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JP4927319B2 - 高密度カーボンナノチューブフィルムまたはパターンを用いたバイオチップの製造方法 - Google Patents
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高密度カーボンナノチューブフィルムまたはパターンを用いたバイオチップの製造方法 Download PDF

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Description

本発明は、化学的な作用基が露出された高密度のカーボンナノチューブ(carbon nanotube:CNT)フィルム、またはパターンに標的バイオ物質と結合するバイオリセプターが化学的または物理化学的に結合されているバイオチップ、およびその製造方法に関する。
CNTとは、地球上に多量に存在する炭素からなる炭素同素体であり、一つの炭素が他の炭素原子と六角形の蜂の巣柄に結合されてチューブ形状になっている物質であって、チューブの直径がナノメートル(nm=10億分の1メートル)水準の極めて小さな領域の物質である。CNTは、優秀な機械的特性、電気的選択性、優れた電界放出特性、高効率の水素貯蔵媒体特性などを有しながら、現存する物質の中で欠陷がほとんどない完璧な新素材として知られている。
CNTは、力学的強固性と化学的安全性に優れ、理想的な一次元(1D)の 半導体または金属の性質を持つ“クワァントム ワイアー”と大きい外見上の比率を持ち、平板表示素子、トランジスター、エネルギー貯蔵体などの素材とナノサイズの各種センサーへの応用性が非常に高い。
前記特性をより多様に応用するために、単一壁CNTは強酸を用いてナノチューブを欠片に切りとった。このように切られたCNTは、オープンにされたチューブ末端、及び側壁の一部に、主に−COOH化学的な作用基を有する。このような化学的な作用基を用いて、多様な物質を化学的に結合してCNTの性質を改質することもあった。さらに化学的機作によって、CNTの作用基を−SH基に置き換えた後、金の表面にパターン化した報告(Nan,X.et al., J. Colloid Interface Sci.,245:311−8, 2002)と、静電気的方法を利用してCNTを基質に固着させた報告とがある(Rouse,J.H.et al.,Nano Lett.,3:59−62, 2003)。しかし、前者はCNTの表面密度が低く結合力が弱いという短所を持ち、後者は選択的に表面に固定するパターニング方法を適用することができないという致命的な短所を持っている。したがって、高い密度を持つ新しい形状の表面固定方法の開発が切実に要求されている。
最近、 CNTにバイオ物質を固定した上で、CNTの電気化学的な変化を利用して蛋白質−蛋白質及び蛋白質−リガンドの間の反応を検出する研究が進められている(Dai,H.et al.,ACC.Chem.Res.,35:1035−44,2002;Sotiropoulou,S.et al.,Anal.Bioanal.Chem.,375:103−5, 2003;Erlanger,B.F.et al.,Nano Lett.,1:465−7, 2001;Azamian,B.R.et al.,JACS,124:12664−5,2002)。蛋白質−リガンド反応として代表的な例としては、アビジン−ビオチン反応が挙げられるが、Starなどは、高分子に処理された基質上にCNTを用いてチャンネルを形成した後、電気化学的な方法でストレブトアビジンの結合を測定した(Star,A.et al.,Nano Lett.,3:459−63,2003)。
バイオチップとしてCNTが注目される理由は、第一、ラベリングが不要であり、第二、信号の変化に非常に敏感であり、第三、蛋白質の変形なしに水溶液上で反応を行うことができるからである。新しいナノ物質と生物学的システムの結合により、疾病診断(遺伝病)、プロテオミクス、ナノバイオ技術分野で重要なヒューザン技術が創出されるであろう。
より速くて安価なバイオチップを開発するために、最近DNA混成化感知技術について多くの研究が行われている。DNAの混成化を感知するための多様なラベリング技術が開発された。DNAチップでDNA混成化を効率的に検出するためには、混成化効率を高めると共に非特異的結合による背景を除去し得る効果的な表面処理が必要である。よって、表面処理されたDNAチッププラットフォームを作るために多くの研究が行われて来た(Rogers,Y.et al., Anal.Biochem.,266:23−30, 1999;Hu,J.et al.,Nuc.Acid.Res.,29:106−10, 2001)。また、 DNA混成化検出のための多様な方法が模索されたが、その方法としてはスキャン分析方法、比色分析方法、ナノ粒子を用いた方法、電気化学を用いた方法などが挙げられる(Taton,T.A.et al.,Science,289:1757−60,2000;Alexandre,I.et al.,Anal.Biochem.,295:1−8,2001;Cai,H.et al.,Analyst.,127:803−8,2002;Cai,H.et al.,Anal.Bioanal.Chem.,375:287−93,2003)。
一方、 CNTを生命工学分野で応用する事例が最近多く登場している。グルコースセンサー、蛋白質の検出、特定DNA配列の検出(Sotiropoulou,S.et al.,Anal.Bioanal.Chem.,375:103−5,2003;Chen,R.J.et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,100:4984−9,2003;Cai,H.et al.,Anal.Bioanal.Chem.,375:287−93,2003)などのバイオチップに対するCNTの応用可能性が提示されている。CNTを基盤とした多層からの生物分子検索は、表面積が広くて電気伝導度に優れていて、DNAのような生物分子が固定される量が増え、生物分子に対する検出敏感度が増大できる。
現在、バイオチップから反応結果を検出する最も普遍的な方法としては、既存の蛍光物質と同位元素を利用する方法であるが(Toriba,A.et al.,Biomed.Chromatography:BMC.,17:126−32,2003;Syrzycka,M.et al.,Anal.Chim.Acta,484:1−14,2003;Grow,A.E.et al.,J.Microbio.Meth.,53:221−33,2003)、より容易で正確に、電気的または電気化学的信号を測定し得る新しい方法が試され、これによりCNTという新素材の必要性がさらに高まっている。
高密度のCNTマルチレイヤを作ってその上にDNAを固定した後、相補的に結合するDNAを検出する方法は、ゲノム分析、突然変異検索、病原性菌診断などに有用である。PNA(peptide nucleic acid:DNA類似体)を単一壁CNTに位置特異的に固定し、プローブDNAと相補的に結合することを検出した報告がある(Williams,K.A.et al.,Nature, 420:761, 2001)。また、化学的な方法を用いてオリゴヌクレオチドをCNTアレーに固定し、グアニン酸化方法を用いてDNAを検出した例もある(Li,J.et al.,Nano Lett.,3:597−602,2003)。しかし、これらはCNTをバイオチップの作製及び開発に適用したものではない。
最近、CNTを用いた高用量のバイオ分子検出センサー(WO 03/016901 A1)が知られている。基質上に化学的連結体を使用して複数のCNTを配列し、様々な種類のリセプターを結合させて得られるマルチチャンネル型バイオチップに関するものであるが、比較的周辺環境の変化に弱いという欠点がある。
よって、本発明者らはアミン基が露出された基質上に化学的結合を用いてCNTを反複的に積層して、化学的な作用基が露出された高密度のCNTフィルムまたはパターンを形成した後、前記CNTフィルムまたはパターンにバイオリセプターを化学的に結合させるか、または非特異性結合を防止するための化学物質を物理的に吸着してCNT表面を処理した後、バイオリセプターを化学的に結合させてCNT−バイオチップを製造する方法を着眼して本発明を完成するようになった。
WO 03/016901 A1 Nan,X.et al.,J.Colloid Interface Sci.,245:311−8,2002 Rouse,J.H.et al.,Nano Lett.,3:59−62,2003 Dai,H.et al.,ACC.Chem.Res.,35:1035−44,2002 Sotiropoulou,S.et al.,Anal.Bioanal.Chem.,375:103−5,2003 Erlanger,B.F.et al.,Nano Lett.,1:465−7,2001 Azamian,B.R.et al.,JACS,124:12664−5,2002 Star,A.et al.,Nano Lett.,3:459−63,2003 Rogers,Y.et al.,Anal.Biochem.,266:23−30,1999;Anal.Biochem.,266:23−30,1999 Hu,J.et al.,Nuc.Acid.Res.,29:106−10,2001 Taton,T.A.et al.,Science,289:1757−60,2000 Alexandre,I.et al.,Anal.Biochem.,295:1−8,2001 Cai,H.et al.,Analyst.,127:803−8,2002 Cai,H.et al.,Anal.Bioanal.Chem.,375:287−93,2003 Chen,R.J.et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,100:4984−9,2003 Toriba,A.et al.,Biomed.Chromatography:BMC.,17:126−32,2003;,2003 Syrzycka,M.et al.,Anal.Chim.Acta,484:1−14,2003 Grow,A.E.et al.,J.Microbio.Meth.,53:221−33,2003 Williams,K.A.et al.,Nature,420:761,2001 Li,J.et al.,Nano Lett.,3:597−602,2003 Kouwenhoven,L.,Science,275:1896−97,1997
本発明の目的は、基質上に化学的結合によって高密度に固定され、表面に化学的な作用基が露出されたCNTフィルム、前記CNTフィルム表面にバイオリセプターが付着されているCNT−バイオチップ、及びその製造方法を提供することにある。
本発明の他の目的は、望まれる位置に化学的結合によって反複的に積層された高密度のCNTパターンに、バイオリセプターが結合されているCNT−バイオチップ及びその製造方法を提供することにある。
本発明のまた他の目的は、前記CNT−バイオチップを用いて、バイオリセプターに結合するか反応する多様な標的バイオ物質を検出する方法を提供することにある。
前記目的を達成するため、本発明は、(a)表面にアミン基が露出された基質またはアミン基がパターン状に露出された基質とカルボキシル基が露出されたCNTを反応させ、前記アミン基と前記カルボキシル基間のアミド化反応によって基質表面にCNT単層または単層パターンを形成する段階と;(b)前記CNT単層または単層パターンとジアミン系有機化合物を反応させて前記CNT単層上に有機アミン基を形成し、前記有機アミンとカルボキシル基が露出されたCNTとを反応させてCNTを積層する段階と;(c)前記(b)段階をn回繰り返してCNT層と有機アミン基とをn回交互に積層して、カルボキシル基が露出された高密度のCNTフィルムまたはパターンを形成する段階と;(d)前記カルボキシル基が露出された高密度CNTフィルムまたはパターンを前記カルボキシル基と結合する作用基と、アミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基を同時に有する化学物質で改質する段階と;を含む、表面にアミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基が露出された高密度CNTフィルムまたはパターンの製造方法を提供する。
本発明はまた、前記方法によって製造され、表面にアミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基およびハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基が露出している高密度CNTフィルムまたはパターンを提供する。
本発明はまた、前記CNTフィルムまたはパターンの表面に露出されたアミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基に、前記化学的な作用基と結合する作用基を有するバイオリセプターが化学的なまたは物理化学的結合によって固定されていることを特徴とするCNT−バイオチップ及びその製造方法を提供する。
本発明において、表面にアミノ作用基が露出された基質は、基質をアミノアルキルオキシランで処理して得ることができ、前記アミン基がパターン状に露出された基質は、アミン基が露出された基質にフォトレジストまたは有機超分子パターンを形成して得ることができる。このようなパターンにCNTを垂直または水平方向に積層または固定することができ、有機超分子のナノパターンである場合には、CNTを垂直方向に固定するのが望ましい。前記アミン基がパターン状に露出された基質は、半導体工程で慣用的に用いられるフォトリソグラフィ方法を利用して、アミン基が露出された基質にフォトレジストパターンを形成して得ることもでき、基質上にフォトレジストパターンまたは有機超分子パターンを形成した上で、アミノアルキルオキシランで処理して得ることもできる。
本発明において、カルボキシル基と結合する化学的な作用基はアミン基または水酸基であることが好ましい。また、バイオリセプターは、カルボキシル基、アミン基、水酸基、アルデヒド基、またはチオール基を有する酵素基質、リガンド、アミノ酸、ペプチド、蛋白質、DNA、RAN、PNA、地質、コパクターまたは炭水化物であることを特徴とする。標的バイオ物質は、バイオリセプターと反応するか結合して検出される標的役目を果たす物質であって、好ましくは蛋白質、核酸、抗体、酵素、炭水化物、地質またはその他生体由来の生物分子であり、さらに好ましくはDNAまたは蛋白質である。
本発明において、カルボキシル基と結合する作用基と、アミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基とを同時に有する化学物質は、HN−R−NH、HN−R−CHO、HN−R−OH,HN−R−SHまたはHN−R−Xであることを特徴とする。ここで、R、R、R及びRは独立的にC1−20である飽和炭化水素類、不飽和炭化水素類または芳香族有機基であって、Xはハロゲン元素である。
本発明はまた、前記CNT−バイオチップを用いることを特徴とするバイオリセプターと結合するか相互反応する標的バイオ物質の検出方法を提供する。
本発明はまた、バイオリセプターがDNAであることを特徴とするCNT−DNAチップ及び、前記CNT−DNAチップを用いることを特徴とするDNA混成化反応の検出方法を提供する。
本発明の「CNT−バイオチップ」という用語は、CNTパターンにバイオリセプターが化学的または物理化学的に結合されているものを包括する概念で、高密度CNTパターンまたはフィルムにバイオリセプターが化学的または物理化学的に結合(特に、アミド結合)されているバイオチップを含むと定義される。
本発明では、CNTを、化学的な作用基(アミン基)がコートされた固体基質上に化学的結合によって反復的に積層して、高い表面密度を有する、カルボキシル基が露出されたCNTパターンまたはフィルムを作製した後、これに、前記カルボキシル基と化学的に反応する作用基(アミン基、水酸基など)を有するバイオリセプターを付着させて多様な種類の標的バイオ物質を直接検出するか、電気化学的なまたは電気的な信号を利用して検出することができるCNT−バイオチップを作製した。
一方、前記カルボキシル基と結合する作用基を有しないバイオリセプターを結合させるためには、前記カルボキシル基が露出されたCNTフィルムまたはパターンを、前記カルボキシル基と結合する化学的な作用基(アミン基、水酸基など)と、目的バイオリセプターにある作用基(アミン基、水酸基、チオール基、アルデヒド基など)と結合する化学的な作用基とを同時に有する化学物質を使用して改質することができる。よって、ほとんどすべてのバイオリセプターを前記高密度CNTフィルムまたはパターンに化学的または物理化学的に結合させることができる。
例えば、チオール基を有するバイオリセプターを付着させるためには、カルボキシル基と結合する化学的な作用基とチオール作用基とを同時に有する化学物質(例: NN2−R2−SH)で改質し、チオール作用基をCNTフィルムまたはパターンの表面に露出させた後、S−S結合によって前記チオール基を有するバイオリセプターを付着させることができる。
本発明によれば、CNTを、一定の位置に置かれていた触媒から成長させて完成した従来技術の限界を脱して、所望の位置に所望の模様のパターンを形成することができる。本発明は化学的な方法の長所を最大限利用できるように、高分子や有機超分子を用いて基板のパターンを形成することで前記従来技術の短所を改善した。
本発明によれば、CNTまたはCNTチップ上に置かれた標的バイオ物質を含む液相にそれぞれ電荷を印加できるように、少なくとも一つの伝導性ナノワイヤを介して電源に接続することができる。この際、伝導性ナノワイヤは従来技術を利用して単一原子で形成することができ(Kouwenhoven,L.,Science,275:1896−97,1997)、伝導性金属で一定のパターンを形成した上でイオン注入やスパッタリングを利用して電流が流れる導線を取り付けることができる。
本発明は、アミン基の露出された基質上にカルボキシル基の露出されたCNTをアミド結合によって反復的に固定して得られた高密度CNTフィルム及び、前記CNTフィルム表面に存在する化学的な作用基とバイオリセプターとを化学的または物理化学的に結合させたバイオチップを提供するという効果がある。また、本発明は、基質上の所望位置にカルボキシル基の露出されたCNTを積層して得られた高密度CNTパターンに、バイオリセプターを化学的に結合させたバイオチップを提供するという効果がある。
本発明によれば、カルボキシル基の露出されたCNTパターン(またはフィルム)または前記カルボキシル基を多様な化学的な作用基で改質したCNTパターン(またはフィルム)に、多様なバイオリセプターを化学的または物理化学的に結合させることで、様々な種類のCNT−バイオチップを作製することができる。また、CNTフィルムの表面に化学的な作用基が豊富で均一に存在していて、CNTフィルム表面に高密度で均一にバイオリセプターを結合させたCNT−バイオチップを作製することができ、CNT表面の化学的な作用基は化学的機作によって望まれる多様な作用基により改質することができる。
特に、本発明に係るCNT−DNAチップを用いたDNA混成化反応の蛍光を測定するとき、不必要な信号を除去することで、極めて優れた結果を得ることができる。このようなCNT−DNAチップはゲノム分析(genotyping)、突然変異検索(mutation detection)、病原性菌診断(pathogen identification)などに有用である。
以下に実施例を用いて本発明について詳細に説明する。これら実施例はただ本発明をより詳しく説明するためで、本発明の範囲がこれら実施例に制限されないということは当業界では通常の知識を有している者において明らかである。


カルボキシル基が露出されたCNTの製造
本発明で用いられるCNTは特に限定するのではなく、市販の製品を購入して用いることはもとより、通常の方法によって製造して用いることもできる。純粋なCNTを本発明に用いるためにはCNTの表面及び/または両末端をカルボキシル化する必要がある。
CNTを硝酸に浸して90℃で45時間還流させた上で遠心分離した。残余物を蒸留水で洗浄した後0.2μmフィルターで濾過した。精製されたCNTは酸溶液(硝酸と硫酸の混合溶液)が入っているソニケイターで16時間還流させ、切断された。切断されたカルボキシル基が露出されたCNTは0.1μmフィルターで濾過して一定の大きさのCNTを選別した。
アミン基が露出された基質の準備
本発明では、シリコーン、ガラス、溶融シリカ、プラスチック、 PDMS(ポリジメチルシロキサン)などの基質表面上にアミンアルキルオキシランで変形してアミン基を基質表面に露出させて使用したが、市販の、アミンで表面処理された基質を購入して使用することも可能である。
表面にカルボキシル基が露出された高密度CNTフィルムの製造
実施例1で準備したカルボキシル基が露出されたCNTを、実施例2で準備したアミン基が露出された基質と反応させ、前記カルボキシル基と前記アミン基間のアミド結合によって基質上にCNT単層を形成した(図1(a))。
次に、基質にアミド結合で結合されたCNTと、二重アミン作用基を有するジアミン系有機化合物とを反応させ、カルボキシル基が露出されたCNTを、前記ジアミン系有機化合物の一側のアミン基と反応させて、アミド結合の形成によってCNTを積層した(図1(b))。
その次に、カルボキシル基が露出されたCNTとジアミン係有機化合物との化学反応を反復的に行い、CNT層と有機ジアミン層がn回交互に積層され、表面にカルボキシル基が露出された高密度CNTフィルムを製造した(図1(c))。
本発明において、ジアミン系有機化合物としてはHN−R−NHの化学式を有する物質を使用することができる。ここで、 RはC1−20である飽和炭化水素類、不飽和炭化水素類または芳香族有機基である。
前記アミド結合を促進するために、カップリング剤としてHAMDU(O−(7−アザベンゾトリアゾール−1−イル)−1,3−ジメチル−1,3−ジメチレンウロニウム ヘキサフルオルリン酸),DCC(1,3−ジシクロヘキシル カルボジミド),HAPYU(O−(7−アザベンゾトリアゾール−1−イル)−1,1:3,3−ビス(テトラメチレン)ウロニウム ヘキサフルオルリン酸)、HATU(O−(7−アザベンゾトリアゾール−1−イル)−1,1:3,3−テトラ メチルウロニウム ヘキサフルオルリン酸),HBMDU(O−(ベンゾトリアゾール−1−イル)−1,3−ジメチル−1,3−ジメチレンウロニウム ヘキサフルオルリン酸)、HBTU(O−(ベンゾトリアゾール−1−イル)−1,1,3,3−テトラメチルウロニウム ヘキサフルオロ ホスファート)などを使用することが好ましく、ベースとしてDIEA(ジイソプロピルエチルアミン)、TMP(2,4,6−トリメチルピリジン)、NMI(N−メチルイミダゾール)などを使用することが好ましい。
また、水を溶媒として使用する場合は、カップリング剤としてEDC(1−エチル−3−(3−ジメチルアミン−プロピル)アルボジイミド 塩酸塩)を使用し、カップリング剤の補助制としてNHS(N−ヒドロキシスクシイミド)、NHSS(N−ヒドロキシスルホスクシンイミド)などを使用することが望ましい。
本実施例では、カップリング剤としてHATUを使用し、ベースとしてDIEAを使用した。前記カップリング剤は、−COOH作用基と−NH作用基とのアミド結合(−CONH−)を促進する役目をし、前記ベースは、カップリング剤のアミド結合を形成する時にその効率を高める役割を果たす。
アミン基がパターン状に露出された基質及びそれを用いた高密度CNTパターンの形成
基質上にパターン状のアミン基を露出させるために2つの方法を使用することができる。第1方法は、シリコーン、ガラス、溶融シリカ、プラスチック、PDMS(ポリジメチルシロキサン)などの基質上に高分子、フォトレジストまたは有機超分子パターンを形成した後、前記パターンをマスクとしてアミノアルキルオキシランを表面に固定してアミン基を基質表面にパターン状に露出させる方法であり、第2方法は、基質表面をアミノアルキルオキシランで処理した後、高分子、フォトレジストまたは有機超分子パターンを形成してアミン基を基質表面にパターン状に露出させる方法である。前記アミノアルキルオキシランとしてはアミノプロピルトリエトキシシランを使用することが好ましい。
前記アミン基がパターン状に露出された基質を利用して、前記実施例3と同様の方法を繰り返して、表面にカルボキシル基が露出された高密度CNTパターンを形成した。
前記カルボキシル基が露出されたCNTパターンは、前記カルボキシル基と応じる化学的な作用基(アミン基、水酸基など)および、目的バイオリセプターが持つ作用基と結合する化学的な作用基(アミン基、水酸基、チオール期、アルテヒドギなど)を同時に有する化学物質を用いて改質することができる。前記改質に用いられる化学物質としては、HN−R−NH、HN−R−CHO、HN−R−OH,HN−R−SHまたはHN−R−Xであることを特徴とする。ここで、R、R、R、R及びRは独立的にC1−20である飽和炭化水素類、不飽和炭化水素類または芳香族有機基であって、Xはハロゲン元素である。
CNTフィルムにDNAを固定したDNAチップの作製
実施例3で作製されたカルボキシル基が露出されたCNTフィルムにDNAのアミン基を結合させてCNT−DNAチップを作製した(図2)。本実施例では、前記カルボキシル基とアミン基とのアミド結合のためにカップリング剤としてEDCを使用し、ベースとしてNHSを使用した。また、本実施例では、末端にアミン基を有する下記配列1のオリゴヌクレオチドを使用してCNT−DNAチップを作製した。
配列1:5’−TGT GCC ACC TAC AAG CTG TG−3’
CNTフィルム上のDNAの存在は、すべてのDNAがリン酸基を含有している点を利用して、リン原子に対するXPS(X‐ray photoelectron spectroscope)スペクトラムによって確認された(図4)。図4に示すように、XPS表面分析からリンが検出され、これからCNT表面にDNAが結合されていることが確認された。
本実施例ではまた、実施例3で作製された、アミン基が露出されたCNTフィルムにDNAのカルボキシル基を結合してCNT−DNAチップを作製した(図3)。本実施例では、前記カルボキシル基とアミン基のアミド結合のためにカップリング剤としてEDCを使用し、カップリング剤の補助制としてNHSを使用した。また、本実施例では、末端にカルボキシル基を持つ前記配列1のオリゴヌクレオチドを使用してCNT−DNAチップを作製した。
CNTパターンにDNAを固定したDNAチップの作製
本実施例では、実施例4で作製されたカルボキシル基が露出されたCNTパターンにDNAのアミン基を結合させてDNAチップを作製した(図2)。他の方法として、実施例4で作製されたカルボキシル基が露出されたCNTパターンを、両側にアミノ作用基を有するジアミン系有機化合物で改質してアミノ作用基を露出させた後、前記アミン基にDNAのカルボキシル基を結合させてDNAチップを作製することもできる(図3)。
CNT−DNAチップを用いた混成化反応分析
実施例6で作製されたDNAチップを混成化チェンバー(hybridization chamber)の中に置いた後、CNTが固定された部位に混成化溶液を落とし、その上部をカバースライドで覆った。この時、混成化溶液は、32μlの相補的な塩基配列のオリゴヌクレオチドを有する溶液に入れ、最終濃度3XSSC(0.45M NaCl、0.045M クエン酸ナトリウム)及び0.3%のSDS(ドデジル硫酸ナトリウム)になるように作って、総容積を40μlとした。前記相補的なオリゴヌクレオチド塩基配列は、末端にFITC(フルオレセイン イソチオシアネート)が付着された下記配列2を使用した。
配列2:5’‐CAC AGC TTG TAG GTG GCA CA‐3’
二つのオリゴヌクレオチド筋の非特異的結合を除去するために、この溶液を100℃で2分間放置した後、12000rpmで2分間遠心分離した。混成化用チェンバー内での混成化溶液の乾燥を防止するために、チェンバー両側の凹んでいるところに3XSSC(0.45M NaCl、0.045M クエン酸ナトリウム)を30μlずつ入れた後、チェンバー蓋を閉じ55℃恒温槽で10時間混成化した。
混成化反応は、配列2のオリゴヌクレオチド末端にラベリングされているFITCを用いた蛍光イメージを用いて検出した。蛍光イメージは、スキャンアレイ5000(ScanArray 5000 Packard BioScience,BioChip Tecnologies LLC)共焦点微細顕微鏡とクォントアレイ・マイクロアレイ分析プログラム(QuantArray Microarray Analysis Software)を利用して得た(図5)。図5の、(a)はDNAを結合させる前の、カルボキシル基が露出されたCNTが高密度に固定された基質の蛍光イメージを示す図であり、(b)は相補的なDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図であり、(c)は相補的ではないDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図である。前記CNT−DNAチップに相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを混成化反応させた時の蛍光が鮮やかで均一に示されるのが確認された。{図5(b)}。しかし、オリゴヌクレオチドが固定されてないCNTパターンである場合{図5(a)}と、前記CNT−DNAチップに、相補的ではない塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを混成化した場合{図5(c)}とには、全く蛍光が示されなかった。この結果から非特異的な反応がほとんど起こらないことが確認された。
また、実施例5で作製されたCNT−DNAチップを用いて前記と同様の混成化反応を行った(図6)。図6(a)はDNAを結合させる前の高密度CNTフィルムの蛍光イメージを示す図であり、図6(b)の(1)は相補的なDNAで混成化した場合の蛍光検出結果であり、(2)は相補的ではないDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図である。CNTフィルムに結合されたオリゴヌクレオチドに、相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを混成化反応させた場合には、蛍光が鮮やかで均一に示されることが確認された{図6(b)の(1)}。しかし、オリゴヌクレオチドが固定されていないCNTフィルムである場合{図6(a)}と、CNTフィルムに結合されたオリゴヌクレオチドに、相補的ではない塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを混成化した場合{図6(b)の(2)}とには、全く蛍光が示されないことが確認された。この結果から非特異的反応がほとんど起らないことが確認された。
本実施例ではまた、実施例5で作製されたCNT−DNAチップを用いて上記のように同一の混成化反応を行った(図7)。図7の(a)は相補的なDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図であり、(b)は相補的ではないDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図である。図7に示すように、混成化されたものと混成化されてないものとを確実に区別することができた。
アミン基が露出された基質上に、カルボキシル基が露出されたCNTをアミド化反応で積層して高密度CNTフィルムを製造することを示す概略図である。 カルボキシル基が露出されたCNTパターン、またはフィルムにアミン基を有するDNAを結合させて作製したCNT−DNAチップに、相補的なDNAが加水分解されることを示す図である。 カルボキシル基が露出されたCNTパターン、またはフィルムをアミン基で改質した後、カルボキシル末端基を有するDNAを結合させて作製したCNT−DNAチップに、相補的なDNAが 加水分解されることを示す図である。 DNAが化学的に結合されたCNTパターン、またはフィルム表面のリンに対するXPSスペクトラムである。 高密度CNTパターンにDNAを固定したDNAチップを用いた混成化反応結果を示す図であって、(a)はDNAを結合する前の、カルボキシル基が露出されたCNTが高密度に固定された基質の蛍光イメージを示す図であり、(b)は相補的なDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図であり、(c)は相補的ではないDNAで混成化した場合の蛍光検出結果を示す図である。 高密度CNTフィルムにDNAを固定したDNAチップを用いた混成化反応結果を示す図であって、(a)はDNAを結合する前の高密度CNTフィルムに対する蛍光イメージを示す図であり、(b)は混成化したものに対する蛍光検出結果を示す図であり、(1)は相補的なDNAで混成化した場合を示し、(2)は相補的ではないDNAで混成化反応した場合を示す。 アミン基で改質された高密度CNTフィルムに、DNAを固定したDNAチップを用いた混成化反応結果を示す図であって、(a)は相補的なDNAを混成化した場合の蛍光検出結果を示す図であり、(b)は相補的ではないDNAを混成化した場合の蛍光検出結果を示す図である。

Claims (5)

  1. 表面にアミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基が露出された高密度CNTフィルムまたはパターンに前記化学的な作用基と結合する作用基を有するバイオリセプターを化学的または物理化学的に結合させることを特徴とするCNT−バイオチップの製造方法であって、
    (a)〈1〉基質をアミノアルキルオキシシランで処理して得られる表面にアミン基が露出された基質;〈2〉基質をアミノアルキルオキシシランで処理して得られる表面にアミン基が露出され基質にフォトレジストパターンまたは有機超分子パターンを形成して得られる、アミン基がパターン状に露出された基質;または〈3〉基質上にフォトレジストパターンまたは有機超分子パターンを形成した上で、アミノアルキルオキシシランで処理して得られるアミン基がパターン状に露出された基質と
    カルボキシル基が露出されたCNTを反応させ、前記アミン基と前記カルボキシル基間のアミド化反応によって基質表面にCNT単層または単層パターンを形成する段階、
    (b)前記CNT単層または単層パターンと両末端にアミン基を有する有機化合物を反応させて前記CNT単層上に有機アミン基を形成し、前記有機アミンとカルボキシル基が露出されたCNTとを反応させてCNTを積層する段階、
    (c)前記(b)段階をn回繰り返してCNT層と有機アミン基とをn回交互に積層して、カルボキシル基が露出された、反複的に積層して高い表面密度を有する高密度のCNTフィルムまたはパターンを形成する段階および、
    (d)前記カルボキシル基が露出された高密度CNTフィルムまたはパターンをH2N-R1-NH2、H2N-R2-CHO、H2N-R3-OH、H2N-R4-SH及びH2N-R5-X(ここで、R1、R2、R3、R4及びR5は独立的にC1-20である飽和炭化水素類、不飽和炭化水素類または芳香族有機基であって、Xはハロゲン元素である)からなる群より選ばれる化学物質で改質する段階、及び
    (e)前記アミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基、及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基が露出された高密度CNTフィルムまたはパターンに前記化学的な作用基と結合する作用基を有するバイオリセプターを化学的または物理化学的に結合させる段階を含み;
    基質はシリコン、ガラス、溶融シリカ、プラスチックおよびポリジメチルシロキサンからなる群から選択された材質であることを特徴とする製造方法。
  2. 請求項1に記載の方法によって製造され、アミン基、アルデヒド基、水酸基、チオール基及びハロゲンからなる群から選ばれた化学的な作用基が露出された高密度CNTフィルムまたはパターンに前記化学的な作用基と結合する作用基を有するバイオリセプターを化学的または物理化学的な結合によって付着させることを特徴とするCNT−バイオチップ。
  3. バイオリセプターは酵素基質、リガンド、アミノ酸、ペプチド、蛋白質、DNA、RAN、PNA、脂質、または炭水化物であることを特徴とする請求項2に記載の製造CNT−バイオチップ。
  4. バイオリセプターはDNAであることを特徴とする請求項3に記載の製造CNT−バイオチップ。
  5. 請求項4に記載のCNT−バイオチップを用いることを特徴とするDNA混成化反応の検出方法。
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