JP5877157B2 - N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの固体形態 - Google Patents
N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの固体形態 Download PDFInfo
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Description
本願は、2009年10月23日に出願された米国仮特許出願第61/254,614号の利益を主張する。
本発明は、嚢胞性線維症膜コンダクタンス制御因子(「CFTR」)のモジュレーターである、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの固体状態形態、例えば結晶性形態に関する。本発明は、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの結晶性形態を含む医薬組成物およびそれを用いる方法にも関する。
ATPカセット輸送体は、多種多様な薬理作用剤、潜在的に毒性の薬物および生体異物、ならびにアニオンの輸送を制御する膜輸送体タンパク質のファミリーである。該輸送体は、細胞のアデノシン三リン酸(ATP)を結合し、その特異的活性のために使用する、相同膜タンパク質である。これらの輸送体のいくつかは、悪性がん細胞を化学療法剤から防御する多剤耐性タンパク質(MDR1−P糖タンパク質、または多剤耐性タンパク質、MRP1のような)として発見された。これまでに、48種のそのような輸送体が同定され、それらの配列同一性および機能に基づいて7つのファミリーに分類されている。
本発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
形態A−HClとして特徴付けられる、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド。
(項目2)
X線粉末回折パターンにおける、約7.1度の1つのピークを特徴とする、項目1に記載の形態A−HCl。
(項目3)
X線粉末回折パターンにおける、約21.2度の1つのピークを特徴とする、項目1または2に記載の形態A−HCl。
(項目4)
X線粉末回折パターンにおける、約6.9から約7.3度までの1つのピークを特徴とする、項目1から3のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目5)
X線粉末回折パターンにおける、約8.0から約8.4度までの1つのピークを特徴とする、項目1から4のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目6)
X線粉末回折パターンにおける、約13.9から約14.3度までの1つのピークを特徴とする、項目1から5のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目7)
X線粉末回折パターンにおける、約21.0から約21.4度までの1つのピークを特徴とする、項目1から6のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目8)
X線粉末回折パターンにおける、約14.5から約14.9度までの1つのピークを特徴とする、項目1から7のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目9)
X線粉末回折パターンにおける、約16.2から約16.6度までの1つのピークを特徴とする、項目1から8のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目10)
X線粉末回折パターンにおける、約18.5から約18.9度までの1つのピークを特徴とする、項目1から9のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目11)
X線粉末回折パターンにおける、約22.6から約23.0度までの1つのピークを特徴とする、項目1から10のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目12)
X線粉末回折パターンにおける、約6.9から約7.3度までの1つのピーク、約8.0から約8.4度までの1つのピーク、約13.9から約14.3度までの1つのピークおよび約21.0から約21.4度までの1つのピークを特徴とする、項目1に記載の形態A−HCl。
(項目13)
図1の回折パターンを特徴とする、項目1から12のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目14)
13 C NMRスペクトルにおける、約163.7ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から13のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目15)
13 C NMRスペクトルにおける、約137.2ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から14のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目16)
13 C NMRスペクトルにおける、約121.5ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から15のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目17)
13 C NMRスペクトルにおける、約163.7ppmでの1つのピーク、約137.2ppmでの1つのピークおよび約121.5ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から16のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目18)
図5の 13 C NMRスペクトルを特徴とする、項目1から17のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目19)
19 F NMRスペクトルにおける、約−57.0ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から18のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目20)
19 F NMRスペクトルにおける、約−60.5ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から19のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目21)
19 F NMRスペクトルにおける、約−57.0ppmでの1つのピークおよび約−60.5ppmでの1つのピークを特徴とする、項目1から20のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目22)
図6の 19 F NMRスペクトルを特徴とする、項目1から21のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目23)
単斜晶系、P2 1 /c空間群、ならびに下記の単位格子寸法:
a=13.6175(4)Å、
b=21.614(3)Å、
c=8.3941(4)Å、
α=90°、
β=112.303°、および
γ=90°
を保有することが判明している単結晶を特徴とする、項目1から22のいずれか一項に記載の形態A−HCl。
(項目24)
項目1から23のいずれか一項に記載の形態A−HClと、薬学的に許容されるアジュバントまたは担体とを含む、医薬組成物。
(項目25)
形態Bとして特徴付けられる、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド。
(項目26)
X線粉末回折パターンにおける、約6.5から約6.9度までの1つのピークを特徴とする、項目24に記載の形態B。
(項目27)
X線粉末回折パターンにおける、約9.2から約9.6度までの1つのピークを特徴とする、項目25または26に記載の形態B。
(項目28)
X線粉末回折パターンにおける、約11.0から約11.4度までの1つのピークを特徴とする、項目25から27のいずれか一項に記載の形態B。
(項目29)
X線粉末回折パターンにおける、約13.2から約13.6度までの1つのピークを特徴とする、項目25から28のいずれか一項に記載の形態B。
(項目30)
X線粉末回折パターンにおける、約15.0から約15.4度までの1つのピークを特徴とする、項目25から29のいずれか一項に記載の形態B。
(項目31)
X線粉末回折パターンにおける、約17.0から約17.4度までの1つのピークを特徴とする、項目25から30のいずれか一項に記載の形態B。
(項目32)
X線粉末回折パターンにおける、約17.6から約18.0度までの1つのピークを特徴とする、項目25から31のいずれか一項に記載の形態B。
(項目33)
X線粉末回折パターンにおける、約17.9から約18.3度までの1つのピークを特徴とする、項目25から32のいずれか一項に記載の形態B。
(項目34)
X線粉末回折パターンにおける、約19.1から約19.5度までの1つのピークを特徴とする、項目25から33のいずれか一項に記載の形態B。
(項目35)
X線粉末回折パターンにおける、約19.9から約20.3度までの1つのピークを特徴とする、項目25から34のいずれか一項に記載の形態B。
(項目36)
X線粉末回折パターンにおける、約21.0から約21.5度までの1つのピークを特徴とする、項目25から35のいずれか一項に記載の形態B。
(項目37)
X線粉末回折パターンにおける、約21.8から22.2度までの1つのピークを特徴とする、項目25から36のいずれか一項に記載の形態B。
(項目38)
X線粉末回折パターンにおける、約23.8から約24.2度までの1つのピークを特徴とする、項目25から37のいずれか一項に記載の形態B。
(項目39)
X線粉末回折パターンにおける、約26.0から約26.4度までの1つのピークを特徴とする、項目25から38のいずれか一項に記載の形態B。
(項目40)
X線粉末回折パターンにおける、約27.1から約27.5度までの1つのピークを特徴とする、項目25から39のいずれか一項に記載の形態B。
(項目41)
X線粉末回折パターンにおける、約27.5から約27.9度までの1つのピークを特徴とする、項目25から40のいずれか一項に記載の形態B。
(項目42)
X線粉末回折パターンにおける、約28.7から約29.1度までの1つのピークを特徴とする、項目25から41のいずれか一項に記載の形態B。
(項目43)
X線粉末回折における、約6.5から約6.9度まで(例えば約6.7度)の1つのピーク、約9.8から約10.2度まで(例えば約10.0度)の1つのピーク、約11.0から約11.4度まで(例えば約11.2度)の1つのピーク、約13.2から約13.6度まで(例えば約13.4度)の1つのピークおよび約23.8から約24.2度まで(例えば約24.2度)の1つのピークを特徴とする、項目25から42のいずれか一項に記載の形態B。
(項目44)
X線粉末回折における、約6.7度の1つのピーク、約10.0度の1つのピーク、約11.2度の1つのピーク、約13.4度の1つのピークおよび約24.2度の1つのピークを特徴とする、項目25から43のいずれか一項に記載の形態B。
(項目45)
図7Aまたは図7Bの回折パターンを特徴とする、項目25から44のいずれか一項に記載の形態B。
(項目46)
13 C NMRスペクトルにおける、約165.3ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から45のいずれか一項に記載の形態B。
(項目47)
13 C NMRスペクトルにおける、約145.9ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から46のいずれか一項に記載の形態B。
(項目48)
13 C NMRスペクトルにおける、約132.9ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から47のいずれか一項に記載の形態B。
(項目49)
13 C NMRスペクトルにおける、約113.4ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から48のいずれか一項に記載の形態B。
(項目50)
13 C NMRスペクトルにおける、約165.3ppmでの1つのピーク、約145.9ppmでの1つのピーク、約132.9ppmでの1つのピークおよび約113.4ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から49のいずれか一項に記載の形態B。
(項目51)
図11の 13 C NMRスペクトルを特徴とする、項目25から50のいずれか一項に記載の形態B。
(項目52)
19 F NMRスペクトルにおける、約−56.1ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から51のいずれか一項に記載の形態B。
(項目53)
19 F NMRスペクトルにおける、約−62.1ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から52のいずれか一項に記載の形態B。
(項目54)
19 F NMRスペクトルにおける、約−56.1ppmでの1つのピークおよび約−62.1ppmでの1つのピークを特徴とする、項目25から53のいずれか一項に記載の形態B。
(項目55)
図12の 19 F NMRスペクトルを特徴とする、項目25から54のいずれか一項に記載の形態B。
(項目56)
単斜晶系、P21/c空間群、ならびに下記の単位格子寸法:
a=13.5429(4)Å、
b=13.4557(4)Å、
c=12.0592(4)Å、
α=90°、
β=101.193°、および
γ=90°
を保有することが判明している単結晶を特徴とする、項目25から55のいずれか一項に記載の形態B。
(項目57)
項目25から56のいずれか一項に記載の形態Bと、薬学的に許容されるアジュバントまたは担体とを含む、医薬組成物。
(項目58)
形態B−HClとして特徴付けられる、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド。
(項目59)
X線粉末回折パターンにおける、約8.1から約8.5度までの1つのピークを特徴とする、項目58に記載の形態B−HCl。
(項目60)
X線粉末回折パターンにおける、約14.6から約15.1度までの1つのピークを特徴とする、項目58または59に記載の形態B−HCl。
(項目61)
X線粉末回折パターンにおける、約16.5から約16.9度までの1つのピークを特徴とする、項目58から60のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目62)
X線粉末回折パターンにおける、約17.6から約18.4度までの3つのピークを特徴とする、項目58から61のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目63)
X線粉末回折パターンにおける、約21.4から約22.1度までの2つのピークを特徴とする、項目58から62のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目64)
X線粉末回折パターンにおける、約22.8から約23.8度までの2つのピークを特徴とする、項目58から63のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目65)
X線粉末回折パターンにおける、約24.7から約25.4度までの2つのピークを特徴とする、項目58から64のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目66)
X線粉末回折パターンにおける、約26.1から約27.3度までの1つのピークを特徴とする、項目58から65のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目67)
X線粉末回折パターンにおける、約30.9から約31.3度までの1つのピークを特徴とする、項目58から66のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目68)
X線粉末回折パターンにおける、約38.2から約38.7度までの1つのピークを特徴とする、項目58から67のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目69)
図13のX線回折パターンを特徴とする、項目58から68のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目70)
X線粉末回折パターンにおける、約8.1から約8.5度までの1つのピーク、約14.6から約15.1度までの1つのピーク、約16.5から約16.9度までの1つのピーク、約17.6から約18.4度までの3つのピーク、約21.4から約22.1度までの2つのピーク、約22.8から約23.8度までの2つのピーク、約24.7から約25.4度までの2つのピーク、約26.1から約27.3度までの1つのピーク、約30.9から約31.3度までの1つのピーク、および約38.2から約38.7度までの1つのピークを特徴とする、項目58から69のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目71)
X線粉末回折における、約8.1から約8.5度までの1つのピーク、約8.8から約9.2度までの1つのピーク、約12.8から約13.2度までの1つのピーク、約17.8から約18.2度までの1つのピークおよび約22.8から約23.2度までの1つのピークを特徴とする、項目58から70のいずれかに記載の形態B−HCl。
(項目72)
13 C NMRスペクトルにおける、約168.2ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から71のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目73)
13 C NMRスペクトルにおける、約148.7ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から72のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目74)
13 C NMRスペクトルにおける、約138.8ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から73のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目75)
13 C NMRスペクトルにおける、約119.8ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から74のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目76)
13 C NMRスペクトルにおける、約23.9ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から75のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目77)
13 C NMRスペクトルにおける、約168.2ppmでの1つのピーク、約148.7ppmでの1つのピーク、約138.8ppmでの1つのピーク、約119.8ppmでの1つのピークおよび約23.9ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から76のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目78)
図17の 13 C NMRスペクトルを特徴とする、項目58から77のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目79)
19 F NMRスペクトルにおける、約−55.6ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から78のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目80)
19 F NMRスペクトルにおける、約−62.0ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から79のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目81)
19 F NMRスペクトルにおける、約−55.6ppmでの1つのピークおよび約−62.0ppmでの1つのピークを特徴とする、項目58から80のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目82)
図18の 19 F NMRスペクトルを特徴とする、項目58から81のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目83)
単斜晶系、P2 1 /a空間群、ならびに下記の単位格子寸法:
a=12.57334(5)Å、
b=19.68634(5)Å、
c=8.39399(5)Å、
α=90°、
β=90.0554°、および
γ=90°
を保有することが判明している単結晶を特徴とする、項目58から82のいずれか一項に記載の形態B−HCl。
(項目84)
項目58から83のいずれか一項に記載の形態B−HClと、薬学的に許容されるアジュバントまたは担体とを含む、医薬組成物。
(項目85)
患者における疾患を治療するまたはその重症度を下げる方法であって、前記疾患が、嚢胞性線維症、喘息、喫煙誘発性COPD、慢性気管支炎、鼻副鼻腔炎、便秘、膵炎、膵機能不全、精管の先天性両側欠損(CBAVD)によって引き起こされる男性不妊、軽度肺疾患、特発性膵炎、アレルギー性気管支肺アスペルギルス症(ABPA)、肝疾患、遺伝性肺気腫、遺伝性ヘモクロマトーシス、プロテインC欠乏症等の凝固−繊維素溶解欠乏症、1型遺伝性血管浮腫、家族性高コレステロール血症等の脂質プロセシング欠乏症、1型乳び血症、無βリポタンパク質血症、I細胞疾患/偽性ハーラー症候群等のリソソーム蓄積症、ムコ多糖症、サンドホフ/テイ・サックス病、クリグラー・ナジャーII型、多腺性内分泌障害/高インスリン血症、真性糖尿病、ラロン型小人症、ミエロペルオキシダーゼ欠損症、原発性副甲状腺機能低下症、黒色腫、グリカノーシスCDG1型、先天性甲状腺機能亢進症、骨形成不全症、遺伝性低フィブリノゲン血症、ACT欠損症、尿崩症(DI)、ニューロフィシン性DI、腎性DI、シャルコーマリートゥース症候群、ペリツェーウス‐メルツバッハー病、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症、進行性核上麻痺、ピック病等の神経変性疾患、ハンチントン病、脊髄小脳失調I型、球脊髄性筋萎縮症、歯状核赤核淡蒼球ルイ体および筋強直性ジストロフィー等の数種のポリグルタミン神経障害、ならびに遺伝性クロイツフェルトヤコブ病(プリオンタンパク質プロセシング欠損に起因する)等の海綿状脳症、ファブリー病、シュトロイスラー‐シャインカー症候群、COPD、ドライアイ疾患、またはシェーグレン病、骨粗しょう症、骨減少症、骨折治癒機転および骨成長(骨修復、骨再生、骨吸収を低減させることおよび骨沈着を増大させることを包含する)、ゴーラム病、先天性筋強直症(トムゼン型およびベッカー型)等のクロライドチャネル病、バーター症候群III型、デント病、驚愕過剰症、てんかん、びっくり病、脂肪蓄積症、アンジェルマン症候群、ならびに、逆位を伴うPCD(カルタゲナー症候群としても公知である)、逆位および線毛形成不全を伴わないPCDを包含する線毛の構造および/または機能の遺伝障害を表す用語である先天性線毛運動不全症(PCD)から選択され、前記患者に、有効量の、項目1から84のいずれか一項に記載の形態A−HCl、形態B、形態B−HCl、またはこれらの形態の任意の組合せを投与するステップを含む方法。
(項目86)
前記疾患が嚢胞性線維症である、項目85に記載の方法。
(項目87)
患者における疾患を治療するまたはその重症度を下げる方法であって、前記疾患が、CFTRをコードする遺伝子における変異または環境要因に起因するCFTR機能の低減に関連し、前記患者に、有効量の項目1から84のいずれか一項に記載の化合物を投与するステップを含む方法。
(項目88)
疾患が、嚢胞性線維症、慢性気管支炎、反復性気管支炎、急性気管支炎、精管の先天性両側欠損(CBAVD)によって引き起こされる男性不妊、子宮および膣の先天性欠損(CAUV)によって引き起こされる女性不妊、特発性慢性膵炎(ICP)、特発性再発性膵炎、特発性急性膵炎、慢性鼻副鼻腔炎、原発性硬化性胆管炎、アレルギー性気管支肺アスペルギルス症、糖尿病、ドライアイ、便秘、アレルギー性気管支肺アスペルギルス症(ABPA)、骨疾患、ならびに喘息である、項目87に記載の方法。
(項目89)
患者における疾患を治療するまたはその重症度を下げる方法であって、前記疾患が正常なCFTR機能に関連し、前記患者に、有効量の項目1から84のいずれか一項に記載の化合物を投与するステップを含む方法。
(項目90)
疾患が、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、慢性気管支炎、反復性気管支炎、急性気管支炎、鼻副鼻腔炎、便秘、慢性膵炎、再発性膵炎および急性膵炎、膵機能不全、精管の先天性両側欠損(CBAVD)によって引き起こされる男性不妊、軽度肺疾患、特発性膵炎、肝疾患、遺伝性肺気腫、胆石、胃食道逆流性疾患、胃腸悪性腫瘍、炎症性腸疾患、便秘、糖尿病、関節炎、骨粗しょう症、ならびに骨減少症である、項目89に記載の方法。
(項目91)
前記疾患が、遺伝性ヘモクロマトーシス、プロテインC欠乏症等の凝固−繊維素溶解欠乏症、1型遺伝性血管浮腫、家族性高コレステロール血症等の脂質プロセシング欠乏症、1型乳び血症、無βリポタンパク質血症、I細胞疾患/偽性ハーラー症候群等のリソソーム蓄積症、ムコ多糖症、サンドホフ/テイ・サックス病、クリグラー・ナジャーII型、多腺性内分泌障害/高インスリン血症、真性糖尿病、ラロン型小人症、ミエロペルオキシダーゼ欠損症、原発性副甲状腺機能低下症、黒色腫、グリカノーシスCDG1型、先天性甲状腺機能亢進症、骨形成不全症、遺伝性低フィブリノゲン血症、ACT欠損症、尿崩症(DI)、ニューロフィシン性DI、腎性DI、シャルコーマリートゥース症候群、ペリツェーウス‐メルツバッハー病、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症、進行性核上麻痺、ピック病等の神経変性疾患、ハンチントン病、脊髄小脳失調I型、球脊髄性筋萎縮症、歯状核赤核淡蒼球ルイ体および筋強直性ジストロフィー等の数種のポリグルタミン神経障害、ならびに遺伝性クロイツフェルトヤコブ病(プリオンタンパク質プロセシング欠損に起因する)等の海綿状脳症、ファブリー病、シュトロイスラー‐シャインカー症候群、ゴーラム病、クロライドチャネル病、先天性筋強直症(トムゼン型およびベッカー型)、バーター症候群III型、デント病、驚愕過剰症、てんかん、びっくり病、脂肪蓄積症、アンジェルマン症候群、先天性線毛運動不全症(PCD)、逆位を伴うPCD(カルタゲナー症候群としても公知である)、逆位および線毛形成不全を伴わないPCD、またはシェーグレン病である、項目89に記載の方法。
(項目92)
生物学的試料におけるCFTRまたはその断片の活性をインビトロまたはインビボで測定する際に使用するためのキットであって、
a.項目1から84のいずれか一項に記載の形態A−HCl、形態B、形態B−HCl、またはこれらの形態の任意の組合せを含む組成物と、
b.
i.前記組成物を前記生物学的試料と接触させ、
ii.前記CFTRまたはその断片の活性を測定する
ための取扱説明書と
を含む、キット。
(項目93)
i.追加化合物を前記生物学的試料と接触させ、
ii.前記追加化合物の存在下で、前記CFTRまたはその断片の活性を測定し、
iii.前記追加化合物の存在下での前記CFTRの活性を、形態A−HCl、形態B、形態B−HCl、またはこれらの形態の任意の組合せの存在下でのCFTRの活性と比較する
ための取扱説明書をさらに含む、項目92に記載のキット。
(項目94)
前記CFTRまたはその断片の活性を比較するステップが、前記CFTRまたはその断片の密度の尺度を提供する、項目93に記載のキット。
(項目95)
生物学的試料におけるCFTR活性を調節する方法であって、前記CFTRを、項目1から84のいずれか一項に記載の形態A−HCl、形態B、形態B−HCl、またはこれらの形態の任意の組合せと接触させるステップを含む方法。
(項目96)
前記患者が、同型接合ΔF508変異を持つ嚢胞性線維症膜貫通受容体(CFTR)を保有する、項目95に記載の方法。
(項目97)
前記患者が、同型接合G551D変異を持つ嚢胞性線維症膜貫通受容体(CFTR)を保有する、項目95に記載の方法。
(項目98)
前記患者が、異型接合ΔF508変異を持つ嚢胞性線維症膜貫通受容体(CFTR)を保有する、項目95に記載の方法。
(項目99)
前記患者が、異型接合G551D変異を持つ嚢胞性線維症膜貫通受容体(CFTR)を保有する、項目95に記載の方法。
定義
本明細書において使用される場合、別段の指示がない限り、下記の定義が当てはまるものとする。
一態様において、本発明は、形態A−HClとして特徴付けられるN−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの形態を取り上げる。
一態様において、本発明は、形態Bとして特徴付けられるN−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの形態を取り上げる。
一態様において、本発明は、形態B−HClとして特徴付けられるN−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドの形態を取り上げる。
使用、製剤および投与
薬学的に許容される組成物
本発明の一態様において、薬学的に許容される組成物が提供され、ここで、これらの組成物は、本明細書において記述されている通りの形態A−HCl、形態Bまたは形態B−HClを含み、場合により、薬学的に許容される担体、アジュバントまたはビヒクルを含む。ある特定の実施形態において、これらの組成物は、1種または複数の追加の治療剤をさらに含む。
また別の態様において、本発明は、CFTR変異が関与する状態、疾患または障害を治療するまたはその重症度を下げる方法を提供する。ある特定の実施形態において、本発明は、CFTR活性の欠損が関与する状態、疾患または障害を治療する方法であって、本明細書において記述されている通りの形態A−HCl、形態B、形態B−HCl、またはこれらの形態の任意の組合せを含む組成物を、それを必要としている被験体、好ましくは哺乳動物に投与するステップを含む方法を提供する。
XRPD(X線粉末回折)
機器1
X線粉末回折(XRPD)データは、リガク/MSCミニフレックスデスクトップ粉末X線回折装置(Rigaku、The Woodlands、TX)を使用して、室温で記録する。X線は、Kβ抑制フィルターを用い、30kVおよび15mAで操作されるCu管を使用して生成する。発散スリットは、それぞれ4.2度およびスリット0.3mmに設定された散乱および受光スリットと共に可変である。スキャンモードは、0.02度の刻み幅および2.0秒のカウント時間を用いる固定時間(FT)である。参照標準物質:75%方ソーダ石(Na3Al4Si4O12Cl)および25%シリコン(Rigaku、カタログ番号2100/ALS)を使用して、粉末X線回折装置を較正する。ゼロバックグラウンド試料ホルダー(SH−LBSI511−RNDB)付きの6試料台を使用する。粉末試料を凹部に置き、スライドガラスで平らにする。
代替として、粉末X線回折測定は、室温で銅放射線(1.54060A)を用いるPANalyticalのエキスパートプロ回折装置を使用して実施した。入射ビーム光学は、試料上および回折ビーム側における一定の照射長を確実にするための可変発散スリットで構成されたものであった。高速線形固体状態検出器は、スキャンモードにおいて測定された2.12度2θの有効長で使用した。粉末試料をゼロバックグラウンドシリコンホルダーの凹部上に詰め、回転を実施してより良好な統計を達成した。対称スキャンは、0.017度の刻みサイズおよび15.5秒のスキャンステップ時間を用い、4〜40度2θで測定した。
代替として、高分解能データは、ビームラインID31(European Synchrotron Radiation Facility、Grenoble、フランス)にて室温で収集した。X線は、3つの11mmギャップ真空外アンジュレーター(ex−vacuum undulator)によって生じさせる。極低温に冷却した二結晶モノクロメーター(Si(111)結晶)によってビームを単色化する。水冷式スリットは、モノクロメーターへの入射ビームおよび試料に伝達される単色ビームのサイズを、0.5〜2.5mm(水平方向)×0.1〜1.5mm(垂直方向)の範囲内で限定する。実験に使用した波長は1.29984(3)Åであった。回折装置は、回折強度を2θの関数として測定するために垂直にスキャンされる9の検出器の列からなる。各検出器の前にSi(111)アナライザー結晶を置き、検出器チャネルはおよそ2°間隔とする。この回折装置は、ピーク幅が0.003°の狭さである極めて精密な高分解能回折パターンを生じさせることができ、ピーク位置の精度は0.0001°程度である。マテリアルズスタジオ(Materials Studio)(Reflex module)を使用して粉末回折データを処理し、インデックスを付けた。マテリアルズスタジオの粉末解析モジュールを使用して構造を解析した。得られた溶液を構造的実現可能性について評定し、その後、リートベルトの精密化手順を使用して精密化した。
示差走査熱量測定(DSC)は、TA DSC Q2000示差走査熱量計(TA Instruments,New Castle,DE)を使用して実施した。機器をインジウムで較正した。1つ穴の開いた蓋を使用して圧着された密封皿に、およそ2〜3mgの試料を秤量して入れた。DSC試料を、25℃から315℃まで、10℃/分の加熱速度でスキャンした。Thermal Advantage Q Series(商標)ソフトウェアによってデータを収集し、ユニバーサルアナリシスソフトウェア(TA Instruments、New Castle、DE)によって分析した。
熱重量分析(TGA)データは、TA Q500熱重量分析器(TA Instruments,New Castle,DE)で収集した。およそ3〜5mgの重量を持つ試料を、25℃から350℃まで、10℃/分の加熱速度でスキャンした。Thermal Advantage Q Series(商標)ソフトウェアによってデータを収集し、ユニバーサルアナリシスソフトウェア(TA Instruments、New Castle、DE)によって分析した。
FTIRスペクトルは、スマートオービットサンプリングコンパートメント(多重反射型減衰全反射アクセサリー)、45度のダイヤモンド窓を用いて、Thermo Scientific、ニコレット6700 FT−IR光度計から収集した。データ収集および分析に使用されるソフトウェアは、オムニック7.4である。収集設定は下記の通りであった:
検出器:DTGS KBr、
ビームスプリッター:Ge/KBr、
光源:エバーグローIR、
スキャン範囲:4000〜400cm−1、
ゲイン:8.0、
光学的速度:0.6329cm/秒、
開口:100、
スキャン数:32、および
分解能:4cm−1。
固体状態核磁気分光法(SSNMR)スペクトルは、Bruker400MHzプロトン周波数広口径分光計で獲得した。プロトン緩和縦緩和時間(1H T1)は、プロトン検出したプロトン飽和回復データを指数関数に当てはめることによって得た。これらの値を使用して、炭素交差分極マジック角回転実験の最適なリサイクル遅延(13C CPMAS)を設定し、典型的には、1.2×1H T1から1.5×1H T1の間に設定した。炭素スペクトルは、プロトンチャネル上の線形振幅ランプ(50%から100%まで)および100kHz TPPMデカップリングを使用し、2msの接触時間で獲得した。典型的なマジック角回転(MAS)スピードは15.0kHzであった。フッ素スペクトルは、プロトンデカップリングした直接分極MAS実験を使用して得た。100kHz TPPMデカップリングを使用した。リサイクル遅延は、≧5×19F T1に設定した。フッ素縦緩和時間(19F T1)は、フッ素検出しプロトンデカップリングした飽和回復データを指数関数に当てはめることによって得た。29.5ppmに設定した固相アダマンタンの高磁場共鳴を使用して、炭素およびフッ素スペクトルを外部参照した。この手順を使用して、炭素スペクトルは0ppmのテトラメチルシランを間接的に参照し、フッ素スペクトルは0ppmのニトロメタンを間接的に参照した。
炭酸ナトリウム(920.2g、8.682mol、2当量)を反応容器に添加し、続いて水(3.000L、6体積)を添加し、撹拌した。ジクロロメタン(DCM、4.000L、4体積)、続いてtrans−4−アミノシクロヘキサノール(500.0g、4.341mol)を添加して、二相反応混合物を生成し、これを室温で激しく撹拌した。次いで、DCM(2体積)中のBoc2O(947.4g、997.3mL、4.341mol、1当量)の溶液を容器に迅速に滴下添加し、得られた反応混合物を室温で終夜撹拌した。次いで、反応混合物を濾過し、フィルターケーキを水(2×8体積)で洗浄した。生成物が圧縮ケーキになるまで真空乾燥させた。次いで、ケーキを真空オーブン中35℃で24時間乾燥させて、830gのtrans−4−(tert−ブトキシカルボニルアミノ)シクロヘキサノール(A)を結晶性固体として得た。
2つの50L三つ口丸底フラスコは、それぞれ機械的撹拌器および熱電対を備えたものであった。フラスコを冷却槽に入れ、次いで、各フラスコに水(8.87L)およびtrans−4−アミノシクロヘキサノール(1479g)を入れた。約10から30分後、trans−4−アミノシクロヘキサノールが溶解し、炭酸カリウム(1774.6g)を各フラスコに加えた。約10から20分後、炭酸カリウムが溶解し、DCM(2.96L)を各フラスコに入れた。次いで、温度を20から30℃に維持するような速度で、DCM(1479mL)中のBoc無水物(3082.6g)を各フラスコに加えた。氷/水浴を使用して、発熱を制御し、添加を加速させ、これにはおよそ1から2時間を要した。添加中に懸濁液が形成され、反応混合物を室温に加温させ、Boc無水物の消失に基づいて反応が完了するまで終夜撹拌した。次いで、ヘプタン(6L)を各フラスコに入れ、混合物をおよそ0から5℃に冷却した。同じフィルターを使用する濾過によって各フラスコから固体を収集した。合わせた固体を、ヘプタン(6L)、続いて水(8L)で洗浄した。機械的撹拌器を備えた適正サイズの鉢に固体を入れた。水(12L)およびヘプタン(6L)を添加し、得られた懸濁液を30から60分間機械的に撹拌した。固体を濾過によって収集し、次いで、フィルター上、水(8L)およびヘプタン(8L)で洗浄し、フィルター上で3日間風乾させ、その後、30から35℃で一定重量に真空乾燥させて、生成物を白色固体として得た。
12Lフラスコは、窒素流および機械的撹拌器を備えたものであった。trans−4−(tert−ブトキシカルボニルアミノ)シクロヘキサノール(750g、3.484mol)、続いてテトラヒドロフラン(THF、6.000L、8体積)を導入し、混合物を撹拌した。トリエチルアミン(370.2g、509.9mL、3.658mol、1.05当量)を添加し、混合物を0℃に冷却した。混合物の温度を5℃未満に保ちながら、塩化メタンスルホニル(419.0g、283.1mL、3.658mol、1.05当量)を慎重に滴下添加した。添加後、混合物を0℃で3時間撹拌し、次いで、次第に室温(17℃)に加温し、終夜(約15時間)撹拌した。混合物を水(6体積)でクエンチし、15分間撹拌した。酢酸エチル(EtOAc、9.000L、12体積)を添加し、撹拌を15分間続けた。撹拌を停止し、混合物を10分間静置させ、水相を除去した。1NのHCl(6体積、4.5L)を添加し、撹拌を15分間続けた。撹拌を停止し、水相を除去した。10%w/vのNaHCO3(4.5L、6体積)を添加し、混合物を10分間撹拌した。撹拌を停止し、水相を除去した。水(6体積、4.5L)を添加し、混合物を10分間撹拌した。水層を除去し、有機層をポリッシュ濾過し、4体積に濃縮した。ヘプタン(5.5体積、4L)を添加し、混合物を再度濃縮乾固して、988gのtrans−4−(tert−ブトキシカルボニルアミノ)シクロヘキシルメタンスルホネートを結果として生じさせた。
機械的撹拌器、添加漏斗、窒素入口、熱電対および乾燥管を備えた三つ口丸底フラスコを、冷却槽に入れた。trans−4−(tert−ブトキシカルボニルアミノ)シクロヘキサノール(2599g、12.07mol、1.0当量)、テトラヒドロフラン(THF)(20.8L)およびトリエチルアミン(1466g、14.49mol、1.2当量)をフラスコに加えた。混合物を氷水浴で冷却し、撹拌した。塩化メタンスルホニル(1466g、12.80mol、1.06当量)を、添加漏斗により1時間かけて滴下添加した。添加が完了したら、冷却浴を除去し、出発材料が消費されたことをTLCが示すまで(約30分)反応混合物を撹拌した。次いで、反応混合物を、塩化水素酸水溶液(6.7Lの水中223mLのHCl)およびEtOAc(10.4L)でクエンチした。混合物を常温でおよそ10から20分間撹拌し、次いで、分液漏斗に移した。層を分離し、水層を廃棄した。有機層を、水(2×4.5L)、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液(1×4.5L)で洗浄し、5から10分間撹拌しながら、無水硫酸マグネシウムで乾燥させた。混合物を濾過し、フィルターケーキをEtOAc(2×600mL)で洗浄した。合わせた洗浄液および濾液を減圧下40℃で濃縮すると、白色固体が残った。固体をヘプタン(3L)に溶かし、氷/メタノール冷却槽中で冷却した。さらなるヘプタン(5L)を添加し、混合物を0から5℃で1時間以上撹拌した。次いで、固体を濾過によって収集し、冷ヘプタン(0から5℃、2×1.3L)で洗浄し、40℃で一定重量に真空乾燥させて、表題化合物を得た。
trans−4−(tert−ブトキシカルボニルアミノ)シクロヘキシルメタンスルホネート(985g、3.357mol)を、撹拌器を備えた三つ口12Lフラスコに、窒素雰囲気下で換気しながら導入した。DCM(1.970L、2体積)を室温で添加し、撹拌を開始した。トリフルオロ酢酸(TFA)(2.844kg、1.922L、24.94mol、2体積)を混合物に、各1Lの分量を2回ゆっくり添加した。1回目の添加後、混合物を30分間撹拌し、続いて2回目の添加をした。混合物を室温で終夜(15時間)撹拌して、透明溶液を結果として生じさせた。次いで、2−メチルテトラヒドロフラン(4体積)を反応混合物に添加し、これを1時間撹拌した。次いで、混合物をドラフト中で慎重に濾過し、真空乾燥させて、1100gのtrans−4−アミノシクロヘキシルメタンスルホネートのTFA塩を過剰なTFAとともに生成した。
50L三つ口丸底フラスコは、機械的撹拌器、添加漏斗および熱電対を備えたものであり、これを冷却槽に入れた。trans−4−(tert−ブトキシカルボニルアミノ)シクロヘキシルメタンスルホネート(3474g、1.0当量)およびDCM(5.9L)をフラスコに加えた。得られた懸濁液を常温で5から10分間撹拌し、次いで、添加漏斗を介しトリフルオロ酢酸(TFA、5.9L)を2.5時間かけてゆっくり添加して、結果として生じる発熱およびガス発生速度を制御した。反応混合物を室温で終夜撹拌し、次いで、氷水浴を使用して15℃から20℃に冷却した。次いで、添加漏斗を介し、内部温度を25℃未満に維持する速度で(およそ1.5時間)、2−メチルテトラヒドロフラン(2−MeTHF、11.8L)を添加した。最初の4〜5Lの2−MeTHFの添加は発熱性であった。得られた懸濁液を1時間撹拌した。固体を濾過によって収集し、次いで、2−MeTHF(2×2.2L)で洗浄し、その後、常温で一定重量に真空乾燥させて、表題化合物を白色固体として得た。
trans−4−アミノシクロヘキシルメタンスルホネート(200g、650.9mmol)のTFA塩を、3L三つ口フラスコに導入し、続いて水(2.200L、11体積)を添加した。反応混合物の温度を25℃未満に保ちながらNaOH(78.11g、1.953mol、3当量)をゆっくり添加し、混合物を終夜撹拌した。次いで、DCM(1.4L、7体積)を添加し、混合物を撹拌し、有機層を分離した。次いで、水層をDCM(1.4L、7体積)で2回目に抽出し、DCM層を合わせた。次いで、HCl(108.5mL、12M、1.3020mol、2当量)を添加し、混合物を30分間撹拌し、その後、ロータリーエバポレーターで濃縮乾固した。アセトニトリル(10体積)を添加し、混合物を濃縮した。微量の水がすべて共沸で除去されるまでこれを3回繰り返して、7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン塩酸塩(9)を得た。粗生成物をアセトニトリル(10体積)から再結晶させて、7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン塩酸塩(9)を無色の結晶性固体として得た。1HNMR (DMSO−d6) ppm 8.02−8.04 (d); 7.23−7.31 (m); 4.59 (s); 3.31 (s); 2.51−3.3 (m); 1.63−1.75 (m); 1.45−1.62 (m).
注記として、抽出のためにDCMを添加する代わりに、粗生成物を約95℃から97℃で蒸留し、さらに再結晶させてもよい。
50L三つ口丸底フラスコは、機械的撹拌器、添加漏斗および熱電対を備えたものであり、これを加熱マントルに入れた。トリフルオロアセテート(3000g、1当量)および水(30L)中のtrans−4−アミノシクロヘキシルメタンスルホネートをフラスコに加えた。添加が弱発熱性であることから、温度を25℃未満に維持するような速度で、50%NaOH(2343g、29.29mol、3当量)を添加漏斗により添加しながら、混合物を撹拌した。NaOH添加が完了したら、反応混合物を室温で終夜撹拌した。ヘッド温度を95から98℃とし、還流温度(およそ100℃)での分別蒸留によって生成物を回収した。HClを添加することによって各画分のpHを2に調整し、減圧下55℃で濃縮すると、濃厚なペーストが残った。アセトニトリル(ACN1.5L)を添加し、得られた懸濁液を30分間撹拌し、次いで、0から5℃に1時間冷却した。固体を濾過によって収集し、冷(0から5℃)ACN(2×600mL)で洗浄し、50℃で一定重量に真空乾燥させた。
4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(7)の調製
2−クロロ−5−(トリフルオロメチル)アニリン(2)(200g、1.023mol)、ジエチル2−(エトキシメチレン)マロネート(3)(276g、1.3mol)およびトルエン(100mL)を、窒素雰囲気下、ディーンスタークコンデンサーを備えた三つ口1L丸底フラスコ中で合わせた。溶液を撹拌しながら140℃に加熱し、その温度を4時間(h)維持した。反応混合物を70℃に冷却し、ヘキサン(600mL)をゆっくり添加した。得られたスラリーを撹拌し、室温に加温させた。固体を濾過によって収集し、ヘキサン中10%の酢酸エチル(2×400mL)で洗浄し、次いで、真空乾燥させて、生成物ジエチル2−((2−クロロ−5−(トリフルオロメチル)フェニルアミノ)メチレン)マロネート(4)を白色固体として得た。1H NMR (400 MHz, DMSO−d6) δ 11.28 (d, J = 13.0 Hz, 1H), 8.63 (d, J = 13.0 Hz, 1H), 8.10 (s, 1H), 7.80 (d, J = 8.3 Hz, 1H), 7.50 (dd, J = 1.5, 8.4 Hz, 1H), 4.24 (q, J = 7.1 Hz, 2H), 4.17 (q, J = 7.1 Hz,2 H),1.27 (m, 6H).
エチル8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキシレート(5A)の調製、方法1
三つ口1Lフラスコに、Dowtherm(登録商標)(200mL、8mL/g)を入れ、200℃で1時間脱気した。溶媒を260℃に加熱し、ジエチル2−((2−クロロ−5−(トリフルオロメチル)フェニルアミノ)メチレン)マロネート(4)(25g、0.07mol)とともに10分間(min)かけて小分けにして入れた。得られた混合物を260℃で6.5時間撹拌し、得られたエタノール副産物を蒸留によって除去した。混合物を80℃にゆっくり冷却させた。ヘキサン(150mL)を30分間かけてゆっくり添加し、続いて追加で200mLのヘキサンを一度に添加した。スラリーが室温に達するまで撹拌した。固体を濾過し、ヘキサン(3×150mL)で洗浄し、次いで、真空乾燥させて、エチル8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキシレート(5A)を黄褐色固体として得た。1H NMR (400 MHz, DMSO−d6) δ 11.91 (s, 1H), 8.39 (s, 1H), 8.06 (d, J = 8.3 Hz, 1H), 7.81 (d, J = 8.4 Hz, 1H), 4.24 (q, J = 7.1 Hz, 2H), 1.29 (t, J = 7.1 Hz, 3H).
エチル8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキシレート(5A)の調製、方法2
化合物4(2000g、5.468mol)を反応器に導入した。Dowtherm(4.000L)を反応器に入れ、窒素パージによって室温で終夜脱気した。次いでこれを撹拌し、260℃に加温した。生じたEtOHを留去した。反応をモニターし、5.5時間後に完了し、反応が実質的に完了した。熱源を除去し、反応混合物を80℃に冷却し、ヘプタン(2.000L)を入れた。混合物を30分間撹拌した。ヘプタン(6.000L)を撹拌混合物に入れ、撹拌を終夜続けた。固体を濾過除去し、ヘプタン(4.000L)で洗浄し、真空オーブン中50℃で乾燥させて、化合物6Aを得た。
三つ口5Lフラスコに、エチル8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキシレート(5A)(100g、0.3mol)、エタノール(1250mL、12.5mL/g)およびトリエチルアミン(220mL、1.6mol)を入れた。次いで、容器に10gの10%Pd/C(50%湿式)を5℃で入れた。反応物を水素雰囲気下5℃で20時間激しく撹拌し、この時間の後、反応混合物をおよそ150mLの体積に濃縮した。生成物エチル4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1H−キノリン−3−カルボキシレート(6)を、Pd/C入りスラリーとして次のステップに直接持ち込んだ。
エチル4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1H−キノリン−3−カルボキシレート(6)(58g、0.2mol、Pd/Cを含有する粗反応物スラリー)を、還流コンデンサー付きの1Lフラスコ中、NaOH(814mL、5M、4.1mol)に懸濁させ、80℃で18時間加熱し、続いて100℃で5時間さらに加熱した。反応物をパックセライトに通して温かいうちに濾過してPd/Cを除去し、セライトを1NのNaOHですすいだ。濾液をpH約1に酸性化して、濃厚な白色沈殿物を得た。沈殿物を濾過し、次いで、水および冷アセトニトリルですすいだ。次いで、固体を真空乾燥させて、4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(7)を白色固体として得た。1H NMR (400.0 MHz, DMSO−d6) δ 15.26 (s, 1H), 13.66 (s, 1H), 8.98 (s, 1H), 8.13 (dd, J = 1.6, 7.8 Hz, 1H), 8.06 − 7.99 (m, 2H).
(実施例1B)
4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(7)の代替的調製
エチル8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキシレート(5A)(1200g、3.754mol)を反応容器に入れ、続いて、2−プロパノール(1.200L)および水(7.200L)を添加し、撹拌した。水酸化ナトリウム(600.6g、7.508mol)および水(1.200L)を混合し、室温に冷却させた。得られた混合物を反応容器に入れ、次いで、3.5時間撹拌しながら80℃に加熱して、暗色の均質混合物を生成した。さらに1時間後、滴下漏斗を介し45分間かけて酢酸(9.599L、20%w/v、31.97mol)を添加した。反応混合物を、6℃/時の速度で撹拌しながら22℃に冷却した。得られた固体を濾過し、水(3L)で洗浄して、湿ったケーキ(1436g)を生成した。濾液を、真空オーブン中、窒素を抜きながらDrierite(登録商標)で乾燥させて、8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(5B)を褐色固体(1069g)として生成した。8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(5B)を、1.5Lのメタノール中でスラリー化し、6時間撹拌することによって精製した。次いでこれを濾過し、乾燥させて、968.8gの精製された8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(5B)を得た。
8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(5B)(18.5g、1.00当量、限定試薬)を反応容器に入れ、MeOH(118mL、6.4体積)を不活性雰囲気下でかき混ぜながら添加した。ナトリウムメトキシド(3.53g、1.00当量)を10分間かけて少量ずつ反応器に添加した。すべての固体が溶液中にある状態になるまで(5〜10分)、混合物を撹拌した。次いで、パラジウム炭素(2.7g、0.03当量)を反応混合物に添加した。MeOH(67mL、3.6体積)に溶解させたギ酸カリウム(10.78g、2当量)を、反応混合物に30分間かけて添加し、常温で約4.5時間撹拌した。8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸が、4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(7)と相対的に1.0%以下となった際に、反応は完了したと判断した。反応が完了したら、混合物をセライトのパッド(使用したセライトの質量は、始めに容器に入れられた8−クロロ−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボン酸(5B)の質量のおよそ2倍)に通して濾過して、固体を除去した。セライトケーキをMeOH(37mL、2体積)で洗浄した。濾液をきれいな反応容器に入れ、撹拌した。酢酸(7.22mL、2当量)を、撹拌溶液に少なくとも45分間かけて連続的に入れ、得られたスラリーを5〜16時間の間撹拌した。固体を濾過し、ケーキをMeOH(56mL、3体積)で洗浄し、真空乾燥させ、次いで真空乾燥させて、生成物を白色/オフホワイトの固体として得た。
4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)アニリン(11A)の調製
7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン塩酸塩(9)(4.6g、34.43mmol)を含有するフラスコに、窒素雰囲気下、アセトニトリル(50mL)中の4−フルオロ−1−ニトロ−2−(トリフルオロメチル)ベンゼン(8)(6.0g、28.69mmol)およびトリエチルアミン(8.7g、12.00mL、86.07mmol)の溶液を添加した。反応フラスコを、窒素雰囲気下80℃で16時間加熱した。次いで、反応混合物を冷却させ、水とジクロロメタンとに分配した。有機層を1MのHClで洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、濾過し、濃縮乾固した。シリカゲルクロマトグラフィー(ヘキサン中0〜10%酢酸エチル)による精製により、7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタンを黄色固体として生み出した。1H NMR (400.0 MHz, DMSO−d6) δ 8.03 (d, J = 9.1 Hz, 1H), 7.31 (d, J = 2.4 Hz, 1H), 7.25 (dd, J = 2.6, 9.1 Hz, 1H), 4.59 (s, 2H), 1.69 − 1.67 (m, 4H), 1.50 (d, J = 7.0 Hz, 4H).
7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン(10A)の調製、方法2
4−フルオロ−1−ニトロ−2−(トリフルオロメチル)ベンゼン(8)(901g、4.309mol)を、30Lジャケット型容器に、窒素雰囲気下、撹拌しながら、炭酸ナトリウム(959.1g、9.049mol)およびDMSO(5L、5.5体積)とともに導入した。次いで、7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン塩酸塩(9)(633.4g、4.740mol)を小分けにして容器に添加し、温度を次第に55℃に上昇させた。反応をHPLCによってモニターし、基質が1%未満のAUCとなった際に、反応が完了したとみなした。次いで、混合物を10体積のEtOAcで希釈し、水(5.5体積)で3回洗浄した。次いで、有機層を4体積に濃縮し、シクロヘキサンを添加し、4体積に濃縮した。シクロヘキサンを添加し、得られた溶液を4体積に濃縮する過程を、すべてのEtOAcが除去されるまで繰り返し、シクロヘキサンを含有するフラスコ中の総体積を、約4体積とした。反応混合物を、ロータリーエバポレーターで30分間、60℃に加熱した。次いで、溶液を撹拌または旋回させながら室温に3時間冷却した。次いで、すべての固体を結晶化させ、濃縮乾固して、7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン(10A)を得た。
3体積のDCMに溶解させた4−フルオロ−1−ニトロ−2−(トリフルオロメチル)ベンゼン(8)に、テトラブチルアンモニウムブロミド(0.05当量)および50wt%KOH(3.6当量)を添加した。次いで、7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン塩酸塩(9)を0〜5℃で添加した。反応物を常温に加温した。反応をHPLCによってモニターし、基質が1%未満のAUCとなった際に、反応が完了したとみなし、層を分離した。有機層を1MのHClで洗浄し、水層を廃棄した。次いで、有機層を水で1回、ブラインで1回洗浄し、蒸発させた。得られた材料を、還流でシクロヘキサンから再結晶させた。固体を濾過し、シクロヘキサンで洗浄し、窒素雰囲気下、真空オーブン中45℃で乾燥させて、7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタンを得た。
7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン(10A)(7.07g、24.70mmol)および10%Pd/C(0.71g、6.64mmol)で満たしたフラスコの空気を抜き、次いで窒素を流した。エタノール(22mL)を添加し、反応フラスコに水素バルーンを装着した。12時間激しく撹拌後、反応混合物を窒素でパージし、Pd/Cを濾過によって除去した。濾液を減圧下で濃縮して暗色油とし、これをシリカゲルクロマトグラフィー(ヘキサン中0〜15%酢酸エチル)によって精製して、4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)アニリン(11A)を紫色固体として得た。1H NMR (400.0 MHz, DMSO−d6) δ 6.95 (dd, J = 2.3, 8.8 Hz, 1H), 6.79 (d, J = 2.6 Hz, 1H), 6.72 (d, J = 8.8 Hz, 1H), 4.89 (s, 2H), 4.09 (s, 2H), 1.61 − 1.59 (m, 4H)および1.35 (d, J = 6.8 Hz, 4H).
(実施例2B)
4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)アニリン(11B)塩酸塩の調製
パラジウム炭素(150g、5%w/w)を、窒素雰囲気下、Buechi水素化装置(hydrogenator)(20L容量)に入れ、続いて、上記実施例2A(方法2)において調製した通りの7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン(10A、1500g)、および2−メチルテトラヒドロフラン(10.5L、7体積)を添加した。次いで、水素化装置を水素ガスでパージし、その後、混合物に、大気圧を0.5バール上回る圧力で連続的に入れた。次いで、容器ジャケットを冷却することにより、混合物を18℃から23℃の間の温度で撹拌した。水素ガスがそれ以上消費されなくなり、さらなる発熱が起こらなくなったら、容器を減圧にした。次いで、窒素ガスを0.5バールで容器に充填し、再度減圧し、続いて0.5バールの窒素ガスの2回目の充填をした。濾過したアリコートのHPLCが、7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン(10A)が残っていないことを示したら(例えば≦0.5%)、窒素雰囲気下、セライトフィルターを使用する濾過漏斗を介して、反応混合物を受け入れフラスコ(receiving flask)に移した。セライトフィルターケーキを2−メチルテトラヒドロフラン(3L、2体積)で洗浄した。撹拌機構、温度制御および窒素雰囲気を備えた容器に、洗浄液および濾液を入れた。1,4−ジオキサン(1体積)中4MのHClを、20℃で1時間かけて連続的に容器に添加した。混合物を少なくとも追加で10時間撹拌し、濾過し、2−メチルテトラヒドロフラン(2体積)で洗浄し、乾燥させて、1519gの4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)アニリン(11B)の塩酸塩を白色結晶性固体として生成した。
Buechi水素化装置(20L容量)中に、パラジウム炭素(5%w/w、150g)を窒素下で導入し、続いて、7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン(1500g)および2−メチルテトラヒドロフラン(10.5L、7体積)を添加した。次いで、水素化装置を水素ガスでパージし、その後、撹拌混合物に、大気圧を0.5バール上回る圧力で連続的に入れた。容器ジャケットを冷却することにより、反応混合物の温度を18℃から23℃に維持した。水素ガスがそれ以上消費されなくなり、さらなる発熱が起こらなくなったら、容器を減圧にした。次いで、窒素ガスを容器に充填し、再度減圧にし、続いて0.5バールの窒素ガスを入れた。濾過したアリコートのHPLCが、7−[4−ニトロ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタンが検出されなかったことを示したら(≦0.5%)、反応が完了したと判定した。次いで、反応混合物をセライトに通して濾過した。残ったスラリーを、窒素ガス下、セライトフィルターを含有する濾過漏斗を介して、受け入れフラスコに移した。セライトケーキを2−メチルテトラヒドロフラン(3L、2体積)で洗浄した。撹拌機構、温度制御および窒素雰囲気を備えた容器に、濾液および洗浄液を移した。1,4−ジオキサン(1体積)中4MのHClを、20℃で1時間かけて連続的に容器に添加した。得られた混合物を追加で10時間撹拌し、濾過し、2−メチルテトラヒドロフラン(2体積)で洗浄し、乾燥させて、1519gの7−[4−アミノ−3−(トリフルオロメチル)フェニル]−7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン塩酸塩(11B)を白色結晶性固体として生成した。
N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド(形態A)の調製
(実施例3B)
N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド(形態A−HCl)の調製
表1.形態A−HCl XPRDピーク
表2.形態A HCl FTIR吸収
表3.形態A−HCl 13C SSNMRピーク
N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド(形態B)の調製
表6.形態BのFTIR吸収
表7.形態B 13C SSNMRピーク
N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド(形態B−HCl)の調製
表9.形態B−HCl XRPDピーク
表10.形態B−HCl FTIR吸収
表11.形態B−HCl 13C SSNMRピーク
N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド(形態B−HCl)の代替的調製
形態A−HCl(14.638g、27.52mmol)を100mL丸底フラスコに入れた。EtOH(248.9mL)および水(27.82mL)を添加した。白色スラリーを加熱還流した。透明溶液が77℃で得られた。反応物を45℃に冷却し、30分間撹拌し、次いで、20℃に冷却した。混合物を追加で3時間、20℃で撹拌した。生成物を濾過し、ケーキをEtOHで洗浄した。固体を、真空オーブン中45℃で、窒素を抜きながら乾燥させて、化合物I、形態B−HClを白色固体として提供した。XRPD分析により、形態B−HClとしての固体の同一性を確認した。
表13.形態B−HClを作製するために使用され得る他の溶媒
化合物のΔF508−CFTR調節特性を評価するための膜電位光学法
アッセイでは、蛍光電圧感知染料を利用して、NIH 3T3細胞における機能的ΔF508−CFTRの増大の読み出しとして蛍光プレートリーダー(例えば、FLIPR III、Molecular Devices,Inc.)を使用し、膜電位の変化を測定する。応答のための駆動力は、細胞を先に化合物で処理し、その後電圧感知染料を充填した後の単一液体添加ステップによるチャネル活性化と連動する、クロライドイオン勾配の生成である。
ΔF508−CFTRの増強物質を同定するために、二重添加HTSアッセイフォーマットを開発した。このHTSアッセイでは、蛍光電圧感知染料を利用して、温度補正されたΔF508 CFTR NIH 3T3細胞中におけるΔF508 CFTRのゲーティング(コンダクタンス)の増大の測定として、膜電位の変化をFLIPR IIIで測定する。応答のための駆動力は、細胞を先に増強物質化合物(またはDMSOビヒクル対照)で処理し、その後再分布染料を加えた後の、FLIPR III等の蛍光プレートリーダーを使用する単一液体添加ステップ中のホルスコリンによるチャネル活性化と連動する、Cl−イオン勾配である。
浴溶液番号1:(mM単位で)NaCl 160、KCl 4.5、CaCl2 2、MgCl2 1、HEPES 10、そしてNaOHでpH7.4にした。
ΔF508−CFTRを安定発現するNIH3T3マウス線維芽細胞を、膜電位の光学的測定に使用する。175cm2培養フラスコ内、2mMのグルタミン、10%のウシ胎仔血清、1×NEAA、β−ME、1×ペニシリン/ストレプトマイシンおよび25mMのHEPESを補充したダルベッコ変法イーグル培地中、37℃、5%CO2および90%湿度で細胞を維持する。すべての光学的アッセイのために、細胞を384ウェルマトリゲルコーティングプレートに約20,000/ウェルで播種し、37℃で2時間培養した後、増強物質アッセイのために27℃で24時間培養した。補正アッセイのために、細胞を、27℃または37℃、化合物有りおよび無しで16〜24時間培養する。
1.ウッシングチャンバーアッセイ
ΔF508−CFTRを発現している分極した気道上皮細胞についてウッシングチャンバー実験を実施して、光学的アッセイにおいて同定されたΔF508−CFTRモジュレーターをさらに特徴付けた。非CFおよびCF気道上皮を気管支組織から単離し、以前に記述されている通りに培養し(Galietta, L.J.V.、Lantero, S.、Gazzolo, A.、Sacco, O.、Romano, L.、Rossi, G.A.およびZegarra−Moran, O.、(1998年)、In Vitro Cell. Dev. Biol.、34巻、478〜481頁)、NIH3T3馴化培地でプレコーティングしたCostar(登録商標)Snapwell(商標)フィルターに平板培養した。4日後、頂端の培地を除去し、細胞を使用前に14日を超える期間、気液界面で成長させた。これは、気道上皮に特徴的な特色である、線毛のある完全に分化した円柱細胞の単層をもたらした。いかなる公知の肺疾患も有さない非喫煙者から、非CF HBEを単離した。ΔF508−CFTRが同型接合の患者から、CF−HBEを単離した。
典型的なプロトコールでは、基底外側から頂端膜のCl−濃度勾配を利用した。この勾配を準備するために、側底膜上では通常のリンゲル液を使用したのに対し、頂端NaClは等モル濃度のグルコン酸ナトリウム(NaOHで滴定してpH7.4にした)によって置き換えて、上皮を横断する大きなCl−濃度勾配を得た。ホルスコリン(10μM)およびすべての試験化合物を、細胞培養インサートの頂端側に添加した。推定上のΔF508−CFTR増強物質の効果を、公知の増強物質であるゲニステインの効果と比較した。
以前に記述されている通りの穿孔パッチ記録コンフィギュレーションを使用して、ΔF508−NIH3T3細胞における全Cl−電流をモニターした(Rae, J.、Cooper, K.、Gates, P.およびWatsky, M.(1991年)、J. Neurosci. Methods、37巻、15〜26頁)。電圧クランプ記録は、アキソパッチ200Bパッチクランプ増幅器(Axon Instruments Inc.、Foster City、CA)を使用し、22℃で実施した。ピペット溶液は、(mM単位で)150 N−メチル−D−グルカミン(NMDG)−Cl、2 MgCl2、2 CaCl2、10 EGTA、10 HEPESおよび240μg/mLのアンホテリシン−B(HClでpHを7.35に調整した)を含有していた。細胞外培地は、(mM単位で)150 NMDG−Cl、2 MgCl2、2 CaCl2、10 HEPES(HClでpHを7.35に調整した)を含有していた。パルス発生、データ獲得および分析は、Clampex 8(Axon Instruments Inc.)と連動するDigidata 1320A/Dインターフェースを備えたPCを使用して実施した。ΔF508−CFTRを活性化するために、10μMのホルスコリンおよび20μMのゲニステインを浴に添加し、電流電圧関係を30秒毎にモニターした。
穿孔パッチ記録技術を使用して、ΔF508−CFTRを安定発現しているNIH3T3細胞において巨視的ΔF508−CFTR Cl−電流(IΔF508)を増大させるΔF508−CFTR増強物質の能力も調査した。光学的アッセイにより同定された増強物質は、IΔF508の用量依存的な増大を誘起し、光学的アッセイで同様の効力および効果が観察された。検査したすべての細胞において、増強物質適用の前および最中の逆転電位は、算出されたECl(−28mV)である−30mV前後であった。
ΔF508−CFTRを安定発現するNIH3T3マウス線維芽細胞を、ホールセル記録に使用する。175cm2培養フラスコ内、2mMのグルタミン、10%のウシ胎仔血清、1×NEAA、β−ME、1×ペニシリン/ストレプトマイシンおよび25mMのHEPESを補充したダルベッコ変法イーグル培地中、37℃、5%CO2および90%湿度で細胞を維持する。ホールセル記録のために、2,500〜5,000細胞をポリ−L−リジンコーティングされたガラスカバースリップ上に播種し、増強物質の活性を試験するために、使用前に27℃で24〜28時間培養し、補正剤(corrector)の活性を測定するために、37℃、補正化合物(correction compound)有りおよび無しで培養した。
アキソパッチ200Bパッチクランプ増幅器(Axon Instruments Inc.)を使用する、以前に記述されている通りの切除された反転膜パッチ記録(excised inside−out membrane patch recordings)(Dalemans, W.、Barbry, P.、Champigny, G.、Jallat, S.、Dott, K.、Dreyer, D.、Crystal, R.G.、Pavirani, A.、Lecocq, J−P.、Lazdunski, M.(1991年)、Nature、354巻、526〜528頁)を使用して、NIH3T3細胞において発現された野生型CFTRおよび温度補正されたΔF508−CFTRのゲーティング活性を観察した。ピペットは、(mM単位で):150 NMDG、150 アスパラギン酸、5 CaCl2、2 MgCl2および10 HEPES(トリス塩基でpHを7.35に調整した)を含有していた。浴は、(mM単位で):150 NMDG−Cl、2 MgCl2、5 EGTA、10 TESおよび14 トリス塩基(HClでpHを7.35に調整した)を含有していた。切除後、1mMのMg−ATP、75nMのcAMP依存性タンパク質キナーゼ触媒サブユニット(PKA;Promega Corp.、Madison、WI)、および10mMのNaFを添加することにより、野生型およびΔF508−CFTR両方を活性化させてタンパク質ホスファターゼを阻害し、これによって電流消耗を防止した。ピペット電位は80mVに維持した。2つ以下の活性チャネルを含有する膜パッチによりチャネル活性を分析した。同時開口の最大数によって、実験経過中の活性チャネル数を決定した。単一チャネル電流振幅を決定するために、120秒のΔF508−CFTR活性から記録されたデータを100Hzで「オフライン」フィルター処理し、次いで全点振幅ヒストグラムを構築するために使用し、これを、バイオパッチ分析ソフトウェア(Bio−Logic Comp.、フランス)を使用して多重ガウス分布関数に当てはめた。総微視的電流および開確率(Po)を、120秒のチャネル活性から決定した。Poは、バイオパッチソフトウェアを使用して、または関係式Po=I/i(N)[ここで、I=平均電流、i=単一チャネル電流振幅、かつN=パッチ中の活性チャネル数である]から決定した。
ΔF508−CFTRを安定発現するNIH3T3マウス線維芽細胞を、切除膜パッチクランプ記録に使用する。175cm2培養フラスコ内、2mMのグルタミン、10%のウシ胎仔血清、1×NEAA、β−ME、1×ペニシリン/ストレプトマイシンおよび25mMのHEPESを補充したダルベッコ変法イーグル培地中、37℃、5%CO2および90%湿度で細胞を維持する。単一チャネル記録のために、2,500〜5,000細胞をポリ−L−リジンコーティングされたガラスカバースリップ上に播種し、使用前に27℃で24〜48時間培養した。
Claims (17)
- 形態Bとして特徴付けられる、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミドであって、
該形態Bは、X線粉末回折パターンにおける、6.5から6.9度までの1つのピーク、9.8から10.2度までの1つのピーク、11.0から11.4度までの1つのピーク、13.2から13.6度までの1つのピークおよび23.8から24.2度までの1つのピークを特徴とするか、あるいは;
該形態Bは、単斜晶系、P21/c空間群、ならびに下記の単位格子寸法:
a=13.5429(4)Å、
b=13.4557(4)Å、
c=12.0592(4)Å、
α=90°、
β=101.193°、および
γ=90°
を保有することが判明している単結晶を特徴とする、形態Bとして特徴付けられる、N−(4−(7−アザビシクロ[2.2.1]ヘプタン−7−イル)−2−(トリフルオロメチル)フェニル)−4−オキソ−5−(トリフルオロメチル)−1,4−ジヒドロキノリン−3−カルボキサミド。 - X線粉末回折における、6.5から6.9度までの1つのピーク、9.8から10.2度までの1つのピーク、11.0から11.4度までの1つのピーク、13.2から13.6度までの1つのピークおよび23.8から24.2度までの1つのピークを特徴とする、請求項1に記載の形態B。
- X線粉末回折における、6.7度の1つのピーク、10.0度の1つのピーク、11.2度の1つのピーク、13.4度の1つのピークおよび24.0度の1つのピークを特徴とする、請求項1に記載の形態B。
- 13C NMRスペクトルにおける、165.3ppmでの1つのピーク、145.9ppmでの1つのピーク、132.9ppmでの1つのピークおよび113.4ppmでの1つのピークからなる群より選択される1つまたは複数のピークを特徴とする、請求項1から3のいずれか一項に記載の形態B。
- 13C NMRスペクトルにおける、165.3ppmでの1つのピーク、145.9ppmでの1つのピーク、132.9ppmでの1つのピークおよび113.4ppmでの1つのピークを特徴とする、請求項1から4のいずれか一項に記載の形態B。
- 19F NMRスペクトルにおける、−56.1ppmでの1つのピークおよび−62.1ppmでの1つのピークからなる群より選択される1つまたは複数のピークを特徴とする、請求項1から5のいずれか一項に記載の形態B。
- 請求項1から6のいずれか一項に記載の形態Bと、薬学的に許容されるアジュバントまたは担体とを含む、医薬組成物。
- 患者における疾患の治療またはその重症度の軽減における使用のための組成物であって、前記疾患が、嚢胞性線維症、遺伝性肺気腫、COPD、およびドライアイ疾患から選択され、前記組成物が、請求項1〜6のいずれか一項に記載の形態Bを含む、組成物。
- 前記疾患が嚢胞性線維症である、請求項8に記載の組成物。
- 患者における疾患の治療またはその重症度の軽減における使用のための組成物であって、前記疾患が、CFTRをコードする遺伝子における変異または環境要因に起因するCFTR機能の低減に関連し、かつ、前記疾患が、嚢胞性線維症、またはドライアイであり、前記組成物が、請求項1〜6のいずれか一項に記載の形態Bを含む、組成物。
- 患者における疾患の治療またはその重症度の軽減における使用のための組成物であって、前記疾患が正常なCFTR機能に関連し、前記組成物が、請求項1〜6のいずれか一項に記載の形態Bを含む、組成物。
- 前記疾患が、慢性閉塞性肺疾患(COPD)または遺伝性肺気腫である、請求項11に記載の組成物。
- 生物学的試料におけるCFTR活性を調節するインビトロの方法であって、前記CFTRを、請求項1〜6のいずれか一項に記載の形態Bと接触させるステップを含む方法。
- 前記患者が、ΔF508変異について同型接合性の患者である、請求項9に記載の組成物。
- 前記患者が、G551D変異について同型接合性の患者である、請求項9に記載の組成物。
- 前記患者が、ΔF508変異について異型接合性の患者である、請求項9に記載の組成物。
- 前記患者が、G551D変異について異型接合性の患者である、請求項9に記載の組成物。
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