JP5608087B2 - Ｃ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２に結合する抗体及びそれを用いたｃ型肝炎ウイルスの遺伝子型の同定方法 - Google Patents

Description

本発明は、Ｃ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２に結合する抗体及びそれを用いたＣ型肝炎ウイルスの遺伝子型の同定方法に関する。

Ｃ型肝炎ウイルス（Ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｃ ｖｉｒｕｓ；以下、ＨＣＶ）は非Ａ非Ｂ肝炎の主要な原因ウイルスであり、主に輸血及び性的接触を介して感染する（非特許文献１）。日本におけるＨＣＶの保有者は、肝炎の症状を示していない人（ウイルスキャリア）を含めると２００万人以上であり、世界では１億７０００万人以上であると推定されている。ＨＣＶの保有者が増加する主な原因は、ＨＣＶ感染による肝炎の慢性化率が７０〜８０％と高いことや、インターフェロン以外に有効な抗ウイルス剤がないことである。

Ｃ型慢性肝炎患者の半数以上の病態は、悪化の一途を辿ることがほぼ確実で、肝硬変や肝癌へと進行することが知られているため、Ｃ型肝炎は予後の悪い深刻な感染症であるといえる。このため、Ｃ型肝炎の治療及びＨＣＶの検出に関する研究は、医学的に重要であり、新たな治療法及び治療薬の開発が望まれている。

ＨＣＶは、約９．６ｋｂの＋鎖の一本鎖ＲＮＡをゲノムとして有するＲＮＡウイルスであり、このゲノムには翻訳後に宿主由来のシグナルペプチダーゼやＨＣＶ由来のプロテアーゼで１０種類のウイルスタンパク質（Ｃｏｒｅ、Ｅ１、Ｅ２、ｐ７、ＮＳ２、ＮＳ３、ＮＳ４Ａ、ＮＳ４Ｂ、ＮＳ５Ａ及びＮＳ５Ｂ）に切断される前駆体タンパク質がコードされている。ＨＣＶは、ゲノムの塩基配列を系統解析することによって１０種類以上の遺伝子型（例えば、１ａ、１ｂ、２ａ、２ｂ、３ａ及び３ｂ）に分類されている（非特許文献１〜４）。

最近では、ＨＣＶの遺伝子型の違いによって、インターフェロンの効果に大きな差があることがわかってきており、インターフェロンの抗ウイルス作用は、遺伝子型が１ａ又は１ｂのＨＣＶに対して発揮されにくいことが明らかになっている（非特許文献５及び６）。

さらに、インターフェロンの効果が比較的良好に認められる、遺伝子型２ａのＨＣＶと遺伝子型２ｂのＨＣＶの間においても、インターフェロンの抗ウイルス作用の強さには差があることがわかってきており、遺伝子型が２ｂのＨＣＶよりも遺伝子型が２ａのＨＣＶに対してより強い作用が認められることが示唆されている（非特許文献７）。

ＨＣＶの診断方法としては、Ｃ型肝炎患者の血清中には７０〜８０％の割合でＨＣＶの非構造領域のＮＳ４領域（Ｃ１００−３抗原）を認識する抗ＨＣＶ抗体が存在するため、Ｃ１００−３抗原を用いて血清中の抗ＨＣＶ抗体を検出するＨＣＶ抗体検査が知られている（非特許文献１）。また、その改良法としてＣ１００−３抗原、コア抗原及びＮＳ３領域の抗原を組み合わせて検出感度を上げた第二世代の抗体アッセイ系、さらには、ＮＳ５領域の抗原も含めた第三世代の抗体アッセイ系が開発され、これらのアッセイ系によるＨＣＶ抗体検査が利用されている（非特許文献８）。

また、これらのＨＣＶ抗体検査以外にも、血清中のＨＣＶコアタンパク質の量を直接測定するＨＣＶコア抗原検査（非特許文献９）や、ＰＣＲ法によってＨＣＶのゲノムの有無を確認する核酸増幅検査（Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｔｅｓｔ:ＮＡＴ）（非特許文献１０）がある。

しかしながら、ＨＣＶ抗体検査では、過去にＨＣＶ感染があった被検者の場合には、Ｃ型肝炎が完治している場合であっても陽性と判定されることは避けられず、さらに、抗ＨＣＶ抗体が血液中で検出されるには感染後１〜３ヶ月の期間を要するため、この時期に検査を行った場合には、ＨＣＶが検出されずに陰性と判断されてしまうという問題点がある。

また、ＨＣＶコア抗原検査では、標的分子であるコアタンパク質がＨＣＶ粒子の内部に存在するため、ＳＤＳを使用してエンベロープを壊してコアタンパク質を遊離させる処理が必要となり、ＳＤＳの処理時間によっては、コアタンパク質を変性させたり、抗原抗体反応を阻害する物質が遊離したりして、検出感度に影響を与えることがある。

さらに、ＨＣＶ抗体検査及びＨＣＶコア抗原検査では、ＨＣＶ陽性であると判断された場合であっても、ＨＣＶの遺伝子型までは同定できないのが現状であり、インターフェロン療法を行うには、核酸増幅検査等のさらなる検査を行ってＨＣＶの遺伝子型を同定する必要がある。すなわち、ＨＣＶの遺伝子型によってインターフェロンの抗ウイルス作用が大きく異なり、特に、遺伝子型が１ａ及び１ｂの場合には、有効な抗ウイルス作用が認められず、逆にインターフェロンの副作用によって患者を苦しめることになるからである。

一方、核酸増幅検査では、被験者の血清中のＲＮＡを標的分子とするため、検査試料の保存性と安定性とに欠け、ＲＴ−ＰＣＲ法を利用する点でもさまざまな課題と注意点がある。例えば、標的分子であるＲＮＡをＤＮＡに転写してＰＣＲを行うため、ＲＮＡの分解や逆転写酵素の失活・阻害によって擬陰性となったり、反応系へのクロスコンタミネーションによって擬陽性となったりする。このため、タンパク質を標的分子とするＨＣＶ抗体検査やＨＣＶコア抗原検査と比較して、精度の面で劣るとされている。
Ｃｈｏｏら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、１９８９年、２４４巻、ｐ．３５９〜３６２ Ｓｉｍｍｏｎｄｓら、Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ、１９９４年、１０巻、ｐ．１３２１〜１３２４ Ｏｋａｍｏｔｏら、Ｊ. Ｇｅｎ. Ｖｉｒｏｌ.、１９９２年、７３巻、ｐ．７３〜６７９ Ｍｏｒｉら、Ｂｉｏｃｈｅｍ. Ｂｉｏｐｈｙｓ. Ｒｅｓ. Ｃｏｍｍｕｎ.、１９９２年、１８３巻、ｐ．３３４〜３４２ Ｆｒｉｅｄら、Ｎ. Ｅｎｇｌ. Ｊ.Ｍｅｄ.、２００２年、３４７巻、ｐ.９７５〜９８２ Ｌｕｓｉｄａら、Ｊ. Ｃｌｉｎ. Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ.、２００１年、３９巻、ｐ．３８５８〜３８６４ Ｍｕｒａｋａｍｉら、Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ、１９９９年、３０巻、ｐ．１０４５〜１０５３ Ａｕｃｅｌｌａら、Ｂｌｏｏｄ Ｐｕｒｉｆ．、２０００年、１８巻、ｐ．１１０〜１１４ Ｆａｂｒｉｚｉら、 Ｊ. Ｃｌｉｎ. Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ.、２００５年、４３巻、ｐ．４１４〜４２０ Ｖｅｌａｔｉら、Ｅｕｒｏ Ｓｅｒｖｅｉｌｌ．、２００５年、１０巻、ｐ．１２〜１４

そこで本発明は、ＨＣＶの表面にあるエンベロープに結合し、遺伝子型が１ａ、１ｂ及び２ａであるＨＣＶの遺伝子型の同定に利用できる抗体及びこれらの抗体を用いたＨＣＶの遺伝子型の同定方法を提供することを目的としている。

上記目的を達成するため、本発明者らは鋭意研究を重ね、遺伝子型が２ａのＨＣＶのエンベロープタンパク質２を抗原とするモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを取得し、その中から、ＨＣＶの遺伝子型２ａのエンベロープタンパク質２のみに特異的に結合する抗体、ＨＣＶの遺伝子型２ａ及び１ｂのエンベロープタンパク質２の双方のみに結合する抗体並びにＨＣＶの遺伝子型２ａ、１ｂ及び１ａのエンベロープタンパク質２のいずれにも結合する抗体を見出し、本発明を完成させるに至った。

すなわち、本発明は、遺伝子型が２ａであるＨＣＶのエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、遺伝子型が１ａであるＨＣＶのエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しない抗体を提供する。

上記抗体は、配列表の配列番号１記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する抗体であることが好ましく、このような抗体として、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体を例示できる。

また上記抗体は、遺伝子型が２ａであるＨＣＶのエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、遺伝子型が１ａであるＨＣＶのエンベロープタンパク質２及び遺伝子型が１ｂであるＨＣＶのエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しない抗体であることが好ましい。

上記抗体は、配列表の配列番号２又は３記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する抗体であることがより好ましく、このような抗体として、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０又はＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体を例示できる。

さらに上記抗体は、Ｊ６ＣＦ株のエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、ＪＦＨ１株のエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しない抗体であることが好ましく、このような抗体として、配列表の配列番号４記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する抗体、さらには、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８３であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体、を例示できる。

また本発明は、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体のいずれにも結合しないＨＣＶの遺伝子型を１ｂであると同定し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合するＨＣＶの遺伝子型を２ａであると同定し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８２であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体のいずれにも結合しないＨＣＶの遺伝子型を１ａであると同定する、ＨＣＶの遺伝子型の同定方法を提供する。

本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願第2008-254338号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。

本発明によれば、遺伝子型が１ａ、１ｂ及び２ａであるＨＣＶの遺伝子型を簡易かつ精度よく同定することを可能にし、インターフェロン療法に適したＣ型肝炎患者を効率的に選別できる。特に、インターフェロン療法による治療効果が望めない遺伝子型が１ａ又は１ｂ型のＨＣＶに感染したＣ型肝炎患者に対して、副作用を軽減するとともに新たな治療方法を選択する機会を与えることができる。

ＨＣＶの前駆タンパク質の模式図である。黒の四角は膜貫通領域を示す。 ３×ＦＬＡＧタンパク質と抗原Ｅ２タンパク質の融合タンパク質の模式図である。 抗原Ｅ２タンパク質とヒト免疫グロブリンＦｃドメインとの融合タンパク質の模式図である。 ３×ＦＬＡＧＪ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質の精製工程の各画分のＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示した図である。３ＸＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭのＣＯＳ１細胞での発現と精製が示されている。溶出画分に３×ＦＬＡＧＪ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質が検出された。図中の電気泳動写真の各レーンは以下の通り：１．分子量マーカー、２．培養上清、３．抗ＦＬＡＧ抗体カラムＶｏｉｄ画分、４．抗ＦＬＡＧ抗体カラム溶出画分１、５．抗ＦＬＡＧ抗体カラム溶出画分２、６．抗ＦＬＡＧ抗体カラム溶出画分３、７．抗ＦＬＡＧ抗体カラム溶出画分４、８．分子量マーカー。 Ｊ６Ｅ２−Ｆｃ、ＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃ、ＴＨＥ２−Ｆｃ、Ｃｏｎ１Ｅ２−Ｆｃ、Ｊ１Ｅ２−Ｆｃ及びＨ７７Ｅ２−Ｆｃタンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示した図である。各種Ｅ２Ｆｃタンパク質は、還元下では、約９７ｋＤａであることを示す。精製された各ＨＣＶ株由来の抗原Ｅ２タンパク質とヒト免疫グロブリンＦｃドメインとの融合タンパク質が示されている。図中の電気泳動写真の各レーンは以下の通り：１．分子量マーカー、２．Ｊ６Ｅ２−Ｆｃ、３．ＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃ、４．ＴＨＥ２−Ｆｃ、５．Ｃｏｎ１Ｅ２−Ｆｃ、６．Ｊ１Ｅ２−Ｆｃ、７．Ｈ７７Ｅ２−Ｆｃ、８．分子量マーカー。 各モノクローナル抗体の種々の遺伝子型／株のＨＣＶのＥ２タンパク質への結合性及び抗体サブタイプを示した図である。抗体が抗原Ｅ２タンパク質に結合する強度を−から＋＋＋で示している。−： ＯＤ４５０ｎｍ＜０．１、＋： ０．１≦ＯＤ４５０ｎｍ＜０．２５、＋＋： ０．２５≦ＯＤ４５０ｎｍ＜０．４、＋＋＋： ０．４≦ＯＤ４５０ｎｍ。８Ｄ１０−３は遺伝子型１ａ、１ｂ及び２ａのＨＣＶの抗原Ｅ２タンパク質に結合し、１Ｇ２−３２及び２Ｆ２−７は遺伝子型２ａの抗原Ｅ２タンパク質に結合し、４Ｅ８−８は遺伝子型１ｂと２ａの抗原Ｅ２タンパク質に結合する抗体であることを示し、Ｍ１Ｅ１２−１はＪ６ＣＦ株の抗原Ｅ２タンパク質に、９Ａ５−４はＪ６ＣＦ株とＨ７７株の抗原Ｅ２タンパク質に結合するモノクローナルであることを示している。 ８Ｄ１０−３モノクローナル抗体（図７Ａ）、１Ｇ２−３２モノクローナル抗体（図７Ｂ）、４Ｅ８−８モノクローナル抗体（図７Ｃ）、２Ｆ２−７モノクローナル抗体（図７Ｄ）及びＭ１Ｅ１２−１モノクローナル抗体（図７Ｅ）のＪ６ＣＦ株のＨＣＶの抗原Ｅ２タンパク質由来のアミノ酸配列を有するペプチドに対する結合強度を示した図である。 モノクローナル抗体１Ｇ２−３２及び８Ｄ１０−３を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡにおける種々の遺伝子型のＨＣＶ／ＨＣＶ株由来の抗原Ｅ２タンパク質の検出感度を示した図である。図中、黒丸はＪ６Ｅ２−Ｆｃ、白抜き丸はＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃ、黒四角はＴＨＥ２−Ｆｃ、白抜き四角はＣｏｎ１Ｅ２−Ｆｃ、黒菱形はＪ１Ｅ２−Ｆｃ、白抜き菱形はＨ７７Ｅ２−Ｆｃを表す。 モノクローナル抗体８Ｄ１０−３を用いたウェスタンブロット法における種々の遺伝子型／株のＨＣＶＥ２タンパク質の検出の有無を示した図である。

以下、本発明を実施するための好ましい実施形態について説明する。

本発明の抗体は、遺伝子型が２ａであるＨＣＶ（以下、ＨＣＶ２ａ）のエンベロープタンパク質２（以下、Ｅ２タンパク質）に特異的に結合し、遺伝子型が１ａであるＨＣＶ（以下、ＨＣＶ１ａ）のＥ２タンパク質には免疫学的に反応しないことを特徴としており、ＨＣＶ１ａのＥ２タンパク質及び遺伝子型が１ｂであるＨＣＶ（以下、ＨＣＶ１ｂ）のＥ２タンパク質の双方に免疫学的に反応しない抗体がより好ましい実施形態である。

上記抗体は、ＨＣＶのＥ２タンパク質の膜貫通領域（膜貫通ドメインとも呼ぶ）を含まない領域からなる抗原タンパク質又は該タンパク質の一部からなるペプチドを抗原として動物に免疫し、Ｅ２タンパク質に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作製して、ＨＣＶ２ａのＥ２タンパク質に特異的に結合し、ＨＣＶ１ａ遺伝のＥ２タンパク質には免疫学的に反応しない抗体、さらには、ＨＣＶ１ａのＥ２タンパク質及びＨＣＶ１ｂのＥ２タンパク質の双方に免疫学的に反応しない抗体、を産生するハイブリドーマをスクリーニングすれば調製できる。

ここで、Ｅ２タンパク質は、ＨＣＶの前駆体タンパク質が宿主細胞由来のシグナルペプチダーゼとＨＣＶ自身がコードしている２種類のプロテアーゼによって開裂することによって生じる機能的ウイルスタンパク質の１つであり、ＨＣＶ２ａであるＪ６ＣＦ株を例に挙げると、前駆体タンパク質のＮ末端に位置するメチオニンを１番目のアミノ酸とした場合に、第３８４番目〜第７５０番目に位置するタンパク質（３６７アミノ酸）である。Ｅ２タンパク質の第７２２番目〜第７５０番目のアミノ酸の領域は、膜貫通ドメインである（Ｃｏｃｑｕｅｒｅｌら、Ｊ. Ｖｉｒｏｌ.、２０００年、７４巻、ｐ．３６２３〜３６３３）。図１は、ＨＣＶの前駆体タンパク質の模式図である。

以下に、上記抗体を得るための手法について、順次説明する。

１）抗原となるＥ２タンパク質由来のタンパク質又はペプチドの選定
上記抗体を得るために動物に免疫する抗原としては、ＨＣＶ２ａのＥ２タンパク質の膜貫通領域を含まない領域からなるタンパク質（以下、抗原Ｅ２タンパク質）又は該タンパク質の一部からなるペプチド（抗原Ｅ２ペプチド）を利用できるが、抗原Ｅ２ペプチドの場合は、遺伝子型が２ａ以外のＨＣＶのＥ２タンパク質に対してホモロジーの低い領域からなることが必要である。

抗原Ｅ２タンパク質としては、ＨＣＶ２ａの前駆体タンパク質（例えば配列番号５）の第３８４番目〜第７２０番目のアミノ酸からなるタンパク質を選定すればよいが、前駆体タンパク質の第５３０番目〜第５６２番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むタンパク質を選定することが好ましく、前駆体タンパク質の第４６５番目〜第４８４番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列、第５５９番目のアミノ酸〜第５８４番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列及び第６８３番目〜第７１９番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列、からなる群からなる１以上のアミノ酸配列を含むタンパク質を選定することがより好ましい。

また、抗原Ｅ２ペプチドとしては、ＨＣＶ２ａの前駆体タンパク質（例えば配列番号５）の第５３０番目〜第５６２番目のアミノ酸（より好ましくは、第５３１番目〜第５４９番目のアミノ酸、さらに好ましくは、第５３１番目〜第５４０番目のアミノ酸）を含み、ペプチドの長さが１０〜１９アミノ酸（より好ましくは、１０アミノ酸）であるペプチドを選定すればよいが、前駆体タンパク質の第４６５番目〜第４８４番目のアミノ酸（より好ましくは、第４６５番目〜第４７７番目のアミノ酸、さらに好ましくは第４６８番目〜第４７７番目のアミノ酸）を含み、ペプチドの長さが１０〜１３アミノ酸（より好ましくは、１０アミノ酸）であるペプチド、前駆体タンパク質の第５５９番目〜第５８４番目のアミノ酸（より好ましくは、第５６４番目〜第５７６番目のアミノ酸、さらに好ましくは、第５６７番目〜第５７６番目のアミノ酸）を含み、ペプチドの長さが１０〜１３アミノ酸（より好ましくは、１０アミノ酸）であるペプチド、又は、前駆体タンパク質の第６８３番目〜第７１９番目のアミノ酸（好ましくは、第７０４番目〜第７１９番目のアミノ酸、より好ましくは、第７０９番目〜第７１９番目のアミノ酸）を含み、ペプチドの長さが１０〜１９アミノ酸（より好ましくは、１０アミノ酸）であるペプチド、を選定することがより好ましい。

なお、ＨＣＶ２ａのゲノムの塩基配列は、既にいくつものウイルス株で明らかとなっており（Ｙａｎａｇｉら、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１９９９年、２６２巻、ｐ．２５０〜２６３）、ＧｅｎＢａｎｋから入手可能である。例えば、ＨＣＶ２ａであるＪＦＨ１株のゲノムの塩基配列を開示するＧｅｎＢａｎｋ アクセッション番号は、ＡＢ０４７６３９であり、Ｊ６ＣＦ株のゲノムの塩基配列を開示するＧｅｎＢａｎｋ アクセッション番号は、ＡＦ１７７０３６である。

２）抗原Ｅ２ペプチドの調製
上記のように選定された抗原Ｅ２ペプチドは、ＨＣＶ２ａの前駆体タンパク質をアミノ酸配列情報に基づいて、直接、化学合成することができ、例えば、ペプチド合成機を使用すれば、動物への免疫に使用可能な抗原を容易に大量調製できる。

３）抗原Ｅ２タンパク質の調製
上記のように選定された抗原Ｅ２タンパク質は、ＨＣＶ２ａの前駆体タンパク質をコードする領域の塩基配列情報に基づいて、抗原Ｅ２タンパク質をコードするＤＮＡ断片を合成し、得られたＤＮＡ断片から抗原Ｅ２タンパク質を細胞で翻訳させれば、動物への免疫に使用可能な抗原を大量に調製できる。以下、具体的に説明する。

抗原Ｅ２タンパク質は、抗原Ｅ２タンパク質をコードするＤＮＡ断片が組み込まれた発現ベクターを構築し、例えば、哺乳動物細胞、昆虫細胞、酵母、大腸菌等に形質導入することによって、各細胞で生産させることができるが、哺乳動物細胞で分泌発現させることが好ましい。この場合、抗原Ｅ２ペプチドをコードするＤＮＡ断片を、シグナルペプチド配列の下流にコドンのフレームが合うように連結し、その３’末端に停止コドンを付加して発現ベクターに挿入すればよい。

抗原Ｅ２タンパク質を分泌発現させる哺乳動物細胞としては、例えば、ＣＯＳ−１、ＣＯＳ−７、Ｖｅｒｏ、ＣＶ−１、ＣＨＯ（以下、ＣＨＯ、ｄｈｆｒ遺伝子欠損ＣＨＯ、ハムスター細胞ＢＨＫ、ラットＧＨ３、ラット褐色腫由来細胞ＰＣ１２、マウスＬ細胞、マウスＣ１２７細胞、マウスミエローマ細胞ＳＰ２／０、ＮＳＯ、ＮＳ−１、マウスリンパ腫細胞ＥＬ４、マウス線維芽細胞ＮＩＨ３Ｔ３、１０Ｔ１／２、マウス筋芽細胞Ｃ２Ｃ１２、マウスストローマ細胞ＰＡ６、ＳＴ２、ＯＰ９、Ｔｓｔ−４、ヒト巨核芽球細胞ＣＭＫ、ヒトＴ細胞Ｊｕｒｋａｔ、ヒト腎上皮細胞２９３、ヒト肝臓ガン細胞Ｈｕｈ７、ＨｅｐＧ２、ＩＭＹ−Ｎ９、ヒト骨肉腫細胞ＭＧ−６３、ヒトＦＬ細胞、白色脂肪細胞、卵細胞、ＥＳ細胞を挙げることができる。

細胞で抗原Ｅ２タンパク質を組換え発現させるためにプロモーターの制御下に当該タンパク質をコードするＤＮＡを挿入して用いることができる。哺乳動物細胞で抗原Ｅ２タンパク質を組換え発現させるために使用可能なプロモーターとしては、例えば、ＳＲαプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＬＴＲプロモーター、ＣＭＶプロモーター、アクチンプロモーター、ＥＦ−１α（ｅｌｏｎｇａｔｉｏｎ ｆａｃｔｏｒ−１α）プロモーター、ユビキチンプロモーター、ＰＧＫ（ホスフォグリセリン酸キナーゼ）プロモーターを挙げることができる。

抗原Ｅ２タンパク質を哺乳動物細胞で分泌発現させるための発現ベクターとしては、例えば、ｐＳｅｃＴａｇ／ＦＲＴ／Ｖ５−Ｈｉｓ（インビトロジェン社）、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−９（シグマ社）、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ１３（シグマ社）、ｐＦＵＳＥ−Ｆｃ２（インビボジェン社）及びｐＴｒｉＥｘ−７（ノバジェン社）を挙げることができる。発現ベクターに組み込まれているシグナルペプチド配列としては、プレプロトリプシンのシグナルペプチドが好ましく、プレプロトリプシンのシグナルペプチド配列を有するベクターとしては、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−９（シグマ社）、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３（シグマ社）を例示できる。なお、シグナルペプチドを含むタンパク質が哺乳動物細胞で発現されるとシグナルペプチドは除去されるため、抗原Ｅ２タンパク質を使用する際にシグナルペプチドが問題となることはない。

抗原Ｅ２タンパク質を哺乳動物細胞で分泌発現させる際には、目的とする抗原Ｅ２タンパク質を標識タンパク質（例えば、Ｔａｇ）との融合タンパク質として発現させ、標識タンパク質に対する抗体や特異的に結合する分子を利用して、抗原Ｅ２タンパク質の検出や精製を行うことができる。標識タンパク質としては、ＦＬＡＧペプチド、３×ＦＬＡＧペプチド、ＨＡペプチド、３×ＨＡペプチド、ｍｙｃペプチド、６×Ｈisペプチド、ＧＳＴポリペプチド、ＭＢＰポリペプチド、ＰＤＺドメインポリペプチド、アルカリフォスファターゼ、免疫グロブリンＦｃドメイン、アビジン等を挙げられる。抗原Ｅ２タンパク質の調製に使用する標識タンパク質としては、ＦＬＡＧペプチド、ＨＡペプチド及び免疫グロブリンＦｃドメインが適しており、免疫グロブリンＦｃドメインがより適している。

図２は、抗原Ｅ２タンパク質と３×ＦＬＡＧタンパク質との融合タンパク質の模式図であり、図３は、抗原Ｅ２タンパク質と免疫グロブリンＦｃドメインとの融合タンパク質の模式図である。

免疫グロブリンＦｃドメインは、ヒト、サル、マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、ニワトリ由来のものが使用でき、ヒト由来のものが好適である。なお、免疫グロブリンＦｃドメインを構成する免疫グロブリンの重鎖のクラスは、ＩｇＭ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４の何れであっても良い。

ヒト免疫グロブリンのアミノ酸配列は、Ｅｄｅｌｍａｎらにより報告されている（Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃi． ＵＳＡ、１９６９年、６３巻、ｐ．７８〜８５）。また、ヒト免疫グロブリンの重鎖のｃＤＮＡの塩基配列情報は、ＧｅｎＢａｎｋより入手可能であり（重鎖のアクセッション番号：ＢＸ６４０６２７等）、入手した塩基配列に基づいてＰＣＲプライマーを設計し、ヒト脾臓細胞のｃＤＮＡライブラリーやヒトゲノミックＤＮＡを鋳型にＰＣＲを行えば、免疫グロブリンＦｃドメインのｃＤＮＡをクローニングできる。

ＨＣＶのＥ２タンパク質と免疫グロブリンＦｃドメインとの連結部位は直接連結することができるが、リンカーとなるペプチドを挿入して連結してもよい。リンカーとなるペプチドとしては、Ｓｅｒ−Ｇｌｙ、Ａｓｐ−Ｐｒｏ、Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｇｌｕ、Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｇｌｕ、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ及び（Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ）×３等が挙げられる。

なお、昆虫細胞に抗原Ｅ２タンパク質を分泌発現させる場合には、例えば、Ｓｆ２１、Ｓｆ９、Ｈｉｇｈ Ｆｉｖｅ^ＴＭ等の昆虫細胞に、ポリヘドリン（多角体）プロモーター、ｐ１０プロモーター等を使用した発現ベクターを用いて形質導入して、抗原Ｅ２タンパク質又は抗原Ｅ２タンパク質と標識タンパク質の融合タンパク質を発現させればよい。

また、酵母に抗原Ｅ２タンパク質を分泌発現させる場合には、例えば、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）、ピヒア・パストリス(Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ)に、ｇａｌ１プロモーター、ｇａｌ１０プロモーター、ヒートショック蛋白質蛋白質プロモーター、ＭＦα１プロモーター、ＰＨＯ５プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＧＡＰプロモーター、ＡＤＨプロモーター、ＡＯＸ１プロモーター等を使用した発現ベクターを用いて形質導入して、抗原Ｅ２タンパク質又は抗原Ｅ２タンパク質と標識タンパク質の融合タンパク質を発現させればよい。

大腸菌に抗原Ｅ２タンパク質を分泌発現させる場合には、例えば、ＸＬ１−Ｂｌｕｅ株、ＢＬ−２１株、ＪＭ１０７株、ＴＢ１株、ＪＭ１０９株、Ｃ６００株、ＨＢ１０１株等の大腸菌株に、ｔｒｐプロモーター、ｌａｃプロモーター、ＰＬプロモーター、Ｔ７プロモーター、ｔａｃプロモーター等を使用した発現ベクターを用いて形質転換して、抗原Ｅ２タンパク質又は抗原Ｅ２タンパク質と標識タンパク質の融合タンパク質を発現させればよい。

哺乳動物細胞及び昆虫細胞に抗原Ｅ２タンパク質を分泌発現させるための発現ベクターを形質導入する方法としては、リポフェクション法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法、ＤＥＡＥ−デキストラン法、マイクロインジェクション法等が挙げられる。より具体的には、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ ３ｒｄ． Ｅｄ．の１６．１−１６．６２（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、２００１年）に記載の方法に従って行なうことができる。

大腸菌への発現ベクターの導入方法は、大腸菌にＤＮＡを導入する方法であれば特に限定されるものではない。例えばカルシウムイオンを用いる方法（Ｃｏｈｅｎら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， ＵＳＡ， １９７２年、６９巻、ｐ．２１１０〜２１１４）、エレクトロポレーション法等が挙げられる。

酵母への発現ベクターの導入方法は、酵母にＤＮＡを導入する方法であれば特に限定されず、例えばエレクトロポレーション法（Ｂｅｃｋｅｒら、Ｍｅｔｈｏｄｓ． Ｅｎｚｙｍｏｌ．、１９９０年、１９４巻、ｐ．１８２〜１８７）、スフェロプラスト法（Ｈｉｎｎｅｎら、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， ＵＳＡ、１９７８年、７５巻、ｐ．１９２９〜１９３３）、酢酸リチウム法（Ｉｔｏｈら、Ｊ． Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．、１９８３年、１５３巻、ｐ．１６３〜１６８）等が挙げられる。

形質導入された細胞の培養はそれ自体公知の方法で行えばよいが、哺乳動物細胞を培養する培地としては、例えば、約５〜２０％の胎児牛血清（ＦＢＳ）を含むＭＥＭ培地、ＤＭＥＭ培地、ＲＰＭＩ １６４０培地、１９９培地（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、１９５０年、７３巻、ｐ．１）等が用いられ、ｐＨは約６〜８であるのが好ましい。無血清培地としては、ＣＤ−ＣＨＯ、２９３ ＳＦＭ−ＩＩ、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭ（いずれもインビトロジェン社）を使用でき、必要に応じて血清やサプリメントを添加してもよい。細胞の培養は、３０〜４０℃で１５〜６０時間行えばよく、必要に応じて通気や撹拌をすることが好ましい。

細胞培養が終了した後は、培養液を遠心分離等により細胞を除去し、得られた培養上清から抗原Ｅ２タンパク質又は抗原Ｅ２タンパク質と標識タンパク質との融合タンパク質を精製することができる。抗原Ｅ２タンパク質又は抗原Ｅ２タンパク質と標識タンパク質の融合タンパク質の精製は、当業者に公知のタンパク質分離精製手法に従って行えばよく、例えば、硫酸アンモニウム沈殿、ゲルクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を組み合わせることによって単離精製できる。

例えば、培養液中の抗原Ｅ２タンパク質は、ヘパリンカラム、レクチンカラムを使用すれば容易に精製できるが、３×ＦＬＡＧペプチドとの融合タンパク質の場合は、抗ＦＬＡＧ抗体カラムを、６×Ｈｉｓペプチドとの融合タンパク質の場合は、ニッケルカラム、亜鉛カラム、コバルトカラムを、免疫グロブリンＦｃドメインとの融合タンパク質の場合は、プロテインＡカラム、プロテインＧカラムが、ＨＡペプチドを持つキメラタンパク質は、抗ＨＡ抗体カラムを使用すればより効率的に精製できる。

精製された抗原Ｅ２タンパク質又は抗原Ｅ２タンパク質と標識タンパク質との融合タンパク質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分画後にクマシーブリリアントブルー染色又は銀染色で検出できるが、融合タンパク質の場合は融合させた標識タンパク質に対する抗体を用いて、ウェスタンブロット法で検出することもできる。

４）抗原Ｅ２ペプチド又は抗原Ｅ２タンパク質を用いた免疫
ＨＣＶ２ａのＥ２タンパク質に特異的に結合し、ＨＣＶ１ａのＥ２タンパク質には免疫学的に反応しない抗体、より好ましくは、ＨＣＶ１ａのＥ２タンパク質及びＨＣＶ１ｂのＥ２タンパク質の双方に免疫学的に反応しない抗体を得るには、上記の抗原Ｅ２ペプチド又は抗原Ｅ２タンパク質を用いて動物を免疫して、ポリクローナル抗体を取得したり、目的とするモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングする必要がある。

免疫する動物としては、ハイブリドーマ細胞を作製することが可能な脾細胞を有する非ヒト動物であればよく、例えば、マウス、ラット、ハムスター、ラビット、ニワトリが挙げられるが、マウスがより好ましく使用できる。

免疫の方法としては、例えば、４〜１０週令のマウスの皮下又は腹腔内に、アジュバントとともに上記の抗原Ｅ２ペプチド又は抗原Ｅ２タンパク質を数回投与し、血中抗体価の上昇が確認された後に抗原Ｅ２ペプチド又は抗原Ｅ２タンパク質のみを静脈内又は腹腔内に投与することによりブーストし、３〜１０日目（好適には４日目）に、血液又は脾臓細胞を採取すればよい。この場合、採取した血液から得られる血清は、抗体価を測定し、目的とする抗原を特異的に認識するものであればポリクローナル抗体として利用できる。

アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント、フロイント不完全アジュバント、水酸化アルミニウムゲルと百日咳菌ワクチンの混合物、Ｔｉｔｅｒ Ｍａｘ Ｇｏｌｄ（Ｖａｘｅｌ社）又はＧＥＲＢＵアジュバント（ＧＥＲＢＵ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｋ社）等を例示できる。

血中抗体価の測定は、免疫した動物の眼底静脈叢又は尾静脈より採血し、得られた血液中に抗原Ｅ２ペプチド又は抗原Ｅ２タンパク質に反応する抗体が有無を酵素免疫測定法（ＥＩＡ）で調べればよい。

５）ハイブリドーマ細胞の作製
血中抗体価の上昇が確認され、ブーストを行った後３〜１０日目に採取した免疫動物の脾臓細胞を骨髄腫細胞と細胞融合させれば、自律増殖能を持ったハイブリドーマ細胞を作製することができ、目的の特異性をもった抗体を産生するハイブリドーマ細胞をスクリーニングすることによって、モノクローナル抗体を大量に調製することができる。

細胞融合に使用する骨髄腫細胞としては、例えば、マウス由来の株化細胞であるＰ３−Ｘ６３Ａｇ８−Ｕ１（Ｐ３−Ｕ１）、ＳＰ２／０−Ａｇ１４（ＳＰ２／０）、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８６５３（６５３）、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８（Ｘ６３）、Ｐ３／ＮＳ１／１−Ａｇ４−１（ＮＳ１）等を使用でき、これらの細胞株は、理化学研究所バイオリソースセンター、ＡＴＣＣ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）又はＥＣＡＣＣ（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅｓ）から入手可能である。

脾細胞と骨髄腫細胞との細胞融合は、両細胞を洗浄した後、骨髄腫細胞１に対し脾細胞を１〜１０の割合で混合し、融合促進剤として、平均分子量１０００〜６０００のポリエチレングリコール又はポリビニールアルコールを加えたり、電気刺激（例えば、エレクトロポレーション）を利用した市販の細胞融合装置を用いて行えばよい。

細胞融合のための処理が完了した後は、融合細胞を培地に懸濁して洗浄し、限界希釈法又はメチルセルロース培地中でのコロニー形成法によってクローニングを行うこととなる。ここで、限界希釈法としては、例えば、１０^３〜１０^７ 細胞／ｍＬとなるよう希釈後、９６ウェルの細胞培養用マイクロプレートに１０^２〜１０^６ 細胞／ウェルとなるように播種して培養する方法が例示できる。

ハイブリドーマ細胞のクローニングを行う際の培養培地には、目的とする融合細胞のみを選択的に得られるように、ＨＡＴサプリメントを添加することが好ましい。より詳細には、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、１９８８年）やＳｅｌｅｃｔｅｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ、１９８０年）に記載された方法に従って、目的とするハイブリドーマ細胞を取得し、クローニングすればよい。

６）ハイブリドーマ細胞のスクリーニング
目的とするハイブリドーマ細胞のスクリーニングは、例えば、以下に記載するＥＩＡ法により行うことができる。

具体的には、まず、抗原Ｅ２ペプチド又は抗原Ｅ２タンパク質を担体に固定（固相化）し、クローニングした各ハイブリドーマ細胞が産生する抗体を加え、抗体／抗原複合体を形成するのに十分な時間、４〜３７℃の条件で反応させる。

次に、酵素、色素又はラジオアイソトープ等で標識され、形成された抗体／抗原複合体の抗体部分に特異的に結合可能な二次抗体を、形成された抗体／抗原複合体に接触させ、抗体／抗原／二次抗体複合体を形成するのに十分な時間、４〜３７℃の条件で反応させる。

最後に、二次抗体に標識されている酵素、色素又はラジオアイソトープのシグナルを指標に、形成された抗体／抗原／二次抗体複合体の有無を検出し、目的とする特性を有する抗体であるか否かを判断することとなる。

７）モノクローナル抗体の調製
上記の方法により選択されたハイブリドーマ細胞を無血清培地、例えば、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭ（インビトロジェン社）に馴化させ、無血清培地にて培養した上清からモノクローナル抗体を調製できる。培養には、フラスコ、シャーレ、スピナーカルチャーボトル、ローラーボトルあるいは高密度培養フラスコＣＥＬＬｉｎｅ（ベクトンデッキンソン社）を使用することができる。

また、大量にモノクローナル抗体を調製する場合には、例えば、６〜８週令のヌードマウス又はＳＣＩＤマウスの腹腔内に、０．５ｍＬのプリスタン（２，６，１０，１４−テトラメチルペンタデカン）を投与し、２週間飼育した後に５×１０^６〜２×１０^７細胞／匹のハイブリドーマ細胞を腹腔内に投与し、１０〜２１日間飼育することによって得られる腹水からモノクローナル抗体を調製できる。

回収した腹水からは、遠心分離することによって細胞やその破砕物が除去され、４０〜５０％飽和硫酸アンモニウムによる塩析、カプリル酸沈殿法、ＤＥＡＥ−セファロースカラム、プロテインＡ−カラム、プロテインＧ−カラム、ＨｉＴｒａｐ ＩｇＭ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ＨＰ−カラム（ＧＥヘルスケア社）、ｍａｎｎａｎ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ−カラム（ピアス社）及びゲル濾過カラム等の精製手段を単独又は組み合わせることによって、ＩｇＧ又はＩｇＭ画分が回収され、精製モノクローナル抗体として利用できる。

８）モノクローナル抗体のエピトープ解析
モノクローナル抗体の線形エピトープを解析するには抗原Ｅ２タンパク質中の８〜１２個の連続するアミノ酸を１から数アミノ酸ずつずらして設計したアミノ酸配列からなるペプチドを合成し、これを抗原として、モノクローナル抗体がどのペプチドに結合するかを調べ、抗体のエピトープを決定することができる。

具体的には、合成したペプチドをプレートに固相化し、精製抗体と反応させる。標識した二次抗体を加えて静置し、その結合能を酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、放射線免疫測定法（ＲＩＡ）によって測定する。

なお、本方法により、エピトープが決定できない場合もあるが、このような場合は、モノクローナル抗体のエピトープはコンフォメーションエピトープであり、その抗体は抗原の立体構造を認識する可能性が考えられる。

ＨＣＶ２ａのＥ２タンパク質に特異的に結合し、ＨＣＶ１ａのＥ２タンパク質には免疫学的に反応しないことを特徴とする抗体としては、配列表の配列番号１記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する抗体を例示でき、その具体的な抗体として、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体を例示できる。

また、ＨＣＶ２ａのＥ２タンパク質に特異的に結合し、ＨＣＶ１ａのＥ２タンパク質及びＨＣＶ１ｂのＥ２タンパク質の双方に免疫学的に反応しない抗体としては、配列表の配列番号２又は３記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する抗体を例示でき、その具体的な抗体として、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０又はＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体を例示できる。

さらに、ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株のエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、ＪＦＨ１株のエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しない抗体としては、配列表の配列番号４記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する抗体を例示でき、その具体的な抗体として、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８３であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体を例示できる。この抗体は、遺伝子型が２ａのＨＣＶの中から、Ｊ６ＣＦ株を識別することができるため、Ｊ６ＣＦ株の同定に利用できる。

なお、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８３及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８２である上記ハイブリドーマ細胞株は、国際寄託当局である独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（郵便番号３０５−８５６６ 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に寄託されており（寄託日：２００８年９月１９日）、入手可能である。これらの細胞株は、それぞれ、受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１６７７（受領番号ＦＥＲＭ ＡＰ−２１６７７）、ＦＥＲＭ Ｐ−２１６７６（受領番号ＦＥＲＭ ＡＰ−２１６７６）、ＦＥＲＭ Ｐ−２１６７５（受領番号ＦＥＲＭ ＡＰ−２１６７５）、ＦＥＲＭ Ｐ−２１６７９（受領番号ＦＥＲＭ ＡＰ−２１６７９）、ＦＥＲＭ Ｐ−２１６７８（受領番号ＦＥＲＭ ＡＰ−２１６７８）として同寄託機関に国内寄託されていた原寄託（原受託についての受領日：２００８年９月１９日）がブダペスト条約に基づく国際寄託に移管されたものである。

また本発明のＨＣＶの遺伝子型の同定方法は、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体のいずれにも結合しないＨＣＶの遺伝子型を１ｂであると同定し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合するＨＣＶの遺伝子型を２ａであると同定し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８２であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に結合し、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０及びＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体のいずれにも結合しないＨＣＶの遺伝子型を１ａであると同定することを特徴としている。

受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０、ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９又はＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８２であるハイブリドーマ細胞株により生産される抗体に、遺伝子型が不明であるＨＣＶが結合するか否かは、抗原抗体反応の有無を検出できるアッセイ系であれば特に限定はなく利用できるが、例えば、以下に記載するイムノアッセイやウェスタンブロット法を例示できる。

（イムノアッセイ）
まず、結合の有無を調べる上記抗体を一次抗体として固相化した担体又はプレートに、遺伝子型が不明であるＨＣＶを含む試験サンプルを接触させ、抗体／抗原複合体を形成するのに十分な時間、４〜３７℃の条件で反応させる。

次に、酵素、色素又はラジオアイソトープ等で標識された、ＨＣＶに対して遺伝子型非特異的に結合する二次抗体を、抗体／抗原複合体に接触させ、抗体／抗原／２次抗体複合体を形成するのに十分な時間、４〜３７℃の条件で反応させる。

最後に、２次抗体に標識されている酵素、色素又はラジオアイソトープのシグナルを指標に、形成された抗体／抗原／２次抗体複合体の有無を検出し、上記抗体との結合の有無を判断すればよい。

（ウェスタンブロット法）
まず、遺伝子型が不明であるＨＣＶを含む試験サンプルをニトロセルロース膜又はＰＶＤＦ膜等のメンブレンにスポットし、試験サンプルに含まれるタンパク質を固相化する。

次に、５％スキムミルク、１％ＢＳＡ溶液又は市販のブロッキング剤にメンブレンを浸してブロッキングし、十分に緩衝液で洗浄した後に、酵素、色素又はラジオアイソトープ等で標識された結合の有無を調べる上記抗体を含む緩衝液にメンブレンを移し、抗体／抗原複合体を形成するのに十分な時間、４〜３７℃の条件で反応させる。

その後、メンブレンを十分に洗浄し、結合の有無を調べる上記抗体に標識された酵素、色素又はラジオアイソトープのシグナルを検出し、上記抗体との結合の有無を判断すればよい。

本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

以下に実施例を挙げて、本発明をより具体的に説明する。ただし、これらの実施例は説明のためのものであり、本発明の技術的範囲を制限するものではない。

（実施例１）各ＨＣＶ株の抗原Ｅ２タンパク質に標識タンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの作製
（１）ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株由来の抗原Ｅ２タンパク質に３×ＦＬＡＧタグを付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株由来の抗原Ｅ２タンパク質、すなわち、ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株のＥ２タンパク質の膜貫通領域を含まない領域からなるタンパク質、は以下に示すようにして調製した。

まず、ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：ＡＦ１７７０３６）を鋳型として、Ｊ６ＣＦ株の前駆体タンパク質（配列番号５）のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７２０番目に相当する領域からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、Ｊ６Ｅ２ｄＴＭ−ｓ（配列番号６：CACAAGCTTCGCACCCATACTGTTGGGG）及びＪ６Ｅ２ｄＴＭ−ａｓ（配列番号７：GCTCTAGATTACCATCGGACGATGTATTTTGT）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−９（シグマ社）のＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩ部位間に読み枠が合うように挿入し、３×ＦＬＡＧタグが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質）を発現するベクターをＣＭＶ−３ＸＦＬＡＧＪ６Ｅ２ｄＴＭを得た。

（２）ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株由来の抗原Ｅ２タンパク質にヒトＩｇＧのＦｃタンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
まず、ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：ＡＦ１７７０３６）を鋳型として、Ｊ６ＣＦ株の前駆体タンパク質（配列番号５）のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７２０番目に相当する領域からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、Ｊ６Ｅ２Ｆｃ−ｓ（配列番号８：CACAAGCTTCGCACCCATACTGTTGGGG）及びＪ６Ｅ２Ｆｃ−ａｓ（配列番号９：ACAGGATCCCATCGGACGATGTATTTTGTG）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３（シグマ社）のシグナルペプチド配列の下流のＨｉｎｄＩＩＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に読み枠（読みとりフレーム）が合うように（すなわちイン・フレームで）挿入し、このベクターをＣＭＶ−１３−Ｊ６Ｅ２と名付けた。

引き続き、ＣＭＶ−１３−Ｊ６Ｅ２をＳａｃＩとＢａｍＨＩで消化し、シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするＤＮＡ断片をそれぞれアガロースゲル電気泳動で分離し、ＧｅｎｅＥｌｕｔｅ（シグマ社）で精製した。

その後、マウスＩＬ−７受容体−ヒト免疫グロブリンＦｃドメインからなるキメラタンパク質を発現するベクターＣＤＭ−ｍＩＬ７Ｒ−Ｉｇ（Ｓｕｄｏら、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ. Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ、１９９３年、９０巻、ｐ．９１２５〜９１２９）のＳａｃＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に、上記シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするそれぞれのＤＮＡ断片を読み枠が合うように挿入して、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、Ｊ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質）を発現するベクターＣＤＭ−Ｊ６Ｅ２Ｆｃを得た。

（３）ＨＣＶ２ａのＪＦＨ１株由来の抗原Ｅ２タンパク質にヒトＩｇＧのＦｃタンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
まず、ＨＣＶ２ａのＪＦＨ１株のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：ＡＢ０４７６３９）を鋳型として、ＪＦＨ１株の前駆体タンパク質のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７２１番目に相当する領域からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、ＪＦＥ２Ｆｃ−ｓ（配列番号１０:CACAAGCTTGGCACCACCACCGTTGGAG）及びＪＦＥ２Ｆｃ−ａｓ（配列番号１１:ACAGGATCCTCCCATCGAACGACGTATTTTGTG）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３（シグマ社）のシグナルペプチド配列の下流のＨｉｎｄＩＩＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に読み枠が合うよう挿入した。このベクターをＣＭＶ−１３−ＪＦＨ１Ｅ２と名付けた。

引き続き、ＣＭＶ−１３−ＪＦＨ１Ｅ２をＳａｃＩとＢａｍＨＩで消化し、シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするＤＮＡ断片をそれぞれアガロースゲル電気泳動で分離し、ＧｅｎｅＥｌｕｔｅ（シグマ社）で精製した。

その後、ＣＤＭ−ｍＩＬ７Ｒ−ＩｇのＳａｃＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に、上記シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするそれぞれのＤＮＡ断片を読み枠が合うように挿入して、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、ＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質）を発現するベクターＣＤＭ−ＪＦＨ１Ｅ２Ｆｃを得た。

（４）ＨＣＶ１ｂのＴＨ株由来の抗原Ｅ２タンパク質にヒトＩｇＧのＦｃタンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
まず、ＨＣＶ１ｂのＴＨ株のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（国際公開ＷＯ２００６／０２２４２２）を鋳型として、ＴＨ株の前駆体タンパク質のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７１７番目に相当する領域からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、ＴＨＥ２Ｆｃ−ｓ（配列番号１２：CAAAGCTTGCGACCTACGTGACGGGGGGGTCG）及びＴＨＥ２Ｆｃ−ａｓ（配列番号１３：CCTCTAGATTATGGATCCCATTTGATTGCATAGGAGACAACCG）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３（シグマ社）のシグナルペプチド配列の下流のＨｉｎｄＩＩＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に読み枠が合うよう挿入した。このベクターをＣＭＶ−１３−ＴＨＥ２と名付けた。

引き続き、ＣＭＶ−１３−ＴＨＥ２をＳａｃＩとＢａｍＨＩで消化し、シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするＤＮＡ断片をそれぞれアガロースゲル電気泳動で分離し、ＧｅｎｅＥｌｕｔｅ（シグマ社）で精製した。

その後、ＣＤＭ−ｍＩＬ７Ｒ−ＩｇのＳａｃＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に、上記シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするそれぞれのＤＮＡ断片を読み枠が合うよう挿入して、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、ＴＨＥ２−Ｆｃタンパク質）を発現するベクターＣＤＭ−ＴＨＥ２Ｆｃを得た。

（５）ＨＣＶ１ｂのＣｏｎ１株由来の抗原Ｅ２タンパク質にヒトＩｇＧのＦｃタンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
まず、ＨＣＶ１ｂのＣｏｎ１株のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：ＡＪ２３８７９９）を鋳型として、Ｃｏｎ１株の前駆体タンパク質のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７１６番目に相当する領域化からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、Ｃｏｎ１Ｅ２Ｆｃ−ｓ（配列番号１４：CAAAGCTTGGAACCTATGTGACAGGGGGGACGAT）及びＣｏｎ１Ｅ２Ｆｃ−ａｓ（配列番号１５：CCTCTAGATTATGGATCCCATTTGATTGCAAAGGAGACAAC）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３（シグマ社）のシグナルペプチド配列の下流のＨｉｎｄＩＩＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に読み枠が合うよう挿入し、このベクターをＣＭＶ−１３−Ｃｏｎ１Ｅ２と名付けた。

引き続き、ＣＭＶ−１３−Ｃｏｎ１Ｅ２をＳａｃＩとＢａｍＨＩで消化し、シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするＤＮＡ断片をそれぞれアガロースゲル電気泳動で分離し、ＧｅｎｅＥｌｕｔｅ（シグマ社）で精製した。

その後、ＣＤＭ−ｍＩＬ７Ｒ−ＩｇのＳａｃＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に、上記シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするそれぞれのＤＮＡ断片を読み枠が合うよう挿入して、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、Ｃｏｎ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質）を発現するベクターＣＤＭ−Ｃｏｎ１Ｅ２Ｆｃを得た。

（６）ＨＣＶ１ｂのＪ１株由来の抗原Ｅ２タンパク質にヒトＩｇＧのＦｃタンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
まず、ＨＣＶ１ｂのＪ１株由来のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：Ｄ８９８１５）を鋳型として、Ｊ１株の前駆体タンパク質のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７１６番目に相当する領域からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、Ｊ１Ｅ２Ｆｃ−ｓ（配列番号１６：CAAAGCTTCATACCCGCGTGACGGGGGGGGTGC）及びＪ１Ｅ２Ｆｃ−ａｓ（配列番号１７：CCTCTAGATTATGGATCCCACTTGATGGCAATGGAGACGACC）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＢａｍＨＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３(シグマ社)のシグナルペプチド配列の下流のＨｉｎｄＩＩＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に読み枠が合うよう挿入し、このベクターをＣＭＶ−１３−Ｊ１Ｅ２と名付けた。

引き続き、ＣＭＶ−１３−Ｊ１Ｅ２をＴｔｈ１１１Ｉで消化し、Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼにて平滑末端とした後にＢａｍＨＩで消化し、シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするＤＮＡ断片をそれぞれアガロースゲル電気泳動で分離し、ＧｅｎｅＥｌｕｔｅ（シグマ社）で精製した。

その後、ＣＤＭ−ｍＩＬＲ７Ｒ−ＩｇをＢａｍＨＩとＸｂａＩで消化して、ヒト免疫グロブリンＦｃドメインをコードする配列を含むＤＮＡ断片を切り出し、ｐｃＤＬ−ＳＲα２９６（Ｔａｋｅｂｅら、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｉｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ. ＵＳＡ、１９８７年、８４巻、ｐ．７３８８〜７３９２）のプロモーター領域の下流に挿入し、ＳＲαＩｇＧ１Ｆｃを作製した。さらに、ＳＲαＩｇＧ１ＦｃのＥｃｏＲＶ部位とＢａｍＨＩ部位間に、上記シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするそれぞれのＤＮＡ断片を読み枠が合うよう挿入し、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、Ｊ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質）を発現するベクターＳＲα−Ｊ１Ｅ２Ｆｃを得た。

（７）ＨＣＶ１ａのＨ７７株由来の抗原Ｅ２タンパク質にヒトＩｇＧのＦｃタンパク質を付加した融合タンパク質を発現させるためのベクターの構築
まず、ＨＣＶ１ａのＨ７７株のゲノムＲＮＡのｃＤＮＡ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：ＡＦ０１１７５１）を鋳型として、Ｈ７７株の前駆体タンパク質のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合における第３８４番目〜第７１６番目に相当する領域からなるタンパク質をコードする遺伝子を、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＧＣ２ ＰＣＲキット（タカラバイオ社）で、Ｈ７７Ｅ２Ｆｃ−ｓ（配列番号１８：CAAAGCTTGAAACCCACGTCACCGGGGGAAA）及びＨ７７Ｅ２Ｆｃ−ａｓ（配列番号１９：CCTCTAGATTATGGATCCCACTTAATGGCCCAGGACGCGAT）をプライマーに用いてＰＣＲ法で増幅した。

次に、増幅したＤＮＡ断片をｐＣＲ−ＴＯＰＯ（インビトロジェン社）中にクローニングし、３つのクローンについて塩基配列の解析を行った。正しい塩基配列のインサートを有するクローンから、抗原Ｅ２タンパク質をコードする遺伝子断片をＨｉｎｄＩＩＩとＸｂａＩで消化して切り出し、ｐ３×ＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３(シグマ社)のＳａｃＩ部位をＸｈｏＩ部位に変換したベクター、ｐ３ｘＦＬＡＧ−ＣＭＶ−１３Ｘｈｏのシグナルペプチド配列の下流のＨｉｎｄＩＩＩ部位とＸｂａＩ部位間に読み枠が合うよう挿入し、このベクターをＣＭＶ−１３−ＸｈｏＨ７７Ｅ２と名付けた。

引き続き、ＣＭＶ−１３−ＸｈｏＨ７７Ｅ２をＸｈｏＩとＢａｍＨＩで消化し、シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするＤＮＡ断片をアガロースゲル電気泳動で分離し、ＧｅｎｅＥｌｕｔｅ（シグマ社）で精製した。

その後、上記５）で作製したＳＲα−ＩｇＧ１ＦｃのＸｈｏＩ部位とＢａｍＨＩ部位間に、上記シグナルペプチド配列と抗原Ｅ２タンパク質とをコードするそれぞれのＤＮＡ断片を読み枠が合うよう挿入して、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインが付加された抗原Ｅ２タンパク質（以下、Ｈ７７Ｅ２−Ｆｃタンパク質）を発現するベクターＳＲα−Ｈ７７Ｅ２Ｆｃを得た。

（実施例２）抗原Ｅ２タンパク質に標識タンパク質を付加した融合タンパク質の発現
実施例１で作製したＣＭＶ−３ＸＦＬＡＧＪ６Ｅ２ｄＴＭ、ＣＤＭ−Ｊ６Ｅ２Ｆｃ、ＣＤＭ−ＪＦＨ１Ｅ２Ｆｃ、ＣＤＭ−ＴＨＥ２Ｆｃ、ＣＤＭ−Ｃｏｎ１Ｅ２Ｆｃ、ＳＲα−Ｊ１Ｅ２Ｆｃ及びＳＲα−Ｈ７７Ｅ２Ｆｃを、以下のようにしてサル腎臓由来ＣＯＳ１細胞に導入して各融合タンパク質を発現させた。

まず、１０％ウシ胎児血清（インビトロジェン社）、１００Ｕ／ｍｌペニシリン、１００μｇ／ｍｌストレプトマイシンを含有するＲＰＭＩ１６４０培地（インビトロジェン社）でＣＯＳ１細胞を継代培養し、遺伝子導入の前日に、２倍のスプリットレシオで、１５０ｃｍ^２培養フラスコ（コーニングコースター社）に播き、３７℃、５％ＣＯ_２インキュベーターで一晩培養した。

その後、ＲＰＭＩ１６４０培地に終濃度がそれぞれ４００μｇ／ｍｌ、１００μＭとなるようにＤＥＡＥデキストラン（ＧＥヘルスケア社）とクロロキン（シグマ社）とを加え、１３ｍｌ当たり０．１μｇ／μｌの濃度で上記発現ベクター（ＣＭＶ−３×ＦＬＡＧＪ６Ｅ２ｄＴＭ、ＣＤＭ−Ｊ６Ｅ２Ｆｃ、ＣＤＭ−ＪＦＨ１Ｅ２Ｆｃ、ＣＤＭ−ＴＨＥ２Ｆｃ、ＣＤＭ−Ｃｏｎ１Ｅ２Ｆｃ、ＳＲα−Ｊ１Ｅ２Ｆｃ又はＳＲα−Ｈ７７Ｅ２Ｆｃ）を５０μｇ加えて３〜４日間培養した。

その後、培養したＣＯＳ１細胞の上清を吸引除去し、１０ｍｌのＰＢＳ（−）（ニッスイ製薬社）を添加し、再度、ＰＢＳ（−）を吸引除去することにより細胞を洗浄し、引き続き、ＤＥＡＥデキストラン−ＤＮＡ混合液を１３ｍｌ／１５０ｃｍ^２フラスコで加えて、３７℃、５％ＣＯ_２存在下で静置した。

４時間後、ＤＥＡＥデキストラン−ＤＮＡ混合液を吸引除去し、１０ｍｌのＰＢＳで１回洗浄し、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ−ＳＦＭ培地（インビトロジェン社）を５０ｍｌ／フラスコにて加え、３７℃、５％ＣＯ_２存在下で４日間培養した。その後、培養上清を５０ｍｌの遠心管（コーニングコースター社）に回収し、２５００ｒｐｍ、３０分、４℃で遠心分離し、その上清を０．２μｍの濾過フィルター（ワットマン社）で濾過した。

（実施例３）抗原Ｅ２タンパク質に標識タンパク質を付加した融合タンパク質の精製
ＣＭＶ−３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭを導入した細胞の培養上清は、抗ＦＬＡＧ Ｍ２アガロース（シグマ社）を用いて以下のように精製した。

まず、５００ｍｌの培養上清に対し、１ｍｌの抗ＦＬＡＧ Ｍ２アガロースを添加し、スピナーボトルで撹拌しながら、４℃で２時間反応させた。２時間後、上清と抗ＦＬＡＧ Ｍ２アガロースの混合液をエコノカラム（バイオラド社）に移し、Ｖｏｉｄ画分を除去し、抗ＦＬＡＧ Ｍ２アガロースを回収した。

次に、抗ＦＬＡＧ Ｍ２アガロースを１０ｍｌのＴＢＳ（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）で２回洗浄し、０．１Ｍ Ｇｌｙｃｉｎｅ−ＨＣｌ（ｐＨ３．５）で１ｍｌ／画分となるように６画分（抗ＦＬＡＧ抗体カラム溶出画分１〜６）を溶出した。溶出後、直ちに１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．５）を添加し、中性に戻した。各画分の２０μｌ分を還元下にてＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動で分画し、クマシーブリリアントブルーにて染色した。その結果、Ｊ６ＣＦ株由来の抗原Ｅ２タンパク質と３×ＦＬＡＧタグの融合タンパク質（３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質）が精製されていることが確認された（図４）。

ＣＤＭ−Ｊ６Ｅ２Ｆｃ、ＣＤＭ−ＪＦＨ１Ｅ２Ｆｃ、ＣＤＭ−ＴＨＥ２Ｆｃ、ＣＤＭ−Ｃｏｎ１Ｅ２Ｆｃ、ＳＲα−Ｊ１Ｅ２Ｆｃ又はＳＲα−Ｈ７７Ｅ２Ｆｃを導入したそれぞれの細胞の培養上清については、Ｐｒｏｔｅｉｎ−Ａを結合させた担体であるＰｒｏｓｅｐ−Ａ（ミリポア社）を用いて以下のように精製した。

まず、１ｍｌのＰｒｏｓｅｐ−Ａをエコノカラムに充填し、５００ｍｌの培養上清を流速１〜１．５ｍＬ／ｍｉｎで通過させた後、２０ｍｌのＰＢＳ（−）で洗浄した。

次に、０．１Ｍ Ｇｌｙｃｉｎｅ−ＨＣｌ（ｐＨ３．０）で１ｍｌ／画分となるように５画分溶出した。溶出後、直ちに１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．５）を添加し、中性に戻した。各画分の２０μｌ分を還元下にてＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動で分画し、クマシーブリリアントブルーにて染色した。その結果、各ＨＣＶ株由来の抗原Ｅ２タンパク質とヒト免疫グロブリンＦｃドメインとの融合タンパク質が精製され、還元下の分子量は、約９７ｋＤａであることが示された（図５）。

（実施例４）ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株の抗原Ｅ２タンパク質のマウスへの免疫
１０μｇの３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質を含む０．３ｍｌのＰＢＳ溶液と０．３ｍｌのフロイントの完全アジュバントを混合し、エマルジョンを調製した。そのエマルジョンの半量を７週齢のＢａｌｂ／ｃマウス（雌）の皮下に接種した。

２週間後、１０μｇの３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質を含む０．３ｍｌのＰＢＳ溶液と０．３ｍｌのフロイントの不完全アジュバントを混合し、エマルジョンを調製した。そのエマルジョンの半量をマウスの皮下に投与した。さらに２週間後、１０μｇの３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質を含む０．１５ｍｌのＰＢＳ溶液をマウスの腹腔内に投与した。３日後にマウスから脾臓細胞を調製した。

また別の実験として、２０μｇのＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を含む０．３ｍｌのＰＢＳ溶液と０．３ｍＬのＡｌｕｍ （ピアース社）とを混合し、投与液を調製した。そのエマルジョンの全量を７週齢のＢａｌｂ／ｃマウス（雌）の腹腔に接種した。

２、４、６週間後、同様に２０μｇのＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を含む０．３ｍｌのＰＢＳ溶液と０．３ｍＬのＡｌｕｍとを混合し投与液を調製し、そのエマルジョンの全量をマウスの腹腔に投与した。さらに２ヶ月後、２０μｇのＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を含む０．３ｍｌのＰＢＳ溶液をマウスの腹腔内に投与した。３日後にマウスから脾臓細胞を調製した。

（実施例５）ハイブリドーマ細胞の作製
まず、マウス骨髄腫細胞株であるＳＰ２／０（ＥＣＡＣＣより入手）を５５μＭの２−メルカプトエタノール、１００Ｕ／ｍｌのペニシリン、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン及び１０％の牛胎児血清（ＦＣＳ；インビトロジェン社）を含有するダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ；インビトロジェン社）にて培養し、対数増殖期のＳＰ２／０細胞を得た。その細胞を、血清を含まないＤＭＥＭにて３回洗浄した。

次に、３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質又はＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を投与したマウスより脾細胞を調製し、血清を含まないＤＭＥＭにて３回洗浄した。ＳＰ２／０細胞とマウス脾細胞とを１：５の比率になるように５０ｍｌの遠心チューブに入れ、１，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、上清を完全に吸引して除去した。その後、遠心チューブをタッピングしてペレットをほぐし、そこに３７℃にて温めておいた５０％ポリエチレングリコール−１５００溶液（ロシュ社）を１分間かけて１ｍｌ加え、３７℃で１分間反応を続けた。

引き続き、上記の遠心チューブに１ｍｌの血清不含ＤＭＥＭを１分間かけて加え、再度、１ｍｌの血清不含ＤＭＥＭを１分間かけて加え、最後に７ｍｌの血清不含ＤＭＥＭを３分間かけて加えることにより、エチレングリコール溶液を希釈した。その後、上記の遠心チューブを１，０００ｒｐｍで１０分間遠心して細胞を回収し、１×１０^６個／ｍｌとなるように５５μＭの２−メルカプトエタノール、１００Ｕ／ｍｌのペニシリン、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン、１５％のＦＣＳ及び１０％ハイブリドーマクローニング因子（バイオベリス社）を含有するＤＭＥＭに細胞を懸濁した。

こうして得られた細胞懸濁液は、１００μｌ／ウェルで９６ウェルプレートの各ウェルに播種し、３７℃、５％ＣＯ_２インキュベーターで培養し、翌日、２倍濃度のＨＡＴ（インビトロジェン社）、１５％ＦＣＳ、１０％ハイブリドーマクローニング因子を含むＤＭＥＭを各ウェルに１００μｌ加え、３７℃、５％ＣＯ_２インキュベーターで引き続き培養した。

１０〜１４日間の培養を行った後、各ウェルの培養上清を回収し、培養上清中に含まれる抗原Ｅ２タンパク質を認識する抗体を実施例６に示すようにスクリーニングした。

（実施例６）抗原Ｅ２タンパク質に結合する抗体を産生するハイブリドーマ細胞のスクリーニング
ハイブリドーマ細胞のスクリーニングは、抗原Ｅ２タンパク質をプレートに固定し、ハイブリドーマ細胞の培養上清中の抗体がプレートに固定した抗原Ｅ２タンパク質に結合するかどうかをＥＩＡにて評価することによって行った。

（１）抗原Ｅ２タンパク質の固相化プレートの作製
３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質又はＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を１μｇ／ｍｌとなるようにＰＢＳで希釈して、イムノプレート（ヌンク社）の各ウェルに５０μｌずつ添加し、４℃にて一晩静置することによってタンパク質をプレートに固相化した。各ウェルからタンパク質溶液を除き、添付マニュアルに従って調製したブロッキング・ワン溶液（ナカライテスク社）を各ウェルに２００μｌずつ添加し、室温で２時間ブロッキングした。

（２）ハイブリドーマ細胞のスクリーニング
ブロッキングした上記の固相化プレートをハイブリドーマ細胞の培養上清中の抗Ｅ２タンパク質抗体のスクリーニングに使用した。その際、３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質を投与したマウスから作製したハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体のスクリーニングにはＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を固相化したプレートを、Ｊ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を投与したマウスから作製したハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体のスクリーニングには３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質を固相化したプレートを使用した。

具体的には、上記の固相化したプレートを０．１％Ｔｗｅｅｎ２０（シグマ社）を含むＰＢＳで４回洗浄し、実施例５で得られた各ハイブリドーマ細胞の上清サンプルを各ウェルに５０μｌずつ添加し、室温で１時間反応させた。反応終了後、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで４回洗浄した後、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで５，０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ抗体（ＧＥヘルスケア社）を各ウェルに５０μｌずつ添加し、室温で１時間反応させた。反応終了後、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで４回洗浄し、ペルオキシダーゼ発色キット（住友ベークライト社）を用いて発色させ、４５０ｎｍでの吸光度を測定し、陽性クローンを選抜した。

その結果、３×ＦＬＡＧ−Ｊ６Ｅ２ｄＴＭタンパク質を投与したマウスから作製したハイブリドーマ細胞については、スクリーニングした９８０ウェル中、１１クローンを選択できた。それらのクローンを限界希釈法にてクローニングし、増殖性と抗体産生性の良いハイブリドーマ細胞株１Ｇ２−３２、２Ｆ２−７、２Ｆ３−７、４Ｅ８−８、５Ｄ４−６、９Ｇ３−２、９Ａ５−４、９Ｃ４−２、８Ｄ１０−３、１０Ｇ４−１を得た。

一方、Ｊ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質を投与したマウスから作製したハイブリドーマ細胞については、スクリーニングした２０６４ウェル中、１０クローンを選択できた。これらのクローンを限界希釈法にてクローニングし増殖性と抗体産生性の良いハイブリドーマ細胞株Ｍ１Ｅ１２−１を得た。

（３）アイソタイプ及びサブタイプの解析
得られたハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体のアイソタイプ及びサブタイプの解析は、ＩｍｍｕｎｏＰｕｒｅ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ Ｋｉｔ（ピアース社）を用いて、添付マニュアルに従って行った。その結果、各クローンの抗体のサブタイプは図６中に示した通りであり、イムノグロブリン軽鎖については全てκ鎖であった。

（４）ＩｇＧ抗体の精製
得られた各ハイブリドーマ細胞は、培養培地中のＦＣＳ濃度を段階的に減少させていくことによって最終的に無血清培養に馴化させた。

無血清培地 Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ ＳＦＭ（インビトロジェン社）にて、各ハイブリドーマ細胞をコンフルエントになるまで培養した後、培養液を遠沈管に回収し、１５００ ｒｐｍで５分間遠心した。培養上清をＰｒｏｓｅｐ−Ｇ（ミリポア社）に添加し、３０ベッドボリュームのＰＢＳで洗浄し、続いて１ベッドボリュームの０．１Ｍグリシン−ＨＣｌ（ｐＨ３．０）にて６画分溶出した。溶出後、直ちに１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．５）を添加し、中性に戻した。各画分の２０μｌ分を還元下及び非還元下にてＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動に供して分画し、クマシーブリリアントブルーにて染色することによってタンパク質の有無を確認した。ＩｇＧ画分をプールしてＰＢＳにて透析又はゲル濾過にて脱塩し抗体サンプルとした。

（実施例７）抗原Ｅ２タンパク質に対するモノクローナル抗体のＨＣＶの遺伝子型特異性について
ＨＣＶ２ａのＪ６ＣＦ株の抗原Ｅ２タンパク質で免疫して作製した各ハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体が、遺伝子型２ａのＪ６ＣＦ株及びＪＦＨ１株由来のＥ２タンパク質、遺伝子型１ｂのＴＨ株、Ｊ１株及びＣｏｎ１株由来のＥ２タンパク質、遺伝子型１ａのＨ７７株由来のＥ２タンパク質に結合するかどうかについて検討した。

抗原としては、抗原Ｅ２タンパク質とヒト免疫グロブリンのＦｃドメインとの融合タンパク質である、実施例１〜３で作製したＪ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質、ＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質、ＴＨＥ２−Ｆｃタンパク質、Ｊ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質、Ｃｏｎ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質及びＨ７７Ｅ２−Ｆｃタンパク質を用い、実施例６に示したようにこれらのタンパク質をプレートに固相化して評価に用いた。

具体的には、上記の各融合タンパク質を１μｇ／ｍｌとなるようにＰＢＳで希釈してイムノプレートの各ウェルに５０μｌずつ添加し、４℃にて一晩静置することによって各融合タンパク質をプレートに固相化した。タンパク質溶液を除き、添付マニュアルに従って調製したブロッキング・ワン溶液（ナカライテスク社）を各ウェルに２００μｌずつ添加し、室温で２時間ブロッキングした。

次に、各ハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体をＰＢＳで１μｇ／ｍｌとなるように希釈して、上記の固相化したプレートの各ウェルに５０μｌずつ添加し、室温で１時間反応させた。反応終了後、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで４回洗浄した後、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで５，０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ抗体を各ウェルに５０μｌずつ添加し、室温で１時間反応させた。反応終了後、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで４回洗浄し、ペルオキシダーゼ発色キットを用いて発色させ、４５０ｎｍの吸光度を測定した。

図６は、各モノクローナル抗体の種々のＨＣＶの遺伝子型／株の抗原Ｅ２タンパク質への結合性を示している。吸光度の数値が０．１未満を−、０．１以上０．２５未満を＋、０．２５以上０．４未満を＋＋、０．４以上を＋＋＋として示し、抗原Ｅ２タンパク質に結合する強度を表している。８Ｄ１０−３は遺伝子型１ａ、１ｂ、２ａのＨＣＶの抗原Ｅ２タンパク質に結合し、１Ｇ２−３２及び２Ｆ２−７は遺伝子型２ａの抗原Ｅ２タンパク質に結合し、４Ｅ８−８は遺伝子型１ｂと２ａの抗原Ｅ２タンパク質に結合する抗体であることを示している。さらに、Ｍ１Ｅ１２−１はＪ６ＣＦ株の抗原Ｅ２タンパク質に結合するモノクローナルであることを示している。

これらの結果は、上記のモノクローナル抗体のセットを用いることにより、遺伝子型やＨＣＶ株の同定に使用できることを示している。

また、モノクローナル抗体８Ｄ１０−３を生産するハイブリドーマ細胞（８Ｄ１０−３）は受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８２として、モノクローナル抗体１Ｇ２−３２を生産するハイブリドーマ細胞（１Ｇ２−３２）は受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９として、モノクローナル抗体２Ｆ２−７を生産するハイブリドーマ細胞（２Ｆ２−７）は受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０として、モノクローナル抗体４Ｅ８−８を生産するハイブリドーマ細胞（４Ｅ８−８）は受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１として、モノクローナル抗体Ｍ１Ｅ１２−１を生産するハイブリドーマ細胞（Ｍ１Ｅ１２−１）は受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８３として、２００８年９月１９日付で、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に寄託されている。

（実施例８）モノクローナル抗体のエピトープ解析
Ｊ６ＣＦ株の前駆体タンパク質（配列番号５）のＮ末端の開始メチオニンを１番目とした場合に第３８４番目〜第７２０番目までに相当する抗原Ｅ２タンパク質に相当するアミノ酸について、１０個の連続するアミノ酸をＮ末端から３アミノ酸ずつずらして設計したアミノ酸配列からなるペプチド群（ペプチド番号１〜１１０）を合成した。各ペプチドのＮ末端はビオチン化し、Ｃ末端はグリシンアミドとした（ＪＰＴ社に合成委託）。

合成したペプチドをＤＭＳＯに溶解し、ＰＢＳに０．０１ｎｍｏｌ／μｌとなるように溶解した。このペプチド溶液をストレプトアビジンコーティングプレート（ヌンク社）の各ウェルに５０μｌ加え、室温で２時間反応させた。ペプチド溶液を捨て、添付マニュアルに従って調製したブロッキング・ワン溶液（ナカライテスク社）を各ウェルに２００μｌずつ添加し、４℃で一晩静置することによってブロッキングした。

その後、ブロッキング溶液を捨て、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで４回洗浄し、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０ 含有ＰＢＳで１μｇ／ｍｌに希釈した各モノクローナル抗体を各ウェルに５０μｌずつ添加し、室温にて１．５時間反応させた。反応終了後、抗体溶液を捨て、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０ 含有ＰＢＳで４回洗浄し、続いて０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧヤギ抗体（ＧＥヘルスケア）を５０μｌ／ウェル加え、室温にて１時間反応させた。反応後、抗体溶液を捨て、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０ 含有ＰＢＳで５回洗浄した。洗浄後、ペルオキシダーゼ発色キット発色させ、４５０ｎｍの吸光度を測定することによってペプチドに結合した抗体を検出した。

図７Ａ〜Ｅは、Ｊ６ＣＦ株由来の抗原Ｅ２タンパク質由来のペプチド群に対する各モノクローナル抗体の結合強度を示したものである。ＯＤ４５０ｎｍでの測定値（図７Ａ〜Ｅの縦軸の値）が高い場合には、そのペプチドに対するモノクローナル抗体の結合強度が強く、その抗体が当該ペプチドを特異的に認識することが示される。各モノクローナル抗体は、Ｊ６ＣＦ株の抗原Ｅ２タンパク質由来のペプチドのいくつかを認識した。

８Ｄ１０−３モノクローナル抗体の特に強いエピトープは、ＤＲＬＧＡＰＴＹＴＷ（配列番号２０；ペプチド番号４７）であり、このペプチドとオーバーラップしているＧＡＰＴＹＴＷＧＥＮ（配列番号２１；ペプチド番号４８）であった（図７Ａ）。このことから、エピトープは、アミノ酸配ＤＲＬＧＡＰＴＹＴＷＧＥＮ（配列番号２２）中の少なくとも１０個の連続するアミノ酸配列であると考えられた。また、ＹＰＹＲＬＷＨＹＰＣ（配列番号２３；ペプチド番号７８）も弱いエピトープであった（図７Ａ）。

４Ｅ８−８モノクローナル抗体の特に強いエピトープは、ＷＧＥＮＥＴＤＶＦＬ（配列番号１；ペプチド番号５０）であり、このペプチドとオーバーラップしているＮＥＴＤＶＦＬＬＮＳ（配列番号２４；ペプチド番号５１）、ＤＶＦＬＬＮＳＴＲＰ（配列番号２５；ペプチド番号５２）及びＬＬＮＳＴＲＰＰＬＧ（配列番号２６；ペプチド番号５３）は弱いエピトープであった（図７Ｃ）。このことから、エピトープはＷＧＥＮＥＴＤＶＦＬＬＮＳＴＲＰＰＬＧ（配列番号２７）中の少なくとも１０個の連続するアミノ酸配列であると考えられた。

２Ｆ２−７モノクローナル抗体の特に強いエピトープは、ＧＷＧＡＬＱＹＥＤＮ（配列番号２；ペプチド番号２９）であった（図７Ｄ）。このペプチドとオーバーラップしているＦＲＶＧＷＧＡＬＱＹ（配列番号２８；ペプチド番号２８）は弱いエピトープであった（図７Ｄ）。このことから、エピトープは、アミノ酸配ＦＲＶＧＷＧＡＬＱＹＥＤＮ（配列番号２９）中の少なくとも１０個の連続するアミノ酸配列であると考えられた。

１Ｇ２−３２モノクローナル抗体の特に強いエピトープは、ＫＴＣＧＡＰＰＣＲＴ（配列番号３；ペプチド番号６１）及びＧＡＰＰＣＲＴＲＡＤ（配列番号３０；ペプチド番号６２）であった（図７Ｂ）。このことから、エピトープは、アミノ酸配ＫＴＣＧＡＰＰＣＲＴＲＡＤ中（配列番号３１）の少なくとも１０個の連続するアミノ酸配列であると考えられた。

Ｍ１Ｅ１２−１モノクローナル抗体の特に強いエピトープは、ＮＹＴＩＦＫＩＲＭＹ（配列番号４；ペプチド番号８２）及びＩＦＫＩＲＭＹＶＧＧ（配列番号３２；ペプチド番号８３）であった（図７Ｅ）。このことから、エピトープは、アミノ酸配ＮＹＴＩＦＫＩＲＭＹＶＧＧ（配列番号３３）中の少なくとも１０個の連続するアミノ酸配列であると考えられた。

（実施例９）モノクローナル抗体を用いたＨＣＶエンベロープタンパク質の検出
作製したハイブリドーマ細胞から調製したモノクローナル抗体を用いて、遺伝子型１ａのＨ７７株由来の抗原Ｅ２タンパク質、遺伝子型２ａのＪ６ＣＦ株及びＪＦＨ１株由来の抗原Ｅ２タンパク質、遺伝子型１ｂのＴＨ株、Ｊ１株及びＣｏｎ１株由来の抗原Ｅ２タンパク質を検出できるかどうかについて、サンドイッチＥＬＩＳＡ法及びウェスタンブロット法を用いて検討した。

（１）サンドイッチＥＬＩＳＡ
モノクローナル抗体１Ｇ２−３２を１μｇ／ｍｌとなるようにＰＢＳで希釈し、この抗体溶液をイムノプレート（ヌンク社）の各ウェルに５０μｌずつ添加し、室温にて２時間静置することによって抗体をプレートに固相化した。抗体溶液を除き、添付マニュアルに従って調製したブロッキング・ワン溶液（ナカライテスク社）を各ウェルに２００μｌずつ添加し、室温にて２時間静置することによってブロッキングした。

次に、抗原Ｅ２タンパク質にヒト免疫グロブリンＦｃドメインが付加された各融タンパク質（ＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質、Ｊ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質、ＴＨＥ２−Ｆｃタンパク質、Ｃｏｎ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質、Ｊ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質及びＨ７７Ｅ２−Ｆｃタンパク質）をＰＢＳで希釈して、上記のモノクローナル抗体を固相化したプレートの各ウェルに５０μｌ加え、室温で１．５時間反応させた。反応終了後、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで３回洗浄した後、各ウェルに、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで１μｇ／ｍｌとなるように希釈したビオチン化８Ｄ１０−３モノクローナル抗体を各ウェルに５０μｌ加え、室温にて２時間反応させた。反応後、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで３回洗浄し、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで５，０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗ストレプトアビジン（ＧＥヘルスケア社）を５０μｌ加え、室温で１．５時間反応させた。

反応後、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳで４回洗浄し、ペルオキシダーゼ発色キット（住友ベークライト社）を用いて発色させ、４９０ｎｍの吸光度を測定した。その結果を図８に示す。

図８は、モノクローナル抗体１Ｇ２−３２及び８Ｄ１０−３を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡにおける種々の遺伝子型／株の抗原Ｅ２タンパク質の検出感度を示している。横軸は抗原Ｅ２タンパク質の量を示し、縦軸は４９０ｎｍの吸光度、すなわち検出された抗原Ｅ２タンパク質の量を示している。モノクローナル抗体１Ｇ２−３２及び８Ｄ１０−３を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡでは、遺伝子型２ａのＨＣＶの抗原Ｅ２タンパク質のみを検出することが可能であり、遺伝子型１ａと１ｂの抗原Ｅ２タンパク質は検出されないことを示している。これらの結果は、本発明で得られた抗体のセットを用いることにより、ＨＣＶの遺伝子型や株を同定できることを示している。

（２）ウェスタンブロット法
抗原Ｅ２タンパク質にヒト免疫グロブリンＦｃドメインが付加された各融タンパク質（ＪＦＨ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質、Ｊ６Ｅ２−Ｆｃタンパク質、ＴＨＥ２−Ｆｃタンパク質、Ｃｏｎ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質、Ｊ１Ｅ２−Ｆｃタンパク質及びＨ７７Ｅ２−Ｆｃタンパク質）の０．１〜０．３μｇに、５分の１容量の５×ｓａｍｐｌｅ ｂｕｆｆｅｒ （０．３１２５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ６．８、５％ ＳＤＳ、５０％ ｇｌｙｃｅｒｏｌ、０．０５％ ＢＰＢ、５％ ２−ＭＥ）を加え、１００℃で５分間処理したものをサンプルとした。各サンプルを４〜２０％グラジエントゲル（テフコ社）にアプライし、４０ｍＡ定電流で電気泳動後、セミドライ型ブロッティング装置を用いてＰＶＤＦ膜に１２０ｍＡ定電流でブロッティングした。

ブロッティング後のＰＶＤＦ膜をブロックエース（雪印乳業）に室温にて１時間浸すことによってブロッキングし、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳで洗浄後、Ｃａｎ Ｇｅｔ Ｓｉｇｎａｌ（東洋紡）で１μｇ／ｍＬに希釈したモノクローナル抗体８Ｄ１０−３に浸して室温にて１時間反応させた。反応後、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳで洗浄し、続いてＣａｎ Ｇｅｔ Ｓｉｇｎａｌで５０００倍に希釈したＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ抗体に浸して室温にて１時間反応させた。０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳで洗浄し、ＥＣＬキット（ＧＥヘルスケア社）を使用してバンドを検出した。

図９は、モノクローナル抗体８Ｄ１０−３を用いたウェスタンブロット法における種々の遺伝子型／株の抗原Ｅ２タンパク質の検出の有無を示している。モノクローナル抗体８Ｄ１０−３は、６種の株全ての抗原Ｅ２タンパク質を検出することができた。

本発明の抗体は、遺伝子型が１ａ、１ｂ及び２ａであるＨＣＶの遺伝子型を簡易かつ精度よく同定することを可能にし、インターフェロン療法による治療効果が望めない遺伝子型が１ａ又は１ｂ型のＨＣＶに感染したＣ型肝炎患者に対して、副作用を軽減するとともに新たな治療方法を選択する機会を与えることができる。

Claims (7)

1. 遺伝子型が２ａであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、遺伝子型が１ａであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２及び遺伝子型が１ｂであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しないモノクローナル抗体であって、配列表の配列番号２又は配列番号３記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する、モノクローナル抗体。
2. 配列表の配列番号２記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８０であるハイブリドーマ細胞株により生産される、請求項１記載のモノクローナル抗体。
3. 配列表の配列番号３記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１７９であるハイブリドーマ細胞株により生産される、請求項１記載のモノクローナル抗体。
4. 遺伝子型が２ａであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、遺伝子型が１ａであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２及び遺伝子型が１ｂであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応せず、Ｊ６ＣＦ株のエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、ＪＦＨ１株のエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しない、配列表の配列番号４記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８３であるハイブリドーマ細胞株により生産されるモノクローナル抗体。
5. 遺伝子型が２ａであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２に特異的に結合し、遺伝子型が１ａであるＣ型肝炎ウイルスのエンベロープタンパク質２には免疫学的に反応しないモノクローナル抗体であって、配列表の配列番号１記載のアミノ酸配列をエピトープとして認識する、モノクローナル抗体。
6. 受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８１であるハイブリドーマ細胞株により生産される、請求項５記載のモノクローナル抗体。
7. 請求項６記載のモノクローナル抗体に結合し、請求項２及び３記載のモノクローナル抗体のいずれにも結合しないＣ型肝炎ウイルスの遺伝子型を１ｂであると同定し、
   請求項６記載のモノクローナル抗体に結合し、請求項２及び３記載のモノクローナル抗体に結合するＣ型肝炎ウイルスの遺伝子型を２ａであると同定し、
   受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１８２であるハイブリドーマ細胞株により生産されるモノクローナル抗体に結合し、請求項２、３及び６記載のモノクローナル抗体のいずれにも結合しないＣ型肝炎ウイルスの遺伝子型を１ａであると同定する、
   Ｃ型肝炎ウイルスの遺伝子型の同定方法。

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