Deprecated: The each() function is deprecated. This message will be suppressed on further calls in /home/zhenxiangba/zhenxiangba.com/public_html/phproxy-improved-master/index.php on line 456
JP5011520B2 - A novel human plasmacytoid dendritic cell line - Google Patents
[go: Go Back, main page]

JP5011520B2 - A novel human plasmacytoid dendritic cell line - Google Patents

A novel human plasmacytoid dendritic cell line Download PDF

Info

Publication number
JP5011520B2
JP5011520B2 JP2005234389A JP2005234389A JP5011520B2 JP 5011520 B2 JP5011520 B2 JP 5011520B2 JP 2005234389 A JP2005234389 A JP 2005234389A JP 2005234389 A JP2005234389 A JP 2005234389A JP 5011520 B2 JP5011520 B2 JP 5011520B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cell line
cells
cell
cal
test substance
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP2005234389A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2007044008A (en
Inventor
隆浩 前田
憲 上平
Original Assignee
国立大学法人 長崎大学
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 国立大学法人 長崎大学 filed Critical 国立大学法人 長崎大学
Priority to JP2005234389A priority Critical patent/JP5011520B2/en
Publication of JP2007044008A publication Critical patent/JP2007044008A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP5011520B2 publication Critical patent/JP5011520B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

本発明は、新規ヒト形質細胞様樹状細胞株に関する。詳しくは、本発明は、樹状細胞を用いる免疫応答の研究分野ならびに免疫疾患および癌の治療分野に関する。   The present invention relates to a novel human plasmacytoid dendritic cell line. Specifically, the present invention relates to the field of research on immune responses using dendritic cells and the field of treatment of immune diseases and cancer.

1994年以降、日本および欧米で、皮膚浸潤と骨髄浸潤を伴う急激で攻撃的な経過を特徴とするCD56リンパ腫の報告がなされてきた(非特許文献1および2を参照)。これらの報告に注目し、WHOはブルーブック(非特許文献3を参照)の中で、これらの腫瘍を芽球性NK(Natural Killer)細胞リンパ腫として記載している。その理由として、前記腫瘍の大多数がいわゆるNKマーカーであるCD56を発現し、皮膚生検で組織病理学的に診断されてきたからである。この腫瘍細胞の異常な免疫表現型的特徴に関する証拠が蓄積されつつある。即ち、この腫瘍細胞は、通常の骨髄球系およびリンパ球系のT細胞およびB細胞マーカーを欠き(細胞系列陰性「Lin」)、CD45RA、HLA−DR、CD4およびCD56が陽性である(非特許文献4および5を参照)。このため、臨床的、細胞形態学的、免疫学的研究の結果から、この腫瘍細胞は、NK細胞系列に無関係なCD4CD56悪性腫瘍と命名された。特に、2001年、フランスグループGEIL(非特許文献6を参照)は、これらの腫瘍と、樹状細胞(DCs)の1つのサブタイプであり機能的にタイプ2DCs(DC2s)に相当する形質細胞様樹状細胞(pDCs)との間の表現型的、分子的および機能的著しい類似性を明らかにし、pDCsがCD4CD56腫瘍細胞の正常なカウンターパートであることを示した(非特許文献7および8を参照)。 Since 1994, CD56 + lymphomas characterized by a rapid and aggressive course with skin and bone marrow infiltration have been reported in Japan and Europe and the United States (see Non-Patent Documents 1 and 2). Focusing on these reports, WHO describes these tumors as blastic NK (Natural Killer) cell lymphomas in the Blue Book (see Non-Patent Document 3). This is because the majority of the tumors express CD56, a so-called NK marker, and have been diagnosed histopathologically by skin biopsy. Evidence is accumulating about the abnormal immunophenotypic characteristics of this tumor cell. That is, the tumor cells lack normal myeloid and lymphoid T cell and B cell markers (cell lineage negative “Lin ”) and are positive for CD45RA, HLA-DR, CD4 and CD56 (non- (See Patent Documents 4 and 5). Therefore, from the results of clinical, cytomorphological and immunological studies, this tumor cell was named CD4 + CD56 + malignant tumor unrelated to the NK cell lineage. In particular, in 2001, the French group GEIL (see Non-Patent Document 6) is a subtype of these tumors and dendritic cells (DCs) and is functionally equivalent to type 2 DCs (DC2s). A significant phenotypic, molecular and functional similarity with dendritic cells (pDCs) was revealed, indicating that pDCs are normal counterparts of CD4 + CD56 + tumor cells (7). And 8).

DCsは、CD34造血幹細胞由来で、ナイーブT細胞を刺激し、かつ最初の免疫反応を開始する重要な抗原提示細胞である(非特許文献9を参照)。DCサブセットの定義については異論があるが、ヒト末梢血は、主に骨髄系前駆細胞およびpDCの2種の細胞群(それぞれ表現型的にはLinHLA−DRCD11cCD123およびLinHLA−DRCD11cCD123CD4CD56で特徴付けられる)を含むことが一般に受け入れられている(非特許文献7、10および11を参照)。これらのDC前駆細胞は血管外作用部位に移動し、成熟DCに分化し、DC1およびDC2としての役割を果たす(非特許文献12を参照)。CD40Lおよびインターロイキン3(IL−3)に依存するpDCsの成熟経路は、CD34幹細胞がpDC前駆細胞に分化するリンパ球前駆細胞へと分化し、pDC前駆細胞は、さらにDC2sへと成熟する(非特許文献13を参照)。他方、Lerouxら(非特許文献14を参照)は、21症例の細胞発生学的研究の知見に基づき、CD4CD56白血病細胞は、リンパ系拘束性前駆細胞よりむしろ未分化前駆細胞に由来すると仮説を立てている。 DCs are CD34 + hematopoietic stem cell-derived, important antigen-presenting cells that stimulate naive T cells and initiate the first immune response (see Non-Patent Document 9). Although there is controversy about the definition of the DC subset, human peripheral blood is mainly divided into two cell groups, myeloid progenitor cells and pDC (phenotypically Lin HLA-DR + CD11c + CD123 and Lin −, respectively). Including HLA-DR + CD11c - CD123 + CD4 + CD56 + ) (see Non-Patent Documents 7, 10 and 11). These DC progenitor cells migrate to the site of extravascular action, differentiate into mature DC, and serve as DC1 and DC2 (see Non-Patent Document 12). The maturation pathway of pDCs, which is dependent on CD40L and interleukin 3 (IL-3), differentiates into lymphocyte progenitors where CD34 + stem cells differentiate into pDC progenitors, which further mature into DC2s ( (Refer nonpatent literature 13). On the other hand, Leroux et al. (See Non-Patent Document 14) found that CD4 + CD56 + leukemia cells are derived from undifferentiated progenitor cells rather than lymphoid-restricted progenitor cells based on the findings of 21 cases of cytogenetic studies I have a hypothesis.

臨床的、形態学的、免疫学的研究の結果から、CD4CD56悪性腫瘍に相当する芽球性NK細胞リンパ腫は、新規の病態である。この疾患は、上述のように、先天性および適応性免疫において重要な役割を果たしているpDCs(以前は形質細胞様T細胞と呼ばれていた)に起因する可能性が指摘され、特に注目されている。しかし、この腫瘍細胞とpDCsの正確な関連性については未解明である。 From the results of clinical, morphological and immunological studies, blastic NK cell lymphoma corresponding to CD4 + CD56 + malignant tumor is a novel pathological condition. As noted above, this disease can be attributed to pDCs (formerly called plasmacytoid T cells) that play an important role in innate and adaptive immunity, and have received particular attention. Yes. However, the exact relationship between this tumor cell and pDCs remains unclear.

Adachi, M. et al., Am J Hematol. 1994, 47: 278-282Adachi, M. et al., Am J Hematol. 1994, 47: 278-282 Brody, JP. et al., Cancer 1995, 75: 2474-2483Brody, JP. Et al., Cancer 1995, 75: 2474-2483 Chan, JK. et al., Pathology and Genetics of Tumors of Hematopoietic and Lymphoid Tissues. Lyon, France: IARC Press; 2001: 214-215Chan, JK. Et al., Pathology and Genetics of Tumors of Hematopoietic and Lymphoid Tissues.Lyon, France: IARC Press; 2001: 214-215 DiGiuseppe JA. et al., Am J Surg. Pathol. 1994, 47: 278-282DiGiuseppe JA. Et al., Am J Surg. Pathol. 1994, 47: 278-282 Kameoka, J. et al., Am J Clin. Pathol. 1998, 110: 478-488Kameoka, J. et al., Am J Clin. Pathol. 1998, 110: 478-488 Chaperoi, L. et al., Blood 2001, 97: 3210-3217Chaperoi, L. et al., Blood 2001, 97: 3210-3217 Bene, MC. Et al., Semin. Hematol. 2003, 40: 257-266Bene, MC. Et al., Semin. Hematol. 2003, 40: 257-266 Feulliard, J. et al., Blood 2002, 99: 1556-1563Feulliard, J. et al., Blood 2002, 99: 1556-1563 Banchereau, J. et al., Nature 1998: 392: 245-252Banchereau, J. et al., Nature 1998: 392: 245-252 Robinson, S. et al., Eur J Immunol. 1999: 2769-2778Robinson, S. et al., Eur J Immunol. 1999: 2769-2778 MacDonald, KP. et al., Blood 2002, 100: 4512-4520MacDonald, KP. Et al., Blood 2002, 100: 4512-4520 Banchereau, J. et al., Cell 2001, 106: 271-274Banchereau, J. et al., Cell 2001, 106: 271-274 Liu, Y-J. et al., Nat Immunol. 2001, 2: 585-589Liu, Y-J. Et al., Nat Immunol. 2001, 2: 585-589 Leroux, D. et al., Blood 2002, 99: 4154-4159Leroux, D. et al., Blood 2002, 99: 4154-4159

本発明の目的は、芽球性NK細胞リンパ腫の病因の解明に役立つ新規細胞株、および当該細胞株を用いた、ヒトにおける樹状細胞を介した免疫機構の解明に役立つ手段の提供である。   An object of the present invention is to provide a novel cell line useful for elucidating the pathogenesis of blastic NK cell lymphoma, and a means useful for elucidating immune mechanisms via dendritic cells in humans using the cell line.

本発明者らは、後に白血病症状に転換した典型的な芽球性NK細胞リンパ腫患者に出会い、当該患者からインフォームドコンセントを得て、当該患者由来の白血病細胞を用いて株化細胞の樹立を試みた。その結果、原発性悪性腫瘍細胞から新規な細胞株、CAL−1の樹立に成功し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、以下に示す通りである。
The present inventors met a typical blastic NK cell lymphoma patient who later converted to leukemia symptoms, obtained informed consent from the patient, and established a cell line using leukemia cells derived from the patient. Tried. As a result, a new cell line, CAL-1, was successfully established from primary malignant tumor cells, and the present invention was completed.
That is, the present invention is as follows.

〔1〕 単離されたヒト形質細胞様樹状細胞株。
〔2〕 芽球性NK細胞リンパ腫に由来するものである前記〔1〕に記載の細胞株。
〔3〕 前記細胞株の表現型が、LinHLA−DRCD11cCD123CD4CD56である前記〔1〕または〔2〕に記載の細胞株。
〔4〕 前記細胞株がCAL−1(FERM P−20595)である前記〔1〕〜〔3〕いずれかに記載の細胞株。
〔5〕 前記〔1〕〜〔4〕いずれかに記載の細胞株を分化誘導剤で処理して得られる成熟樹状細胞株。
〔6〕 前記分化誘導剤がGM−CSFまたはIL−3である前記〔5〕に記載の成熟樹状細胞株。
〔7〕 前記〔1〕〜〔4〕いずれかに記載の細胞株または前記〔5〕もしくは〔6〕に記載の成熟細胞株を担持してなる実験動物。
〔8〕 前記〔1〕〜〔4〕いずれかに記載の細胞株、前記〔5〕もしくは〔6〕に記載の成熟樹状細胞株または前記〔7〕に記載の実験動物の細胞から得られる細胞成分。
〔9〕 前記細胞成分が、核酸、タンパク質、糖および脂質からなる群より選ばれる少なくとも1種を主成分とするものである前記〔8〕に記載の細胞成分。
〔10〕 前記〔1〕〜〔4〕いずれかに記載の細胞株または前記〔5〕もしくは〔6〕に記載の成熟樹状細胞株から得られる細胞成分をヒトを除く動物に接種して得られる抗体。
〔11〕 前記〔1〕〜〔4〕いずれかに記載の細胞株または前記〔5〕もしくは〔6〕に記載の成熟樹状細胞株を用いることを特徴とする、免疫応答に関与する物質のスクリーニング方法。
〔12〕 前記〔1〕〜〔4〕いずれかに記載の細胞株または前記〔5〕もしくは〔6〕に記載の成熟樹状細胞株を用いることを特徴とする、樹状細胞の抗原提示機能を制御する薬剤のスクリーニング方法。
〔13〕 前記薬剤が免疫疾患または癌の治療に用いられる前記〔12〕に記載のスクリーニング方法。
[1] An isolated human plasmacytoid dendritic cell line.
[2] The cell line according to [1], which is derived from blastic NK cell lymphoma.
[3] The cell line according to [1] or [2], wherein the phenotype of the cell line is Lin HLA-DR + CD11c CD123 + CD4 + CD56 + .
[4] The cell line according to any one of [1] to [3], wherein the cell line is CAL-1 (FERM P-20595).
[5] A mature dendritic cell line obtained by treating the cell line of any one of [1] to [4] with a differentiation-inducing agent.
[6] The mature dendritic cell line according to [5], wherein the differentiation inducer is GM-CSF or IL-3.
[7] An experimental animal carrying the cell line of any one of [1] to [4] or the mature cell line of [5] or [6].
[8] Obtained from the cell line of any one of [1] to [4], the mature dendritic cell line of [5] or [6], or the experimental animal cell of [7]. Cell component.
[9] The cell component according to [8], wherein the cell component is mainly composed of at least one selected from the group consisting of nucleic acids, proteins, sugars, and lipids.
[10] Obtained by inoculating animals other than humans with cell components obtained from the cell line according to any one of [1] to [4] above or the mature dendritic cell line according to [5] or [6] above Antibodies.
[11] A substance involved in an immune response, characterized by using the cell line according to any one of [1] to [4] or the mature dendritic cell line according to [5] or [6]. Screening method.
[12] Dendritic cell antigen-presenting function, wherein the cell line according to any one of [1] to [4] or the mature dendritic cell line according to [5] or [6] is used. Screening method for controlling drugs.
[13] The screening method according to [12], wherein the drug is used for treatment of immune disease or cancer.

本発明によると、ヒト形質細胞様樹状細胞株を提供することが可能となり、CD4CD56腫瘍細胞のみならず正常pDCsのインビトロでの研究の進展に寄与することができる。本発明の成熟樹状細胞株は、pDC前駆細胞の細胞形態学的な特徴に類似する前記形質細胞様樹状細胞株から分化誘導剤処理することにより容易かつ大量に得ることができるので、ヒト成熟樹状細胞を用いた様々な分析が可能となる。本発明の細胞株等を担持してなる実験動物、本発明の細胞株等から得られる細胞成分および当該細胞成分から得られる抗体は、ヒト樹状細胞が関与する免疫応答の研究に供することができるとともに、ヒトの免疫疾患の治療法の開発に寄与することができる。また、本発明の細胞株を用いたスクリーニング方法によると、免疫応答に関与する物質または樹状細胞の抗原提示機能を制御する薬剤を容易にスクリーニングすることができる。 According to the present invention, it is possible to provide a human plasmacytoid dendritic cell line, which can contribute to the progress of in vitro studies of normal pDCs as well as CD4 + CD56 + tumor cells. The mature dendritic cell line of the present invention can be obtained easily and in large quantities by treating with a differentiation inducer from the plasmacytoid dendritic cell line similar to the cytomorphological characteristics of pDC progenitor cells. Various analyzes using mature dendritic cells are possible. An experimental animal carrying the cell line of the present invention, a cell component obtained from the cell line of the present invention, and an antibody obtained from the cell component can be used for studies of immune responses involving human dendritic cells. In addition to being able to contribute to the development of therapeutic methods for human immune diseases. In addition, according to the screening method using the cell line of the present invention, it is possible to easily screen a substance involved in immune response or a drug that controls the antigen-presenting function of dendritic cells.

本発明は、単離されたヒト形質細胞様樹状細胞株を提供する。本発明において「形質細胞様」とは、近年末梢リンパ組織や末梢血中で樹状細胞に分化可能な細胞群として見出された形質細胞様細胞(plasmacytoid cell)に形態学的、表現型的および機能的特徴において多数共通する特徴を有することをいう。共通する特徴としては、光学顕微鏡および電子顕微鏡における形質細胞様形態、細胞表面マーカー有無の同一性、同一サイトカインによる成熟型樹状細胞への分化能等があげられる。これらの具体的特徴については、後述するCAL−1細胞において説明する。   The present invention provides an isolated human plasmacytoid dendritic cell line. In the present invention, the term “plasmacytoid” refers to a morphological and phenotypic expression of a plasmacytoid cell that has recently been found as a group of cells that can differentiate into dendritic cells in peripheral lymphoid tissues and blood. And having many common features in functional features. Common features include plasmacytoid morphology in light and electron microscopes, identity with or without cell surface markers, ability to differentiate into mature dendritic cells by the same cytokine, and the like. These specific features will be described in CAL-1 cells described later.

本発明の細胞株は、芽球性NK細胞リンパ腫に由来するものであることが好ましく、この限りにおいて正常なカウンターパートである形質細胞様細胞と一部共通しない特徴を有していてもよい。共通しない特徴としては、T細胞受容体遺伝子の再配列が認められないこと等があげられる。   The cell line of the present invention is preferably derived from blastic NK cell lymphoma, and may have characteristics not shared in part with plasmacytoid cells which are normal counterparts. Non-common features include the absence of rearrangement of the T cell receptor gene.

前記細胞株の表現型は、LinHLA−DRCD11cCD123CD4CD56であることが好ましい。Linとは、細胞系列関連マーカーであるCD3、CD14、CD19、CD16等が陰性であることを示す。好ましくは、Linは、CD3、CD14、CD19およびCD16がすべて陰性である。
CD11cとは、骨髄系樹状細胞と形質細胞系樹状細胞とを分類するマーカーが陰性、すなわち、骨髄系樹状細胞由来であることの否定を示す。
CD123とは、骨髄系樹状細胞と形質細胞系樹状細胞とを分類するマーカーが陽性、すなわち、形質細胞系樹状細胞に分類されることを示す。
HLA−DRとは、抗原提示細胞(APC)、すなわちB細胞、単球、マクロファージまたは胸腺上皮細胞上などに存在するマーカーが陽性であることを示す。
CD4およびCD56とは、それぞれ、ヘルパーTリンパ球、NK細胞に特徴的な表面マーカーが陽性であることを示す。
The phenotype of the cell line is preferably Lin HLA-DR + CD11c CD123 + CD4 + CD56 + . “Lin −” indicates that CD3, CD14, CD19, CD16 and the like, which are cell lineage-related markers, are negative. Preferably, Lin is all negative for CD3, CD14, CD19 and CD16.
CD11c indicates that the marker for classifying myeloid dendritic cells and plasma cell dendritic cells is negative, that is, denial of being derived from myeloid dendritic cells.
CD123 + indicates that the marker that classifies myeloid dendritic cells and plasma cell dendritic cells is positive, that is, is classified into plasma cell dendritic cells.
HLA-DR + indicates that a marker present on antigen-presenting cells (APC), that is, B cells, monocytes, macrophages or thymic epithelial cells is positive.
CD4 + and CD56 + indicate that surface markers characteristic of helper T lymphocytes and NK cells are positive, respectively.

本発明の細胞株は、CAL−1であることがより好ましい。CAL−1細胞株は、2005年7月15日に、CAL−1という名称の下、日本国茨城県つくば市東1−1−1 中央第6、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センターにFERM P−20595として寄託されている。   The cell line of the present invention is more preferably CAL-1. The CAL-1 cell line was founded on July 15, 2005 under the name CAL-1, 1-1-1 Higashi 1-1-1, Tsukuba, Ibaraki, Japan, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center Has been deposited as FERM P-20595.

CAL−1細胞の細胞形態的、表現型的および遺伝子的特徴は、pDCsの特徴と類似性を持つことである。細胞形態的特徴としては、光学顕微鏡で偏心性核、青色細胞質、青白いゴルジ野が認められる点、ならびに電子顕微鏡で粗面小胞体(RER)の平行配列が認められる点等があげられ、これらの点から形質細胞様形態と判断される。   The morphological, phenotypic and genetic characteristics of CAL-1 cells are similar to those of pDCs. Cell morphological features include the presence of eccentric nuclei, blue cytoplasm, and pale Golgi in light microscopy, and the parallel arrangement of rough endoplasmic reticulum (RER) in electron microscopy. From the point, it is judged to be a plasmacytoid morphology.

細胞表現型および遺伝子的特徴としては、CD11cおよび細胞系列関連マーカー(Lin)であるCD3、CD14、CD19およびCD16が陰性、HLA−DR、CD4、CD56、CD45RAおよびCD123が陽性、ならびにTCRおよびIgH遺伝子再配列の陰性である。   Cell phenotype and genetic features include CD11c and cell lineage related markers (Lin) CD3, CD14, CD19 and CD16 negative, HLA-DR, CD4, CD56, CD45RA and CD123 positive, and TCR and IgH genes Negative rearrangement.

CAL−1細胞はTNF−αを分泌できるが、必ずしもIFN−αを分泌するものではない。CAL−1細胞は、トールライク受容体(TLR)−9陽性であるが、TLR−9リガンドCpGODNsによる刺激によりIFN−αを生成することができず、TNFαを生成することができる。かかる特性は、一部この細胞の腫瘍原性に基づくことを示唆している。総合的に判断すると、CAL−1細胞が密接にpDC細胞系列と関連していることを示している。他方、CAL−1細胞は、特に、大きな核小体を有する芽球様の形態である点、CD33、CD7およびCD86の発現、TLR−2およびTLR−4のmRNAの発現並びにIL−3のみならずGM−CSFへの反応性の点で、pDCsと異なる異常な表現型の特性を持つ。正常なカウンターパートと比べて、CAL−1細胞の異常な表現型の理由の一部として、2つの可能性が考えられる。第一の可能性は、CAL−1細胞は、リンパ球拘束性前駆細胞よりむしろpDCsに主に分化する未分化DC前駆細胞であること。第二の可能性は、CAL−1は腫瘍化の過程において異常な分化能を獲得したこと。   CAL-1 cells can secrete TNF-α, but do not necessarily secrete IFN-α. CAL-1 cells are tall-like receptor (TLR) -9 positive, but cannot generate IFN-α upon stimulation with TLR-9 ligand CpGODNs, and can generate TNFα. Such properties suggest that it is based in part on the tumorigenicity of this cell. Overall, it shows that CAL-1 cells are closely associated with the pDC cell lineage. On the other hand, CAL-1 cells, in particular, are blast-like forms with large nucleolus, CD33, CD7 and CD86 expression, TLR-2 and TLR-4 mRNA expression and IL-3 only. In terms of reactivity to GM-CSF, it has abnormal phenotypic characteristics different from pDCs. Two possibilities are considered as part of the reason for the abnormal phenotype of CAL-1 cells compared to normal counterparts. The first possibility is that CAL-1 cells are undifferentiated DC precursor cells that mainly differentiate into pDCs rather than lymphocyte-restricted precursor cells. The second possibility is that CAL-1 acquired abnormal differentiation ability during the process of tumorigenesis.

本発明の細胞株は、分化誘導剤で処理することにより、成熟樹状細胞株に分化することができる。本発明は、かかる成熟樹状細胞株を提供する。ここで、成熟樹状細胞とは、長い樹状突起を持つ外観、ならびに処理前の細胞株と比較して、CD80およびCD86のアップレギュレーション、および成熟すると消失するとされるCXCR4のダウンレギュレーションを特徴とする細胞をいう。   The cell line of the present invention can be differentiated into a mature dendritic cell line by treatment with a differentiation inducer. The present invention provides such mature dendritic cell lines. Here, mature dendritic cells are characterized by an appearance with long dendrites, and up-regulation of CD80 and CD86 and down-regulation of CXCR4, which is supposed to disappear upon maturation, as compared to the cell line before treatment. Cell.

前記分化誘導剤としては、GM−CSF、IL−3等があげられ、GM−CSFおよびIL−3が好ましい。好ましい態様として、本発明の細胞株は、GM−CSFおよびIL−3の両方に応答して分化する場合、骨髄系樹状細胞(mDC)および形質細胞系樹状細胞(pDC)に分化する前段階の未分化DC前駆細胞であることが示唆される。   Examples of the differentiation inducer include GM-CSF and IL-3, and GM-CSF and IL-3 are preferable. In a preferred embodiment, the cell line of the present invention, when differentiated in response to both GM-CSF and IL-3, before differentiation into myeloid dendritic cells (mDC) and plasma cell dendritic cells (pDC). It is suggested that it is a staged undifferentiated DC precursor cell.

本発明の細胞株、分化誘導された成熟樹状細胞株の培養条件、およびその分化誘導条件は、特に限定されるものではないが、リンパ球の培養に通常用いられる培地および方法が採用される。一例として、CAL-1の培養条件および分化誘導条件は、実施例に記載されている。   The culture conditions of the cell line of the present invention, the matured dendritic cell line induced to differentiate, and the conditions for inducing differentiation thereof are not particularly limited, but media and methods commonly used for lymphocyte culture are employed. . As an example, culture conditions and differentiation induction conditions for CAL-1 are described in the Examples.

本発明は、前記細胞株または成熟樹状細胞株を担持してなる実験動物を提供する。実験動物としては特に限定されるものではないが、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ヤギ、ウマ、イヌ、ネコ、サルなどがあげられる。細胞株の担持方法としては、培養して一定の細胞数に達した前記細胞株または成熟樹状細胞株を、皮下、皮内、静脈内、腹腔内に投与する方法などがあげられる。また、前記実験動物の一部、例えば、臓器、組織、血液なども本発明の実験動物に含まれる。また、担持した細胞株が実験動物内で増殖して得られる形成物も本発明の実験動物に含まれる。   The present invention provides a laboratory animal carrying the cell line or mature dendritic cell line. Although it does not specifically limit as an experimental animal, A mouse | mouth, a rat, a guinea pig, a hamster, a rabbit, a goat, a horse, a dog, a cat, a monkey etc. are mention | raise | lifted. Examples of the method for supporting a cell line include a method in which the cell line or mature dendritic cell line that has been cultured to reach a certain number of cells is administered subcutaneously, intradermally, intravenously, or intraperitoneally. Further, some of the experimental animals, for example, organs, tissues, blood, etc. are also included in the experimental animals of the present invention. In addition, a formed product obtained by growing a supported cell line in a laboratory animal is also included in the laboratory animal of the present invention.

本発明は、前記細胞株もしくは成熟樹状細胞株または実験動物の細胞から得られる細胞成分を提供する。細胞成分としては、前記細胞に由来するあらゆる成分が限定なく用いられるが、汎用性または有用性の観点から、核酸、タンパク質、糖および脂質からなる群より選ばれる少なくとも1種を主成分とするものであることが好ましい。また、前記核酸には核酸と結合または複合体を形成してともに分離されるタンパク質、脂質などが含まれる。前記タンパク質には、タンパク質と結合または複合体を形成してともに分離される核酸、糖、脂質などが含まれる。前記糖には、糖と結合または複合体を形成してともに分離されるタンパク質、脂質などが含まれる。前記脂質には、脂質と結合または複合体を形成してともに分離される核酸、タンパク質、糖などが含まれる。   The present invention provides a cell component obtained from the cell line or mature dendritic cell line or cells of an experimental animal. As the cell component, any component derived from the cells is used without limitation, but from the viewpoint of versatility or usefulness, the main component is at least one selected from the group consisting of nucleic acids, proteins, sugars and lipids. It is preferable that In addition, the nucleic acid includes proteins, lipids, and the like that are separated from each other by binding or forming a complex with the nucleic acid. The protein includes nucleic acids, sugars, lipids and the like that are separated together by binding or forming a complex with the protein. The sugar includes proteins, lipids, and the like that are separated together by forming a bond or complex with the sugar. The lipids include nucleic acids, proteins, sugars and the like that are separated together by forming a bond or complex with the lipid.

細胞から細胞成分を得る方法は、公知の方法により行うことができる。一例として、一定の細胞数の前記細胞を、SDS、Triton−X(登録商標)、NP−40(登録商標)などの界面活性剤を含む溶液で可溶化し、目的の成分を目的の成分に応じて常法により分離し、必要に応じて常法により精製して細胞成分を得る方法があげられる。   A method for obtaining a cell component from a cell can be performed by a known method. As an example, the cells having a certain number of cells are solubilized with a solution containing a surfactant such as SDS, Triton-X (registered trademark), NP-40 (registered trademark), and the target component is converted into the target component. Depending on the method, the cells are separated by a conventional method, and if necessary, purified by a conventional method to obtain cell components.

前記細胞株または成熟樹状細胞株由来の細胞成分を用いて、ヒトを除く動物に接種することにより抗体を得ることができる。本発明は、かかる抗体を提供する。抗体には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、ヒト化抗体またはFabフラグメントやFab発現ライブラリーによって生成されるフラグメントなどのように抗原結合性を有する上記抗体の一部が包含される。   Antibodies can be obtained by inoculating animals other than humans using cell components derived from the cell line or mature dendritic cell line. The present invention provides such antibodies. The antibody includes a part of the above antibody having antigen binding properties such as a polyclonal antibody, a monoclonal antibody, a chimeric antibody, a single chain antibody, a humanized antibody, or a fragment generated by a Fab fragment or a Fab expression library. The

前記抗体の製造方法は公知であり、前記抗体を常法に従って製造することができる(Current Protocol in Molecular Biology, Chapter 11.12〜11.13(2000))。一具体例として、マウスを用いたモノクローナル抗体の作製の場合、上述のようにして得られた細胞成分をマウスに免疫し、得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマの中から得ることができる(Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley and Sons. Section 11.4〜11.11)。ハイブリドーマのスクリーニングは、目的に応じて適宜行うことができる。例えば、樹状細胞の機能を制御可能な抗体を得る場合、前記ハイブリドーマの培養上清を本発明の細胞株の培養液に添加し、当該細胞の機能変化を調べることにより目的の抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングすることができる。   The method for producing the antibody is known, and the antibody can be produced according to a conventional method (Current Protocol in Molecular Biology, Chapter 11.12 to 11.13 (2000)). As one specific example, in the case of production of a monoclonal antibody using a mouse, a hybridoma prepared by immunizing a mouse with the cell components obtained as described above and cell fusion of the obtained spleen cells and myeloma cells. (Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley and Sons. Section 11.4-11.11). Hybridoma screening can be appropriately performed depending on the purpose. For example, when an antibody capable of controlling the function of dendritic cells is obtained, the culture supernatant of the hybridoma is added to the culture solution of the cell line of the present invention, and the desired antibody is produced by examining the functional change of the cells. Hybridomas can be screened.

このようにして得られた本発明の抗体は、免疫疾患または癌の診断、治療を始めとする医療分野ばかりでなく、免疫応答の基礎研究または下記本発明のスクリーニング方法においても利用可能である。   The antibody of the present invention thus obtained can be used not only in the medical field including diagnosis and treatment of immune diseases or cancer, but also in basic research of immune responses or the screening method of the present invention described below.

本発明の免疫応答に関与する物質のスクリーニング方法は、前記細胞株または成熟細胞株を用いることを特徴とするものである。   The screening method for a substance involved in the immune response of the present invention is characterized by using the cell line or the mature cell line.

また、本発明のスクリーニング方法は、前記細胞株または成熟細胞株を用いることにより、樹状細胞の抗原提示機能を制御する薬剤をもスクリーニングすることができる。前記薬剤は、免疫疾患または癌の治療に用いられるものであることが好ましい。   The screening method of the present invention can also screen for an agent that controls the antigen-presenting function of dendritic cells by using the cell line or mature cell line. The drug is preferably used for treatment of immune diseases or cancer.

本発明のスクリーニング方法は、下記工程(a)、(b)および(c)を含む:
(a)被験物質と本発明の樹状細胞株とを接触させる工程、
(b)被験物質を接触させた細胞株における機能および被験物質を接触させない細胞株における機能を分析し、比較する工程、
(c)前記(b)の比較結果に基づいて、樹状細胞の機能を変化させる被験物質を選択する工程。
The screening method of the present invention includes the following steps (a), (b) and (c):
(A) contacting the test substance with the dendritic cell line of the present invention,
(B) analyzing and comparing the function in the cell line contacted with the test substance and the function in the cell line not contacted with the test substance;
(C) A step of selecting a test substance that changes the function of dendritic cells based on the comparison result of (b).

工程(a)において、被験物質としては、いかなる公知物質および新規物質であってもよく、例えば、核酸、糖質、脂質、タンパク質、ペプチド、有機低分子化合物、コンビナトリアルケミストリー技術を用いて作製された化合物ライブラリー、固相合成やファージディスプレイ法により作製されたランダムペプチドライブラリー、あるいは微生物、動植物、海洋生物等由来の天然成分などがあげられる。   In the step (a), the test substance may be any known substance or new substance, for example, a nucleic acid, a carbohydrate, a lipid, a protein, a peptide, a low molecular weight organic compound, or a combinatorial chemistry technique. Examples include compound libraries, random peptide libraries prepared by solid phase synthesis and phage display methods, and natural components derived from microorganisms, animals and plants, marine organisms, and the like.

工程(a)において、被験物質は、本発明の樹状細胞株と培養培地中で接触される。前記培養培地は、例えば、約5〜20%のウシ胎児血清を含むRPMI1640培地などである。培養条件としては、例えば、培地のpHは約6〜約8であり、培養温度は通常約30〜約40℃であり、培養時間は約12〜約72時間である。   In step (a), the test substance is contacted with the dendritic cell line of the present invention in a culture medium. The culture medium is, for example, RPMI 1640 medium containing about 5 to 20% fetal bovine serum. As culture conditions, for example, the pH of the medium is about 6 to about 8, the culture temperature is usually about 30 to about 40 ° C., and the culture time is about 12 to about 72 hours.

工程(b)において、樹状細胞の機能の分析は、対象とする機能に応じた指標を適宜選択して行うことができる。樹状細胞の形態変化を指標とする場合、被験物質を添加して一定時間経過後に顕微鏡観察により行うことができる。樹状細胞で発現するタンパク質の発現量を指標とする場合、被験物質を添加して一定時間経過後に当該タンパク質を認識する抗体を用いて免疫学的手法により測定することができる。タンパク質の発現量は、例えば、細胞から抽出液を調製し、免疫学的手法により測定することができる。免疫学的手法としては、ウェスタンブロッティング法、放射性同位元素免疫測定法(RIA法)、ELISA法、蛍光抗体法などを用いることができる。樹状細胞で発現するmRNAの発現量を指標とする場合、被験物質を添加して一定時間経過後に当該細胞からtotal RNAを調製し、RT−PCR、ノーザンブロッティングなどにより測定することができる。   In the step (b), the analysis of the function of the dendritic cell can be performed by appropriately selecting an index corresponding to the target function. When using a morphological change of dendritic cells as an index, it can be performed by microscopic observation after the elapse of a certain time after adding a test substance. When the expression level of a protein expressed in dendritic cells is used as an index, it can be measured by an immunological technique using an antibody that recognizes the protein after a predetermined time has elapsed after adding a test substance. The expression level of protein can be measured, for example, by preparing an extract from cells and immunologically. As the immunological technique, Western blotting, radioisotope immunoassay (RIA method), ELISA, fluorescent antibody method and the like can be used. When using the expression level of mRNA expressed in dendritic cells as an index, a total RNA can be prepared from the cells after adding a test substance and a certain time has elapsed, and can be measured by RT-PCR, Northern blotting, or the like.

工程(b)において、樹状細胞の機能の比較は、被験物質の存在下および非存在下において、例えば、樹状細胞の形態変化の有無、タンパク質の発現量における有意差の有無、mRNAの発現量における有意差の有無に基づいて行なわれる。   In the step (b), the dendritic cell function is compared in the presence and absence of the test substance, for example, presence or absence of dendritic cell morphology change, presence or absence of significant difference in protein expression level, mRNA expression This is based on the presence or absence of a significant difference in quantity.

工程(c)において、樹状細胞の機能を変化させる被験物質が選択される。このように選択された被験物質は、免疫応答に関与する物質の候補である。また、前記被験物質は、樹状細胞の抗原提示機能を制御する薬剤の候補ともなりうる。前記薬剤は、免疫疾患または癌の治療に用いられるものであることが好ましい。   In step (c), a test substance that changes the function of dendritic cells is selected. The test substance thus selected is a candidate for a substance involved in the immune response. The test substance can also be a candidate for a drug that controls the antigen-presenting function of dendritic cells. The drug is preferably used for treatment of immune diseases or cancer.

以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら限定されるものではない。   EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention in detail, this invention is not limited at all by these Examples.

実施例1 患者からの培養標本
原発性の腫瘍細胞は、インフォームドコンセントを得た76歳の男性患者の末梢血から採取された。この患者は2000年6月背部皮膚腫瘍で来院した。理学的検査および画像診断から、全身性の表在性および深部リンパ節腫脹と脾腫大が認められた。血液中に異常細胞は認めらなかったが、入院時、白血球数は5.2×10/L、11.5g/Lの軽度の貧血、4.5×10/Lと血小板減少症を認めた。1ヵ月後、図1Aに示すような芽球様細胞が末梢血液および骨髄穿刺で得られた標本中で観察された。LDH(血清乳酸脱水素酵素活性)および血清IL−2受容体濃度は極端に高く、それぞれ3549U/Lおよび1091U/Lであった。リンパ節の生検標本の組織学的検査から、WHO分類に基づいて芽球性NK細胞リンパ腫と診断された。リンパ節の細胞浮遊液および末梢血液から得られた異常な芽球様細胞は、フローサイトメトリーにより、表1に示すように、CD4CD56血液リンパ腫の性格を有していた。これらの細胞は、血清学的または遺伝学的に、HTLV−1またはEBウイルスとの関連はなかった。さらに、TCRまたはIgH遺伝子再配列もなかった。
Example 1 Culture Specimens from Patients Primary tumor cells were collected from the peripheral blood of a 76 year old male patient who obtained informed consent. The patient visited the hospital with a back skin tumor in June 2000. Physical examination and imaging revealed generalized superficial and deep lymphadenopathy and splenomegaly. Although abnormal cells were not found found in the blood, on admission, mild anemia of white blood cell count is 5.2 × 10 9 /L,11.5g/L, a 4.5 × 10 9 / L and thrombocytopenia Admitted. One month later, blastoid cells as shown in FIG. 1A were observed in specimens obtained by peripheral blood and bone marrow aspiration. LDH (serum lactate dehydrogenase activity) and serum IL-2 receptor concentrations were extremely high, 3549 U / L and 1091 U / L, respectively. Histological examination of lymph node biopsy specimens diagnosed blastic NK cell lymphoma based on WHO classification. Abnormal blast-like cells obtained from lymph node cell suspensions and peripheral blood had the characteristics of CD4 + CD56 + hematolymphoma as shown in Table 1 by flow cytometry. These cells were not serologically or genetically related to HTLV-1 or EB virus. Furthermore, there was no TCR or IgH gene rearrangement.

実施例2 細胞株のin vitro培養
単核細胞(MNCs)は白血病期の末梢血から密度勾配遠心分離法で単離した。次いで、MNCsを0.25U/mlの遺伝子組み換型IL−2存在下または非存在下、10%ウシ胎児血清(FCS)および2mM L−グルタミン酸を含むRPMI1640培地を入れた培養フラスコ中で、37℃、5%炭酸ガス濃度の保湿インキュベーター中で培養した。
Example 2 In vitro culture of cell lines Mononuclear cells (MNCs) were isolated from peripheral blood in leukemic phase by density gradient centrifugation. The MNCs were then cultured in a culture flask containing RPMI 1640 medium containing 10% fetal calf serum (FCS) and 2 mM L-glutamate in the presence or absence of 0.25 U / ml of recombinant IL-2. The cells were cultured in a moisturizing incubator at 5 ° C. and 5% carbon dioxide gas concentration.

実施例3 形態学的および免疫表現型分析
メイ グリューンワルド ギムザ染色した末梢血、骨髄穿刺液、リンパ節捺印標本およびサイトスピン塗沫標本を光学顕微鏡で観察した。また、原発細胞とCAL−1を2.5%グルタールアルデヒドおよび2%パラホルムアルデヒドで固定し、透過型電子顕微鏡による観察を行った。免疫表現型分析およびサザンブロット用DNA標本のため、著者らの標準プロトコール(Kamihira et al., Br J Haematol. 1999, 107: 852-860)に基づき、MNCsを血液および培養サンプルから密度勾配遠心分離で単離した。直接および間接ラベル法による免疫表現型分析は、表1に示したモノクローナル抗体を用い、フローサイトメトリー(FACSCalibur; BD Immunocytometry Systems, San Jose, CA, USA)で行なった。本研究で使用されたモノクローナル抗体は、Becton Dickinson Immunocytometry Systems (CD3, CD14, CD19, CD123, CD56, CD7, CD8, CD34, CD116, CD45RA, CD80, CD86)、ParMingen (CD16, CD38, CD13, CD33, CD71)、Immunotech (CD11c, CD56)、Miltenyi Biotec (BDCA2)、BD Phamingen (HLA-DR, CD62L, CCR5, CXCR4, CCR4, CXCR3)、DAKO JAPAN (CD4, CCR3, CCR6)などから購入した。
Example 3 Morphological and Immunophenotypic Analysis May Gruenwald Giemsa-stained peripheral blood, bone marrow aspirate, lymph node imprint and cytospin smear were observed with a light microscope. Further, primary cells and CAL-1 were fixed with 2.5% glutaraldehyde and 2% paraformaldehyde, and observed with a transmission electron microscope. Density gradient centrifugation of MNCs from blood and culture samples based on our standard protocol (Kamihira et al., Br J Haematol. 1999, 107: 852-860) for immunophenotypic analysis and Southern blot DNA specimens Isolated on. Immunophenotypic analysis by direct and indirect labeling methods was performed by flow cytometry (FACSCalibur; BD Immunocytometry Systems, San Jose, CA, USA) using the monoclonal antibodies shown in Table 1. The monoclonal antibodies used in this study are Becton Dickinson Immunocytometry Systems (CD3, CD14, CD19, CD123, CD56, CD7, CD8, CD34, CD116, CD45RA, CD80, CD86), ParMingen (CD16, CD38, CD13, CD33, CD71), Immunotech (CD11c, CD56), Miltenyi Biotec (BDCA2), BD Phamingen (HLA-DR, CD62L, CCR5, CXCR4, CCR4, CXCR3), DAKO JAPAN (CD4, CCR3, CCR6), etc.

実施例4 サザンブロット法
高分子量DNAは、SDS(ドデシル硫酸ナトリウム)/プロテアーゼKで消化、次いで、フェノール/クロロホルムによる抽出、さらにエタノール沈殿法により抽出した。サザンブロットハイブリット形成法(SBH)は、IgHまたはTCR遺伝子再配列プロフィールおよびHTLV−1プロウイルスの組み込みパターンの検査に用いた。即ち、高分子量DNAの一定量(5または15μg)を、既報(Kamihira et al., Br J Haematol. 2001, 114: 63-69)に準じて、適切な制限酵素で消化し、そのサイズを0.7%アガロースゲル上で分離し、ナイロン膜に移した。各SBHテストで使用したプローブは以下の通りである。データベース(GeneBank Accession, NG-001019:959069-961200)に基づくJH塩基配列に相補的な研究室保有IgH JHプローブ;他の市販IgH JHおよびCβプローブ;TCR Cβ1(SRL;八王子、東京、日本)。HTLV−1サザンブロットテストにおいて、当研究室で開発したHTLV−1プローブの全長を使用した。最終的に、各バンドパターンは、CDP−Star基質(Roche Applied Science)で可視化した。
核型分析は、標準的な手法に従って、G-またはQ−バンドの分裂中期細胞で行なった。核型の表記は、International System for Human Cytogenetic Nomenclatureの1995年勧告(Mitelman F. ed. An International System for Human Cytogenetic Nomenclature, Basel, Switzerland: Karger; 1995)に従った。
Example 4 Southern blotting High molecular weight DNA was digested with SDS (sodium dodecyl sulfate) / protease K, then extracted with phenol / chloroform, and further extracted with ethanol precipitation. Southern blot hybridization (SBH) was used to examine IgH or TCR gene rearrangement profiles and HTLV-1 provirus integration patterns. That is, a certain amount (5 or 15 μg) of high molecular weight DNA was digested with an appropriate restriction enzyme according to the previous report (Kamihira et al., Br J Haematol. 2001, 114: 63-69), and the size was reduced to 0. Separated on 7% agarose gel and transferred to nylon membrane. The probes used in each SBH test are as follows. Laboratory-owned IgH JH probes complementary to JH base sequences based on database (GeneBank Accession, NG-001019: 959069-961200); other commercially available IgH JH and Cβ probes; TCR Cβ1 (SRL; Hachioji, Tokyo, Japan). In the HTLV-1 Southern blot test, the full length of the HTLV-1 probe developed in our laboratory was used. Finally, each band pattern was visualized with CDP-Star substrate (Roche Applied Science).
Karyotype analysis was performed on G- or Q-band metaphase cells according to standard techniques. The notation of karyotype was in accordance with the 1995 Recommendation of the International System for Human Cytogenetic Nomenclature (Mitelman F. ed. An International System for Human Cytogenetic Nomenclature, Basel, Switzerland: Karger; 1995).

実施例5 GM−CSFまたはIL−3存在下の形態学的変化
1×10/mLのCAL−1細胞は、顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)(100 pg/ml;Schering-Plough Research Institute, Kenilworth, HJ, USA)または組換えIL−3 (10 ng/ml;Gibco BRL, Grand Island, NY, USA) および可溶型CD40L (0.5 mg/mlを20μl;Ancell, Bayport, MN, USA) を用い、10%FCSを含むRRPMI1640培地中で、3日間インキュベートした。さらに、CD80およびCD86抗原の誘導のために、6μgのCpGオリゴデオキシヌクレオチド(ODN2216;InvivoGene)を使用した。インキュベーション前後に、形態観察およびCD11c、CD33、CXCR3、CXCR4、CD80、およびCD86における抗原密度プロファイル変化を検討した。サイトスピン塗沫は光顕観察のためメイ グリューンワルド ギムザ染色し、蛍光顕微鏡観察のためphalloidinおよびAO-4’,6-diamindino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI)で染色した。
Example 5 Morphological Changes in the Presence of GM-CSF or IL-3 1 × 10 6 / mL CAL-1 cells were treated with granulocyte-macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) (100 pg / ml; Schering- Plow Research Institute, Kenilworth, HJ, USA) or recombinant IL-3 (10 ng / ml; Gibco BRL, Grand Island, NY, USA) and soluble CD40L (20 μl 0.5 mg / ml; Ancell, Bayport, MN) , USA) for 3 days in RRPMI1640 medium containing 10% FCS. In addition, 6 μg of CpG oligodeoxynucleotide (ODN2216; InvivoGene) was used for induction of CD80 and CD86 antigens. Before and after incubation, morphological observation and antigen density profile changes in CD11c, CD33, CXCR3, CXCR4, CD80, and CD86 were examined. Cytospin smears were stained with May-Grünwald Giemsa for light microscopic observation and stained with phalloidin and AO-4 ', 6-diamindino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI) for fluorescent microscopic observation.

実施例6 トールライク受容体の発現およびトールライク受容体を介したサイトカイン産生
CAL−1細胞は、トールライク受容体(TLRs)2、4、7および9に対するメッセンジャーRNA(mRNA)の発現のため、Schaeferら(Immunology, 2004, 112: 428-436)により記載されているプライマーを用い、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT−PCR)分析で評価した。即ち、単離した総RNA(1μg)を、ThermoScript RT (Invitrogen) で逆転写し、PCR増幅は、94℃、30秒間、60℃、30秒間および72℃、1分間を35サイクル行なった。同じ相補DNAを用い、glyceroaldehyde-3-phosphate dehydrogenase(GAPDH)を内部標準として増幅した。
Example 6 Expression of Toll-like Receptor and Cytokine Production via Toll-like Receptor CAL-1 cells are responsible for the expression of messenger RNA (mRNA) for toll-like receptors (TLRs) 2, 4, 7 and 9. Evaluated by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis using primers described by Schaefer et al. (Immunology, 2004, 112: 428-436). That is, isolated total RNA (1 μg) was reverse transcribed with ThermoScript RT (Invitrogen), and PCR amplification was performed at 35 ° C. for 30 cycles at 94 ° C., 30 seconds, 60 ° C., 30 seconds and 72 ° C. Using the same complementary DNA, glyceroaldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) was amplified as an internal standard.

CAL−1細胞のサイトカイン産生能を検査するために、ウエル当たり1×10細胞/200μlを、製造元取扱説明書に従い、6μgのCpGオリゴデオキシヌクレオチド(ODN2216)タイプA−TLR−9リガンドまたはODN2216コントロール(InvivoGene)とインキュベートした。刺激3日後、培養上清中のサイトカイン:インターフェロンα(IFN−α)、腫瘍壊死因子-α(TNF−α)、IL−12、IL−8およびIL−6を、市販の酵素-結合免疫吸着アッセイキット(BML)を用いて測定した。 To test the ability of CAL-1 cells to produce cytokines, 1 × 10 5 cells / 200 μl per well according to the manufacturer's instructions, 6 μg CpG oligodeoxynucleotide (ODN2216) type A-TLR-9 ligand or ODN2216 control Incubated with (InvivoGene). Three days after stimulation, cytokines in culture supernatant: interferon α (IFN-α), tumor necrosis factor-α (TNF-α), IL-12, IL-8 and IL-6 were commercially available enzyme-linked immunosorbent. Measurement was performed using an assay kit (BML).

結果
1.原発性腫瘍細胞の特徴付け
図1Aおよび1Bに示すように、血液塗沫およびリンパ節(塗沫)捺印標本の形態学的な分析から、顆粒のない好塩基性の豊富な細胞質、青白いゴルジ野、1〜2個の核小体を持つ偏心性の核を特徴とする大型の芽球様細胞が認められた。芽球様細胞の免疫表現型における特徴は、表1に要約してあるが、細胞系列マーカーであるCD3,CD14,CD19,CD16およびCD11cが陰性、並びにCD4,CD56,CD45RA,HLA−DRおよびCD38が陽性である。免疫組織化学的な染色において、細胞質Igμ、骨髄ペルオキシダーゼ(MPO)抗原、EBV−潜伏膜蛋白抗原(latent membrane protein)は陰性であった。SBH技術を用いたDNA分析から、芽球様細胞はHTLV−1と関連性がないこと、さらに、TCRまたはIgH遺伝子再配列を認めないことが明らかとなった。骨髄穿刺液からの20個の分裂中期細胞における細胞遺伝学的結果は表2で要約されているが、その中で2種の細胞遺伝学的クローンが検出された。主要なクローンは、45,X,−Y,+add(1)(q32),der(1;15)(q10;q10)の核型で、もう一方のマイナーなクローンは更なる異常を伴っていた。
Result 1. Characterization of primary tumor cells As shown in FIGS. 1A and 1B, morphological analysis of blood smears and lymph node (smear) imprinted specimens reveals basophil-rich cytoplasm without granules, pale Golgi area Large blast-like cells characterized by eccentric nuclei with 1-2 nucleoli were observed. Characteristics in the immunophenotype of blast-like cells are summarized in Table 1 but are negative for cell lineage markers CD3, CD14, CD19, CD16 and CD11c, and CD4, CD56, CD45RA, HLA-DR and CD38. Is positive. In immunohistochemical staining, cytoplasmic Igμ, bone marrow peroxidase (MPO) antigen, and EBV-latent membrane protein antigen were negative. DNA analysis using SBH technology revealed that blast-like cells are not associated with HTLV-1 and that no TCR or IgH gene rearrangements are observed. Cytogenetic results in 20 metaphase cells from bone marrow aspirates are summarized in Table 2, in which two cytogenetic clones were detected. The main clone was a karyotype of 45, X, -Y, + add (1) (q32), der (1; 15) (q10; q10), and the other minor clone was accompanied by further abnormalities. .

2.CAL−1細胞株の樹立と特徴
原発性腫瘍細胞は、IL−2存在下10%FCSを含む培地では生存できなかった。しかし、標本作製6ヶ月後、IL−2非存在下でかろうじて生存していた細胞は、週2回の培地交換で、安定した増殖を開始した。長期に継代培養した細胞株を樹立し、CAL−1と命名し、樹立後4年間維持し続けた。CAL−1細胞は浮遊細胞として生育するが、図1Dに示すように、形態学的には形質細胞に類似し、かつ原発性腫瘍細胞に良く似ていた。CAL−1細胞の電子顕微鏡的な観察から、大型の核小体を持ちわずかな核の不規則化、多数のミトコンドリアおよびRussell体のない粗面小胞体(RER)の平行配列が認められた(図2)。
2. Establishment and characteristics of CAL-1 cell line Primary tumor cells could not survive in a medium containing 10% FCS in the presence of IL-2. However, 6 months after the preparation of the cells, cells that were barely alive in the absence of IL-2 started to grow stably with medium change twice a week. A cell line that had been subcultured for a long time was established, named CAL-1, and maintained for 4 years after establishment. Although CAL-1 cells grew as floating cells, they were morphologically similar to plasma cells and very similar to primary tumor cells, as shown in FIG. 1D. Electron microscopic observations of CAL-1 cells revealed large nuclear nucleoli, minor nuclear irregularities, and parallel arrangements of rough endoplasmic reticulum (RER) without many mitochondria and Russell bodies. Figure 2).

この細胞の免疫表現型データは表1および図3に要約されている。抗原プロファイルは原発細胞と類似していたが、幾つかの抗原は僅かな違いを見せた。即ち、CD11c、CD7およびCD116(GM−CSFα)に対し僅かであるが陽性であった。CCRの結果は、CCR5弱陽性、CXCR4およびCXCR3強陽性であった。一方、他のCCRに対しては陰性であった。SBH分析において、HTLV−1プロウイルスはCAL−1細胞のゲノムDNA中に組み込まれていなかった。TCRまたはIgH遺伝子再配列は、TCR CβおよびIgH JHプローブでは検出されなかった。12個の分裂中期細胞が分析可能で、その結果は表2に要約されている。CAL−1細胞およびその親株である原発性腫瘍細胞は同じ核型、−Y,+add(1)(q32),der(1;15)(q10;q10)の異常を持ち、一方、CAL−1および原発細胞の幾つかの分裂中期細胞ではさらなる異常を示したことから、進化的な変化であることが示唆される。   The immunophenotypic data for this cell is summarized in Table 1 and FIG. Although the antigen profile was similar to the primary cells, some antigens showed slight differences. That is, it was slightly positive for CD11c, CD7 and CD116 (GM-CSFα). The CCR results were slightly positive for CCR5, strong positive for CXCR4 and CXCR3. On the other hand, it was negative for other CCRs. In SBH analysis, HTLV-1 provirus was not integrated into the genomic DNA of CAL-1 cells. TCR or IgH gene rearrangements were not detected with TCR Cβ and IgH JH probes. Twelve metaphase cells can be analyzed and the results are summarized in Table 2. CAL-1 cells and their parental primary tumor cells have the same karyotype, -Y, + add (1) (q32), der (1; 15) (q10; q10) abnormalities, while CAL-1 And some of the metaphase cells of the primary cells showed further abnormalities, suggesting evolutionary changes.

3.CAL−1細胞は成熟DCの外観へ変化する
CAL−1細胞の形態学的な変化を観察するために、この細胞をGM−CSFまたはIL−3/可溶性CD40L存在下で3日間培養した。培養最終日において細胞数は変化していなかったが、図5に示すように、GM−CSFおよびIL−3存在下、3日目に、当初の形質細胞様形態が著しく変化し、多数の長い樹状突起を持つ成熟DC形態へ形を変えた。さらに、GM−CSFおよびIL−3/可溶性CD40L存在下でCD11c、CD13およびCD33の弱い発現増強、並びにCXCR3およびCXCR4の発現抑制が誘導された。非刺激時(0日)のCAL−1細胞に発現しないかまたは存在しないCD80およびCD86が、IL−3/可溶性CD40L存在下3日間培養で、それぞれ平均蛍光強度(MFI)において5.6から11.2へ、45.0から103.7へアップレギュレートされた(図6A)。また、図6Bに示すように、CAL−1細胞はTLR−7およびTLR−9(それぞれ期待される551および510塩基対のバンドサイズを有していた)のみならず、TLR−2およびTLR−4(それぞれ期待される637および449の塩基対のバンドサイズを有していた)のmRNAを顕著に発現させた。TLR−9リガンドのCpGODNs(ODN2216)で刺激後、この細胞は有意なレベルのTNF−α(195pg/ml)および少量のIFN−α(10pg/ml)を産生した。他方、IL−6、IL−12、IFN−γおよびIL−8は上清中に検出できなかった。
3. CAL-1 cells change to mature DC appearance To observe morphological changes in CAL-1 cells, the cells were cultured in the presence of GM-CSF or IL-3 / soluble CD40L for 3 days. Although the number of cells did not change on the last day of culture, as shown in FIG. 5, in the presence of GM-CSF and IL-3, on the third day, the initial plasmacytoid morphology changed significantly, and many long Changed shape to mature DC form with dendrites. Furthermore, in the presence of GM-CSF and IL-3 / soluble CD40L, weak expression enhancement of CD11c, CD13 and CD33, and suppression of CXCR3 and CXCR4 expression were induced. CD80 and CD86 that are not expressed or absent in unstimulated (day 0) CAL-1 cells were cultured in the presence of IL-3 / soluble CD40L for 3 days, respectively, at a mean fluorescence intensity (MFI) of 5.6 to 11 .2 up-regulated from 45.0 to 103.7 (FIG. 6A). Also, as shown in FIG. 6B, CAL-1 cells not only had TLR-7 and TLR-9 (which had the expected band sizes of 551 and 510 base pairs, respectively), but also TLR-2 and TLR- 4 mRNAs (which had the expected 637 and 449 base pair band sizes, respectively) were significantly expressed. After stimulation with the TLR-9 ligand CpGODNs (ODN2216), the cells produced significant levels of TNF-α (195 pg / ml) and small amounts of IFN-α (10 pg / ml). On the other hand, IL-6, IL-12, IFN-γ and IL-8 could not be detected in the supernatant.

さらに、原発性悪性腫瘍細胞は、2種の細胞遺伝的クローンからなる。即ち、45,X,−Y,+1,der(1;15)(q10;q10)の核型を持つ主要な幹細胞クローンとさらなる異常を持つ他のクローンである。後者は主要なクローンから進化したサブクローンである可能性が高い。   In addition, primary malignant tumor cells consist of two cytogenetic clones. That is, a major stem cell clone with a karyotype of 45, X, -Y, + 1, der (1; 15) (q10; q10) and other clones with further abnormalities. The latter is likely a subclone evolved from the main clone.

本発明によれば、芽球性NK細胞リンパ腫の病因の解明に役立つ新規ヒト樹状細胞株、および当該細胞株を用いた、ヒトにおける樹状細胞を介した免疫機構の解明に役立つ手段が提供される。これらの細胞株および手段を用いることにより、免疫疾患および癌の治療に役立つ医薬を創製可能である。   According to the present invention, a novel human dendritic cell line useful for elucidating the etiology of blastic NK cell lymphoma, and means useful for elucidating the immune mechanism via human dendritic cells using the cell line are provided. Is done. By using these cell lines and means, it is possible to create drugs useful for the treatment of immune diseases and cancer.

図1は、原発性腫瘍細胞およびCAL−1細胞の形態学的結果を示す光学顕微鏡写真である。図1aは末梢血中の原発性腫瘍細胞の塗沫標本(×1000)、図1bはリンパ節バイオプシの捺印標本(×1000)、図1cはリンパ節の病理組織(×400)、図1dはCAL−1細胞のサイトスピン標本(×1000)を示す。FIG. 1 is a light micrograph showing the morphological results of primary tumor cells and CAL-1 cells. FIG. 1a is a smear of primary tumor cells in peripheral blood (× 1000), FIG. 1b is a lymph node biopsy imprint (× 1000), FIG. 1c is a lymph node pathological tissue (× 400), and FIG. A cytospin specimen (× 1000) of CAL-1 cells is shown. 図2は、CAL−1細胞の透過型電子顕微鏡写真である。図2a(×2000)、図2b(×4000)。FIG. 2 is a transmission electron micrograph of CAL-1 cells. Fig. 2a (x2000), Fig. 2b (x4000). 図3は、CAL−1細胞における代表的表面抗原に関するフローサイトメトリーの結果を示す。FIG. 3 shows flow cytometry results for representative surface antigens in CAL-1 cells. 図4は、CAL−1細胞およびその親細胞の核型の結果を示す。FIG. 4 shows the karyotype results of CAL-1 cells and their parent cells. 図5は、CAL−1細胞を分化させたときの細胞の形態学的変化を示す顕微鏡写真である。パネルAはメイ グリューンワルド ギムザ染色を、パネルBはギムザ染色を示す。FIG. 5 is a photomicrograph showing the morphological change of cells when CAL-1 cells are differentiated. Panel A shows May Grünwald Giemsa staining and Panel B shows Giemsa staining. 図6aは、CAL−1細胞をIL−3/CD40L存在下で3日間培養した後のCD80およびCD86抗原の密度を示す。図6bは、CAL−1細胞におけるmRNAの発現をRT−PCRで解析した電気泳動図である。レーンMはサイズマーカー、レーン1はTLR−2、レーン2はTLR−4、レーン3はTLR−7、レーン4はTLR−9、レーン5はGAPDHをそれぞれ示す。FIG. 6a shows the density of CD80 and CD86 antigens after CAL-1 cells have been cultured for 3 days in the presence of IL-3 / CD40L. FIG. 6 b is an electrophoretic diagram obtained by analyzing the expression of mRNA in CAL-1 cells by RT-PCR. Lane M is a size marker, Lane 1 is TLR-2, Lane 2 is TLR-4, Lane 3 is TLR-7, Lane 4 is TLR-9, and Lane 5 is GAPDH.

Claims (4)

単離されたヒト形質細胞様樹状細胞株CAL−1(FERM P−20595)。   Isolated human plasmacytoid dendritic cell line CAL-1 (FERM P-20595). (a)被験物質と請求項1に記載の細胞株または請求項1に記載の細胞株をGM−CSFもしくはIL−3で処理して得られる成熟樹状細胞株とを接触させる工程、
(b)被験物質を接触させた細胞株における機能および被験物質を接触させない細胞株における機能を分析し、比較する工程、および
(c)前記(b)の比較結果に基づいて、樹状細胞の機能を変化させる被験物質を選択する工程を含む、免疫応答に関与する物質のスクリーニング方法。
(A) contacting the test substance with the cell line according to claim 1 or a mature dendritic cell line obtained by treating the cell line according to claim 1 with GM-CSF or IL-3 ,
(B) analyzing and comparing the function in the cell line contacted with the test substance and the function in the cell line not contacted with the test substance, and (c) based on the comparison result of (b) above, A screening method for a substance involved in an immune response, comprising a step of selecting a test substance that changes its function.
(a)被験物質と請求項1に記載の細胞株または請求項1に記載の細胞株をGM−CSFもしくはIL−3で処理して得られる成熟樹状細胞株とを接触させる工程、
(b)被験物質を接触させた細胞株における機能および被験物質を接触させない細胞株における機能を分析し、比較する工程、および
(c)前記(b)の比較結果に基づいて、樹状細胞の機能を変化させる被験物質を選択する工程を含む、樹状細胞の抗原提示機能を制御する薬剤のスクリーニング方法。
(A) contacting the test substance with the cell line according to claim 1 or a mature dendritic cell line obtained by treating the cell line according to claim 1 with GM-CSF or IL-3 ,
(B) analyzing and comparing the function in the cell line contacted with the test substance and the function in the cell line not contacted with the test substance, and (c) based on the comparison result of (b) above, A method for screening a drug that controls the antigen-presenting function of dendritic cells, comprising a step of selecting a test substance that changes its function.
前記薬剤が免疫疾患または癌の治療に用いられる請求項に記載のスクリーニング方法。 The screening method according to claim 3 , wherein the drug is used for treatment of immune disease or cancer.
JP2005234389A 2005-08-12 2005-08-12 A novel human plasmacytoid dendritic cell line Expired - Lifetime JP5011520B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2005234389A JP5011520B2 (en) 2005-08-12 2005-08-12 A novel human plasmacytoid dendritic cell line

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2005234389A JP5011520B2 (en) 2005-08-12 2005-08-12 A novel human plasmacytoid dendritic cell line

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2007044008A JP2007044008A (en) 2007-02-22
JP5011520B2 true JP5011520B2 (en) 2012-08-29

Family

ID=37847411

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2005234389A Expired - Lifetime JP5011520B2 (en) 2005-08-12 2005-08-12 A novel human plasmacytoid dendritic cell line

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP5011520B2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10806749B2 (en) 2015-12-25 2020-10-20 Sbi Biotech Co., Ltd. TLR inhibitory oligonucleotides and their use

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR3034420A1 (en) 2015-03-31 2016-10-07 Lab Francais Du Fractionnement ANTI-CD303 MONOCLONAL ANTIBODIES
US20190017125A1 (en) * 2016-02-09 2019-01-17 Japanese Foundation For Cancer Research Diagnosis marker for rare hematopoietic tumor, test method, therapeutic agent, and screening method
WO2025203948A1 (en) * 2024-03-29 2025-10-02 キリンホールディングス株式会社 Method for evaluating immunostimulatory capacity of target substance

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10806749B2 (en) 2015-12-25 2020-10-20 Sbi Biotech Co., Ltd. TLR inhibitory oligonucleotides and their use

Also Published As

Publication number Publication date
JP2007044008A (en) 2007-02-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gómez-Aleza et al. Inhibition of RANK signaling in breast cancer induces an anti-tumor immune response orchestrated by CD8+ T cells
Saranchova et al. Type 2 innate lymphocytes actuate immunity against tumours and limit cancer metastasis
Craig et al. B-cell receptor signaling and CD40 ligand-independent T cell help cooperate in Helicobacter-induced MALT lymphomagenesis
Marafioti et al. Novel markers of normal and neoplastic human plasmacytoid dendritic cells
Nie et al. The role of CXCR4 in maintaining peripheral B cell compartments and humoral immunity
Hata et al. Interleukin-6 gene expression in multiple myeloma: a characteristic of immature tumor cells
Kersseboom et al. Bruton's tyrosine kinase cooperates with the B cell linker protein SLP-65 as a tumor suppressor in Pre-B cells
Tzankov et al. Plasmacytoid dendritic cell proliferations and neoplasms involving the bone marrow: summary of the workshop cases submitted to the 18th Meeting of the European Association for Haematopathology (EAHP) organized by the European Bone Marrow Working Group, Basel 2016
Borgmann et al. Childhood all blasts retain phenotypic and genotypic characteristics upon long-term serial passage in NOD/SCID mice
Hirata et al. Role of lipomodulin, a phospholipase inhibitory protein, in immunoregulation by thymocytes.
Sati et al. Interleukin‐6 is expressed by plasma cells from patients with multiple myeloma and monoclonal gammopathy of undetermined significance
Xue et al. The transcription factor GABP is a critical regulator of B lymphocyte development
Bloem et al. Long‐term bone marrow cultured stromal cells regulate myeloma tumour growth in vitro: studies with primary tumour cells and LTBMC‐dependent cell lines
Gorantla et al. Efficacy of JAK1/2 inhibition in murine myeloproliferative neoplasms is not mediated by targeting oncogenic signaling
Yamaji et al. Characterization of a small‐cell‐lung‐carcinoma cell line from a patient with cancer‐associated retinopathy
Asosingh et al. Multiple myeloma tumor progression in the 5T2MM murine model is a multistage and dynamic process of differentiation, proliferation, invasion, and apoptosis
Bendriss-Vermare et al. In situ leukemic plasmacytoid dendritic cells pattern of chemokine receptors expression and in vitro migratory response
Dargent et al. Cutaneous accumulation of plasmacytoid dendritic cells associated with acute myeloid leukemia: a rare condition distinct from blastic plasmacytoid dendritic cell neoplasm
JP5011520B2 (en) A novel human plasmacytoid dendritic cell line
CN119736252B (en) Application of histone variant macroH2A to regulation of macrophage function in improving tumor immunity microenvironment
Sen et al. Aberration of CCR7+ CD8+ memory T cells from patients with systemic lupus erythematosus: an inducer of T helper type 2 bias of CD4+ T cells
Takakuwa et al. Expression of interleukin-7 and its receptor in thyroid lymphoma
Emile et al. Langerhans cell deficiency in reticular dysgenesis
Zheng et al. Increased Abundance of Plasmacytoid Dendritic Cells and Interferon‐Alpha Induces Plasma Cell Differentiation in Patients of IgA Nephropathy
Otsuka et al. Role of CD21 antigen in diffuse large B‐cell lymphoma and its clinical significance

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20080612

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20110125

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20111220

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20120315

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20120315

A911 Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911

Effective date: 20120409

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20120508

A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

Ref document number: 5011520

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

EXPY Cancellation because of completion of term