JP4738053B2 - Oligosaccharide esterified compounds effective for obesity and diabetes - Google Patents
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Description
本発明は、肥満、糖尿病などに有効な剤、オリゴ糖エステル化物に関する。 The present invention relates to an agent effective for obesity and diabetes, and an oligosaccharide esterified product.
糖尿病患者数は増加の一途をたどっており、深刻な問題となっている。糖尿病には、インスリンの分泌が不足する1型(インスリン依存型)糖尿病とインスリンの効果が低下する2型(インスリン非依存型)糖尿病がある。近年は、運動不足、脂肪の多い食生活などのライフスタイルの変化によって、この2型(インスリン非依存型)糖尿病患者が大幅に増加しており、全患者数の8割以上を占めている。 The number of diabetics continues to increase and is a serious problem. Diabetes includes type 1 (insulin-dependent) diabetes in which insulin secretion is insufficient and type 2 (non-insulin-dependent) diabetes in which the effect of insulin is reduced. In recent years, patients with type 2 (non-insulin dependent) diabetes have increased significantly due to lifestyle changes such as lack of exercise and a fatty diet, accounting for more than 80% of the total number of patients.
膵臓のβ細胞から分泌されるインスリンは、肝臓、筋肉や脂肪細胞の表面に存在するインスリン受容体のαサブユニットに結合する。そのシグナルがインスリン受容体のβサブユニットのチロシンキナーゼの働きを促進させ、細胞内に伝達され種々のインスリン作用が発揮される。インスリン非依存型では、このチロシンキナーゼの活性が低下していることが明らかとなっており、これがインスリン抵抗性の成因の一部とも考えられている。(非特許文献1〜3)
現在、インスリン依存型糖尿病の患者はインスリンを使用して処置されているが、インスリン非依存型糖尿病患者においては、β細胞からのインスリン分泌を促進させるスルホニル尿素系薬剤、肝臓での糖の放出抑制並びに脂肪、筋肉等の末梢組織における糖の取り込みを促進させるビグアナイド剤、インスリンに対するレセプターの感受性を増強させたり、肝臓における糖新生を抑制するインスリン抵抗性改善薬、消化管からの糖質の吸収を遅らせることにより食後の高血糖を改善するα−グルコシダーゼ阻害剤などが使用されている。
Insulin secreted from pancreatic β cells binds to the α subunit of the insulin receptor present on the surface of the liver, muscle and fat cells. The signal promotes the action of the tyrosine kinase of the β subunit of the insulin receptor and is transmitted into the cell to exert various insulin actions. It has been clarified that the activity of this tyrosine kinase is decreased in the non-insulin-dependent type, which is considered to be a part of the cause of insulin resistance. (Non-patent documents 1 to 3)
Currently, insulin-dependent diabetic patients are treated with insulin. In non-insulin-dependent diabetic patients, sulfonylurea drugs that promote insulin secretion from β cells, suppression of sugar release in the liver In addition, a biguanide agent that promotes the uptake of sugar in peripheral tissues such as fat and muscle, an insulin resistance improving drug that enhances the sensitivity of the receptor to insulin, suppresses gluconeogenesis in the liver, and absorbs carbohydrates from the digestive tract An α-glucosidase inhibitor or the like that improves postprandial hyperglycemia by being delayed has been used.
しかし、これら薬剤には投薬量に伴い、激しい空腹感、冷や汗、動悸、手足の震え、頭痛などの低血糖症状を引き起こすことが知られている。従って、より有効性が高く、安全性・価格面において優れた薬剤の提供は、患者のQOL(Quality of Life)をさらに改善するうえで必要となっている。
人間の身体は、交感神経と副交感神経によってコントロールされているが、生体にストレスが加わると視床下部の交感神経中枢が刺激され、膵臓よりグルカゴンの分泌促進、肝臓のグリコーゲン分解促進により、グルコースが血中に放出されるので血糖値が上昇する。さらに、交感神経刺激は、膵臓からのインスリンの分泌を抑制することによって、血糖値低下が抑制される。また、副腎皮質よりグルココルチコイドが分泌されることによって、肝臓のグリコーゲン分解を促進し、筋肉におけるグルコース利用を抑制する。以上のようなことから、血中にグルコースが余る状態となり、血糖値の上昇につながる。グルココルチコイドが必要以上に血液中に存在すると、常に血糖値が高い状態になり、その結果、膵臓の細胞障害がおこり、糖尿病をはじめとして、肥満、高血圧、骨粗鬆症、高脂血症などに繋がる可能性が考えられる。
交感神経についてさらに述べると、交感神経刺激に反応する組織細胞の表面には、アドレナリン受容体があり、これにはαとβの2種類が存在する。α受容体を介する反応は一般的に興奮反応であり、平滑筋や血管の収縮を起こす。
一方、β受容体には3つのサブタイプが存在し、β1受容体刺激によって引起こされる心臓の反応は、心拍数、収縮力、自動性などの増加といった興奮反応であり、β2受容体刺激は、気管平滑筋、腸管平滑筋、子宮筋などの平滑筋の弛緩や血管の拡張、肝臓でのグリコーゲン分解と膵臓でのグルカゴンの分泌促進を引き起こす。また、脂肪細胞に局在しているβ3受容体の刺激は、脂肪分解を促進することが明らかとなっている。
これまで、β3受容体をターゲットとした薬剤の開発は、鋭意研究されている。しかし、個人差や薬剤の種類によっても差があるが、動悸、顔のほてり、頻脈、胸痛、不整脈、血圧上昇、頭痛、めまい、不眠、興奮、耳鳴り、手指の震え、しびれ、手足・指がつる、口が乾く、吐き気、嘔吐、腹痛、食欲不振、胃部不快感、便秘、過敏症(発疹、かゆみなど)、倦怠感、むくみなどの副作用の問題や有効性が依然として課題である。
従って、長期間服用しても安全で尚且つ確実な治療を行うのに充分満足できるような食品あるいは医薬の開発が強く求められているが、現在までのところ、そのような問題点を解決した医薬や食品は発明者の知る限りでは皆無である。
However, these drugs are known to cause hypoglycemic symptoms such as intense hunger, cold sweat, palpitation, trembling of hands and feet, and headache with dosage. Therefore, provision of a drug with higher effectiveness and superior safety and price is necessary for further improving the quality of life (QOL) of patients.
The human body is controlled by sympathetic nerves and parasympathetic nerves, but when stress is applied to the living body, the sympathetic nerve center in the hypothalamus is stimulated, and glucose is released from the pancreas by promoting glucagon secretion and liver glycogenolysis. Since it is released inside, blood sugar level rises. Furthermore, sympathetic nerve stimulation suppresses a decrease in blood glucose level by suppressing insulin secretion from the pancreas. Moreover, secretion of glucocorticoids from the adrenal cortex promotes glycogenolysis in the liver and suppresses glucose utilization in muscles. From the above, glucose remains in the blood, leading to an increase in blood sugar level. If glucocorticoids are present in the blood more than necessary, the blood glucose level is always high, resulting in cell damage to the pancreas, which may lead to diabetes, obesity, hypertension, osteoporosis, hyperlipidemia, etc. Sex is conceivable.
To further describe sympathetic nerves, there are adrenergic receptors on the surface of tissue cells that respond to sympathetic stimulation, and there are two types, α and β. The reaction through the α receptor is generally an excitatory reaction and causes contraction of smooth muscle and blood vessels.
On the other hand, there are three subtypes of β receptor, and the heart reaction caused by β1 receptor stimulation is an excitatory response such as an increase in heart rate, contractile force, and automaticity, and β2 receptor stimulation is Causes relaxation of smooth muscles such as tracheal smooth muscle, intestinal smooth muscle, and uterine muscles and dilation of blood vessels, glycogenolysis in the liver and promotion of glucagon secretion in the pancreas. Moreover, it has been clarified that stimulation of β3 receptor localized in adipocytes promotes lipolysis.
So far, the development of drugs targeting the β3 receptor has been intensively studied. However, although there are differences depending on individual differences and types of drugs, palpitation, hot flashes on the face, tachycardia, chest pain, arrhythmia, increased blood pressure, headache, dizziness, insomnia, excitement, tinnitus, trembling of fingers, numbness, limbs and fingers The problems and effectiveness of side effects such as guts, dry mouth, nausea, vomiting, abdominal pain, loss of appetite, stomach discomfort, constipation, irritability (rash, itching, etc.), malaise, swelling are still issues.
Therefore, there is a strong demand for the development of foods or medicines that are sufficiently satisfactory for safe and reliable treatment even after long-term use. To date, such problems have been solved. There are no medicines or foods as far as the inventors know.
上記のような課題を解決すべく鋭意研究を重ね、種々の植物抽出物について探索を続けた結果、発芽玄米よりオリゴ糖エステルのアリラトースBを見出した。アリラトースBは、ヒメハギ科の植物より単離、同定されているが(非特許文献4)、日常食する発芽玄米より単離されたのは新知見である。 As a result of intensive studies to solve the above-mentioned problems and continuing to search for various plant extracts, we found allylatose B, an oligosaccharide ester, from germinated brown rice. Arilatose B has been isolated and identified from plants of the family Aceraceae (Non-patent Document 4), but it is a new finding that it has been isolated from germinated brown rice that is eaten daily.
本発明は、オリゴ糖エステルのアリラトースB、およびアリラトースBを含有するグルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤、並びにこれらを利用した医薬、食品組成物を提供することを目的とするものである。グルココルチコイド受容体拮抗剤及びアドレナリンβ3受容体作動剤は、糖代謝及び脂質代謝改善作用を有し、肥満、糖尿病の予防又は治療に用いられる。 An object of the present invention is to provide an oligosaccharide ester, allylatose B, a glucocorticoid receptor antagonist and an adrenergic β3 receptor agonist containing allylatose B, and pharmaceuticals and food compositions using them. It is. A glucocorticoid receptor antagonist and an adrenergic β3 receptor agonist have an effect of improving glucose metabolism and lipid metabolism, and are used for prevention or treatment of obesity and diabetes.
本発明者は、上記のような課題を解決すべく鋭意研究を重ね、種々の植物抽出物について探索を続けた結果、発芽玄米のエタノール抽出物から分離したアリラトースBに、上記課題に対して、有効な作用があることを見出し、本発明を完成した。 The present inventor has conducted extensive research to solve the above problems, and as a result of continuing to search for various plant extracts, allylatose B separated from the germinated brown rice ethanol extract, the above problems, The inventors have found that there is an effective action and have completed the present invention.
即ち、本発明は、以下の内容を要旨とするものである。
(1)次の化学式(I)で表されるアリラトースBを含有することを特徴とするグルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤。
That is, the present invention is summarized as follows.
(1) A glucocorticoid receptor antagonist, an adrenergic β3 receptor agonist, comprising allylatose B represented by the following chemical formula (I):
本発明により、アリラトースBを含有する安定性と安全性に優れ、価格面においても有利なグルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤それらを含有する肥満、糖尿病の予防又は治療剤を提供することができる。 According to the present invention, a glucocorticoid receptor antagonist, adrenaline β3 receptor agonist, which has superior stability and safety, and is advantageous in terms of price, containing allylatose B, and a prophylactic or therapeutic agent for obesity and diabetes containing them can do.
以下、アリラトースB、これを含有するグルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤並びにこれらを利用した医薬、食品組成物について説明する。 Hereinafter, allylatose B, a glucocorticoid receptor antagonist containing the same, an adrenergic β3 receptor agonist, and a medicine and food composition using them will be described.
まず、本発明のアリラトースBは、前記化学式(I)で表わされる化合物である。化学式(I)については、IUPAC名は(E)-((2R,3S,4S,5R,6R)-6-((2S,3S,4S,5R)-3,4-dihydroxy-2,5-bis(hydroxymethyl)-tetrahydroxy-3-methoxyphenyl)acrylateである。
本発明の前記化学式(I)で表わされるアリラトースBは、例えば、発芽玄米のエタノール抽出物から分離して入手することができる。
発芽玄米は、例えば次のような方法により入手できる。玄米をそのまま、あるいは玄米の一部を精米機あるいは無洗米機等で搗精して剥離・裂傷させ、得られた玄米を発芽槽(発芽用タンク)に浸漬する、あるいは発芽に必要な水分を添加する。搗精は、浸漬の後に行うこともできる。発芽の程度は、一般的には胚の部分から0.5mm〜2.0mm程度の膨らみ、あるいは突起部、幼芽が確認できる程度とされるが、発芽によるγ―アミノ酪酸などの栄養成分を分析し、栄養成分が最大となるように発芽時間を設定することもできる。発芽後は、加熱処理等を施して、発芽を停止させるが、その方法としては、蒸煮させても良いし、熱風あるいはマイクロウェーブ、冷却等の適当な方法により、温度処理あるいは乾燥させても良い。
First, allylatose B of the present invention is a compound represented by the chemical formula (I). For chemical formula (I), the IUPAC name is (E)-((2R, 3S, 4S, 5R, 6R) -6-((2S, 3S, 4S, 5R) -3,4-dihydroxy-2,5- bis (hydroxymethyl) -tetrahydroxy-3-methoxyphenyl) acrylate.
The allylatose B represented by the chemical formula (I) of the present invention can be obtained, for example, by separating it from an ethanol extract of germinated brown rice.
Germinated brown rice can be obtained, for example, by the following method. The brown rice is left as it is, or a part of the brown rice is crushed with a rice mill or a non-washing rice machine to peel and tear, and the resulting brown rice is immersed in a germination tank (germination tank), or water necessary for germination is added. To do. Milling can also be performed after immersion. The degree of germination is generally such that bulges of about 0.5 mm to 2.0 mm from the embryo part, or protrusions and young buds can be confirmed, but nutritional components such as γ-aminobutyric acid due to germination are added. Analysis and germination time can also be set to maximize nutrient content. After germination, heat treatment or the like is applied to stop germination. As the method, steaming may be performed, or temperature treatment or drying may be performed by an appropriate method such as hot air, microwave, or cooling. .
発芽玄米は血中コレステロール低下作用、血圧上昇抑制作用(特開2003−9810号公報)、血糖上昇抑制作用(伊藤幸彦他、発芽玄米摂取によるglycemic index(GI)、glycemic load(GL)及びインスリン反応、第2回日本glycemic index研究会プログラム(2003年)を有することが知られている。
また、オリゴ糖には、αグルコシダーゼ阻害による血糖値降下作用などが知られているが、本発明のオリゴ糖エステルのアリラトースBにそのような作用は報告されていない。
本発明の前記化学式(I)で表わされるアリラトースBの製造方法としては、まず、上述のような発芽玄米から糠(デンプン部を含む)を採取し、それから、デンプンを膨化させるため、熱水で処理し、しばらく静置した後、そこに濃度50〜99.5質量%、好ましくは70〜99.5質量%のエタノールを加え、上清を濃縮乾固して、発芽米抽出エキスを得る。次に、発芽玄米抽出エキスから逆相HPLCなどでアリラトースBを分離精製することによって入手することができる。
Germinated brown rice has blood cholesterol lowering action, blood pressure rise inhibiting action (Japanese Patent Laid-Open No. 2003-9810), blood sugar rise inhibiting action (Yukihiko Ito et al., Glycemic index (GI) by ingesting germinated brown rice, glycemic load (GL) and insulin reaction) It is known to have the 2nd Japan glycemic index study group program (2003).
In addition, oligosaccharides are known to have a blood glucose level lowering action by α-glucosidase inhibition, but such action has not been reported to allylose B of the oligosaccharide ester of the present invention.
As a method for producing allylatose B represented by the above chemical formula (I) of the present invention, first, koji (including the starch portion) is collected from the germinated brown rice as described above, and then hot water is used to expand the starch. After processing and leaving still for a while, ethanol of the density | concentration of 50-99.5 mass%, Preferably 70-99.5 mass% is added there, A supernatant is concentrated and dried and the germinated rice extract is obtained. Next, it can be obtained by separating and purifying allylatose B from the germinated brown rice extract by reverse phase HPLC or the like.
本発明のグルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤は、このようにして得られたアリラトースBをそのままその有効成分として使用してもよいし、或いは上記のようにして得た発芽玄米のエタノール抽出物をそのままの状態で含有する組成物として使用してもよい。このような組成物としては、本発明の効果を損なわず、悪影響を及ぼさない任意の種々の成分をその助剤、媒体または担体として使用し、これに本発明のアリラトースBを含有させることによって組成物を構成することができる。 The glucocorticoid receptor antagonist and adrenergic β3 receptor agonist of the present invention may use allylatose B thus obtained as it is as an active ingredient, or germinated brown rice obtained as described above. May be used as a composition containing the ethanol extract as it is. As such a composition, any various components that do not impair the effects of the present invention and do not adversely affect the composition as an auxiliary, medium, or carrier, and contain the allylatose B of the present invention. Things can be configured.
本発明のアリラトースBは、グルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤として使用する場合には、その適用量は、摂取者の年齢、体重、症状、適用経路、適用スケジュール、製剤形態などにより、適宜決定することができるが、例えば、経口投与の場合、アリラトースBの重量基準として、通常成人換算で0.0001〜0.5g/kg程度、より好ましくは0.001〜0.2g/kg程度で、1日数回に分けて投与してもよい。 When allylatose B of the present invention is used as a glucocorticoid receptor antagonist or an adrenergic β3 receptor agonist, its application amount is the age, body weight, symptom, application route, application schedule, formulation form, etc. of the intaker. For example, in the case of oral administration, the weight standard of allylatose B is usually about 0.0001 to 0.5 g / kg, more preferably 0.001 to 0.2 g / kg in terms of adult weight. The dose may be divided into several times a day at about kg.
また、適当な基剤、担体、媒体や賦形剤とともに本発明のアリラトースBを配合することによって、グルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤とすることができる。 Moreover, it can be set as a glucocorticoid receptor antagonist and an adrenergic (beta) 3 receptor agonist by mix | blending the allylatose B of this invention with a suitable base, a support | carrier, a medium, and an excipient | filler.
本発明のアリラトースB、グルココルチコイド受容体拮抗剤、アドレナリンβ3受容体作動剤は、医薬又は食品用の経口組成物として使用することができる。 The allylatose B, glucocorticoid receptor antagonist, and adrenergic β3 receptor agonist of the present invention can be used as an oral composition for medicine or food.
医薬用としての本発明のアリラトースBの適用方法は、経口投与又は非経口投与のいずれも採用することができる。投与に際しては、有効成分を経口投与、直腸内投与、注射などの投与方法に適した固体又は液体の医薬用無毒性担体と混合して、慣用の医薬製剤の形態として投与することができる。このような製剤としては、例えば、錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤などの固形剤、溶液剤、懸濁剤、乳剤などの液剤、凍結乾燥製剤などが挙げられ、これらの製剤は製剤上の常套手段により調製することができる。上記の医薬用無毒性担体としては、例えば、グルコース、乳糖、ショ糖、澱粉、マンニトール、デキストリン、脂肪酸グリセリド、ポリエチレングリコール、ヒドロキシエチルデンプン、エチレングリコール、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、アミノ酸、ゼラチン、アルブミン、水、生理食塩水などが挙げられる。また、必要に応じて、安定化剤、湿潤剤、乳化剤、結合剤、等張化剤などの慣用の添加剤を適宜添加することもできる。 As an application method of allylatose B of the present invention for pharmaceutical use, either oral administration or parenteral administration can be employed. In administration, the active ingredient can be mixed with a solid or liquid non-toxic pharmaceutical carrier suitable for administration methods such as oral administration, rectal administration and injection, and administered in the form of a conventional pharmaceutical preparation. Examples of such preparations include solid preparations such as tablets, granules, powders and capsules, solutions such as solutions, suspensions and emulsions, freeze-dried preparations, and the like. It can be prepared by conventional means. Examples of the non-toxic pharmaceutical carrier include glucose, lactose, sucrose, starch, mannitol, dextrin, fatty acid glyceride, polyethylene glycol, hydroxyethyl starch, ethylene glycol, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, amino acid, gelatin, albumin , Water, physiological saline and the like. In addition, conventional additives such as stabilizers, wetting agents, emulsifiers, binders, tonicity agents and the like can be appropriately added as necessary.
食品用組成物としては、本発明のアリラトースBをそのまま、又は種々の栄養成分を加えて、又は飲食品中に含有せしめて、高血圧、肥満、糖尿病、アレルギー、腎臓障害、気管支障害の治療及び予防に有用な保健用食品又は食品素材として使用することができる。例えば、澱粉、乳糖、麦芽糖、植物油脂粉末、カカオ脂末、ステアリン酸などの適当な助剤を添加した後、慣用の手段を用いて、経口用に適した形態、例えば顆粒状、粒状、錠剤、カプセル、ペーストなどに成形して食用に供してもよく、また種々の食品、例えば、ハム、ソーセージなどの食肉加工食品、かまぼこ、ちくわなどの水産加工食品、パン、菓子、バター、粉乳、発酵乳製品に添加して使用してもよい。本発明のアリラトースBの配合量は、当該食品または食品用素材の種類や状態等により適宜設定することができる。 As a composition for foods, treatment and prevention of hypertension, obesity, diabetes, allergies, kidney disorders, bronchial disorders by adding allylatose B of the present invention as it is, or by adding various nutritional components, or by including them in foods and drinks. It can be used as a health food or food material useful in For example, after adding a suitable auxiliary agent such as starch, lactose, maltose, vegetable oil powder, cacao butter powder, stearic acid, etc., using conventional means, a form suitable for oral use, such as granule, granule, tablet It may be formed into capsules, pastes, etc. and used for food, and various foods such as processed foods such as ham and sausage, fishery processed foods such as kamaboko and chikuwa, bread, confectionery, butter, milk powder, fermented milk It may be used by adding to dairy products. The amount of allylatose B of the present invention can be appropriately set depending on the type and state of the food or food material.
次に、本発明を実施例によって更に詳しく説明する。以下の製造例、実施例、処方例は本発明の好ましい例を示すものであり、これに限定されるものではない。また、各例中の「%」は質量基準である。
1)アリラトースBの粗抽出
発芽玄米14kgから糠(デンプン部を含む)を4.1kg調整した。それから、デンプンを膨化させるため、熱水40Lを加えて30分ほど煮沸処理し、液温が40℃以下に下がるまで静置した後、そこに99.5%エタノール40Lを加えて攪拌した。それを4℃で一晩置き、上清を濃縮乾固して、発芽米抽出エキス100gを得た。
2)アリラトースBの精製・分取
得られた発芽米抽出エキス5gを用いて、以下の方法と条件によって分離精製した。
・機器構成:
中圧液体クロマトグラフィーシステム:Kronlab GmbH
逆相カラム:Polygoprep 60−50 RP−18(Macherey&Nagel)
・溶離液:
精製水100%、続いて、精製水100%→メタノール100%のグラジエント、続いて、イソプロパノール100%
・分取物
溶離液が精製水52%+メタノール48%付近で溶出した分画P(0.15g)を得た。
3)分画Pの高速液体クロマトグラフィーによる分離
分画P0.15gを用いて、以下の方法と条件によって分離精製した。
・機器構成:
全自動分画・精製・分取システム:SEPBOXLight
分取カラム: Merck Select B 250×16mm、10μm
検出器:ELSD(Sedex75)
UV(Merck、254nm)
・溶離液:
流 速:15mL/min
溶離液:A・・・0.5mMギ酸アンモニウム、0.1%ギ酸水溶液
B・・・0.5mMギ酸アンモニウム、0.1%ギ酸のアセトニトリル:
メタノール=1:1溶液
グラジエント:
時間(分) A(%) B(%)
0.0 72 28
30.0 62 38
30.1 0 100
38.0 0 100
・分取物
分画Pからサンプル(a)6.9mgを分取した。
4)サンプル(a)の高速液体クロマトグラフィーによる純度確認、並びに保持時間の確認
・機器構成:
HPLCシステム:Merck Hitachi
分析カラム: Merck Select B 250×4mm、5μm
検出器:ELSD(Sedex75)
・溶離液:
流 速:1mL/min
溶離液:A・・・0.5mMギ酸アンモニウム、0.1%ギ酸水溶液
B・・・0.5mMギ酸アンモニウム、0.1%ギ酸のアセトニトリル:
メタノール=1:1溶液
グラジエント:
時間(分) A(%) B(%)
0.0 85 15
30.0 0 100
40.0 0 100
本分析条件により、サンプル(a)の純度と保持時間を確認した。保持時間は9.2分である。
5)サンプル(a)の構造決定
上記の3)で分取したサンプル(a)について、LC/MS分析装置及びNMR分析装置を用いて化合物の構造決定を行なった。
Next, the present invention will be described in more detail with reference to examples. The following production examples, examples and formulation examples show preferred examples of the present invention and are not limited thereto. Further, “%” in each example is based on mass.
1) Crude extraction of allylatose B 4.1 kg of koji (including starch) was prepared from 14 kg of germinated brown rice. Then, in order to expand the starch, 40 L of hot water was added and the mixture was boiled for about 30 minutes and allowed to stand until the liquid temperature dropped to 40 ° C. or lower, and then 40 L of 99.5% ethanol was added thereto and stirred. It was placed at 4 ° C. overnight and the supernatant was concentrated to dryness to obtain 100 g of germinated rice extract.
2) Purification and fractionation of allylatose B Using 5 g of the obtained germinated rice extract, it was separated and purified by the following method and conditions.
·Equipment configuration:
Medium pressure liquid chromatography system: Kronlab GmbH
Reversed phase column: Polyprep 60-60 RP-18 (Macheley & Nagel)
・ Eluent:
Purified water 100%, followed by purified water 100% → methanol 100% gradient, followed by isopropanol 100%
・ Preparation
Fraction P (0.15 g) eluting with an eluent of approximately 52% purified water and 48% methanol was obtained.
3) Separation and purification of fraction P by high-performance liquid chromatography using 0.15 g of fraction F according to the following method and conditions.
·Equipment configuration:
Fully automatic fractionation / purification / sorting system: SEPBOXLight
Preparative column: Merck Select B 250 × 16 mm, 10 μm
Detector: ELSD (Sedex75)
UV (Merck, 254nm)
・ Eluent:
Flow rate: 15 mL / min
Eluent: A ... 0.5 mM ammonium formate, 0.1% formic acid aqueous solution
B: 0.5 mM ammonium formate, 0.1% formic acid acetonitrile:
Methanol = 1: 1 solution Gradient:
Time (minutes) A (%) B (%)
0.0 72 28
30.0 62 38
30.10 100
38.0 0 100
-Fractionated substance 6.9 mg of sample (a) was fractionated from fraction P.
4) Confirmation of purity of sample (a) by high performance liquid chromatography, confirmation of retention time and equipment configuration:
HPLC system: Merck Hitachi
Analysis column: Merck Select B 250 × 4 mm, 5 μm
Detector: ELSD (Sedex75)
・ Eluent:
Flow rate: 1 mL / min
Eluent: A ... 0.5 mM ammonium formate, 0.1% formic acid aqueous solution
B: 0.5 mM ammonium formate, 0.1% formic acid acetonitrile:
Methanol = 1: 1 solution Gradient:
Time (minutes) A (%) B (%)
0.0 85 15
30.0 0 100
40.0 0 100
The purity and holding time of the sample (a) were confirmed under the analysis conditions. The retention time is 9.2 minutes.
5) Structure determination of sample (a) About the sample (a) fractionated by said 3), the structure of the compound was determined using the LC / MS analyzer and the NMR analyzer.
LC/MS分析の溶離液は4)と同じものを用い、グラジエント条件は適宜調整した。MSシステムはPE-Sciex API150(+/(-)-ESI、Fast-Switching-Mode)を使用した。 The same eluent for LC / MS analysis was used as in 4), and the gradient conditions were appropriately adjusted. The MS system used PE-Sciex API150 (+ / (-)-ESI, Fast-Switching-Mode).
尚、1H−NMR、HSQC、HMBC、HH−COSYは共鳴周波数400MHzあるいは500MHzで測定した。13C−NMRのスペクトルはHMBC、HSQCの手法を用いて帰属した。溶媒は重メタノールを用い、化学シフト基準に使用した(1H−NMR3.30ppm、13C−NMR49.0ppm)。
サンプル(a)のLC/MSとNMRのデータを以下に示す。
LC/MS
(+)−ESI:536[M+NH4]+、357[M−C6H10O5+H]+、177[C10H9NO3]
+
(-)−ESI:547[M+HCOO]、517[M−H]−
1 H−NMR
スペクトルの帰属と化学シフトを表1に示す。
1 H-NMR, HSQC, HMBC, and HH-COSY were measured at a resonance frequency of 400 MHz or 500 MHz. The 13 C-NMR spectrum was assigned using the methods of HMBC and HSQC. The solvent was deuterated methanol and used for the chemical shift standard ( 1 H-NMR 3.30 ppm, 13 C-NMR 49.0 ppm).
The LC / MS and NMR data of sample (a) are shown below.
LC / MS
(+)-ESI: 536 [M + N H 4 ] + , 357 [M C 6 H 10 O 5 + H] + , 177 [C 10 H 9 NO 3 ]
+
(−)-ESI: 547 [M + HCOO], 517 [M−H] −
1 H-NMR
The spectral assignments and chemical shifts are shown in Table 1.
以上により、サンプル(a)はアリラトースBと同定された。
From the above, sample (a) was identified as allylatose B.
次に、上記のようにして得たアリラトースBについて、以下に記載する方法によってグルココルチコイド受容体結合試験を行った。
グルココルチコイド受容体結合試験は、Meshinchi,Sらの方法(J.Biol.Chem.,265,4863,1990)を参考に行った。マウス繊維芽細胞(L-929)から、サイトゾル画分を調製し、実施例1で得られたアリラトースB(最終濃度:10及び30μg/ml)と10nM
[3H]dexamethasoneを用いて試験した(反応液は、0.1 mM EDTAを含むHepes-Tris緩衝液(pH7.4))。また、非特異的結合は10μMのtriamcinoloneを用いた。4℃で4時間インキュベートした後、受容体に結合した標識リガンドをセルハーベスター(ブランデル社製)を用いてワットマンGF/Bグラスファイバーフィルター上に吸引濾過して反応を停止し、直ちに、氷冷50mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.7)5 mlで3回洗浄した。次いで、フィルター上の放射能活性をシンチレーションカウンターにより測定し、全結合量を求めた。また、同時に測定した10μM triamcinolone存在下における結合量を非特異的結合量とし、これを全結合量から差し引くことにより特異的結合量を求めた。
結果を表2に示す。ここで示す親和性(%)は、次式により算出した。
Next, the glucocorticoid receptor binding test was performed on the allylatose B obtained as described above by the method described below.
The glucocorticoid receptor binding test was conducted with reference to the method of Meshinchi, S et al. (J. Biol. Chem., 265, 4863, 1990). A cytosolic fraction was prepared from mouse fibroblasts (L-929), and allylatose B (final concentrations: 10 and 30 μg / ml) obtained in Example 1 and 10 nM.
[ 3 H] dexamethasone was used for the test (the reaction solution was Hepes-Tris buffer (pH 7.4) containing 0.1 mM EDTA). For nonspecific binding, 10 μM triamcinolone was used. After incubation at 4 ° C. for 4 hours, the labeled ligand bound to the receptor was suction filtered onto a Whatman GF / B glass fiber filter using a cell harvester (manufactured by Brandel), and the reaction was stopped immediately. Washed 3 times with 5 ml of Tris-HCl buffer (pH 7.7). Next, the radioactivity on the filter was measured with a scintillation counter to determine the total amount of binding. The amount of binding in the presence of 10 μM triamcinolone measured at the same time was defined as the amount of non-specific binding, and the amount of specific binding was determined by subtracting this from the total amount of binding.
The results are shown in Table 2. The affinity (%) shown here was calculated by the following formula.
親和性(%)=100−〔(C1−B1)/(C2−B1)〕×100
(式中、C1は、既知量の供試化合物と[3H]dexamethasoneが共存している状態での[3H]dexamethasoneの膜画分に対する結合量を表わし、C2は、供試化合物を除いた時の[3H]dexamethasoneの膜画分に対する結合量を表わし、B1は、過剰のtriamcinolone(10μM)存在下での[3H]dexamethasoneの膜画分に対する結合量を表わす。)なお、本反応系におけるポジティブコントロールとして、dexamethasoneのIC50値は、2.9nMであった。
(結果)
Affinity (%) = 100 − [(C 1 −B 1 ) / (C 2 −B 1 )] × 100
(Wherein C 1 represents the amount of [ 3 H] dexamethasone bound to the membrane fraction in the presence of a known amount of the test compound and [ 3 H] dexamethasone, and C 2 represents the test compound. the represents a bond amount for [3 H] dexamethasone membrane fraction of the time, except, B 1 represents an amount of binding [3 H] membrane fraction of dexamethasone in excess of triamcinolone (10μM) presence.) As a positive control in this reaction system, the IC 50 value of dexamethasone was 2.9 nM.
(result)
次に、上記のようにして得たアリラトースBについて、以下に記載する方法によってアドレナリン受容体結合試験を行った。
アドレナリンβ3受容体結合試験
(試験方法)
アドレナリンβ3受容体への結合試験は、CURRANP.K.らの方法(Cell.Signal.,8(5),355−364(1996))を、一部改変して行った。ヒト神経芽細胞(SK-N-MC)から膜画分を調製し、実施例1で得られたアリラトースB(最終濃度:10及び30μg/ml)と0.6nM [125I]iodocyanopindololを用いて試験した(反応液は、4 mM MgCl2、0.04%BSA、0.1μM propranololを含む50 mM Hepes-NaOH(pH7.4))。
また、非特異的結合は50μM のalprenololを用いた。37℃で90分間反応後、ガラスフィルター(Model 701、Skatron Inc.製)を用いて、[125I]iodocyanopindololと結合した膜標品を分離するために瀘過を行ない、2回、上述のトリス緩衝液5mlにて洗浄した。このガラスフィルターをバイアルに入れ、アクアゾール(液体シンチレーション用カクテル)と混合し、液体シンチレーションカウンターにて結合した[125I]iodocyanopindolol量を測定し、親和性(%)を次式より算出した結果を表3に示した。
親和性(%)=100−〔(C1−B)/(C0−B)〕×100
(式中、C1 は、既知量の供試化合物と[125I]iodocyanopindololが共存している状態での[125I]iodocyanopindololの膜に対する結合量を表わし、C0は、供試化合物を除いた時の[[125I]iodocyanopindololの膜に対する結合量を表わし、Bは、過剰のalprenolol(50μM)存在下での[125I]iodocyanopindololの膜に対する結合量を表わす。]なお、本測定系におけるポジティブコントロールとしてのアドレナリンβ3受容体遮断薬であるcyanopindololのIC50値は、30nMであった。結果からもわかるように、本発明のアリラトースBが、アドレナリンβ3受容体に作用を有することがわかる。
(結果)
Next, an adrenergic receptor binding test was performed on allylatose B obtained as described above by the method described below.
Adrenaline β 3 receptor binding test
(Test method)
The binding test to the adrenergic β 3 receptor was carried out by partially modifying the method of CURRANP. K. et al. (Cell. Signal., 8 (5), 355-364 (1996)). Membrane fractions were prepared from human neuroblasts (SK-N-MC) and tested using allylatose B (final concentrations: 10 and 30 μg / ml) obtained in Example 1 and 0.6 nM [ 125 I] iodocyanopindolol. (The reaction solution was 50 mM Hepes-NaOH (pH 7.4) containing 4 mM MgCl 2 , 0.04% BSA, 0.1 μM propranolol).
For nonspecific binding, 50 μM alprenolol was used. After reacting at 37 ° C. for 90 minutes, using a glass filter (Model 701, manufactured by Skatron Inc.), filtration was performed to separate the membrane preparation bound to [ 125 I] iodocyanopindolol, and the above-mentioned Tris was performed twice. Washed with 5 ml of buffer. Place this glass filter in a vial, mix with aquasol (cocktail for liquid scintillation), measure the amount of [ 125 I] iodocyanopindolol bound with a liquid scintillation counter, and calculate the affinity (%) from the following formula. It is shown in Table 3.
Affinity (%) = 100 − [(C 1 −B) / (C 0 −B)] × 100
(Wherein, C 1 represents the amount of binding [125 I] iodocyanopindolol film in a state where a known amount of test compound is [125 I] iodocyanopindolol coexist, C 0 is except the test compound [represents the amount of binding [125 I] iodocyanopindolol membrane, B represents a bond amount for [125 I] iodocyanopindolol membranes in the presence of an excess of alprenolol (50μM).] when the Note, in the present assay system The IC 50 value of cyanopindolol, which is an adrenergic β 3 receptor blocker as a positive control, was 30 nM, and as can be seen from the results, allylatose B of the present invention has an effect on the adrenergic β 3 receptor. Recognize.
(result)
次に、以下に、本発明のアリラトースBの具体的な使用形態である医薬、食品としての処方例を示す。
処方例1:肥満、糖尿病の予防、治療用の組成物(錠剤)
上記の実施例1で得られた化学式(I)で表わされるアリラトースBを用いて、常法により下記の配合組成の肥満、糖尿病の予防、治療用の錠剤を製造した。
Next, formulation examples as pharmaceuticals and foods, which are specific usage forms of allylatose B of the present invention, are shown below.
Formulation Example 1: Composition (tablet) for the prevention and treatment of obesity and diabetes
Using allylatose B represented by the chemical formula (I) obtained in Example 1 above, tablets for prevention and treatment of obesity and diabetes having the following composition were prepared by a conventional method.
(組 成) (質量%)
アリラトースB
2.0
乳 糖 77.0
コーンスターチ 20.0
グアーガム 1.0
処方例2:ジュース
上記の実施例1で得られた化学式(I)で表わされるアリラトースBを用いて、常法により下記の配合組成のジュースを製造した。
(Composition) (mass%)
Arilatose B
2.0
Lactose 77.0
Corn starch 20.0
Guar gum 1.0
Formulation Example 2: Juice Juice having the following composition was produced by the conventional method using allylatose B represented by the chemical formula (I) obtained in Example 1 above.
(組 成) (質量%)
冷凍濃縮温州みかん果汁 5.0
果糖ブドウ糖液糖 11.0
クエン酸 0.2
L−アスコルビン酸 0.02
香 料 0.2
色 素 0.1
アリラトースB
0.2
水 83.28
(Composition) (mass%)
Frozen and concentrated Wenzhou orange juice 5.0
Fructose glucose liquid sugar 11.0
Citric acid 0.2
L-ascorbic acid 0.02
Perfume 0.2
Color element 0.1
Arilatose B
0.2
Water 83.28
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A pharmaceutical composition which is a glucocorticoid receptor antagonist comprising the oligosaccharide ester allylatose B represented by the following chemical formula (I):
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