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JP4868199B2 - Neural stem cell proliferating agent containing salvianolic acid B as an active ingredient - Google Patents
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JP4868199B2 - Neural stem cell proliferating agent containing salvianolic acid B as an active ingredient - Google Patents

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Description

本発明は、(1)サルビアノール酸B(英語名:Salvianolic・Acid・B、中国名:丹フン酸B又は丹フン酸乙、なお、フンに該当する中国字は酉偏に分と書くが、日本の漢字には無い)等を有効成分とすることを特徴とする神経幹細胞増殖剤、(2)当該神経幹細胞増殖剤を,要すれば賦活化後,体外で投与することを特徴とする体外での神経幹細胞増殖方法、(3)当該神経幹細胞増殖方法で増殖することを特徴とする神経幹細胞の含有液、(4)血清、塩基性繊維芽細胞増殖因子(bFGF、別名:繊維芽細胞増殖因子2:FGF2)および神経成長因子(NGF)を含まない当該神経幹細胞含有液を有効成分とすることを特徴とする神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤、(5)当該神経幹細胞増殖剤を有効成分とし、当該有効成分の神経幹細胞増殖作用によることを特徴とする当該疾病の治療剤、(6)サルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする(1)に記載する神経幹細胞増殖剤と(2)に記載する神経幹細胞増殖方法と(3)に記載する神経幹細胞含有液と(4)と(5)に記載する治療剤を提供することに関する。   In the present invention, (1) Salvianolic acid B (English name: Salvanilic Acid B), Chinese name: Tanfunic acid B or Tanfunic acid oto, and the Chinese character corresponding to hun are written as ubiquitous. A neural stem cell proliferating agent characterized in that it is an active ingredient), (2) the neural stem cell proliferating agent is administered outside the body after activation if necessary. Neural stem cell proliferation method in vitro, (3) Neural stem cell-containing solution characterized by proliferation by the neural stem cell proliferation method, (4) Serum, basic fibroblast growth factor (bFGF, also known as fibroblast) Functions of tissues and organs due to degeneration, decrease, cell death, injury, exclusion of nerve cells, characterized by containing as an active ingredient a solution containing neural stem cells that does not contain growth factor 2: FGF2) and nerve growth factor (NGF) To decline or loss (5) A therapeutic agent for the disease characterized by comprising the neural stem cell proliferating agent as an active ingredient, and a neural stem cell proliferating action of the active ingredient, (6) Salvianolic acid B and sulfite A neural stem cell proliferating agent according to (1), wherein at least one antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than salt and vitamin C is added as an additive; It relates to the method for proliferating neural stem cells described in 2), the neural stem cell-containing solution described in (3), and the therapeutic agent described in (4) and (5).

神経疾病、例えば、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、小脳変性症、交通性水頭症、ハンチントン病、前頭葉への照射、多発性硬化症、正常圧水頭症、パーキンソン病、ピック病、進行性多巣性白質脳症、進行性核上麻痺、拳闘家痴呆、脳外傷、外科手術、脳腫瘍、慢性硬膜下血腫、脳卒中(脳梗塞または脳出血)、脳血管性痴呆、ウィルソン病細菌性心内膜炎、クロイツフェルト・ヤコブ病、ゲルストマン・シュトロイスラー・シャインカー病、HIV関連疾病、神経梅毒、結核性および真菌性髄膜炎、ウイルス性脳炎、無酸素症、B12欠乏症、慢性的な薬物-アルコール-栄養性乱用、葉酸欠乏症、副甲状腺機能亢進症に伴う高カルシウム血症、低血糖、甲状腺機能低下症、肝性脳症、肺性脳症、尿毒素性脳症等の臓器系不全、ペラグラ等は繊維化、免疫反応、血管傷害、栄養と酸素欠乏、感染等により、神経細胞が退化、減少、細胞死し、または傷害、除外されることにより、組織や臓器がその機能を失い発症すると考えられている。したがって、これらの疾病を治療の1つの方法として失われた神経細胞を何らかの方法で補充するか再生することが考えられ、その効果が多数報告されている。   Neurological diseases such as Alzheimer's disease, amyotrophic lateral sclerosis, cerebellar degeneration, traffic hydrocephalus, Huntington's disease, frontal lobe irradiation, multiple sclerosis, normal pressure hydrocephalus, Parkinson's disease, Pick's disease, progression Multiple focal leukoencephalopathy, progressive supranuclear palsy, fighting dementia, brain trauma, surgery, brain tumor, chronic subdural hematoma, stroke (cerebral infarction or cerebral hemorrhage), cerebrovascular dementia, Wilson disease bacterial intracardiac Meningitis, Creutzfeldt-Jakob disease, Gerstmann-Stroisler-Scheinker disease, HIV-related diseases, neurosyphilis, tuberculosis and fungal meningitis, viral encephalitis, anoxia, B12 deficiency, chronic drugs Alcohol-nutrient abuse, folate deficiency, hypercalcemia associated with hyperparathyroidism, hypoglycemia, hypothyroidism, hepatic encephalopathy, pulmonary encephalopathy, uremic encephalopathy, organ system failure, pellagra It is thought that tissues and organs lose their function due to degeneration, decrease, cell death, injury or exclusion due to fibrosis, immune reaction, vascular injury, nutrition and oxygen deficiency, infection, etc. It has been. Therefore, it is conceivable to replace or regenerate lost neurons as a method for treating these diseases, and many effects have been reported.

例えば、パーキンソン病は黒質線条体のドパミン作動性神経の退化に起因するが、後期有糸分裂ドパミン作動性神経に富んだヒト胎児性中脳組織の脳内移植により病状が改善されたという報告がある(非特許文献1−7)。しかし、この間、移植に伴う拒絶反応を避けるため、免疫抑制剤を使用している(非特許文献8)。   For example, Parkinson's disease is caused by degeneration of nigrostriatal dopaminergic nerves, but the condition was improved by intracerebral transplantation of human fetal midbrain tissue rich in late mitotic dopaminergic nerves. There are reports (Non-Patent Documents 1-7). However, during this period, immunosuppressive agents are used to avoid rejection associated with transplantation (Non-patent Document 8).

脳梗塞は中枢神経系に重大な虚血をもたらし、神経やグリア細胞を退化させる。脳梗塞部位にヒトエヌティ2(NT‐2)奇形癌細胞由来の神経を移植したところ、改善が見られたという報告がある(非特許文献9)。移植細胞が神経細胞になったことを移植細胞に神経マーカーが出現したことにより確認したという報告もある(非特許文献10)。   Cerebral infarction causes serious ischemia in the central nervous system, degenerating nerves and glial cells. There has been a report that improvement was observed when nerves derived from human NT-2 (NT-2) teratocarcinoma cells were transplanted to the cerebral infarction site (Non-patent Document 9). There is also a report that it has been confirmed by the appearance of a neuronal marker in the transplanted cells that the transplanted cells have become nerve cells (Non-patent Document 10).

これら補充すべき神経細胞の供給源として、ES細胞、神経幹細胞または骨髄間質細胞が注目される。ES細胞は種々の細胞に分化しうる細胞だからである。神経幹細胞は未分化の細胞であり、神経細胞が死滅すると、その失われた細胞を補うように自然に分化を始め、生体機能の維持に大きく貢献する可能性があるからである。骨髄間質細胞はすでにある程度分化しているので、自然には神経細胞に分化しないが、最近、種々の生体因子または化合物処理により人工的に神経細胞に分化しうる(特許文献1−2、非特許文献11−15)ことが明らかになったからである。   Attention is focused on ES cells, neural stem cells or bone marrow stromal cells as a source of these neurons to be supplemented. This is because ES cells are cells that can differentiate into various cells. This is because neural stem cells are undifferentiated cells, and when nerve cells die, they naturally start to compensate for the lost cells and may greatly contribute to the maintenance of biological functions. Since bone marrow stromal cells have already differentiated to some extent, they do not naturally differentiate into neurons, but recently can be artificially differentiated into neurons by treatment with various biological factors or compounds (Patent Documents 1-2, non-patent documents). This is because it has become clear that Patent Documents 11-15).

しかし、補充すべき神経細胞の供給源として注目されるES細胞は胚性幹細胞であり、ヒトの胚を原料に用いるという倫理性の問題と移植抗原性の問題を有する。一方、神経幹細胞の場合も内在性の神経幹細胞は神経に分化する(非特許文献16)が、内在性の神経幹細胞の数は極わずかで、脳梗塞等により退化する細胞を充分に補充することはできない(非特許文献17)。外部からの入手は胎児由来の神経幹細胞しか困難であり、胎児由来の神経幹細胞は倫理性の問題と移植抗原性の問題を有する。骨髄間質細胞は自分自身の骨髄から充分量を採取可能であるから、他人の細胞を用いるという倫理性の問題と移植抗原性の問題はない。しかし、骨髄間質細胞は自然には神経細胞に分化しない細胞である。したがって、内在性の神経幹細胞を増殖する方法が開発されるなどして、自家の神経幹細胞が供給源として使えるようになれば、その方がより望ましい。したがって、内在性の神経幹細胞を増殖する方法の開発が強く望まれる。   However, ES cells that are attracting attention as a source of nerve cells to be supplemented are embryonic stem cells, and have the ethical problem of using a human embryo as a raw material and the problem of transplantation antigenicity. On the other hand, even in the case of neural stem cells, endogenous neural stem cells differentiate into nerves (Non-Patent Document 16), but the number of endogenous neural stem cells is extremely small, and sufficiently replenish cells degenerated due to cerebral infarction or the like. (Non-Patent Document 17). Obtaining from outside is difficult only for fetal-derived neural stem cells, and fetal-derived neural stem cells have ethical problems and transplant antigenicity problems. Since a sufficient amount of bone marrow stromal cells can be collected from their own bone marrow, there is no problem of ethics and transplantation antigenicity using other cells. However, bone marrow stromal cells are cells that do not naturally differentiate into neurons. Therefore, it would be more desirable if autologous neural stem cells can be used as a source, such as by developing a method for growing endogenous neural stem cells. Therefore, development of a method for growing endogenous neural stem cells is strongly desired.

胎児性および成人性神経幹細胞は既に齧歯類の中枢神経系から(胎児性:非特許文献18、成人性:非特許文献19−20)のみならず、ヒトの中枢神経系から(胎児性:非特許文献21−22、成人性:非特許文献23−24)から分離されている。神経幹細胞は神経、アストロサイト、オリゴデントロサイトに分化し、興奮性神経シナプスと抑制性神経シナプスに分化し(非特許文献25−26)、活性の神経系ネットワークを形成する(非特許文献27)という。   Fetal and adult neural stem cells are not only from the central nervous system of rodents (fetal: non-patent document 18, adult: non-patent document 19-20) but also from the human central nervous system (fetal: Non-patent literature 21-22, adulthood: non-patent literature 23-24). Neural stem cells differentiate into nerves, astrocytes, and oligodentrosites, differentiate into excitatory and inhibitory neural synapses (Non-patent Documents 25-26), and form an active neural network (Non-patent Document 27). ).

近年、機能を失った組織に対して、神経幹細胞を移植し、個々の生体機能を発現する細胞へ特異的に分化させることにより、当該病態を改善・治療する試みが行われている。例えば、パーキンソン病に関し、神経幹細胞を線条体内部へ移植すると、細胞が生き残り臨床効果を得る(非特許文献28)、神経幹細胞移植によりパーキンソン病の作動性システムのシナプスおよび末端機能が保持される(非特許文献29)、1‐メチル‐4‐フェニル‐1,2,3,6‐テトラヒドロピリジン起因パーキンソン病のマウスの脳に神経幹細胞を移植すると生き残り、機能性のあるドパミン作動性神経になる(非特許文献30)という報告がある。また、脳梗塞の場合は、神経幹細胞の移植により脳梗塞の改善が見られという(非特許文献31)。多くの神経幹細胞の脳内移植データー(前述の非特許文献31と非特許文献32−35)は神経幹細胞の移植または増殖により、神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病が治療できることを示唆している。最大の課題は移植可能な質と量の神経幹細胞を生産する方法を確立することまたは脳内で内在する神経細胞を増殖することが可能な低毒性の神経幹細胞増殖剤を開発することである。   In recent years, attempts have been made to improve and treat the disease state by transplanting neural stem cells to tissues that have lost their function and specifically differentiating them into cells that express individual biological functions. For example, with respect to Parkinson's disease, when neural stem cells are transplanted into the striatum, the cells survive and have clinical effects (Non-patent Document 28), and neural stem cell transplantation preserves the synaptic and terminal functions of the Parkinson's disease operative system. (Non-patent document 29) Transplanting neural stem cells into the brain of a mouse with Parkinson's disease caused by 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine survives and becomes a functional dopaminergic nerve There is a report (Non-Patent Document 30). In the case of cerebral infarction, it is said that improvement of cerebral infarction is seen by transplantation of neural stem cells (Non-patent Document 31). Many neural stem cell transplantation data (Non-Patent Document 31 and Non-Patent Documents 32-35 mentioned above) show that tissues and organs caused by neuronal degeneration, decrease, cell death, injury, or exclusion due to transplantation or proliferation of neural stem cells. This suggests that diseases caused by reduced or lost function can be treated. The biggest challenge is to establish a method for producing transplantable quality and quantity of neural stem cells, or to develop a low-toxic neural stem cell proliferating agent capable of growing resident neurons in the brain.

最近、ラットの脳動脈を一時的に止めて脳虚血にして海馬の神経細胞に傷害を与えた後に、NGFを注入すると、失われた神経細胞の4割が回復したという報告がある(非特許文献36)。この環境で、NGFが神経幹細胞を増殖させることを示唆している。研究としては素晴らしいが、NGFというタンパク質を臨床的に脳内に注入することは可能な限り避けた方がよい。したがって、このNGF等生物学的因子の代わりになる低分子化合物の探索が望まれる。   Recently, there was a report that 40% of the lost neurons were recovered by injecting NGF after the brain arteries of rats were temporarily stopped to cause cerebral ischemia to injure hippocampal neurons. Patent Document 36). This suggests that NGF proliferates neural stem cells. Although excellent as a research, it is better to avoid NGF protein clinically injected into the brain as much as possible. Therefore, it is desired to search for low molecular weight compounds that can substitute for biological factors such as NGF.

非神経細胞や神経幹細胞を神経細胞に分化させる低分子はすでに報告されている(前述の特許文献2と非特許文献37)。骨髄間質細胞等非神経細胞を神経疾病の神経細胞の補充の供給源として用いる目的のためには、神経細胞への分化剤は重要である。しかし、神経細胞に分化した細胞は増殖しないので、神経幹細胞を神経疾病の神経細胞の補充の供給源として用いる目的のためには、神経幹細胞の神経への分化剤よりは神経幹細胞を神経に分化させないで、神経幹細胞のまま増殖させる神経幹細胞増殖剤がより重要である。神経幹細胞分化剤は神経幹細胞を増殖させた後に要すれば考慮すべき問題である。   Small molecules that differentiate non-neuronal cells and neural stem cells into nerve cells have already been reported (Patent Document 2 and Non-Patent Document 37 described above). For the purpose of using non-neuronal cells such as bone marrow stromal cells as a source of supplementation of nerve cells for neurological diseases, a differentiation agent for nerve cells is important. However, since cells that have differentiated into nerve cells do not proliferate, for the purpose of using neural stem cells as a source of supplementation of nerve cells for neurological diseases, neural stem cells are differentiated into nerves rather than neural stem cell differentiation agents. More important is a neural stem cell proliferating agent that allows the cells to proliferate as neural stem cells. Neural stem cell differentiating agents are a matter to be considered if necessary after neural stem cells are expanded.

一方、サルビアノール酸Bはシソ科の植物の1種である丹参(学名:Labiatae・Salvia・miltiorrhiza・Bunge)の水溶性成分の一つ(非特許文献38)であり、高速ティ・エル・シ(HPTLC)(非特許文献39)、樹脂カラムのアルコール展開(特許文献3)、高圧液体クロマトグラフィー(HPLC)(非特許文献40)または高速カウンター・カレント・クロマトグラフィー(非特許文献41)、カラムクロマトグラフィー(特許文献4)等により分離される。分子量718、分子式C36H30O16で、その平面構造式は非特許文献42に示され、その立体構造式は図1で表される(非特許文献43)。山東省天然薬物工程技術研究中心の曲桂武らによれば、水溶液中のサルビアノール酸Bは高温で不安定で、摂氏80度で72時間加温すると35%変化し、チオ硫酸ナトリウム、硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、ヒドロ亜硫酸ナトリウム、システイン塩酸塩、EDTA2ナトリウム塩を添加しても一部変化するという。ビタミンCを添加した時のみ摂氏80度で72時間加温してもサルビアノール酸Bは安定であるいう(非特許文献44)。   On the other hand, salvianolic acid B is one of the water-soluble components of Dansan (scientific name: Labiatae / Salvia / miltiorrhiza / Bunge) (Non-patent Document 38). (HPTLC) (Non-patent document 39), Alcohol development of resin column (Patent document 3), High-pressure liquid chromatography (HPLC) (Non-patent document 40) or high-speed counter current chromatography (Non-patent document 41), column They are separated by chromatography (Patent Document 4) and the like. With a molecular weight of 718 and a molecular formula of C36H30O16, its planar structural formula is shown in Non-Patent Document 42, and its three-dimensional structural formula is shown in FIG. 1 (Non-Patent Document 43). According to Katsuratake et al., A researcher of natural drug processing technology in Shandong Province, salvianolic acid B in aqueous solution is unstable at high temperature and changes 35% when heated at 80 degrees Celsius for 72 hours, sodium thiosulfate, sulfuric acid It is said that even if sodium, sodium sulfite, sodium hydrosulfite, cysteine hydrochloride, or EDTA disodium salt is added, it partially changes. Only when vitamin C is added, salvianolic acid B is stable even when heated at 80 degrees Celsius for 72 hours (Non-patent Document 44).

サルビアノール酸Bは非常に強い抗酸化作用(非特許文献45)、脂肪過酸化阻止作用、脱水酸化ラジカル作用(非特許文献46)を有する。この抗過酸化作用に基づき、以下の生理作用を有する。すなわち、四塩化炭素またはジ・メチルニトサミンによる肝臓の繊維化予防作用(非特許文献47−48)、脳虚血による記憶喪失の予防作用(非特許文献49)、アテロム性動脈硬化症縮小作用(非特許文献50)、抗虚血作用(非特許文献51)、心臓血管系に対する保護作用(非特許文献52)、抗ウイルス作用(特許文献5−7)、虚血による脳障害の予防作用(非特許文献53)、子牛大動脈内皮細胞の血管内皮細胞成長因子(VEGF)により誘導される高透過性の阻止作用(非特許文献54)、アミロイド・ベーターたんぱく質の凝集阻止作用と繊維化形成阻止作用(前述の非特許文献42)、新生細胞のアポトーシス誘導作用(非特許文献55)、肝星細胞増殖阻止作用とコラーゲン産生阻止作用とトランスホーミング成長因子(TGF)ベーター1・有糸分裂活性化タンパク質リン酸化酵素(MAPR)系のシグナルトランスダクション阻止作用(非特許文献56)、神経退化に関与する前立腺アポトーシス反応4(Par‐4)関与によるアミロイド・ベーターたんぱく質の凝集阻止作用(非特許文献57)、コレスタン・3ベーター・5アルファー・6ベータートリオールによるヒトへそ静脈内皮細胞(HUVEC)傷害の緩和作用(非特許文献58)、酸化低密度リポたんぱく質による心臓血管系炎症障害の治療作用(特許文献8−9)を有する。また、サルビアノール酸Bとサポニンの混合物が心臓血管疾病および脳血管疾病部位を縮小させ(特許文献10)、サルビアノール酸Bとリソスペルミン酸(英語名:Lithospermic・acid)の混合物がアテローマ動脈硬化症または動脈再狭窄症に有効である(特許文献11−12)。サルビアノール酸Bの構成成分がリパーゼ阻害作用を有する(特許文献13)。   Salvianolic acid B has a very strong antioxidant action (Non-patent Document 45), fat peroxidation-inhibiting action, and dehydrated oxidation radical action (Non-Patent Document 46). Based on this anti-peroxidation effect, it has the following physiological effects. That is, the action of carbon tetrachloride or dimethylnitsamine to prevent fibrosis of the liver (Non-Patent Documents 47 to 48), the action of preventing memory loss due to cerebral ischemia (Non-Patent Document 49), and the effect of reducing atherosclerosis (Non-patent document 50), Anti-ischemic action (Non-patent document 51), Protective action against cardiovascular system (Non-patent document 52), Antiviral action (Patent documents 5-7), Preventive action against brain damage caused by ischemia (Non-patent Document 53), High Permeability Inhibitory Action Induced by Vascular Endothelial Growth Factor (VEGF) of Calf Aortic Endothelial Cells (Non-patent Document 54), Aggregation Inhibitory Action and Fibrosis Formation of Amyloid Beta Protein Inhibitory action (previously Non-patent document 42), apoptosis-inducing action of neoplastic cells (Non-patent document 55), hepatic stellate cell growth inhibitory action, collagen production inhibitory action and transforming growth factor ( TGF) beta-1, mitogenic activation protein kinase (MAPR) system signal transduction inhibitory action (Non-patent Document 56), prostate apoptosis reaction 4 (Par-4) involved in neurodegeneration amyloid beta Aggregation inhibitory action of protein (Non-patent Document 57), Cholestan-3beta-5alpha-6betatriol alleviates human naval vein endothelial cell (HUVEC) injury (Non-patent document 58), Heart by oxidized low density lipoprotein It has a therapeutic action on vascular system inflammatory disorders (Patent Documents 8-9). In addition, a mixture of salvianolic acid B and saponin reduces cardiovascular disease and cerebrovascular disease site (Patent Document 10), and a mixture of salvianolic acid B and lysospermic acid (English name: Lithospermic · acid) is atherosclerosis. It is effective for arthritis or arterial restenosis (Patent Documents 11-12). A constituent of salvianolic acid B has a lipase inhibitory action (Patent Document 13).

要約すると、サルビアノール酸Bは非常に強い抗過酸化作用を有し、この抗過酸化作用により、心臓血管系や脳神経系や肝臓細胞での過酸化による細胞死予防作用と抗ウイルス作用を有する。また、サルビアノール酸Bは新生細胞のアポトーシスを誘導することにより、アテローマ動脈硬化症等の血管内皮細胞の増殖を阻害する。つまり、サルビアノール酸Bの基本作用は抗過酸化作用、抗ウイルス作用ならびに新生細胞のアポトーシス誘導作用である。したがって、脳梗塞に起因する虚血による脳神経細胞の予防やウイルス性脳炎の予防および脳神経細胞の補充ないし増殖を要しない極初期の脳神経疾病の治療の可能性は考えられる。しかし、サルビアノール酸Bの効果は抗過酸化作用や抗ウイルス作用によるので、当該疾病の治療はできても、神経幹細胞を増殖させて、すでに脳神経細胞の退化または減少してしまったことに起因する脳神経疾病を治療することはできないと思われた。サルビアノール酸Bは新生細胞のアポトーシスを誘導し、細胞増殖を阻害するので、神経幹細胞の増殖には、むしろ不利に働くと思われた。実際、サルビアノール酸B関連化合物のアセチルサルビアノール酸Aは抗血栓作用を有するので、その作用により脳梗塞予防に有益な効果があるであろうと推定し(非特許文献59)、サルビアノール酸Aは、その抗酸化作用により過酸化による肝細胞障害を予防し(非特許文献60)、繊維芽細胞の増殖を阻害し(非特許文献61)、神経幹細胞の生存率を上昇させるが、神経幹細胞の増殖を促進させないことが確認されている(非特許文献62)。
なお、最近神経幹細胞の分離、増殖、分化に関し、多くの特許が出願され、公開されている(特許文献14−72)。いずれも、生物学的因子を用いる方法である。低分子の神経幹細胞増殖剤としてはベンゼン環縮合5員複素環式化合物(特許文献73)、または薬用人参中のサポニン類等、例えば、ギンセノシドRg1(英語名:Ginsenoside Rg1)(特許文献74および前述の非特許文献62)が報告されているに過ぎない。また、サルビアノール酸Bの抽出もとの丹参の薬効に関する特許も多いが、その多くは丹参の主薬効から類推可能な血管系に関する薬効である。痴呆薬に関する特許公開公報が存在するが、丹参の他、種々の生薬の配合剤に関する特許出願である(特許文献75)。これらの特許文献から本発明は予見できない。
In summary, salvianolic acid B has a very strong anti-peroxidation effect, and by this anti-peroxidation effect, it has cell death prevention and antiviral effects due to peroxidation in the cardiovascular system, cranial nervous system and liver cells. . Salvianolic acid B inhibits proliferation of vascular endothelial cells such as atherosclerosis by inducing apoptosis of new cells. That is, the basic action of salvianolic acid B is an anti-peroxidation action, an antiviral action, and an apoptosis-inducing action of new cells. Therefore, there is a possibility of preventing cranial nerve cells due to ischemia caused by cerebral infarction, preventing viral encephalitis, and treating very early cranial nerve diseases that do not require supplementation or proliferation of cranial nerve cells. However, since the effect of salvianolic acid B is due to anti-peroxidation and antiviral effects, even though the disease can be treated, neural stem cells have proliferated and brain neurons have already degenerated or decreased. It seemed impossible to treat cranial nerve disease. Salvianolic acid B induces apoptosis of neoplastic cells and inhibits cell proliferation, so it seemed to be rather disadvantageous for neural stem cell proliferation. Actually, since acetyl salvianolic acid A, a salvianolic acid B related compound, has an antithrombotic action, it is presumed that the action will have a beneficial effect on prevention of cerebral infarction (Non-patent Document 59). Prevents liver cell damage due to peroxidation by its antioxidant action (Non-patent Document 60), inhibits fibroblast proliferation (Non-patent Document 61), and increases the survival rate of neural stem cells. It has been confirmed that it does not promote the growth of non-patent documents (Non-patent Document 62).
Recently, many patents have been filed and published regarding the isolation, proliferation and differentiation of neural stem cells (Patent Documents 14-72). Both are methods using biological factors. As a low-molecular-weight neural stem cell proliferating agent, a benzene ring condensed 5-membered heterocyclic compound (Patent Document 73), or a ginseng saponin, such as ginsenoside Rg1 (English name: Ginsenoside Rg1) (Patent Document 74 and the aforementioned) No. 62) is only reported. In addition, there are many patents related to the medicinal effect of red ginseng from which salvianolic acid B is extracted. There is a patent publication regarding dementia drugs, but in addition to Tansan, it is a patent application regarding various herbal medicine combinations (Patent Document 75). The present invention cannot be foreseen from these patent documents.

以下に先行文献を特許文献と非特許文献に分けて表示する。
特表2002−513545号公報 特開2004−91344号公報 米国特許2001年6,299,910号公報 中国特許2003年1425659号公報 カナダ特許1999年2335956号公報 カナダ特許2000年2376922号公報 米国特許2000年6,043,276号公報 カナダ特許2003年2459406号公報 米国特許2003年2003086987号公報 中国特許2003年1425430号公報 米国特許2002年2002197274号公報 国開WO2002年02085398号国際公報 欧州特許2003年1371368号公報 特開2004−236607号公報 特開2004−229523号公報 特開2004−166604号公報 特開2004−129561号公報 特開2003−325167号公報 特開2003−189847号公報 特開2003−125759号公報 特開2003−081959号公報 特開2002−348239号公報 特開2002−291469号公報 特開2002−281962号公報 特開2002−051775号公報 特開2002−034580号公報 特開2001−316285号公報 特開2001−292768号公報 特開2001−186829号公報 特表2004−523216号公報 特表2004−522414号公報 特表2004−517620号公報 特表2004−500103号公報 特表2003−525034号公報 特表2003−523166号公報 特表2003−521474号公報 特表2003−516141号公報 特表2003−514565号公報 特表2003−514550号公報 特表2003−512333号公報 特表2003−511352号公報 特表2003−507349号公報 特表2003−505023号公報 特表2002−544235号公報 特表2002−537802号公報 特表2002−536991号公報 特表2002−536023号公報 特表2002−530351号公報 特表2002−530068号公報 特表2002−526104号公報 特表2002−526065号公報 特表2002−518990号公報 特表2002−518043号公報 特表2002−517982号公報 特表2002−512842号公報 特表2002−508666号公報 特表2002−500879号公報 特表2001−520878号公報 特表2001−518289号公報 特表2001−511788号公報 特表2001−511456号公報 特表2001−504123号公報 特表平10−509592号公報 特表平10−509319号公報 特表平10−505754号公報 特表平09−500004号公報 特表平08−505762号公報 特表平08−502652号公報 特表平08−502172号公報 特表平08−500245号公報 国開WO02/05811号国際公報 国開WO01/88100号国際公報 特開2003−081959号公報 特開2001−139483号公報 特開平6−56684号公報 J.H.Kordowerら、N.Engl.J.Med.、1995年332巻1118頁 J.H.Kordowerら、J.Comp.Neurol.、1996年370巻203頁 J.H.Kordowerら、Mov.Disord.、1998年13巻383頁 P.Picciniら、Nat.Neurosci、1999年2巻1137頁 P.Picciniら、Ann.Neural.、2000年48巻689頁 O.Lindvailら、Prog.BrainRes.、2000年127巻299頁 S.Polgarら、BrainRes.Bull.、2003年60巻1頁 C.W.Clanowら、Ann.Neurol.、2003年54巻403頁 D.Kondziolkaら、Neurology、2000年55巻565頁 P.T.Nelsonら、Am.J.Pathol.、2002年160巻1201頁 M.Dezawaら、Eur.J.Neurosci.、2001年14巻1771頁 W.Dengら、Biochem.Biophys.Res.Commun.、2001年282巻148頁 D.Woodburyら、J.Neurosci.Res.、2000年61巻363頁 J.Sanchez−Ramosら、Exp.Neurol.、2000年164巻247頁 J.Kohyyamaら、Differentiation、2001年68巻235頁 J.M.Patentら、Ann.Neurol.、2002年52巻802頁 A.Arvidssonら、Nat.Med.、2002年8巻963頁 K.K.Joheら、Genes・Dev.、1996年10巻3129頁 A.Grittiら、Am.J.Neurosci.、1996年16巻1091頁 T.D.Palmerら、Neurosci.、1997年8巻389頁 O.Brustleら、Nat.Biotech.、1998年16巻1040頁 C.N.Svendsenら、Brain・Pathol.、1999年9巻499頁 V.G.Kukekpvら、Exp.Neurol.、1999年156巻333頁 A.F.Paganoら、Stem・cells、2000年18巻295頁 C.Vicario‐Abejonら、Eur.J.Neurosci.、2000年12巻677頁 H.Todaら、Exp.Neurol.、2000年165巻66頁 S.K.Mistryら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.、2002年99巻1621頁 P.Hagellら、J.Neuropathol.Exp.Neurol.、2001年60巻741頁 O.Isacsonら、Ann.Neurol.、2003年53巻s135頁 X.Liら、Act・Pharmacol.Sin、2003年24巻1192頁 T.Veizovicら、Stroke、2001年32巻1012頁 F.H.Grageら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.、1995年92巻11879頁 T.Quら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.、1995年92巻11879頁 A.E.Rosserら、Eur.J.Neurosci.、2000年12巻2405頁 J.W.Mcdonaldら、Nat.Med.、1999年5巻1410頁 H.Nakatomiら、Cell、2002年110巻429頁 S.Dingら、Pro.Natl.Acad.Sci.U.S.A.、2003年100巻7632頁 Z.X.Chenら、Chin.Pharm.Bull.、1981年16巻24頁 J.Liら、Act・Pharm.Sin.、1993年28巻543頁 Q.W.Zhangら、Zhongguo・Zhong・Yao・Za・Zhi、2001年26巻848頁 H.B.Liら、J.Chromatogr.A.、2002年943巻235頁 M‐K.Tangら、Act・Pharmacol.Sin.、2001年22巻380頁 Ivy・Fine・Chemicals・Corporationのカタログ番号NE01‐004 曲桂武ら、http://www.ndcenter.com.cn/tongxun/2/quguiwu2.pdf. L.N.Liら、J.Chin.Pharm.Sci.、1997年6巻57頁 G.H.Duら、Basic.Med.Sci.Clin.、2000年20巻10頁 P.Liuら、Chin.J.Integr.Med.、1993年13巻352頁 Y.Y.Huら、Chin.Med.Abstr.Intern.Med.、1997年14巻139頁 G.H.Duら、Chin.Med.J.、1997年110巻65頁 Y-J.Wuら、Arteroscher.Thromb.Vasc.Biol.、1998年18巻481頁 J.Wangら、Chin.Pharmacol.Bull.、1999年15巻164頁 L.Y.Maら、Chin.Tradit.Herb・Drugs、1999年30巻391頁 Y.H.Chengら、Act・Pharmacol.Sin.、2000年21巻463頁 Y.Qiuら、Act・Pharmacol.Sin.、2001年22巻117頁 H.H.Hungら、Histol.Histopathol.、2001年16巻175頁 P.Liuら、Act・Pharmacol.Sin.、2002年23巻733頁 M.Tangら、Jpn.J.Pharmacol.、2002年88巻422頁 D.Renら、Chin.Med.J.、2003年116巻630頁 J.C.Dongら、Yao・Xue・Xue・Bao、1996年31巻6頁 Y.Y.Huら、World・J.Gastroenterol.、2000年6巻402頁 C.H.Liuら、World・J.Gastroenterol.、2000年6巻361頁 L.H.Shenら、Yao・Xue・Xue・Bao、2003年38巻735頁 G.J.Brewerら、J.Neurosci.Res.、1993年35巻567頁
In the following, prior documents are displayed separately for patent documents and non-patent documents.
Special Table 2002-513545 gazette JP 2004-91344 A US Patent 2001,299,910 Chinese Patent No. 1425659 Canadian Patent No. 2335956 Canadian Patent No. 2376922 US Patent No. 6,043,276 Canadian Patent 2003 No. 2459406 US 2003 20030886987 Chinese Patent No. 20031245430 US 2002 2002197274 Kokukai WO2002 02085398 International Publication European Patent 2003 1371368 Japanese Patent Laid-Open No. 2004-236607 JP 2004-229523 A JP 2004-166604 A JP 2004-129561 A JP 2003-325167 A JP 2003-189847 A JP 2003-125759 A JP 2003-081959 A JP 2002-348239 A JP 2002-291469 A Japanese Patent Laid-Open No. 2002-281962 JP 2002-051775 A JP 2002-034580 A JP 2001-316285 A JP 2001-292768 A JP 2001-186829 A JP-T-2004-523216 Special table 2004-522414 gazette JP-T-2004-517620 Special table 2004-500103 gazette Special table 2003-525034 gazette Special table 2003-523166 gazette Special table 2003-521474 gazette Special table 2003-516141 gazette Special table 2003-514565 gazette Special table 2003-514550 gazette Japanese translation of PCT publication No. 2003-512333 Special table 2003-511352 gazette JP-T-2003-507349 Japanese translation of PCT publication No. 2003-505023 JP 2002-544235 A Special Table 2002-537802 JP 2002-536991 A JP 2002-536023 A Japanese translation of PCT publication No. 2002-530351 Special table 2002-530068 gazette Special Table 2002-526104 Special table 2002-526065 gazette JP 2002-518990 Gazette Japanese translation of PCT publication No. 2002-518043 Japanese translation of PCT publication No. 2002-517982 Japanese translation of PCT publication No. 2002-512842 JP 2002-508666 Gazette Special Table 2002-200879 JP-T-2001-520878 JP-T-2001-518289 JP-T-2001-511788 Special table 2001-511456 gazette JP-T-2001-504123 Japanese National Patent Publication No. 10-509592 Japanese National Patent Publication No. 10-509319 Japanese National Patent Publication No. 10-505754 Japanese National Patent Publication No. 09-500004 Japanese National Patent Publication No. 08-505762 Japanese National Patent Publication No. 08-502652 JP-T-08-502172 Japanese National Patent Publication No. 08-500305 Kokukai WO02 / 05811 International Publication Kokukai WO01 / 88100 International Publication JP 2003-081959 A JP 2001-139483 A JP-A-6-56684 J. et al. H. Kordower et al. Engl. J. et al. Med. 1995, 332, 1118. J. et al. H. Kordower et al. Comp. Neurol. 1996, 370, 203. J. et al. H. Kordower et al., Mov. Disorder. 1998, p. 383 P. Piccini et al., Nat. Neurosci, 1999, vol. 2, page 1137 P. Piccini et al., Ann. Neurol. , 2000, 48, 689 O. Lindvail et al., Prog. Brain Res. 2000, 127, 299 S. Polgar et al., Brain Res. Bull. , 2003, 60, 1 page C. W. Clanow et al., Ann. Neurol. 2003 54: 403 D. Kondoziolka et al., Neurology, 2000, 55, 565. P. T.A. Nelson et al., Am. J. et al. Pathol. , 2002, 160, 1201 M.M. Dezawa et al., Eur. J. et al. Neurosci. 2001 14: 1771 W. Deng et al., Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001, 282, 148 D. Woodbury et al. Neurosci. Res. 2000, p. 363 J. et al. Sanchez-Ramos et al., Exp. Neurol. 164, 247, 2000 J. et al. Kohyayama et al., Differentiation, 2001, 68, 235 J. et al. M.M. Patent et al., Ann. Neurol. 2002, 52, 802 A. Arvidsson et al., Nat. Med. , 2002, 8: 963 K. K. Johe et al., Genes Dev. 1996, 10: 3129. A. Gritti et al., Am. J. et al. Neurosci. 1996 16: 1091 T.A. D. Palmer et al., Neurosci. 1997, 8: 389 O. Brustle et al., Nat. Biotech. 1998, 16: 1040 C. N. Svensen et al., Brain Pathol. 1999, 9: 499 V. G. Kukekpv et al., Exp. Neurol. 1999, 156, 333 A. F. Pagano et al., Stem cells, 2000, 18: 295. C. Vicario-Abejon et al., Eur. J. et al. Neurosci. 2000 12: 677 H. Toda et al., Exp. Neurol. , 2000, 165, 66 S. K. Mistry et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. , 2002, 99, 1621 P. Hagel et al. Neuropathol. Exp. Neurol. 2001, 60, 741 O. Isacson et al., Ann. Neurol. 2003 53 s135 X. Li et al., Act Pharmacol. Sin, 2003, 24, 1192 T.A. Veizovic et al., Stroke, 2001, 32, 1012. F. H. Grage et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1995, 92, 11879 T.A. Qu et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1995, 92, 11879 A. E. Rosser et al., Eur. J. et al. Neurosci. 2000 12: 2405 J. et al. W. Mcdonald et al., Nat. Med. 1999, 5: 1410 H. Nakatomi et al., Cell, 2002, 110, 429. S. Ding et al., Pro. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2003, 100, 7632 Z. X. Chen et al., Chin. Pharm. Bull. 1981 16:24 J. et al. Li et al., Act Pharm. Sin. 1993 28: 543 Q. W. Zhang et al., Zhongguo, Zhong, Yao, Za, Zhi, 2001, 26, 848. H. B. Li et al. Chromatogr. A. 2002, 943, 235 MK. Tang et al., Act Pharmacol. Sin. 2001 22: 380 Catalog number NE01-004 of Ivy, Fine, Chemicals, Corporation Katsuratake et al., Http: // www. ndcenter. com. cn / tongxun / 2 / kuguiwu2. pdf. L. N. Li et al. Chin. Pharm. Sci. 1997, p. 57 G. H. Du et al., Basic. Med. Sci. Clin. 2000, 20 pages, 10 pages P. Liu et al., Chin. J. et al. Integrr. Med. 1993 13: 352 Y. Y. Hu et al., Chin. Med. Abstr. Intern. Med. 1997, 14: 139 G. H. Du et al., Chin. Med. J. et al. 1997, 110, 65 YJ. Wu et al., Arteroscher. Thromb. Vasc. Biol. , 1998, 18: 481 J. Wang et al., Chin. Pharmacol. Bull. 1999 Volume 15 164 L. Y. Ma et al., Chin. Tradit. Herb Drugs, 1999, volume 30, page 391. Y. H. Cheng et al., Act Pharmacol. Sin. 2000, p. 463 Y. Qiu et al., Act Pharmacol. 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本発明の目的は、(1)サルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものおよびそれらのプロドラッグ、ならびに上記化合物またはそれらのプロドラッグの薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物を有効成分とすることを特徴とする神経幹細胞増殖剤、(2)当該神経幹細胞増殖剤を、要すれば賦活化後、体外で投与することを特徴とする体外での神経幹細胞増殖方法、(3)当該神経幹細胞増殖方法で増殖することを特徴とする神経幹細胞の含有液、(4)血清、bFGFおよびNGFを含まない当該神経幹細胞含有液を有効成分とすることを特徴とする神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤、(5)当該神経幹細胞増殖剤を有効成分とし、当該有効成分の神経幹細胞増殖作用によることを特徴とする当該疾病の治療剤、(6)サルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする(1)に記載する神経幹細胞増殖剤と(2)に記載する神経幹細胞増殖方法と(3)に記載する神経幹細胞含有液と(4)と(5)に記載する治療剤を提供することにある。   The object of the present invention is (1) salvianolic acid B and its optical or geometric isomers having the same neural stem cell proliferating action as salvianolic acid B and their prodrugs, as well as the above compounds or their prodrugs A neural stem cell proliferating agent characterized by comprising a compound selected from pharmaceutically acceptable salts thereof and hydrates thereof as an active ingredient, and (2) activation of the neural stem cell proliferating agent, if necessary. A method of proliferating neural stem cells outside the body, characterized by administration in vitro, (3) a neural stem cell-containing solution characterized by proliferation using the neural stem cell proliferation method, (4) serum, bFGF and NGF Reduced function of tissues and organs due to degeneration, decrease, cell death, injury, exclusion of neurons Or a therapeutic agent for a disease that develops due to loss, (5) a therapeutic agent for the disease characterized by comprising the neural stem cell proliferating agent as an active ingredient, and a neural stem cell proliferating action of the active ingredient, (6) salvianolic acid B A neural stem cell proliferating agent according to (1), wherein at least one antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than sulfite and vitamin C is added as an additive And the neural stem cell proliferation method described in (2), the neural stem cell-containing solution described in (3), and the therapeutic agent described in (4) and (5).

本発明者らは、斯かる実状に鑑み、神経幹細胞を血清、bFGFおよびNGFで処理することなく増殖させる能力を有する、薬学的許容範囲の毒性しかない低分子物質を種々探索した結果、驚くべきことに、サルビアノール酸Aと異なり、サルビアノール酸Bに、公知の抗過酸化作用、抗ウイルス、新生細胞アポトーシス誘導作用とは全く異なる、神経幹細胞を増殖させる作用があることを見出し、さらに種々研究した結果、本発明を完成した。   In view of such a situation, the present inventors have been surprised as a result of various searches for low molecular weight substances that have the ability to proliferate neural stem cells without treatment with serum, bFGF, and NGF and have only a pharmaceutically acceptable toxicity. In particular, unlike salvianolic acid A, it has been found that salvianolic acid B has an action of proliferating neural stem cells that is completely different from the known antiperoxidation action, antivirus, and neoplastic cell apoptosis induction action. As a result of research, the present invention has been completed.

すなわち、本発明は、(1)サルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものおよびそれらのプロドラッグ、ならびに上記化合物またはそれらのプロドラッグの薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物を有効成分とすることを特徴とする神経幹細胞増殖剤、(2)前記化合物が、サルビアノール酸Bおよびそのプロドラッグ、ならびに薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれることを特徴とする(1)に記載する神経幹細胞増殖剤、(3)前記化合物が、サルビアノール酸Bおよび薬学的に許容することのできるその塩ならびにそれらの水和物から選ばれることを特徴とする(2)に記載する神経幹細胞増殖剤、(4)当該神経幹細胞増殖剤を、要すれば賦活化後、体外で投与することを特徴とする体外での神経幹細胞増殖方法、(5)血清、bFGFおよびNGFを含まない細胞培養液を用いることを特徴とする(4)に記載する神経幹細胞増殖方法、(6)(4)または(5)に記載する神経幹細胞増殖方法で増殖することを特徴とする神経幹細胞の含有液、(7)(5)に記載する方法で増殖することを特徴とする当該神経幹細胞の含有液を有効成分とすることを特徴とする神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤、(8)当該神経幹細胞増殖剤を有効成分とし、当該有効成分の神経幹細胞増殖作用によることを特徴とする当該疾病の治療剤、(9)サルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする(1)、(2)または(3)に記載する神経幹細胞増殖剤と(4)または(5)に記載する神経幹細胞増殖方法と(6)に記載する神経幹細胞含有液と(7)記載する神経幹細胞含有液含有治療剤または(8)に記載する神経幹細胞増殖作用機序による治療剤を提供するものである。   That is, the present invention relates to (1) salvianolic acid B and optical or geometric isomers thereof having the same neural stem cell proliferating action as salvianolic acid B and their prodrugs, as well as the above compounds or their prodrugs A neural stem cell proliferating agent characterized by comprising as an active ingredient a compound selected from pharmaceutically acceptable salts thereof and hydrates thereof; (2) said compound comprising salvianolic acid B and its pro (1) the neural stem cell proliferating agent described in (1), wherein the compound is selected from salivanolic acid B, which is selected from drugs, pharmaceutically acceptable salts thereof, and hydrates thereof And a pharmaceutically acceptable salt thereof and a hydrate thereof, wherein the god described in (2) A stem cell proliferating agent, (4) an in vitro neural stem cell proliferating method characterized in that the neural stem cell proliferating agent is administered in vitro after activation if necessary, (5) does not contain serum, bFGF and NGF Use of cell culture medium, neural stem cell proliferation method according to (4), (6) inclusion of neural stem cells characterized by proliferation by the neural stem cell proliferation method according to (4) or (5) (7) Due to neuronal degeneration, reduction, cell death, injury, exclusion, characterized by containing as an active ingredient a liquid containing the neural stem cell, characterized in that it grows by the method described in (7) (5) (8) a therapeutic agent for a disease caused by a decrease in or loss of function of a tissue or organ, (8) a therapeutic agent for the disease characterized by comprising the neural stem cell proliferating agent as an active ingredient, and a neural stem cell proliferating action of the active ingredient; 9) Monkey (1), (2) characterized in that at least one antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than anolic acid B, sulfite and vitamin C is added as an additive. Or the neural stem cell proliferating agent described in (3), the neural stem cell proliferating method described in (4) or (5), the neural stem cell-containing liquid described in (6), and the neural stem cell-containing liquid-containing therapeutic agent described in (7) Or the therapeutic agent by the neural stem cell proliferation action mechanism as described in (8) is provided.

本発明の神経幹細胞増殖剤は、(1)体外での神経幹細胞の増殖剤として有用であり、(2)後述の神経幹細胞増殖方法においてその方法を特徴付ける薬剤として有用であり、(3)後述の神経幹細胞含有液の液質を特徴付ける薬剤として有用であり、(4)後述の神経幹細胞含有液含有治療剤の性質を特徴付ける薬剤として有用であり、(5)後述の当該神経幹細胞増殖作用機序による療剤の有効成分としても有用である。本発明の神経幹細胞増殖方法は、(1)体外での神経幹細胞の増殖方法として有用であり、(2)後述の神経幹細胞含有液の生産方法として有用であり、(3)後述の神経幹細胞含有液含有治療剤の生産方法またはその一工程として有用である。本発明の神経幹細胞含有液は、(1)神経幹細胞の供給源として有用であり、(2)後述の神経幹細胞含有液含有治療剤の有効成分として有用である。本発明の神経幹細胞含有液含有治療剤と神経幹細胞増殖剤を含有し、神経幹細胞増殖作用機序による治療剤の2剤は神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤として有用である。本発明のサルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする(1)、(2)または(3)に記載する神経幹細胞増殖剤と(4)または(5)に記載する神経幹細胞増殖方法と(6)に記載する神経幹細胞含有液と(7)記載する神経幹細胞含有液含有治療剤または(8)に記載する神経幹細胞増殖作用機序による治療剤は各々前述の有用性の上に、より安定性に優れているという性質を有し、有用である。   The neural stem cell proliferating agent of the present invention is useful as (1) an agent for proliferating neural stem cells outside the body, (2) useful as a drug characterizing the method in a neural stem cell proliferating method described later, and (3) described later. Useful as a drug characterizing the quality of the neural stem cell-containing fluid, (4) Useful as a drug characterizing the properties of the neural stem cell-containing liquid-containing therapeutic agent described below, and (5) According to the neural stem cell proliferation action mechanism described below It is also useful as an active ingredient of a therapeutic agent. The neural stem cell proliferation method of the present invention is useful as (1) a method for proliferating neural stem cells outside the body, (2) useful as a method for producing a neural stem cell-containing solution described later, and (3) containing neural stem cells described later. It is useful as a method for producing a liquid-containing therapeutic agent or as one step thereof. The neural stem cell-containing liquid of the present invention is useful as (1) a source of neural stem cells, and (2) useful as an active ingredient of a therapeutic agent containing a neural stem cell-containing liquid described later. The nerve stem cell-containing liquid-containing therapeutic agent of the present invention and a neural stem cell proliferating agent, and two agents based on the mechanism of neural stem cell proliferation action are the degeneration, decrease, cell death, injury, exclusion of tissues and organs It is useful as a therapeutic agent for diseases caused by reduced function or loss. The present invention is characterized in that at least one antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than salvianolic acid B, sulfite and vitamin C of the present invention is added as an additive (1) The neural stem cell proliferating agent described in (2) or (3), the neural stem cell proliferating method described in (4) or (5), the neural stem cell-containing solution described in (6), and the neural stem cell-containing agent described in (7) The liquid-containing therapeutic agent or the therapeutic agent based on the neural stem cell proliferation action mechanism described in (8) is useful because it has a property of being more stable in addition to the above-mentioned utility.

本発明の1つは新しい神経幹細胞増殖剤である。本発明の神経幹細胞増殖剤の有効成分はサルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものおよびそれらのプロドラッグ、ならびに上記化合物またはそれらのプロドラッグの薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物である。サルビアノール酸Bの光学または幾何異性体の中で、サルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有しないものは、本発明の神経幹細胞増殖剤の有効成分として用いることはできない。これに対し、サルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するサルビアノール酸Bの光学または幾何異性体は本発明の神経幹細胞増殖剤の有効成分として用いることができる。しかし、サルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものの中でサルビアノール酸Bに関するデーターが一番蓄積されているので、サルビアノール酸Bおよびそのプロドラッグ、ならびに薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物がより望ましく、サルビアノール酸Bおよび薬学的に許容することのできるその塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物が更により望ましい。   One of the present invention is a new neural stem cell proliferating agent. The active ingredient of the neural stem cell proliferating agent of the present invention includes salvianolic acid B and optical or geometric isomers thereof having the same neural stem cell proliferating action as salvianolic acid B and their prodrugs, and the above compounds or their pros. It is a compound selected from pharmaceutically acceptable salts of the drugs as well as hydrates thereof. Among the optical or geometric isomers of salvianolic acid B, those that do not have the same neural stem cell proliferating action as salvianolic acid B cannot be used as the active ingredient of the neural stem cell proliferating agent of the present invention. On the other hand, the optical or geometric isomer of salvianolic acid B having the same neural stem cell proliferation action as salvianolic acid B can be used as an active ingredient of the neural stem cell proliferating agent of the present invention. However, among salvianolic acid B and its optical or geometrical isomers that have the same neural stem cell proliferating activity as salvianolic acid B, the data on salvianolic acid B is the most accumulated, so salvianolic acid B and More desirable are compounds selected from the prodrugs, and pharmaceutically acceptable salts and hydrates thereof, salvianolic acid B and pharmaceutically acceptable salts thereof and the hydration thereof. Even more desirable are compounds selected from those.

最も望ましい有効成分の1つであるサルビアノール酸Bは、目下、シソ科の植物の1種である丹参(Labiatae・Salvia・miltiorrhiza・Bunge)から分離精製される。しかし、丹参以外のサルビアノール酸B含有植物があれば、その植物から分離してもよく、合成が可能な場合は合成品でもよい。現在サルビアノール酸Bは中国(景天生物工程有限公司)と米国(Ivy・Fine・Chemicals・Corporation社)等で市販されている。サルビアノール酸Bの構造式から多くの光学または幾何異性体の存在が想定される。サルビアノール酸A、C、D、E、F、イソサルビアノール酸B等がすでに分離されている。前述したように、これらのうち、サルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞を増殖させる作用を有しないものは本発明の神経幹細胞増殖剤の有効成分として用いることが出来ないが、サルビアノール酸Bと同様に神経幹細胞を増殖させる作用を有するものは本発明の神経幹細胞増殖剤の有効成分として用いることが出来る。   Salvianolic acid B, one of the most desirable active ingredients, is currently isolated and purified from Dansang (Labiatae / Salvia / miltiorrhiza / Bunge), one of the Labiatae plants. However, if there is a plant containing salvianolic acid B other than Tansan, it may be separated from the plant, and if it can be synthesized, it may be a synthetic product. Currently, salvianolic acid B is commercially available in China (Jingtian Biological Process Co., Ltd.) and the United States (Ivy Fine Chemicals Corporation). Many optical or geometric isomers are assumed from the structural formula of salvianolic acid B. Salvianolic acids A, C, D, E, F, and isosarvianolic acid B have already been separated. As described above, among these, those that do not have the same action of proliferating neural stem cells as salvianolic acid B cannot be used as the active ingredient of the neural stem cell proliferating agent of the present invention, but salvianolic acid B and Similarly, those having an action of proliferating neural stem cells can be used as an active ingredient of the neural stem cell proliferating agent of the present invention.

サルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するもののプロドラッグは加水分解等分解を受けてサルビアノール酸Bまたはその光学または幾何異性体に成るものであれば、薬学的に許容することのできる限り、どのようなものでもよい。当該プロドラッグの一つとしてサルビアノール酸B分子中のカルボキシル基でのメチルまたはエチルエステル誘導体やサルビアノール酸B分子中のフェノール基でのアセチル誘導体等が挙げられるが、それらに限らない。将来合成されるものでも差し支えない。   A prodrug of salvianolic acid B and its optical or geometric isomer that has the same neural stem cell proliferative activity as salvianolic acid B, but undergoes hydrolysis etc. to become salvianolic acid B or its optical or geometric isomer As long as it is pharmaceutically acceptable, it may be anything. Examples of such prodrugs include, but are not limited to, methyl or ethyl ester derivatives at the carboxyl group in the salvianolic acid B molecule and acetyl derivatives at the phenol group in the salvianolic acid B molecule. It may be synthesized in the future.

サルビアノール酸Bの塩およびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものの塩、およびそれらのプロドラッグの塩は薬学的に許容することのできる塩に限られる。薬学的に許容することのできる塩としては、例えば、ナトリウム、カリウム等のアルカリ金属塩、マグネシウム、カルシウム等のアルカリ土類金属塩、アンモニウム、テトラメチルアンモニウム等のアンモニウム塩、トリエチルアミン、リジン、アルギニン等の有機アミンの塩、塩酸、臭化水素酸、硫酸等鉱酸との酸付加塩等が挙げられるが、それらに限らない。薬学的に許容することのできる塩であればよく、薬学的に許容することのできる限り、将来合成される有機化合物との塩でも差し支えない。   Salts of salvianolic acid B and optical or geometric isomers thereof that have the same neural stem cell proliferative activity as salvianolic acid B, and salts of their prodrugs are limited to pharmaceutically acceptable salts . Examples of the pharmaceutically acceptable salt include alkali metal salts such as sodium and potassium, alkaline earth metal salts such as magnesium and calcium, ammonium salts such as ammonium and tetramethylammonium, triethylamine, lysine, arginine and the like. Examples of the organic amine salts include, but are not limited to, acid addition salts with mineral acids such as hydrochloric acid, hydrobromic acid, and sulfuric acid. Any salt may be used as long as it is pharmaceutically acceptable, and a salt with an organic compound synthesized in the future may be used as long as it is pharmaceutically acceptable.

サルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものおよびそれらのプロドラッグ、ならびに上記化合物またはそれらのプロドラッグの薬学的に許容することのできるそれらの塩の水和物も本発明の神経幹細胞増殖剤の有効成分として用いることができる。   Salvianolic acid B and its optical or geometric isomers having the same neural stem cell proliferating action as salvianolic acid B and their prodrugs, as well as pharmaceutically acceptable compounds of the above compounds or their prodrugs Hydrate of these salts can also be used as an active ingredient of the neural stem cell proliferating agent of the present invention.

本発明の神経幹細胞増殖剤または後述の当該神経幹細胞増殖剤を有効成分とし、当該有効成分の神経幹細胞増殖作用によることを特徴とする神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病治療剤の有効成分は酸素および湿気のない状態では比較的安定である。しかし、抗酸化剤であるので、空中および水溶液中で比較的不安定である。特にプロドラッグ化していない有効成分は水溶液中80度72時間の加温で35%変化する。保存する時は酸素や湿気の無い状態で保存することが望ましい。長期保存を考慮に入れると、本発明の神経幹細胞増殖剤または当該疾病治療剤には有効成分の安定のため、他の抗酸化剤を添加剤として添加することが望ましい。抗酸化剤としては薬学的に許容することのできる抗酸化剤に限られる。薬学的に許容することのできる抗酸化剤としては、アルファ・カロチン、ベータ・カロチン、リコペン、ルテイン、フラボノイド、カテキン、リザベラトール、イソフラボン、ビタミンA、ビタミンE、セレン、亜鉛、補酵素Q10、グルタチオン、エンゾジノール等が挙げられる。これらの抗酸化剤は高温の水溶液中のサルビアノール酸Bの変化を抑える。亜硝酸塩はサルビアノール酸Bの変化を完全には抑えない。したがって、亜硝酸塩は、単独では安定剤としては不十分である。ビタミンCはサルビアノール酸Bの変化を抑える。したがって、ビタミンCはサルビアノール酸B等の安定剤として使用は可能であるが、ビタミンC自体が空中および水溶液中で比較的不安定であり、ビタミンCを多量に添加するか他の抗酸化剤との併用が必要になる。   The neural stem cell proliferating agent of the present invention or the neural stem cell proliferating agent described later is an active ingredient, and the tissue by degeneration, reduction, cell death, injury, exclusion of neural cells characterized by the neural stem cell proliferating action of the active ingredient The active ingredient of a disease therapeutic agent that develops due to a decrease or loss of organ function is relatively stable in the absence of oxygen and moisture. However, since it is an antioxidant, it is relatively unstable in air and in aqueous solution. In particular, the active ingredient which is not converted into a prodrug changes 35% by heating at 80 ° C. for 72 hours in an aqueous solution. When storing, it is desirable to store without oxygen or moisture. In consideration of long-term storage, it is desirable to add another antioxidant as an additive to the neural stem cell proliferating agent or the disease therapeutic agent of the present invention in order to stabilize the active ingredient. Antioxidants are limited to pharmaceutically acceptable antioxidants. Pharmaceutically acceptable antioxidants include alpha carotene, beta carotene, lycopene, lutein, flavonoids, catechins, resaveratrol, isoflavones, vitamin A, vitamin E, selenium, zinc, coenzyme Q10, glutathione And enzogenol. These antioxidants suppress changes in salvianolic acid B in hot aqueous solutions. Nitrite does not completely suppress the change of salvianolic acid B. Therefore, nitrite alone is insufficient as a stabilizer. Vitamin C suppresses changes in salvianolic acid B. Therefore, vitamin C can be used as a stabilizer such as salvianolic acid B. However, vitamin C itself is relatively unstable in the air and in an aqueous solution, and vitamin C is added in a large amount or other antioxidants. Must be used together.

本発明の神経幹細胞増殖剤は、(1)体外での神経幹細胞の増殖剤として有用であり、(2)後述の神経幹細胞増殖方法においてその方法を特徴付ける薬剤として有用であり、(3)後述の神経幹細胞含有液の液質を特徴付ける薬剤として有用であり、(4)後述の神経幹細胞含有液含有治療剤の性質を特徴付ける薬剤として有用であるばかりで無く、(5)体内の内在性の神経幹細胞をそのまま体内で増殖させることにも用いることが出来る。本発明の神経幹細胞増殖剤を、神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病に対して投与した場合、内在する神経幹細胞を増殖させ、神経細胞に分化することにより、欠落した神経細胞の補充がされ、病状が改善されるので、本発明の神経幹細胞増殖作用機序による治療剤の有効成分としても有用である。   The neural stem cell proliferating agent of the present invention is useful as (1) an agent for proliferating neural stem cells outside the body, (2) useful as a drug characterizing the method in a neural stem cell proliferating method described later, and (3) described later. It is useful as a drug characterizing the quality of the neural stem cell-containing fluid, and (4) not only useful as a drug characterizing the properties of the neural stem cell-containing liquid-containing therapeutic agent described later, but also (5) endogenous neural stem cells in the body. Can be used as it is in the body. When the neural stem cell proliferating agent of the present invention is administered to a disease that develops due to a decrease or loss of function of a tissue or organ due to degeneration, decrease, cell death, injury, or exclusion of nerve cells, it proliferates the inner neural stem cells, By differentiation into nerve cells, the missing nerve cells are replenished and the disease state is improved, so that it is also useful as an active ingredient of a therapeutic agent according to the neural stem cell proliferation action mechanism of the present invention.

本発明のもう1つは、新しい神経幹細胞増殖方法である。前述の本発明の神経幹細胞増殖剤を用い、体外で神経幹細胞を増殖することを特徴とする。本発明の神経幹細胞増殖剤を添加する以外は、例えば、2%の培養用サプルメントN2含有ダルベッコ修正イーグル最少必須培地(DMEM)/ハムF12培地(DMEMとF12を1:1で混合したもの)の無血清培養液等公知の培養液、5%炭酸ガス中、摂氏37度で数日間培養等公知の培養条件を用いることができる。前述の先行文献には神経幹細胞増殖剤として、胎児性牛血清(FBS)、bFGF、NGF等神経細胞等のたんぱく質性の生体因子を用いている。これらの血清または生体因子の代わりに、本発明の神経幹細胞増殖剤を用いるところに特徴がある。もちろん、目的によってはこれらの血清や生体因子を含有しても良いが、本発明の治療剤に用いる神経幹細胞含有液を作成する場合は、神経幹細胞を増殖する培養液にこれらを培養液に加えてはならない。血清や生体因子を添加せずに、本発明の神経幹細胞増殖剤を加えて培養することが肝要である。なお、本発明の神経幹細胞増殖剤としてプロドラッグを用いる場合には、プロドラッグによっては、培養中の細胞によりマスクが除かれ、活性体になるので、賦活化の必要が無い場合もあるが、プロドラッグによっては培養細胞により活性体にならない場合もある。したがって、要すれば、投与前に賦活化する必要がある。最後に基本培養液の1例として、培養用サプルメントN2、DMEM、ハムF12培地等の組成を示す。神経幹細胞が増殖する限り、組成は変更してもかまわない。また、細胞の分離や細胞の洗浄に用いる緩衝液の1例としてD‐ハンクス液、リン酸緩衝食塩水(PBS)、デルベッコのPBS(DPBS)等の組成を示す。後の操作に悪い影響を与えない限り、これ以外の緩衝液も用いることができる。   Another aspect of the present invention is a new neural stem cell proliferation method. Using the aforementioned neural stem cell proliferating agent of the present invention, neural stem cells are proliferated outside the body. Except for the addition of the neural stem cell proliferating agent of the present invention, for example, 2% of culture supplement N2-containing Dulbecco's modified Eagle's minimum essential medium (DMEM) / ham F12 medium (DMEM and F12 mixed 1: 1) Known culture conditions such as culture for several days at 37 degrees Celsius in a known culture solution such as a serum-free culture solution and 5% carbon dioxide can be used. In the above-mentioned prior literature, protein biological factors such as fetal bovine serum (FBS), bFGF, NGF and other nerve cells are used as neural stem cell proliferating agents. It is characterized in that the neural stem cell proliferating agent of the present invention is used in place of these serum or biological factors. Of course, depending on the purpose, these serums and biological factors may be contained. However, when preparing a neural stem cell-containing solution used for the therapeutic agent of the present invention, these are added to the culture solution for growing neural stem cells. must not. It is important to add the neural stem cell proliferating agent of the present invention and culture without adding serum or biological factors. In the case of using a prodrug as the neural stem cell proliferating agent of the present invention, depending on the prodrug, the mask is removed by the cells in culture and becomes an active substance, so there is a case where activation is not necessary, Some prodrugs may not be activated by cultured cells. Therefore, if necessary, it needs to be activated before administration. Finally, as an example of the basic culture solution, the composition of culture supplement N2, DMEM, Ham F12 medium, etc. is shown. The composition may be changed as long as neural stem cells proliferate. In addition, as an example of a buffer used for cell separation and cell washing, the composition of D-Hanks solution, phosphate buffered saline (PBS), Delbecko PBS (DPBS) and the like is shown. Other buffer solutions can be used as long as they do not adversely affect the subsequent operation.

培養用サプルメント、培地、緩衝液の組成の例示
培養用サプルメントN2の組成(ミリグラム/リットル):インスリン:5、ヒトトランスフェリン:100、プロゲステロン:0.0063、プトレッシン16.11、亜セレン酸塩:0.0052.
DMEMの組成(ミリグラム/リットル):塩化カルシウム:200、硝酸鉄(三価)9水和物:0.1、塩化カリウム:400、硫酸マグネシウム:97.6、塩化ナトリウム:6,400、リン酸二水素ナトリウム2水和物:125、L‐アルギニン塩酸塩:84、L‐シスチン2塩酸塩:62.6、L‐グルタミン:584、L‐グリシン:30、L‐ヒスチジン塩酸塩1水和物:42、L‐イソロイシン:104.8、L‐ロイシン:104.8、L‐リジン塩酸:146.2、L‐メチオニン:30、L‐フェニルアラニン:66、L‐セリン:42、L‐スレオニン:95.2、L‐トリプトファン:16、L‐チロシン二ナトリウム塩:89.5、L‐バリン:93.6、パントテン酸カルシウム:4、コリン酒石酸水素塩:7.2、葉酸:4、イノシトール:7.2、ニコチンアアミド:4、ピリドキサール塩酸塩:4、リボフラビン:0.4、チアミン塩酸塩:4、デキストロース:1,000、ピルビン酸ナトリウム:110、フェノール・レッド:5。
培養用サプルメントB27の成分(B27の組成は開示されていないので、B27そのものを使用する場合は市販品を購入せざるを得ないが、開示されている成分(非特許文献63)より、似たような効果を有する培養用サプルメントは作ることは可能である):ビオチン、L‐カルニチン、コルチコステロン、エタノールアミン、D(+)ガラクトース、還元型グルタチオン、リノール酸、リノレン酸、プロゲステロン、プトレッシン、レチニル酢酸、セレン、トリオド‐l‐チロミン、ビタミンE、ビタミンE酢酸塩、ウシアルブミン、カタラーゼ、インスリン、スーパーオキシド・ジスムターゼ、トランスフェリン。
ハムF12培地の組成:塩化カルシウム:33.3、硫酸銅(ニ価)5水和物:0.0025、硫酸鉄(ニ価)7水和物:0.834、塩化カリウム:224、塩化マグネシウム:57.1、塩化ナトリウム:7,600、リン酸水素二ナトリウム:142、硫酸亜鉛7水和物、L‐アラニン:8.9、L‐アルギニン塩酸塩:211、L‐アスパラギン1水和物:15.0、L‐アスパラギン酸:13.3、L‐システイン塩酸塩1水和物:35.1、L‐グルタミン酸:14.7、L‐グルタミン:146、L‐グリシ:7.5、L‐ヒスチジン塩酸塩1水和物:21.0、L‐イソロイシン:3.94、L‐ロイシン:13.1、L‐リジン塩酸塩:36.5、L‐メチオニン:4.48、L‐フェニルアラニン:4.96、L‐プロリン:34.5、L‐セリン:10.5、L‐スレオニン:11.9、L‐トリプトファ:2.04、L‐チロシン:5.44、L‐バリン:11.7、ビオチン:0.0073、パントテン酸カルシウム:0.477、塩化コリン:14.0、シアノコバラミン:1.355、葉酸:1.324、イノシトール:18.0、リポ酸:0.206、ニコチンアミド:0.0366、ピリドキシン塩酸塩:0.0617、リボフラビン:0.0376、チアミン塩酸塩:0.337、デキストロース:1,802、ヒポキサンチン:4.08、リノレイン酸:0.0841、ピルビン酸ナトリウム:110、チミジン:0.727、プトレッシン2塩酸塩:0.61、フェノール・レッド:1.242。
D‐ハンクス液の組成(ミリグラム/リットル):塩化カルシウム:185.5、塩化カリウム:400、リン酸二水素カリウム:60、硫酸マグネシウム:97.7、塩化ナトリウム:8,000、リン酸水素二ナトリウム:47.5、D‐グルコース:1,000。
PBSの組成(ミリグラム/リットル):塩化カルシウム:132.5、塩化カリウム:200、リン酸二水素カリウム:200、硫酸マグネシウム:59.2、塩化ナトリウム:8,000、リン酸水素二ナトリウム:1150。
DPBSの組成(ミリグラム/リットル):塩化カルシウム:100、塩化カリウム:200、リン酸二水素カリウム:200、塩化マグネシウム:100、塩化ナトリウム:8,000、リン酸水素二ナトリウム:1150。
RPMI1640の組成(ミリグラム/リットル):硝酸カルシウム:69.5、塩化カリウム:400、硫酸マグネシウム:48.8、塩化ナトリウム:6,000、リン酸水素二ナトリウム:801、L‐アルギニン:200、L‐アスパラギン1水和物:56.8、L‐アスパラギン酸:20、L‐システイン2塩酸塩:65.2、L‐グルタミン酸:20、L‐グルタミン:300、L‐グリシ:10、L‐ヒスチジン:15、L‐ヒドロキシプロリン:20、L‐イソロイシン:50、L‐ロイシン:50、L‐リジン塩酸塩:40、L‐メチオニン:15、L‐フェニルアラニン:15、L‐プロリン:20、L‐セリン:30、L‐スレオニン:20、L‐トリプトファ:5、L‐チロシン:20、L‐バリン:20、p‐アモノ安息香酸:1、パラビオチン:0.2、パントテン酸カルシウム:0.25、塩化コリン:3、シアノコバラミン:0.005、葉酸:1、イノシトール:35、ニコチンアミド:1、ピリドキシン塩酸塩:1、リボフラビン:0.2、チアミン塩酸塩:1、デキストロース:2,000、還元型グルタチオン:1、フェノール・レッド:5。
20倍SSCの組成(モル/リットル):塩化ナトリウム:3、クエン酸ナトリウム:0.3。
本発明の神経幹細胞増殖方法は、(1)体外での神経幹細胞の増殖方法として有用であり、(2)後述の神経幹細胞含有液の生産方法として有用であり、(3)後述の神経幹細胞含有液含有治療剤の生産方法またはその一工程として有用である。
Example of composition of culture supplement, medium, and buffer Composition of culture supplement N2 (milligram / liter): insulin: 5, human transferrin: 100, progesterone: 0.0063, putrescine 16.11, selenite: 0 .0052.
Composition of DMEM (milligram / liter): calcium chloride: 200, iron nitrate (trivalent) nonahydrate: 0.1, potassium chloride: 400, magnesium sulfate: 97.6, sodium chloride: 6,400, phosphoric acid Sodium dihydrogen dihydrate: 125, L-arginine hydrochloride: 84, L-cystine dihydrochloride: 62.6, L-glutamine: 584, L-glycine: 30, L-histidine hydrochloride monohydrate : 42, L-isoleucine: 104.8, L-leucine: 104.8, L-lysine hydrochloride: 146.2, L-methionine: 30, L-phenylalanine: 66, L-serine: 42, L-threonine: 95.2, L-tryptophan: 16, L-tyrosine disodium salt: 89.5, L-valine: 93.6, calcium pantothenate: 4, choline bitartrate: 2, Folic acid: 4, Inositol: 7.2, Nicotinamide: 4, Pyridoxal hydrochloride: 4, Riboflavin: 0.4, Thiamine hydrochloride: 4, Dextrose: 1,000, Sodium pyruvate: 110, Phenol -Red: 5.
Components of culture supplement B27 (the composition of B27 is not disclosed, so when using B27 itself, a commercial product must be purchased, but it is more similar to the disclosed component (Non-patent Document 63). A culture supplement having the following effects can be made): biotin, L-carnitine, corticosterone, ethanolamine, D (+) galactose, reduced glutathione, linoleic acid, linolenic acid, progesterone, putrescine, Retinyl acetic acid, selenium, triodo-1-tyromine, vitamin E, vitamin E acetate, bovine albumin, catalase, insulin, superoxide dismutase, transferrin.
Ham F12 medium composition: calcium chloride: 33.3, copper sulfate (divalent) pentahydrate: 0.0025, iron sulfate (divalent) heptahydrate: 0.834, potassium chloride: 224, magnesium chloride : 57.1, sodium chloride: 7,600, disodium hydrogen phosphate: 142, zinc sulfate heptahydrate, L-alanine: 8.9, L-arginine hydrochloride: 211, L-asparagine monohydrate 15.0, L-aspartic acid: 13.3, L-cysteine hydrochloride monohydrate: 35.1, L-glutamic acid: 14.7, L-glutamine: 146, L-glycy: 7.5, L-histidine hydrochloride monohydrate: 21.0, L-isoleucine: 3.94, L-leucine: 13.1, L-lysine hydrochloride: 36.5, L-methionine: 4.48, L- Phenylalanine: 4.96, L-pro 34.5, L-serine: 10.5, L-threonine: 11.9, L-tryptopha: 2.04, L-tyrosine: 5.44, L-valine: 11.7, biotin: 0. 0073, calcium pantothenate: 0.477, choline chloride: 14.0, cyanocobalamin: 1.355, folic acid: 1.324, inositol: 18.0, lipoic acid: 0.206, nicotinamide: 0.0366, pyridoxine Hydrochloride: 0.0617, Riboflavin: 0.0376, Thiamine hydrochloride: 0.337, Dextrose: 1,802, Hypoxanthine: 4.08, Linolenic acid: 0.0841, Sodium pyruvate: 110, Thymidine: 0 727, putrescine dihydrochloride: 0.61, phenol red: 1.242.
Composition of D-Hank's solution (milligram / liter): calcium chloride: 185.5, potassium chloride: 400, potassium dihydrogen phosphate: 60, magnesium sulfate: 97.7, sodium chloride: 8,000, dihydrogen phosphate Sodium: 47.5, D-glucose: 1,000.
Composition of PBS (milligram / liter): calcium chloride: 132.5, potassium chloride: 200, potassium dihydrogen phosphate: 200, magnesium sulfate: 59.2, sodium chloride: 8,000, disodium hydrogen phosphate: 1150 .
Composition of DPBS (milligram / liter): calcium chloride: 100, potassium chloride: 200, potassium dihydrogen phosphate: 200, magnesium chloride: 100, sodium chloride: 8,000, disodium hydrogen phosphate: 1150.
Composition of RPMI 1640 (milligram / liter): calcium nitrate: 69.5, potassium chloride: 400, magnesium sulfate: 48.8, sodium chloride: 6,000, disodium hydrogen phosphate: 801, L-arginine: 200, L -Asparagine monohydrate: 56.8, L-aspartic acid: 20, L-cysteine dihydrochloride: 65.2, L-glutamic acid: 20, L-glutamine: 300, L-glycine: 10, L-histidine : 15, L-hydroxyproline: 20, L-isoleucine: 50, L-leucine: 50, L-lysine hydrochloride: 40, L-methionine: 15, L-phenylalanine: 15, L-proline: 20, L- Serine: 30, L-threonine: 20, L-tryptopha: 5, L-tyrosine: 20, L-valine: 20, p-a Nobenzoic acid: 1, Parabiotin: 0.2, Calcium pantothenate: 0.25, Choline chloride: 3, Cyanocobalamin: 0.005, Folic acid: 1, Inositol: 35, Nicotinamide: 1, Pyridoxine hydrochloride: 1 Riboflavin: 0.2, thiamine hydrochloride: 1, dextrose: 2,000, reduced glutathione: 1, phenol red: 5.
Composition of 20 times SSC (mol / liter): sodium chloride: 3, sodium citrate: 0.3.
The neural stem cell proliferation method of the present invention is useful as (1) a method for proliferating neural stem cells outside the body, (2) useful as a method for producing a neural stem cell-containing solution described later, and (3) containing neural stem cells described later. It is useful as a method for producing a liquid-containing therapeutic agent or as one step thereof.

本発明の更にもう1つは、体外で増殖した神経幹細胞の含有液である。神経幹細胞の増殖に本発明の神経幹細胞増殖方法を用いることを特徴とする。体外で増殖した神経幹細胞含有液は神経細胞培養液としてどのような培養液を用いたか、或いは神経幹細胞の増殖剤としてどのような神経細胞増殖剤を用いたかに異なる。例えば、神経細胞培養液として血清含有培養液を用いた場合、或いは神経細胞増殖剤としてbFGFやNGFを加えて培養した場合は、増殖した神経幹細胞含有液に血清やbFGFやNGFが混入する。本発明の神経幹細胞含有液には本発明の神経幹細胞増殖剤が混入している。移植免疫の問題があるので、血清やbFGFやNGF等が混入する神経幹細胞含有液は、次に説明する神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤に用いることはできない。公知の無血清の神経細胞培養液には血清は存在しないが、bFGFやNGFは一般には添加する。したがって、神経幹細胞含有液製造の最終工程ではこれらの因子を添加しないことが肝要である。培養用サプルメントN2中にたんぱく質としてインスリンとヒトトランスフェリンが存在する。インスリンまたはヒトトランスフェリン投与によりインスリン抗体やヒトトランスフェリン抗体が出現するものの、臨床上の抗原抗体反応としてはあまり問題にならない。もし、インスリンとヒトトランスフェリンの混入が問題になる場合は、本発明方法で培養した後に、培養液を捨て、インスリンとヒトトランスフェリンを除いたN2サプルメントと本発明の細胞幹細胞増殖剤を添加した細胞培養液で1日間培養することにより、混入するインスリンとヒトトランスフェリンを消化し尽くす方法を取ればよい。いずれにしろ、本発明の神経幹細胞含有液に本発明の神経幹細胞増殖剤が混入するが、本発明の神経幹細胞増殖剤はサルビアノール酸Bおよびその光学または幾何異性体でサルビアノール酸Bと同様の神経幹細胞増殖作用を有するものおよびそれらのプロドラッグ、ならびに上記化合物またはそれらのプロドラッグの薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物を含有するが、これらは抗原性は無い。
本発明の神経幹細胞含有液は、(1)神経幹細胞の供給源として有用であり、(2)後述の神経幹細胞含有液含有治療剤の有効成分として有用である。
Yet another aspect of the present invention is a solution containing neural stem cells grown outside the body. The neural stem cell proliferation method of the present invention is used for the proliferation of neural stem cells. The neural stem cell-containing liquid proliferated outside the body differs depending on what kind of culture solution is used as the neural cell culture medium or what kind of neural cell proliferation agent is used as the neural stem cell proliferation agent. For example, when a serum-containing culture solution is used as a nerve cell culture solution, or when bFGF or NGF is added and cultured as a nerve cell proliferating agent, serum, bFGF, or NGF is mixed into the proliferated neural stem cell-containing solution. The neural stem cell-containing liquid of the present invention is mixed with the neural stem cell-containing liquid of the present invention. Since there is a problem of transplantation immunity, the fluid containing neural stem cells mixed with serum, bFGF, NGF, etc. is caused by the deterioration or loss of the function of tissues or organs due to the degeneration, decrease, cell death, injury, or exclusion of neurons described below. It cannot be used as a therapeutic agent for diseases that develop. Serum is not present in known serum-free neural cell cultures, but bFGF and NGF are generally added. Therefore, it is important not to add these factors in the final process of producing the neural stem cell-containing solution. Insulin and human transferrin are present as proteins in the culture supplement N2. Although insulin antibody or human transferrin antibody appears by administration of insulin or human transferrin, it is not a problem as a clinical antigen-antibody reaction. If contamination of insulin and human transferrin becomes a problem, after culturing by the method of the present invention, the culture solution is discarded, and cell culture in which N2 supplement from which insulin and human transferrin are removed and the cell stem cell proliferating agent of the present invention is added What is necessary is just to take the method which digests the contaminated insulin and human transferrin by culturing with a liquid for one day. In any case, the neural stem cell proliferating agent of the present invention is mixed in the neural stem cell-containing solution of the present invention, but the neural stem cell proliferating agent of the present invention is similar to salvianolic acid B in salvianolic acid B and its optical or geometric isomers. Having a neural stem cell proliferating activity and prodrugs thereof, and pharmaceutically acceptable salts of the above compounds or their prodrugs and hydrates thereof, Is not antigenic.
The neural stem cell-containing liquid of the present invention is useful as (1) a source of neural stem cells, and (2) useful as an active ingredient of a therapeutic agent containing a neural stem cell-containing liquid described later.

本発明の更にもう1つは、神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤である。本発明の神経幹細胞含有液を含有することを特徴とする治療剤と、本発明の神経幹細胞増殖剤を含有し、当該有効成分の神経幹細胞増殖作用によりことを特徴とする治療剤と2種類存在する。本発明の治療剤を神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病患者に投与されると、神経幹細胞含有液含有治療剤の場合は、治療剤に含有される神経幹細胞含有液中の神経幹細胞が疾病により失われた神経細胞部位に移動し、そこで、神経細胞に分化し、失われた神経細胞が補充されることにより病状が改善され、神経幹細胞増殖作用機序による治療剤の場合は、その治療剤に含まれる神経幹細胞増殖剤が体内に内在する神経幹細胞の存在部位に浸透し、その内在神経幹細胞を増殖する。内在神経幹細胞は増殖しつつ、失われた神経細胞部位に移動し、そこで、神経細胞に分化し、失われた神経細胞が補充されることにより病状が改善される。後者の治療剤の方が前者の治療剤の方より患者に対する負担が少ないので、通常、先ず、後者を投与して有効かどうかを調べ、無効の場合に前者の神経幹細胞含有液含有治療剤を投与する方がよい。神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の例としては、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、小脳変性症、交通性水頭症、ハンチントン病、前頭葉への照射、多発性硬化症、正常圧水頭症、パーキンソン病、ピック病、進行性多巣性白質脳症、進行性核上麻痺、拳闘家痴呆、脳外傷、外科手術、脳腫瘍、慢性硬膜下血腫、脳卒中(脳梗塞または脳出血)、脳血管性痴呆、ウィルソン病細菌性心内膜炎、クロイツフェルト・ヤコブ病、ゲルストマン・シュトロイスラー・シャインカー病、HIV関連疾病、神経梅毒、結核性および真菌性髄膜炎、ウイルス性脳炎、無酸素症、B12欠乏症、慢性的な薬物-アルコール-栄養性乱用、葉酸欠乏症、副甲状腺機能亢進症に伴う高カルシウム血症、低血糖、甲状腺機能低下症、肝性脳症、肺性脳症、尿毒素性脳症等の臓器系不全、ペラグラ等の神経疾病、繊維化、免疫反応、血管傷害、栄養と酸素欠乏、感染等による神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病が挙げられるが、これに限らない。神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病であればよい。   Yet another aspect of the present invention is a therapeutic agent for diseases caused by degeneration, loss, cell death, injury, or loss of function or loss of tissue or organ function due to exclusion. A therapeutic agent containing the neural stem cell-containing solution of the present invention and a therapeutic agent containing the neural stem cell proliferating agent of the present invention and characterized by the neural stem cell proliferating action of the active ingredient To do. When the therapeutic agent of the present invention is administered to a disease patient who develops due to a decrease or loss of the function of a tissue or organ due to neuronal degeneration, decrease, cell death, injury or exclusion, in the case of a therapeutic agent containing a neural stem cell, Neural stem cells in the neural stem cell-containing solution contained in the therapeutic agent migrate to the nerve cell site lost due to the disease, where they differentiate into nerve cells, and the lost nerve cells are replenished to improve the disease state. In the case of a therapeutic agent based on the mechanism of neural stem cell proliferation action, the neural stem cell proliferating agent contained in the therapeutic agent penetrates into the site of the neural stem cells present in the body and proliferates the endogenous neural stem cells. Endogenous neural stem cells proliferate and migrate to lost nerve cell sites, where they differentiate into nerve cells and are replenished with lost nerve cells to improve the disease state. Since the latter treatment is less burdensome to the patient than the former treatment, usually the latter is administered first to determine whether it is effective, and if it is ineffective, the former treatment containing a liquid containing neural stem cells is used. It is better to administer. Examples of diseases that develop as a result of neuronal degeneration, decrease, cell death, injury, or decreased function or loss of tissues or organs due to exclusion include Alzheimer's disease, amyotrophic lateral sclerosis, cerebellar degeneration, traffic hydrocephalus , Huntington's disease, frontal irradiation, multiple sclerosis, normal pressure hydrocephalus, Parkinson's disease, Pick's disease, progressive multifocal leukoencephalopathy, progressive supranuclear palsy, fighting dementia, brain trauma, surgery, brain tumor , Chronic subdural hematoma, stroke (cerebral infarction or cerebral hemorrhage), cerebrovascular dementia, Wilson's disease bacterial endocarditis, Creutzfeldt-Jakob disease, Gerstmann-Stroisler-Scheinker disease, HIV-related disease, neurosyphilis Tuberculosis and fungal meningitis, viral encephalitis, anoxia, B12 deficiency, chronic drug-alcohol-nutrient abuse, folic acid deficiency, hypercalciuosis associated with hyperparathyroidism Symptom, hypoglycemia, hypothyroidism, hepatic encephalopathy, pulmonary encephalopathy, organ system failure such as uremic encephalopathy, neurological diseases such as pellagra, fibrosis, immune reaction, vascular injury, nutrition and oxygen deficiency, infection, etc. Examples include, but are not limited to, diseases caused by neuronal degeneration, decrease, cell death, injury, and decreased function or loss of tissues or organs due to exclusion. Any disease can be used as long as it is caused by a decrease or loss of tissue or organ function due to degeneration, decrease, cell death, injury, or exclusion of nerve cells.

本発明の神経幹細胞増殖剤または神経幹細胞増殖作用機序による治療剤は、有効成分が低分子であることから、体外投与は勿論、経口投与または非経口投与(筋肉内、皮下、静脈内、脳内、坐薬など)のいずれでも投与できる。体外投与の場合は本発明の組成物中にプロドラッグが含まれているときは、既に述べたが、適宜の方法で活性化してから用いた方がより大きな効果を得るので好ましい。プロドラッグが含まれていないときはそのまま用いてよい。体内投与の場合は多くの場合体内でプロドラッグが活性化するので、プロドラッグを予め活性化しておく必要は少ない。   Since the active ingredient of the neural stem cell proliferating agent or neural stem cell proliferating action mechanism of the present invention is a small molecule, it can be administered orally or parenterally (intramuscularly, subcutaneously, intravenously, brain, as well as in vitro. And suppositories). In the case of in vitro administration, when a prodrug is contained in the composition of the present invention, it has been already described, but it is preferable to use it after activating it by an appropriate method because a greater effect can be obtained. When a prodrug is not included, it can be used as it is. In many cases, the prodrug is activated in the body in the case of in vivo administration, so that it is not necessary to activate the prodrug in advance.

経口用製剤を調製する場合、賦形剤、さらに必要に応じて、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味矯臭剤などを加えた後、常法により、錠剤、被服錠剤、顆粒剤、カプセル剤、溶液剤、シロップ剤、エリキシル剤、油性または水性の懸濁液剤などとする。賦形剤としては、例えば、乳糖、コーンスターチ、白糖、ブドウ糖、ソルビット、結晶セルーロスなどが挙げられる。結合剤としては、例えば、ポリビニルアルコール、ポリビニルエーテル、エチルセルロース、メチルセルロース、アラビアゴム、トラガント、ゼラチン、シェラック、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、ポリビニルピロリドンなどが挙げられる。   When preparing an oral preparation, after adding an excipient and, if necessary, a binder, a disintegrating agent, a lubricant, a coloring agent, a corrigent, etc., a tablet, a coated tablet, a granule by a conventional method. Preparations, capsules, solutions, syrups, elixirs, oily or aqueous suspensions. Examples of the excipient include lactose, corn starch, sucrose, glucose, sorbit, crystal cellulose and the like. Examples of the binder include polyvinyl alcohol, polyvinyl ether, ethyl cellulose, methyl cellulose, gum arabic, tragacanth, gelatin, shellac, hydroxypropyl cellulose, hydroxypropyl starch, and polyvinylpyrrolidone.

崩壊剤としては、例えば、デンプン、寒天、ゼラチン未、結晶セルロース、炭酸カルシウム、炭酸水素ナトリウム、クエン酸カルシウム、デキストラン、ペクチンなどが挙げられる。滑沢剤としては、例えば、ステアリン酸マグネシウム、タルク、ポリエチレングリコール、シリカ、硬化植物油などが挙げられる。着色剤としては、医薬品に添加することが許可されているものが使用できる。矯味矯臭剤としては、ココア末、ハッカ脳、芳香酸、ハッカ油、竜脳、桂皮末などが使用できる。これらの錠剤は、顆粒剤には、糖衣、ゼラチン衣、その他必要により適宜コーティングしてもよい。   Examples of the disintegrant include starch, agar, gelatin not yet, crystalline cellulose, calcium carbonate, sodium bicarbonate, calcium citrate, dextran, and pectin. Examples of the lubricant include magnesium stearate, talc, polyethylene glycol, silica, hydrogenated vegetable oil, and the like. As the colorant, those permitted to be added to pharmaceuticals can be used. As a flavoring agent, cocoa powder, mint brain, aromatic acid, mint oil, dragon brain, cinnamon powder and the like can be used. These tablets may be coated with granules, sugar coats, gelatin coats, etc. as necessary.

注射剤を調製する場合、必要により、グルコースや生理的食塩水等の等調液、pH調整剤、緩衝剤、安定化剤、保存剤などを添加し、常法により、皮下、筋肉内、静脈内、脳内注射剤とする。注射剤は、溶液を容器に収納後、凍結乾燥などによって、固形製剤として、用事調製の製剤としてもよい。また、一投与量を容器に収納してもよく、また、多投与量を同一の容器に収納してもよい。溶液の場合、酸素や湿気を遮断する方がよい。そのため、場合によってはアンプル型の容器に入れ、空気を抜くか、窒素ガス等で空気を置換しておく方がよい。公知の方法でよい。   When preparing injections, if necessary, add isotonic solutions such as glucose and physiological saline, pH adjusters, buffers, stabilizers, preservatives, etc., and by conventional methods, subcutaneous, intramuscular, intravenous Of these, intracerebral injection. An injection may be a preparation prepared for daily use as a solid preparation by lyophilization after storing the solution in a container. One dose may be stored in a container, and multiple doses may be stored in the same container. In the case of a solution, it is better to block oxygen and moisture. Therefore, in some cases, it is better to put it in an ampoule type container and evacuate the air or replace the air with nitrogen gas or the like. A known method may be used.

本発明の神経幹細胞増殖剤の試薬としての使用濃度は通常0.001から100マイクロモル濃度、好ましくは、0.01〜10マイクロモル濃度で使用し、本発明の神経幹細胞増殖剤の医薬としての投与量または神経幹細胞増殖作用機序による治療剤の投与量は、ヒトの場合、成人1日当たり通常0.01〜1000ミリグラム、好ましくは、0.1〜100ミリグラムの範囲で、1日量を1日1回、あるいは2〜4回に分けて投与する。なお、年齢、症状により適宜増減する。   The concentration of the neural stem cell proliferating agent of the present invention used as a reagent is usually 0.001 to 100 micromolar, preferably 0.01 to 10 micromolar, and the neural stem cell proliferating agent of the present invention is used as a medicine. In the case of humans, the dose of the therapeutic agent according to the dose or the mechanism of neural stem cell proliferation action is usually 0.01 to 1000 milligrams per day for an adult, preferably 0.1 to 100 milligrams per day. Administer once a day or in 2-4 divided doses. The dosage may be adjusted according to age and symptoms.

本発明の神経幹細胞増殖方法に用いる神経幹細胞の入手先は使用目的によって限定の度合いが異なるが、適合する限りどこから入手しても良い。使用目的がヒトを対象としない場合には限定が少ないが、神経幹細胞含有液含有治療剤に用いる神経幹細胞含有液用の場合は、後述するように、ヒトの胎児の脳または治療対象の患者またはその患者と主要組織適合抗原が実質的に同じ、または非常に類似するヒトの脳内より無菌的に採取するのが好ましい。倫理的問題を考慮すると治療対象の患者の脳内より無菌的に採取するのが一番好ましい。   The source of neural stem cells used in the neural stem cell proliferation method of the present invention varies depending on the purpose of use, but may be obtained from any place as long as it is compatible. When the purpose of use is not intended for humans, there are few limitations, but in the case of neural stem cell-containing fluids used for neural stem cell-containing fluid-containing therapeutic agents, as described later, human fetal brain or patients to be treated or Preferably, the patient and the major histocompatibility antigen are aseptically collected from within the human brain that is substantially the same or very similar. Considering ethical issues, it is most preferable to collect aseptically from the brain of the patient to be treated.

本発明の神経幹細胞含有液に含有される神経幹細胞は本発明の神経幹細胞増殖方法によって体外で増殖した神経幹細胞である。神経幹細胞の入手先は、 この神経幹細胞含有液の使用目的によって限定の度合いが異なるが、適合する限りどこから入手しても良い。使用目的がヒトを対象としない場合には限定が少ないが、神経幹細胞含有液含有治療剤用の場合はヒトの胎児の脳または治療対象の患者またはその患者と主要組織適合抗原が実質的に同じ、または非常に類似するヒトの脳内より無菌的に採取するのが好ましい。倫理的問題を考慮すると治療対象の患者の脳内より無菌的に採取するのが一番好ましい。同治療剤用には、更に神経幹細胞増殖の際に、血清やbFGFやNGF等を添加せずに増殖させる必要がある。   The neural stem cells contained in the neural stem cell-containing solution of the present invention are neural stem cells proliferated outside the body by the neural stem cell proliferation method of the present invention. Although the degree of limitation differs depending on the purpose of use of the neural stem cell-containing solution, the source of the neural stem cell may be obtained from any place as long as it is compatible. There are few limitations when the intended use is not intended for humans, but for neural stem cell-containing fluid-containing therapeutics, the human histologic brain or the patient being treated or the major histocompatibility antigen is substantially the same. Or aseptically from the very similar human brain. Considering ethical issues, it is most preferable to collect aseptically from the brain of the patient to be treated. For the therapeutic agent, it is necessary to proliferate without adding serum, bFGF, NGF or the like during the proliferation of neural stem cells.

本発明の神経幹細胞含有液含有治療剤は神経幹細胞を含有しているため、動脈内、静脈内または脳内注射剤に限られる。この中で、静脈内注射が一番安全性に優れている。但し、後述するように、静脈内注射により効果が期待される場合は限られている。一般には脳内注射が適用される。本発明に用いる神経幹細胞の入手先は、ヒトの胎児の脳または治療対象の患者またはその患者と主要組織適合抗原が実質的に同じ、または非常に類似するヒトの脳に限られる。倫理的問題を考慮すると治療対象の患者の脳内に内在する神経幹細胞を無菌的に採取して、本発明の神経幹細胞増殖方法において、bFGFやNGF等高分子を添加せずに増殖させて得られる神経幹細胞含有液を用いる必要がある。本発明の神経幹細胞含有液含有治療剤は静脈内注射する場合は、脳血管バリアの問題があるので、脳障害直後または脳炎症中等脳血管バリアが壊れている時か、将来、人工的に中等脳血管バリアを壊した場合に限られる。脳内注射の場合は、そのような制限はない。中枢神経系に移植するのに適切であるように様々な方法で投与されうる。これに限定されるわけではないが、くも膜下腔投与、脳室内投与および黒質内投与等が挙げられる。   Since the therapeutic agent containing a neural stem cell-containing liquid of the present invention contains neural stem cells, it is limited to intraarterial, intravenous or intracerebral injection. Of these, intravenous injection is the safest. However, as will be described later, the case where the effect is expected by intravenous injection is limited. In general, intracerebral injection is applied. Neural stem cells used in the present invention are limited to human fetal brains or human brains whose major histocompatibility antigens are substantially the same or very similar to the patient being treated or the patient. In consideration of ethical problems, the neural stem cells inherent in the brain of the patient to be treated are aseptically collected and proliferated without adding a polymer such as bFGF or NGF in the neural stem cell proliferation method of the present invention. It is necessary to use a neural stem cell-containing solution. In the case of intravenous injection, the therapeutic agent containing a neural stem cell-containing liquid of the present invention has a problem of a cerebral vascular barrier. Only when the cerebrovascular barrier is broken. There is no such restriction for intracerebral injection. It can be administered in a variety of ways to be suitable for implantation into the central nervous system. Examples include, but are not limited to, subarachnoid space administration, intraventricular administration, and intrastellar administration.

本発明の細胞幹細胞増殖剤、細胞幹細胞増殖作用機序による治療剤、細胞幹細胞含有液または当該液含有治療剤および細胞幹細胞増殖方法は、いずれも、本発明の細胞幹細胞増殖剤の有効成分に特徴があるだけである。本発明の特徴以外の操作や工程は公知の操作や工程でよく、それらは前述の先行文献に開示されている。以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。   The cell stem cell proliferating agent of the present invention, the therapeutic agent based on the cell stem cell proliferating action mechanism, the cell stem cell-containing liquid or the liquid-containing therapeutic agent and the cell stem cell proliferating method are all characterized by the active ingredient of the cell stem cell proliferating agent of the present invention. There is only there. Operations and processes other than the features of the present invention may be known operations and processes, which are disclosed in the above-mentioned prior documents. EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention further in detail, this invention is not limited to these Examples.

海馬、線条体と大脳皮質を2週齢のスプラグ‐ダウレイ(Sprague‐Dawley(SD))系の雄のラットの脳から取り出した。これらを直ちにD‐ハンクス液(HyClone・Laboratories・Inc社製)の中に入れ、0.125%のトリプシンと混合させ、これらを静かにピペットで吸い込み、吐き出す方法で、迅速に4回もみほぐして組織を個々の細胞にし、もみほぐした細胞を、最初網目の大きさが180マイクロメーターのナイロン性の網でろ過し、次いで網目の大きさが75マイクロメーターのナイロン性の網でろ過した。ろ過した細胞を回転速度800rpmで5分間遠心分離して、沈殿した細胞を分離し、分離した細胞を2%の培養用サプルメントN2(GIBCO社製)と1リットル当たり20マイクログラムのbFGF(PEPRO・TECH社製)と1ミリリットル当たり100単位のペニシリン(SIGMA社製)と100マイクログラムのストレプトマイシン(SIGMA社製)を含むダルベッコ修正イーグル最少必須培地/ハムF12培地(DMEMとF12を1:1で混合したもの、GIBCO社製)の無血清培養液で洗浄後、当該培養液中に、1ミリリットル当たり50,000個の細胞密度になるように懸濁し、この懸濁した細胞を摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で培養し、2日毎に培養液の半量を新しい培養液で置き換えた。1週間後に球形の最初の細胞塊が形成された。この第1次球形細胞塊を集め、これらをピペットで吸い込み、吐き出す方法で機械的に個々の細胞にばらし、前述の培養液で、1ミリリットル当たり50,000個の細胞密度で、再び培養した。5日後に再び球形細胞塊が形成された。この操作を繰り返し、第5次の球形細胞塊を得た。   The hippocampus, striatum and cerebral cortex were removed from the brains of male rats of the Sprague-Dawley (SD) system at 2 weeks of age. Immediately put them in D-Hank's solution (HyClone Laboratories, Inc.), mix with 0.125% trypsin, gently inhale and exhale them 4 times. The tissue was made into individual cells and the loosened cells were first filtered through a nylon mesh with a mesh size of 180 micrometers and then with a nylon mesh with a mesh size of 75 micrometers. The filtered cells were centrifuged at a rotation speed of 800 rpm for 5 minutes to separate the precipitated cells, and the separated cells were separated into 2% culture supplement N2 (GIBCO) and 20 micrograms of bFGF (PEPRO · TECH), 100 units of penicillin per milliliter (manufactured by SIGMA) and 100 micrograms of streptomycin (manufactured by SIGMA) Dulbecco's modified Eagle's minimum essential medium / ham F12 medium (DMEM and F12 mixed 1: 1) And washed with a serum-free culture solution (produced by GIBCO), suspended in the culture solution to a density of 50,000 cells per milliliter, and the suspended cells at 37 degrees Celsius, Cultivate in a carbon dioxide incubator in 5% carbon dioxide, and replace half of the culture with a new culture every 2 days.After one week, a spherical initial cell mass was formed. The primary spherical cell mass was collected, and these were mechanically separated into individual cells by pipetting and exhaling, and cultured again at a density of 50,000 cells per milliliter in the culture medium described above. After 5 days, a spherical cell mass was formed again. This operation was repeated to obtain a fifth spherical cell mass.

実施例1で得られた第5次の球形細胞塊の性質を調べるために、ネスチン(Nestin)免疫蛍光染色試験を行った。ネスチンは神経幹細胞に発現し、神経細胞には発現しない。したがって、この球形細胞塊がネスチン免疫蛍光染色試験陽性であれば、神経幹細胞を取得したことを意味する。そこで、得られた第5次の球形細胞塊を前述の方法により個々の細胞にばらし、その一部を5%の胎児性牛血清(FBS)を含む前述のDMEM/F12培養液で1ミリリットル当たり200,000個の細胞密度になるように懸濁し、スライドグラスの上の中央に100マイクロリットルだけ小分けし、2時間放置したところ、細胞がスライドグラスに付着した。この付着細胞を、付着した状態で、D‐ハンクス液で洗浄し、洗浄後の付着細胞を4%パラホルムアルデヒド含有0.1Mリン酸緩衝食塩水(PBS)(フナコシ社製)100マイクロリットルに摂氏4度で30分間浸す方法で固定した。この固定した細胞をPBSに室温で30分間浸す方法で3回洗浄した後、自然に乾燥させた。この乾燥させた固定化細胞に1ミリリットル当たり0.05マイクログラムのタンパク分解酵素を加え、摂氏37度で2分反応させた。引き続き、タンパク分解酵素処理をした固定化細胞を0.5%トリトン・エックス100(tritonX100)と5%ヤギ正常血清含有D‐ハンクス液(D‐ハンクスTS液)150マイクロリットルで摂氏37度で30分間浸した。次にこの固定した細胞に同液で100倍に希釈したマウスの抗ラットネスチン抗体(大日本製薬製)を加え、摂氏4度で一晩放置した。翌日、第1次抗体反応をさせた固定化細胞をD‐ハンクスTS液で室温で10分間浸す方法で3回洗浄した。この固定した細胞を同液に1ミリリットル当たり10マイクログラムの第2次抗体であるビオチン標識ヤギ抗マウスIgG抗体で、室温で2時間浸した。この第2次抗体処理した固定化細胞をD‐ハンクスTS液で室温で10分間浸す方法で3回洗浄した。この洗浄した固定化細胞を使用直前にアビジン‐ビオチン複合体(Avidin‐Biotin・Complex)溶液(Vector社のVectastain・Elite・ABC・Kit・Standard使用)用の溶液A(アビジン)10マイクロリットルと溶液B(ビオチン)10マイクロリットルとPBS500マイクロリットルを混合した液に室温で1時間浸し、直ちにPBSで3回洗浄した。このABC処理した固定化細胞を0.05%3,3‘‐ジアミノベンジジンテトラヒドロクロリド(3,3’‐diaminobenzidine・tetrahydrochloride)(DAB、DojinDo社製)と0.1%過酸化水素を含むPBS200マイクロリットルで室温で10分間反応させた。DAB処理をした固定化細胞をPBSで室温で10分間浸す方法で3回洗浄した。この固定した細胞を70度のエチルアルコールに浸し、80度、90度、95度、100度のエチルアルコールに順次浸し、固定化細胞を脱水させた。キシレン1、キシレン2で各10分処理した後にエンテランおよびカバーグラスで細胞を封入し、標本を作製した。この標本を共焦点レーザー走査顕微鏡で観察し、標本が陽性に染色していることより、神経幹細胞を分離したことを確認した。一方、実施例1で得られた第5次の球形細胞塊について、前述の1ミリリットル当たり10マイクログラムの第2次抗体であるビオチン標識ヤギ抗マウスIgG抗体の代わりに、1ミリリットル当たり5マイクログラムの第2次抗体であるインドカルボシアニン(Indocarbocyanine:Cy3)標識ヤギ抗マウスIgG抗体を用いて、Cy‐3標識免疫染色も行った。   In order to examine the properties of the fifth spherical cell cluster obtained in Example 1, a nestin immunofluorescence staining test was performed. Nestin is expressed in neural stem cells and not in neural cells. Therefore, if this spherical cell mass is positive for the nestin immunofluorescence staining test, it means that neural stem cells have been obtained. Thus, the obtained fifth spherical cell mass is separated into individual cells by the above-mentioned method, and a part thereof is per ml of the above-mentioned DMEM / F12 culture solution containing 5% fetal bovine serum (FBS). Suspended to a density of 200,000 cells, subdivided by 100 microliters in the center of the slide glass, and allowed to stand for 2 hours, the cells adhered to the slide glass. The adherent cells were washed with D-Hank's solution in the attached state, and the washed adherent cells were added to 100 microliters of 0.1 M phosphate buffered saline (PBS) containing 4% paraformaldehyde (manufactured by Funakoshi). Fixing was performed by dipping at 4 degrees for 30 minutes. The fixed cells were washed three times by immersing in PBS at room temperature for 30 minutes, and then naturally dried. To the dried fixed cells, 0.05 micrograms of proteolytic enzyme per milliliter was added and reacted at 37 degrees Celsius for 2 minutes. Subsequently, the immobilized cells treated with the proteolytic enzyme were treated with 30 microliters of D-Hanks solution (D-Hanks TS solution) containing 0.5% Triton X100 (tritonX100) and 5% goat normal serum at 37 degrees Celsius. Soaked for a minute. Next, a mouse anti-rat nestin antibody (Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) diluted 100-fold with the same solution was added to the fixed cells, and left overnight at 4 degrees Celsius. On the next day, the immobilized cells subjected to the primary antibody reaction were washed three times by a method of immersing in D-Hanks TS solution at room temperature for 10 minutes. The fixed cells were soaked in the same solution with biotin-labeled goat anti-mouse IgG antibody as a secondary antibody at 10 microgram per milliliter for 2 hours at room temperature. The immobilized cells treated with the secondary antibody were washed three times by a method of immersing in D-Hanks TS solution at room temperature for 10 minutes. Immediately before use, the washed fixed cells were mixed with 10 microliters of solution A (avidin) for use with avidin-biotin complex solution (using Vector Vectastein / Elite / ABC / Kit / Standard). The mixture was immersed in a mixture of 10 microliters of B (biotin) and 500 microliters of PBS for 1 hour at room temperature, and immediately washed three times with PBS. The ABC-treated immobilized cells were mixed with 0.05% 3,3′-diaminobenzidine tetrahydrochloride (DAB, manufactured by Dojin Do) and PBS 200 micron containing 0.1% hydrogen peroxide. The reaction was allowed to proceed for 10 minutes at room temperature. The immobilized cells treated with DAB were washed three times by a method of immersing in PBS for 10 minutes at room temperature. The fixed cells were soaked in 70 ° ethyl alcohol and soaked successively in 80 °, 90 °, 95 °, and 100 ° ethyl alcohol to dehydrate the immobilized cells. After treatment with xylene 1 and xylene 2 for 10 minutes each, cells were encapsulated with enteran and cover glass to prepare a specimen. This specimen was observed with a confocal laser scanning microscope, and it was confirmed that neural stem cells were isolated from the specimen being positively stained. On the other hand, with respect to the fifth spherical cell mass obtained in Example 1, 5 micrograms per milliliter instead of the biotin-labeled goat anti-mouse IgG antibody as the secondary antibody of 10 micrograms per milliliter described above. Cy-3 labeled immunostaining was also carried out using an indocarbocyanine (Cy3) -labeled goat anti-mouse IgG antibody, which is a secondary antibody.

実施例1で得られた球状細胞塊をピペットで静かに吸い込み、吐き出すやり方を繰り返して、機械的に個々の細胞にばらばらにし、この細胞(神経幹細胞)を0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bと2%のN2と1ミリリットル当たり100単位のペニシリンと100マイクログラムのストレプトマイシンを含み、血清やbFGFを含まないDMEM/F12培養液(実験群)または2%のN2と1ミリリットル当たり100単位のペニシリンと100マイクログラムのストレプトマイシンを含み、サルビアノール酸Bと血清やbFGFを含まないDMEM/F12培養液(対照群)に1ミリリットル当たり50,000個の細胞密度になるように懸濁し、5枚の96穴(well)プラスチックプレートの中央の各20穴(well)に100マイクロリットルずつ小分けした。   The spherical cell mass obtained in Example 1 is gently sucked with a pipette, and the method of exhaling is repeated to mechanically separate the cells (neural stem cells) into 0.035 micromolar salvianolic acid. B, 2% N2, 100 units penicillin per milliliter and 100 microgram streptomycin, DMEM / F12 medium (experimental group) without serum or bFGF or 2% N2 and 100 units per milliliter Suspended in a DMEM / F12 culture medium (control group) containing penicillin and 100 micrograms of streptomycin, and without salvianolic acid B, serum or bFGF to a density of 50,000 cells per milliliter. Each of the 20 holes (w It was aliquots 100 microliters to ll).

神経幹細胞を小分けした実施例3の96穴(well)プラスチックプレートの1枚について対照群と実験群の培養前の神経幹細胞の細胞賦活評価試験(MTTアッセイ)を行った。MTTアッセイの原理は生きた細胞の糸粒体のコハク酸脱水素酵素が外来のMTTを酸化して細胞中に蓄積して、水不溶のロイヤル・パープル色のフォルマザンを形成するのに対し、死んだ細胞ではそのような現象が絶対に起こらないことにある。そこで、この神経幹細胞を懸濁したばかりの96穴(well)プラスチックプレートを回転速度800rpmで5分間遠心し、実験群と対照群各20個の穴(well)中の細胞を沈殿させて、その上清の培養液を捨て、摂氏37度に暖めたフェノールレッドを含まないRPMI‐1640液(フナコシ社製)で穴(well)中の細胞を洗浄した。1ミリリットル当たり0.5ミリグラムの濃度のメチルチアゾールテトラゾリウム(Methylthiazoletetorazoliumu:MTT)100マイクロリットルを洗浄後の各穴(well)に加え、炭酸ガス細胞培養器で摂氏37度で4時間反応させた。倒立顕微鏡で細胞を観察したところ、青みかかった紫色(ロイヤル・パープル色)の針状のフォルマザンが生きた細胞に見られた。そこで、96穴(well)プラスチックプレートを回転速度800rpmで5分間遠心し、各穴(well)中の細胞を沈殿させて、その上清を捨て、ジメチルスルフオキシド(DMSO)を100マイクロリットルずつ各穴(well)に加え、各穴(well)中でピペットで細胞とDMSOを吸い込み、吸い出すやり方で、細胞中の色素の結晶を溶解した。このプレートを回転速度1,000rpmで20分間遠心した。各穴(well)中の上清を新しい96穴(well)プラスチックプレートの各穴(well)に移し、ムルティスカン(Multiskan)プレート・リーダーを用いて、570ナノメーターの波長で各穴(well)の溶液の吸光度を測定した。対照群の20穴(well)の吸光度と実験群の20穴(well)の吸光度は共に平均値が0.065で標準偏差がプラスマイナス0.005であった。このことは、実験群20穴(well)と対照群20穴(well)に小分けした神経幹細胞の中で、生きた細胞は各穴(well)に約同数存在することを示している。   A cell activation evaluation test (MTT assay) of neural stem cells before culture in the control group and the experimental group was performed on one of the 96-well plastic plates of Example 3 into which neural stem cells were subdivided. The principle of the MTT assay is that succinate dehydrogenase in the mitotic body of living cells oxidizes foreign MTT and accumulates in the cells to form water-insoluble royal purple formazan. However, such a phenomenon never occurs in cells. Therefore, this 96-well plastic plate in which neural stem cells have just been suspended is centrifuged at 800 rpm for 5 minutes to precipitate cells in 20 wells in each of the experimental group and the control group. The cells in the wells were washed with RPMI-1640 solution (manufactured by Funakoshi) that did not contain phenol red and was heated to 37 degrees Celsius. 100 microliters of methylthiazoletetrazolium (MTT) at a concentration of 0.5 milligram per milliliter was added to each well after washing and reacted at 37 degrees Celsius for 4 hours in a carbon dioxide cell incubator. When the cells were observed with an inverted microscope, bluish purple (royal purple) needle-shaped formazan was found in living cells. Therefore, the 96-well plastic plate was centrifuged at a rotation speed of 800 rpm for 5 minutes, the cells in each well were precipitated, the supernatant was discarded, and 100 microliters of dimethyl sulfoxide (DMSO) was added. In addition to each well, cells and DMSO were pipetted into each well, and the dye crystals in the cells were lysed in a manner that sucked out. The plate was centrifuged at 1,000 rpm for 20 minutes. The supernatant in each well is transferred to each well of a new 96 well plastic plate and each well is used at a wavelength of 570 nanometers using a Multiskan plate reader. The absorbance of the solution was measured. The average value of the absorbance in the 20 wells of the control group and the absorbance of the 20 wells in the experimental group was 0.065, and the standard deviation was plus or minus 0.005. This indicates that among the neural stem cells subdivided into 20 wells in the experimental group and 20 wells in the control group, there are about the same number of living cells in each well.

実施例4の培養前MTTアッセイ操作と並行して、神経幹細胞を小分けした実施例3の96穴(well)プラスチックプレートの残りの4枚を摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で6日間培養した。6日間培養した細胞の形態は実験群と対照群共に球状で神経細胞状の突起は出ていなかった。3枚のプラスチックプレートの実験群と対照群各5つの穴(well)の細胞につぃて、実施例2に記載の方法で、これらの細胞のネスチン陽性の有無を調べたところ、いずれも、ネスチン陽性であり、血清やbFGFを含まないDMEM/F12培養液で培養した場合、神経幹細胞は神経細胞に分化せずに神経幹細胞として存在すること確認した。図2参照。   In parallel with the pre-culture MTT assay procedure of Example 4, the remaining 4 wells of the 96-well plastic plate of Example 3 into which neural stem cells were subdivided were cultured at 37 ° C. in 5% carbon dioxide gas. Cultivated in a vessel for 6 days. The morphology of the cells cultured for 6 days was spherical in both the experimental group and the control group, and no neuronal projections appeared. When the cells in 5 wells of each of the experimental group and the control group of 3 plastic plates were examined for the presence or absence of nestin in the cells by the method described in Example 2, When cultured in a DMEM / F12 culture medium that is nestin-positive and does not contain serum or bFGF, it was confirmed that neural stem cells exist as neural stem cells without differentiating into neural cells. See FIG.

実施例5で6日間培養した96穴(well)プラスチックプレート中の神経幹細胞の増殖の程度を測定するために、この培養した96穴(well)プラスチックプレーの1枚を用いて実施例4と同様の操作により、6日間培養した対照群と実験群の神経幹細胞のMTTアッセイを行った。対照群の20穴(well)の吸光度が平均値が0.204で標準偏差がプラスマイナス0.059に対し、実験群の20穴(well)の吸光度は平均値が0.375で標準偏差がプラスマイナス0.070、両群間でt検定でPが0.01以下で有意に差が認められた。MTTアッセイ自体は生きた細胞の数を測定するに過ぎないが、培養前と培養後の細胞のMTTアッセイをすることにより、細胞の増殖の度合いを測定することができる。本実施例の場合、培養後の対照群の吸光度は培養前に比べ、約3.1倍に増えたが、培養後の実験群の吸光度は培養前に比べ、約5.7倍に増えた。このことは、N2サプルメン添加培地により、神経幹細胞はある程度増殖するが、サルビアノール酸Bの添加により、増殖が促進したことを意味する。図3参照。   In order to measure the degree of proliferation of neural stem cells in the 96-well plastic plate cultured for 6 days in Example 5, one of the cultured 96-well plastic plates was used as in Example 4. According to the procedure, MTT assay was performed on neural stem cells of the control group and the experimental group cultured for 6 days. The absorbance of 20 wells in the control group has an average value of 0.204 and a standard deviation of 0.059, whereas the absorbance of 20 wells in the experimental group has an average value of 0.375 and a standard deviation. There was a significant difference between plus and minus 0.070 and P was less than 0.01 by t-test between both groups. Although the MTT assay itself only measures the number of living cells, the degree of cell proliferation can be measured by performing an MTT assay of cells before and after culture. In the case of this example, the absorbance of the control group after the culture increased about 3.1 times compared with that before the culture, but the absorbance of the experimental group after the culture increased about 5.7 times compared with that before the culture. . This means that the neural stem cells proliferate to some extent in the medium supplemented with N2 supplement, but the growth was promoted by the addition of salvianolic acid B. See FIG.

サルビアノール酸Bの細胞増殖作用をDNAの複製レベルで観測するために、実施例3と同様の操作により得られた2枚の神経幹細胞を小分けした96穴(well)プラスチックプレートを摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で3日間培養した。その中の1枚のプラスチックプレートの各穴(well)に静かに10マイクロリットルの1ミリモル濃度のブロモデオキシウリジン(BrdUrd)(Boehringer・Mannheim社製)のDPBS溶液を加え、他の1枚のプラスチックプレートの各穴(well)には10マイクロリットルのDPBS溶液を加え、摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で40分間培養した。プラスチックプレートを回転速度800rpmで5分間遠心し、各穴(well)中の細胞を沈殿させて、その上清捨て、各穴(well)中の細胞を各穴(well)中でDPBS溶液で洗浄した。これらの細胞中のBrdUrdの取り込み量を抗BrdUrd抗体法で測定した。即ち、実施例2において、スライドグラスに付着した細胞の代わりに各穴(well)の底に付着した洗浄細胞を用い、実施例2と同様の操作を行い、細胞を固定化し、タンパク質分解酵素処理をする代わりにDNA分解酵素(DNase)処理を行い、D‐ハンクスTS液で100倍に希釈したマウスの抗ラットネスチン抗体の代わりにD‐ハンクスTS液で400倍に希釈したマウスのフルオレセイン・イソチオシャネート(FITC‐)標識アルファ‐抗BrdUrd抗体を用い、その他は実施例2と同様の操作を行い、細胞を免疫染色し、共焦点レーザー走査顕微鏡で観察し、BrdUrdの量を測定した。BrdUrdを加えないプラスチックプレートについても同様の操作を行い、バックグランド値とした。実験群(サルビアノール酸B添加群)の細胞のBrdUrdの取り込み量は対照群(サルビアノール酸B無添加群)に比較し、約2倍多かった。   In order to observe the cell growth effect of salvianolic acid B at the DNA replication level, a 96-well plastic plate obtained by subdividing two neural stem cells obtained by the same operation as in Example 3 was used at 37 degrees Celsius. The cells were cultured in a carbon dioxide incubator in 5% carbon dioxide for 3 days. Gently add 10 microliters of a 1 mM Bromodeoxyuridine (BrdUrd) (Boehringer Mannheim) DPBS solution to each well of one plastic plate and add another plastic. Ten microliters of DPBS solution was added to each well of the plate, and the plate was incubated at 37 degrees Celsius in 5% carbon dioxide in a carbon dioxide incubator for 40 minutes. The plastic plate is centrifuged at a rotation speed of 800 rpm for 5 minutes, the cells in each well are precipitated, the supernatant is discarded, and the cells in each well are washed with the DPBS solution in each well. did. The amount of BrdUrd taken up in these cells was measured by the anti-BrdUrd antibody method. That is, in Example 2, using the washed cells attached to the bottom of each well instead of the cells attached to the slide glass, the same operation as in Example 2 was performed to immobilize the cells, and the proteolytic enzyme treatment In place of the treatment with DNA-degrading enzyme (DNase), the mouse fluorescein isotite diluted 400-fold with D-Hanks TS solution instead of the mouse anti-rat nestin antibody diluted 100-fold with D-Hanks TS solution The same procedure as in Example 2 was performed except that an ocinate (FITC-) labeled alpha-anti-BrdUrd antibody was used, and the cells were immunostained and observed with a confocal laser scanning microscope to measure the amount of BrdUrd. The same operation was performed on the plastic plate to which BrdUrd was not added, and the background value was obtained. The amount of BrdUrd taken up by the cells of the experimental group (salvianolic acid B addition group) was about twice as high as that of the control group (salvianolic acid B non-addition group).

実施例5で6日間培養したが、実施例6でMTTアッセイに用いなかった残りの2枚の96穴(well)プラスチックプレートの実験群の各穴(well)の培養液を0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bと2%のN2を含み、血清やbFGFを含まない新鮮なDMEM/F12培養液で入れ替えて、引続き炭酸ガス細胞培養器で摂氏37度で1週間培養した。実験群の細胞は培養液中で浮遊したまま集まり、数十個から数百個の細胞の球状集落を形成した。この細胞の一部を実施例2と同様の操作により免疫染色し、共焦点レーザー走査顕微鏡で観察したところ、細胞はネスチン陽性であった。   Although cultured for 6 days in Example 5, the remaining two 96-well plastic plate that was not used in the MTT assay in Example 6 contained 0.035 micromole of the culture medium in each well of the experimental group. The medium was replaced with fresh DMEM / F12 culture medium containing salvianolic acid B and 2% N2, but not serum or bFGF, and then cultured at 37 degrees Celsius for 1 week in a carbon dioxide cell incubator. The cells of the experimental group gathered while floating in the culture medium, forming a spherical colony of tens to hundreds of cells. When some of these cells were immunostained by the same operation as in Example 2 and observed with a confocal laser scanning microscope, the cells were positive for nestin.

実施例8で得られた球状細胞塊を集め、この細胞塊をピペットで静かに吸い込み、吐き出すやり方を繰り返して、機械的に個々の細胞にばらばらにし、この細胞(神経幹細胞)を10%FBSと1ミリリットル当たり100単位のペニシリンと100マイクログラムのストレプトマイシンを含むDMEM培養液に1ミリリットル当たり50,000個の細胞密度になるように懸濁し、96穴(well)プラスチックプレートの中央の20穴(well)に100マイクロリットルずつ小分けした。このプレートを摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で6日間培養した。最初は細胞集落を形成したが、細胞集落の幾つかは自然に穴(well)の底に付着し、突起を出し、神経細胞やアストロサイト状の形態に変化した。   The spherical cell mass obtained in Example 8 is collected, and the cell mass is gently sucked with a pipette, and the method of exhaling is repeated to mechanically dissociate the cells into individual cells, and the cells (neural stem cells) are mixed with 10% FBS. Suspended in a DMEM culture medium containing 100 units of penicillin per milliliter and 100 micrograms of streptomycin to a density of 50,000 cells per milliliter, and 20 wells in the center of a 96-well plastic plate. ) Into 100 microliters. The plate was cultured at 37 degrees Celsius in 5% carbon dioxide in a carbon dioxide incubator for 6 days. Initially, cell colonies were formed, but some of the cell colonies naturally attached to the bottom of the well, protruding, and changing to a neuronal or astrocyte-like form.

実施例9で得られた神経細胞状の形態を有する細胞とアストロサイト状の形態を有する細胞について、実施例2と同様の操作により免疫染色し、顕微鏡および共焦点レーザー走査顕微鏡で観察したところ、両者の細胞は共にネスチン陰性であった。このことは神経細胞状の形態を有する細胞はもはや神経幹細胞でないことを意味する。そこで、神経細胞状の形態を有する細胞につぃて、実施例2において、D‐ハンクスTS液で100倍に希釈したマウスの抗ラットネスチン抗体の代わりに、D‐ハンクスTS液で200倍に希釈したマウスの抗ラット神経特異的エノラーゼ(neuron・specific・enolase:NSE)抗体を用い、その他は実施例2と同様の操作により免疫染色し、共焦点レーザー走査顕微鏡で観察したところ、当該細胞はNSE陽性であった。NSEは神経特異的マーカーである。したがって、この神経細胞状の形態を有する細胞は神経細胞であり、神経幹細胞が神経に分化したことを意味する。次に、アストロサイト状の形態を有する細胞について、実施例2において、D‐ハンクスTS液で100倍に希釈したマウスの抗ラットネスチン抗体の代わりに、D‐ハンクスTS液で1,000倍に希釈したウサギの抗ラットグリア繊維性酸性たんぱく質(glial・fibrillary・acidic・protein:GFAP)抗体を用い、ビオチン標識ヤギ抗マウスIgG抗体の代わりに、ビオチン標識ヤギ抗ウサギIgG抗体を用い、その他は実施例2と同様の操作により免疫染色し、共焦点レーザー走査顕微鏡で観察したところ、当該細胞はGFAP陽性であった。GFAPはアストロサイト特異的マーカーである。したがって、このアストロサイト状の形態を有する細胞はアストロサイトであり、神経幹細胞がアストロサイトに分化したことを意味する。すなわち、サルビアノール酸Bで増殖した神経幹細胞は生体外で、10%胎児性牛血清存在下で神経細胞とアストロサイトに分化したことを意味する。   The cells having the neuronal morphology and the astrocyte-like cells obtained in Example 9 were immunostained by the same operation as in Example 2 and observed with a microscope and a confocal laser scanning microscope. Both cells were nestin negative. This means that cells with neuronal morphology are no longer neural stem cells. Thus, for cells having neuronal morphology, in Example 2, instead of the mouse anti-rat nestin antibody diluted 100-fold with D-Hanks TS solution, 200-fold with D-Hanks TS solution. When the diluted mouse anti-rat nerve specific enolase (NSE) antibody was used, immunostaining was performed in the same manner as in Example 2, and the cells were observed with a confocal laser scanning microscope. NSE was positive. NSE is a nerve specific marker. Therefore, the cells having this neuronal morphology are nerve cells, meaning that neural stem cells have differentiated into nerves. Next, for cells having astrocyte-like morphology, in Example 2, instead of the mouse anti-rat nestin antibody diluted 100-fold with D-Hanks TS solution, 1,000-fold with D-Hanks TS solution. A diluted rabbit anti-rat glial fibrillary acidic protein (GFAP) antibody was used, a biotin-labeled goat anti-mouse IgG antibody was used instead of a biotin-labeled goat anti-mouse IgG antibody, and other examples When the cells were immunostained in the same manner as in No. 2 and observed with a confocal laser scanning microscope, the cells were GFAP positive. GFAP is an astrocyte specific marker. Therefore, cells having this astrocyte-like morphology are astrocytes, meaning that neural stem cells have differentiated into astrocytes. That is, it means that neural stem cells grown with salvianolic acid B differentiated into neurons and astrocytes in the presence of 10% fetal bovine serum in vitro.

実施例1で得られた第5次の球形細胞塊で、未使用の細胞塊をピペットで静かに吸い込み、吐き出すやり方で個々の細胞に分散させ、この細胞(神経幹細胞)を実施例3に記載の0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bと2%のN2と1ミリリットル当たり100単位のペニシリンと100マイクログラムのストレプトマイシンを含み、血清やbFGFを含まないDMEM/F12培養液に1ミリリットル当たり50,000個の細胞密度になるように懸濁し、摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で6日間培養し、サルビアノール酸Bによる増殖神経幹細胞を得た。   In the fifth spherical cell cluster obtained in Example 1, unused cell clusters are gently sucked with a pipette and dispersed into individual cells in the manner of exhaling, and these cells (neural stem cells) are described in Example 3. 0.035 micromolar salvianolic acid B, 2% N2, 100 units penicillin per milliliter and 100 microgram streptomycin, and no serum or bFGF in DMEM / F12 culture medium at 50 per milliliter. The cells were suspended to a density of 1,000 cells and cultured for 6 days in a carbon dioxide incubator at 37 degrees Celsius in 5% carbon dioxide to obtain proliferative neural stem cells by salvianolic acid B.

実施例11で得られたサルビアノール酸Bによる増殖神経幹細胞を10マイクロモル濃度のBrdUrdと0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bと2%のN2と1ミリリットル当たり100単位のペニシリンと100マイクログラムのストレプトマイシンを含み、血清やbFGFを含まないDMEM/F12培養液に1ミリリットル当たり50,000個の細胞密度になるように懸濁し、摂氏37度で、5%炭酸ガス中で炭酸ガス培養器で4日間培養した。培養プレートを回転速度800rpmで5分間遠心し、上清を捨て、細胞を分離した。トリプシン処理をして細胞を個々の細胞にばらし、DPBSで洗浄し、1マイクロリットル当たり50,000個の細胞密度になるように0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bを含有するDPBSに懸濁した。   Proliferating neural stem cells with salvianolic acid B obtained in Example 11 were treated with 10 micromolar BrdUrd, 0.035 micromolar salvianolic acid B, 2% N2, 100 units penicillin per milliliter and 100 micromolar. Suspended in a DMEM / F12 culture medium containing gram of streptomycin and no serum or bFGF to a density of 50,000 cells per milliliter, and a carbon dioxide incubator in 5% carbon dioxide at 37 degrees Celsius For 4 days. The culture plate was centrifuged at a rotation speed of 800 rpm for 5 minutes, the supernatant was discarded, and the cells were separated. Cells were trypsinized to break the cells into individual cells, washed with DPBS and suspended in DPBS containing 0.035 micromolar salvianolic acid B to a density of 50,000 cells per microliter. It became cloudy.

実施例12で得られたBrdUrdで標識した神経幹細胞を5マイクロリットル容量の26ゲイジのメモリが付いたハミルトン注射器で細胞懸濁液1マイクロリットルを麻酔した大人の雌のSDラットの背面の海馬にゆっくりと注入した。細胞懸濁液注入後1、4、8、12週間後にラットを3匹ずつ麻酔し、4%パラホルムアルデヒド含有リン酸緩衝液で還流した。脳を取り出し、50%ホルムアミド/2xSSC溶液中で摂氏65度で2時間加温し、引続き、2モル濃度の塩酸中摂氏37度で30分反応させた後に、脳冠状凍結ミクロトームで、脳組織を2ミリメートル間隔で7等分の環状ブロックに切断した。前頭面で各切断ブロックから6マイクロメートルの厚さの切片を作成した。   BrdUrd-labeled neural stem cells obtained in Example 12 were placed in the hippocampus on the back of an adult female SD rat anesthetized with 1 microliter of cell suspension with a Hamilton syringe with a 5 microliter capacity of 26 gauge memory. Slowly infused. Three, four, and 12 weeks after injection of the cell suspension, each rat was anesthetized and refluxed with 4% paraformaldehyde-containing phosphate buffer. The brain was removed and heated in a 50% formamide / 2 × SSC solution at 65 degrees Celsius for 2 hours, and subsequently reacted at 37 degrees Celsius in 2 molar hydrochloric acid for 30 minutes. Cut into 7 equal circular blocks at 2 mm intervals. A section of 6 micrometers thickness was made from each cutting block on the frontal plane.

実施例10において、固定した神経細胞の代わりに、実施例13で得られたラットの固定した脳切片を用い、D‐ハンクスTS液で200倍に希釈したマウスの抗ラットNSE抗体の代わりに、D‐ハンクスTS液で400倍に希釈したマウスのFITC‐アルファ‐抗BrdUrd抗体と200倍に希釈したマウスの抗ラットNSE抗体を用い、その他は実施例10における固定した神経細胞に対する操作と同様の操作により免疫染色し、共焦点レーザー走査顕微鏡で観察したところ、NSE陽性でFITC陰性の神経細胞の他にNSEとFITCが共に陽性の神経細胞が観察された。NSE陽性でFITC陰性の神経細胞は内在性の神経細胞であることを意味し、NSEとFITCが共に陽性の神経細胞は外来性の神経細胞であること意味する。したがって、NSEとFITCが共に陽性の神経細胞の存在は脳内に注入した神経幹細胞が脳内で神経細胞に分化したことを示している。   In Example 10, instead of the fixed nerve cells, the rat fixed brain section obtained in Example 13 was used, and instead of the mouse anti-rat NSE antibody diluted 200-fold with D-Hanks TS solution, A mouse FITC-alpha-anti-BrdUrd antibody diluted 400-fold with D-Hanks TS solution and a mouse anti-rat NSE antibody diluted 200-fold were used, and the other procedures were the same as those for fixed neurons in Example 10. As a result of immunostaining by operation and observation with a confocal laser scanning microscope, NSE and FITC-negative neurons were observed in addition to NSE-positive and FITC-negative neurons. An NSE-positive and FITC-negative neuron means an endogenous neuron, and an NSE and FITC-positive neuron means an exogenous neuron. Therefore, the presence of neurons positive for both NSE and FITC indicates that neural stem cells injected into the brain differentiated into neurons in the brain.

実施例10において、固定したアストサイトの代わりに、実施例13で得られたラットの固定した脳切片を用い、D‐ハンクスTS液で1,000倍に希釈したウサギの抗ラットGFAP抗体の代わりに、D‐ハンクスTS液で400倍に希釈したマウスの蛍光イソチオシアネート(FITC‐)標識アルファ‐抗BrdUrd抗体と1,000倍に希釈したウサギの抗ラットGFAP抗体を用い、その他は実施例10における固定したアストサイトに対する操作と同様の操作により免疫染色し、共焦点レーザー走査顕微鏡で観察したところ、GFAP陽性でFITC陰性のアストロサイトの他にGFAPとFITCが共に陽性のアストロサイトが観察された。GFAP陽性でFITC陰性の神経細胞は内在性のアストロサイトであることを意味し、GFAPとFITCが共に陽性の神経細胞は外来性のアストロサイトであること意味する。したがって、GFAPとFITCが共に陽性のアストロサイトの存在は脳内に注入した神経幹細胞が脳内でアストロサイトに分化したことを示している。神経幹細胞が神経細胞に分化するかアストロサイトに分化するかは、脳内の部位の環境によると思われる。   In Example 10, instead of the fixed astrocytes, the rat fixed brain section obtained in Example 13 was used, and instead of the rabbit anti-rat GFAP antibody diluted 1,000 times with D-Hanks TS solution In addition, a mouse fluorescent isothiocyanate (FITC-) labeled alpha-anti-BrdUrd antibody diluted 400-fold with D-Hanks TS solution and a rabbit anti-rat GFAP antibody diluted 1000-fold were used. As a result of immunostaining by the same operation as that for the fixed astrocytes in Fig. 1, observation with a confocal laser scanning microscope revealed that GFAP-positive and FITC-negative astrocytes, as well as GFAP- and FITC-positive astrocytes were observed. . GFAP-positive and FITC-negative nerve cells mean endogenous astrocytes, and both GFAP and FITC-positive nerve cells mean exogenous astrocytes. Therefore, the presence of astrocytes positive for both GFAP and FITC indicates that neural stem cells injected into the brain differentiated into astrocytes in the brain. Whether neural stem cells differentiate into neurons or astrocytes appears to depend on the environment in the brain.

体重300グラム前後の大人のSDラット10匹を4%イソフルラン、66%N2O、30%酸素の混合ガスで麻酔し、1.5%のイソフルラン、68.5%N2O、30%酸素の混合ガスで麻酔を維持した。血圧、血液冲のガス分圧、血糖値を左の大腿骨動脈でモニターした。直腸温度、中大脳動脈閉塞の反対側の側頭筋温度を常時モニターして、加熱パッドで摂氏37.0−37.5度に維持した。左外頚動脈を6−0絹縫合糸で結び、遠位を切開し、左内頚動脈を分離し、迷走神経から離した。左内頚動脈の頭蓋外枝をその枝分れの根元のところで、6−0絹縫合糸で結んだ。円形チップの付いた3−0外科用単層ナイロン縫合糸を外頚動脈断片を通して左内頚動脈に導き、その頚動脈の枝分れ部分より20ミリメートル過ぎたところで、90分間結び、その後直ぐ解き、縫合糸による閉塞による中大脳動脈閉塞を起したラットを作成した。このラット10匹に実施例12で得られたBrdUrd標識神経幹細胞をハミルトン注射器で細胞懸濁液1マイクロリットルを麻酔下で背面の海馬にゆっくりと注入した。   Ten adult SD rats weighing about 300 grams are anesthetized with a mixed gas of 4% isoflurane, 66% N2O, 30% oxygen, and mixed with 1.5% isoflurane, 68.5% N2O, 30% oxygen. Anesthesia was maintained. Blood pressure, gas partial pressure of blood clot, and blood glucose level were monitored at the left femoral artery. Rectal temperature and temporal muscle temperature opposite the middle cerebral artery occlusion were constantly monitored and maintained at 37.0-37.5 degrees Celsius with a heating pad. The left external carotid artery was tied with 6-0 silk suture, the distal incision was made, the left internal carotid artery was isolated and separated from the vagus nerve. The extracranial branch of the left internal carotid artery was tied with 6-0 silk suture at the base of the branch. A 3-0 surgical single-layer nylon suture with a circular tip is guided through the external carotid artery fragment to the left internal carotid artery, tied 20 minutes past the carotid bifurcation, tied for 90 minutes, then unwound and sutured Rats with middle cerebral artery occlusion due to occlusion were prepared. In 10 rats, BrdUrd-labeled neural stem cells obtained in Example 12 were slowly injected into the dorsal hippocampus under anesthesia using a Hamilton syringe under anesthesia.

実施例16でBrdUrd標識神経幹細胞を海馬に注入した中大脳動脈閉塞ラットに対して、即日より殺す日まで毎日2ミリグラム/キログラムの割合でサルビアノール酸Bを腹腔内投与した。対照として別のBrdUrd標識神経幹細胞を海馬に注入した中大脳動脈閉塞ラット10匹に対してサルビアノール酸Bを投与しなかった。中大脳動脈閉塞後第1,3,7,14日にこれらのラット2匹ずつをキシラジン10ミリグラム/キログラムとケタミン80ミリグラム/キログラムで麻酔して殺した。直ちに、生理的食塩水で還流し、続いて4%パラホルムアルデヒドで還流した。脳組織を2ミリメートル間隔で7等分の環状ブロックに切断した。前頭面で各切断ブロックから6マイクロメートルの厚さの切片を作成した。   Salvianolic acid B was intraperitoneally administered at a rate of 2 milligrams / kilogram every day from the same day until the day of killing the rats with middle cerebral artery occlusion in which the BrdUrd-labeled neural stem cells were injected into the hippocampus in Example 16. As control, salvianolic acid B was not administered to 10 middle cerebral artery occluded rats injected with another BrdUrd-labeled neural stem cell into the hippocampus. On days 1, 3, 7, and 14 after occlusion of the middle cerebral artery, two of these rats were anesthetized with 10 mg / kg of xylazine and 80 mg / kg of ketamine and killed. Immediately refluxed with physiological saline followed by 4% paraformaldehyde. Brain tissue was cut into 7 equal circular blocks at 2 millimeter intervals. A section of 6 micrometers thickness was made from each cutting block on the frontal plane.

実施例14において、実施例13で作成した切片の代わりに、実施例17で作成した切片を用い、その他は実施例14と同様の操作をして、NSEとFITCに対する二重免疫標識した。サルビアノール酸Bを投与したラットは中大脳動脈閉塞後第2日に殺した群からNSEとFITCの二重陽性が認められ、日数に比例して二重陽性が強くなった。サルビアノール酸Bを投与しなかったラットは中大脳動脈閉塞後第2日に殺した群からNSEとFITCの二重陽性が認められなかったが、第4日になってNSEとFITCの二重陽性は確認できた。このことから、脳内に注入した神経幹細胞はサルビアノール酸Bが存在しなくとも、脳内で神経細胞に分化するが、サルビアノール酸Bの投与により脳内で神経幹細胞が増殖し、その結果として神経幹細胞の神経への分化が促進されたと思われる。   In Example 14, the section prepared in Example 17 was used instead of the section prepared in Example 13, and the other operations were performed in the same manner as in Example 14 to perform double immunolabeling on NSE and FITC. Rats to which salvianolic acid B was administered were found to be double-positive for NSE and FITC from the group killed on the second day after middle cerebral artery occlusion, and the double-positive became stronger in proportion to the number of days. Rats that did not receive salvianolic acid B did not show NSE and FITC double positivity from the group killed on day 2 after occlusion of the middle cerebral artery, but on day 4, NSE and FITC double Positive was confirmed. From this, neural stem cells injected into the brain are differentiated into nerve cells in the brain even if salvianolic acid B is not present, but neural stem cells proliferate in the brain by administration of salvianolic acid B. It seems that the differentiation of neural stem cells into nerves was promoted.

実施例16と同様の操作により、中大脳動脈閉塞ラットを40匹作成し、その中で20匹の背面の海馬に実施例12においてBrdUrdを添加せずに他は実施例12と同様の操作をして得られたBrdUrd非標識の神経幹細胞を1マイクロリットル当たり50,000個の細胞密度になるように、0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bを含有するDPBS(サルビアノール酸B投与群用)またはサルビアノール酸Bを含有しないDPBS(サルビアノール酸B非投与群用)に懸濁した神経幹細胞含有液1マイクロリットルを5マイクロリットル容量のハミルトン注射器でゆっくりと注入した。増殖神経幹細胞含有液を注入したラット10匹と注入しないラット10匹に毎日2ミリグラム/キログラムの割合でサルビアノール酸Bを3ヶ月間腹腔内投与した。一方、残りの増殖神経幹細胞含有液を注入したラット10匹と注入しないラット10匹にはサルビアノール酸Bを投与しなかった。このラットについて高架式十字迷路試験を行った。高架式十字迷路試験とは高架式の十字形の細長い平板の一方にラットの餌を置き、他方の一つにラットを放すと、ラットは最初は試行錯誤で十字路の一方の行き止まりまで行き、そこに餌が無いことを知って、十字路にもどり、別の道を行く、そうこうしているうちにラットが餌の置いてある端にたどりつく。もう一度実験をすると記憶力のあるラットは迷うことなく、餌がおいてある道を進み餌にありつく。しかし、記憶力の悪いラットは1回目と同様に試行錯誤を繰返す。この試験によりラットの記憶力が測定できる。神経幹細胞含有液もサルビアノール酸Bも投与しなかった対照群は餌にたどり着くまでに多くの時間を要し、記憶力が極度に低下していた。これに対し、サルビアノール酸Bだけを投与した群は餌にたどり着くまでの時間が短くなり、神経幹細胞含有液を注入した群は餌にたどり着くまでの時間が更に短くなり、神経幹細胞含有液注入後サルビアノール酸Bを投与し続けた群が餌にたどり着くまでの時間が一番短くなった。ラットが餌にたどり着くまでの時間が短くなったということは記憶力の回復を意味し、神経幹細胞含有液注入後サルビアノール酸Bを投与群、神経幹細胞含有液注入群、サルビアノール酸Bを投与群の順で神経細胞が再生し、かつ再生した神経細胞が機能していることを示している。   40 rats with middle cerebral artery occlusion were prepared by the same operation as in Example 16, and the same operation as in Example 12 was performed except that BrdUrd was not added to the hippocampus of 20 animals. DPBS (salvianolic acid B administration group) containing 0.035 micromolar salvianolic acid B so that the BrdUrd-unlabeled neural stem cells obtained in this manner have a density of 50,000 cells per microliter Or 1 microliter of neural stem cell-containing solution suspended in DPBS (for salvianolic acid B non-administered group) not containing salvianolic acid B was slowly injected with a 5 microliter Hamilton syringe. Salvianolic acid B was intraperitoneally administered daily at a rate of 2 milligrams / kilogram for 10 rats injected with the proliferating neural stem cell-containing solution and 10 rats not injected. On the other hand, salvianolic acid B was not administered to 10 rats injected with the remaining proliferating neural stem cell-containing solution and 10 rats not injected. This rat was subjected to an elevated plus maze test. The Elevated Cross Maze Test is where a rat's food is placed on one of the elevated cross-shaped slender plates and the rat is released on one of the other, and the rat first goes to a dead end on one of the crossroads by trial and error. Knowing that there is no food, go back to the crossroads and go another way, while the rat reaches the end where the food is placed. When the experiment is repeated, the memory-rich rat does not hesitate and goes on the path where the food is placed, and then comes to the food. However, rats with poor memory repeat trial and error as in the first time. This test can measure the memory ability of rats. The control group to which neither the neural stem cell-containing solution nor salvianolic acid B was administered took much time to reach the food, and the memory ability was extremely lowered. In contrast, the group administered only with salvianolic acid B has a shorter time to reach the food, and the group infused with the neural stem cell-containing liquid has a shorter time to reach the food, after the neural stem cell-containing liquid has been injected. The time until the group that continued to receive salvianolic acid B arrived at the feed was the shortest. The shortened time until the rat reaches the food means that the memory is restored, and after administration of the neural stem cell-containing solution, the administration group of salvianolic acid B, the injection of neural stem cell-containing solution, and the administration group of salvianolic acid B It is shown that the nerve cells regenerate in this order, and the regenerated nerve cells are functioning.

実施例19において、中大脳動脈閉塞ラット40匹の代わりに、24ヶ月齢の老齢のラット40匹を用いて同様の操作により、老齢のラットの記憶力を測定した。神経幹細胞含有液注入後サルビアノール酸Bを投与群、神経幹細胞含有液注入群、サルビアノール酸Bを投与群の順で記憶力が強かった。神経幹細胞含有液もサルビアノール酸Bも投与しない対照群は餌にたどり着くまでに多くの時間を要した。   In Example 19, instead of 40 middle cerebral artery occluded rats, 40 24-month-old aged rats were used to measure the memory ability of aged rats in the same manner. After injection of the neural stem cell-containing liquid, the memory ability was strong in the order of the group administered salvianolic acid B, the group injected with neural stem cell-containing liquid, and the group administered salvianolic acid B. The control group to which neither the neural stem cell-containing solution nor salvianolic acid B was administered took a lot of time to reach the food.

実施例19において、中大脳動脈閉塞ラット40匹の代わりに、脳外傷のあるラット40匹を用いて同様の操作により、脳外傷のあるラットの記憶力を測定した。神経幹細胞含有液注入後サルビアノール酸Bを投与群、神経幹細胞含有液注入群、サルビアノール酸Bを投与群の順で記憶力が強かった。神経幹細胞含有液もサルビアノール酸Bも投与しない対照群は餌にたどり着くまでに多くの時間を要した。   In Example 19, instead of 40 middle cerebral artery occluded rats, 40 rats with brain trauma were used to measure the memory ability of rats with brain trauma in the same manner. After injection of the neural stem cell-containing liquid, the memory ability was strong in the order of the group administered salvianolic acid B, the group injected with neural stem cell-containing liquid, and the group administered salvianolic acid B. The control group to which neither the neural stem cell-containing solution nor salvianolic acid B was administered took a lot of time to reach the food.

実施例19において、中大脳動脈閉塞ラット40匹の代わりに、1‐メチル‐4‐フェニル‐1,2,3,6‐テトラヒドロピリジン(MPTP)塩酸塩(Sigma社製)をキログラム当たり40ミリグラムを16時間間隔で2度投与して作成したパーキンソン病モデルラット40匹を用いて同様の操作により、パーキンソン病モデルラットの記憶力を測定した。神経幹細胞含有液注入後サルビアノール酸Bを投与群、神経幹細胞含有液注入群、サルビアノール酸Bを投与群の順で記憶力が強かった。神経幹細胞含有液もサルビアノール酸Bも投与しない対照群は餌にたどり着くまでに多くの時間を要した。   In Example 19, instead of 40 rats with middle cerebral artery occlusion, 40 mg / kg of 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine (MPTP) hydrochloride (manufactured by Sigma) was used. The memory ability of Parkinson's disease model rats was measured in the same manner using 40 Parkinson's disease model rats prepared by twice administration at 16-hour intervals. After injection of the neural stem cell-containing liquid, the memory ability was strong in the order of the group administered salvianolic acid B, the group injected with neural stem cell-containing liquid, and the group administered salvianolic acid B. The control group to which neither the neural stem cell-containing solution nor salvianolic acid B was administered took a lot of time to reach the food.

実施例19において、中大脳動脈閉塞ラット40匹の代わりに、臭化水素酸スコポラミン(メルク社製)の0.9%食塩水を臭化水素酸スコポラミン換算でキログラム当たり2ミリグラムを投与して作成したアルツハイマー病モデルラット40匹を用いて同様の操作により、アルツハイマー病モデルラットの記憶力を測定した。神経幹細胞含有液注入後サルビアノール酸Bを投与群、神経幹細胞含有液注入群、サルビアノール酸Bを投与群の順で記憶力が強かった。神経幹細胞含有液もサルビアノール酸Bも投与しない対照群は餌にたどり着くまでに多くの時間を要した。   In Example 19, instead of 40 rats with middle cerebral artery occlusion, 0.9% saline solution of scopolamine hydrobromide (manufactured by Merck) was administered at a dose of 2 milligrams per kilogram in terms of scopolamine hydrobromide. The memory ability of Alzheimer's disease model rats was measured in the same manner using 40 Alzheimer's disease model rats. After injection of the neural stem cell-containing liquid, the memory ability was strong in the order of the group administered salvianolic acid B, the group injected with neural stem cell-containing liquid, and the group administered salvianolic acid B. The control group to which neither the neural stem cell-containing solution nor salvianolic acid B was administered took a lot of time to reach the food.

実施例3において、サルビアノール酸Bの代わりに、サルビアノール酸Bマグネシウム、サルビアノール酸Bエチルエステルをそれぞれ用い、その他は実施例3から実施例6と同様の操作を行い、サルビアノール酸Bについての結果と同様の結果を得た。   In Example 3, salvianolic acid B magnesium and salvianolic acid B ethyl ester were used in place of salvianolic acid B, respectively, and the other operations were performed in the same manner as in Examples 3 to 6. The same result as that was obtained.

サルビアノール酸BのPBS溶液(1ミリグラム/2.5ミリリットル)を50マイクロリットルずつ、96穴(well)プラスチックプレートの中央16穴(well)に入れ、更に各々0.2%のアルファ・カロチン、ベータ・カロチン、リコペン、ルテイン、フラボノイド、カテキン、リザベラトール、イソフラボン、ビタミンA、ビタミンE、セレン、亜鉛、補酵素Q10、グルタチオンまたはエンゾジノールのPBS溶液または抗酸化剤が入ってないPBS溶液を50マイクロリットルずつ加え、摂氏80度で72時間加温し、加温前後の穴(well)中の溶液を286ナノメータで吸光度を測定した。抗酸化剤を加えたサルビアノール酸Bの溶液の286ナノメータでの吸光度は加温前後で変化しなかったが、抗酸化剤を加えないサルビアノール酸Bの溶液の吸光度は30%減少した。   50 microliters of a solution of salvianolic acid B in PBS (1 milligram / 2.5 milliliters) is placed in the center 16 wells of a 96-well plastic plate, and each 0.2% alpha carotene, Beta-carotene, lycopene, lutein, flavonoid, catechin, resaveratrol, isoflavone, vitamin A, vitamin E, selenium, zinc, coenzyme Q10, PBS solution of glutathione or enzogenol or PBS solution without antioxidant Each liter was added and heated at 80 degrees Celsius for 72 hours, and the absorbance of the solution in the wells before and after heating was measured at 286 nanometers. The absorbance at 286 nanometers of the solution of salvianolic acid B to which the antioxidant was added did not change before and after heating, but the absorbance of the solution of salvianolic acid B to which no antioxidant was added decreased by 30%.

実施例3において、実施例1で得られたラット神経細胞塊の代わりに、正常ヒト神経前駆細胞(Cambrex社製)1バイアルを用い、実施例3と同様の操作を行い、実施例4から実施例10までにおいて、ラット神経幹細胞の代わりに、購入した正常ヒト神経前駆細胞の増殖細胞を用い、実施例4から実施例10までと同様の操作を行い、正常ヒト神経前駆細胞もラット神経幹細胞と同様に、無血清培地中でサルビアノール酸Bにより増殖し、血清培地中で神経細胞とアストロサイトに分化することを確認した。   In Example 3, instead of the rat nerve cell mass obtained in Example 1, 1 vial of normal human neural progenitor cells (manufactured by Cambrex) was used, and the same operation as in Example 3 was performed. In Example 10 up to, instead of rat neural stem cells, purchased proliferating cells of normal human neural progenitor cells were used, and the same operation as in Example 4 to Example 10 was performed. Similarly, it was confirmed that the cells grew with salvianolic acid B in a serum-free medium and differentiated into neurons and astrocytes in the serum medium.

アルツハイマー病に対する薬効評価。日本語で読み書きができ、自分の意志を医者に伝えることが可能であるがアルツハイマー病の可能性ありという臨床診断を受けている患者で、サルビアノール酸Bナトリウムに過敏症の既往歴がなく、腎機能と肝代謝が低下している疑いがなく、かつ妊娠または妊娠している可能性のある人および授乳婦以外の人に対して、下記ミニメンタルステート試験を行う。なお、患者は重症度の指標が25以下であることを確認し、重症度の指標が25以上の患者はいる場合は、重症度の指標が25以下である患者と入れ替える。また、測定前4ヶ月以内に治験薬を使用していた患者は除外する。また、シメチジン、プロプラノロール等親油性6遮断剤やクロニジン、抗コリン作動薬、および抗コリン活性を有する抗うつ剤、神経弛緩剤、推定認識力増強物質および中枢神経刺激物質、または半減期が長いベンゾジアゼピンは投与を禁止する。   Efficacy evaluation for Alzheimer's disease. A patient who can read and write in Japanese and can communicate his will to the doctor but has a clinical diagnosis that Alzheimer's disease may be present. There is no history of hypersensitivity to salivanolate B sodium, The following mini-mental state test is conducted on non-lactating and non-lactating persons who are suspected of having decreased renal function and hepatic metabolism and who are pregnant or may be pregnant. The patient confirms that the severity index is 25 or less. If there is a patient whose severity index is 25 or more, the patient is replaced with a patient whose severity index is 25 or less. Also exclude patients who were using the study drug within 4 months prior to the measurement. In addition, lipophilic 6-blockers such as cimetidine and propranolol, clonidine, anticholinergics, antidepressants with anticholinergic activity, neuroleptics, putative cognitive enhancers and central nervous stimulators, or benzodiazepines with a long half-life Prohibits administration.

ミニメンタルステート試験の内容:見当識(1.今の年は?1点、季節は?1点、曜日は?1点、日付は?1点、月は?1点、2.私たちが今いる県の名前は?1点、郡の名前は?1点、市/町の名前は?1点、階数は?1点、は?1点、住所/建物の名前は?1点)、記銘力(3.医師が3つの物の名前を書く秒かけて言う。医師が言った後で次に患者に3つ全部の名前を尋ねる。患者が3つ全てを正しく言えるまで答えを繰返させる。3点)、注意と計算(4.100から続けて7を引かせる。正しい答え1つにつき1点与える。5回答えたところで終える。5点)、想起(5.質問3で覚えた3つの物の名前を尋ねる。正しい答え1つにつき1点与える。3点)、言語(6.医師が鉛筆と時計を指す。患者に医師が指した物の名前を言わせる。2点、7.患者に「いいえ、もし、そして、しかし」と言わせる。1点、8.患者に3段階の命令を与え、それにしたがってもらう。「右手で紙をつまみ上げてください。紙を半分に折ってください。紙を机の上に置いてください。」3点、9.患者に次の指示を読ませ、それにしたがってもらう。「目を閉じてください。」1点、10.患者に自由に1つの文章を書いてもらう。文章には守護つと目的語1つを含み、しかも意味をなしている必要がある。得点には書字の誤りは考慮しない。1点、11.1辺が約5センチメートルの2つの五角形が1頂点だけ重なった図形を見せ、患者に書き写させる。全ての角および角度が保たれており、しかも交わった領域が四角形をなしていれば1点をあたえる。1点)、合計30点。   Contents of the mini-mental state examination: Orientation (1. Current year? 1 point, season? 1 point, day of the week? 1 point, date? 1 point, month? 1 point, 2. We are now The name of the prefecture is 1 point, the name of the county is 1 point, the name of the city / town is 1 point, the floor is 1 point, 1 point, 1 point, the address / building name is 1 point) Ingenuity (3. The doctor will write the names of the three things in seconds. After the doctor says, ask the patient for all three names. Repeat the answer until the patient says all three correctly. .3 points), attention and calculation (4.100, then continue to subtract 7. Give 1 point for each correct answer. Finish after 5 answers. 5 points), Recall (5. Ask for the name of the object, give one point for each correct answer, 3 points), language (6. Doctor points to pencil and watch. Tell the patient the name of the object the doctor points to. 2 points, 7. Ask the patient to say “No, if, but,” 1 point, 8. Give the patient a three-step command and follow them, “Pick up the paper with your right hand. Fold the paper in half.Place the paper on the desk. ”3 points, 9. Ask the patient to read the following instructions and follow them:“ Close your eyes. ”1 point, 10. Ask the patient to write one sentence freely, the sentence must contain a guardian and one object, and it must make sense, and the score does not take into account typographical errors. Show a figure with two vertices of one side approximately 5 centimeters overlapped by one vertex and let the patient transcribe it.If all corners and angles are preserved and the intersecting area is a rectangle, 1 1 point), a total of 30 points.

医師の管理下に被験者にサルビアノール酸Bナトリウム2ミリグラム錠を1日2回、6ヶ月間投与する。6ヵ月後にミニメンタルステート試験を行う。ミニメンタルステート試験によりサルビアノール酸Bナトリウム投与による見当識、記銘力、注意と計算、想起、言語の改善を確認できる。   Under the supervision of a doctor, a subject is administered 2 milligrams of sodium salvianolate B twice a day for 6 months. A mini-mental state test will be conducted after 6 months. Mini-mental state test confirms orientation, writing ability, attention and calculation, recall, and language improvement by administration of sodium salvianolate B.

実施例27において、アルツハイマー病が疑われる患者の代わりに、パーキンソン病、脳外傷、脳梗塞または脳血管性痴呆が疑われる患者に対しても、実施例27と同様な薬効評価を行うことができる。   In Example 27, instead of a patient suspected of Alzheimer's disease, the same efficacy evaluation as in Example 27 can be performed on a patient suspected of Parkinson's disease, brain injury, cerebral infarction or cerebrovascular dementia. .

本発明の神経幹細胞増殖剤、神経幹細胞増殖方法、神経幹細胞含有液、神経幹細胞含有液含有治療剤および神経幹細胞増殖剤を含有し、神経幹細胞増殖作用機序による治療剤は、種々の産業に利用可能性があるが、特に、医療においては、神経幹細胞増殖作用機序による治療剤の2剤は神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤として、またはその有効成分として、またはその製造方法として適用される。   The neural stem cell proliferating agent, neural stem cell proliferating method, neural stem cell-containing liquid, neural stem cell-containing liquid-containing therapeutic agent and neural stem cell proliferating agent of the present invention are used in various industries. Although there is a possibility, especially in medicine, two therapeutic agents based on the mechanism of neural stem cell proliferation are caused by degeneration, decrease, cell death, injury, or loss of function or loss of tissues or organs due to exclusion It is applied as a therapeutic agent for diseases, as an active ingredient thereof, or as a production method thereof.

サルビアノール酸Bの立体構造式。構造式中で三角形状の太い実線ないし一部が太い実線で示す結合は紙面の上に突き出た結合を表し、点線で示す結合は紙面の下に突き出た結合を表す。The three-dimensional structural formula of salvianolic acid B. In the structural formula, a triangle-shaped thick solid line or a part of a solid line indicated by a thick solid line represents a bond protruding above the paper surface, and a bond indicated by a dotted line represents a bond protruding below the paper surface. 実施例5において、0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bにより増殖したスプラグ・ダウレイ(SD)ラット脳の神経幹細胞のネスチンに対するインドカルボシアニン(Cy3)標識標本の共焦点レーザー走査顕微鏡写真(倍率100倍)。写真中央の明るい部分がネスチン陽性部分である。In Example 5, a confocal laser scanning photomicrograph (magnification of indocarbocyanine (Cy3) -labeled specimen against nestin of neural stem cells of Sprague Dawley (SD) rat brain grown with 0.035 micromolar salvianolic acid B 100 times). The bright part in the center of the photo is the nestin positive part. 実施例4と6において、0.035マイクロモル濃度のサルビアノール酸Bを加えた群(実験群)と加えない群(対照群)の6日間培養前(実施例4)と培養後(実施例6)の神経幹細胞の細胞賦活評価試験値(MTTアッセイ)。縦軸は570ナノメーターにおける吸光度(OD)を示す。In Examples 4 and 6, the group added with 0.035 micromolar salvianolic acid B (experimental group) and the group not added (control group) before 6 days of culture (Example 4) and after culture (Examples) 6) Neural stem cell activation evaluation test value of 6) (MTT assay). The vertical axis represents the absorbance (OD) at 570 nanometers.

Claims (7)

サルビアノール酸Bおよびその薬学的に許容することのできるそれらの塩ならびにそれらの水和物から選ばれる化合物を有効成分とすることを特徴とする神経幹細胞増殖剤。  A neural stem cell proliferating agent comprising as an active ingredient a compound selected from salvianolic acid B and pharmaceutically acceptable salts thereof and hydrates thereof. 請求項1に記載する化合物を細胞培養液中に投与することを特徴とする細胞培養液中での神経幹細胞増殖方法。  A method for proliferating neural stem cells in a cell culture medium, comprising administering the compound according to claim 1 into the cell culture medium. 血清、塩基性繊維芽細胞増殖因子および神経成長因子を含まない細胞培養液を用いることを特徴とする請求項2に記載する神経幹細胞増殖方法。  3. The method for proliferating neural stem cells according to claim 2, wherein a cell culture solution not containing serum, basic fibroblast growth factor and nerve growth factor is used. 請求項1に記載する神経幹細胞増殖剤を有効成分とし、当該有効成分の神経幹細胞増殖作用によることを特徴とする、神経細胞の退化、減少、細胞死、傷害、除外による組織や臓器の機能低下または喪失により発症する疾病の治療剤。  Decreased function of tissues and organs due to neuronal degeneration, reduction, cell death, injury, exclusion, characterized by comprising the neural stem cell proliferating agent according to claim 1 as an active ingredient, and the neural stem cell proliferating action of the active ingredient Or a therapeutic agent for diseases caused by loss. サルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする請求項1に記載する神経幹細胞増殖剤。  The antioxidant according to claim 1, wherein at least one antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than salvianolic acid B, sulfite, and vitamin C is added as an additive. Neural stem cell proliferating agent. サルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする請求項2または3に記載する神経幹細胞増殖方法。  4. An antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than salvianolic acid B, sulfite, and vitamin C is added as an additive. The neural stem cell proliferation method described. サルビアノール酸Bと亜硫酸塩とビタミンC以外の薬学的に許容することのできる抗酸化剤から選ばれる抗酸化剤を少なくとも1種類を添加剤として添加することを特徴とする請求項4に記載する神経幹細胞増殖作用機序による治療剤。  5. The antioxidant according to claim 4, wherein at least one antioxidant selected from pharmaceutically acceptable antioxidants other than salvianolic acid B, sulfite, and vitamin C is added as an additive. A therapeutic agent based on the mechanism of proliferation of neural stem cells.
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