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、イチゴ抽出物濃度0.5%溶液で約35pg/mlに、1.0%溶液で約32pg/mlに減少させた。従ってイチゴ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0074】
実施例27
(イチゴ抽出物のIL−6産生抑制効果)
ノチゴ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図27に示す。
【0075】
図27から明らかなように、イチゴ50%エタノール抽出物は、該イチゴ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約25ng/mlであったのを、イチゴ抽出物濃度1.0%溶液で約20ng/mlに、2.0%溶液で約8ng/mlに、減少させた。従ってイチゴ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0076】
調製例9
〔ユキノシタ抽出物の調製〕
ユキノシタの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、ユキノシタ50%エタノール抽出物を得た。
【0077】
実施例28
(ユキノシタ抽出物のPGE2産生抑制効果)
ユキノシタ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図28に示す。
【0078】
図28から明らかなように、ユキノシタ50%エタノール抽出物は、該ユキノシタ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約2ng/ml mediumであったのを、ユキノシタ抽出物濃度0.5%溶液で約0.6ng/ml mediumに、1.0%溶液で約0.5ng/ml mediumに減少させた。従ってユキノシタ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0079】
実施例29
(ユキノシタ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
ユキノシタ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図29に示す。
【0080】
図29から明らかなように、ユキノシタ50%エタノール抽出物は、該ユキノシタ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、ユキノシタ抽出物濃度0.5%溶液で約40pg/mlに、1.0%溶液で約35pg/mlに減少させた。従ってユキノシタ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0081】
実施例30
(ユキノシタ抽出物のIL−6産生抑制効果)
ユキノシタ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図30に示す。
【0082】
図30から明らかなように、ユキノシタ50%エタノール抽出物は、該ユキノシタ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、ユキノシタ抽出物濃度1.0%溶液で約18ng/mlに、2.0%溶液で約14ng/mlに減少させた。従ってユキノシタ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0083】
調製例10
〔クズ抽出物の調製〕
クズの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、クズ50%エタノール抽出物を得た。
【0084】
実施例31
(クズ抽出物のPGE2産生抑制効果)
クズ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図31に示す。
【0085】
図31から明らかなように、クズ50%エタノール抽出物は、該クズ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約2.3ng/ml mediumであったのを、クズ抽出物濃度0.5%溶液で約1.2ng/ml mediumに、1.0%溶液で約1ng/ml mediumに、2.0%溶液で約0.7ng/ml mediumに減少させた。従ってクズ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0086】
実施例32
(クズ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
クズ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図32に示す。
【0087】
図32から明らかなように、クズ50%エタノール抽出物は、該クズ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、クズ抽出物濃度1.0%で約42pg/mlに、2.0%で約40pg/mlに減少させた。従ってクズ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0088】
実施例33
(クズ抽出物のIL−6産生抑制効果)
クズ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図33に示す。
【0089】
図33から明らかなように、クズ50%エタノール抽出物は、該クズ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、クズ抽出物濃度0.5%溶液で約19ng/mlに、2.0%溶液で約11ng/mlに減少させた。従ってクズ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0090】
調製例11
〔レモングラス抽出物の調製〕
レモングラスの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、レモングラス50%エタノール抽出物を得た。
【0091】
実施例34
(レモングラス抽出物のPGE2産生抑制効果)
レモングラス50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図34に示す。
【0092】
図34から明らかなように、レモングラス50%エタノール抽出物は、該レモングラス抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約2.5ng/ml mediumであったのを、レモングラス抽出物濃度0.5%溶液で約2ng/ml mediumに、2.0%溶液で約1.4ng/ml mediumに減少させた。従ってレモングラス50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0093】
実施例35
(レモングラス抽出物のIL−1α産生抑制効果)
レモングラス50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図35に示す。
【0094】
図35から明らかなように、レモングラス50%エタノール抽出物は、該レモングラス抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、レモングラス抽出物濃度0.5%溶液で約43pg/mlに、1.0%で約33pg/mlに、2.0%で約24pg/mlに減少させた。従ってレモングラス50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0095】
実施例36
(レモングラス抽出物のIL−6産生抑制効果)
レモングラス50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図36に示す。
【0096】
図36から明らかなように、レモングラス50%エタノール抽出物は、該レモングラス抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、レモングラス抽出物濃度1.0%溶液で約17ng/mlに、2.0%溶液で約14ng/mlに減少させた。従ってレモングラス50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0097】
調製例12
〔ユキヤナギ抽出物の調製〕
ユキヤナギの茎葉部を使用して、調製例2と同様にして、ユキヤナギ50%エタノール抽出物を得た。
【0098】
実施例37
(ユキヤナギ抽出物のPGE2産生抑制効果)
ユキヤナギ50%エタノール抽出物を用いて、実施例1に準じてPGE2産生抑制効果の試験を行った。結果を図37に示す。
【0099】
図37から明らかなように、ユキヤナギ50%エタノール抽出物は、該ユキヤナギ抽出物を含まない場合はPGE2産生量が約2.9ng/ml mediumであったのを、ユキヤナギ抽出物濃度0.5%溶液で約2.5ng/ml mediumに、2.0%溶液で約2ng/ml mediumに減少させた。従ってユキヤナギ50%エタノール抽出物はPGE2産生抑制効果を有していた。
【0】
実施例38
(ユキヤナギ抽出物のIL−1α産生抑制効果)
ユキヤナギ50%エタノール抽出物を用いて、実施例4に準じてIL−1α産生抑制効果の試験を行った。結果を図38に示す。
【0】
図38から明らかなように、ユキヤナギ50%エタノール抽出物は、該ユキヤナギ抽出物を含まない場合はIL−1α産生量が約50pg/mlであったのを、ユキヤナギ抽出物濃度0.5%溶液で約30pg/mlに、2.0%で約27pg/mlに減少させた。従ってユキヤナギ50%エタノール抽出物はIL−1α産生抑制効果を有していた。
【0】
実施例39
(ユキヤナギ抽出物のIL−6産生抑制効果)
ユキヤナギ50%エタノール抽出物を用いて、実施例5に準じてIL−6産生抑制効果の試験を行った。結果を図39に示す。
【0】
図39から明らかなように、ユキヤナギ50%エタノール抽出物は、該ユキヤナギ抽出物を含まない場合はIL−6産生量が約23ng/mlであったのを、ユキヤナギ抽出物濃度0.5%溶液で約20ng/mlに、2.0%溶液で約13ng/mlに減少させた。従ってユキヤナギ50%エタノール抽出物はIL−6産生抑制効果を有していた。
【0】
実施例40
スクワレン、セチルイソオクタノエート及びマイクロクリスタリンワックスを加熱溶解後、粘土鉱物、POEグリセロールトリイソステアリン酸エステル(界面活性剤)を加え、70℃に調整し、均一に分散・溶解して油性ゲルを得た。
次に、所定濃度のサクラダソウ抽出物を精製水に溶解し、70℃に調整し、油性ゲルの中へ十分に攪拌しながらゆっくりと添加した。
ホモミキサーで均一に混合した後、脱気、ろ過後、30℃まで冷却し、クリームを得た。各成分の配合比は以下の通りである。
【0】
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
サクラダソウ抽出物 0.01
水 残量
【0】
実施例41
サクラ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
サクラ抽出物 0.01
水 残量
【0】
実施例42
ソテツ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
ソテツ抽出物 0.1
水 残量
【0】
実施例43
ノバラ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
ノバラ抽出物 0.1
水 残量
【0】
実施例44
イチゴ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
イチゴ抽出物 0.1
水 残量
【0】
実施例45
ユキノシタ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
ユキノシタ抽出物 0.1
水 残量
【0】
実施例46
クズ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
クズ抽出物 0.1
水 残量
【0】
実施例47
レモングラス抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
レモングラス抽出物 0.1
水 残量
【0】
実施例48
ユキヤナギ抽出物を用いて、下記の組成を有するクリームを得た。
組成 配合比(重量%)
スクワレン 20
セチルイソオクタノエート 8.5
マイクロクリスタリンワックス 1
粘土鉱物 1.3
POEグリセロール
トリイソステアリン酸エステル 0.2
ユキヤナギ抽出物 0.1
水 残量
【0】
【発明の効果】
本発明によれば、抗炎症作用をもつと同時に安全性の高い抗炎症剤、PGE2産生抑制剤、IL−1α産生抑制剤、IL−6産生抑制剤及び抗アレルギー剤を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】サクラダソウ抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図2】サクラダソウ抽出物画分のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図3】サクラダソウ由来フラボノイドのPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図4】サクラダソウ抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図5】サクラダソウ抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図6】サクラダソウ抽出物のヒト表皮細胞生育へ及ぼす影響を示すグラフ。
【図7】ローズマリー50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図8】ローズマリー50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図9】ローズマリー50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図10】カルノシン酸のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図11】カルノシン酸のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図12】カルノシン酸のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図13】サクラ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図14】サクラ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図15】サクラ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図16】ソテツ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図17】ソテツ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図18】ソテツ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図19】カルノソールのPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図20】カルノソールのIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図21】カルノソールのIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図22】ノバラ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図23】ノバラ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図24】ノバラ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図25】イチゴ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図26】イチゴ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図27】イチゴ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図28】ユキノシタ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図29】ユキノシタ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図30】ユキノシタ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図31】クズ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図32】クズ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図33】クズ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図34】レモングラス50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図35】レモングラス50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図36】レモングラス50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。
【図37】ユキヤナギ50%エタノール抽出物のPGE2産生抑制効果を示すグラフ。
【図38】ユキヤナギ50%エタノール抽出物のIL−1α産生抑制効果を示すグラフ。
【図39】ユキヤナギ50%エタノール抽出物のIL−6産生抑制効果を示すグラフ。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to an anti-inflammatory agent, PGE 2 The present invention relates to a production inhibitor, an IL-1α production inhibitor, and an IL-6 production inhibitor.
[0002]
[Prior art]
In general, inflammation is a defense reaction of a living body that attempts to repair and regenerate the damaged site when an invasion that causes some harm to the living body is applied or damage occurs. This defense reaction suppresses the spread of tissue and cell damage, eliminates the cause of damage, and tries to repair the tissue, but on the other hand, excessive pain, swelling, itching, fever, etc. occur, Symptoms that are unfavorable to the living body may occur, for example, damage may be amplified in reverse.
Therefore, it is necessary to suppress excessive inflammation to reduce the patient's pain and accelerate the treatment of damage, and as an inflammation suppression means, administration of an anti-inflammatory agent having an anti-inflammatory effect is performed.
[0003]
[Problems to be solved by the invention]
However, anti-inflammatory agents that have been developed so far have excellent effects, but most of them are known to have a strong physiological action in addition to the intended anti-inflammatory action.
[0004]
Accordingly, an object of the present invention is to provide an anti-inflammatory agent that has an anti-inflammatory action and at the same time has high safety.
[0005]
[Means for Solving the Problems]
For the first time by the inventors, carnosic acid, carnosol, as well as Novara extraction Thing is PGE which has an excellent anti-inflammatory action and is a chemical mediator of inflammatory reaction in particular 2 (Prostaglongin E 2 ) And IL-1α (interleukin-1α) and IL-6 (interleukin-6), which are inflammatory cytokines, were found to be effective and at the same time safe for the living body. Was completed.
[0006]
That is, the anti-inflammatory agent of the present invention includes carnosic acid, carnosol, as well as Novara extraction Thing It contains at least 1 sort chosen from these. According to the present invention, carnosic acid, carnosol, as well as Novara extraction Thing PGE containing at least one selected from 2 Production inhibitors, IL-1α production inhibitors, and IL-6 production inhibitors are provided.
[0007]
The primrose used in the anti-inflammatory agent of the present invention belongs to the genus Praia (Copper jade), and is a fertile perennial plant.
The extract of primroses is obtained by drying primroses, chopping them, immersing them in water, a hydrophilic organic solvent such as ethanol, or a mixture thereof, and filtering the resulting liquid. The extract can be divided into a foliage part, a fruit part, a hairy root part and the like, and a foliage part and a fruit part are particularly preferably used.
Rosemary extract, Sakura extract, Cycad extract, Novara extract, Strawberry extract, Yukinoshita extract, Kudzu extract, Lemongrass extract and Yukiyanagi extract can be obtained in the same manner as Primrose extract. . Carnosic acid and carnosol are also isolated from rosemary.
[0008]
Primrose extract, rosemary extract, carnosic acid, cherry extract, cycad extract, carnosol, nobara extract, strawberry extract, saxifrage extract, kudzu extract, lemongrass extract and snow willow extract in anti-inflammatory agents The blending amount of at least one selected from the products is not particularly limited, but is preferably 0.0001 to 20.0% by weight, more preferably 0.0005 to dry solid weight based on the total amount. 5.0% by weight.
When the blending amount is less than 0.0001% by weight, the effect of the present invention cannot be sufficiently obtained. On the other hand, when the blending amount exceeds 20.0% by weight, the improvement of the effect commensurate with the increase is not recognized.
[0009]
The anti-inflammatory agent of this invention can be made into dosage forms, such as lotions, emulsions, creams, ointments, packs, etc. as a skin external preparation.
[0010]
In the anti-inflammatory agent of the present invention, a dye, an antiseptic, a surfactant, a fragrance, a pigment and the like can be appropriately blended.
[0011]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on examples. However, the present invention is not limited to these examples. In the following preparation examples and examples, “%” means “% by weight” unless otherwise specified.
[0012]
Preparation Example 1
[Preparation of primrose extract]
Primrose was obtained by mass growth in a foliage culture system. The obtained primrose was naturally dried, divided into a foliage part, a fruit part and a hairy root part, each cut into small pieces, immersed in 50% ethanol aqueous solution or water overnight, and filtered with a filter paper to obtain an extract.
[0013]
[Fractionation of primrose extract]
The 50% ethanol extract of the obtained foliage part was concentrated by an evaporator until it became paste-like. The same amount of water and hexane was added to the concentrated extract, and the mixture was distributed using a separatory funnel.
The aqueous layer was separated into a precipitate and a supernatant by centrifugation, the precipitate was concentrated to dryness, dissolved or dispersed in 50% ethanol, 50% ethanol was distilled off, and freeze-dried. The hexane layer was dissolved in 50% ethanol after hexane was distilled off, and the ethanol was distilled off and then lyophilized.
[0014]
Example 1
(PGE of primrose extract) 2 Production suppression effect)
[Creation of multilayered epidermal cells (liquid layer culture method)]
Frozen normal human epidermis cells (primary, neonatal foreskin derived: NHEK (F) CASCADE, tertiary culture) grown semi-confluent using HuMedia-KG2 (Kurabo) in a 96-well culture plate (IWAKI) at 60,000 cells / well). After culturing for 24 hours and confirming that the cells are adhered, 1.2 mM Ca is used to promote differentiation of epidermal cells. 2+ The medium was changed to K110 type II additive containing K + (K110 II (+), Kyokuto). 1.2 mM Ca 2+ / K110II (+) was cultured for 7 days to obtain stratified epidermal cells. The medium was changed every 2 days.
[0015]
PGE of primrose extract 2 The production inhibitory effect was confirmed by the following experiment.
The medium of the obtained stratified epidermal cells is removed by aspiration to obtain 1.2 mM Ca. 2+ The cells were washed with 200 μl of / K110II (−) and preincubated with 200 μl of the same medium for 2 hours. Thereafter, the medium was removed by suction and irradiated with UVB (ultraviolet B region). The UVB lamp used was TOSHIBA FL20SE, and the irradiation device used was Delmale irradiation device (Eisai). Irradiation was started about 1 hour after the lamp was turned on. Irradiation intensity is 0.5mW / cm 2 Adjust the height to be 50mJ / cm 2 Of UVB. During the irradiation, the lid of the microplate was removed.
1.2 mM Ca containing primrose extract (water extract and 50% ethanol extract) collected from the foliage and fruit after UVB irradiation 2+ / K110II (−) 200 μl (Primrose concentration: 1 μg / ml, 10 μg / ml, 100 μg / ml) was added and cultured. After culturing for 24 hours, the supernatant was recovered and PGE in the supernatant was recovered. 2 PGE 2 Quantification was performed using EIA system (BIOTRAK). A micropleat reader EL312e (BIO-TEK INSTRUMENTS INC) was used for the absorbance measurement.
The results are shown in FIG.
In FIG. 1, A shows the results relating to the 50% ethanol extract of the foliage part, B the water extract of the foliage part, C the 50% ethanol extract of the fruit part, and D the result relating to the water extract of the fruit part.
[0016]
As apparent from FIGS. 1A and 1B, the 50% ethanol extract of primrose leaves is PEG when the primrose extract is not added. 2 Was about 20 ng / ml medium, but the concentration of primrose extract decreased to about 17 ng / ml medium at 10 μg / ml, and to about 10 ng / ml medium at 100 μg / ml. The water extract of primrose stem leaves is PEG when the primrose extract is not added. 2 Was about 20 ng / ml medium, but the concentration of primrose extract decreased to about 15 ng / ml medium at 10 μg / ml and to about 10 ng / ml medium at 100 μg / ml. That is, primrose leaves and stems are both 50% ethanol extract and water extract PGE. 2 It had a production inhibitory effect.
Similarly, as is clear from C and D, 50% ethanol extract of the fruit part is PEG when the primrose extract is not added. 2 Production of about 21 ng / ml medium was reduced to about 16 ng / ml medium at a concentration of 100 μg / ml, and when the water extract was not added with the primrose extract, 2 Of about 21 ng / ml medium was reduced to about 18 ng / ml medium at a concentration of 100 μg / ml. 2 It had a production inhibitory effect.
In particular, the activity of the extract of the foliage is about 50% inhibition at a concentration of 100 μg / ml, and compared with the case where the extract of primrose is not contained. 2 The production suppression effect was very excellent.
“Ng / ml medium” means PGE produced in 1 ml of medium. 2 Production amount.
[0017]
Example 2
(PGE of water fraction and hexane fraction of 50% ethanol extract of primrose leaves 2 Production suppression effect)
50% ethanol extract of primroses (SAL700), 50% ethanol extract of primroses-aqueous layer fraction (SAL701), 50% ethanol extract of primroses-aqueous layer precipitation (SAL702) And 50% ethanol extract-hexane fraction (SAL703) of primrose leaves and primroses at concentrations of primroses of 25 μg / ml, 50 μg / ml, 100 μg / ml, and 200 μg / ml in the same manner as in Example 1. 2 The production suppression effect was tested.
The results are shown in FIG.
In FIG. 2, A shows the results for SAL700, B for SAL701, C for SAL702, and D for SAL703.
[0018]
As is apparent from FIG. 2, the 50% ethanol extract of primrose leaves is an aqueous fraction and PEG when the primrose extract is not contained. 2 Was about 6 μg / ml, but the concentration of primrose decreased to about 3.5 μg / ml at 100 μg / ml and to about 2 μg / ml at 200 μg / ml. In addition, in the aqueous layer precipitation, when the primrose extract is not included, PEG 2 Was about 5 μg / ml, but the concentration of primrose decreased to about 3 μg / ml at 200 μg / ml. Also, in the hexane fraction, when primrose extract is not included, PEG 2 Was about 7.5 μg / ml, but the concentration of primrose decreased to about 4 μg / ml at 200 μg / ml. That is, it is PGE whether it is a water fraction or a hexane fraction. 2 It had a production inhibitory effect. Especially the water fraction showed a high effect.
[0019]
Example 3
(PGE of three kinds of flavonoids in primrose extract 2 Production suppression effect)
Three kinds of flavonoids isolated from the extract of primrose (linarin, diosmin and luteolin 7-O-glucoside) were treated in the same manner as in Example 1 to obtain flavonoid concentrations. PGE at 0.1 μg / ml, 1 μg / ml, 10 μg / ml, 100 μg / ml 2 The production suppression effect was tested.
The results are shown in FIG.
In addition, in FIG. 3, A is a linalin, B is a diosmin, C shows the result regarding luteolin 7-O-glucoside.
[0020]
As is apparent from FIG. 3, linalin is PEG when not added. 2 Was about 6 μg / ml, but the linalin concentration was about 5 μg / ml at 0.1 μg / ml, about 4 μg / ml at 1 μg / ml, about 3 μg / ml at 10 μg / ml, 100 μg / Ml is reduced to about 1.5 μg / ml. 2 Was reduced to about 2 μg / ml at 10 μg / ml, about 1 μg / ml at 100 μg / ml, and no addition of luteolin 7-O-glucoside. , PEG 2 Was about 7 μg / ml, but the concentration of luteolin 7-O-glucoside was about 5 μg / ml at 1 μg / ml, about 3 μg / ml at 10 μg / ml, and about 0.5 μg at 100 μg / ml. / Ml. In other words, all three flavonoids used in the test had a PGE concentration of 1/10 to 1/20 lower than SAL701 of 50% ethanol extract of stems and leaves. 2 It was confirmed that it has a production inhibitory effect.
[0021]
Example 4
(IL-1α production inhibitory effect of primrose extract)
Frozen normal human epidermal cells (NHEK (F) CASCADE, tertiary culture) grown semi-confluent using HuMedia-KG2 (Kurabo) were seeded in 96-well culture plates (IWAKI) at 60,000 cells / well. After culturing for 24 hours and confirming that the cells are adhered, 0.6 mM Ca containing primrose extract 2+ The medium was changed with / K110II (+) and cultured for 72 hours. During the 48 hours, the medium was replaced with the same medium. After culturing for 72 hours, the medium was changed with the same medium containing primrose extract and 50 μg / ml LPS, and culturing was continued for 1 hour to stimulate the epidermal cells with LPS. The culture supernatant after stimulation was collected, and the amount of IL-1α in the supernatant was quantified using (h) IL-1α ELISA system (BIOTRAK).
The results are shown in FIG.
In FIG. 4, A shows the results regarding 50% ethanol extract of the foliage part, B shows the 50% ethanol extract of the fruit part, and C shows the result concerning the hairy root ethanol extract.
[0022]
As is apparent from FIG. 4, when using a 50% ethanol extract of the foliage, the inhibition rate is about 25 pg / ml and 50% at a concentration of 0.5 μg / ml and about 20 pg / ml and 60% at a concentration of 5 μg / ml It was the inhibition rate. In addition, the 50% ethanol extract of the fruit part was about 30 pg / ml at a concentration of 0.5 μg / ml and 5 μg / ml, which was a 50% inhibition rate. The hairy root ethanol extract was about 25 pg / ml at a concentration of 0.5 μg / ml and 5 μg / ml, which was 60% inhibition.
[0023]
Example 5
(IL-6 production inhibitory effect of primrose extract)
Mouse macrophage RAW264.7 was transferred to a 24-well culture plate (IWAKI) at 1.0 × 10 Five Cells / well were seeded. As the medium, DMEM containing 10% by volume FBS (10% by volume FBS / DMEM) was used and cultured for 24 hours. After confirming the state of the cells, the medium was removed by aspiration, 450 μl of 10 vol% FBS / DMEM containing primrose extract was added, and subsequently stimulated with 50 μl of LPS (Liposaccharide, Sigma). After 24 hours of cell stimulation, the culture supernatant was collected, and the amount of IL-6 in the supernatant was measured using (m) IL-6 ELISA system (BIOTRAK).
The results are shown in FIG.
In FIG. 5, A shows the results for 50% ethanol extract of the foliage part, B shows the 50% ethanol extract of the fruit part, C shows the water extract of the fruit part, and D shows the ethanol extract of the hairy root part.
[0024]
As apparent from FIG. 5, in the case of the 50% ethanol extract of the foliage part, an effect was recognized in a concentration-dependent manner, and the inhibition rate was 57% at about 10 ng / ml at a concentration of 1 μg / ml. In the
[0025]
Example 6
(Cytotoxicity test)
In order to examine the effect of primrose extract on cell growth, alamarBlue Assay was performed. That is, after removing the culture supernatant, 1.2 mM Ca containing 10
The results are shown in FIG.
In FIG. 6, A is a 50% ethanol extract of the foliage, B is a water extract of the foliage, C is a 50% ethanol extract of the fruit, D is a water extract of the fruit, and E is a hairy root. The ethanol extract and F show the results for the hairy root water extract.
[0026]
As is clear from FIG. 6, cytotoxicity and cell proliferation action were not confirmed at 1 to 100 μg / ml in the extracts of shoots, fruits and hairy roots of primrose.
[0027]
Preparation Example 2
[Preparation of rosemary extract]
Rosemary stems and leaves were naturally dried, chopped, immersed in 50% aqueous ethanol overnight, and filtered through filter paper to obtain an extract.
[0028]
Example 7
(Pose of rosemary extract 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 with 50% rosemary ethanol extract 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0029]
As is apparent from FIG. 7,
[0030]
Example 8
(IL-1α production inhibitory effect of rosemary extract)
Using a 50% rosemary ethanol extract, the IL-1α production inhibitory effect was tested according to Example 4. The results are shown in FIG.
[0031]
As can be seen from FIG. 8, the
[0032]
Example 9
(IL-6 production inhibitory effect of rosemary extract)
The IL-6 production inhibitory effect was tested according to Example 5 using a
[0033]
As can be seen from FIG. 9, the
[0034]
Preparation Example 3
(Preparation of carnosic acid)
Rosemary was extracted with ethyl acetate, and the extract was shaken and distributed with ether and 1N sodium hydroxide solution. The sodium hydroxide layer was separated, neutralized with 2N hydrochloric acid, and extracted with ether. The ether extract was passed through silica gel chromatography (benzene-acetone (10: 1)) and recrystallized with benzene to deposit a colorless powder.
The remaining benzene solution excluding the precipitated colorless powder was treated with polyamide, dissolved in a small amount of benzene, and recrystallized by adding hexane to obtain colorless needle crystal carnosic acid.
[0035]
Example 10
(Carnosic acid PGE 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using carnosic acid 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0036]
As is clear from FIG. 10, carnosic acid is PGE when it does not contain carnosic acid. 2 The production amount was about 7 ng / ml medium, and the carnosic acid concentration was reduced to about 3.5 ng / ml medium with a 10 μM (μmol / l, hereinafter the same) solution and about 2 ng / ml medium with a 10 μM solution. Carnosic acid is therefore an excellent PGE 2 It had a production inhibitory effect.
[0037]
Example 11
(Inhibitory effect of carnosic acid on IL-1α production)
Using carnosic acid, the IL-1α production inhibitory effect was tested according to Example 4. The results are shown in FIG.
[0038]
As is clear from FIG. 11, when carnosic acid was not included, the IL-1α production amount was about 50 pg / ml when the carnosic acid was not included, and the carnosic acid concentration was about 20 pg / ml with a 10 μM solution. To about 12 pg / ml and 40 μM solution to about 10 pg / ml. Therefore, carnosic acid had an excellent IL-1α production inhibitory effect.
[0039]
Example 12
(Inhibitory effect of carnosic acid on IL-6 production)
Using carnosic acid, the IL-6 production inhibitory effect was tested according to Example 5. The results are shown in FIG.
[0040]
As is clear from FIG. 12, when carnosic acid was not included, IL-6 production amount was about 23 ng / ml, but carnosic acid concentration was about 20 ng / ml with 10 μM solution and 20 μM solution. To about 15 ng / ml and 40 μM solution to about 5 ng / ml. Therefore, carnosic acid had an excellent IL-6 production inhibitory effect.
[0041]
Preparation Example 4
[Preparation of cherry extract]
A
[0042]
Example 13
(PGE of cherry extract 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using 50% ethanol extract of cherry 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0043]
As is apparent from FIG. 13, the
[0044]
Example 14
(IL-1α production inhibitory effect of cherry extract)
Using a
[0045]
As is clear from FIG. 14, the cherry extract with 50% ethanol had a production of IL-1α of about 50 pg / ml when the cherry extract was not included. To about 40 pg / ml and 2.0% solution to about 30 pg / ml. Therefore, the
[0046]
Example 15
(IL-6 production inhibitory effect of cherry extract)
Using a
[0047]
As apparent from FIG. 15, the cherry extract with 50% ethanol had a IL-6 production amount of about 22 ng / ml when the cherry extract was not included. To about 17 ng / ml and 2.0% solution to about 11 ng / ml. Therefore, the
[0048]
Preparation Example 5
[Preparation of cycad extract]
A
[0049]
Example 16
(PGE of cycad extract 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using 50% ethanol extract of cycad 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0050]
As can be seen from FIG. 16,
[0051]
Example 17
(Inhibitory effect of cycad extract on IL-1α production)
Using a
[0052]
As can be seen from FIG. 17, the 50% ethanol extract of cycad, when the cycad extract was not included, showed that the IL-1α production was about 49 pg / ml. To about 40 pg / ml. Therefore, the
[0053]
Example 18
(Inhibitory effect of cycad extract on IL-6 production)
Using a
[0054]
As can be seen from FIG. 18, the
[0055]
Preparation Example 6
(Preparation of carnosol)
Rosemary was extracted with ethyl acetate, and the extract was shaken and distributed with ether and 1N sodium hydroxide solution. The sodium hydroxide layer was separated, neutralized with 2N hydrochloric acid, and extracted with ether. The ether extract was passed through silica gel chromatography (benzene-acetone (10: 1), recrystallized with benzene, and the resulting colorless powder was further recrystallized with methanol to obtain colorless needle crystal carnosol.
[0056]
Example 19
(Carnosol PGE 2 Production suppression effect)
Using carnosol, PGE according to Example 1 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0057]
As is clear from FIG. 19, carnosol is PGE when it is not included. 2 The production amount was about 7 ng / ml medium, which was reduced to about 3.5 ng / ml medium with a 10 μM carnosol concentration solution. Carnosol is therefore an excellent PGE 2 It had a production inhibitory effect.
[0058]
Example 20
(Inhibitory effect of carnosol on IL-1α production)
Using carnosol, the IL-1α production inhibitory effect was tested according to Example 4. The results are shown in FIG.
[0059]
As is apparent from FIG. 20, when carnosol does not contain carnosol, IL-1α production was about 50 pg / ml, compared with carnosol concentration of about 21 pg / ml with 10 μM solution and about 16 pg with 20 μM solution. / Ml. Therefore, carnosol had an excellent IL-1α production inhibitory effect.
[0060]
Example 21
(Inhibitory effect of carnosol on IL-6 production)
Using carnosol, the IL-6 production inhibitory effect was tested according to Example 5. The results are shown in FIG.
[0061]
As is clear from FIG. 21, when carnosol does not contain carnosol, IL-6 production was about 23 ng / ml, compared with carnosol concentration of about 19 ng / ml with 10 μM solution and about 17 ng with 20 μM solution. To about 11 ng / ml with a 40 μM solution. Therefore, carnosol had an excellent IL-6 production inhibitory effect.
[0062]
Preparation Example 7
[Preparation of Novara extract]
A
[0063]
Example 22
(Pole of Novara extract) 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using
[0064]
As is apparent from FIG. 22,
[0065]
Example 23
(IL-1α production inhibitory effect of Novara extract)
Using a
[0066]
As can be seen from FIG. 23, when the
[0067]
Example 24
(IL-6 production inhibitory effect of Novara extract)
Using a
[0068]
As is clear from FIG. 24, the
[0069]
Preparation Example 8
[Preparation of strawberry extract]
A
[0070]
Example 25
(PGE of strawberry extract 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using 50% ethanol extract of strawberry 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0071]
As is clear from FIG. 25, the 50% ethanol extract of strawberry is PGE when it does not contain the strawberry extract. 2 The production amount was about 7.5 ng / ml medium, but the strawberry extract concentration 1.0% solution was reduced to about 6 ng / ml medium, and the 2.0% solution was reduced to about 4.5 ng / ml medium. . Therefore,
[0072]
Example 26
(IL-1α production inhibitory effect of strawberry extract)
Using a 50% ethanol extract of strawberry, the IL-1α production inhibitory effect was tested according to Example 4. The results are shown in FIG.
[0073]
As is clear from FIG. 26, when the
[0074]
Example 27
(IL-6 production inhibitory effect of strawberry extract)
Using a Notigo 50% ethanol extract, an IL-6 production inhibitory effect was tested according to Example 5. The results are shown in FIG.
[0075]
As apparent from FIG. 27, the
[0076]
Preparation Example 9
[Preparation of the extract of Yukinoshita]
Using the foliage of Yukinoshita, a 50% ethanol extract of Yukinoshita was obtained in the same manner as in Preparation Example 2.
[0077]
Example 28
(PGE of Yukinoshita extract 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using 50% ethanol extract of Yukinoshita 2 The production suppression effect was tested. The results are shown in FIG.
[0078]
As is clear from FIG. 28, the 50% ethanol extract of Yukishinoshita is PGE when the Yukinoshita extract is not included. 2 The yield was reduced from about 2 ng / ml medium to about 0.6 ng / ml medium with a 0.5% solution of the Yukinoshita extract and about 0.5 ng / ml medium with a 1.0% solution. . Therefore,
[0079]
Example 29
(IL-1α production inhibitory effect of Yukinoshita extract)
Using a 50% ethanol extract of Yukinoshita, the IL-1α production inhibitory effect was tested according to Example 4. The results are shown in FIG.
[0080]
As can be seen from FIG. 29, when the 50% ethanol extract of Yukishinota does not contain the Yukinoshita extract, the yield of IL-1α was about 50 pg / ml. To about 40 pg / ml and 1.0% solution to about 35 pg / ml. Therefore, the 50% ethanol extract of Yukinoshita had an IL-1α production inhibitory effect.
[0081]
Example 30
(IL-6 production inhibitory effect of Yukinoshita extract)
Using a 50% ethanol extract of Yukinoshita, the IL-6 production inhibitory effect was tested according to Example 5. The results are shown in FIG.
[0082]
As is clear from FIG. 30, the 50% ethanol extract of Yukishinota had a IL-6 production amount of about 23 ng / ml when the Yukinoshita extract was not included. To about 18 ng / ml and 2.0% solution to about 14 ng / ml. Therefore,
[0083]
Preparation Example 10
[Preparation of Kudzu Extract]
Using the scraps and leaves of the scrap, a 50% scrap extract of ethanol was obtained in the same manner as in Preparation Example 2.
[0084]
Example 31
(PGE of waste extract 2 Production suppression effect)
Using
[0085]
As can be seen from FIG. 31, the
[0086]
Example 32
(Inhibitory effect of waste extract on IL-1α production)
A test for inhibiting IL-1α production was carried out in accordance with Example 4 using a 50% waste ethanol extract. The results are shown in FIG.
[0087]
As can be seen from FIG. 32, when the waste extract of 50% ethanol was not contained, the IL-1α production amount was about 50 pg / ml at a waste extract concentration of 1.0%. It was reduced to about 40 pg / ml at 2.0% to about 42 pg / ml. Therefore, the
[0088]
Example 33
(Inhibitory effect of waste extract on IL-6 production)
A test for the inhibitory effect on IL-6 production was carried out in accordance with Example 5 using an extract of 50% ethanol. The results are shown in FIG.
[0089]
As can be seen from FIG. 33, in the case of the 50% ethanol extract, when the waste extract is not contained, the IL-6 production amount was about 23 ng / ml. To about 19 ng / ml and 2.0% solution to about 11 ng / ml. Therefore, the
[0090]
Preparation Example 11
[Preparation of lemongrass extract]
[0091]
Example 34
(Lemongrass extract PGE 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using
[0092]
As is clear from FIG. 34, the
[0093]
Example 35
(IL-1α production inhibitory effect of lemongrass extract)
Using a
[0094]
As is clear from FIG. 35, when the
[0095]
Example 36
(IL-6 production inhibitory effect of lemongrass extract)
Using a
[0096]
As is clear from FIG. 36, the
[0097]
Preparation Example 12
[Preparation of snowy willow extract]
A
[0098]
Example 37
(PGE of snow willow extract 2 Production suppression effect)
PGE according to Example 1 using a
[0099]
As is clear from FIG. 37, the
[0]
Example 38
(IL-1α production inhibitory effect of snow willow extract)
A test of IL-1α production inhibitory effect was conducted in accordance with Example 4 using a
[0]
As is clear from FIG. 38, in the case of the
[0]
Example 39
(IL-6 production inhibitory effect of snow willow extract)
The test of IL-6 production inhibitory effect was conducted according to Example 5 using a
[0]
As is clear from FIG. 39, in the case of the
[0]
Example 40
Squalene, cetylisooctanoate and microcrystalline wax are dissolved by heating, and then clay mineral and POE glycerol triisostearate (surfactant) are added, adjusted to 70 ° C, and uniformly dispersed and dissolved to obtain an oily gel. It was.
Next, a primrose extract of a predetermined concentration was dissolved in purified water, adjusted to 70 ° C., and slowly added into the oily gel with sufficient stirring.
After uniformly mixing with a homomixer, the mixture was deaerated and filtered, and then cooled to 30 ° C. to obtain a cream. The blending ratio of each component is as follows.
[0]
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Primrose extract 0.01
Water remaining
[0]
Example 41
Using the cherry extract, a cream having the following composition was obtained.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Sakura extract 0.01
Water remaining
[0]
Example 42
Using the cycad extract, a cream having the following composition was obtained.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Cycad extract 0.1
Water remaining
[0]
Example 43
A cream having the following composition was obtained using Novara extract.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Novara extract 0.1
Water remaining
[0]
Example 44
Using the strawberry extract, a cream having the following composition was obtained.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Strawberry extract 0.1
Water remaining
[0]
Example 45
Using the Yukinoshita extract, a cream having the following composition was obtained.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Yukinoshita extract 0.1
Water remaining
[0]
Example 46
Using the kuzu extract, a cream having the following composition was obtained.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Scrap extract 0.1
Water remaining
[0]
Example 47
A cream having the following composition was obtained using the lemongrass extract.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Lemongrass extract 0.1
Water remaining
[0]
Example 48
A cream having the following composition was obtained using a snowy willow extract.
Composition ratio (wt%)
Cetyl isooctanoate 8.5
Clay mineral 1.3
POE glycerol
Triisostearic acid ester 0.2
Snowy willow extract 0.1
Water remaining
[0]
【The invention's effect】
According to the present invention, an anti-inflammatory agent having high anti-inflammatory activity and at the same time, PGE 2 Production inhibitors, IL-1α production inhibitors, IL-6 production inhibitors and antiallergic agents can be provided.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 PGE of primrose extract 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 2 PGE fraction of primrose extract 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
[Fig. 3] PGE of flavonoids derived from primrose 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 4 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of primrose extract.
FIG. 5 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of primrose extract.
FIG. 6 is a graph showing the effect of primrose extract on human epidermal cell growth.
FIG. 7: PGE of
FIG. 8 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of a 50% rosemary ethanol extract.
FIG. 9 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a 50% rosemary ethanol extract.
FIG. 10: PGE of carnosic acid 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 11 is a graph showing the inhibitory effect of carnosic acid on IL-1α production.
FIG. 12 is a graph showing the inhibitory effect of carnosic acid on IL-6 production.
FIG. 13: PGE of
FIG. 14 is a graph showing the inhibitory effect of
FIG. 15 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a
FIG. 16: PGE of 50% ethanol extract of cycad 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 17 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of 50% ethanol extract of cycad.
FIG. 18 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a 50% ethanol extract of cycad.
FIG. 19: Carnosol PGE 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 20 is a graph showing the inhibitory effect of carnosol on IL-1α production.
FIG. 21 is a graph showing the inhibitory effect of carnosol on IL-6 production.
FIG. 22: PGE of
FIG. 23 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of
FIG. 24 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of
FIG. 25: PGE of 50% ethanol extract of strawberry 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 26 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of
FIG. 27 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of
FIG. 28: PGE of 50% ethanol extract of Yukinoshita 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 29 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of a 50% ethanol extract of Yukinoshita.
FIG. 30 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a 50% ethanol extract of Yukinoshita.
FIG. 31: PGE of 50% ethanol extract of waste 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 32 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of a 50% waste ethanol extract.
FIG. 33 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a 50% waste extract of ethanol.
FIG. 34: PGE of
FIG. 35 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of a
FIG. 36 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a
FIG. 37: PGE of 50% ethanol extract of snow willow 2 The graph which shows a production inhibitory effect.
FIG. 38 is a graph showing the IL-1α production inhibitory effect of a
FIG. 39 is a graph showing the IL-6 production inhibitory effect of a
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