JP5451041B2 - デンドリマー化合物、デンドリマー錯体及びmri造影剤 - Google Patents
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Description
下記式(6)、(7)、(8)および(9)のいずれかで表されることを特徴とする化合物である。
・フェニレン基、ナフタレンジイル基、アントラセンジイル基などのアリーレン基、オキシフェニレン基などの置換基としてエーテル基を有するアリーレン基
・メチレン基、エチレン基、プロピレン基、ブチレン基などのアルキル基
・オキシメチレン基、オキシエチレン基、オキシプロピレン基、オキシブチレン基などの置換基としてエーテル基を有するアルキル基
・メチレンフェニレン基、オキシメチレンフェニレン基、オキシフェニレンメチレン基などの、置換基を有していても良いアリーレン基と置換基を有していても良いアルキレン基とが結合基した基
また、mが1以上である場合の好ましい範囲は、1以上8以下である。
m=2
これらのうち、後述するMRI造影剤を調整するために用いる場合の溶解度を考慮すると、式(1−1)、式(1−2)、式(1−4)、式(1−5)で表されるものがより好ましいものといえる。
で表される環状構造化合物と、式(3)で表される化合物と、を反応させる工程を少なくとも有する製造方法により製造することができる。更に、式(A)の化合物を、T1短縮効果を有する金属イオンに配位させる工程を少なくとも有する製造方法により本発明にかかる金属錯体化合物を含む金属錯体化合物を製造することができる。これらの製造方法において、式(3)の化合物の合成には、不斉ジヒドロキシル化反応を用いることが好ましい。また、式(3)の化合物として末端基が5員環構造を有する化合物を用い、この化合物を、式(B)で示される環状構造化合物と反応させた後に、5員環構造を加水分解する工程を追加することもできる。
配位能を考慮すると、式(A)で表される化合物及び式(B)で示される化合物において、k(n+1)で表される数値(すなわち、環を構成する原子数)は8以上24以下であることが好ましい。
本発明にかかる化合物を含む式(A)で示される化合物は、キレート錯体の配位子となりうる化合物である。この化合物の具体的な好ましい形態としては、例えば、下記式(5)の化合物を挙げることができる。
(第二の化合物:金属錯体化合物)
本発明の第二の化合物は、上記第一の化合物が金属イオンに配位結合した構造を有する金属錯体化合物である。中心金属イオンはT1短縮効果を有するものが選択される。そのような金属イオンとしては、ランタノイドイオン、マンガンイオン、クロムイオン、鉄イオンが挙げられるが、中でも、ガドリニウムイオンが好ましい。
本発明の第三の化合物は、先に説明した式(3)で表される化合物である。この化合物は、式(1)の化合物を合成するための中間体として好適に用いられる。
配位子を合成するにあたっては、式(3)で表される側鎖を合成しておき、その後に環状構造のコアを形成するための式(B)で表される化合物と反応させることが好ましい。側鎖の合成にあたっては、不斉ジヒドロキシル化反応が好適に用いられる。その具体的な手法については実施例で後述する。なお、不斉ジヒドロキシル化反応を用いた側鎖合成の途中までのプロセスについては、本件の発明者である近藤らによる文献(H.-T. Chang, C.-T. Chen, T. Kondo, G. Siuzdak, and K.B. Sharpless, Asymmetric Dihydroxylation Enables Rapid Construction of Chiral Dendrimers, Angew. Chem., 35, 182 (1996) )を参考にすることができる。さらに不斉ジヒドロキシル化反応を用いることにより、単一のジアステレオマーのみを合成できる。
本発明のMRI造影剤は、前記金属錯体化合物(本発明の第二の化合物)を含有する。本発明の第二の化合物のみをMRI造影剤としても良いし、他の造影成分として機能し得る化合物等と混合するなどしてMRI造影剤としても良い。また、必要に応じて、担体や希釈剤と混合して用いることができる。前述したように、本発明の第二の化合物は優れたT1短縮効果を有するので、MRI造影剤として好適である。
以下のスキームに従って、中間体の合成を行った。
3.(R)-4 の合成
5.(R)-6 の合成
以下のスキームに従って、デンドリマーの合成を行った。
1.2nd Generation-キラルアセトニドトリアミンデンドリマー (R)-9 の合成
以下のスキームに従って、ガドリニウム錯体を合成した。
2nd Generation-キラル−12−オールトリアミンデンドリマーガドリニウム錯体 (R)-11の合成
1.化合物データ
1.1: (1R)-1-[4-(chloromethyl)phenyl]ethane-1,2-diol ((R)-2) [Sample No, HTKP1-7]
Colorless solid, mp 90 °C; 1H NMR (CDCl3, 400 MHz):7.38 (d, J = 8.3 Hz, 2H), 7.34 (d, J = 8.3 Hz, 2H), 4.80 (dd, J = 8.3, 3.4 Hz, 1H), 4.58 (s, 2H), 3.74 (dd, J = 11.2, 3.4 Hz, 1H), 3.62 (dd, J = 11.2, 8.3 Hz, 1H), 2.68 (brs, 2H); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz):140.7, 137.2, 128.8 (2C), 126.4 (2C), 74.3, 67.9, 45.9; MS (EI) m/z 186 (M+).
1.2: (4R)-4-[4-(chloromethyl)phenyl]-2,2-dimethyl-1,3-dioxolane ((R)-3) [Sample No, HTKP1-11]
Pale yellow oil, 1H NMR (CDCl3, 400 MHz):7.34 (s, 4H), 5.05 (dd, J = 7.8, 6.3 Hz, 1H), 5.03 (dd, J = 7.8, 6.3 Hz, 1H), 4.54 (s, 2H), 4.31 (dd, J = 7.8, 6.3 Hz, 1H), 3.65 (t, J = 7.8 Hz, 1H), 1.55 (s, 3H), 1.49 (s, 3H); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz):139.6, 137.2, 128.8 (2C), 126.5 (2C), 109.8, 77.5, 71.6, 45.9, 26.6, 25.9; MS (EI) m/z 226 (M+).
1.3: 1-[[4-((4R)-2,2-dimethyl(1,3-dioxolan-4-yl))phenyl]methoxy]-4-methoxybenzene2,2-dimethyl-1,3-dioxolane ((R)-4) [Sample No, HTKP1-30]
Pale yellow oil, mp 93 °C; 1H NMR (CDCl3, 400 MHz):7.42-7.36 (m, 4H), 6.90 (d, J = 9.3 Hz, 2H), 6.83 (d, J = 9.3 Hz, 2H), 5.08 (dd, J = 14.2, 6.4 Hz, 1H), 5.00 (s, 2H), 4.30 (dd, J = 8.3, 6.3 Hz, 1H), 3.76 (s, 3H), 3.70(t, J = 7.8 Hz, 1H), 1.55 (s, 3H), 1.49 (s, 3H); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz):153.8, 152.6, 138.6, 137.0, 127.5 (2C), 126.2 (2C), 115.7 (2C), 114.5 (2C), 109.6, 77.6, 71.5, 70.3, 55.6, 26.6, 25.9; MS (EI) m/z 314 (M+).
1.4: (1R)-1-[4-[(4-methoxyphenoxy)methyl]phenyl]ethane-1,2-diol ((R)-5) [Sample No, HTKP1-24]
Colorless solid, mp 144 °C; 1H NMR (DMSO-d6, 400 MHz):7.38 (s, 4H), 6.94 (d, J = 8.8 Hz, 2H), 6.86 (d, J = 8.8 Hz, 2H), 5.32-5.31 (m, 2H), 5.00 (s, 2H), 4.82-4.80 (m, 1H), 4.62-4.61 (m, 1H), 3.68 (s, 3H), 3.55 (brs, 1H), 3.50 (brs, 1H); 13C NMR (DMSO-d6, 100 MHz):153.6, 152.5, 143.1, 136.0, 127.4 (2C), 126.5 (2C), 115.8 (2C), 114.7 (2C), 73.8, 69.7, 67.6, 55.4; MS (EI) m/z 274 (M+).1.5:2nd-G dendron of bis(acetonide) ether ((R)-6) [Sample No, HTKP1-63(2nd fraction)]
Yellow oil; 1H NMR (CDCl3, 400 MHz): 7.43-7.24 (m, 12H), 6.92 (d, J = 9.3 Hz, 2H), 6.83 (d, J = 9.3 Hz, 2H), 5.08-5.04 (m, 2H), 5.00 (s, 2H), 4.63-4.49 (m, 4H), 4.23 (t, J = 6.4 Hz, 3H), 3.75 (s, 3H), 3.73-3.66 (m, 4H), 3.55 (dd, J = 10.3, 3.9 Hz, 3H), 1.55 (s, 3H), 1.48 (s, 3H); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz): MALDI-TOF-MASS (EI) m/z 571 (M++Na-H). 1.6: 2nd-G dendron of bis(acetonide) benzyl alcohol ((R)-7) [Sample No, HTKP1-66-4]
Yellow oil; 1H NMR (CDCl3, 400 MHz):7.36-7.21 (m, 12H), 5.08-5.04 (m, 2H), 4.68 (s, 3H), 4.61-4.48 (m, 4H), 4.28 (t, J = 6.8 Hz, 3H), 3.75-3.66 (m, 3H), 3.54 (dd, J = 10.8, 3.6 Hz, 3H), 3.46 (s, 1H), 1.91 (brs, 1H), 1.55 (s, 3H), 1.48 (s, 3H); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz):172.8, 169.0, 129.9, 109.2, 60.3,34.9, 29.4, 25.8, 21.9, 14.2.1.7:2nd-G dendron of bis(acetonide) benzyl bromide ((R)-8) [Sample No, HTKP1-67-2]
Colorless oil; 1H NMR (CDCl3, 400 MHz):6.68 (d, J = 13.6 Hz, 1H), 5.02-4.92 (m, 1H), 4.14 (q, J = 7.2 Hz, 2H), 3.04 (s, 3H), 2.41 (br, 4H), 2.20 (s, 3H), 1.26(t, J = 7.2 Hz, 3H); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz):172.8, 169.0, 129.9, 109.2, 60.3,34.9, 29.4, 25.8, 21.9, 14.2.
(実施例4)
Gd トリアミン2nd G ‐ 12 オールデンドリマー錯体 ((R)-11)の500MHzNMRによるT1緩和時間測定(その1)
T1緩和時間測定は、500 MHz NMR装置 Avance 500(ブルカーバイオスピン社製)で、ブロードバンドプローブを用いて行った。T1緩和時間はすべてInversion Recovery 法を用いて、温度27℃で測定した。まず、Gd トリアミン2nd G ‐ 12 オールデンドリマー錯体 ((R)-11)を超純水1 mlに溶かし、錯体(R)-11濃度が24.05 mMの水溶液を調製した。なお錯体(R)-11の濃度は誘導結合プラズマ発光法(ICP発光法)によってGdの濃度から決定した。次に、上記水溶液を、錯体11の濃度が0.13mM、重水の濃度が10%になるように、超純水及び重水で希釈し、NMR測定試料とした。準備した試料の水のT1時間測定データを図1に示す。図1に示したデータから、上記錯体(R)-11水溶液の水のT1時間は429 msであることが明らかとなった。
GdCl3およびGd(DTPA)(DTPA : Diethylene Triamine Pentaacetic Acid)のNMRによるT1緩和時間測定(その1)
T1緩和時間測定は、実施例4と同様の方法で行った。GdCl3水溶液は市販のGdCl36H2Oを超純水と重水とで溶解し、GdCl3の濃度が0.13 mM、重水の濃度が10%になるように調整し、NMR測定試料とした。またGd(DTPA)水溶液は市販のGd(DTPA)水溶液(630 mM)を超純水と重水とで希釈することで、Gd(DTPA)の濃度が0.13 mM、重水の濃度が10%になるように調整し、NMR測定試料とした。図2に上記Gd(DTPA)水溶液試料の、図3に上記GdCl3水溶液試料の水のT1時間測定データを示す。図2に示したデータから求めたGd(DTPA)水溶液の水のT1緩和時間は1333 msであり、錯体(R)-11のT1緩和時間よりかなり長い値を示した。この結果は現在市販されているMRI造影剤であるGd(DTPA)と比較して、本発明の錯体(R)-11がかなり高いT1短縮能を持つことを示唆するものである。
Gd トリアミン2nd G ‐ 12 オールデンドリマー錯体 ((R)-11)のMRIによるT1緩和時間測定
MRIによるT1緩和時間測定は、7T MRI装置 BioSpec70/20(ブルカーバイオスピン社製)を用いて行った。T1緩和時間はInversion Recovery FISP法を用いて、TR/TE=3 / 1.5ms、FOV = 8*4 cm、Matrix = 128*128,、NA=2、温度24℃の測定条件で行った。測定試料として錯体(R)-11を超純水に溶解し、6種類の濃度(1.3mM , 0.65mM, 0.325mM, 0.13mM, 0.026mM, 0.013mM)の水溶液を調整し、それぞれエッペンドルフチューブに入れ、そのまま測定に用いた。図4に各濃度での錯体(R)-11のT1緩和時間測定データを、表2にそこから求めた各濃度での水のT1緩和時間およびT1緩和速度(1/T1)を、図5に錯体(R)-11の濃度vs1/T1のグラフをそれぞれ示す。図5に示すように1/T1とサンプル濃度は非常に良い直線関係を示した。その傾きの値から、錯体(R)-11のT1緩和能はr1=23.649 (L/mmol・s)であることが明らかとなった。
GdCl3およびGd(DTPA)(DTPA : Diethylene Triamine Pentaacetic Acid) のMRIによるT1緩和時間測定
T1緩和時間測定は、実施例5と同様に行った。GdCl3水溶液は市販のGdCl36H2Oを超純水に溶解し、濃度が1.3 mMになるように、またGd(DTPA)水溶液は市販のGd(DTPA)水溶液(630 mM)を超純水希釈することで、濃度が2.0, 1.3, 1.0, 0.5, 0.25 mMになるようにそれぞれ調整し、それぞれエッペンドルフチューブに入れ、そのまま測定試料として用いた。図6にGdCl3水溶液(1.3 mM)およびGd(DTPA)水溶液(1.3 mM)のT1緩和時間測定の結果を、表3にそこから求めたT1緩和時間をまとめたものを示す。Gd(DTPA)水溶液の水のT1緩和時間は205.653 msであり、実施例5で求めた同濃度の錯体(R)-11の水のT1緩和時間(32.116 ms)と比較してかなり長い値を示した。
Gd トリアミン2nd Generation ‐ 12 オールデンドリマー錯体 (11)のマウスMRI造影撮像実験
7T MRI装置 BioSpec70/20(ブルカーバイオスピン社製)にて、Bruker社製内径72mm Circularly polarized RF resonatorを用いて、マウスのMRIによる造影撮像を行った。雄性C57/BL6マウス(21-24g, 8週齢)を用い、イソフルラン1~1.5%麻酔下、造影剤投与前後にT1強調画像を撮像した。造影剤の投与はGd濃度1mmol/Lに調製した錯体11をマウス尾静脈より投与することによって行った。その際、投与による急性毒性は観察されなかった。
Gd トリアミン2nd Generation ‐ 12 オールデンドリマー錯体 ((R)-11)の500MHz NMRによるT1緩和時間測定(その2)
NMR測定試料を錯体(R)-11のFBS(牛胎児血清)溶液(FBSの濃度80%、重水の濃度10%、H2Oの濃度10%)とした点以外は実施例4と同様にしてT1時間を測定した。その結果、錯体(R)-11のFBS溶液の水のT1時間は1135 msであった。
GdCl3およびGd(DTPA)(DTPA : Diethylene Triamine Pentaacetic Acid)の500MHz NMRによるT1緩和時間測定(その2)
NMR測定試料をGdCl3又はGd(DTPA)のFBS(牛胎児血清)溶液(FBSの濃度80%、重水の濃度10%、H2Oの濃度10%)とした点以外は比較例1と同様にしてT1時間を測定した。その結果、Gd(DTPA)FBS溶液の水のT1緩和時間は1429 msであり、GdCl3FBS溶液の水のT1時間は1708msであった。
Gd トリアミン2nd Generation ‐ 12 オールデンドリマー錯体 ((R)-11)のXAFS測定と解析
SPring−8において、錯体 ((R)-11)のXAFS解析を行った。具体的には、XAFSスペクトルからバックグラウンドを除去し、フーリエ変換、逆フーリエ変換を用いることによってフィッティングを行い、配位水の数を推定した。なお、XAFSスペクトルは、錯体 ((R)-11)のペレット(粉末状態)についてはイオンチャンバーを用いた透過法で、錯体 ((R)-11)の水溶液については多素子半導体検出器を用いた蛍光法で、それぞれ取得した。最近接配位数を9に固定せずにフィッティングを行ったところ、粉末状態でOの配位数6.99、GdとOとの原子間距離2.421Å、水溶液(3mM)でOの配位数9.77、GdとOとの原子間距離2.430Åを得た。この測定結果においては、第二配位圏にCが観察されないこと及び水酸基が配位しているとすると原子間距離が近すぎることから配位しているOの殆どが水に由来するものと推定される。比較対象としてGd(DTPA)、Gd(DOTA)についてXAFS解析を行ったところ、水分子の配位数は1であった。したがって、正確な数値は明らかではないものの、錯体 ((R)-11)に配位する水分子の数は、既存の造影剤であるGd(DTPA)やGd(DOTA)と比較してかなり多いことが確認された。
1.2nd Generation-キラルアセトニドテトラアミンデンドリマー (R)-9a の合成
コア部の原料としてTACNに代えて1,4,7,10-tetraazacyclododecane としたこと以外は実施例2と同様にして、(R)-9とはコア部のみが異なる2nd Generation-キラルアセトニドテトラアミンデンドリマー (R)-9aを合成した。そのESI−TOS MSスペクトルを図10に示す。
実施例2と同様にして、(R)-9aを加水分解し、2nd Generation-キラル−16−オールテトラアミンデンドリマー (R)-10aを得た。
2nd Generation-キラル−12−オールテトラアミンデンドリマーガドリニウム錯体 (R)-11aの合成
実施例3と同様にして、2nd Generation-キラル−12−オールテトラアミンデンドリマー (R)-10aをGdに配位させ、2nd Generation-キラル−12−オールテトラアミンデンドリマーガドリニウム錯体 (R)-11aを得た。
2nd Generation-キラル−16−オールテトラアミンデンドリマーガドリニウム錯体 (R)-11aのMRIによるT1緩和時間測定
実施例4と同様にして錯体(R)-11aの7TMRIによるT1緩和時間測定を行った。その結果、錯体(R)-11aのT1緩和能はr1=8.4(L/mmol・s)であることが明らかとなった。
Claims (4)
- 下記式(6)、(7)、(8)および(9)のいずれかで表されることを特徴とする化合物。
(式(6)中、φはフェニレン基を示す。)
(式(7)中、φはフェニレン基を示す。)
(式(8)中、φはフェニレン基を示す。)
(式(9)中、φはフェニレン基を示す。) - 請求項1に記載の化合物と、ランタノイドイオン、マンガンイオン、クロムイオン及び鉄イオンのいずれかの金属イオンとが配位結合によって結合している金属錯体化合物。
- 金属イオンが、ガドリニウムイオンである請求項2に記載の金属錯体化合物。
- 請求項2または3に記載の金属錯体化合物の少なくとも1種を造影成分として含有するMRI造影剤。
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