JP5485984B2 - 組織工学構築物 - Google Patents
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Description
本出願は、2008年5月9日に出願された米国仮特許出願第61/052,160号の優先権を主張し、その全ての開示が参照により本明細書に組み込まれている。米国又は外国の特許又は公開された特許出願、国際特許出願の何れか、さらに製造会社の使用説明書を含む、非特許文献の何れかを包含する、本特許出願の本文で引用されているありとあらゆる引用文献は、参照により本明細書に明確に組み込まれている。
本願の研究は、DOD Medical Free Electron Laser Program によって支援された。政府は本発明において幾らかの権利を有している。
本発明は、生体適合性のある膜、管及び導管の分野に関連していて、これは組織の結合及び神経保存及び発達を支援するように対象に移植可能な三次元構造を形成する架橋することができる光増感剤を含有している。
他に定義されていない限り、本明細書で用いられている技術及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者が通常理解している意味を有している。参照により本明細書に組み込まれている、以下の参考文献が、本発明で用いられている多くの用語の一般的な定義を当業者に提供している:Singleton et al., Dictionary of Microbiology and Molecular Biology (2nd ed. 1994); The Cambridge Dictionary of Science and Technology (Walker ed., 1988); The Glossary of Genetics, 5th Ed., R. Rieger et al. (eds.), Springer Verlag(1991); 及び Hale & Marham, The Harper Collins Dictionary of Biology (1991)。本明細書で用いられているような、以下の用語は、別に特定しない場合には、以下の決められた意味を有している。しかし当然ながら、当業者に知られているか或いは理解されている別の意味も可能であって、本発明の範囲内である。
好ましい実施態様では、生体膜は羊膜である。別の例示的な実施態様では、生体膜は哺乳動物、例えば、ウシ、ブタ、ヒツジ等の羊膜から得ることができる。別の好ましい実施態様では、生体膜を例えば、分娩後にヒト妊婦から得ることができる。
生体膜又は生体適合性膜は、内皮、筋膜、心膜、胸膜内膜、無細胞筋、血管、硬膜、腹膜、及び粘膜(小腸粘膜下組織、SISのような)を包含することもできる。生体適合性膜は、これに限定されないが、吸収性合成ポリマー、PGA、シリコンから、又はポリ乳酸(PLA)、ポリ−L−乳酸(PLLA)、ポリ−D−乳酸(PDLA)、ポリグリコライド、ポリラクチド−コ−グリコリド(Polylactide-co-glycolide、PLGA)、ポリジオキサノン、ポリグルコネート、ポリ乳酸−ポリエチレンオキシド共重合体類、修飾セルロース、コラーゲン、ポリヒドロキシ酪酸、ポリヒドロキシプロピオン酸、ポリホスホエステル、ポリ(アルファ−ヒドロキシ酸)、ポリカプロラクトン、ポリカルボネート類、ポリアミド類、ポリアンハイドライド類、ポリアミノ酸類、ポリオルトエステル類、ポリアセタール類、ポリシアノアクリレート類、分解性ウレタン類、脂肪族ポリエステルポリアクリレート類、ポリメタクリレート、アシル置換酢酸セルロース類、非分解性ポリウレタン類、ポリスチレン類、塩化ポリビニル、フッ化ポリビニル、ポリビニルイミダゾール、クロロスルホン化ポリオレフィン、ポリエチレンオキシド、ポリビニルアルコール、テフロン(登録商標)、ナイロン、シリコン、及びポリ(スチレン−ブロック−ブタジエン)、ポリノルボメン(polynorbomene)、ヒドロゲル類、金属合金、及び切り換えセグメントとしてのオリゴ(ε−カプロラクトン)ジオール/物理架橋としてのオリゴ(p−ジオキサノン)ジオールのような形状記憶材料のような、その他のポリマーから作られる膜のような、合成の膜を包含する。前記のポリマーの構成成分の1つ又はそれ以上を、ポリマーの架橋を可能にする適切な側鎖(例えば、アミノ置換基を含有する基)を包含するように修飾することができるということを、当業者は理解できるだろう。
成型したは、意図された三次元の物理的或いは空間的形状を有している材料を示すこともできる。
成型したは、成型した構造体が実質的にその形状を保持できるように少なくとも部分的に架橋されている前記の何れかの物理的或いは空間的形態を示すこともできる。
例えば、生体適合性構造体が管又は導管であるときは、境界領域は、管の全長の少なくとも5%を有する、管又は導管の一端或いは両端に存在する領域である。生体適合性構造体が管又は導管以外の三次元形状を有している場合、境界領域は、それを移植する個体の組織と接着することを意図している構造体の少なくとも端の部分(例えば、生体適合性構造体の少なくとも1mm又はそれ以上端のような)である。このような構造体の境界領域は、生体適合性構造体の端ではない部分でもよいが、それにも関わらずそれが移植される個体の組織に接着することを意図している部分である。境界領域は、生体適合性膜を生体適合性構造体に形成する場合に、そのような生体適合性構造体の境界領域を形成するであろう、平面の生体適合性膜の領域も包含する。
光増感剤は、これに限定されないが、キサンテン類、例えば、ローズベンガル及びエリスロシン;フラビン類、例えば、リボフラビン;チアジン類、例えば、メチレンブルー;ポルフィリン類及び拡張ポルフィリン類、例えば、プロトポルフィリンI〜プロトポルフィリンIX、コプロポルフィリン類、ウロポリフィリン類、メソポルフィリン類、ヘマトプロフィリン類及びサプフィリン類;クロロフィル類、例えば、バクテリオクロロフィルA、フェノチアジン、シアニン、モノアゾ染料(例えば、メチルレッド)、アジンモノアゾ染料(例えば、ヤーヌスグリーン(Janus Green )B)、フェノチアジン染料(例えば、トルイジンブルー)、ローダミン染料(例えば、ローダミンB塩基)、ベンジフェン−オキサジン染料(例えば、ナイルブルーA、ナイルレッド)、オキサジン(例えば、セレスチンブルー)、及びアントロ−キノン染料(例えば、レマゾールブリリアントブルーR)であってよい。
典型的な光増感剤は、これに限定されないが、ローズベンガル、リボフラビン−5−リン酸、及びメチレンブルーを包含できる。
用語「フルオロゲニック」は、別の物質と相互作用すると、例えば、生体化合物又は金属イオンと結合すると、別の分子と反応すると、又は酵素で代謝すると、蛍光性になるか或いは蛍光性の変化を明らかにする(蛍光強度の増大或いは減少、又はその蛍光スペクトルの変化のような)化合物又は組成物を示す。
フルオロフォアを置換して、溶解性、スペクトル特性及び/又は物理特性を変えることができる。
多数のフルオロフォア及びフルオロゲニック化合物及び組成物が当業者に公知であって、これに限定されないが、ベンゾフラン類、キノリン類、キナゾリン類、キナゾリノン類、インドール類、ベンザゾール類、インドジカルボシアニン類、ボラポリアザインダセン類及びキサンテン類を包含し、後者はフルオレセイン類、ローダミン類及びロードール類を、更に Haugland, Molecular Probes, Inc. Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals, (9th ed., including the CD-ROM, September 2002) に記載されている別のフルオロフォアを含有して、本発明の光増感剤、感光染料、及び蛍光化合物並びに部分を包含する。
本発明は、神経の修復、手術傷の閉鎖、ステントなどのような多種の用途に使用できる成型した生体適合性構造体及び組織接合デバイスを提供する。本明細書に記載されている構造体は生体適合性材料を光増感剤と接触させて形成することができ、そこでは電磁エネルギーを照射することによって、材料中の分子が光増感剤と架橋を形成できるようになる。その結果、生体適合性材料の硬度が増大して、三次元の構造体が形成されて、且つその構造体がその所望の形状を実質的に保持できる。
生体適合性材料は、光増感剤及び電磁エネルギーと接触すると架橋可能分子間で架橋を形成するであろう、タンパク質分子のような分子と、光増感剤を含有する材料である。本発明による生体適合性材料は、天然又は合成の何れかの、生体適合性の膜を含むことができる。本発明による有用な生体適合性の膜は、有機層、又は動物から採取するか或いは合成的に生成した細胞である、生体膜でよい。
羊膜は、胎膜を形成する三層のうち半透明の最も内側にある膜であって、胎仔外胚葉に由来している。羊膜は、羊水のホメオスタシスに寄与している。成熟期に、羊膜は基底膜上の上皮細胞からなり、これは順にフィラメント状のストランドによって薄い結合組織膜又は間葉層と接続する。羊膜は、ヒツジ、ブタ、ウシのようなその他の哺乳動物からも得ることができるが、本発明の一実施態様では、羊膜はヒトから得られる。
本明細書にあるような、光活性化を、例えば、電磁放射形態のエネルギーが、化合物、例えば、光増感剤に吸収され、それによって化合物を「励起し」、次いでエネルギーを別の形態のエネルギー、好ましくは化学エネルギーに、変換することが可能になるという工程を記載するために用いることができる。電磁放射は、電磁スペクトルの可視領域又は部分、若しくはスペクトルの紫外及び赤外領域の波長を有するエネルギー、例えば、光を包含する。化学エネルギーは、反応種、例えば、反応性酸素種、例えば、一重項酸素、スーパーオキシドアニオン、ヒドロキシルラジカル、励起状態の光増感剤、光増感剤のフリーラジカル又は基質フリーラジカル種の形態であってよい。光活性化工程は、吸収されたエネルギーの熱エネルギーへのごく僅かな移行に関与できる。光活性化は、例えば、照射の間に組織を検査する熱探知カメラで測定して、3℃未満の温度上昇を、より好ましくは2℃未満の上昇を、更により好ましくは1℃未満の温度上昇を生じるのが好ましい。
光増感剤の例は、これに限定されないが、キサンテン類、例えば、ローズベンガル及びエリスロシン;フラビン類、例えば、リボフラビン;チアジン類、例えば、メチレンブルー;ポルフィリン類及び拡張ポルフィリン類、例えば、プロトポルフィリンI〜プロトポルフィリンIX、コプロポルフィリン類、ウロポルフィリン類、メソポルフィリン類、ヘマトポルフィリン類及びサプフィリン類;クロロフィル類、例えば、バクテリオクロロフィルA、フェノチアジン、シアニン、モノアゾ染料(例えば、メチルレッド)、アジンモノアゾ染料(例えば、ジーナスグリーンB)、フェノチアジン染料(例えば、トルイジンブルー)、ローダミン染料(例えば、ローダミンB塩基)、ベンジフェン−オキサジン染料(例えば、ナイルブルーA、ナイルレッド)、オキサジン(例えば、セレスチンブルー)、アンスロキノン染料(例えば、レマゾールブリリアントブルーR)、及びこれらの感光性誘導体を包含する。本明細書に記載されているような、本発明の方法による典型的な光増感剤は、光に曝露すると反応性中間体を産生することが可能な光化学反応を引き起こすことができ、実質的な量の熱エネルギーを放出しない化合物である。いくつかの典型的な光増感剤は、ローズベンガル(RB);リボフラビン−5−リン酸(R−5−P);メチレンブルー(MB);及びN−ヒドロキシピリジン−2−(1H)−チオン(N−HTP)を包含する。
本発明は、光増感剤を含有している生体適合性材料を所望の形状中に配置して、膜を電磁エネルギーに曝露して、それにより膜に架橋を形成し、それによって膜の剛性が増大して、膜が実質的に所望の形状を保持できるようになることによって形成できる成型した生体適合性構造体(組織接合デバイスのような)に関する。
一実施態様では、生体適合性構造体(すなわち、組織接合デバイス)は、架橋している部分の第1セクション及び架橋していない部分の第2セクションを含んでいる。架橋部分の第1セクションが構造に剛性を与える。架橋していない部分の第2セクションは組織(例えば、神経組織)と接触できるように構成されていて、そこでは構造体と組織の一方又は両方を光増感剤と接触させて且つ構造と組織を電磁エネルギーに曝露することによって、非架橋部分を組織のタンパク質分子と架橋することができる。
ある実施態様では、成型した生体適合性構造体の非架橋セクションは、境界領域であり、これは、生体適合性構造体を宿主の組織と結合するために用いると意図されるセクションであることを意味する。境界領域は、宿主の組織と架橋すると意図される生体適合性構造体の何れの部分に位置していてもよい。
別の好ましい例では、生体膜は、当該管腔解剖学的構造を少なくとも部分的に安定化するという方法で、解剖学的構造を少なくとも部分的に被覆する管腔解剖学的構造に付着できる。
一実施態様では、管又は導管の長軸に沿って測定して、境界領域は1mm又はそれ以上の長さでよい。例えば、境界領域は、管又はカテーテルの長軸にそって測定して、その長さが、2、5、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、100、200、300、400、500、600、700、800、900、又は1000mm又はそれ以上であってよい。
本明細書に記載されている成型した生体適合性構造体(組織接合デバイスのような)を、インビトロの実験室的な適用、エクスビボの組織処置を含む多様な適用に、特に生体、例えばヒトに対するインビボ処置、そして特に神経修復及び管腔解剖学的構造の修復を含む、様々な適用での使用に適している。
一実施態様では、本明細書に記載されているような生体適合性導管は、末梢神経の切断端部間の間隙を繋ぐために用いることができる。しかし当然のことながら、表現「間隙を繋ぐ」は、神経の二つの端部の物理的な離脱を必要としているわけではなく、神経の端部は接触しているが、幾つかの或いは全ての神経繊維が切断されているかそれとも損傷していることを含んでもいる。例えば、部分的に架橋している導管を上記のようにして形成することができる。次いで、対象における神経切断面を手術条件下に露呈する。次いで、既に架橋されている導管の部分に光増感剤を塗布されるかもしれないが、光増感剤を導管の内腔表面に少なくとも境界領域を覆うように塗布する。光増感剤は、導管内に挿入されるであろう神経にも又は代替的に神経に適用塗布してもよい。神経のそれぞれの切断端部を導管内に入れ、電磁エネルギーを照射して導管の境界領域を神経断端と架橋する。加えて、切断した神経を導管内に固定するために、1本又はそれ以上の縫合糸を用いることもできる。このような方法で予備成型した導管内に神経を接合することにより神経組織と導管の間に好ましく耐水性接合の形成がもたらされる。前述に加えて、1本又はそれ以上の縫合糸を導管と修復する神経を貫通させることによって導管を補強することができる。一実施態様では、光増感剤を導管の一端のみに塗布して、導管の他端を縫合糸で固定する。
一実施態様では、本発明は、本明細書に記載されているような成型した生体適合性構造体及びそれらの包装材からなるキットを提供する。一実施態様では、キットは予備成型された成型した生体適合性構造体(例えば、組織接合デバイス)を包含する一方、別の実施態様では、キットは生体適合性材料(例えば、組織接合デバイスの予備成型物)及び光増感剤を、成型した生体適合性構造体を形成するための使用説明書とともに含有している。上記何れの実施態様においても、キットは所定の目的のために生体適合性構造体を如何に用いるかを記載した書面による使用説明書も包含することができる。例えば、使用説明書は管状に成型した生体適合性構造体を神経修復のための導管として如何に使用するかを記載していてもよい。使用説明書は、成型した生体適合性構造体を管腔解剖学的構造を安定化するため、動脈硬化性プラークを治療又は予防するために、又は成型した生体適合性構造体又は本明細書に記載されているような目的の組織の内又は上で1つ又はそれ以上の細胞生育及び移動を促進するために、成型した生体適合性構造体を、神経又はその他の組織のような解剖学的構造に接着する方法の記載を包含することができる。典型的なキットは、保管用の容器、例えば、成型した生体適合性構造体及び/又は光増感剤を保管するための遮光及び/又は保冷容器のような包装材を包含することができる。キットに含まれる光増感剤を、多様な形態、例えば粉末、凍結乾燥物、結晶又は液体形態で提供することができる。
本実施例は、縫合によって移植した本発明の羊膜、及び縫合による移植前に完全に架橋したコラーゲンの膜の移植と比較した、固有の神経組織との更なる光架橋により移植されるような本発明のヒト羊膜との間の相違点を示すように設計されている。
羊膜導管の調製
ヒトの胎盤を、企業内倫理委員会の承認のもとに入手した。胎盤をアール平衡塩溶液(Earle's Balanced Salt Solution; Gibco, Grand Island,NY)で数回洗浄して膜からあらゆる残っている血塊を除去した。絨毛膜から羊膜を剥がしてニトロセルロース紙の上に載せて(上皮側を下にして)、これを保管用に切片に切り分けた。切片を100%グリセロールとダルベッコ改変イーグル培地(Gibco, Grand Island NY)の1:1溶液からなり、それぞれの培地100mlにペニシリン−ストレプトマイシン溶液(Gibco, Grand Island NY)を1ml加えた、保管培地に入れた。次いで、切片を1晩−20℃で凍結して、−80℃で長期間保管した。切片は、導管を調製する直前に室温で解凍した。
コラーゲンシート(Collagen Matrix Film, Collagen Matrix Inc, NJ)の1×2cm切片を調製してPBSに浸漬した。次いで、コラーゲンの切片を16Gの血管カテーテルに巻き付けて30分間乾燥させた。次に、0.1%(w/v)のローズベンガル溶液を重複部分に塗布して、1分間吸収させた後、過剰の染料を除去した。染料で処理した領域をnd:YAGレーザーを用いて0.5W/cm2の放射照度で1分間照射した。材料が製造中に部分的に架橋するので、導管をこれ以上処理しなかった。コラーゲン導管を室温で1晩乾燥した(図1B)。
マサチューセッツジェネラル病院(Massachusetts General Hospital)の実験動物愛護(Research Animal Care)に関する企業内小委員会は、本検討の全ての処置を承認した。体重250〜350gの、40匹の雄性SD(Sprague Dawley)ラット(Charles River Laboratories, Wilmington, MA)をペントバルビタールナトリウム(50mg/kg、Abbott Laboratories Chicago, Il)の腹腔内投与で麻酔した。次いで、右の坐骨神経を背外側筋の開裂切開によって露出した。手術用顕微鏡(Codman, Randolph, MA)を用いて、周囲の組織からこの神経を解離して、1cmの切片を外科用メスの刃を用いて鮮明に切り出した。次いで、動物を6つの実験群の1つに無作為化した。
神経の摘出した切片を逆にして神経間隙に置き直した。これは神経間隙の臨床処置における最近の最も標準的な自家神経移植片の役割を果たした。逆にした神経移植片を10/0神経上膜縫合糸(それぞれの末端で約6本)を用いて近位及び末端の神経断端に固定した。
切断された神経の近位及び末端切片を羊膜導管に挿入して、1本の10/0ナイロン神経上膜縫合糸で両端を固定した(図2)。導管のPTB処理領域は補水及びインビボ配置を受けてその管構造を保持した。
切断された神経の近位及び末端切片を羊膜導管に挿入した。導管と神経の重複領域を0.1%(w/v)のローズベンガル溶液で処理した。染料で処理した領域をnd:YAGレーザーを用いて、0.5W/cm2の放射照度で1分間、両端を照射した(図2)。
切断された神経の近位及び末端切片をコラーゲン導管に挿入して、1本の10/0ナイロン神経上膜縫合糸で両端を固定した(図2)。
切断された神経の近位及び末端切片を羊膜導管に挿入した。導管と神経の重複領域を、上記のように(第3群)、染料で処理して照射した。
手術の12週間後に、動物を再度麻酔して、右の挫骨神経を露出した。継続性、神経腫の形成及び間隙を渡る神経再生の徴候について肉眼で神経を検査した。
神経の5mm近位及び遠位を含めて、導管を全て摘出して、2%グルタールアルデヒド(Polysciences, Warrington PA)/2%パラホルムアルデヒド(USB, Cleaveland, OH)溶液中で固定した。次いで、神経を四酸化オスミウム・2水和物の1%アルコール溶液中で後固定して、アラルダイト(araldite)樹脂内に埋め込んだ。ミクロトーム(microtome; Leica, Germany)を用いて、導管の中心点及び導管に最も遠位で1μmの切片を作成した。切片を光学顕微鏡用の0.5%(wv)のトルイジンブルーで染色した。Metamorph Imaging Software v4.6 (登録商標;Universal Imaging Corporation)を用いて、導管の中心点及び導管から5mm遠位に存在する繊維の総数を200倍の画像から算出した。
右腓腹筋及び反対側の正常腓腹筋をそれぞれの動物から摘出して、湿重量を記録した。それぞれの動物について維持された腓腹筋の百分率を計算した(右腓腹筋の質量/左腓腹筋の質量 × 100)。
Windows(登録商標)v2.3 用のSigmastat(登録商標)を用いてデータの分析を実行した。統計的有意性をp値<0.05に設定した。試験群間の差を評価するために、Variance(ANOVA) and Tukey 一対比較試験の分析を用いた。
肉眼所見
全ての動物において自家移植片全般に優れた修復が見られた。
手術後12週に摘出すると、羊膜導管が未だ目で見えた。ローズベンガル染色が中央部分にはっきり見えた(図3b)。導管の全長に渡って、導管が神経組織を含有していることが見えた(図3a)。コラーゲン導管は、12週に完全に再吸収されていた。コラーゲン導管を縫合糸で固定すると(第4群)、全てのケースで神経の帯状組織が近位及び遠位の断端を結合していた(図3b)。しかしながら、コラーゲン導管をPTBを用いて融合させると(第5群)、間隙に渡る神経の再生は見られなかった(図3b)。この群由来の神経又は筋肉に対してこれ以上の定量分析を実施しなかった。コラーゲン導管/PTB群を除いて、全ての群の全ての動物においてピンチ反射が陽性であった。
腓腹筋の質量保存は自家神経移植片群(51.83+/−7.92)で最も大きかったが、羊膜導管/PTB群(46.07+/−7.56 p>0.051)と有意な差はなかった。羊膜導管を縫合糸で固定すると、筋肉質量の保存が羊膜導管/PTB群より有意に低かった(35.15+/−8.12 p<0.01)。最も低い筋肉質量の保存が、コラーゲン導管で処置した動物で観察された(図4a)。
腓腹筋細胞の直径は、自家神経移植片群で最も大きかった(76.25+/−6.36)。羊膜/PTB群は、縫合糸で固定した羊膜導管で処置した動物よりも有意に大きい筋肉繊維の直径を示した(69.85+/−4.69 vs 60.3+/−6.85 p<0.01)。
有髄繊維が1〜4群の全てのケースの導管内に存在していた。PTBで接合した羊膜導管は、縫合糸で固定した羊膜導管より有意に多い有髄繊維を含有していた(図5)。羊膜/PTB群では、神経繊維が導管全体を満たしていたのに対して、羊膜/縫合導管では、繊維組織が末梢的に増大して、繊維が導管の中央に集まっていた(図5)。自家神経群で再生が最も良かったが、これはPTBで接合した羊膜導管よりも有意に優れたものではなかった(図5及び6)。再生は縫合糸で固定したコラーゲン導管においても観察されたが、再生の領域が減少していた(図5)。
当業者は、本明細書に記載されている発明の特定の実施態様の多くの均等物を、通常の実験以上を用いずに、確認或いは解明できるだろう。このような均等物は、以下の特許請求の範囲に包含されることが意図されている。
Claims (15)
- 当該構造体の形状をしている生体適合性材料を含有してなる三次元生体適合性構造体であって、当該構造体が少なくとも架橋されている部分の第1セクション及び少なくとも架橋されていない部分の第2セクションを含有していて、そこで当該第1及び第2セクションは、第2セクションが接合する組織と接触可能になるように構成されていて、そして当該第2セクションと当該組織を光増感剤と接触させ、そして電磁エネルギーを照射することによって、当該架橋されていない部分が接合する組織のタンパク質と架橋できる、三次元生体適合性構造体。
- 羊膜を含有してなる導管であって、当該膜が少なくとも架橋されているタンパク質の第1セクション及び少なくとも架橋されていないタンパク質の第2セクションを含有していて(ここで、当該第1及び第2セクションは、第2セクションが接合する組織と接触可能になるように構成されていて、そして当該第2領域と当該組織を光増感剤と接触させ、そして電磁エネルギーを照射することによって、当該架橋されていないタンパク質が接合する組織のタンパク質と架橋できる)、当該導管は、当該羊膜の第1セクションを光増感剤と接触させること(ここで、当該羊膜の第2セクションは当該光増感剤と接触しない);当該羊膜を導管に形成すること;電磁エネルギーを当該羊膜に照射すること(ここで当該第1セクションの部分の間に架橋が形成される)それによって導管が形成されることによって作成される、導管。
- 当該生体適合性材料が生体適合性膜である、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該光増感剤が、キサンテン、フラビン、フェノチアジン、トリフェニルメチル、シアニン、モノアゾ染料、アジンモノアゾ染料、フェノチアジン染料、ローダミン染料、ベンジフェンオキサジン染料、オキサジン、アントロキノン染料、及びプロフィリンよりなる群から選ばれる、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体又は請求項2に記載の導管。
- 当該生体適合性材料が、羊膜、SIS、筋膜、硬膜、腹膜、及び心膜よりなる群から選ばれる、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該生体適合性材料が羊膜である、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該生体適合性材料がヒトの羊膜である、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該構造体が管である、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該第2セクションが境界領域である、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体又は請求項2に記載の導管。
- 当該構造体が管であって、そして当該境界領域が当該管の末端に位置している、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該境界領域が当該管の両端にある、請求項10に記載の三次元生体適合性構造体。
- 当該キサンテンがローズベンガルである、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体又は請求項2に記載の導管。
- 電磁エネルギーを1.5W/cm2未満の放射照度で照射する、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体又は請求項2に記載の導管。
- 電磁エネルギーを約0.50W/cm2の放射照度で照射する、請求項1に記載の三次元生体適合性構造体又は請求項2に記載の導管。
- 当該第2セクションが当該導管の末端に位置している境界領域である請求項2に記載の導管。
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