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JP4719669B2 - 移動度シフトアッセイ干渉の低減 - Google Patents
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Description

（関連出願とのクロスリファレンス）
本願は米国仮特許出願第６０／４６２，６３６号（出願日２００３年４月１４日）及び６０／５００，１７７号（出願日２００３年９月４日）の優先権を主張し、その全開示内容を参考資料として本明細書に組込む。
（発明の技術分野）
本発明は移動度シフトアッセイにおける干渉を低減するための方法と組成物の分野に関する。本発明は例えば移動度シフトアッセイに干渉するサンプル成分をブロックするための荷電ポリマーと、干渉を低減するためのこれらのポリマー及び組成物の対応する使用方法を提供する。本発明は更に、マイクロフルイディックデバイスでサンプルを高度に濃縮するための方法の分野にも関する。本発明は例えば荷電キャリヤー分子とサンプルを濃縮するための前記分子の使用方法も提供する。
移動度シフトアッセイは生体分子間の会合を検出及び定量するために有用な方法である。例えば電気泳動又はクロマトグラフィーアッセイで分子の保持時間の変化から結合分子の存在を確認することができる。結合は抗体−抗原相互作用のように特異的な場合と、正荷電分子と負荷電ポリマーのイオン吸引のように非特異的な場合がある。アッセイ結果のずれを防ぐためには、移動度シフトアッセイにおけるサンプル成分の非特異的相互作用に起因する干渉を最小限にする必要がある。
分離媒体での移動度シフト分析は多数の形態をとることができる。例えば、遊離核酸を蛋白質と結合させた場合の保持時間の変化をサイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）により観察することができる。ＳＥＣ樹脂は遊離核酸が侵入するには十分大きく且つ核酸／蛋白質対が侵入するには小さ過ぎる細孔をもつことができる。核酸／蛋白質対はＳＥＣ樹脂の周囲の容積内を迅速に流れ、遊離核酸は樹脂内外の総容積をよりゆっくりと流れる。遊離核酸と核酸／蛋白質対の間には保持時間の「シフト」が生じる。更に、検出された核酸／蛋白質ピークのサイズを解析し、元のサンプル中の蛋白質の量を定量することができる。干渉サンプル成分の存在はシフト検出又は定量アッセイの結果を無効にしかねない。
移動度シフト分析の別例では、大分子の移動を制限し且つ小分子をより自由に流動させるシービングポリマー又はゲルの分離媒体を通して遊離核酸と核酸／蛋白質対をキャピラリー電気泳動（ＣＥ）により分離することができる。ＣＥでは、キャピラリーチューブに直流を流すことにより電気浸透バッファー流を生成する。電流を印加すると、正荷電イオンとそれらに会合した溶媒和水分子（solvating water molecules）がカソードに向かって移動し、電気浸透流を生成する。キャピラリーチューブの内腔に配置したシービングポリマー分離媒体を通してこの流れによりサンプルを輸送し、移動度シフトの検出のためにサンプル分子をサイズにより分離することができる。大きい核酸／蛋白質対は遊離核酸よりも捕捉され、妨害されるので、遅れて媒体から排出される。例えば、蛍光又は吸光度検出器によりキャピラリーチューブからの溶出をモニターし、時間ピークを検出してチャートにプロットし、遊離核酸と核酸／蛋白質対の溶出の時間差ないし「移動度シフト」を測定することができる。
最近、種々の分野、例えばＤＮＡ、ＲＮＡ、蛋白質及び代謝産物の分析でマイクロスケールチャネルデバイスを利用するマイクロフルイディクス技術の応用は著しく進歩している。このようなマイクロフルイディクス技術には、試薬容量の低減、高分解能、操作時間の短縮、及び溶液取り扱いの容易さ等の利点がある。
人体由来サンプル（例えば血液又は細胞溶解液）等の所定の複合サンプルはアッセイ成分と非特異的に結合する干渉成分を含んでいる可能性があるので問題となる。例えば、対象となる特異的結合相互作用が転写因子と特異的ターゲットＤＮＡ配列の結合である場合には、非特異的結合サンプル成分が移動度シフト測定の検出に干渉する恐れがある。干渉成分はターゲットＤＮＡと結合し、分離媒体内を移動しない不溶性複合体となる可能性がある。干渉成分はターゲットＤＮＡと結合することによりノイズの多いバックグラウンドや疑陽性ピークを生じる可能性がある。いずれにせよ、ターゲットＤＮＡの非特異的結合は移動度シフト分析の感度及び／又は確度を低下させる恐れがある。
非特異的結合はＤＮＡ結合蛋白質の研究で問題となっている。この問題は非特許文献１で検討されており、負荷電ＤＮＡ分子と非特異的に結合する可能性のある正荷電蛋白質を洗い流しながらアニオン交換樹脂（ＱＡＥ−Ｓｅｐｈａｄｅｘ）を使用して負荷電血清蛋白質を吸着させている。吸着した蛋白質をＱＡＥ−Ｓｅｐｈａｄｅｘから溶出させた後にＤＮＡ−セルロースにアプライしている。
ＤＮＡ−セルロースと結合した蛋白質をＤＮＡ結合蛋白質として同定している。この技術はＤＮＡ−セルロースと非特異的に結合した所定の正荷電蛋白質を洗い流していると思われるが、洗い流された蛋白質の一部は恐らく同定されていないＤＮＡ結合蛋白質であったと思われる。
ＤＮＡ結合アッセイの前に全正荷電蛋白質を除去する代わりに、ポリアニオンブロッキング剤をアッセイ溶液に添加し、非特異的結合を最小限にすることができる。非特許文献２では、ｐｏｌｙ ｄＩｄＣをＤＮＡ結合ゲル電気泳動移動度シフトアッセイのランニングバッファーに添加し、ＤＮＡに非特異的に結合する蛋白質の影響を低減している。このようなストラテジーでは、ｐｏｌｙ ｄＩｄＣは非特異的ＤＮＡ結合分子についてターゲットＤＮＡと競合することにより、特異的に結合した蛋白質の移動度シフトシグナルを増強しながら非特異的結合干渉を低減することができる。理論的には、ターゲットＤＮＡに特異的なＤＮＡ結合蛋白質は静電的及び特異的結合親和性の両者をもつターゲットＤＮＡとより強力に結合することができるので、正電荷をもつ場合でも検出することができる。このブロッキング技術はＤＮＡ結合蛋白質の検出を強化する方法のひとつであるが、他の型の特異的結合相互作用に起因する移動度シフトの検出を強化する方法であるとは言えない。
移動度シフトはアフィニティー分子と分析物の他の相互作用でも認められる場合がある。移動度シフトは例えば抗体が抗原と結合する場合や、多糖がレクチンと結合する場合に認められる。しかし、これらの分子のクロマトグラフィーや電気泳動ではこれらの分子における多重配座と不安定な電荷密度によりピークの幅が広く、良好に分離されない場合がしばしばみられる。予想されるアフィニティー分子／分析物対が多様であることからも、各対に特別な移動度シフトアッセイの開発が必要である。これらの問題は標準条件下のアッセイで高度に分解するキャリヤーポリマーにアフィニティー分子を結合させることで回避することができる。キャリヤー／アフィニティー分子コンジュゲートを使用する技術の１例は例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む特許文献１「電気泳動法」に記載されている。移動度シフト分析で均一キャリヤー分子をアフィニティー分子に使用すると分解能を改善することができるが、非特異的結合に起因する干渉の問題が残っている。
従って、移動度シフトアッセイ、特にアフィニティー分子キャリヤーを利用するアッセイにおいて干渉をブロックする方法が依然として必要とされている。粗サンプル又は複合サンプルの移動度シフトアッセイは移動分子との非特異的結合相互作用に起因する干渉をブロックすることが可能な組成物、方法及び装置の恩恵を受けることができる。本発明はこれらの構成と以下の記載から明らかになる構成を提供する。
上述のように、移動度シフトアッセイはターゲット分析物分子（本明細書では「目的物質」又は「対象分析物」とも言う）の非常に効率的な分離及び検出が可能である。更に、このような移動度シフトアッセイとマイクロフルイディックデバイスを併用すると、アッセイの効果は増す。マイクロフルイディックデバイスを使用する移動度シフトアッセイの感度を高めるためには、移動度シフトアッセイが実施されるデバイスの分離領域にサンプルを添加する前にサンプル中の目的物質（例えば対象分析物）を濃縮する種々の方法を利用することができ、例えば、（ｉ）濃縮ドメインと分離ドメインの導電率の差を利用するサンプル濃縮法である電場増幅サンプルスタッキング法（Ｆｉｅｌｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｓａｍｐｌｅ Ｓｔａｃｋｉｎｇ：ＦＡＳＳ）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む特許文献２“Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ，Ｄｅｖｉｃｅｓ ａｎｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ｆｏｒ Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｍａｔｅｒｉａｌ Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ”，非特許文献３；非特許文献４，非特許文献５）、（ｉｉ）ＦＡＳＳにおける濃縮ドメインと分離ドメインの間に微小水プラグを挿入することによりサンプルを濃縮する方法である電場増幅サンプル注入法（Ｆｉｅｌｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｓａｍｐｌｅ Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ：ＦＡＳＩ）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む非特許文献６）、（ｉｉｉ）リーディング電解液とトレーリング電解液の間に挟まれたドメインにおけるイオン移動度の差を利用するサンプル濃縮法である等速電気泳動法（Ｉｓｏｔａｃｈｏｐｈｏｒｅｓｉｓ：ＩＴＰ）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む非特許文献７；非特許文献８；及び非特許文献９，非特許文献１０）、（ｉｖ）物質間の等電点の差を利用する濃縮／分離法である等電点電気泳動法（Ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ Ｆｏｃｕｓｉｎｇ：ＩＦ）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む非特許文献１１，非特許文献１２）、及び（ｖ）固相（例えば受容体等の吸着剤を結合した固相）と目的物質の間の特異的相互作用を利用して目的物質を固相に吸着させる濃縮／分離法である固相抽出法（Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ：ＳＰＥ）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む非特許文献１３）が挙げられる。
しかし、上記従来方法を使用することにより目的物質を濃縮する場合には、不要成分（例えば目的物質の検出を妨害する所謂「ノイズ成分」）が目的物質と同時に濃縮されることが多い。その結果、従来方法により濃縮したサンプルを分離及び検出用サンプルとして使用すると、バックグラウンド及びノイズレベルの増加により検出感度が制限される恐れがある。更に、ＦＡＳＳ、ＩＴＰ及びＩＦ等の電気泳動を利用する従来の濃縮法は非常に高分子量又は比較的低電荷の目的物質を効率的且つ高度に濃縮することができない。
即ち、上記濃縮法では、目的物質が球形であると仮定すると、目的物質の移動度は下式：
μｅ＝ｑ／６πηｒ
（式中、μｅは特定イオンの電気泳動移動度であり、ｑはイオンの電荷であり、ηは溶液の粘度であり、ｒはイオンの半径である）により示される。上記式から明らかなように、目的物質が非常に高分子量及び／又は低電荷をもつ場合には、式中のｒが大きく及び／又は式中のｑが小さくなるので目的物質の電気泳動移動度（μｅ）は低下する。従って、このような従来の濃縮法を使用する場合には、非常に高分子量及び／又は低電荷の目的物質を短時間で高度に濃縮することは困難である。更に、従来の濃縮法では、特に目的物質が目的物質と共に濃縮される傾向のある目的物質以外の種々の不要干渉成分（例えばノイズ成分）と複合サンプル中に共存する場合には、サンプル中の目的物質を濃縮するための反応条件を最適化するのは困難なことが多い。これは特に臨床診断分野で使用される血清サンプルの場合に該当し、このようなサンプルは多様な分子量及び電荷分布をもつ種々の被測定成分を含有している。上述のように、特にマイクロフルイディックデバイスと併用してバックグラウンド及びノイズレベルを増加せずに目的物質を高感度で検出できるように目的物質を効率的且つ高度に濃縮するための方法が開発されるならば有利である。本発明はこのような方法と、以下の記載から明らかになる他の構成を提供する。
日本特許出願第ＷＯ０２／０８２０８３号 米国特許出願第１０／２０６，３８６号 Ｂｒｅｈｍ，ＢＢＲＣ ６３：２４−３１，１９７５ Ｃａｒｔｈｅｗら，Ｃｅｌｌ ４３：４３９−４４８，１９８５ Ｗｅｉｓｓ，Ｄ．Ｊ．，Ｓａｕｎｄｅｒｓ，Ｋ．，Ｌｕｎｔｅ，Ｃ．Ｅ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ２００１，２２，５９−６５ Ｂｒｉｔｚ−ＭｃＫｉｂｂｉｎ，Ｐ．，Ｂｅｂａｕｌｔ，Ｇ．Ｍ．，Ｃｈｅｎ，Ｄ．Ｄ．Ｙ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２０００，７２，１７２９−１７３５ Ｒｏｓｓ，Ｄ．，Ｌｏｃａｓｃｉｏ，Ｌ．Ｅ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２００２，７１，５１３７−５１４５ "Ｆｉｅｌｄ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｓａｍｐｌｅ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｉｎ ｈｉｇｈ−ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ"，Ｃｈｉｅｎ，Ｒ．Ｌら，Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９９１，５５９，１４１−１４８ Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｇｅｕｒｔｓ，Ｍ．Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｖｅｒｈｅｇｇｅｎ，Ｔ．Ｐ．Ｅ．Ｍ Ｊ Ｃｈｒｏｍａｔａｇｒ．１９７６，１１９，１２９−１５５ Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｐｅｅｋ，Ｊ．Ａ．Ｆ．Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９７９，１６８，２９３−３１５ Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｐｅｅｋ，Ｊ．Ａ．Ｆ．Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９７９，１６８，３１７−３３２ Ｈｉｒｏｋａｗａ，Ｔ，Ｏｋａｍｏｔｏ，Ｈ．Ｉｋｕｔａ，Ｎ．，ａｎｄ Ｇａｓ，Ｂ．，"Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｏｐｅｒａｔｉｏｎａｌ Ｍｏｄｅｓ ｆｏｒ Ｔｒａｎｓｉｅｎｔ Ｉｓｏｔａｃｈｏｐｈｏｒｅｓｉｓ Ｐｒｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ−ＣＺＥ，"Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ２００１，Ｖｏｌ．１７ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｉｌ８５ "Ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ ｆｏｃｕｓｉｎｇ ｕｓｉｎｇ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔａｔｉｏｎ"，Ｗｅｈｒ Ｔら，Ａｍ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｌａｂ．１９９０，８，２２ "Ｆａｓｔ ｓａｎｄ ｈｉｇｈ−ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｈｕｍａｎ ｓｅｒｕｍ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎｇ ｂｙ ｈｉｇｈ−ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ ｆｏｃｕｓｉｎｇ ｉｎ ｃａｐｉｌｌａｒｉｅｓ"，Ｋｉｌａｒ Ｆ．ら，Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ １９８９，１０，２３−２９ "Ｍｉｃｒｏｃｈｉｐ−ｂａｓｅｄ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ＤＮＡ ｆｒｏｍ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓａｍｐｌｅｓ"，Ｂｒｅａｄｍｏｒｅ Ｍ．ら，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．２００３，７５，１８８０−１８８６
本発明は例えば遊離の（例えば未結合の）アフィニティー分子からの分析物とアフィニティー分子の複合体の分離、特に遊離の（例えば未結合の）コンジュゲートからの分析物及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子のコンジュゲートの複合体の分離に対するサンプル成分干渉を例えば低減し、サンプル中の対象分析物を高感度で特異的に検出又は同定できるようにするための方法及び組成物を提供する。
本発明の方法の代表的１態様では、サンプル中の対象分析物の検出又は同定方法が開示され、通常（ｉ）分析物に対して親和性をもつ１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させて分析物とアフィニティー分子の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法をもつ少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスで分離チャネルを使用することにより、荷電ポリマーの存在下に複合体と未結合のアフィニティー分子を分離する段階と；（ｉｉｉ）複合体を検出して分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定する段階を含み、荷電ポリマーが検出干渉を低減するものである。
本発明の１態様では、少なくとも１個のアフィニティー分子は蛍光色素、発光色素、燐光色素、蛍光蛋白質、発光蛋白質もしくは粒子、放射性トレーサー、化学発光化合物、レドックスメディエーター、起電性化合物、酵素、金コロイド粒子、又は銀粒子等の検出マーカーで標識されている。あるいは、アフィニティー分子が荷電キャリヤー分子とコンジュゲートを形成する場合には、コンジュゲートを形成するアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の少なくとも一方は通常検出マーカーで標識されている。
更に人体に由来するサンプル等のサンプル中の対象分析物の数種の他の測定又は同定方法も開示される。代表的１代替態様では、生体由来サンプル中の分析物の測定又は同定方法が開示され、通常、（ｉ）少なくとも１個が検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物と検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子とを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスのマイクロフルイディックチャネルで荷電ポリマーの存在下に複合体の形成に関与しない検出マーカーで標識された遊離のアフィニティー分子から複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された複合体の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する段階を含み；アフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有するものである。
別の代替態様では、生体由来サンプル中の分析物の測定又は同定方法が開示され、通常、（ｉ）アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートの少なくとも１個が検出マーカーで標識された１個以上のコンジュゲートに、分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物と検出マーカーで標識されたコンジュゲートとを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスのマイクロフルイディックチャネルで荷電ポリマーの存在下に複合体に関与しない検出マーカーで標識されたコンジュゲートから複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された複合体の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する段階を含み；コンジュゲートのアフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じることが可能な性質を有するものである。
本発明の更に別の代替態様では、生体由来サンプル中の分析物の測定又は同定方法が開示され、通常、（ｉ）アフィニティー分子の少なくとも１個又はコンジュゲートの少なくとも１個が検出マーカーで標識された、１個以上のアフィニティー分子及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスのマイクロフルイディックチャネルで荷電ポリマーの存在下に複合体の形成に関与しない検出マーカーで標識された遊離アフィニティー分子又は検出マーカーで標識されたコンジュゲートから複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された複合体の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する段階を含み；アフィニティー分子及びコンジュゲートのアフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
本発明の更に別の代替態様では、生体由来サンプル中の分析物の測定方法が開示され、通常、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物又は検出マーカーで標識された分析物の類似体及び１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させ、サンプル中の分析物とアフィニティー分子との第１の複合体及び標識分析物又は標識類似体とアフィニティー分子との第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスのマイクロフルイディックチャネルで荷電ポリマーの存在下に第２の複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物又は遊離の標識類似体から第２の複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第２の複合体の量又は分離された遊離の標識分析物もしくは分離された遊離の標識類似体の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；アフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものである。
本発明の別の態様は生体由来サンプル中の分析物の測定方法を開示し、通常、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物又は検出マーカーで標識された分析物の類似体及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、サンプル中の分析物とコンジュゲートとの第１の複合体及び標識分析物又は標識類似体とコンジュゲートとの第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスのマイクロフルイディックチャネルで荷電ポリマーの存在下に第２の複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物又は遊離の標識類似体から第２の複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第２の複合体の量又は分離された遊離の標識分析物もしくは分離された遊離の標識類似体の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；コンジュゲートのアフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して標識分析物又は標識類似体と結合して標識分析物又は標識類似体とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより標識分析物又は標識類似体の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
更に別の代替態様では、生体由来サンプル中の分析物の測定方法が開示され、通常、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物又は検出マーカーで標識された分析物の類似体、１個以上のアフィニティー分子、及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、サンプル中の分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとの第１の複合体及び標識分析物又は標識類似体とアフィニティー分子とコンジュゲートとの第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスのマイクロフルイディックチャネルで荷電ポリマーの存在下に第２の複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物又は標識の類似体から第２の複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第２の複合体の量又は分離された遊離の標識分析物もしくは分離された遊離の標識類似体の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；アフィニティー分子及びコンジュゲートのアフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の各分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して標識分析物又は標識類似体と結合して標識分析物又は標識類似体とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより標識分析物又は標識類似体の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
別の代替態様では、サンプル中の分析物の測定方法が開示され、通常、（ｉ）荷電キャリヤー分子と結合した分析物又は荷電キャリヤー分子と結合した分析物の類似体と検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子とに分析物を含有するサンプルを接触させ、荷電キャリヤー分子と結合した分析物又は荷電キャリヤー分子と結合した類似体と標識アフィニティー分子との第１の複合体及びサンプル中の分析物と標識アフィニティー分子との第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に第１の複合体を第２の複合体から分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第１の複合体の量又は第２の複合体の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；アフィニティー分子がサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物又はサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物上の位置でサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体上の位置でサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子が分析物又は類似体と結合して分析物又は類似体とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより第１の複合体の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
本発明は更に荷電キャリヤーポリマーとアフィニティー分子との遊離のコンジュゲートと、サンプル中の分析物とコンジュゲートとの複合体を分離するための組成物に関し、１態様では、分離媒体と荷電ポリマーとを含む。本発明は更に、サンプル中の対象分析物を高感度で特異的に検出又は同定できるように、マイクロフルイディックデバイスを使用することによる分離及び検出前に目的物質（例えば分析物及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体、特に分析物、アフィニティー物質及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体）を高濃度に濃縮するための方法も提供する。本発明は更に、目的物質を容易に濃縮できるように反応条件を最適化するための方法を提供する。
本発明の方法の代表的な１態様では、サンプル中の対象分析物の濃縮方法が開示され、通常（ｉ）アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物とコンジュゲートとの複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の濃縮チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの濃縮チャネルを使用することにより複合体を濃縮する段階を含み；荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の移動特性に変化を生じさせるものである。
本発明は更に、サンプル中の対象分析物を高感度で特異的に検出又は同定できるように、例えば目的物質（例えば分析物及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体、特に分析物、アフィニティー物質及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体）を濃縮し、遊離の（例えば未結合の）アフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲートからの複合体の分離に対するサンプル成分干渉を低減するための方法を提供する。
本発明の方法の代表的な１態様では、サンプル中の対象分析物の検出又は同定方法が開示され、通常、（ｉ）分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに接触させ、分析物とコンジュゲートとの複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の濃縮チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの濃縮チャネルを使用することにより複合体を濃縮する段階と；（ｉｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルを使用することにより複合体と未結合のコンジュゲートとを分離する段階と；（ｉｖ）複合体を検出して分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定する段階を含み；荷電ポリマーが検出干渉を低減するものであり；荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の移動特性に変化を生じさせるものである。
Ｉ．移動度シフトアッセイ
本発明は例えば所謂移動度シフトアッセイに適用することができる。本発明では、移動度シフトアッセイは目的物質（例えば対象分析物）と目的物質に対して親和性を有する物質（例えばアフィニティー分子）を分離及び分析する目的で実施され、これらを接触させて目的物質とアフィニティー物質の複合体を形成させた後にマイクロフルイディックデバイスを使用することにより両者の移動速度差に基づいて複合体に関与しないアフィニティー物質（例えば遊離の又は未結合のアフィニティー物質）から複合体を分離し、分離された複合体又は遊離のアフィニティー物質を分析する。即ち、本発明の移動度シフトアッセイは例えばマイクロフルイディックデバイスを使用して例えばアフィニティー分子とアフィニティー分子／分析物複合体、特に分析物に結合した荷電キャリヤー分子／アフィニティー分子コンジュゲートと分析物に結合していない荷電キャリヤー分子／アフィニティー分子コンジュゲートの移動速度差を検出する。
移動度シフトアッセイとしては、以下の方法を例示することができる：（ｉ）通常、分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子に接触させて分析物とアフィニティー分子とを含む複合体を形成させ、マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー分子から複合体を分離し、分離された複合体又は遊離のアフィニティー分子の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出し、測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する方法；（ｉｉ）通常、分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートに接触させて分析物とコンジュゲートとを含む複合体を形成させ、マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで複合体の形成に関与しない遊離のコンジュゲートから複合体を分離し、分離された複合体又は遊離のコンジュゲートの量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出し、測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する方法；（ｉｉｉ）通常、分析物を含有するサンプルを（ａ）アフィニティー分子と（ｂ）アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートに接触させて分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートを含む複合体を形成させ、マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲートから複合体を分離する段階と、分離された複合体又は遊離のアフィニティー分子（及び／又は遊離のコンジュゲート）の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出し、測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する方法；（ｉｖ）通常、分析物を含有するサンプルを（ａ）検出マーカーで標識された分析物と（ｂ）アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートに接触させて標識分析物とコンジュゲートとを含む複合体を形成させ、マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物から複合体を分離し、分離された複合体又は遊離の標識分析物の量を測定し、測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は標識分析物の存在を同定する方法；及び（ｖ）通常、（ａ）荷電キャリヤー分子で標識された分析物と（ｂ）分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物の両者と結合することができ、少なくとも１個が検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させて荷電キャリヤー分子で標識された分析物と検出マーカーで標識されたアフィニティー分子との複合体を形成させ、検出マーカーで標識されたアフィニティー分子の遊離形態から複合体を分離し、分離された複合体又は検出マーカーで標識された遊離のアフィニティー分子の量を測定し、測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は標識アフィニティー分子の存在を同定する方法。方法（ｉｖ）及び（ｖ）では、分析物の類似体が抗体と結合する能力をもつ限り、分析物の標識類似体を使用することができる。
ＩＩ．本発明の方法
本発明は例えば上記移動度シフトアッセイにおける干渉を低減するための方法、及びこのような方法を実施するために使用される組成物を提供する。本発明の１特徴は上記移動度シフトアッセイで目的物質／アフィニティー物質複合体と複合体に関与しない遊離のアフィニティー物質との分離を荷電ポリマーの存在下に実施し、分離された複合体又は遊離のアフィニティー物質を分析する点にある。本発明では、「目的物質」なる用語は通常、測定又は同定しようとする物質（例えばサンプル中の対象分析物）を意味し、「アフィニティー物質」とは通常、アフィニティー分子及び／又はアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートを意味し、「目的物質／アフィニティー物質複合体」なる用語は分析物／アフィニティー分子の複合体、分析物／アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体又は分析物／アフィニティー分子／アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体を意味する。
サンプルがアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子又はアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート）と特異的に結合する分析物を含有している場合には、複合体は見かけ上大きくなる。この見かけのサイズシフトないし「移動度シフト」が分析物の存在を示す。しかし、アフィニティー物質と非特異的に結合するサンプル成分の存在下（例えば特にアフィニティー物質がキャリヤー分子と共役している場合）では、疑陽性移動度シフトが観察されたり、分離チャネル内を移動しない不溶性複合体が形成される可能性がある。本発明の方法は干渉成分に起因する干渉を低減することができる荷電ポリマーを提供する。
例えば、荷電キャリヤー分子がＤＮＡである移動度シフトアッセイでは、血清成分がアッセイに干渉する。ヘパリン硫酸等の荷電ポリマーを添加すると、干渉を低減することができる。図１Ａは分離媒体におけるコンジュゲートピーク１０とコンジュゲート／分析物複合体ピーク１１の間の移動度シフトの電気泳動図を示す。血清をサンプルに添加すると、図１Ｂに示すように干渉成分は複合体ピーク１１の保持時間、高さ及び面積を変化させる。荷電ポリマーをアッセイに添加すると、図１Ｃに示すように干渉変化を低減することができる。
本発明の方法は例えば以下のように実施することができる。即ち、分析物を含有するサンプルを少なくとも１個のアフィニティー分子に接触させて分析物とアフィニティー分子との複合体を形成させ、約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルを使用することにより、得られた複合体を荷電ポリマーの存在下に未結合のアフィニティー分子から分離する。その後、複合体を検出することにより分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定することができる。
Ａ．荷電ポリマー
本発明の荷電ポリマーはアッセイに干渉するサンプル成分と相互作用することにより移動度シフトアッセイに対する干渉をブロックすることができる。特定理論に拘束するものではないが、逆電荷の干渉サンプル成分がコンジュゲートのアフィニティー分子及び／又は荷電キャリヤー分子と結合するのに対して荷電ポリマーはコンジュゲートのアフィニティー分子及び／又は荷電キャリヤー分子と同一電荷をもつので、このような干渉サンプル成分の結合に起因する移動度シフトアッセイにおける干渉を低減すると考えられる。荷電ポリマーと干渉成分の結合は例えば成分とアフィニティー分子及び／又はコンジュゲートとの非特異的結合に起因する疑陽性移動度シフトや、アフィニティー分子及び／又はコンジュゲート／成分複合体との不溶性複合体の形成に起因するアッセイの不成功を防止することができる。
本発明の荷電ポリマーは例えばサンプル成分と逆の正味電荷（正又は負）をもつポリマーとすることができる。対応するアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）と同一型の（正又は負）正味電荷をもつ荷電ポリマーが好ましい。本発明の荷電ポリマーはポリアニオン性ポリマーを含むことができ、例えばヘパリン、ヘパリン硫酸、コンドロイチン硫酸、デキストラン硫酸、ポリタングステン酸、ホスホタングステン酸、ヒアルロン酸、デルマタン硫酸及びポリアネトールスルホン酸等の多糖類；ＤＮＡ（例えばプラスミドＤＮＡ、仔ウシ胸腺ＤＮＡ、サケ精子ＤＮＡ、セルロースに結合したＤＮＡ、合成ＤＮＡ等）及びＲＮＡ等のポリヌクレオチド；ポリアミノ酸（例えばポリアスパラギン酸、ポリグルタミン酸等）及び合成ポリペプチド等のポリペプチド；ｐｏｌｙ−ｄＩｄＣ、ポリビニル硫酸、ポリアクリレート等の合成高分子化合物；ガラス粒子、コロイドガラス、及び乳白ガラス等のセラミック；並びにそれらの複合体が挙げられる。荷電ポリマーはポリカチオン性ポリマーも含むことができ、例えばキトサン及びその誘導体等の多糖類；ポリリジン、ポリヒスチジン、ポリアルギニン、プロタミン、ヒストン、オルニチン等のポリペプチド；ポリアリルアミン、ポリエチレンイミン、ポリビニルアミン等の合成高分子化合物；スペルミン及びスペルミジン等のポリアミン；カチオン性脂質；セラミック；並びにそれらの複合体が挙げられる。本発明の好適態様では、荷電ポリマーはアニオン性多糖類、好ましくはヘパリン硫酸を含む。
本発明では、上記荷電ポリマーを単独又は適宜組み合わせて使用することができる。
目的物質／アフィニティー物質複合体（例えば分析物／アフィニティー分子複合体、又は分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体）と複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質（例えば遊離のアフィニティー分子又は遊離のコンジュゲート）を荷電ポリマーの存在下で分離するためには、荷電ポリマーの存在下で分離を実施する。例えば、荷電ポリマーは少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルに存在していることが好ましい。具体的には、分離チャネルに充填した分離媒体に荷電ポリマーを添加することが好ましい。分離媒体に荷電ポリマーが存在することにより、サンプル分析間の干渉サンプル成分のキャリーオーバーを低減することができる。代替又は付加態様では、荷電ポリマーは目的物質と目的物質／アフィニティー物質複合体を含有する溶液（例えば水、ハイブリダイゼーションアッセイ、イムノアッセイ等で使用されるｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファー）中に存在していてもよく、その後、得られた荷電ポリマーと目的物質と目的物質／アフィニティー物質複合体を含有する溶液を分離チャネルに添加する。更に、荷電ポリマーは目的物質と目的物質／アフィニティー物質複合体を含有する溶液をマイクロフルイディックデバイスに添加するために使用する溶液中に存在していてもよく、このような溶液としては、例えば分離に使用する溶離液やランニングバッファー（例えば水、ハイブリダイゼーションアッセイ、イムノアッセイ等で使用されるｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファー）が挙げられる。
上記方法において、荷電ポリマーを目的物質と目的物質／アフィニティー物質複合体を含有する溶液中に存在させるためには、以下の方法が例示される。（ｉ）目的物質を含有するサンプル又はサンプルを含有する溶液に荷電ポリマーを添加し、得られた目的物質と荷電ポリマーを含有する溶液をアフィニティー物質に接触させる；（ｉｉ）アフィニティー物質を含有する溶液に荷電ポリマーを添加し、得られたアフィニティー物質と荷電ポリマーとを含有する溶液を、目的物質を含有するサンプル又はサンプルを含有する溶液に接触させる；（ｉｉｉ）目的物質を含有するサンプル又はサンプルとアフィニティー物質を含有する溶液を、荷電ポリマーを含有する溶液に添加する；あるいは（ｉｖ）目的物質を含有するサンプル又はサンプルを含有する溶液をアフィニティー物質に接触させ、得られた目的物質と目的物質／アフィニティー物質複合体を含有する溶液を、荷電ポリマーを含有する溶液と混合する。上記方法において、荷電ポリマーは溶液又は乾燥粉末として添加することができる。
本発明では、アフィニティー物質（例えばアフィニティー分子、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート）に接触させる前にサンプルと荷電ポリマーを混合することにより、反応速度の向上及び／又は所定干渉物質の沈殿が得られる。このような沈殿は濾過又は遠心により除去することができる。荷電ポリマーとアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート）の両者を溶液中に加えることにより、分析物が荷電ポリマーとも非特異的に結合する場合であっても、アフィニティー物質を高い親和性で分析物と結合させることができる。従って、荷電ポリマーは少なくとも分離段階（例えば分離媒体中）に存在していることが好ましいが、付加及び／又は代替態様では、目的物質を含有するサンプルをアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）と接触させて複合体を形成させる段階にも存在していてもよい。本発明の好適態様では、サンプル中に存在する目的物質の回収率を増加するために、目的物質／アフィニティー物質複合体と遊離のアフィニティー物質の分離段階（例えば分離媒体中）と、目的物質を含有するサンプルとアフィニティー分子とを接触させて複合体を形成させる段階の両者に荷電ポリマーを存在させる。上記方法において、目的物質を含有するサンプルをアフィニティー分子に接触させて複合体を形成させる段階に荷電ポリマーを存在させるためには、以下の方法が例示される：（ｉ）目的物質を含有するサンプル又はサンプルを含有する溶液に荷電ポリマーを添加し、得られた目的物質と荷電ポリマーを含有する溶液をアフィニティー物質に接触させる；（ｉｉ）アフィニティー物質を含有する溶液に荷電ポリマーを添加し、得られたアフィニティー物質と荷電ポリマーを含有する溶液を、目的物質を含有するサンプル又はサンプルを含有する溶液に接触させる；及び（ｉｉｉ）荷電ポリマーを含有する溶液に目的物質を含有するサンプル又はサンプルとアフィニティー物質を含有する溶液を添加する。上記方法では、荷電ポリマーを溶液又は乾燥粉末として添加することができる。
サンプル溶液は分離媒体に添加する前に固体支持体上の荷電ポリマーと接触させ、干渉成分を吸着させることもできる。荷電ポリマーは場合により荷電ポリマーをサンプルから分離し易くするために固体支持体に結合させることができる。固体支持体は例えば特定荷電ポリマーを固体支持体に結合させるために必要な吸着相互作用又は結合化学に適合可能な任意固体マトリックスとすることができる。固体支持体は例えばガラス、プラスチック、セルロース等とすることができる。固体支持体は例えばビーズ、顆粒、多孔質表面、又は平坦表面の形態とすることができる。多くの場合には、表面積対体積比の大きい固体支持体のほうが小さい支持体よりも干渉成分を効率的にブロックすることができる。荷電ポリマーと固体支持体の結合は例えばＷａｌｓｈ ＭＫら，［Ｊ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（２００１）４７（３）：２２１−３１］に示されているように、当分野で通常使用されている従来方法で実施することができる。
荷電ポリマーを目的物質／アフィニティー物質複合体と遊離のアフィニティー物質の分離段階に存在させる場合には、分離段階（例えば分離チャネル内の分離媒体中）における荷電ポリマーの濃度は使用する荷電ポリマーの種類に応じて変えることができる。通常、荷電ポリマーの濃度は荷電ポリマーの存在が移動度シフトアッセイにおいて分析物／アフィニティー分子複合体と任意の遊離のアフィニティー分子の分離、特に分析物／アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体と遊離のコンジュゲートの分離に対するサンプル成分の干渉を低減し得る任意の濃度とすることができる。分離チャネル（例えば分離媒体内）における荷電ポリマーの濃度は通常、約０．０１〜５％（ｗ／ｖ）、好ましくは約０．０５〜２％（ｗ／ｖ）、より好ましくは約０．５〜１．５％（ｗ／ｖ）、例えば約１％（ｗ／ｖ）である。
荷電ポリマーを目的物質を含有するサンプルをアフィニティー物質に接触させて複合体を形成させる段階に存在させる場合には、溶液（例えばバッファー）中に存在させる荷電ポリマーの濃度は使用する荷電ポリマーの種類に応じて変えることができる。通常、荷電ポリマーの濃度は荷電ポリマーの存在が分析物とアフィニティー物質の相互作用に影響を与えずに干渉を低減できる任意濃度とすることができる。目的物質とアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子、アフィニティー／キャリヤー分子のコンジュゲート）を含有する溶液中の荷電ポリマーの濃度は通常、約０．００１〜２％（ｗ／ｖ）、例えば約０．０１〜２％（ｗ／ｖ）、好ましくは約０．００１〜１％（ｗ／ｖ）、例えば約０．０２〜１％（ｗ／ｖ）、より好ましくは約０．００１〜０．０５％（ｗ／ｖ）、例えば約０．０２５〜０．５％（ｗ／ｖ）、例えば約０．０１％〜０．０５％（ｗ／ｖ）である。
Ｂ．サンプル
本発明のサンプルは潜在的に対象分析物を含有する任意材料とすることができる。サンプルとしては例えば血清、血漿、全血、組織抽出物、細胞抽出物、核抽出物、培地、微生物培養抽出物、分子ライブラリーのメンバー、臨床サンプル、唾液検体、大便検体、脳髄液、尿サンプル、尿道−性器スワブ、咽喉スワブ、環境サンプル及び／又は類似物が挙げられる。分析物が溶液中に遊離していない場合には、粉砕、溶解、抽出、濾過、遠心、及び当分野で公知の他の適切な技術により溶液中に放出させることができる。換言するならば、本発明を適用可能なサンプルとしては、体液（例えば血清、血漿、脳髄液、滑液、リンパ液等）、排泄物（例えば尿、糞便等）、生体由来検体（例えば喀出物、膿状物、皮膚剥離物等）、環境検体（例えば飲食物、水道水、海水、湖沼水、河川水、工場廃水、半導体洗浄液、医療器具洗浄液等）、並びに水及び当分野で通常使用されるバッファー（例えばｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー等）に溶解することにより再構成されたそれらの処理物が例示される。
Ｃ．対象分析物（目的物質）
分析物としては例えばペプチド鎖（例えばＣペプチド、アンギオテンシンＩ等）、蛋白質［例えばイムノグロブリンＡ（ＩｇＡ）、イムノグロブリンＥ（ＩｇＥ）、イムノグロブリンＧ（ＩｇＧ）、イムノグロブリンＭ（ＩｇＭ）、イムノグロブリンＤ（ＩｇＤ）、β２−マイクログロブリン、アルブミン、それらの分解産物］、フェリチン等の血清蛋白質；アミラーゼ、アルカリホスファターゼ、γ−グルタミル−トランスフェラーゼ、酸性ホスファターゼ、リパーゼ（例えば膵、胃等）、クレアチンキナーゼ（例えばＣＫ−１、ＣＫ−２、ｍＣＫ等）、乳酸デヒドロゲナーゼ（例えばＬＤＨ１〜ＬＤＨ５等）、グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ（例えばＡＳＴｍ、ＡＳＴｓ等）、グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ（例えばＡＬＴｍ、ＡＬＴｓ等）、コリンエステラーゼ（例えばＣｈＥ１〜ＣｈＥ５等）、ロイシンアミノペプチダーゼ（例えばＣ−ＬＡＰ、ＡＡ、ＣＡＰ等）、レニン、蛋白質キナーゼ、チロシンキナーゼ等の酵素蛋白質；微生物（例えば結核菌、肺炎球菌、ジフテリア菌、髄膜炎菌、淋菌、ブドウ球菌、連鎖球菌、腸内細菌、大腸菌、ピロリ菌等の細菌、風疹ウイルス、ヘルペスウイルス、肝炎ウイルス、ＡＴＬウイルス、ＡＩＤＳウイルス、インフルエンザウイルス、アデノウイルス、エンテロウイルス、ポリオウイルス、ＥＢウイルス、ＨＡＶ、ＨＢＶ、ＨＣＶ、ＨＩＶ、ＨＴＬＶ等のウイルス、カンジダ、クリプトコッカス等の真菌類、レプトスピラ、梅毒トレポネーマ等のスピロヘータ、クラミジア、マイコプラズマ等）に由来する蛋白質又はペプチド又は糖鎖抗原；喘息、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎等のアレルギーの原因となる各種アレルゲン［例えばハウスダスト、コナヒョウダニ（Ｄｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓ ｆａｒｉｎａｅ）、ヤケヒョウヒダニ（Ｄｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓ ｐｔｅｒｏｎｙｓｓｉｎｕｓ）等のダニ、スギ、ヒノキ、スズメノヒエ、ブタクサ、オオアワガエリ（Ｐｈｌｅｕｍ ｐｒａｔｅｎｓｅ）、ハルガヤ（Ａｎｔｈｏｘａｎｔｈｕｍ ｏｄｏｒａｔｕｍ）、ライ麦等の花粉、ネコ、イヌ、カニ等の動物、コメ、卵白等の食物、真菌、昆虫、木材、薬剤、化学物質等］；リポ蛋白質等の脂質；トリプシン、プラスミン、セリンプロテアーゼ等のプロテアーゼ；αフェトプロテイン（ＡＦＰ）、前立腺特異抗原（ＰＳＡ）、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、ＰＧＩ、ＰＧＩＩ、α２−マクログロブリン等の腫瘍マーカー蛋白質抗原；糖鎖（例えばＣＡ１９−９、ＰＩＶＫＡ−ＩＩ、ＣＡ１２５、例えば癌細胞により生産される特殊な糖鎖を有する物質が有する糖鎖等の腫瘍マーカー糖鎖抗原糖鎖、例えばＡＢＯ糖鎖抗原等）；レクチン（例えばコンカナバリンＡ、レンズマメレクチン、インゲンマメレクチン、チョウセンアサガオレクチン、小麦胚芽レクチン等）；リン脂質（例えばカルジオリピン等）；リポ多糖類（例えばエンドトキシン等）；化学物質［例えば、ステロイドホルモン、ヒト絨毛性ゴナドトロピン（ｈＣＧ）、ＰＴＨ、Ｔ３、Ｔ４、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）、インスリン、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、ＦＳＨ、プロラクチン等のホルモン、例えばトリブチル錫、ノニルフェノール、４−オクチル−フェノール、フタル酸ジ−ｎ−ブチル、フタル酸ジシクロヘキシル、ベンゾフェノン、オクタクロロスチレン、フタル酸ジ−２−エチルヘキシル）等の環境ホルモン］；受容体（例えばエストロゲン、ＴＨＳ等に対する受容体）；リガンド（例えばエストロゲン、ＴＳＨ等）；核酸；キャリヤー蛋白質と共役した分析物；核酸と共役した分析物及びこれらに対する抗体が挙げられる。これに関連して、本発明でアフィニティー分子として使用される抗体には、パパインもしくはペプシン等のプロテイナーゼによる分解又は化学分解により生産された分解産物としてのＦａｂ、Ｆａｂ’又はＦ（ａｂ’）２フラグメントも包含される。本発明は例えば以下の分析物、例えばαフェトプロテイン、血清蛋白質、腫瘍マーカー、酵素、ホルモン、ＨＣＧ、ＴＳＨ、ＦＳＨ、ＬＨ、キャリヤー蛋白質と共役した分析物、核酸と共役した分析物等を測定するのに有用である。
Ｄ．アフィニティー分子
アフィニティー分子（例えばアフィニティー物質）はサンプル中の対象分析物に対して特異的親和性をもつ任意分子とすることができ、例えば抗体、抗体のＦａｂ、Ｆ（ａｂ’）２又はＦａｂ’フラグメント、抗体可変領域、レクチン、アビジン、受容体、アフィニティーペプチド、アプタマー、及びＤＮＡ結合蛋白質からなる群から選択することができる。アフィニティー分子は例えば酵素、抗体、ホルモン、サイトカイン、構造成分、シグナリング分子、及び所定受容体のリガンド等として機能し、場合により腫瘍マーカー、炎症マーカー、及び感染性疾患マーカーとして認識されるリガンド（例えばウイルス粒子、細菌細胞、蛋白質、ペプチド、炭水化物、抗原、脂質、ステロイド、小化学物質等）に対して特異的親和性を有することができる。これらのアフィニティー分子としては、ＡＦＰ、ｈＣＧ、ＴＳＨ、ＦＳＨ、ＬＨ、インターロイキン、Ｆａｓリガンド、ＣＡ１９−９、ＣＡ１２５、ＰＳＡ、ＨＢｓＡｇ、抗ＨＩＶ抗体、Ｔ４、及び／又は類似物が挙げられる。更に、キャリヤー蛋白質と共役したリガンド、核酸と共役したリガンド、細胞内蛋白質、シグナリング分子、及び／又は類似物も挙げられる。本発明で使用されるアフィニティー分子としては、例えば、蛋白質−蛋白質相互作用、蛋白質−化学物質相互作用、又は化学物質−化学物質相互作用に応じて目的物質と結合することが可能な性質を有するものが挙げられる。具体的には、抗原−抗体相互作用、糖鎖−レクチン相互作用、酵素−インヒビター相互作用、蛋白質−ペプチド鎖相互作用、染色体もしくは核酸鎖−核酸鎖相互作用、ヌクレオチド−リガンド相互作用又は受容体−リガンド相互作用に基づいて結合するものが挙げられる。上記対における物質の一方が目的物質である場合には、他方はアフィニティー分子である。例えば、目的物質が抗原である場合には、アフィニティー分子は抗体であり、目的物質が抗体である場合には、アフィニティー分子は抗原である（他の上記対についても同様）。アフィニティー分子の具体例は上記分析物と同じである。
特に、以下のアフィニティー分子、例えば抗体、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２又はＦａｂ’フラグメント、抗体可変領域、上記レクチン、アビジン、受容体、アフィニティーペプチド、アプタマー、及び／又はＤＮＡ結合蛋白質を使用することが好ましい。本発明では、上記アフィニティー分子を単独で使用してもよいし、適宜組み合わせて使用してもよい。２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子は他の全アフィニティー分子と異なる目的物質上の位置で目的物質と結合する。検出マーカーで標識された分析物又は検出マーカーで標識された分析物の類似体を使用することにより競合アッセイでアフィニティー分子を使用する場合には、サンプル中の分析物及び標識分析物に対するアフィニティー分子の親和性は同一であることが好ましく、又はサンプル中の分析物及び標識類似体に対するアフィニティー分子の親和性は同一であることが好ましい。
本発明の上記方法では、アフィニティー分子の濃度は目的物質の検出限界に応じて可変である。通常、アフィニティー分子が反応混合物中の規定検出限界に対応する濃度で分析物と完全に結合することができる濃度よりも高濃度にアフィニティー分子を維持することが望ましい。反応混合物中の濃度は検出限界の２倍以上に維持することが好ましく、５倍以上がより好ましい。２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子の濃度は上記濃度範囲から選択される。
本発明で使用されるアフィニティー分子は通常、所定の従来検出法により測定（例えば検出）できるものであるか又は検出マーカーで標識することができるものである。このような性質を有する分子を使用することにより、サンプル中の分析物を測定することが可能になる。分析物自体が所定の方法により検出できるもの（例えば酵素等）である場合、又は分析物がアフィニティー分子なしに検出マーカーと直接結合できる場合には、アフィニティー分子が上記のような検出可能な性質を有さない場合でもサンプル中の分析物を測定することができる。所定方法によりそれ自体検出可能な分析物の例としては、酵素、色素、蛍光物質、発光物質、紫外線領域に吸収をもつ物質（例えばＤＮＡ）等が挙げられる。２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、全アフィニティー分子がこのような検出可能な性質を有する必要はない。
アフィニティー分子（又はアフィニティー分子／キャリヤー分子のコンジュゲート）を検出マーカーで標識する場合には、検出マーカーとしては、例えば、酵素イムノアッセイ（ＥＩＡ）、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、蛍光イムノアッセイ（ＦＩＡ）、ハイブリダイゼーションアッセイ等の本発明の分野で従来使用されているものが挙げられる。このような物質としては、例えば、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）、β−ガラクトシダーゼ（β−Ｇａｌ）、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）、マイクロペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ（ＧＯＤ）、グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ルシフェラーゼ等の酵素；クーマシーブリリアントブルーＲ２５０、メチルオレンジ等の色素；９９ｍＴｃ、１３１Ｉ、１２５Ｉ、１４Ｃ、３Ｈ、３２Ｐ、３５Ｓ等の放射性トレーサー；フルオレセイン、ローダミン、ダンシル、フルオレスカミン、クマリン、ナフチルアミン、又はこれらの誘導体、シアニン型蛍光色素又はオキサジン型蛍光色素［例えばＣｙシリーズ色素（Ｃｙ３、Ｃｙ５、及びＣｙ５．５等：Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｏｒｐ．）、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒシリーズ色素（Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ６４７、４８８、５９４等：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ、Ｉｎｃ．）、ＤＹシリーズ色素（ＤＹ−６３０、６３３、６３５、６４０、６５０、６５５、６５６、７８０、５５０等：ＭｏＢｉＴｅｃ ＧｍｂＨ、Ｇｏｅｔｔｉｎｇｅｎ Ｇｅｒｍａｎｙ）、ＥＶＯｂｌｕｅ（登録商標）３０（ＭｏＢｉＴｅｃ ＧｍｂＨ、Ｇｏｅｔｔｉｎｇｅｎ Ｇｅｒｍａｎｙ）］等の蛍光色素；希土類蛍光色素［例えばサマリウム（Ｓｍ）、ユーロピウム（Ｅｕ）、テルビウム（Ｔｂ）又はジスプロシウム（Ｄｙ）等の希土類金属と、例えば４，４’−ビス（１”，１”，１”，２”，２”，３”，３”−ヘプタフルオロ−４”，６”−ヘキサジオン−６”−イル）クロロスルホ−ｏ−ターフェニル（ＢＨＨＣＴ）、４，７−ビス（クロロスルホニル）−１，１０−フェナントロリン−２，９−ジカルボン酸（ＢＣＰＤＡ）、β−ナフチルトリフルオロ酢酸（β−ＮＴＡ）等のキレート化合物の組み合わせ等］；核酸結合蛍光色素；蛍光性タンパク質；ルシフェリン、イソルミノール、ルミノール、ビス（２，４，６−トリフルオロ−フェニル）オキサレート等の発光色素、発光蛋白質又は粒子；フェノール、ナフトール、アントラセン、又はその誘導体等の紫外線吸収物質；スピンラベル化剤としての性質を有する物質［例えば４−アミノ−２，２，６，６−テトラメチル−ピペリジン−１−オキシル、３−アミノ−２，２，５，５−テトラメチル−ピロリジン−１−オキシル、２，６−ジ−ｔ−ブチル−α−（３，５−ジ−ｔ−ブチル−４−オキソ−２，５−シクロヘキサジエン−１−イリデン）−ｐ−トリルオキシ等のオキシル基をもつ化合物］、燐光色素、化学発光化合物、レドックスメディエーター、起電性化合物、金コロイド粒子、又は銀粒子等が挙げられる。
上記核酸結合蛍光色素は核酸鎖との結合に応じて強い蛍光を発生する。このような核酸結合蛍光色素としては、例えば、核酸鎖の塩基間に取込まれる所謂インターカレーター色素［例えば、アクリジンオレンジ等のアクリジン色素、臭化エチジウム、エチジウムホモダイマー１（ＥｔｈＤ−１）、エチジウムホモダイマー２（ＥｔｈＤ−２）、臭化エチジウム・モノアジド（ＥＭＡ）、ジヒドロエチジウム等のエチジウム化合物、ヨウ化プロピジウム、ヨウ化ヘキシジウム等のヨウ化物化合物、７−アミノ−アクチノマイシンＤ（７−ＡＡＤ）、ＰＯＰＯ−１、ＢＯＢＯ−１、ＹＯＹＯ−１、ＴＯＴＯ−１、ＪＯＪＯ−１、ＰＯＰＯ−３、ＬＯＬＯ−１、ＢＯＢＯ−３、ＹＯＹＯ−３、ＴＯＴＯ−３等（いずれもＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓの商品名）のシアニンダイマー色素；ＰＯ−ＰＲＯ−１、ＢＯ−ＰＲＯ−１、ＹＯ−ＰＲＯ−１、ＴＯ−ＰＲＯ−１、ＪＯ−ＰＲＯ−１、ＰＯ−ＰＲＯ−３、ＬＯ−ＰＲＯ−１、ＢＯ−ＰＲＯ−３、ＹＯ−ＰＲＯ−３、ＴＯ−ＰＲＯ−３、ＴＯ−ＰＲＯ−５等（いずれもＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ Ｉｎｃ．、Ｅｕｇｅｎｅ、ＯＲの商品名）のシアニンモノマー色素；ＳＹＢＲ Ｇｏｌｄ、ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉ及びＳＹＢＲ ＧｒｅｅｎＩＩ、ＳＹＴＯＸ Ｇｒｅｅｎ、ＳＹＴＯＸ Ｂｌｕｅ、ＳＹＴＯＸ Ｏｒａｎｇｅ等（いずれもＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓの商品名）のＳＹＴＯＸ色素］；ＤＮＡ二重螺旋のマイナーグルーブに結合するもの［例えば、４’，６−ジアミノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓの商品名）、五水和物（ビス−ベンズイミド）（Ｈｏｅｃｈｓｔ ３３２５８：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓの商品名）、三塩酸塩（Ｈｏｅｃｈｓｔ ３３３４２：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓの商品名）、ビスベンズイミド色素（Ｈｏｅｃｈｓｔ ３４５８０：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓの商品名）等］；アデニン−チミン配列（Ａ−Ｔ）と特異的に結合するもの［例えば、９−アミノ−６−クロロ−２−メトキシアクリジン（ＡＣＭＡ）、ビス−（６−クロロ−２−メトキシ−９−アクリジニル）スペルミン（アクリジンホモダイマー）等のアクリジン色素；例えば、ヒドロキシスチルバミジン等］等が挙げられる。
検出マーカーによる分析物又はアフィニティー分子の標識はそれ自体公知のＥＩＡ、ＲＩＡ、ＦＩＡ、ハイブリダイゼーションアッセイ等［例えば医化学実験講座第８巻，山村雄一編，第１版，中山書店，１９７１；川生明，図説蛍光抗体法，第１版，ソフトサイエンス社，１９８３；酵素免疫測定法，石川栄治，河合忠，宮井潔，第３版，医学書院，１９８７；Ｍｏｌｅｃｕｌｅｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ．ｅｄ．，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，ａｎｄ Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．（１９８８）１６，３６７１，Ｃｈｕ，Ｂ．Ｃ．ら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．（１９８６）１４，６１１５，Ｊａｂｌｏｓｋｉら，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｉｎｇ，Ｓｈａｎ Ｓ．Ｗｏｎｇ，（１９９１）ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ、ＥＰ１０８８５９２Ａ２、ＥＰ１０６１３７０Ａ２等］で通常使用されている公知標識法や、アビジン（又はストレプトアビジン）とビオチンの反応を利用する通常方法等の当分野で通常使用されている通常方法の任意のものにより実施することができる。
Ｅ．サンプルとアフィニティー分子との接触
分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と接触させるためには、接触段階を実施して分析物とアフィニティー分子の複合体を形成する。このような複合体の作製方法については限定しない。例えば、分析物を含有するサンプルとアフィニティー分子とを例えば水又はｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファーに夫々溶解、分散又は懸濁して液体材料を得、これらの液体材料を相互に混合接触させればよい。あるいは、サンプルとアフィニティー分子とを同時に溶解、分散又は懸濁してもよい。分析物を含有するサンプルが液体である場合には、アフィニティー分子を直接サンプルと混合することができる。上記のように分析物を含有するサンプルが液体である場合には、例えば水又はバッファーに溶解、分散又は懸濁しなくてもよい。上記方法では、バッファーの濃度は本発明の分野で通常使用される範囲から選択される。
本発明の方法では、サンプルをアフィニティー分子と接触させるため、換言するならば、分析物とアフィニティー分子との複合体を形成するためのｐＨと温度は分析物又はアフィニティー分子の性質に依存するので通常規定することは困難である。しかし、複合体の形成を妨げない限り、本発明の分野（例えば公知ＥＩＡ、ＲＩＡ、ＦＩＡ又はハイブリダイゼーションアッセイ）で通常使用されている従来方法に従って条件を選択することができる。即ち、接触（例えば形成）は通常ｐＨ約２〜１０、好ましくはｐＨ５〜９で通常０〜９０℃、好ましくは５〜４０℃の温度で実施することができる。複合体の形成に必要な反応時間は分析物とアフィニティー分子の性質によって異なるので、反応はそれらの性質に応じて数秒間から数時間実施することができる。
分析物を含有するサンプルと１個以上のコンジュゲートとを接触させる段階も種々の方法で実施することができる。即ち、（ｉ）マイクロフルイディックデバイスを使用せずに独立してサンプルとコンジュゲートとを接触させて分析物とコンジュゲートとの複合体を形成させた後、得られた複合体を含有する溶液をマイクロフルイディックデバイスに添加して複合体を濃縮するか、又は（ｉｉ）サンプルとコンジュゲートとをマイクロフルイディックデバイスに添加し、分析物を含有するサンプルと１個以上のコンジュゲートとを接触させる段階と、得られた複合体を濃縮する段階をマイクロフルイディックデバイスで同時に実施する。
接触段階と濃縮段階を同時に連続的に実施することが好ましく、約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する濃縮チャネルに流体的に接続されたチャネルで分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに接触させて分析物とコンジュゲートとの複合体を形成させる段階と、約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の濃縮チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスで濃縮技術を使用することにより複合体を濃縮する段階を含む方法により実施するとより好ましい。上記方法では、濃縮チャネルに流体的に接続されたチャネルは上記分離チャネルと同じ特性（材料、形状等）とすることができる。
Ｆ．コンジュゲート
分析物／アフィニティー分子複合体と遊離のアフィニティー分子との分離効率を改善又は増加し、十分な確度で分析物を分析するためには、荷電キャリヤー分子と結合したアフィニティー分子（例えばアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子のコンジュゲート）を上記本発明の方法で使用することができる。即ち、分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子／荷電キャリヤー分子コンジュゲートと接触させて分析物とコンジュゲートとの複合体を形成させ、少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルを使用することにより、得られた複合体を荷電ポリマーの存在下に未結合のコンジュゲートから分離する。その後、複合体を検出することにより分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定することができる。
アフィニティー分子（例えば抗体）と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートをアッセイフォーマットで使用する場合には、分子の大きさに従って分離分析するアッセイにおいて高分解能と検出可能なシグナルを提供しながら、本発明の荷電キャリヤー分子（例えばＤＮＡ又はＲＮＡ等の荷電ポリマー）にアフィニティー分子と結合分析物を担時させることができる。コンジュゲートの荷電キャリヤー分子は例えば高い分解能と感度を提供し、アフィニティー分子は例えば本発明の移動度シフトアッセイに対する特異性を提供する。荷電キャリヤー分子は、電荷対質量比が高く、分子構造の変動が最少であり、分離媒体中で高い分解能を得ることができる。荷電キャリヤー分子を使用すると移動度シフトアッセイで多くの利点が得られる。
非競合アッセイ法では、本発明の荷電キャリヤー分子としては、アフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより、分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせる分子が挙げられる。
競合アッセイ法では、本発明の荷電キャリヤー分子は必要に応じてアフィニティー分子を介して分析物又は分析物の類似体と結合させることにより使用される。即ち、分析物とアフィニティー分子との複合体の分離を改善するために荷電キャリヤー分子と結合した分析物又は分析物の類似体も使用することができる。
荷電キャリヤー分子の使用による分離の改善は例えば、分析物、類似体、アフィニティー分子、荷電キャリヤー分子、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート、分析物（又は類似体）とアフィニティー分子との複合体、標識分析物、標識類似体、標識アフィニティー分子、標識コンジュゲート、標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子との複合体、及び／又は分析物（又は類似体）と標識アフィニティー分子との複合体を分離する場合に有益である。換言するならば、本発明の荷電キャリヤー分子は分析物（又は類似体）と結合して分析物（又は類似体）とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物（又は類似体）とアフィニティー分子（又はその複合体）の分離特性に変化を生じさせ、分析物（又は類似体）とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体の形成に関与しない上記分析物（又は類似体）（例えば分析物又は類似体と荷電キャリヤー分子の両方を含まないもの）から分析物（又は類似体）とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を分離することが可能な性質を有する。
荷電キャリヤー分子は正又は負の正味電荷をもつことができ、正味電荷が負荷電キャリヤー分子が好ましい。対応する荷電ポリマーと同一型（正又は負）の正味電荷をもつ荷電キャリヤー分子を使用することが好ましい。
上記特徴をもつ本発明の荷電キャリヤー分子は例えばシリカ及びアルミナ等の無機金属酸化物；金、チタン、鉄、及びニッケル等の金属；シランカップリング法等により導入された官能基をもつ無機金属酸化物等；種々の微生物及び真核細胞等の生物；アガロース、セルロース、不溶性デキストラン等の多糖類；ポリスチレンラテックス、スチレン−ブタジエンコポリマー、スチレン−メタクリレートコポリマー、アクロレイン−エチレングリコールジメタクリレートコポリマー、スチレン−スチレンスルホネートラテックス、ポリアクリルアミド、ポリグリシジルメタクリレート、ポリアクロレイン被覆粒子、架橋ポリアクリロニトリル、アクリル酸又はアクリル酸エステルコポリマー、アクリロニトリル−ブタジエン、塩化ビニル−アクリル酸エステル及びポリ酢酸ビニル−アクリレート等の合成高分子化合物；赤血球、糖類、核酸鎖（例えばＤＮＡ，ＲＮＡ）、ポリペプチド又はその誘導体（例えばスルホン化ポリペプチド）、蛋白質及び脂質等の生体分子等から選択される。正味電荷が負である荷電キャリヤー分子は核酸鎖（例えばＤＮＡ，ＲＮＡ）又はスルホン化ポリペプチドが好ましく、ＤＮＡ又はＲＮＡがより好ましい。正味電荷が正である荷電キャリヤー分子はカチオン性ポリマーが好ましい。本発明では、核酸鎖（例えばＤＮＡ，ＲＮＡ）又はスルホン化ポリペプチドを含むアニオン性分子が最も好ましい。ＤＮＡは分子が安定しており、当分野で合成及び結合化学実績が豊富であるので特に好ましい。
本発明で使用される核酸鎖はプリン塩基又はピリミジン塩基と、糖部分として五炭糖と、リン酸を含むヌクレオチド残基を基本単位とするものである。各ヌクレオチドはリン酸を介して糖部分の３’及び５’炭素と結合してポリヌクレオチド鎖（例えば、糖部分がリボースであるＲＮＡ及び／又は糖部分がデオキシリボースであるＤＮＡ）を形成する。核酸鎖は１本鎖でも２本鎖でもそれ以上でもよい。本発明で使用される核酸鎖はそれ自体従来方法で製造することができ、例えば、化学合成、微生物、昆虫、動物、植物等に由来する細胞の抽出精製法、プラスミド、ファージ、コスミド等の適切なベクター遺伝子を導入した上記細胞を使用し、細胞をインキュベートし、増殖したベクターを抽出精製する方法、及びＰＣＲ等の遺伝子増殖技術を利用する方法が挙げられる（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等）。得られた核酸鎖を化学分解又は制限酵素等の核酸分解酵素で破壊した後に場合により精製し、所望長の核酸鎖を形成させる。本発明では、上記荷電キャリヤー分子を単独で使用してもよいし、適宜組み合わせて使用してもよい。
例えば種々のヌクレアーゼ活性に対するヌクレオチドの安定性を強化することが知られている任意種の修飾ヌクレオチドを使用して荷電キャリヤー分子を作製することができる。例えば、ヌクレオチドのホスホロチオエート類似体、酸素の代わりにメチレン基をリボース環に含むヌクレオチド、又は２’−糖デオキシ置換基を２’−フルオロ、２’−Ｏ−メチル、２−Ｏ−アルコキシル−及び２’−Ｏ−アリル修飾で置換したヌクレオチドを使用することができる。このような修飾は例えばＮｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１９９７，２５，４４２９−４４４３，Ｓｕｓａｎ Ｍ Ｆｒｅｉｅｒらに記載されている。
荷電キャリヤー分子のサイズは例えば通常、約０．６ｋＤａ〜７００００ｋＤａ、好ましくは約３ｋＤａ〜７０００ｋＤａ、より好ましくは約６ｋＤａ〜約４００ｋＤａとすることができる。キャリヤー分子のサイズは有用な感度と分解能を提供するように例えば分離媒体の型、分離媒体の分離カットオフ、分析物のサイズ、アフィニティー分子のサイズ等に応じて最適化することができる。特に核酸鎖を荷電キャリヤー分子として使用する場合には、核酸鎖の長さは本発明の目的を達成できる限り、通常約１ｂｐ〜１０００００ｂｐ、好ましくは５ｂｐ〜１００００ｂｐ、より好ましくは１０ｂｐ〜１０００ｂｐ、最も好ましくは１０ｂｐ〜５００ｂｐとすることができる。本発明で使用される核酸鎖は本発明の目的を達成する範囲内で適切な基で適宜修飾することができる。
本発明において、荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子との結合は、上記のような検出マーカーによる分析物又はアフィニティー分子の標識と同様に実施することができる。例えば、荷電キャリヤー分子をアフィニティー分子と結合するには、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の夫々の官能基を利用して直接又はリンカー［例えば、４−（ｐ−マレイミドフェニル）酪酸スルホスクシンイミジル（スルホ−ＳＭＰＢ）、４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロ−ヘキサン−１−カルボン酸スルホスクシンイミジル（スルホ−ＳＭＣＣ）、Ｎ−（ε−マレイミド−カプロイルオキシ）スクシンイミド（ＥＭＣＳ）、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＮＨＳ）等］を介して実施することができる。結合は例えば公知ＥＩＡ、ＲＩＡ、ＦＩＡ又はハイブリダイゼーションアッセイ［例えば医化学実験講座第８巻，山村雄一編，第１版，中山書店，１９７１；川生明著，図説蛍光抗体法，第１版，ソフトサイエンス社，１９８３；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等、ＥＰ１０８８５９２Ａ２、ＥＰ１０６１３７０Ａ２等］で利用されているそれ自体公知の標識法や、アビジン（又はストレプトアビジン）とビオチンの反応を利用する従来方法等の当分野で通常使用されている従来方法で実施することができる。
反応性官能基を荷電キャリヤー分子に予め導入した後、反応性官能基を含む荷電キャリヤー分子にアフィニティー分子を上記結合方法で結合することができる。特に、核酸鎖を荷電キャリヤー分子として使用する場合には、反応性官能基を核酸鎖に導入するには、それ自体公知の方法に従って実施することができ、例えば、縮合剤［例えば１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（ＥＤＣ）、塩酸塩（ＷＳＣ）等］の存在下に反応性官能基をもつ化合物（例えばＮ−トリ−フルオロアセチルアミノアルキルアミン等のアミノ基をもつ化合物、シスタミン等のチオール基をもつ化合物、Ｎ−ビオチニルアミノアルキルアミン等のビオチンをもつ化合物、マレイミドアルキルアミン等のマレイミド基をもつ化合物等）を使用してホスホアミダイト結合を形成させることにより、核酸の末端に位置する５’三リン酸基に反応性官能基を導入する方法［Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．（１９８８）１６，３６７１，Ｃｈｕ，Ｂ．Ｃ．ら］；縮合剤［例えば１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（ＥＤＣ）、塩酸塩（ＷＳＣ）等］の存在下に反応性官能基をもつ化合物（例えばＮ−トリフルオロアセチルアミノアルキルカルボン酸等のアミノ基をもつ化合物、Ｎ−ビオチニルアミノアルキル−カルボン酸等のビオチンをもつ化合物、マレイミドアルキルカルボン酸等のマレイミド基をもつ化合物等）を使用して、エステル結合を形成させることにより、核酸の末端に位置する３’ヒドロキシル基に反応性官能基を導入するか、その活性エステル体を直接反応させる方法［Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．（１９８６）１４，６１１５，Ｊａｂｌｏｓｋｉら］；制限酵素で切断したフラグメントのアミノ含有塩基（アデニン，シトシン）が１本鎖として突出している末端（突出末端，付着端）にアミノ反応性リンカーを導入する方法［Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ Ｃｒｏｓｓｌｉｎｋｉｎｇ，Ｓｈａｎ Ｓ．Ｗｏｎｇ，（１９９１）ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ］；反応性官能基をもつヌクレオチドモノマーを、平滑化酵素（Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼ，ＤＮＡ平滑化酵素等）により、１本鎖突出末端を形成する制限酵素で切断したフラグメントに組込む方法（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等）；ハイブリダイゼーションを利用し、１本鎖突出末端を形成する制限酵素で切断したフラグメントの１本鎖部分に対して相補的な配列をもつオリゴヌクレオチドの５’末端に反応性官能基を導入し、制限酵素で切断したフラグメントの１本鎖突出末端にハイブリダイズさせる方法（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等）；ＰＣＲを利用し、５’末端に反応性官能基を導入したＰＣＲプライマーをＰＣＲで使用し、５’末端に反応性官能基を導入した核酸鎖をＰＣＲ産物として得る方法（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等）が挙げられる。こうして、反応性官能基を核酸の末端に導入することができる。１本鎖核酸を使用する場合には、本核酸鎖の５’末端に相補的な配列と５’末端に導入された反応性官能基をもつオリゴヌクレオチドを１本鎖核酸にハイブリダイズさせる方法により、反応性官能基が導入された核酸鎖を作製することもできる（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等）。上記のような反応性官能基としては、例えば、ヒドロキシ基、ハロゲン化アルキル基、イソチオシアネート基、アビジン基、ビオチン基、カルボキシル基、ケトン基、マレイミド基、活性エステル基、スルホン酸ハライド基、カルボン酸ハライド基、アミノ基、スルホン酸基、ピイリジルジオ基、アルデヒド基等が挙げられる。
アフィニティー分子と結合させる核酸鎖の数が不均一の場合には、形成される複合体に存在する核酸鎖の数も不均一になり、複合体の分離が不特定になる。従って、アフィニティー分子と結合させる核酸鎖の数を均一することが好ましい。同じ理由で、核酸鎖１分子と結合するアフィニティー分子の数も１分子にすると適切である。
上記結合方法において、核酸鎖がその両末端にアフィニティー分子を結合することができる官能基を有する場合には、核酸鎖を予め酵素的又は化学的に分解して反応性官能基を一方の末端に導入した後にアフィニティー分子と結合させることができる。あるいは、核酸鎖をアフィニティー分子と結合させ、アフィニティー分子を両末端に結合した中間体を生成し、中間体と結合する核酸鎖を酵素的又は化学的に分解し、アフィニティー分子を核酸の一方の末端に結合した生成物を得る。
結合化学を使用してアフィニティー分子を荷電キャリヤー分子と結合させ、本発明のコンジュゲートを形成させることができる。結合化学はアミノ基、チオール、カルボキシル基、イミダゾール基、スクシンイミド基等との反応を利用することができる。例えばアミン基をもつように修飾したヌクレオチドを含むＤＮＡキャリヤーを溶液中でアフィニティー分子及び両末端ＮＨＳリンカーと混合することにより、ＤＮＡをアフィニティー分子と架橋することができる。アフィニティー分子をキャリヤー分子と結合又は会合又は相互作用させるための他の技術は先にその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込んだ日本特許出願第ＷＯ０２／０８２０８３号「電気泳動法」に詳細に開示されている。
本発明で使用されるアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートは抗体、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２又はＦａｂ’フラグメント、抗体可変領域、レクチン、アビジン、受容体、アフィニティーペプチド、アプタマー、及びＤＮＡ結合蛋白質からなる群から選択される少なくとも１個のアフィニティー分子と、核酸鎖（例えばＤＮＡ，ＲＮＡ）、カチオン性ポリマー及びスルホン化ポリペプチドからなる群から選択される少なくとも１個の荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートが好ましい。抗体、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２又はＦａｂ’フラグメント、抗体可変領域及びアフィニティーペプチドからなる群から選択される少なくとも１個のアフィニティー分子と、核酸鎖（例えばＤＮＡ，ＲＮＡ）及びスルホン化ポリペプチドからなる群から選択される少なくとも１個の荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートがより好ましく、更に、抗体、Ｆａｂ又はＦａｂ’フラグメントから選択される少なくとも１個のアフィニティー分子と、荷電キャリヤー分子として核酸鎖、特にＤＮＡのコンジュゲートが最も好ましい。
本発明では、上記コンジュゲートを単独又は適宜組み合わせて使用することができる。２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子は他の全アフィニティー分子と異なる目的物質上の位置で目的物質と結合する。
上記方法では、コンジュゲートの濃度は目的物質の検出限界によって可変であるので通常、規定することは困難である。しかし、コンジュゲートが反応混合物中の規定検出限界に対応する濃度で分析物と完全に結合することができる濃度よりも高濃度にコンジュゲートを維持することが望ましい。反応混合物中の濃度は検出限界の２倍以上に維持することが好ましく、５倍以上がより好ましい。２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、各コンジュゲートの濃度は上記濃度範囲から選択される。
このようなコンジュゲートは通常、所定の方法により測定（例えば検出）できるものであるか又は検出マーカーで標識することができるものである。即ち、コンジュゲートのアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の少なくとも一方は通常、所定の方法により測定できるものであるか又は検出マーカーで標識することができるものである。このような性質を有するコンジュゲートを使用すると、サンプル中の分析物を測定し易くなる。分析物自体が所定の方法により検出できるもの（例えば酵素等）である場合、又は分析物がアフィニティー分子なしに検出マーカーと直接結合できる場合には、コンジュゲートが上記のような検出可能な性質を有さない場合でもサンプル中の分析物を測定することができる。２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、全コンジュゲートがこのような性質を有する必要はない。
検出マーカーは上記の通りであり、検出マーカーによるコンジュゲート（例えばアフィニティー分子及び／又は荷電キャリヤー分子）の標識は上記のような検出マーカーによる分析物もしくはアフィニティー分子の標識又は荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子の結合と同様に実施することができる。
特に、核酸鎖を荷電キャリヤー分子とするコンジュゲートの場合には、直接又はリンカー［例えばスルホ−ＳＭＰＢ、スルホ−ＳＭＣＣ、ＥＭＣＳ、ＮＨＳ等］もしくは核酸（標識される核酸鎖と異なるものをアフィニティー分子と結合させる；以下、「リンカー核酸鎖」と言う）、ペプチド、蛋白質、糖等（以下、「リンカー物質」と言う）を介してマーカーを核酸鎖と結合させることができる。リンカー物質を介して核酸鎖をマーカーと結合させる場合には、核酸鎖とリンカー物質との結合又はリンカー物質とマーカーとの結合は核酸鎖とアフィニティー分子との結合又はマーカーによるコンジュゲートの標識と同様に実施することができる。
あるいは、リンカー化学を使用して検出マーカーをポリマーに共有結合することもできる。例えば、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＮＨＳ）末端基を有する脂肪族鎖等のリンカーを含む修飾ヌクレオチドを使用して荷電キャリヤー分子としてのＤＮＡを合成することができる。フルオレセインアミン等の検出マーカーはマーカーアミン基上のＮＨＳによる求核攻撃後にポリマーと共有結合することができる。場合により，修飾ヌクレオチドはマーカーに結合したリンカー基により攻撃することができるアミン等のリンカー反応性基を含むことができる。コンジュゲートを検出マーカーで標識又は結合又は会合又は相互作用させるための他の技術は先にその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込んだ日本特許出願第ＷＯ０２／０８２０８３号「電気泳動法」に詳細に開示されている。
リンカー物質を介してマーカーによる核酸鎖の標識を実施するには、マーカーで予め標識されたリンカー物質を核酸鎖と結合させてもよいし、あるいはリンカー物質を核酸鎖と結合させた後にマーカーと結合させてもよいし、あるいは核酸鎖とリンカー物質とマーカーを同時に結合させてもよい。更に、本発明では、マーカーによる核酸鎖の標識は使用するマーカーに応じて分析物／コンジュゲート（核酸鎖）／マーカーの複合体の形成前又は形成と同時又は形成後のいずれに実施してもよい。この修飾に制限はない。特に、予めマーカーで標識されたリンカー物質に核酸鎖を結合させることが好ましい。
例えば、ビオチンを核酸鎖に結合させた後に、予めマーカーで標識されたアビジン（又はストレプトアビジン）に結合させる。こうして、マーカーの量の制御下に核酸鎖を容易に標識することができる。別の場合には、例えば、ビオチンをまず核酸鎖に結合させた後に、予めアビジン（又はストレプトアビジン）を介してビオチンと結合させたマーカーで標識されたリンカー物質（例えばリンカー核酸鎖等）に結合させる。こうして、マーカーの量の制御下に核酸鎖を容易に標識することができる。更に、アビジン（又はストレプトアビジン）１分子はビオチン４分子を結合させることができるので、測定感度を上げるために標識リンカー３分子を結合させることが可能である。
核酸と結合する蛍光色素をマーカーとして使用するには次のように実施することができる。従来方法（例えばＨａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐｒｏｂｅ ａｎｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，７ｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｈａｐｔｅｒ ８；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ Ｉｎｃ．に記載されているような方法）に従い、例えば水又はハイブリダイゼーションアッセイ又はイムノアッセイの分野で通常使用されているバッファー溶液（例えば、ｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等）中にて適切な温度で適切な時間にわたってマーカーを核酸鎖［荷電キャリヤー分子（核酸鎖）／アフィニティー分子コンジュゲート又は分析物と荷電キャリヤー分子／アフィニティー分子コンジュゲートの複合体における核酸鎖を含む］と接触させる。上記方法では、核酸鎖とマーカーの接触は核酸鎖、分析物を含有するサンプル、荷電キャリヤー分子（核酸鎖）／アフィニティー分子コンジュゲート、マーカー、荷電キャリヤー分子（核酸鎖）／アフィニティー分子コンジュゲートとマーカーの複合体等を水又は上記のようなバッファーに直接溶解又は分散又は懸濁するか、あるいは各成分を水又は上記のようなバッファーに溶解又は分散又は懸濁して液体材料とした後に混合して相互に接触させることにより実施することができる。
本発明において、分析物を含有するサンプルを荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子のコンジュゲートに接触させる段階は、上記のような分析物を含有するサンプルとアフィニティー分子の接触と同様に実施することができる。反応条件（例えばｐＨ、温度、反応時間等）はサンプルとアフィニティー分子の上記接触条件と同じである。
Ｇ．アフィニティー分子とコンジュゲートの使用
分析物／アフィニティー分子複合体と遊離のアフィニティー分子との分離効率を更に改善又は増加し、分析物検出の分解能を高めるためには、アフィニティー分子及び荷電キャリヤー分子と結合したアフィニティー分子（例えばアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート）を上記本発明の方法で使用することができる。即ち、分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子とアフィニティー分子／荷電キャリヤー分子コンジュゲートに接触させ、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとの複合体を形成させ、少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルを使用することにより、得られた複合体を荷電ポリマーの存在下に未結合のアフィニティー分子及び／又はコンジュゲートから分離する。その後、複合体を検出することにより分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定することができる。
本発明では、２個以上のアフィニティー分子と２個以上のコンジュゲートを使用することができる。この場合には、各アフィニティー分子（各コンジュゲートのアフィニティー分子を含む）は他の全アフィニティー分子と異なる目的物質上の位置で目的物質と結合する。
アフィニティー分子とコンジュゲートの両者を使用する場合には、アフィニティー分子とコンジュゲートの少なくとも一方は通常、所定従来方法により測定（例えば検出）できるものであるか又は検出マーカーで標識することができるものである。このような性質を有するアフィニティー分子又はコンジュゲートを使用すると、サンプル中の分析物を測定し易くなる。分析物自体が所定方法により検出できるもの（例えば酵素等）である場合、又は分析物がアフィニティー分子もしくはコンジュゲートなしに検出マーカーと直接結合できる場合には、アフィニティー分子とコンジュゲートが上記のような検出可能な性質を有さない場合でもサンプル中の分析物を測定することができる。２個以上のアフィニティー分子又は２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、全アフィニティー分子又は全コンジュゲートがこのような性質を有する必要はない。上記方法において、検出マーカー、検出マーカーによるアフィニティー分子又はコンジュゲートの標識等は上記の通りである。分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子とコンジュゲートに接触させて分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとの複合体を形成させる方法に関して制限はない。例えば、分析物を含有するサンプルとアフィニティー分子とコンジュゲートとを例えば水又はｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファーに夫々溶解、分散又は懸濁して液体材料を得、これらの液体材料を相互に混合接触させればよい。あるいは、サンプルとアフィニティー分子とコンジュゲートとを同時に溶解、分散又は懸濁してもよい。分析物を含有するサンプルが液体である場合には、アフィニティー分子及び／又はコンジュゲートを直接サンプルと混合することができる。上記のように分析物を含有するサンプルが液体である場合には、例えば水又はバッファーに溶解、分散又は懸濁しなくてもよい。
上記方法において、バッファーの濃度は本分野で通常使用されている範囲から選択される。サンプルをアフィニティー分子とコンジュゲートに接触させる段階におけるアフィニティー分子とコンジュゲートの濃度については上記の通りである。反応条件（例えばｐＨ、温度、反応時間等）はサンプルとアフィニティー分子の上記接触条件と同一である。
Ｈ．分離操作
得られた目的物質とアフィニティー物質との複合体（例えば分析物／アフィニティー分子複合体、分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体）を複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）から分離する。複合体と遊離のアフィニティー物質を移動速度の差に基づいて分離することが可能な分離法を適用することができる。この分離では、例えば、本分野で使用されている従来方法である所謂Ｂ／Ｆ分離法を使用することができる。具体例としては、電気泳動（例えば等電点電気泳動、ＳＤＳ−ポリアクリルアミド電気泳動、アガロースゲル電気泳動、アクリルアミド電気泳動）、誘電泳動等の電気を利用する電気的分離法、カラム分析法（例えばゲル濾過カラム分析、イオン交換カラム分析、アフィニティーカラム分析）、マススペクトル質量分析、吸着法、ミセル動電クロマトグラフィー（ＭＥＫＣ）等が挙げられる。特に、等電点電気泳動、ＳＤＳ−ポリアクリルアミド電気泳動、アガロースゲル電気泳動、アクリルアミド電気泳動等の電気泳動又は誘電泳動等の電気的分離法を使用するのが好ましい。より具体的には、効率的冷却条件下と高電圧下に高分離効率で実施できることからキャピラリー電気泳動又は誘電泳動を使用することが好ましい。
更に、特にマイクロフルイディックデバイス及びシステムを使用して分離を行う場合には、対象分析物がサンプル中に非常に低濃度で非常に少量しか存在しない場合が多い。分析物の量はマイクロフルイディック分析システムの検出閾値又はその付近又はそれ以下まで低下することが多い。従って、場合により、対象分析物の検出感度を上げるために（上記及び下記に記載するような）１種以上のオンラインサンプル濃縮又はサンプルスタッキング操作をマイクロフルイディックデバイスで使用することが好ましい。本発明の方法の実施に使用することができるオンラインサンプル濃縮技術の特に有用な１例は、その開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＥｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｇｅｕｒｔｓ，Ｍ．Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｖｅｒｈｅｇｇｅｎ，Ｔ．Ｐ．Ｅ．Ｍ Ｊ Ｃｈｒｏｍａｔａｇｒ．１９７６，１１９，１２９−１５５；Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｐｅｅｋ，Ｊ．Ａ．Ｆ．Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９７９，１６８，２９３−３１５；及びＭｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｐｅｅｋ，Ｊ．Ａ．Ｆ．Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９７９，１６８，３１７−３３２に記載されているような等速電気泳動法（ＩＴＰ）である。ＩＴＰでは、通常夫々十分に高い電気泳動移動度と十分に低い電気泳動移動度をもつリーディング電解液とターミナル電解液の間にサンプルを挿入する。しかし、リーディング電解液とターミナル電解液を他の組み合わせでサンプルプラグの前又は後に配置することもできる。例えばＨｉｒｏｋａｗａ，Ｔ，Ｏｋａｍｏｔｏ，Ｈ．Ｉｋｕｔａ，Ｎ．，ａｎｄ Ｇａｓ，Ｂ．，“Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｏｐｅｒａｔｉｏｎａｌ Ｍｏｄｅｓ ｆｏｒ Ｔｒａｎｓｉｅｎｔ Ｉｓｏｔａｃｈｏｐｈｏｒｅｓｉｓ Ｐｒｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ−ＣＺＥ，”Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ２００１，Ｖｏｌ．１７ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｉｌ８５参照。周知の移動境界原理(moving boundary principles)に従って最終的に定常状態構成に達し、全サンプルゾーンは同一速度で移動する。各移動ゾーンにおけるサンプル濃度はリーディング電解液の濃度に対して自己調節される。本発明では、ＩＴＰを下記実施例２におけるサンプル濃縮法として使用してＡＦＰアッセイを実施し、Ｐｏｌｙ（ｄＩ−ｄＣ）を使用して血清干渉を除去した。本発明の方法の実施に使用可能なＩＴＰ以外のキャピラリー電気泳動で使用される他のサンプル濃縮技術は多種多様のものがあり、電場増幅サンプルスタッキング（ＦＡＳＳ）や固相抽出法（ＳＰＥ）が挙げられる。例えば、同時マルチポート圧力及び界面動電流体制御(electrokinetic fluid control)を使用したマイクロフルイディックチップでのＦＡＳＳはその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む米国特許出願第１０／２０６，３８６号“Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ，Ｄｅｖｉｃｅｓ ａｎｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ｆｏｒ Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｍａｔｅｒｉａｌ Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ”に記載されている。更に、他の最近開発された種々のサンプル濃縮法も本発明の方法の実施に使用することができ、例えばリーディング／ターミナル電解液のｐＨを変化させてサンプルスタッキング領域を形成する方法（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＷｅｉｓｓ，Ｄ．Ｊ．，Ｓａｕｎｄｅｒｓ，Ｋ．，Ｌｕｎｔｅ，Ｃ．Ｅ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ２００１，２２，５９−６５；Ｂｒｉｔｚ−ＭｃＫｉｂｂｉｎ，Ｐ．，Ｂｅｂａｕｌｔ，Ｇ．Ｍ．，Ｃｈｅｎ，Ｄ．Ｄ．Ｙ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２０００，７２，１７２９−１７３５参照）及び／又は温度勾配の存在下で溶液バルク流に対して分析物の電気泳動速度を平衡させる方法（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＲｏｓｓ，Ｄ．，Ｌｏｃａｓｃｉｏ，Ｌ．Ｅ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２００２，７１，５１３７−５１４５参照）が挙げられる。本発明では、上記のような分離法で従来使用されている全てのバッファー、充填剤、処理溶液等の各種試薬等を利用することができる。これらの材料の濃度は場合により公知分離法に従って選択することができる。分離条件（例えばｐＨ、温度、印加電圧、時間等）は公知方法に従って適宜選択することができる。
Ｉ．マイクロフルイディックデバイス
本発明では、目的物質とアフィニティー物質との複合体（例えば分析物／アフィニティー分子複合体、分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体）を複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）から分離するには、通常マイクロフルイディックデバイスと上記分離法に基づく検出器を含むマイクロフルイディックシステムを使用することにより実施することができる。本発明の方法はマイクロフルイディックデバイスでの適用に好適である。最少容量の試薬とサンプルを使用して迅速で正確な移動度シフトアッセイのためにサンプルをマイクロフルイディックデバイスに導入することができる。サンプルとアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）の混合物を低塩バッファーに導入することができ、他方、分離媒体中のバッファーはより高感度とより良好な分解能が得られるようにサンプルボーラスの先端にアッセイ混合物成分を蓄積する「スタッキング」効果を提供するように塩濃度を高くする。例えば迅速スクリーニング、データ獲得及びデータ解析のためにサンプルライブラリーチップ又はマルチウェルプレート（例えば標準９６、３８４又は他のより大型のマルチウェルプレート）からマイクロフルイディックデバイス（例えばチップ）にサンプルを吸引（シッピング）することにより、高スループットスクリーニングフォーマットでサンプルをスクリーニングすることができる。マイクロフルイディックデバイスは、例えば分離媒体を含み、流出液が検出器によりモニターされる検出チャネル領域又は別個の検出チャネルに流入する、１個以上の分離チャネルを有することができる。本発明のマイクロフルイディックデバイスは例えばサンプル中の分離された成分を検出するための検出器を含むことができる。このような検出器としては、例えばゲルスキャナー、蛍光検出器、又は蛍光偏光検出器が挙げられる。
本発明で使用されるマイクロフルイディックデバイスは、通常約０．１〜約５００μｍの少なくとも１個の横断面寸法を有する、少なくとも１個のフルイディックコンポーネント（例えばチャネル、チャンバー、ウェル等）を包含及び／又は収容する本体構造を有し、これらのチャネル及び／又はチャンバーは多くの場合には約０．１μｍ〜２００μｍ、場合により約０．１μｍ〜１００μｍ、多くの場合には約０．１μｍ〜２０μｍの少なくとも１個の横断面寸法を有する。このような横断面寸法としては、例えば幅、深さ、高さ、直径等が挙げられる。通常、これらの寸法を有する構造を「マイクロスケール」とも言う。本発明のマイクロフルイディックデバイスは通常単一本体構造の内側に配置された少なくとも１個、好ましくは２個以上のチャネル及び／又はチャンバーを含む。このようなチャネル／チャンバーは個々に分離していてもよいし、あるいは、流体的に接続されていてもよい。このような流体的接続はチャネル、チャネル交点、バルブ等により提供することができる。チャネル交点は多数のフォーマットで存在することができ、十字交点、「Ｔ」字交点、又は２本のチャネルを流体連通させる多数の他の構造が挙げられる。
本明細書に記載するマイクロフルイディックデバイスの本体構造は通常適切に組み合わせ又は組み立てると例えば本明細書に記載するチャネル及び／又はチャンバーを含む本発明のマイクロフルイディックデバイスを形成する２個以上の別個のコンポーネントの集合からなる。通常、本明細書に記載するマイクロフルイディックデバイスは基板層の集合として製造される。特に、このような好適デバイスは上部部分と下部部分と内部部分からなり、内部部分は実質的にデバイスのチャネルとチャンバーを規定する。種々の基板材料を下部部分として利用することができる。通常、デバイスは微細加工されるので、基板材料は公知の微細加工技術（例えばフォトリソグラフィー、ウェットケミカルエッチング、レーザーアブレーション、エアアブレーション技術、射出成形、エンボシング、及び他の技術）との適合性に基づいて選択される。基板材料は通常マイクロフルイディックデバイスを暴露させる可能性のある全条件（例えばｐＨ、温度、塩濃度、及び電場印加限界）との適合性も考慮して選択される。従って、所定好適側面では、基板材料としては通常このような微細加工技術が定期的に利用される半導体産業に通常関連する材料（例えばガラス、石英、シリコン又はポリシリコン等のシリカ基板や、ガリウムヒ素等の他の基板材料）が挙げられる。半導体材料の場合には、多くの場合に絶縁コーティング又は層（例えば酸化ケイ素）を基板材料上に設けることが望ましく、特に電場をデバイス又はその内容物に印加する用途では望ましい。
好適付加側面では、基板材料はポリマー材料からなり、例えばポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）、ポリカーボネート、ポリテトラフルオロエチレン（ＴＥＦＬＯＮ（登録商標））、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）、ポリスルホン、ポリスチレン、ポリメチレンペンテン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ弗化ビニリデン、ＡＢＳ（アクリロニトリル−ブタジエン−スチレンコポリマー）等のプラスチックが挙げられる。このようなポリマー基板は上記のような利用可能な微細加工技術を使用するか、又は射出成形、エンボシング又はスタンピング等の周知成形技術を使用して微細加工原型から容易に製造される。このようなポリマー基板材料は製造し易く、低コストで処分し易く、最も極端な反応条件にも一般に耐性であるので好ましい。更に、これらのポリマー材料は、マイクロフルイディックシステムでの効用を強化するため、例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む米国特許第５，８８５，４７０号に記載されているように、例えば流体の流れを向上させるために処理表面（例えば誘導体化又は被覆表面）を含むことができる。
本発明のマイクロフルイディックシステムは検出器を含むことが好ましい。分離チャネルからの溶出をモニターする検出器は遊離のアフィニティー物質（例えば遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲート）が検出器に到達する前にアフィニティー物質／目的物質複合体（例えばアフィニティー分子／分析物複合体、コンジュゲート／分析物複合体又はアフィニティー分子／コンジュゲート／分析物複合体）の溶出を検出することができる。Ａｇｉｌｅｎｔ ＤＮＡ ５００ＬａｂＣｈｉｐ（登録商標）等のマイクロフルイディックデバイスは高い感度と分解能で複数のサンプルを迅速に分析することができる。
検出器は分離チャネルの分離媒体からの溶出に伴って遊離のアフィニティー物質及び／又はアフィニティー物質／分析物複合体を検出するように配置することができる。アフィニティー物質（例えばコンジュゲート）は修飾せずに検出することもできるし、検出感度を増すために検出マーカーをアフィニティー物質（例えばコンジュゲート）に結合させてもよい。アフィニティー物質（例えばコンジュゲート）は、例えばその特徴的吸光度特性により検出可能なポリマー等の所定荷電キャリヤー分子を含むことができる。例えば、荷電キャリヤー分子としてのＤＮＡは分離媒体からの溶出に伴ってスペクトロフォトメーターにより検出することができる、約２６０ｎｍに強い吸収をもつものである。
検出器は例えば検出可能なピークの溶出をモニターするように分離チャネルの流出端に配置することができる。場合により、検出器は分離された複合体と遊離のアフィニティー物質（例えば遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲート）の相対位置を検出するようにポリアクリルアミドゲル等の分離媒体を走査することができる。検出器は検出マーカーに適した任意型とすることができ、吸光度検出器、蛍光検出器、蛍光偏光検出器、スペクトロフォトメーター、ホスホイメージャー、電圧計、シンチレーションカウンター、屈折計、及び／又は類似物が挙げられる。このような検出器は分析物を同定及び／又は定量するために解析可能なディジタル又はアナログ出力シグナルを発生させることができる。
検出器出力の経時的解析を使用して例えば分析物の存在を判定及び／又はサンプル中に存在する分析物の量を定量することができる。保持時間、移動速度、ピーク高、ピーク位置、及びピーク比等のピークパラメーターを解析し、分析物の存在を同定及び／又はサンプル中の分析物の量を定量することができる。参照サンプル、標準サンプルの使用、及び回帰分析等の標準分析技術を利用して分析結果を解析することができる。
ＤＮＡ ５００ ＬａｂＣｈｉｐを使用するＡｇｉｌｅｎｔ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ ２１００等の本発明のマイクロフルイディックシステム及びデバイス（例えばマイクロフルイディックチップ）は少量のサンプル添加量で迅速に高分解能で分離することができる。図２に示すように、マイクロフルイディックデバイス２０は例えば流量制御マイクロチャネルを介して接続されたサンプルウェル及び／又は試薬ウェル２１をもつことができる。本発明のデバイスは例えばブロッカーポリマーとアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）用のウェルと、マルチウェルプレート２３からサンプルを分注するためのシッパーキャピラリーチューブ２２を備えるマイクロフルイディックチップから構成することができる。チップは例えばアッセイ成分を混合するための合流マイクロチャネルと、反応時間を経過させるためのインキュベーションチャネル２４と、分離媒体を充填した分離チャネル２５を含むことができる。流量制御システムはウェルからの荷電ポリマーとシッパーからのサンプルを合流マイクロチャネルに通して直接接触させた後にアフィニティー物質ウェルからのアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）と混合することができる。十分な時間インキュベーションチャネルを流れた後に、処理済みサンプルを例えばポリ−Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド（ｐＤＭＡ）バッファーの分離媒体に添加し、遊離のアフィニティー物質（例えば遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲート）をアフィニティー物質／分析物複合体（例えばアフィニティー分子／分析物複合体，コンジュゲート／分析物複合体又はアフィニティー分子／分析物／コンジュゲート複合体）から分離する。遊離アフィニティー物質は最初に分離チャネルから排出され、アフィニティー物質／分析物複合体の前に検出することができる。蛍光検出器等の検出器２６は分離チャネルから流出するバッファーをモニターし、蛍光標識アフィニティー物質を高感度で検出し、出力シグナルを論理回路に送ることができる。分離からの情報を解析し、分析物（例えばアフィニティー物質／分析物複合体）の存在を同定及び／又は分析物の量を定量することができる。
このようなマイクロフルイディックデバイスに従って、種々の送液法が場合により使用される。例えば、好ましい１側面では、所望されるチャネルに圧力差を加えることによりデバイスのチャネルに液の流れを誘導する。これはチャネルの一端に正圧又は他端に負圧を加えることにより実施することができる。複雑なチャネルネットワークでは、例えば所与チャネルにおける流れを停止及び開始するようにデバイス構造内にバルブ等を挿入することにより各相互接続チャネルの全部で流速を制御することができる。あるいは、単一圧力差、例えば単一チャネルポートに真空を印加する場合にも各チャネルを流れる材料移動速度、タイミング及び／又は容量を制御するようにチャネル抵抗を調節することができる。このようなチャネルネットワークの例は例えばいずれもその開示内容全体を全目的で参考資料として本明細書に組込む米国特許出願第０９／２３８，４６７号（出願日１９９９年１月２８日）及び０９／２３３，７００号（出願日１９９９年１月１９日）及び０９／２７７，３６７号（出願日１９９９年３月２６日）に示されている。
あるいは、本発明のマイクロフルイディック適用に制御電動輸送システム(controlled electrokinetic transport systems)を使用してもよい。この型の電動輸送(electrokinetic transport)はその開示内容全体を全目的で参考資料として本明細書に組込む米国特許第５，８５８，１９５号（Ｒａｍｓｅｙ）に詳細に記載されている。このような電動材料輸送導入システム(electrokinetic material transport and direction system)としては、構造に印加された電場内の荷電種の電気泳動移動度に依存するシステムが挙げられる。このようなシステムは特に電気泳動材料輸送システム(electrophoretic material transport systems)と呼ばれる。他の電動材料導入輸送システム(electrokinetic material direction and transport systems)はチャネル又はチャンバー構造に電場を印加することによりこれらの構造の内側に生じる流体及び材料の電気浸透流に依存する。要約すると、エッチングにより作製されたガラスチャネル又はガラスマイクロキャピラリーにおいて荷電官能基（例えばヒドロキシル基）を表面にもつチャネルに流体を配置すると、これらの基はイオン化することができる。ヒドロキシル官能基の場合には、例えば中性ｐＨでこのイオン化が生じる結果、表面から流体内部へプロトンが放出され、流体／表面界面の近傍にプロトンが集積するか又はチャネル内のバルク流体の周囲に正荷電シースが形成される。チャネルの長手方向に電圧勾配を印加すると、プロトンシースは電圧降下の方向、即ち負電極に向かって移動する。
本明細書で使用する「制御電動材料輸送導入(controlled electrokinetic material transport and direction)」とは、上記のような電動システムを意味し、多重即ち３個以上の電極に印加される電圧の能動制御を利用するシステムである。換言するならば、このような制御電動システムは少なくとも２本の交差チャネルに印加される電圧勾配を同時に制御する。特に、本明細書に記載する好適マイクロフルイディックデバイス及びシステムは少なくとも２本の交差チャネル又は流体導管（例えば相互に接続した閉鎖チャンバー）を含む本体構造を含み、前記チャネルは少なくとも３個の非交差末端を含む。２本のチャネルの交点とは２本以上のチャネルが相互に流体連通する点を意味し、「Ｔ」交点、十字交点、多重チャネルの「車輪」交点、又は２本以上のチャネルがこのように流体連通している他の任意チャネル配置を含む。チャネルの非交差末端はチャネルが例えば「Ｔ」交点等の別のチャネルと交差していない末端の点である。好ましい側面では、デバイスは少なくとも４個の非交差末端をもつ少なくとも３本の交差チャネルを含む。１本の水平チャネルが１本の垂直チャネルと十字交差する基本的十字チャネル構造では、制御電動材料輸送(controlled electrokinetic material transoport)は他のチャネルからの拘束流(constraining flow)を交点に提供することにより、交点を通って材料流(flow of material)を制御しながら導入するように機能する。例えば、垂直チャネルとの交点を例えば左から右に横断するように水平チャネルを通して第１の材料を輸送することが望ましいと仮定する。交点を通るこの材料の単純な電動材料流は水平チャネルの長手方向に電圧勾配を印加すること、即ち第１の電圧をこのチャネルの左端に印加し、この電圧よりも低い第２の電圧をこのチャネルの右端に印加するか、又は右端を浮動させる（電圧を印加しない）ことにより得られる。しかし、使用される媒体中を輸送される材料が本来拡散性であることと交点における対流効果により、交点を通るこの型の材料流の結果として実質的量の拡散が交点に生じる。
制御電動材料輸送(controlled electrokinetic material transport)では、交点を通って輸送される材料をサイドチャネル（例えば上下チャネル）からの低レベル流により拘束する。これは例えば垂直チャネルの上又は下端から右端に向かう材料流の経路に沿って小さい電圧勾配を印加することにより得られる。その結果、材料流が交点で「ピンチング」され、材料が垂直チャネルに拡散するのを防ぐ。その後、垂直チャネルの長手方向即ち上端から下端に向かって電圧勾配を印加することにより、交点にピンチされた材料容量を垂直チャネルに注入することができる。この注入中に水平チャネルから材料が流出するのを避けるために、低レベル流をサイドチャネルに逆流させ、材料を交点から「プルバック」させる。
ピンチ注入スキームに加え、制御電動材料輸送(controlled electrokinetic material transport)は機械的部分又は可動部を含まない仮想バルブを形成するために容易に利用される。具体的に、上記十字交点について説明すると、あるチャネルセグメントから別のセグメント（例えば水平チャネルの左アームから右アーム）に向かう材料流(flow of material)は垂直チャネルから（例えば垂直チャネルの下アームから上アームへ）の制御流により効率的に制御、停止及び再開することができる。具体的に、「オフ」モードでは、左端と上端の間に電圧勾配を印加することにより、材料は左アームから交点を通って上アームに輸送される。この経路に沿って（下端から上端に向かって）同様の電圧勾配を印加することにより、下アームから上アームに向かって拘束流(constraining flow)が導入される。次に、左から上に向かう印加電圧勾配を左から右へと転換することにより、計量材料が水平チャネルの左アームから右アームに分配される。こうして分配される材料の量は時間量と印加電圧勾配に依存する。４方向十字交点に関して例証の目的で記載したが、これらの制御電動材料輸送システム(controlled electrokinetic material transport system)はより複雑な相互接続チャネルネットワーク（例えば相互接続並列チャネルのアレー）にも容易に応用することができる。
分離媒体を通るアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）移動が電気泳動のように電圧電位により誘導される場合には、十分な分解能を維持しながら感度を改善するために低塩バッファーに多量の添加量を添加することができる。サンプルが低濃度の分析物しか含有していない場合又は混合物を高度に希釈処理する場合には、移動度シフト分析で感度を良好にするために多量のサンプルを分離媒体にロードすることが望ましい。しかし、多量のサンプルは幅広の分解不良なピークとして溶出する幅広のボーラスとして分離媒体に侵入する可能性がある。この問題は、低塩バッファーにサンプルを添加し、塩濃度の高いランニングバッファー中で電気泳動を実施することにより低減することができる。低塩サンプルは電気泳動電流に対して荷電キャリヤーが比較的不足しているので、荷電サンプル成分は迅速に移動してサンプルボーラスの先端に蓄積する。荷電サンプル成分は荷電キャリヤーの豊富な高塩ランニングバッファーに到達すると、サンプルボーラスの先端でシャープなバンドとして蓄積する。こうして、分解能を実質的に低下させずにより強力なピークが検出がされるように多量の希釈サンプルを電気泳動分離媒体に添加することができる。
システムの検出器は対象シグナルに適した任意デバイスを含むことができる。アフィニティー物質が有用な光吸収スペクトルをもつ場合には、検出器はスペクトロフォトメーターとすることができる。アフィニティー物質が検出マーカーを結合している場合には、検出器はマーカーに適した型とすることができる。例えば、蛍光マーカーには蛍光計、放射性マーカーにはシンチレーションカウンター、化学発光マーカーにはフォトダイオード管等を使用できる。ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＰＡＧＥ）により分離を実施する場合には、検出器は例えば遊離のアフィニティー物質及び／又はアフィニティー物質／分析物複合体バンドのゲル移動の程度を検出するスキャナーを含むことができる。クロマトグラフィー又はキャピラリー電気泳動により分離を実施する場合には、検出器は例えば時間と共に溶出するにつれて遊離のアフィニティー物質及び／又はアフィニティー物質／分析物複合体を検出するために分離媒体からの流出液流に焦点をあてる適切な検出器とすることができる。このような検出器は本発明の論理回路により解析することができるアナログ又はディジタル出力シグナルを発生することができる。
デバイスの論理回路は、例えば時間と共に変化するゲル位置又はクロマトグラフィー流出液内で検出されるアフィニティー物質の量を表す、例えば検出器からの定量的シグナルを受信することができる。論理回路はシグナル振幅を移動チャート紙にプロットするチャートレコーダーのように単純なものでもよいし、高性能ディジタルコンピューター／ソフトウェアシステムでもよい。Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ２１００ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ−Ｂｉｏｓｉｚｉｎｇ［ＤＮＡ ７５００］等の通常入手可能なソフトウェアは分析物を同定及び定量するために、例えばピーク同定、ピーク高、ピーク面積積分、バックグラウンドサブトラクション、回帰分析を実現することができる。
Ｊ．分離媒体
本発明では、上記マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルのモレキュラーシーブ効果を有するポリマー等の分離媒体を使用し、分離媒体により分離を行うことが好ましい。本発明の分野で従来使用されているものであれば、分離チャネルに充填される分離媒体（例えば充填剤）は特に制限されない。
具体的には、遊離のアフィニティー物質と分析物／アフィニティー物質複合体の分離は例えばマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルに配置した分離媒体でキャピラリーゲル電気泳動により実施すると好ましい。キャピラリーゲル電気泳動では、分離媒体は例えば小分子を自由に流動させながら大分子の流動を阻止することができる線状又は架橋ポリマーの制限マトリックスである。
このような分離媒体としては、例えばポリエチレンオキシド（ＰＥＯ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリプロピレンオキシド等のポリエーテル類；ポリエチレンイミン等のポリアルキレンイミン類；ポリアクリル酸、ポリアクリル酸エステル、ポリアクリル酸メチル等のポリアクリル酸型ポリマー；ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミド、ポリ−ｎ，ｎ−ジメチルアクリルアミド（ｐＤＭＡ）等のポリアミド型ポリマー；ポリメタクリル酸、ポリメタクリル酸エステル、ポリメタクリル酸メチル等のポリメタクリル酸型ポリマー；ポリ酢酸ビニル、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、ポリビニルオキサゾリドン等のポリビニル型ポリマー；プルラン、エルシナン、キサンタン、デキストラン、グアーガム、アガロースゲル等の水溶性ヒドロキシルポリマー；メチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース（ＨＥＣ）、ヒドロキシプロピルセルロース等の水溶性セルロース；スクロースとエピクロロヒドリンのコポリマー［例えばＦｉｃｏｌｌ（商品名，Ｐｈａｒｍａｃｉａ）］等の水溶性コポリマー；及びそれらの誘導体、並びにそれらのポリマーを構成する複数種のモノマー単位を含むコポリマーが挙げられる。分離媒体は単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。特に、ポリアクリルアミドゲル、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリエチレンオキシド（ＰＥＯ）、スクロースとエピクロロヒドリンのコポリマー（Ｆｉｃｏｌｌ）、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、ヒドロキシエチルセルロース（ＨＥＣ）、ポリ−Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド（ｐＤＭＡ）、アガロースゲルが好ましい。ポリ−Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド（ｐＤＭＡ）が最も好ましい。
このような媒体をマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルに充填すると、例えば迅速な高スループット分離を行うことができる。本発明では、上記分離媒体を使用せずに、水又はバッファーのみを使用して分離を実施することもできる。
上記分離媒体の分子量は、通常約５００Ｄａ〜６，０００ｋＤａ、好ましくは１〜１，０００ｋＤａ、より好ましくは１００〜１，０００ｋＤａである。上記のように使用される分離媒体の濃度は場合により本発明の分野で通常使用されている範囲内で選択され、即ち、通常は約０．０１〜４０％（ｗ／ｖ）、好ましくは０．０１〜２０％（ｗ／ｖ）、より好ましくは０．１〜１０％（ｗ／ｖ）である。通常は、マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルの内側に上記分離媒体をバッファーと共に充填する。
本発明の方法の実施に使用可能なバッファーの種類は特に制限されない。例えば、使用されるバッファーとしては、ハイブリダイゼーションアッセイ、イムノアッセイ等の分野で使用されているものの多くが挙げられ、例えば、ｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等が挙げられる。これらのバッファーは、通常は約０．１ｍＭ〜１０Ｍ、好ましくは１ｍＭ〜５Ｍ、より好ましくは５ｍＭ〜１Ｍの濃度で使用することができる。バッファーのｐＨは物質分離に悪影響を与えない任意範囲とすることができ、通常は約２〜１３、好ましくは４〜１１、より好ましくは５〜９である。このようなパラメーターは所望により電場増幅スタッキングを行うように最適化することができる。上記分離媒体をバッファーに添加すると、バッファーの粘度は通常は約２〜１、０００センチポアズ、好ましくは５〜２００センチポアズ、より好ましくは１０〜１００センチポアズになる。
分離は例えばサイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）により実施することもできる。ＳＥＣ樹脂はアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）を受容するには十分大きいが、アフィニティー物質／分析物複合体（例えばアフィニティー分子／分析物複合体、コンジュゲート／分析物複合体又はアフィニティー分子／分析物／コンジュゲート複合体）を受容するほどには大きくない細孔をもつことができる。混合物をＳＥＣ樹脂カラムに加圧導入（ポンピング）すると、アフィニティー物質／分析物複合体は樹脂の外側の容積内のみを流れ、遊離のアフィニティー物質は外側容積と内側樹脂容積をよりゆっくりと流れる。
Ｋ．検出
分析物／アフィニティー物質複合体（例えば分析物／アフィニティー分子複合体、分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体）又は上記分離法で分離される複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質（例えば遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲート）は該当分子の検出可能な性質の特性に対応する方法（例えば結合した検出マーカー）により測定又は検出することができる。こうして、サンプル中の分析物を測定するか又はサンプル中の分析物の存在を同定することができる。即ち、上記分離法に従って、分析物／アフィニティー分子複合体を複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー分子から分離するか、分析物／コンジュゲート複合体を複合体の形成に関与しない遊離のコンジュゲートから分離するか、又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体を複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー分子及び／又はコンジュゲートから分離する。得られた複合体、又は遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲートをこれらの特性に対応する方法（例えば検出マーカー）により測定又は検出することができる。従って、短時間に高感度でサンプル中の分析物の量を測定するか又はサンプル中の分析物の存在を同定することができる。
本発明の数種の特定態様を図３Ａ〜３Ｆに示す。本発明を実施してサンプル中の対象分析物を検出するためには当分野で公知の種々の免疫化学アッセイ技術を使用することができ、例えば抗体サンドイッチアッセイや酵素イムノアッセイ（イムノアッセイの一般論については例えばＢｏｌｔｏｎら，Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，Ｗｅｉｒ，Ｄ．Ｍ．，Ｅｄ．，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ，１９８６，ｖｏｌ．１，Ｃｈａｐｔｅｒ ２６参照）、及び当業者に公知の他の同様のアッセイフォーマットが挙げられる。例えば、上述のように例えば図３Ａに示すようなアッセイフォーマットを使用し、分析物３２と、標識荷電キャリヤー分子３６（例えば１個以上の蛍光タグを付けた蛍光標識ＤＮＡ分子）と結合（例えば共役）したアフィニティー分子３４（例えば抗体又は抗原）を含む対応するコンジュゲート３１を含む複合体３０を遊離の（未結合の）抗体／荷電キャリヤー分子コンジュゲート３１から分離することができる（図面では便宜と分かり易くするために、分離段階を記号「／」で表す）。あるいは、図３Ｂ〜Ｆに示すようにサンドイッチイムノアッセイフォーマットを実施することもでき、蛍光標識抗体／分析物複合体等のタグ付き（例えば標識）結合成分（分子）／分析物複合体は別の結合成分（分子）（例えば標識又は非標識抗体又はＤＮＡ−抗体コンジュゲート）と結合して検出可能となる。
サンドイッチイムノアッセイの第１の例を図３Ｂに模式的に示し、抗原／標識抗体３１複合体と別のアフィニティー分子（例えば抗体３９）の結合を示す。対象分析物３２を含有するサンプルを標識コンジュゲート３１と共にプレインキュベートし、結合部分／分析物複合体を形成させることが好ましい。図３Ｃは第２の抗体３９が蛍光ラベルを含み、ＤＮＡ−抗体コンジュゲート３１を標識しないサンドイッチイムノアッセイフォーマットを示す。図３Ｄ〜Ｆは２個（以上）のＤＮＡ−抗体コンジュゲート３１，３１’を使用する場合（図３Ｄ）と、第３の標識又は非標識アフィニティー分子３９も使用する場合（図３Ｅ〜Ｆ）のサンドイッチイムノアッセイフォーマットを示す。図３Ｂ〜Ｆに示すように２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、例えば各アフィニティー分子は通常、他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合する。
上記図３Ａ〜３Ｆでは、コンジュゲート３１及び３１’、標識コンジュゲート３１、アフィニティー分子３９並びに標識アフィニティー分子３９の各々の１、２、又は３個以上を本発明の方法の実施に使用することができる。サンドイッチアッセイフォーマットを利用するアッセイの非限定的な具体例を以下に挙げる。（ａ）サンプル中の分析物の測定又は同定方法が開示され、（ｉ）少なくとも１個を検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物と検出マーカーで標識されたアフィニティー分子とを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に複合体の形成に関与しない検出マーカーで標識された遊離のアフィニティー分子から複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された複合体の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する段階を含み；アフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有するものである。
（ｂ）サンプル中の分析物の測定又は同定方法が開示され、（ｉ）アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートの少なくとも１個が検出マーカーで標識された、前記１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物と検出マーカーで標識されたコンジュゲートとを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に複合体に関与しない検出マーカーで標識されたコンジュゲートから複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された複合体の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する段階を含み；コンジュゲートのアフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。換言するならば、荷電キャリヤー分子は分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせ、アフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物と検出マーカーで標識されたコンジュゲートとを含む複合体を形成することにより、分析物と検出マーカーで標識されたコンジュゲートとを含む複合体を複合体に関与しない検出マーカーで標識されたコンジュゲートから分離させる。
（ｃ）サンプル中の分析物の測定又は同定方法が開示され、（ｉ）アフィニティー分子の少なくとも１個又はコンジュゲートの少なくとも１個が検出マーカーで標識されたものであり、１個以上のアフィニティー分子及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に複合体の形成に関与しない検出マーカーで標識された遊離のアフィニティー分子又は検出マーカーで標識されたコンジュゲートから複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された複合体の量を測定するか又は分離された複合体の存在を検出する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するか又は検出された存在に基づいてサンプル中の分析物の存在を同定する段階を含み；アフィニティー分子及びコンジュゲートのアフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。換言するならば、荷電キャリヤー分子は分析物の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせ、アフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとを含む複合体を形成することにより、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとを含む複合体を複合体に関与しない検出マーカーで標識された遊離のアフィニティー分子又は検出マーカーで標識された遊離のコンジュゲートから分離させる。
あるいは、サンプル中の分析物は、標識分析物又は荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は分析物の標識類似体もしくは荷電キャリヤー分子と結合した分析物類似体）を標識分析物又は荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は分析物の標識類似体もしくは荷電キャリヤー分子と結合した分析物類似体）とサンプル中の分析物の競合反応に使用する所謂競合アッセイにより測定することもできる。
競合アッセイでは、アフィニティー分子はサンプル中の分析物及び標識分析物（又は標識類似体）と結合することが可能な性質を有するものである。２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものである。更に、分析物がサンプル中に蛋白質又は他の結合物質と結合した形態（例えば結合形態）及び蛋白質又は他の結合物質と結合していない形態（例えば未結合形態）の両者で存在し、結合形態と未結合形態が平衡している場合には、分析物の類似体を使用する競合アッセイを使用して分析物の未結合形態を分析することができる。
競合アッセイフォーマットを使用する本発明の他の態様の具体例を図３Ｇ〜３Ｋに示す。例えば図３Ｇ〜Ｊに示す態様では、標識分析物又は分析物の標識類似体（例えば分析物３２’）が抗体又はＤＮＡ−抗体コンジュゲート（例えばＤＮＡ−抗体コンジュゲート３１及び／又は３１’）等の１個以上の非標識アフィニティー分子との結合についてサンプル中の対象分析物３２と競合する競合アッセイを使用することができる。例えば図３Ｈ〜３Ｉに示すように分子の大きさに基づいて分離分析するアッセイで検出可能なシグナルの分解能を高めることが望ましいか又は必要である場合には、多重アフィニティー分子を使用することができる。例えば図３Ｋに示すような別の態様では、荷電キャリヤー分子（例えば核酸鎖）と結合した分析物又は分析物類似体（例えば分析物３２’）が抗体（例えば標識抗体３９）等の１個以上の標識アフィニティー分子との結合についてサンプル中の対象分析物３２と競合する競合アッセイを使用することができる。上記図３Ｇ〜３Ｋでは、コンジュゲート３１及び３１’、アフィニティー分子３９並びに標識アフィニティー分子３９の１、２又は３個以上を本発明の方法の実施に使用することができる。
上記本発明の方法において、分析物の類似体を使用することにより分析物の未結合形態を測定する場合には、分析物の類似体は分析物と結合して結合形態を形成する蛋白質又は他の結合物質と実質的に反応しないことが好ましい。図３Ｋの標識アフィニティー分子は少なくとも未結合形態の分析物及び類似体と結合するものである。標識アフィニティー分子は未結合形態の分析物及び類似体と結合し、結合形態の分析物と結合しないものが好ましい。
競合アッセイフォーマットを使用することにより実施されるアッセイの具体例を以下に挙げる。（ａ）サンプル中の分析物の測定方法が開示され、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物（又は類似体）と１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させ、サンプル中の分析物とアフィニティー分子との第１の複合体及び標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子との第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に第２の複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物（又は遊離の標識類似体）から第２の複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第２の複合体の量又は分離された遊離の標識分析物（もしくは分離された遊離の標識類似体）の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；アフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものである。サンプル中の分析物及び標識分析物に対するアフィニティー分子の親和性は同じであることが好ましく、又はサンプル中の分析物及び標識類似体に対するアフィニティー分子の親和性は同じであることが好ましい。本発明の上記方法において、分析物の類似体を使用することにより分析物の未結合形態を分析する場合には、分析物の類似体は分析物と結合して結合形態を形成する蛋白質又は他の結合物質に対して実質的に非反応性である必要がある。
（ｂ）サンプル中の分析物の測定方法が開示され、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物（又は類似体）及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、サンプル中の分析物とコンジュゲートとの第１の複合体及び標識分析物（又は標識類似体）とコンジュゲートとの第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に第２の複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物（又は遊離の標識類似体）から第２の複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第２の複合体の量又は分離された遊離の標識分析物（もしくは分離された遊離の標識類似体）の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；コンジュゲートのアフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して標識分析物（又は標識類似体）と結合して標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより標識分析物又は標識類似体の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。換言するならば、荷電キャリヤー分子は標識分析物（又は標識類似体）の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせ、アフィニティー分子を介して標識分析物（又は標識類似体）と結合して標識分析物（又は標識類似体）とコンジュゲートの第２の複合体を形成することにより、標識分析物（又は標識類似体）とコンジュゲートの第２の複合体を複合体に関与しない遊離の標識分析物（又は遊離の標識類似体）から分離させる。サンプル中の分析物及び標識分析物に対するアフィニティー分子の親和性は同じであることが好ましく、又はサンプル中の分析物及び標識類似体に対するアフィニティー分子の親和性は同じであることが好ましい。本発明の上記方法において、分析物の類似体を使用することにより分析物の未結合形態を分析する場合には、分析物の類似体は分析物と結合して結合形態を形成する蛋白質又は他の結合物質に対して実質的に非反応性である必要がある。
（ｃ）サンプル中の分析物の測定方法が開示され、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物（又は類似体）、１個以上のアフィニティー分子及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、サンプル中の分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとの第１の複合体及び標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子とコンジュゲートとの第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に第２の複合体の形成に関与しない遊離の標識分析物（又は遊離の標識類似体）から第２の複合体を分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第２の複合体の量又は分離された遊離の標識分析物（もしくは分離された遊離の標識類似体）の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；アフィニティー分子及びコンジュゲートのアフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して標識分析物（又は標識類似体）と結合して標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより標識分析物（又は標識類似体）の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。換言するならば、荷電キャリヤー分子は標識分析物（又は標識類似体）の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせ、アフィニティー分子を介して標識分析物（又は標識類似体）と結合して標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子とコンジュゲートの第２の複合体を形成することにより、標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子とコンジュゲートの第２の複合体を複合体に関与しない遊離の標識分析物（又は遊離の標識類似体）から分離させる。サンプル中の分析物及び標識分析物に対するアフィニティー分子の親和性は同じであることが好ましく、又はサンプル中の分析物及び標識類似体に対するアフィニティー分子の親和性は同じであることが好ましい。本発明の上記方法において、分析物の類似体を使用することにより分析物の未結合形態を分析する場合には、分析物の類似体は分析物と結合して結合形態を形成する蛋白質又は他の結合物質に対して実質的に非反応性である必要がある。
（ｄ）サンプル中の分析物の測定方法が開示され、（ｉ）荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は荷電キャリヤー分子と結合した類似体）と検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させ、荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は荷電キャリヤー分子と結合した類似体）と標識アフィニティー分子との第１の複合体及びサンプル中の分析物と標識アフィニティー分子との第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの分離チャネルで荷電ポリマーの存在下に第１の複合体を第２の複合体から分離する段階と；（ｉｉｉ）分離された第１の複合体の量又は第２の複合体の量を測定する段階と；（ｉｖ）測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定する段階を含み；アフィニティー分子がサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物又はサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物上の位置でサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体上の位置でサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子が分析物（又は類似体）と結合して分析物（又は類似体）とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより第１の複合体の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。換言するならば、荷電キャリヤー分子は標識分析物（又は標識類似体）の分離（例えば移動）特性に変化を生じさせ、標識分析物（又は標識類似体）と結合して荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は荷電キャリヤー分子と結合した類似体）と標識アフィニティー分子との第１の複合体を形成することにより、荷電キャリヤー分子と結合していない分析物（又は類似体）と標識アフィニティー分子との複合体を分析物と標識アフィニティー分子との第２の複合体から分離させる。上記本発明の方法では、荷電キャリヤー分子と分析物又は分析物の類似体の結合は上述したような荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子の結合と同様に実施することができる。本発明の上記方法において、分析物の類似体を使用することにより分析物の未結合形態を分析する場合には、分析物の類似体は分析物と結合して結合形態を形成する蛋白質又は他の結合物質に対して実質的に非反応性である必要がある。標識アフィニティー分子は少なくとも未結合形態の分析物及び類似体と結合する。標識アフィニティー分子は未結合形態の分析物及び類似体と結合するが、結合形態の分析物とは結合しないことが好ましい。上記測定段階（ｉｉｉ）で標識アフィニティー分子が結合形態の分析物、未結合形態の分析物及び類似体と結合する場合には、分離された第１の複合体の量又は第２の複合体、遊離の標識アフィニティー分子、及び結合形態の分析物と標識アフィニティー分子の複合体の合計量を測定する。
本発明で使用される上記分析物の類似体は分析物がアフィニティー分子に結合するのと同様にアフィニティー分子と結合可能な性質を有するものである。即ち、類似体はアフィニティー分子及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートと相互作用する分析物の官能基と機能的に同じ官能基（例えば結合サイト）をその構造に含むものである。検出マーカー及び／又は荷電キャリヤー分子を類似体分子に導入した場合、アフィニティー分子との相互作用の点で類似体構造中のこのような基の機能を妨げてはならない。本発明における類似体としては、目的物質の構造の一部を修飾、改変、変性又は除去したものが挙げられる。このような類似体としては、例えば目的物質の蛋白質の一部に変異を導入した組換え蛋白質、目的物質のペプチド配列の一部を修飾又は改変したペプチド、目的物質の核酸配列の一部を修飾又は改変した核酸等が挙げられる。
上記の場合に未結合形態の分析物を分析するためには、対象分析物（例えば目的物質）はサンプル中に蛋白質又は他の結合物質と結合した形態（例えば結合形態）及び蛋白質又は他の結合物質と結合していない形態（例えば未結合形態）の両者で存在し、結合形態と未結合形態が平衡しているものとする。このような分析物としては、例えばＴ４、コルチゾール、プロゲステロン、エストラジオール、テストステロン、ＰＳＡ、プロテインＣ、エラスターゼ、カテプシンＧ、トロンビン、Ｃ１−エステラーゼ、プラスミン、組織型プラスミノーゲンアクチベーター等が挙げられる。目的物質に対する親和性と目的物質と結合することが可能な性質をもつものであれば、結合形態の蛋白質又は他の結合物質に特に制限はない。これらの蛋白質又は他の結合物質としては、例えば対象分析物（目的物質）がＴ４の場合にはグロブリン、プレアルブミン又はアルブミンが挙げられ、コルチゾール、プロゲステロン、エストラジオール又はテストステロンの場合にはグロブリン又はアルブミンが挙げられ、ＰＳＡの場合にはα１−アンチキモトリプシン又はα２−マクログロブリンが挙げられ、プロテインＣの場合にはプロテインＣインヒビターが挙げられ、エラスターゼの場合にはα１−トリプシンインヒビターが挙げられ、カテプシンＧの場合にはα１−アンチキモトリプシンが挙げられ、トロンビンの場合にはアンチトロンビンＩＩＩが挙げられ、Ｃ１−エステラーゼの場合にはＣ１インヒビターが挙げられ、プラスミンの場合にはα２−プラスミンインヒビターが挙げられ、組織型プラスミノーゲンアクチベーターの場合にはプラスミノーゲンアクチベーターインヒビター１等が挙げられる。
上記方法で分離された複合体の検出マーカー又は複合体の形成に関与しない検出マーカーの測定量に基づいてサンプル中の分析物の量を決定するには、例えば既知濃度の分析物を含有する別のサンプルを使用して上記と同じ測定を行い、得られた分析物の量と分離された複合体の検出マーカー又は複合体の形成に関与しない検出マーカーの量の関係を示す検量線を作成する。分析物を含有するサンプルの測定により得られた検出マーカーの測定値をこの検量線に適応させ、目的分析物の量を決定する。
更に、既知濃度の内部標準として検出可能な物質をサンプルに添加した後に、内部標準として添加した物質の量を分離された複合体の検出マーカー又は複合体の形成に関与しない検出マーカーの量と比較することによりサンプルに含まれる分析物の相対量を計算することができる。こうして、複数のデバイスの使用の間での誤差を修正することが可能になる。
本発明の方法では、分離された複合体の検出マーカー又は複合体の形成に関与しない検出マーカーの量の測定は使用する検出マーカーの型に応じた従来方法により実施することができる。例えば、マーカーの性質が酵素活性に依存する場合には、測定は例えば「酵素免疫測定法」蛋白質、核酸、酵素、別冊第３１巻，北川常廣，南原利夫，辻章夫，石川栄治編，５１−６３頁，共立出版，１９８７年９月１０日出版に記載されているような従来方式のＥＩＡ又はハイブリダイゼーションで実施することができる。分析物が放射性物質である場合には、放射性物質により発生される放射線の種類と強度に応じて液浸型ＧＭカウンター、液体シンチレーションカウンター、ウェル型シンチレーションカウンター等の適切な検出器を使用して従来方式のＲＩＡ又はハイブリダイゼーションにより検出することができる［医化学実験講座第８巻，山村雄一編，第１版，中山書店，１９７１；生化学実験講座２，トレーサー実験法 下，竹村彰祐，本庶佑，５０１−５２５頁，東京化学同人，１９７７年２月２５日出版参照］。マーカーの性質が蛍光に依存する場合には、図説蛍光抗体法，川生明，第１版，ソフトサイエンス社，１９８３；生化学実験講座２，核酸の化学ＩＩＩ，実吉峯郎，２９９−３１８頁，東京化学同人，１９７７年１２月１５日出版に記載されているように蛍光光度計や共焦点レーザー顕微鏡等の検出器を使用して従来方式のＦＩＡ又はハイブリダイゼーションで測定を行うことができる。マーカーの性質が発光に依存する場合には、例えば「酵素免疫測定法」蛋白質、核酸、酵素、別冊第３１巻，北川常廣，南原利夫，辻章夫，石川栄治編，２５２−２６３頁，共立出版，１９８７年９月１０日出版に記載の方法に従ってフォトンカウンター等の検出器を使用して従来通りに測定を実施することができる。更に、性質が紫外線領域に吸収をもつ場合には、分光光度計等の検出器を使用して従来通りに検出を行うことができる。性質が発色性の場合には、分光光度計や顕微鏡等の検出器を使用して従来通りに検出を行うことができる。更に、分析物がスピン性の場合には、例えば「酵素免疫測定法」蛋白質、核酸、酵素、別冊第３１巻，北川常廣，南原利夫，辻章夫，石川栄治編，２６４−２７１頁，共立出版，１９８７年９月１０日出版に記載の方法に従って電子スピン共鳴装置等の検出器を使用して従来通りに検出を行うことができる。検出は蛍光偏光により行うこともできる。
本発明の測定又は同定方法は荷電ポリマーの存在下で分離を行う付加段階、好ましくは分離段階とサンプル（目的物質）とアフィニティー物質とを接触させて複合体を形成させる段階の両方を実施する付加段階を除き、それ自体公知の従来方法で適正に選択した試薬を使用してそれ自体公知の上記方法により実施することができる。
サンプル中の分析物の存在は例えば標識アフィニティー分子の移動度シフト、アフィニティー分子の標識コンジュゲートの移動度シフト、標識分析物又はその標識類似体及び／又は対応するアフィニティー分子とのその複合体の移動度シフト、あるいは標識分析物又はその標識類似体及び／又はアフィニティー分子の対応するコンジュゲートとのその複合体の移動度シフト、あるいはそれらの組み合わせを検出することにより同定することができる。荷電キャリヤー分子と結合した分析物と、対応するアフィニティー分子との複合体の移動度シフトや、荷電キャリヤー分子と結合した分析物の類似体と、対応する標識アフィニティー分子との複合体の移動度シフトを使用して分析物の存在を同定することもできる。分析物を含有しない陰性対照サンプルの分析をアッセイで実施し、このような標識分子及び／又はその複合体ピーク溶出時間又は分離媒体移動速度を測定することができる。検出可能な量の参照分析物を含有する陽性対照サンプルをアッセイで試験し、標識分子及び／又はその複合体ピーク溶出時間又は分離媒体移動速度を測定することができる。未知サンプルを同一アッセイで試験する場合には、標識分子及び／又はその複合体ピークと同一の保持時間又は移動速度のピークの検出により分析物の存在を同定することができる。同定したピークがアッセイのバックグラウンドノイズにならないようにするためには、標準法バリデーション技術を使用してバックグラウンドを上回る実シグナルが検出されているという統計的信頼を与えるピーク高又はピーク面積の閾値を決定するとよい。
各サンプルに内部マーカーを添加し、ピーク同定用参照枠を提供するか又はアッセイ内変動性に合わせて溶出時間を調節し、アッセイラン間の厳密な比較を実現することができる。例えば、検出可能な高分子量マーカーと低分子量マーカーをサンプルに添加し、コンジュゲートピークを参照枠内に区分することができる。溶出時間が分析間で変動する場合には、当業者に公知のように内部マーカー間のその相対位置によりコンジュゲートピークを同定することもできる。
サンプル中に存在する分析物の量は同定したコンジュゲート／分析物複合体のピーク高又はピーク面積を標準曲線と比較することにより決定することができる。標準曲線は例えば既知量の分析物を有する１個以上の標準サンプルのピーク高又は面積値を表す計算式とすることができる。未知サンプルからのピーク高又は面積値を式に入力し、サンプル中の分析物の量を決定することができる。ピーク高又は面積値は測定確度を増すように陰性対照バックグラウンドを差し引くことにより調節することができる。
分析物は遊離のコンジュゲートと複合体のピークのピーク高比又はピーク面積比を値の式又はチャートに相関させることにより定量することができる。分析物濃度に対する濃度の式又はチャートは当分野で公知のように、計算することもできるし、アッセイに合わせて経験的に導くこともできる。内部マーカーを添加すると、既知量の分析物でアッセイの各分析から得られた結果と比較することにより定量データを改善することができる。
本発明の方法の実施において、核酸鎖を使用し、ＤＮアーゼ、ＲＮアーゼ等のヌクレアーゼが存在する可能性がある場合には、核酸鎖を含有する溶液にエチレングリコールビス（２−アミノエチルエーテル）四酢酸（ＥＧＴＡ）、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ヘパリン等のヌクレアーゼインヒビターを添加すると適切である。
要約すると、核酸鎖を別の物質（例えばサンプル、アフィニティー分子又はコンジュゲート）と接触させる場合又は分析物／アフィニティー物質複合体を複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質から分離する場合には、阻害剤の存在下で接触を行うために核酸鎖を含有する溶液又は核酸鎖と接触させる溶液に上記のような阻害剤を添加すると適切である。
本発明を実施するために使用される試薬及び他の材料は本発明の上記方法を首尾よく実施できるように、荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子との遊離のコンジュゲートと、サンプル中の分析物とコンジュゲートとの複合体を分離するための組成物又はキットにすることができる。具体的には、本発明の荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子との遊離のコンジュゲートと、サンプル中の分析物とコンジュゲートとの複合体を分離するための組成物又はキットは分離媒体と荷電ポリマーを含むものである。上記組成物又はキットの好適態様では、コンジュゲートは検出マーカーで標識されたものである。コンジュゲートの荷電キャリヤー分子を検出マーカーで標識したものがより好ましい。本発明の上記組成物又はキットは更にアフィニティー分子を含むものである。この場合、アフィニティー分子とコンジュゲート（例えばコンジュゲートのアフィニティー分子及び／又は荷電キャリヤー分子）の少なくとも一方は検出マーカーで標識されているのが好ましい。各成分の例の好適態様は上述した通りである。上記組成物又はキットはマイクロフルイディックデバイスと組み合わせて用いることができ、デバイスをキットの一部として販売してもよい。
ＩＩＩ．濃縮法
本発明では、濃縮方法は、マイクロフルイディックデバイスを使用することによりサンプル中の目的物質（例えば対象分析物）を濃縮し、高濃度の濃縮目的物質（例えば対象分析物）を移動度シフトアッセイに適用する目的で実施される。所謂オンラインサンプル濃縮技術等の種々の濃縮法をマイクロフルイディックデバイスで使用してサンプル中の目的物質を濃縮することができる。オンラインサンプル濃縮ないしサンプルスタッキング操作は（ｉ）キャピラリーでサンプル成分の電気泳動移動度の差を利用する電気泳動濃縮法（例えばＦＡＳＳ，ＦＡＳＩ，ＩＴＰ，ＩＦ等）と（ｉｉ）吸着剤を利用する化学吸着濃縮法（例えばＳＰＥ等）の２種類に分類することができる（その開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＲ．Ｌ．Ｃｈｉｅｎ，Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ，２４，４８６−４９７，２００３）。
例えば、以下の濃縮法を使用することができる。（ｉ）濃縮ドメインと分離ドメインの電気伝導率の差を利用するＦＡＳＳ（Ｆｉｅｌｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｓａｍｐｌｅ Ｓｔａｃｋｉｎｇ：電場増幅サンプルスタッキング法）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む米国特許出願第１０／２０６，３８６号“Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ，Ｄｅｖｉｃｅｓ ａｎｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ｆｏｒ Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｍａｔｅｒｉａｌ Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ”，Ｗｅｉｓｓ，Ｄ．Ｊ．，Ｓａｕｎｄｅｒｓ，Ｋ．，Ｌｕｎｔｅ，Ｃ．Ｅ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ２００１，２２，５９−６５；Ｂｒｉｔｚ−ＭｃＫｉｂｂｉｎ，Ｐ．，Ｂｅｂａｕｌｔ，Ｇ．Ｍ．，Ｃｈｅｎ，Ｄ．Ｄ．Ｙ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２０００，７２，１７２９−１７３５，Ｒｏｓｓ，Ｄ．，Ｌｏｃａｓｃｉｏ，Ｌ．Ｅ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２００２，７１，５１３７−５１４５）、（ｉｉ）ＦＡＳＳで濃縮ドメインと分離ドメインの間に微小水プラグを挿入するＦＡＳＩ（Ｆｉｅｌｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｓａｍｐｌｅ Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ：電場増幅サンプル注入法）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む“Ｆｉｅｌｄ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｓａｍｐｌｅ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｉｎ ｈｉｇｈ−ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ”，Ｃｈｉｅｎ，Ｒ．Ｌら，Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９９１，５５９，１４１−１４８）、（ｉｉｉ）リーディング溶液とトレーリング溶液の間に挟まれたドメインにおけるイオンの移動度の差を利用するＩＴＰ（Ｉｓｏｔａｃｈｏｐｈｏｒｅｓｉｓ：等速電気泳動法）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＥｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｇｅｕｒｔｓ，Ｍ．Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｖｅｒｈｅｇｇｅｎ，Ｔ．Ｐ．Ｅ．Ｍ Ｊ Ｃｈｒｏｍａｔａｇｒ．１９７６，１１９，１２９−１５５；Ｍｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｐｅｅｋ，Ｊ．Ａ．Ｆ．Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９７９，１６８，２９３−３１５；及びＭｉｋｋｅｒｓ，Ｆ．Ｅ．Ｐ．，Ｅｖｅｒａｅｒｔｓ，Ｆ．Ｍ．，Ｐｅｅｋ，Ｊ．Ａ．Ｆ．Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．１９７９，１６８，３１７−３３２，Ｈｉｒｏｋａｗａ，Ｔ，Ｏｋａｍｏｔｏ，Ｈ．Ｉｋｕｔａ，Ｎ．，ａｎｄ Ｇａｓ，Ｂ．，“Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｏｐｅｒａｔｉｏｎａｌ Ｍｏｄｅｓ ｆｏｒ Ｔｒａｎｓｉｅｎｔ Ｉｓｏｔａｃｈｏｐｈｏｒｅｓｉｓ Ｐｒｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ−ＣＺＥ，”Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ２００１，Ｖｏｌ．１７ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｉｌ８５）、（ｉｖ）物質間の等電点の差を利用するＩＦ（Ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ Ｆｏｃｕｓｉｎｇ：等電点電気泳動法）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む“Ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ ｆｏｃｕｓｉｎｇ ｕｓｉｎｇ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔａｔｉｏｎ”，Ｗｅｈｒ Ｔら，Ａｍ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｌａｂ．１９９０，８，２２，“Ｆａｓｔ ｓａｎｄ ｈｉｇｈ−ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｈｕｍａｎ ｓｅｒｕｍ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎｇ ｂｙ ｈｉｇｈ−ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ ｆｏｃｕｓｉｎｇ ｉｎ ｃａｐｉｌｌａｒｉｅｓ”，Ｋｉｌａｒ Ｆ．ら，Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ １９８９，１０，２３−２９）、及び（ｖ）固相（例えば受容体等の吸着剤を結合させた固相）と目的物質の間の特異的相互作用を利用して目的物質を固相に吸着させるＳＰＥ（Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ：固相抽出法）（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込む“Ｍｉｃｒｏｃｈｉｐ−ｂａｓｅｄ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ＤＮＡ ｆｒｏｍ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓａｍｐｌｅｓ”，Ｂｒｅａｄｍｏｒｅ Ｍ．ら，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．２００３，７５，１８８０−１８８６）。
ＩＶ．本発明の濃縮法
本発明は上記の公知濃縮法では効率的に濃縮されなかった目的物質を高濃度で濃縮し、目的物質と同時に濃縮されるサンプル中の分析物以外の不要成分（例えば目的物質の検出を妨げる「ノイズ成分」）による（例えば分離及び検出段階における）目的操作の干渉を低減することによって目的物質を高感度で検出する方法を提供する。更に、本発明は目的物質の高感度測定のために目的物質を容易に濃縮できるように反応条件を最適化するための方法も提供する。
本発明の１つの特徴は上記濃縮法においてサンプル中の目的物質を荷電キャリヤー分子と結合したアフィニティー分子（例えばアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート）に接触（例えば反応）させることにより形成された目的物質とコンジュゲートとの複合体又は目的物質とコンジュゲートとアフィニティー分子との複合体を濃縮する点にある。即ち、本発明の濃縮法は以下の問題を解決するために実施される。ａ）サンプル中の目的物質が非常に大きな分子量及び／又は低い電荷を有する場合には、目的物質の電気泳動移動度は遅くなる（例えば低下する）。その結果、このような目的物質を短時間で高度に濃縮することは困難であり、例えばこのような物質を効率的に濃縮することは困難になる。ｂ）サンプル中の目的物質以外の不要成分（例えばノイズ成分）が目的物質と同じ領域に移動すると、不要成分は目的物質と同時に濃縮される。その結果、目的物質を含有する濃縮サンプルを分離及び検出用サンプルとして使用すると、バックグラウンド及びノイズレベルが上昇し、アッセイ感度が低下する（例えばアッセイ感度が低下する）。ｃ）臨床血清サンプルの場合のようにサンプル中に目的物質がノイズ成分と共存する場合には、目的物質が濃縮され且つ不要ノイズ成分が目的物質と同時に濃縮されないか又は目的物質と別の領域で濃縮されるように反応条件を最適化することは非常に困難である（例えばこの場合には、高感度検出には濃縮段階の最適化が非常に重要である。しかし、このような最適条件を見いだすには非常に時間と労力がかかる）。
そこで、本発明の方法は非常に大きな分子量及び／又は比較的低い電荷を有する目的物質を効率的に高濃度に濃縮することができると共に、不要成分（例えばノイズ成分）の濃度が低いかもしくは約ゼロである移動領域、又は不要ノイズ成分が存在しない移動領域で（例えばノイズ成分の濃度が低い移動領域）適切な荷電キャリヤー分子を選択すると共に目的物質を濃縮するための反応条件を最適化することによって、目的物質の移動度を調節することにより目的物質を濃縮することができる荷電キャリヤー分子（例えばアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子のコンジュゲート）を使用するものである。
例えば、目的物質が血清中に存在する場合には、ノイズ成分（例えばサンプル中に共存する蛋白質等）は目的物質と同じ領域に移動して濃縮される。適切な長さ（例えば５０〜３０００ｂｐ）のＤＮＡ等の荷電キャリヤー分子を使用して目的物質とアフィニティー分子／荷電キャリヤー分子コンジュゲートとを反応させることにより形成された複合体は血清中のノイズ成分と別の領域（例えばノイズ成分の濃度が低いか又は約ゼロである領域）に移動して濃縮される。
本発明において、「不要成分」（例えば「ノイズ成分」）なる用語は通常、目的物質を含有するサンプル又は溶液中に共存する目的物質以外の物質を意味し、従来の電気泳動法により電気泳動を実施した場合には目的物質と同じ領域に移動して濃縮され、目的物質の分離又は検出を妨げる物質である。
不要成分（例えばノイズ成分）としては、例えば蛋白質、核酸、ヘモグロビン、金属、糖、生体色素、脂質、電解質等が上られる。「不要成分」は通常、アフィニティー分子又は分析物（又はその類似体）の標識反応に使用される材料であって、精製段階後も標識材料調製物中に残存している材料も意味する。更に、通常、分析物と反応せずに未結合形態として残存している標識アフィニティー分子又はアフィニティー分子と反応せずに反応混合物中に未結合形態として残存している標識分析物も意味する。本発明の方法は例えば次のように実施することができる。即ち、分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートに接触させて分析物及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体を形成させ、得られた複合体をノイズ成分濃度が低いか又はゼロである領域（例えばノイズ成分が少ない領域）に移動させ、約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の濃縮チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの濃縮（例えばスタッキング）チャネルを使用することにより濃縮する。その後、複合体を移動度シフトアッセイに適用することにより、複合体を高感度で検出することによって分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定することができる。
Ａ．コンジュゲート
本発明のコンジュゲートにおける適切な荷電キャリヤー分子を選択することにより、目的物質の移動特性（例えば移動度）を制御することが可能となる。コンジュゲートは上述のように検出マーカーで標識されていてもよい。検出マーカー、その好適例、標識方法等については上述した通りである。上記方法では、分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体を濃縮するために、マイクロフルイディックデバイスの濃縮（例えばスタッキング）チャネルが使用される。上記に例示した濃縮法によりマイクロフルイディックチャネルでこのような分子とその複合体を濃縮するためには、濃縮しようとするこのような分子を適切なｐＨとイオン強度の適切なバッファーで希釈することが好ましい。例えば、ＦＡＳＳ濃縮法を選択する場合には、このような被濃縮分子を低伝導率バッファーで希釈した後に接触させ、濃縮段階を実施する。例えば、対象分析物を含有する血清サンプルと、分析物を特異的に認識するアフィニティー分子と荷電分子のコンジュゲートを、７．５ｍＭ ＮａＣｌを含有する７．５ｍＭ ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ７．５）で１０倍に希釈する。
Ｂ．サンプルと目的物質
サンプルと目的物質は上述した通りである。特に、本発明の濃縮法は従来方法を使用するとノイズ成分と同じ領域に移動して濃縮される分析物や、アフィニティー分子及び／又はそのコンジュゲートと共に複合体を形成し、ノイズ成分と同じ領域に移動して濃縮される分析物に有用である。このような分析物とその複合体を上記に例示したような濃縮法によってマイクロフルイディックチャネルで効率的に濃縮するためには、このような被濃縮分析物を適切なｐＨとイオン強度の適切なバッファーで希釈することが好ましい。例えば、ＦＡＳＳ濃縮法を選択する場合には、被濃縮分析物を低伝導率バッファーで希釈した後に接触させ、濃縮段階を実施する。例えば、対象分析物を含有する血清を、７．５ｍＭ ＮａＣｌを含有する７．５ｍＭ ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ７．５）で１０倍に希釈する。
Ｃ．サンプルとコンジュゲートとの接触
分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートに接触させ、分析物及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの複合体を形成させるために、接触段階を実施する。このような複合体の形成方法については制限がない。例えば，分析物を含有するサンプルと、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートを例えば水又はＴｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファーに夫々溶解、分散又は懸濁して液体材料を得、これらの液体材料を相互に混合接触させればよい。あるいは、サンプルと、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートを同時に溶解、分散又は懸濁してもよい。分析物を含有するサンプルが液体である場合には、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートを直接サンプルと混合することができる。上記のように分析物を含有するサンプルが液体である場合には、例えば水又はバッファーに溶解、分散又は懸濁しなくてもよい。上記方法では、バッファーの濃度は本発明の分野で通常使用される範囲から選択される。バッファーのｐＨも本発明の分野で通常使用される範囲から選択される。例えば、サンプルと、アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートをＦＡＳＳ法により濃縮する場合には、接触段階は低伝導率のバッファー中で実施することが好ましい。更に、ＦＡＳＳ法により濃縮法を実施する場合には、例えば低濃度のＨｅｐｅｓ、Ｔａｐｓ及びＴｒｉｓバッファー等の低伝導率のバッファーを低塩濃度で使用することが好ましい。
サンプルをアフィニティー分子と接触させるため、換言するならば、分析物とアフィニティー分子との複合体を形成するためのｐＨと温度は分析物とアフィニティー分子の性質に依存し、反応条件は濃縮効率にも影響するので、これらの条件を最適化することは通常困難である。しかし、本発明の方法では、複合体の形成を妨げない限り、本発明の分野（例えば公知ＥＩＡ、ＲＩＡ、ＦＩＡ又はハイブリダイゼーションアッセイ）で通常使用されている従来方法に従って反応条件を選択することができる。即ち、接触段階は通常はｐＨ約２〜１０、好ましくはｐＨ５〜９で通常は０〜９０℃、好ましくは５〜４０℃の温度で実施することができる。複合体の形成に必要な反応時間は分析物及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲートの性質によって異なるので、反応はそれらの性質に応じて数秒間から数時間実施することができる。
Ｄ．アフィニティー分子
本発明では、１個以上の追加のアフィニティー分子（例えば荷電キャリヤー分子と結合していないアフィニティー分子）を使用することができる。１個以上の追加のアフィニティー分子を使用する目的の一つは目的物質の分離と検出をより容易にすることである。追加のアフィニティー分子の特性、このような分子の例、使用濃度等については上述した通りである。追加のアフィニティー分子は上述のように検出マーカーで標識されていてもよい。検出マーカー、その好ましい例、使用する標識方法等については上述した通りである。
Ｅ．コンジュゲートとアフィニティー分子の使用
コンジュゲートとアフィニティー分子を使用する場合には、分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子とアフィニティー分子／荷電キャリヤー分子コンジュゲートに接触させ、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとの複合体を形成させ、少なくとも１個の濃縮（例えばスタッキング）チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの濃縮（例えばスタッキング）チャネルを使用することにより、得られた複合体を濃縮する。
本発明では、２個以上のアフィニティー分子と２個以上のコンジュゲートを使用することができる。この場合には、各アフィニティー分子（各コンジュゲートのアフィニティー分子を含む）は他の全アフィニティー分子と異なる目的物質上の位置で目的物質と結合する。アフィニティー分子とコンジュゲートの両方を使用する場合には、アフィニティー分子とコンジュゲートの少なくとも一方は通常、所定の従来方法により測定（例えば検出）できるものであるか又は検出マーカーで標識することが可能なものである。このような性質をもつアフィニティー分子又はコンジュゲートを使用すると、サンプル中の分析物を測定し易くなる。分析物自体が所定の方法により検出可能なもの（例えば酵素等）である場合、又は分析物がアフィニティー分子又はコンジュゲートなしに検出マーカーと直接結合できる場合には、アフィニティー分子とコンジュゲートが上記検出可能な性質を有さない場合でもサンプル中の分析物を測定することができる。２個以上のアフィニティー分子又は２個以上のコンジュゲートを使用する場合には全アフィニティー分子又は全コンジュゲートがこのような検出可能な性質を有する必要はない。上記方法において、検出マーカー、アフィニティー分子又はコンジュゲートを検出マーカーで標識するために使用する方法等については上述した通りである。
分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子とコンジュゲートに接触させて分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートの複合体を形成するためには、このような複合体を作製し得る限り、特に制限はない。例えば，分析物を含有するサンプルとアフィニティー分子とコンジュゲートを例えば水又はｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファーに夫々溶解、分散又は懸濁して液体材料を得、これらの液体材料を相互に混合接触させればよい。あるいは、サンプルとアフィニティー分子とコンジュゲートを同時に溶解、分散又は懸濁してもよい。分析物を含有するサンプルが液体である場合には、アフィニティー分子及び／又はコンジュゲートをサンプルと直接混合することができる。上記のように分析物を含有するサンプルが液体である場合には、例えば水又はバッファーに溶解、分散又は懸濁しなくてもよい。
上記方法では、バッファーの濃度は本発明の分野で通常使用される範囲から選択される。サンプルをアフィニティー分子とコンジュゲートに接触させる段階におけるアフィニティー分子とコンジュゲートの濃度については上述した通りである。反応条件（例えばｐＨ、温度、反応時間等）はサンプルとアフィニティー分子の上記接触条件と同じである。
Ｆ．荷電ポリマー
本発明の濃縮法では上記荷電ポリマーも使用してもよい。干渉成分と結合することができる荷電ポリマーは例えば成分のコンジュゲート又はコンジュゲートとアフィニティー分子への非特異的結合に起因する疑陽性移動度シフトや、コンジュゲート又はコンジュゲートとアフィニティー分子／成分複合体の不溶性複合体の形成に起因するアッセイの不成功を防止することができるので、本発明の濃縮法では荷電ポリマーを使用することが好ましい。荷電ポリマー、その特性、その例、使用濃度等については上述した通りである。荷電ポリマーを使用する場合には、分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体を荷電ポリマーの存在下で濃縮することができる。
例えば、荷電ポリマーは少なくとも１個の濃縮チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの濃縮（例えばスタッキング）チャネルに存在させるのが好ましい。具体的には、濃縮チャネルに充填された濃縮（例えばスタッキング）媒体に荷電ポリマーを添加するのが好ましい。濃縮媒体に荷電ポリマーを存在させることにより、サンプル分析間の干渉サンプル成分のキャリーオーバーを低減することができる。代替又は付加態様では、荷電ポリマーは分析物と分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体を含有する溶液（例えば水、ハイブリダイゼーションアッセイ、イムノアッセイ等で使用されるｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファー）中に存在させてもよく、その後、得られた荷電ポリマーと分析物と分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体を含有する溶液を濃縮チャネルに添加する。更に、荷電ポリマーは、例えば濃縮に使用する溶離液やランニングバッファー（例えば水、ハイブリダイゼーションアッセイ、イムノアッセイ等で使用されるｔｒｉｓ−バッファー、リン酸バッファー、ベロナールバッファー、硼酸バッファー、グッドバッファー、ＳＳＣバッファー、ＴＢＥバッファー、ＴＡＥバッファー等のバッファー）等の、分析物と分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体を含有する溶液をマイクロフルイディックデバイスに添加するために使用される溶液中に存在させてもよい。上記方法において、分析物と分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体とを含有する溶液中に荷電ポリマーを存在させる方法については上述した通りである。
更に、本発明の濃縮法では、上述したような理由により、荷電ポリマーは少なくとも濃縮段階で（例えば濃縮媒体中に）存在させることが好ましいが、付加及び／又は代替態様では、分析物を含有するサンプルをコンジュゲート又はコンジュゲートとアフィニティー分子に接触させて複合体を形成させる段階に存在させてもよい。本発明の好適態様では、サンプル中に存在する目的物質の回収率を増すために、荷電ポリマーは分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体の濃縮段階（例えば濃縮媒体中）と、分析物を含有するサンプルとコンジュゲート又はコンジュゲートとアフィニティー分子を接触させて複合体を形成させる段階の両者に存在させる。
上記方法において、サンプルとコンジュゲートの接触段階又はサンプルとコンジュゲートとアフィニティー分子との接触段階に荷電ポリマーを存在させる方法については上述した通りである。使用する荷電ポリマーの濃度等についても上述した通りである。
Ｇ．濃縮操作
得られた分析物（又は類似体）とコンジュゲートの複合体、分析物（又は類似体）とコンジュゲートとアフィニティー分子との複合体又は分析物（又は類似体）と荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子との複合体を濃縮する。具体例はキャピラリーで電気泳動移動度の差を利用する電気泳動濃縮法（例えばＦＡＳＳ，ＦＡＳＩ，ＩＴＰ，ＩＦ等）、吸着剤を利用する化学吸着濃縮法（例えばＳＰＥ等）等のオンラインサンプル濃縮法ないしサンプルスタッキング操作である。特に、電気泳動濃縮法を使用するのが好ましい（その開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＲ．Ｌ．Ｃｈｉｅｎ，Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ，２４，４８６−４９７，２００３）。
電気泳動濃縮法のうちでは、所謂動電フォーカシングに基づく方法（例えばＩＴＰ，ＦＡＳＳ，ＦＡＳＩ等）が好ましい。このような方法は例えば以下の原理に基づく。濃縮チャネル内の移動用バッファーゾーンにおける被濃縮目的物質の電気泳動移動度が濃縮チャネルに添加される前の目的物質を含有する溶液ゾーンにおける電気泳動移動度よりも遅くなるように適切なバッファーを選択及び使用することにより、目的物質が目的物質を含有する溶液ゾーンと濃縮チャネル内の移動用バッファーゾーンの境界まで移動すると、目的物質の移動速度は境界で低下し、目的物質は濃縮される（例えばその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込むＲ．Ｌ．Ｃｈｉｅｎ，Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ，２４，４８６−４９７，２００３，Ｒ．Ｌ．Ｃｈｉｅｎ，Ｄ．Ｓ．Ｂｕｒｇｉ，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，６４，４８９Ａ，１９９２，Ｄ．Ｓ．Ｂｕｒｇｉ，Ｒ．Ｌ．Ｃｈｉｅｎ，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，６３，２０４２，１９９１，Ｒ．Ｌ．Ｃｈｉｅｎ，Ｄ．Ｓ．Ｂｕｒｇｉ，Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．，５５９，１４１，１９９１）。上記方法を使用することにより本発明の濃縮法を実施するためには、濃縮チャネル内の移動用バッファーにおける複合体［例えば分析物（又は類似体）／コンジュゲート複合体、分析物（又は類似体）／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体又は分析物（又は類似体）／荷電キャリヤー分子／アフィニティー分子複合体］の電気泳動移動度が濃縮段階に添加する複合体を含有する溶液における電気泳動移動度よりも遅くなるような性質を有するバッファーを、濃縮チャネル内の移動用バッファーとして使用することにより、得られた分析物（又は類似体）とコンジュゲートの複合体、分析物（又は類似体）とコンジュゲートとアフィニティー分子の複合体、又は分析物（又は類似体）と荷電キャリヤー分子とアフィニティー分子の複合体の濃縮が実施される。その結果、複合体が複合体を含有する溶液と濃縮チャネル内の移動用バッファーの境界まで移動すると、複合体の移動速度は境界で低下し、複合体は濃縮される。特に、より具体的には、例えば以下の原理に基づくＦＡＳＳ、ＩＴＰを使用するのが好ましい。ＩＴＰは目的物質よりも電気泳動移動度の速いリーディングイオンと目的物質よりも電気泳動移動度の遅いトレーリングイオンの２種のイオンの間に目的物質を配置することにより目的物質を濃縮するという原理に基づく方法である。ＦＡＳＳは分離ドメインの伝導率を濃縮ドメインよりも高くし、濃縮ドメイン内の物質が分離ドメインと濃縮ドメインの境界に到達した際に目的物質の電気泳動移動度が低下し、その後、物質が濃縮されるという原理に基づく方法である（例えば米国特許出願第１０／２０６，３８６号“Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ，Ｄｅｖｉｃｅｓ ａｎｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ｆｏｒ Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｍａｔｅｒｉａｌ Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ”，Ｗｅｉｓｓ，Ｄ．Ｊ．，Ｓａｕｎｄｅｒｓ，Ｋ．，Ｌｕｎｔｅ，Ｃ．Ｅ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ２００１，２２，５９−６５；Ｂｒｉｔｚ−ＭｃＫｉｂｂｉｎ，Ｐ．，Ｂｅｂａｕｌｔ，Ｇ．Ｍ．，Ｃｈｅｎ，Ｄ．Ｄ．Ｙ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２０００，７２，１７２９−１７３５，Ｒｏｓｓ，Ｄ．，Ｌｏｃａｓｃｉｏ，Ｌ．Ｅ．Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ．２００２，７１，５１３７−５１４５）。上記濃縮法のうちでは、分析物と結合したコンジュゲート中の荷電キャリヤー分子の電荷に基づいて複合体を濃縮する濃縮法を使用することが好ましい。
本発明では、上記のような濃縮法で従来使用されている全てのバッファー、充填剤、各種試薬（例えば処理溶液）等を利用することができる。これらの材料の濃度は場合により公知濃縮法に従って選択することができる。濃縮条件（例えばｐＨ、温度、印加電圧、時間等）は公知方法に従って適当に選択することができる。
マイクロフルイディックデバイスで等速電気泳動法（ＩＴＰ）により対象分析物を元の分析物サンプルよりも小容量にスタッキング（例えば濃縮）することができる。例えば、サンプルボーラスをチャネル内の２種のバッファーシステムの間に導入し、電流を流し、移動度が低下する順に移動する溶質ゾーンの定常状態を作ることができる。定常状態では、ゾーンはリーディング電解液と同じ濃度であり、同じ速度でチャネルを移動することができる。あるいは、サンプルボーラスを電解液付近に添加し、例えばＩＴＰ電解液間で定常状態平衡に到達することなしに、動的（例えば過渡的）条件下で注入用界面にスタッキングすることができる。スタッキングは例えばマイクロフルイディックデバイスの濃縮（例えばスタッキング）チャネルで実施することができ、サンプルはトレーリング電解液とリーディング電解液のチャネル領域間にロードされる。
図８Ａに示すように、分析物サンプル８０を真空ウェル８２とサンプルウェル８３の圧力差によりローディングチャネルセグメント８１にロードすることができる。電場をスタッキング（例えば濃縮）チャネルセグメント８４に印加すると、図８Ｂに示すように、高移動度（例えば高電荷対質量比）のリーディング電解液８５、中間移動度の分析物８６、及び低移動度のトレーリング電解液８７により電流が流れる。ＩＴＰが進行するにつれ、荷電分析物８６の濃度がリーディング電解液８５の濃度に等しくなる点まで分析物８６の容量が低下する定常状態に達する。定常状態では、図８Ｃに示すように、スタッキングされた分析物溶液はリーディング電解液８５及びトレーリング電解液８７と同一速度でスタッキングチャネルセグメント８４を移動し、電解液と荷電分析物はスタッキングチャネルセグメントにおいて単位容量当たり同一量の電流を輸送する。分析物と電解液の電荷密度や過渡的移動速度差等の因子はＩＴＰ中に分析物と電解液をゾーンに分ける傾向がある。本発明のスタッキングチャネルセグメントは任意サイズとすることができ、約５００μｍ〜約０．１μｍ、又は約１００μｍ〜約１μｍ、又は約１０μｍの幅又は深さ等の寸法を有するマイクロスケールチャネルが挙げられる。
スタッキングは過渡状態で実施することもできる。例えば、図９Ａに示すように、当初は希薄で分散した分析物分子９０は例えば図９Ｂに示すようにリーディング電解液界面９１に蓄積させることができる。界面におけるこの分析物濃縮は定常状態の均一な分析物と電解液キャリヤーの濃縮に達する前に行われる。場合により、分析物は過渡状態、例えばＩＴＰの初期電場印加中にトレーリング電解液界面９２に蓄積させることができる。過渡ＩＴＰの他の態様では、分析物はＩＴＰ電解液の界面以外のゾーンで濃縮させることもできる。複数の対象分析物が定常状態又は過渡状態で例えば電解液界面の一方又は両方に蓄積される。例えば図１０Ａ〜１０Ｃに示すように、第１の対象分析物１０１と第２の対象分析物１０２を含有するサンプル溶液１００をトレーリング電解液１０３とリーディング電解液１０４の間に導入することができる。第１の分析物の移動度が第２の分析物よりも遅く且つトレーリング電解液の移動度よりも速い場合には、第１の分析物は電場の存在下にトレーリング電解液との界面に蓄積される。他方、図１０Ｂに示すように過渡状態では、第１の分析物よりも多少移動度の速い第２の分析物は更に移動度の速いリーディング電解液との界面に沿ってサンプルボーラスの他端に蓄積される。こうして、当業者に自明の通り、第１の分析物と第２の分析物を１個以上の分離チャネルセグメントに別々に逐次又は同時に添加することができる。図１０Ｃに示すように、ＩＴＰ中に定常状態に一旦達すると、第１及び第２の荷電分析物は例えば分離チャネルセグメントで分解するために同時に添加できるように狭い隣接バンドに圧縮される。
本発明の方法では、トレーリング電解液とリーディング電解液の移動度は非対象サンプル成分を分析物から分離しながら対象分析物の選択的前濃縮を実施できるように調節することができる。例えば、図１１Ａに示すように、対象分析物１１１と低移動度の非対象サンプル成分１１２と高移動度の非対象サンプル成分１１３を含有するサンプル溶液１１０をトレーリング電解液１１４とリーディング電解液１１５の間にロードすることができる。電場をチャネルに印加すると、図１１Ｂに示すように、低移動度の非対象サンプル成分１１２はトレーリング電解液よりも遅れ、高移動度の非対象サンプル成分１１３はリーディング電解液を追い越す。定常状態までＩＴＰを続けると、例えば図１１Ｃに示すように、非対象サンプル成分を分析物から更に分離することができる。非対象サンプル成分を対象分析物から除去すると、分離チャネルセグメントで分離するための材料注入を改善することができる。サンプルをＩＴＰにより前処理して非対象サンプル成分を除去した後、分離チャネルセグメントに添加した対象分析物を分析すると、例えばバックグラウンドノイズが低下し、注入容量の低減により分解能が増加し、ベースラインの改善とオーバーラップするピークの減少により定量確度が増す等の効果が得られる。
非対象サンプル成分を除去しながら対象分析物の高度に特異的な保持とスタッキング（例えば濃縮）を実現するように電解液移動度を調節することにより、当分野で公知の方法によりトレーリング電解液とリーディング電解液を調整することができる。１態様では、電解質のｐＨは、分析対象物のｐＫをはさむ範囲に入るように選択され、これによりその範囲以外のｐＫをもつサンプル中の非対象成分は、ＩＴＰによって除外される。対象分析物のｐＫは例えば経験によるか又は分析物の既知分子構造に基づいて求めることができる。他の態様では、例えば分析物よりも遅い移動度と速い移動度をもつことがわかっているトレーリング電解液とリーディング電解液の組成の範囲に対象分析物が厳密に含まれるように選択することができる。分析物の範囲を設定するには、例えば塩化物、ＴＡＰＳ、ＭＯＰＳ、及びＨＥＰＥＳ等の多数のイオンとバッファーを電解液で使用することができる。場合により、サンプル溶液、トレーリング電解液、及び／又はリーディング電解液の粘度又はサイズ排除特性を調節することにより、電解液及び／又は分析物の移動度を調節することができる。ＩＴＰ溶液の移動度を調節する別の手段としては、溶液の濃度、イオン強度、又は伝導率を調節することにより、特に過渡的ＩＴＰ移動中に、分析物溶液及び／又は電解液の移動度を調節することができる。分析物、電解液、又はＩＴＰ溶液の移動度を調節するための更に他の手段として、溶液の温度を選択することができる。
本発明を実施してサンプル中の対象分析物を検出する目的で濃縮するためには当分野で公知の種々の免疫化学アッセイ技術を使用することができ、例えば抗体サンドイッチアッセイや酵素イムノアッセイ（イムノアッセイの一般論については例えばＢｏｌｔｏｎら，Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，Ｗｅｉｒ，Ｄ．Ｍ．，Ｅｄ．，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ，１９８６，ｖｏｌ．１，Ｃｈａｐｔｅｒ ２６参照）、及び当業者に公知の他の同様のアッセイフォーマットが挙げられる。例えば、図３Ａ〜３Ｋに示す上記アッセイフォーマットでは、本発明を使用して分析物又は分析物の類似体とコンジュゲートを含む複合体を濃縮することができる。
上記図３Ａ〜３Ｆに示すサンドイッチアッセイフォーマットの具体例を以下に挙げる。（ａ）サンプル中の分析物の濃縮法が開示され、（ｉ）アフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートの少なくとも１個が検出マーカーで標識された、１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物と検出マーカーで標識されたコンジュゲートとを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの濃縮チャネルで複合体を濃縮する段階を含み；コンジュゲートのアフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の移動特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
（ｂ）サンプル中の分析物の濃縮法が開示され、（ｉ）アフィニティー分子の少なくとも１個又はコンジュゲートの少なくとも１個が検出マーカーで標識されたものであり、１個以上のアフィニティー分子及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートを含む複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）マイクロフルイディックデバイスの濃縮チャネルで複合体を濃縮する段階を含み；アフィニティー分子及びコンジュゲートのアフィニティー分子が分析物と結合することが可能な性質を有するものであって、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なる分析物上の位置で分析物と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の移動特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
上記図３Ｇ〜３Ｋに示す競合アッセイフォーマットの具体例を以下に挙げる。（ａ）サンプル中の分析物の濃縮法が開示され、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物（又は類似体）及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物とコンジュゲートとの第１の複合体及び標識分析物（又は標識類似体）とコンジュゲートとの第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）第２の複合体を濃縮する段階を含み；コンジュゲートのアフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のコンジュゲートを使用する場合には、コンジュゲートの各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質を有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して標識分析物又は標識類似体と結合して標識分析物又は標識類似体とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより標識分析物又は標識類似体の移動特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
（ｂ）サンプル中の分析物の濃縮法が開示され、（ｉ）検出マーカーで標識された分析物（又は類似体）、１個以上のアフィニティー分子及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させ、分析物とアフィニティー分子とコンジュゲートとの第１の複合体及び標識分析物（又は標識類似体）とアフィニティー分子とコンジュゲートとの第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）第２の複合体を濃縮する段階を含み；アフィニティー分子及びコンジュゲートのアフィニティー分子がサンプル中の分析物及び標識分析物又はサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び標識分析物上の位置でサンプル中の分析物及び標識分析物と結合することが可能な性質をも有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の各分析物上の位置及び標識類似体上の位置でサンプル中の分析物及び標識類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して標識分析物又は標識類似体と結合して標識分析物又は標識類似体とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより標識分析物又は標識類似体の移動特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
（ｃ）サンプル中の分析物の濃縮法が開示され、（ｉ）荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は荷電キャリヤー分子と結合した類似体）及び検出マーカーで標識された１個以上のアフィニティー分子に分析物を含有するサンプルを接触させ、荷電キャリヤー分子と結合した分析物（又は荷電キャリヤー分子と結合した類似体）と標識アフィニティー分子との第１の複合体及び分析物と標識アフィニティー分子との第２の複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）第１の複合体を濃縮する段階を含み；アフィニティー分子がサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物又はサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体と結合することが可能な性質を有するものであって、２個以上のアフィニティー分子を使用する場合には、各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物上の位置でサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した分析物と結合することが可能な性質をも有するか、又は各アフィニティー分子が他の全アフィニティー分子と異なるサンプル中の分析物上の位置及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体上の位置でサンプル中の分析物及び荷電キャリヤー分子と結合した類似体と結合することが可能な性質を有し、荷電キャリヤー分子が分析物又は類似体と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより第１の複合体の移動特性に変化を生じさせることが可能な性質を有するものである。
Ｈ．マイクロフルイディックデバイス
本発明では、通常、上記濃縮法に基づくマイクロフルイディックデバイスを含むマイクロフルイディックシステムを使用することにより分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／コンジュゲート／アフィニティー分子複合体の濃縮を実施することができる。本発明の濃縮法で使用するマイクロフルイディックデバイスは濃縮媒体を充填することができる少なくとも１個以上の濃縮（例えばＩＴＰスタッキング）チャネルを有するものである。本発明の濃縮法では濃縮媒体を充填することができる少なくとも１個以上の濃縮チャネルと濃縮チャネルに流体的に接続されたチャネルを有するマイクロフルイディックデバイスを使用することが好ましい。濃縮チャネルと濃縮チャネルに流体的に接続されたチャネルは上記分離チャネルと同じ特性をもつものである。本発明の濃縮法の実施後に引き続き目的物質の分離と測定を実施する場合には、上記のような１個以上の分離チャネル、サンプル導入チャネル、サンプル混合チャネル、検出器等を更に含むマイクロフルイディックデバイスを使用するのが好ましい。
Ｉ．濃縮媒体
濃縮媒体は上記分離媒体と同一とすることができる。濃縮媒体は使用される濃縮法に応じて適宜選択される。使用される濃縮媒体の濃度は使用される濃縮法に応じて上記範囲から適宜選択される。使用される濃縮法によってはこのような濃縮媒体を使用する必要はない。
Ｊ．分離と検出
得られたサンプル中の濃縮分析物（例えば分析物又は分析物の類似体とコンジュゲートを含む複合体）を上記移動度シフトアッセイに適用する。本発明の濃縮法により濃縮された分析物を移動度シフトアッセイに適用することにより、分析物を高感度で測定（例えば同定又は検出）することができる。本発明の濃縮法により濃縮された分析物は上記任意の移動度シフトアッセイで使用することができる。即ち、得られた目的物質及び荷電キャリヤー分子とアフィニティー物質とのコンジュゲートを含む濃縮複合体（例えば分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体）を複合体と遊離のアフィニティー物質の移動速度の差に基づいて複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質（例えばアフィニティー分子及び／又はコンジュゲート）から分離する。その後、上記分離法により分離された分析物／アフィニティー物質複合体（又は分析物／コンジュゲート複合体又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体）又は複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー物質（例えば遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲート）を該当分子の検出可能な性質の特性に対応する方法（例えば結合した検出マーカー）により測定又は検出することができる。こうして、サンプル中の分析物の量を測定するか又はサンプル中の分析物の存在を同定することができる。即ち、上記分離法に従って、分析物／コンジュゲート複合体を複合体の形成に関与しない遊離のコンジュゲートから分離するか、又は分析物／アフィニティー分子／コンジュゲート複合体を複合体の形成に関与しない遊離のアフィニティー分子及び／又はコンジュゲートから分離する。得られた複合体、又は遊離のアフィニティー分子及び／又は遊離のコンジュゲートをこれらの特性に対応する方法（例えば検出マーカー）により測定又は検出することができる。分離操作、分離媒体、検出等については上述した通りである。
本発明の濃縮法により濃縮された分析物を本発明の上記分離及び検出法に適用すれば、目的物質の高感度で高確度の測定を達成することができる。本発明の濃縮法により濃縮された分析物を移動度シフトアッセイに適用する場合には、適用する移動度シフトアッセイの原理は分析物を濃縮するための濃縮法の原理と同一でもよいし、分析物を濃縮するための濃縮法の原理と異なるものでもよい。目的物質を高確度で分離及び測定するためには、移動度シフトアッセイの原理は分析物を濃縮するための濃縮法の原理と異なることが好ましい。例えば、分析物を濃縮するためにＩＴＰを使用する場合には、分離及び測定のための移動度シフトアッセイはＩＴＰ以外の方法（例えばＦＡＳＳ、ＦＡＳＩ、ＩＦ等）から適宜選択される。
上記方法の非限定的な具体例を以下に挙げる。サンプル中の対象分析物の検出又は同定方法が開示され、（ｉ）分析物を含有するサンプルをアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに接触させて分析物とコンジュゲートとの複合体を形成させる段階と；（ｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の濃縮チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの濃縮チャネルを使用することにより複合体を濃縮する段階と；（ｉｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法を有する少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルを使用することにより必要に応じて荷電ポリマーの存在下に複合体と未結合のコンジュゲートを分離する段階と；（ｉｖ）複合体を検出して分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定する段階を含み；荷電ポリマーが検出干渉を低減するものであり；荷電キャリヤー分子がアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の移動特性に変化を生じさせるものである。
以下、非限定的な実施例により移動度シフトアッセイにおける干渉を低減するための本発明の種々の使用と方法を例証する。
以下の非限定的な実施例はα−フェトプロテインイムノアッセイにおける血清干渉をブロックするための荷電ポリマーとしてのヘパリン硫酸の使用を例証する。
試薬：
ゲル：２．５％ｐＤＭＡ／３％グリセロール／０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０／０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ／ＮａＣｌ／２．５ｍｇ／ｍｌＬＣＡ（ｐＨ：７．５）。
血清サンプル用バッファー（以下、サンプルバッファーと略す）：７．５ｍＭ ＨＥＰＥＳ／０．０２５％Ｔｗｅｅｎ−２０／０．１％ＢＳＡ＋２０ｎＭ抗ＡＦＰモノクローナル抗体ＷＡ−２ ＩｇＧ（ｐＨ：７．５）。モノクローナル抗体は社内で作製した（Ｈ．Ｋａｔｏｈら，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９８）７０，２１１０−２１１４）。
抗体用バッファー（以下、抗体バッファーと略す）：７．５ｍＭ ＨＥＰＥＳ／ＮａＣｌ／０．０２５％Ｔｗｅｅｎ−２０／０．０１％ＢＳＡ（ｐＨ：７．５）。
標識抗ＡＦＰ抗体／ＤＮＡコンジュゲート：３ｎＭ ４Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ６４７抗ＡＦＰモノクローナル抗体ＷＡ−１−１４０ｂｐ ＤＮＡコンジュゲート；Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ６４７色素はＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｅｕｇｅｎｅ，Ｏｒｅｇｏｎ）から購入し、ＤＮＡ荷電キャリヤー分子はＰＣＲ反応により作製した。抗ＡＦＰモノクローナル抗体ＷＡ−１はＷＡ−２と異なるＡＦＰのエピトープを認識する。コンジュゲートは先にその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込んだ日本特許出願第ＷＯ０２／０８２０８３号に記載の方法に従って作製した。モノクローナル抗体は社内で作製した（Ｈ．Ｋａｔｏｈら，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９８）７０，２１１０−２１１４）。１４０ｂｐ ＤＮＡは次のように作製した。フォワードプライマーとして合成配列５’−ＧＧＴＴＡＧＣＡＡＣＴＴＡＣＴＡＣＣＧＧＡＴＴＴＴＧ−３’、リバースプライマーとして合成配列５’−ＣＣＴＡＧＣＡＡＡＣＴＣＧＧＡＡＧＡＴＴＴＴＴＴＣＡＧＡ−３’及び鋳型としてλＤＮＡ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏ Ｌａｂｓ，Ｉｎｃ．，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ製品）を使用することによりＰＣＲ反応を実施した。アニール温度は６０℃とした。増幅後、増幅ＤＮＡフラグメントを精製し、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ ２１００ ＤＮＡキット（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，ＣＡ）を使用して１４０ｂｐ長であることを確認した。
荷電ポリマー：ヘパリン硫酸（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）。
移動度シフトアッセイ：
ヘパリン硫酸を添加しないサンプルバッファー（図４）と０．０５％ヘパリン硫酸を添加したサンプルバッファー（夫々図５Ａ〜Ｂ及び６Ａ〜Ｂ）で血清サンプルを１０倍に希釈し、（図２に示したものと同様のマイクロフルイディックチップ２０を使用して）オンチップで標識抗ＡＦＰ抗体−ＤＮＡコンジュゲートと混合した。（例えば図２のチップ２０のインキュベーションチャネル２４で）オンチップで１分間インキュベーション中にコンジュゲート複合体が形成された。（例えば図２のマイクロフルイディックチップ２０のインキュベーションチャネル２４で）インキュベーション後に、得られた混合物を電気泳動によりスタッキングし、夫々ヘパリン硫酸を添加しない（図４）か、０．１％ヘパリン硫酸（図５）、及び１％ヘパリン硫酸（図６）を添加したｐＤＭＡポリマーを充填した分離チャネル（例えば図２のチップ２０の分離チャネル２５）に注入した。図２のチップ２０の分離チャネル２５に電圧を印加し、移動度の異なる遊離のコンジュゲートと複合体とを分離した。サンプルバッファーとゲル内のヘパリン硫酸は血清成分がコンジュゲートのＤＮＡ部分に非特異的に結合するのを防止すると共に、分離中のゲル内の血清干渉をブロックするように作用した。例えば、図４はサンプル又は分離媒体（例えばゲル）に荷電ポリマー（例えばヘパリン硫酸）を添加しない場合の分離媒体中のコンジュゲートピーク４０（例えばＤＮＡ−抗体−ａｌｅｘａ色素コンジュゲート）（例えば無血清）及び４０’（例えば１０％血清添加）間とコンジュゲート／ＡＦＰ複合体ピーク４２（無血清）及び４２’（１０％血清添加）間のα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示す。
血清をサンプルに添加すると、図４に参照番号４０’及び４２’で示すように干渉成分が複合体ピーク４０及び４２の保持時間、高さ、及び面積を変化させる。荷電ポリマー（例えばヘパリン硫酸）をアッセイに添加すると、図５Ａ〜Ｂ及び６Ａ〜Ｂに示すように干渉変化を低減することができる。図５Ａ〜Ｂはサンプルに０．０５％ヘパリン硫酸を添加した場合と分離媒体に０．１％ヘパリン硫酸を添加した場合のα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示し、ヘパリン硫酸がＤＮＡポリマーと非特異的に結合するサンプル成分と結合することにより検出干渉を低減する効果をもつことが分かる（例えば血清サンプルからのＡＦＰ回収率約６０％）。図６Ａ〜Ｂはサンプルに０．０５％ヘパリン硫酸を添加した場合と分離媒体に１％ヘパリン硫酸を添加した場合のα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示し、夫々ほぼオーバーラップするコンジュゲートピーク４０及び４０’とＡＦＰ／コンジュゲート複合体ピーク４２及び４２’から明らかなように、血清サンプルからのＡＦＰ回収率は約１００％である。このように、分離媒体とサンプルバッファーに荷電ポリマーとしてヘパリン硫酸を添加すると、キャリヤー分子と非特異的に結合するサンプル成分と結合することにより分析物検出への干渉の低減に顕著な効果がある。
以下の非限定的な実施例は血清を添加したＡＦＰアッセイにおけるＩＴＰの使用を例証し、５％血清を添加し、０．０１％Ｐｏｌｙ ｄＩ−ｄＣを添加した場合と添加しない場合の結果を示す電気泳動図の１例である。本実施例ではヘパリン硫酸の代わりにｐｏｌｙ（ｄＩ−ｄＣ）を荷電ポリマーとして使用し、血清干渉を排除した。ｐｏｌｙ（ｄＩ−ｄＣ）の濃度は約０．０１％（ｗ／ｖ）とした。
リーディングバッファー：１５ｍＭ Ｔｒｉｓ／５０ｍＭ ＮａＣｌ／０．９％ｐＤＭＡ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０／０．０１％ＢＳＡ。
トレーリングバッファー：１５ｍＭ Ｔｒｉｓ／２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ／０．９％ｐＤＭＡ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０／０．０１％ＢＳＡ。
リーディングバッファー中のサンプルに１０％血清と１００ｎＭ 抗ＡＦＰモノクローナル抗体ＷＡ−２ ＩｇＧ、１００μｇ／ｍｌ ｐｏｌｙ（ｄＩｄＣ）を添加した。モノクローナル抗体は社内で作製した（Ｈ．Ｋａｔｏｈら，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９８）７０，２１１０−２１１４）。
サンプルをＡｂ溶液と１：１で混合することにより結合反応をオフチップで実施した。
標識抗ＡＦＰ抗体／ＤＮＡコンジュゲート：５００ｐＭ ２Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ６４７抗ＡＦＰモノクローナル抗体ＷＡ−１−１４０ｂｐ ＤＮＡコンジュゲート；Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ６４７色素はＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｅｕｇｅｎｅ，Ｏｒｅｇｏｎ）から購入し、ＤＮＡ荷電キャリヤー分子はＰＣＲ反応により作製した。抗ＡＦＰモノクローナル抗体ＷＡ−１はＷＡ−２と異なるＡＦＰのエピトープを認識する。コンジュゲートは先にその開示内容全体を参考資料として本明細書に組込んだ日本特許出願第ＷＯ０２／０８２０８３号に記載の方法に従って作製した。モノクローナル抗体は社内で作製した（Ｈ．Ｋａｔｏｈら，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９８）７０，２１１０−２１１４）。１４０ｂｐ ＤＮＡは次のように作製した。フォワードプライマーとして合成配列５’−ＧＧＴＴＡＧＣＡＡＣＴＴＡＣＴＡＣＣＧＧＡＴＴＴＴＧ−３’、リバースプライマーとして合成配列５’−ＣＣＴＡＧＣＡＡＡＣＴＣＧＧＡＡＧＡＴＴＴＴＴＴＣＡＧＡ−３’及び鋳型としてλＤＮＡ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏ Ｌａｂｓ，Ｉｎｃ．，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ製品）を使用することによりＰＣＲ反応を実施した。アニール温度は６０℃とした。増幅後、増幅ＤＮＡフラグメントを精製し、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ ２１００ ＤＮＡキット（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，ＣＡ）を使用して１４０ｂｐ長であることを確認した。
荷電ポリマー：Ｐｏｌｙ（ｄＩ−ｄＣ）（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）。
図７Ａ〜Ｂは上記実施例１で使用したのと同様のマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルにおける分離媒体中で実施した、コンジュゲートピーク５０（例えばＤＮＡ−抗体−Ａｌｅｘａ色素コンジュゲート）（５％血清を添加し、Ｐｏｌｙ ｄＩ−ｄＣ不添加）及び５０’（５％血清と約０．０１％Ｐｏｌｙ ｄＩ−ｄＣを添加）間とコンジュゲート／ＡＦＰ複合体ピーク５２（５％血清を添加し、Ｐｏｌｙ ｄＩ−ｄＣ不添加）及び５２’（５％血清と約０．０１％Ｐｏｌｙ ｄＩ−ｄＣを添加）間のα−フェトプロテインアッセイの時間（Ｘ軸）に対する相対蛍光強度（Ｙ軸）の移動度シフトチャートを示す。図７Ａ〜Ｂから明らかなように、荷電ポリマー（例えばＰｏｌｙ ｄＩ−ｄＣ）をアッセイに添加すると、ＤＮＡポリマーと非特異的に結合するサンプル成分と結合することにより検出干渉を低減することができる（例えば血清サンプルからのＡＦＰ回収率約６０％）。ＩＴＰ法を使用すると、サンプル濃縮ないしスタッキング技術を利用しない従来のキャピラリー電気泳動アッセイに比較してアッセイの感度を（例えば図面に相対ピーク高により示すように）約１００倍以上増加することができる。
以下の非限定的な実施例はＣＡ１９−９サンプルを濃縮するための荷電キャリヤー分子としてのＤＮＡの使用を例証する。
リーディングバッファー：１５ｍＭ Ｔｒｉｓ／５０ｍＭ ＮａＣｌ／０．２％ｐＤＭＡ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０／０．０１％ＢＳＡ。
トレーリングバッファー：１５ｍＭ Ｔｒｉｓ／２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ／０．２％ｐＤＭＡ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０／０．０１％ＢＳＡ
標識抗ＣＡ１９−９抗体：抗体とＡｌｅｘａ６４７スクシンイミド（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｅｕｇｅｎｅ，Ｏｒｅｇｏｎ，ＵＳＡ）を０．２Ｍ重炭酸ナトリウムバッファー（ｐＨ８．３）中で２時間混合することにより抗ＣＡ１９−９モノクローナル抗体（ＩｇＧ）（Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）をＡｌｅｘａで標識した後、反応混合物をゲル濾過及びＤＥＡＥイオン交換クロマトグラフィーに添加することにより未結合のＡｌｅｘａ色素を混合物から除去した。
抗ＣＡ１９−９抗体／ＤＮＡコンジュゲート：抗ＣＡ１９−９モノクローナル抗体（ＩｇＧ）（Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）と２５０ｂｐ ＤＮＡのコンジュゲートは日本特許出願第ＷＯ０２／０８２０８３号に記載の方法に従って作製した。２５０ｂｐ ＤＮＡは次のように作製した。５’末端にＮＨ２基をもつフォワードプライマーとして合成配列５’−ＡＴＣＴＡＴＧＡＣＴＧＴＡＣＧＣＣＡＣＴＧＴＣＣＣＴＡＧ−３’、リバースプライマーとして合成配列５’−ＣＣＴＡＧＣＡＡＡＣＴＣＧＧＡＡＧＡＴＴＴＴＴＴＣＡＧＡ−３’及び鋳型としてλＤＮＡ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏ Ｌａｂｓ，Ｉｎｃ．，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ製品）を使用することによりＰＣＲ反応を実施した。アニール温度は６０℃とした。増幅後、増幅ＤＮＡフラグメントを精製し、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ ２１００ ＤＮＡキット（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，ＣＡ）を使用して２５０ｂｐ長であることを確認した。
サンプル：下記方法により得られた標識抗ＣＡ１９−９抗体（ＣＡ１９−９不添加）、標識抗ＣＡ１９−９抗体とＣＡ１９−９の複合体を含む混合物、及び抗ＣＡ１９−９抗体／ＤＮＡコンジュゲートとＣＡ１９−９と標識抗ＣＡ１９−９抗体の複合体を含む混合物をサンプルとして使用した。
標識抗ＣＡ１９−９抗体（ＣＡ１９−９不添加）：２ｎＭ精製Ａｌｅｘａ標識抗ＣＡ１９−９。
標識抗ＣＡ１９−９抗体とＣＡ１９−９の複合体を含む混合物：２ｎＭ精製Ａｌｅｘａ標識抗ＣＡ１９−９を１０００Ｕ／ｍＬ ＣＡ１９−９（Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）と混合し、混合物を室温に３０分間維持して抗原−抗体複合体を作製した。抗ＣＡ１９−９抗体／ＤＮＡコンジュゲートとＣＡ１９−９と標識抗ＣＡ１９−９抗体の複合体を含む混合物：作製した抗ＣＡ１９−９抗体／ＤＮＡコンジュゲートを種々の濃度（０、１０又は１００Ｕ／ｍＬ）のＣＡ１９−９及び２ｎＭ Ａｌｅｘａ標識抗ＣＡ１９−９抗体と混合し、混合物を室温で３０分間インキュベートした。
濃縮操作：次に、導入チャネルの下流に配置し、リーディングバッファーを充填した濃縮チャネルと、濃縮チャネルの上流に配置し、トレーリングバッファーを充填したトレーリングバッファーチャネルとに流体的に接続された導入チャネルにサンプルを添加した。導入チャネルにサンプルを充填した後、電場を印加し、ＩＴＰ原理に従って濃縮を実施した。図１２Ａ〜Ｂはマイクロフルイディックデバイスの濃縮チャネルで実施したＣＡ１９−９濃縮の時間（Ｘ軸）に対する相対蛍光強度（Ｙ軸）の移動度シフトチャートを示す。
図１２Ａは標識抗ＣＡ１９−９抗体（ＣＡ１９−９不添加）（標識抗体ピーク１２１：例えば標識抗ＣＡ１９−９抗体）及び標識抗ＣＡ１９−９抗体とＣＡ１９−９の混合物（標識抗体／抗原複合体ピーク１２１’：例えば標識抗ＣＡ１９−９抗体とＣＡ１９−９抗原の複合体）の実験結果を示す。
図１２Ｂは標識抗ＣＡ１９−９抗体とＤＮＡ−標識抗ＣＡ１９−９抗体とＣＡ１９−９の混合物（コンジュゲート／抗原／標識抗体ピーク１２２：例えば０Ｕ／ｍＬ ＣＡ１９−９を使用することにより得られた抗ＣＡ１９−９抗体とＤＮＡ／ＣＡ１９−９抗原／標識抗ＣＡ１９−９抗体とのコンジュゲート；コンジュゲート／抗原／標識抗体ピーク１２２’：例えば１０Ｕ／ｍＬ ＣＡ１９−９を使用することにより得られた抗ＣＡ１９−９抗体とＤＮＡ／ＣＡ１９−９抗原／標識抗ＣＡ１９−９抗体とのコンジュゲート；及びコンジュゲート／抗原／標識抗体ピーク１２２”：例えば１００Ｕ／ｍＬ ＣＡ１９−９を使用することにより得られた抗ＣＡ１９−９抗体とＤＮＡ／ＣＡ１９−９抗原／標識抗ＣＡ１９−９抗体とのコンジュゲート）の結果を示す。
図１２Ａに示すように、目的物質（例えばＣＡ１９−９）とアフィニティー分子（例えば標識抗ＣＡ１９−９抗体）の複合体は遊離の（未結合の）アフィニティー分子よりも多少迅速に移動したが、濃縮されなかった。他方、図１２Ｂに示すように、目的物質（例えばＣＡ１９−９抗原）、アフィニティー分子（例えばＡｌｅｘａ標識抗ＣＡ１９−９抗体）、及びアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子とのコンジュゲート（例えば抗ＣＡ１９−９抗体／ＤＮＡコンジュゲート）の複合体は非常に有効に濃縮され、その結果、複合体のピークは非常にシャープになった。更に、ピークはＣＡ１９−９抗原濃度と良好に相関した。即ち、濃縮段階で荷電キャリヤー分子（例えばＤＮＡ）を使用すると、目的物質を非常に高濃度に濃縮することができる。
当然のことながら、本明細書に記載する実施例と態様は例証のみを目的とし、これらを参考に種々の変形又は変更が当業者に示唆され、これらの変形又は変更も本明細書の精神及び範囲内であり、特許請求の範囲に含まれる。本明細書に引用する全刊行物、特許及び特許出願はその開示内全体を全目的で参考資料として本明細書に組込む。
図１Ａは干渉サンプル成分の不在下におけるアッセイの移動度シフトチャートを示し；図１Ｂはサンプル干渉成分を添加したアッセイを示し；図１Ｃは荷電ポリマーの添加による干渉の低減を示す。 実施例で使用した移動度シフトアッセイを実施するためのマイクロフルイディックデバイスの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 本発明の方法を使用してサンプル中の対象分析物を検出するために使用することができる種々のイムノアッセイフォーマットの模式図である。 実施例１でサンプル又は分離媒体（例えばゲル）に荷電ポリマー（例えばヘパリン硫酸）を添加せずに得られたα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示す。 図５Ａはサンプルに０．０５％ヘパリンを添加し、分離媒体に０．１％ヘパリンを添加したα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示し；図５Ｂは実施例１で得られた図５Ａのチャートの一部の拡大図である。 図６Ａはサンプルに０．０５％ヘパリンを添加し、分離媒体に１％ヘパリンを添加したα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示し；図６Ｂは実施例１で得られた図６Ａのチャートの一部の拡大図である。 図７Ａは５％血清を添加し、０．０１％Ｐｏｌｙ ｄＩ−ｄＣを添加した場合と添加しない場合のα−フェトプロテインアッセイの移動度シフトチャートを示し；図７Ｂは実施例２で得られた図７Ａのチャートの一部の拡大図である。 等速電気泳動マイクロフルイディックシステムの模式図である。 リーディング電解液との界面で分析物を濃縮する過渡的ＩＴＰの模式図である。 対象分析物の過渡的ＩＴＰ分離と分析物の定常状態ＩＴＰ並列の模式図である。 ＩＴＰ中のサンプル成分の選択的除去の模式図である。 図１２Ａは標識抗ＣＡ１９−９抗体のサンプル（ＣＡ１９−９不添加）又は標識抗ＣＡ１９−９抗体とＣＡ１９−９の混合物のサンプルを使用して実施例３で得られたＣＡ１９−９濃縮の移動度シフトチャートを示し；図１２Ｂは標識抗ＣＡ１９−９抗体とＤＮＡ−標識抗ＣＡ１９−９抗体と各種濃度（０、１０又は１００Ｕ／ｍＬ）のＣＡ１９−９の混合物を使用して実施例３で得られたＣＡ１９−９濃縮の移動度シフトチャートを示す。
符号の説明
２０ マイクロフルイディックデバイス
２１ サンプルウェル、試薬ウェル
２２ シッパーキャピラリーチューブ
２４ インキュベーションチャネル
２５ 分離チャネル
２６ 検出器

Claims (1)

  1. サンプル中の対象分析物の検出又は同定方法であって、
    （ｉ）分析物に対して親和性をもつアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子との１個以上のコンジュゲートに分析物を含有するサンプルを接触させて分析物と１個以上のコンジュゲートの複合体を形成する段階と；
    （ｉｉ）約０．１〜５００ミクロンの少なくとも１個のマイクロスケール寸法をもつ少なくとも１個の分離チャネルを含むマイクロフルイディックデバイスの分離チャネルを使用することにより、荷電ポリマーの存在下に複合体と未結合コンジュゲートを分離する段階と；
    （ｉｉｉ）複合体を検出して分析物の存在を同定するか又はサンプル中の分析物の量を測定する段階
    を含み、
    荷電キャリヤー分子は１個以上のアフィニティー分子を介して分析物と結合して分析物とアフィニティー分子と荷電キャリヤー分子の複合体を形成することにより分析物の分離特性に変化を生じさせるものであり、また、荷電ポリマーは荷電キャリヤー分子と同じ正味電荷をもつものである前記方法。
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