JP6018915B2 - ２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物の製造方法 - Google Patents

Description

本発明は、２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物の製造方法、ならびに、該方法に使用可能な酵素および該酵素をコードするＤＮＡに関する。

本発明はまた、上記化合物の生産用の細胞およびトランスジェニック植物に関する。

トリテルペンは６つのイソプレン単位で形成された天然物で、自然界で１００以上の骨格が報告されている（非特許文献１）。植物に見られるトリテルペンでもっとも多いものはオレアナン型（βアミリン、タラキセロール、ゲルマニコール、オレアノール酸等）で、続いてウルサン型（αアミリン、ウルソール酸等）、ルパン型（ルペオール、ベツリン酸等）などの五環系トリテルペンがある。トリテルペンには、抗癌作用や抗炎症作用を示す生理活性物質が知られ、新しい医薬品の重要な化学構造プールになっている（非特許文献２）。２８位にカルボキシル基を有する五環系トリテルペン化合物の代表として挙げられるオレアノール酸やウルソン酸についても生理活性があることが報告されている（非特許文献３、４）。特許文献としては、２８位にカルボキシル基を有する五環系トリテルペンについて、エージング対応用の皮膚外用剤（特許文献１）、グルタチオン産生促進作用（特許文献２）、疲れ目の改善または予防のための経口投与組成物（特許文献３）、ヒアルロニダーゼ阻害剤（特許文献４）、メタボリックシンドロームの予防および改善（特許文献５）、エンドセリン受容体拮抗物質（特許文献６）、ＴＧＦ−β阻害剤（特許文献７）、抗掻痒剤（特許文献８）等が報告されている。このようにオレアノール酸などの２８位にカルボキシル基を有する五環系トリテルペン化合物の重要性が脚光を浴びる一方で、そのような化合物は、植物でしか生産されず、天然物（植物の根や果皮）から単に抽出して利用されている。例えば、オレアノール酸の供給元のホームページ上の情報によるとＭＰ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌｓ社（米国）はオタネニンジン（Ｐａｎａｘ ｇｉｎｓｅｎｇ）、Ｃｈａｎｇｓｈａ Ｎｕｔｒａｍａｘ 社はオリーブ（Ｏｌｅａ ｅｕｒｏｐａｅａ）、リンドウ科植物（Ｓｗｅｒｔｉａ ｍｉｌｅｅｎｓｉｓ）、セリ科植物（Ａｓｔｒａｎｔｉａ ｍａｊｏｒ）、ウコギ科タラノキ（Ａｒａｌｉａ ｃｈｉｎｅｎｓｉｓ）、ウリ科植物（Ｈｅｍｓｌｅｙａ）をあげており、いずれも植物からの抽出物であるとしている。抽出法については米国特許（特許文献９）や欧州特許（特許文献１０）に報告がある。また、βアミリン等からの有機合成による変換も極めて困難であり工業としては成り立っておらず、オレアノール酸などの２８位にカルボキシル基を有する五環系トリテルペン化合物を効率的に合成する手法が求められていた。

しかしながら、２８位にカルボキシル基を有する五環系トリテルペン化合物の合成酵素、つまりはオレアナン型、ウルサン型又はルパン型等の五環系トリテルペンの２８位メチル基をカルボキシル基に変換し得る酵素はこれまで全く不明であった。また、酵素反応はきわめて特異的であり、オレアナン型、ウルサン型又はルパン型の酵素同士に関係があると示唆する報告もなかった。関連の研究では、オレアノール酸合成酵素の基質であるβアミリンを作る酵素および該酵素の遺伝子は同定されている（非特許文献５）。ソヤサポゲノールＢの生合成酵素であるオレアナン型トリテルペンの２４位を水酸化する酵素および該酵素の遺伝子（非特許文献６）、グリチルリチンの生合成酵素であるオレアナン型トリテルペンの１１位を酸化する酵素および該酵素の遺伝子（非特許文献７）は同定されている。しかしオレアノール酸またはその誘導体を多く蓄積するとされるオリーブ、ビート、チクセツニンジンらは、分子生物学的解析が進んでおらず、またオレアノール酸の蓄積に関する生化学的な研究も行われておらず、解析する手がかりがなかった。やや分子生物学的な解析が進んでいるブドウを用いた解析でも候補遺伝子を抽出することもできなかった。

本発明者らはタルウマゴヤシ（Ｍｅｄｉｃａｇｏ ｔｒｕｎｃａｔｕｌａ）の二次代謝産物の酸化全般に興味を持ち解析を進めてきた。オレアナン型トリテルペン骨格に酸化反応が起こりうる部位は１１位、１６位、２３／２４位、２８位、３０位で、さらに、メチル基の酸化によっては、ホルミル基（−ＣＨＯ）やヒドロキシメチル基（ＣＨ_２ＯＨ）、さらにカルボキシル基まで酸化が進行する場合もある（非特許文献８）。２３／２４位、２８位、３０位の酸化の場合はヒドロキシメチル基への変換とその後のカルボキシル基への変換までが１段階であるのか２段階であるのかは不明であった。さらに、二次代謝の酸化にかかわる酵素としては、少なくともチトクロームＰ４５０型モノオキシゲナーゼ、ジオキシゲナーゼ、ＮＡＤＰＨ−ｆｌａｖｉｎリダクターゼの３種の可能性が考えられる。このうちＰ４５０型遺伝子は、すでにゲノム配列が明らかになっているシロイヌナズナでは２４６種類、イネでは３５６種類が存在しており、植物ゲノム遺伝子の１％を占める最大酵素ファミリーである。植物の二次代謝のみならず、植物ホルモンや脂質の生合成・代謝に必須な経路を分担し、活性も水酸化のみならずエポキシ化、Ｏ−脱メチル反応、Ｎ−脱メチル反応、スルホキシド化、ＮＯ合成の反応を行うことが、近年の研究で一部明らかになってきているが、大部分のＰ４５０の機能は不明のままである（非特許文献９、１０）。Ｐ４５０遺伝子の大部分はゲノム配列を計算機で解析することだけで発見されたものが多く生理的機能は不明なことが多い（非特許文献１０、ｐ．８４）。

非特許文献１１では、タルウマゴヤシの培養細胞に幾つかの処理を施してサポニン含量の変化が報告されている。該文献の表１ではジャスモン酸メチル処理によって、ヘデラゲニン（五環系トリテルペン化合物であり、さらに２３位が水酸化されている。）、ソヤサポゲノールＥ（非五環系トリテルペン化合物であり、２位と２４位が水酸化され、かつ、２２位が酸化されている。）、バヨゲニン（五環系トリテルペン化合物であり、さらに２位と２３位が水酸化されている。）、メジカゲン酸（五環系トリテルペン化合物であり、さらに２位が水酸化され、かつ、２４位がカルボキシル化されている。）、ザンハ酸（五環系トリテルペン化合物であり、さらに２位と１６位が水酸化され、かつ、２４位がカルボキシル化されている。）、ソヤサポゲノールＥ（非五環系トリテルペン化合物であり、２位、２２位、２４位が水酸化されている。）等の増加を報告している。しかしジャスモン酸メチルは防御反応と密接に関連したホルモンであり、他の二次代謝産物やカルス形状の変化も起きていることが予想される。非特許文献１２では、これらジャスモン酸メチルによって誘導されるＰ４５０を１８４個、さらにゲノム未解読領域の３７領域をプローブとして追跡し、そのうちの約１０％がジャスモン酸メチルによって誘導されることが報告され、さらに、その１０％のうちの誘導例として、Ｍｔｒ．８６１８．１．Ｓ１（ＣＹＰ９３Ｅ２）遺伝子、ＣＹＰ７２ファミリーであるＭｅｄｔｒ４ｇ０３２７６０、Ｍｅｄｔｒ４ｇ０３２９１０、Ｍｔｒ．３７２９９．１．Ｓ１＿ａｔ、Ｍｔｒ．３７２９８．１．Ｓ１の４つの遺伝子、Ｍｔｒ．４３０１８．１．Ｓ１（ＣＹＰ７１６Ａ１２）遺伝子が網羅的解析から見出されているがそれらの機能は不明である。また、この文献では、Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｌ Ｄａｔａ Ｓｅｔ ４ ｏｎｌｉｎｅ に掲載されている１８４個と３７プローブすべてのデータのうち特定していない幾つかが、培養細胞に処理を施して変化した二次代謝産物の生合成に関わる遺伝子の候補と結論付けているものの、サポニン合成やオレアノール酸等２８位がカルボキシル基である五環系トリテルペン合成との関係については明らかにされていない。

特開２０１０−１３８１５４号公報 特開２０１０−１０５９３７号公報 特開２００８−００７４１７号公報 特開２００６−１２４３２２号公報 特開２００５−０９７２１６号公報 特開２００３−２５２８４３号公報 特開２０００−１５９７９３号公報 特開平１１−０１２１７８号公報 米国特許第６７０００１４号明細書 欧州特許第０８９４５１７号明細書

Ｘｕら， Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ２００４， ６５：２６１−２９１ Ｋｕｓｈｉｒｏら， Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ．， ２０００， １２２：６８１６-６８２４ Ｌｉｕ， Ｊ Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ． １９９５， ４９：５７−６８ Ｌｉｕ， Ｊ Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ． ２００５， １００：９２−１０４ Ｋｕｓｈｉｒｏら， Ｅｕｒ Ｊ Ｂｉｏｃｈｅｍ． １９９８， ２５６：２３８−２４４ 渋谷ら， ＦＥＢＳ Ｊ． ２００６， ２７３：９４８−９５９ 關ら， Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ２００８， １０５：１４２０４−１４２０９ 「医薬品天然物化学原書第２版」海老塚豊監訳（２００４）南江堂 水谷正治、蛋白質核酸酵素 ２００７， ５２：１４５４−１４６４，三共出版 「Ｐ４５０の分子生物学 第２版」石村巽，藤井義明，大村恒雄編（２００９） 講談社 Ｓｕｚｕｋｉら， Ｐｌａｎｔａ． ２００５， ２２０：６９６−７０７ Ｎａｏｕｍｋｉｎａら， Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ ２０１０， ２２：８５０−８６６

本発明の目的は、植物由来のオレアノール酸等の２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物を製造する方法、ならびに、該五環系トリテルペン化合物を生産する細胞およびトランスジェニック植物を提供することである。

本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意研究を重ねた。その際、著量ではないがトリテルペンサポニン関連化合物を蓄積するタルウマゴヤシに着目し、トリテルペンを合成するβアミリン遺伝子を発現している際に協調的に発現する遺伝子２種（ＣＹＰ９３Ｅ２とＣＹＰ７１６Ａ１２）をｉｎ ｓｉｌｉｃｏで探しだした。該候補遺伝子を前駆体であるβアミリンを蓄積する酵母において発現させることによって、ＣＹＰ９３Ｅ２は既存の反応であるオレアナン型トリテルペンの２４位をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する遺伝子であることがわかったが、もうひとつの候補遺伝子ＣＹＰ７１６Ａ１２は、予想しなかったことであるが、今まで見つかっていない五環系トリテルペンの２８位をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を持つ酵素をコードする遺伝子であることを今回見出した。そして、この遺伝子を利用することによって、これまで微生物で生産することができなかったオレアノール酸等の２８位にカルボキシル基を有する五環系トリテルペン類を効率よく生産することが可能となった。さらにまた上記五環系トリテルペン類を蓄積する植物から、同一の機能を有する遺伝子を取得し、酵母における生産系で酵素活性が同等もしくはそれ以上であることを今回明らかにした。また、２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物生産性のトランスジェニック植物や微生物を作製することや、元々ある該遺伝子の発現を比較および解析し個体や組織を選抜することによって、２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物の蓄積量を改変することが可能になることを示した。さらに、驚くべきことに、ＣＹＰ７１６Ａ１２はオレアナン型のみならず、ウルサン型やルパン型の五環系トリテルペンについても２８位をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換することができた。タルウマゴヤシはオレアナン型トリテルペンを主に蓄積しており、オレアナン型を基質とする酵素を有していたことに蓋然性がある。しかしオレアナン型とウルサン型又はルパン型は、Ｅ環部分の構造が大きく異なる。２８位に酵素活性を持つＣＹＰ７１６Ａ１２が、２８位と隣接するＥ環部分の違いを認識しないことを示しており、今までの植物Ｐ４５０の特異性の解析からは著しく外れた結果であり、想定外の結果といわざるを得ない。これらの知見に基づいて本発明を完成させるに至った。

したがって、本発明は、以下の特徴を包含する。

（１） 五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質。

（２） マメ科、ナス科、ブドウ科、アカザ科またはモクセイ科またはアカネ科に属する植物に由来する、上記（１）記載のタンパク質。

（３） タルウマゴヤシ、トマト、ミヤコグサ、ブドウ、ビート、オリーブまたはコーヒーに由来する、上記（１）または（２）記載のタンパク質。

（４） 以下の（ａ）〜（ｃ）からなる群から選択される、上記（１）記載のタンパク質。

（ａ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列を含むタンパク質
（ｂ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質
（ｃ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質
（５） 五環系トリテルペンがオレアナン型、ウルサン型またはルパン型トリテルペンである、上記（１）〜（４）のいずれかに記載のタンパク質。

（６） チトクロームＰ４５０に属する、上記（１）〜（５）のいずれかに記載のタンパク質。

（７） 以下の（ａ）〜（ｆ）からなる群から選択されるＤＮＡを含有する組換え体ＤＮＡ。

（ａ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｂ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｃ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｄ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列を含むＤＮＡ
（ｅ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列と相補的な塩基配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｆ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列と７０％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（８） 上記（７）記載の組換え体ＤＮＡを含む形質転換体。

（９） 形質転換体が微生物または植物を宿主として得られる形質転換体である、上記（８）記載の形質転換体。

（１０） 微生物が酵母である、上記（９）記載の形質転換体。

（１１） ２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を生成する能力を有する、上記（８）〜（１０）のいずれかに記載の形質転換体。

（１２） 上記（８）〜（１１）のいずれかに記載の形質転換体を培地に培養し、培養物中に（４）記載のタンパク質を生成、蓄積させ、該培養物より該蛋白質を採取することを含む、上記タンパク質の製造法。

（１３） 上記（８）〜（１１）のいずれかに記載の形質転換体の培養物または該培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、および基質としての五環系トリテルペンまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を採取する、２８位にメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体の製造法。

（１４） 培養物の処理物が、培養物の濃縮物、培養物の乾燥物、培養物を遠心分離して得られる菌体、該菌体の乾燥物、該菌体の凍結乾燥物、該菌体の界面活性剤処理物、該菌体の超音波処理物、該菌体の機械的摩砕処理物、該菌体の溶媒処理物、該菌体の酵素処理物、該菌体の蛋白質分画物、該菌体の固定化物あるいは該菌体より抽出して得られる酵素標品であることを特徴とする、上記（１３）記載の製造法。

（１５） （１）記載のタンパク質および基質としての五環系トリテルペンまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を採取する、２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体の製造法。

（１６） 基質としての五環系トリテルペンが、βアミリン、αアミリン、又はルペオールである、上記（１３）〜（１５）のいずれかに記載の製造法。

（１７） 以下の（ａ）〜（ｆ）からなる群から選択されるＤＮＡ。

（ａ） 配列番号４、６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｂ） 配列番号４、６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｃ） 配列番号４、６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｄ） 配列番号１２、１４〜１６のいずれかに示す塩基配列を含むＤＮＡ
（ｅ） 配列番号１２、１４〜１６のいずれかに示す塩基配列と相補的な塩基配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
（ｆ） 配列番号１２、１４〜１６のいずれかに示す塩基配列と７０％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
本発明の五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシル基またはカルボキシル基に変換する酵素活性を有するタンパク質により、有用な生理活性を示す、２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物、とりわけオレアノール酸、ウルソール酸、ベツリン酸、およびそれらの置換誘導体を大量かつ安価に生産できる。本発明によれば、五環系トリテルペン化合物の２８位のメチル基をカルボキシル基に変換する活性を有する酵素タンパク質とそれをコードするＤＮＡの活性発現の調整を行うことができ、該遺伝子の活性が増強された植物および微生物を作製する方法、オレアノール酸などの２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンの生産が変更された植物が提供される。本発明により上記五環系トリテルペン化合物、とりわけオレアノール酸、ウルソール酸、ベツリン酸、およびそれらの置換誘導体の過剰発現に特徴がある植物の作出が可能である。

βアミリンの２８位のメチル基がヒドロキシメチル基に変換されたエリトロジオールと、さらに２８位のメチル基がカルボキシル基に変換されたオレアノール酸の構造式。 タルウマゴヤシＣＹＰ９３Ｅ２発現酵母のＧＣチャート。 タルウマゴヤシＣＹＰ７１６Ａ１２発現酵母のＧＣチャート。 タルウマゴヤシＣＹＰ７１６Ａ１２発現酵母のマススペクトル（ＭＳ）。 タルウマゴヤシＣＹＰ９３Ｅ２とＣＹＰ７１６Ａ１２発現酵母のＧＣチャート。 図４のピーク１のＭＳ。 ブドウ相同遺伝子発現酵母のＧＣチャート。 ブドウ相同遺伝子発現酵母のマススペクトル（ＭＳ）。 ビート相同遺伝子発現酵母のＧＣチャート。 ビート相同遺伝子発現酵母のマススペクトル（ＭＳ）。 オリーブ相同遺伝子発現酵母のＧＣチャート。 オリーブ相同遺伝子発現酵母のマススペクトル（ＭＳ）。 コーヒー相同遺伝子発現酵母のＧＣチャート。 コーヒー相同遺伝子発現酵母のマススペクトル（ＭＳ）。 ブドウ品種「キャンベル・ベリーＡ」の葉と果皮（ＣＴＡＢ）でのオレアノール酸合成酵素遺伝子の発現を示す電気泳動図。 ルペオールの２８位のメチル基がヒドロキシメチル基に変換されたベツリンと、さらに２８位のメチル基がカルボキシル基に変換されたベツリン酸の構造式。 ルペオールを発現する酵母においてのタルウマゴヤシＣＹＰ７１６Ａ１２発現のＧＣチャート。 ルペオールを発現する酵母においてのタルウマゴヤシＣＹＰ７１６Ａ１２発現のマススペクトル（ＭＳ）。 ルペオールを発現する酵母においてのブドウ相同遺伝子発現のＧＣチャート。 ルペオールを発現する酵母においてのブドウ相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 ルペオールを発現する酵母においてのビート相同遺伝子発現のＧＣチャート。 ルペオールを発現する酵母においてのビート相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 ルペオールを発現する酵母においてのオリーブ相同遺伝子発現のＧＣチャート。 ルペオールを発現する酵母においてのオリーブ相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 ルペオールを発現する酵母においてのコーヒー相同遺伝子発現のＧＣチャート。 ルペオールを発現する酵母においてのコーヒー相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 αアミリンの２８位のメチル基がヒドロキシメチル基に変換されたウバオールと、さらに２８位のメチル基がカルボキシル基に変換されたウルソール酸の構造式。 αアミリンを発現する酵母においてのタルウマゴヤシＣＹＰ７１６Ａ１２発現のＧＣチャート。 αアミリンを発現する酵母においてのタルウマゴヤシＣＹＰ７１６Ａ１２発現のマススペクトル（ＭＳ）。 αアミリンを発現する酵母においてのブドウ相同遺伝子発現のＧＣチャート。 αアミリンを発現する酵母においてのブドウ相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 αアミリンを発現する酵母においてのビート相同遺伝子発現のＧＣチャート。 αアミリンを発現する酵母においてのビート相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 αアミリンを発現する酵母においてのオリーブ相同遺伝子発現のＧＣチャート。 αアミリンを発現する酵母においてのオリーブ相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。 αアミリンを発現する酵母においてのコーヒー相同遺伝子発現のＧＣチャート。 αアミリンを発現する酵母においてのコーヒー相同遺伝子発現のマススペクトル（ＭＳ）。

以下、本発明を詳細に説明する。

１． 五環系トリテルペン化合物の２８位メチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する酵素タンパク質（「２８位酸化酵素」）
本発明の酵素タンパク質は、五環系トリテルペン化合物の２８位メチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する酵素活性を有するタンパク質であり、オレアナン型、ウルサン型又はルパン型などの五環系トリテルペン化合物の２８位メチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する能力を有するタンパク質である（図１、１１及び１３）。本明細書では、そのような変換能を、「２８位酸化酵素活性」、そのような変換能を有する酵素タンパク質を「２８位酸化酵素」と言う。

上記酵素を含む植物には、例えばマメ科のタルウマゴヤシ（Ｍｅｄｉｃａｇｏ ｔｒｕｎｃａｔｕｌａ）、ナス科のトマト（Ｓｏｌａｎｕｍ ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｃｕｍ）、マメ科のミヤコグサ（Ｌｏｔｕｓ ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、モクセイ科のオリーブ（Ｏｌｅａ ｅｕｒｏｐｅａ）、アカザ科のビート（Ｂｅｔａ ｖｕｌｇａｒｉｓ）、アカネ科のコーヒー（Ｃｏｆｆｅａ Ａｒａｂｉｃａ）、ブドウ科のブドウ（Ｖｉｔｉｓ ｓｐｐ．）等の植物種が含まれる。また、本発明の酵素は、膜結合型チトクロームＰ４５０モノオキシダーゼの１種であることが今回初めて明らかになった。

上記酵素を含む他の植物には、オレアナン型、ウルサン型又はルパン型の五環系トリテルペン化合物を天然で生成する植物、例えばクローブ、センブリ、ゲンチアナ、カリン、ウメ、タイム、ナツメ、キンモクセイ、ネズミモチ、サンシュユ、カキ、ビワ、レンギョウ、サンザシ、チクセツニンジン、サトウダイコンなどのオレアノール酸を生成する植物、クローブ、タイソウ、ナツメ、カキ、カバノキ科植物などのベツリン酸を生成する植物などが含まれる。

本発明の酵素により得られる２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物は、植物によって合成されるトリテルペンまたはその誘導体が含まれ、例えばオレアノール酸（３β−ｈｙｄｒｏｘｙｏｌｅａｎ−１２−ｅｎ−２８−ｏｉｃ ａｃｉｄ）、オレアノン酸（３−ｏｘｏｏｌｅａｎ−１２−ｅｎ−２８−ｏｉｃ ａｃｉｄ）ウルソール酸（３β−ｈｙｄｒｏｘｙｕｒｓ−１２−ｅｎ−２８−ｏｉｃ ａｃｉｄ）、ベツリン酸（３β−ｈｙｄｒｏｘｙｌｕｐ−２０（２９）−ｅｎ−２８−ｏｉｃ ａｃｉｄ）、それらの塩、それらの誘導体などが挙げられる。

塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩、アンモニアや、脂肪族アミン、芳香族アミン、飽和アミン、不飽和アミンなどの有機アミンとのアンモニウム塩などが含まれる。カルボン酸塩は、本発明方法による目的トリテルペン化合物の生成の間に形成されてもよいし、あるいは、該化合物の生成後に中和処理により塩形成を行ってもよい。

誘導体は、上記五環系トリテルペン化合物の、例えば１位、２位、１１位、１２位、２９位、３０位などの、生合成中間体２，３−オキソスクアレンを原料とするその環化反応および２８位酸化酵素活性に影響の少ないと思われる位置の水素原子が、別の置換基、例えば低級アルキル基（メチル、エチル、プロピル、ブチルなど）、ハロゲン（フッ素、塩素、臭素、ヨウ素）、水酸基、エステル基（アセトキシ、プロパノイルオキシなど）、アシル基（ホルミル、アセチル、プロピオニルなど）、アルコキシ基（メトキシ、エトキシ、プロポキシなど）、アミノ基、モノ−もしくはジ−低級アルキルアミノ基（メチルアミノ、ジメチルアミノ、エチルアミノなど）、アミド基、低級アルキルアミド基（アセタミドなど）、オキソ基、シアノ基、ニトロ基、低級アルキルチオ基（メチルチオ、エチルチオなど）、スルフォニル基（メシル、エチルスルホニルなど）などの官能基で置換された化合物、２８位カルボキシル基の（低級）アルキルエステル化または（低級）アルキル−もしくは（低級）ジアルキル−アミド化化合物などを含む。さらに、これらの部位の水酸基、ヒドロキシメチル基またはカルボキシル基にブドウ糖などの単糖や複数の糖がつくトリテルペンサポニンでもかまわない。

本発明の２８位水酸化酵素の基質となる好ましいトリテルペン化合物としては、βアミリン（ｏｌｅａｎ−１２−ｅｎ−３β−ｏｌ）、αアミリン（ｕｒｓ−１２−ｅｎ−３β−ｏｌ）、ルペオール（ｌｕｐ−２０（２９）−ｅｎ−３β−ｏｌ）、これらの誘導体などの五環系トリテルペン化合物が挙げられる。置換誘導体の置換位置および置換基は、上記例示と同様である。本発明の方法により、２８位酸化酵素の作用によって基質となる化合物から２８位のメチル基がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換された五環系トリテルペン化合物が得られる。

これら基質は２，３−オキシドスクアレンから、βアミリン合成酵素の作用によってβアミリンが合成され、ルペオール合成酵素の作用によってルペオールが合成され、ならびに、αアミリン合成酵素の作用によってαアミリンが合成される（Ｐ．Ｍ．Ｄｅｗｉｃｋ， Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｎａｔｕｒａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔ， ３ｒｄ ｅｄ．， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， ２００９）。これらの合成酵素に関する配列情報およびクローニングについては、種々の植物の例えば根や種子由来のｃＤＮＡライブラリーからクローニングされて配列決定されており、すでに公知である。βアミリン合成酵素については、Ｈ． Ｈａｙａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｌ． Ｐｈａｒｍａ． Ｂｕｌｌ． ２４（８）：９１２−９１６ （２００１）、Ｔ． Ｋｕｓｈｉｒｏ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２５６：２３８−２４４ （１９９８）、米国特許Ｎｏ． ７，１８６，８８４、ＷＯ ２００３／０９５６１５、ＥＭＢＬ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ． ＡＹ０９５９９９およびＡＡＭ２３２６４．１（Ｇｌｙｃｉｎｅ ｍａｘ）などに記載されている。ルペオール合成酵素については、Ｊ． Ｂ． Ｈｅｒｒｅｒａ ｅｔ ａｌ．， Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ４９（７）：１９０５−１９１１ （１９９８）、Ｔ． Ｋｕｓｈｉｒｏ ｅｔ ａｌ．， Ｊ．Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １２２（２９）：６８１６−６８２４ （２０００）、ＧｅｎＢａｎｋ （ＮＣＢＩ） Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ． ＮＭ＿１７９５７２およびＮｏ． ＮＭ＿１０６５４６ （Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ）などに記載されている。αアミリン合成酵素については、Ｍ． Ｍｏｒｉｔａ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２６７：３４５３−３４６０ （２０００）などに記載されている。これらの合成酵素は、例えばオオムギ、マメ、ピーナッツ、シュガービート、コムギ、オートムギ、馬鈴薯、ニンニク、タマネギ、アスパラガス、茶、イネ、ライムギ、ダイズ、イチゴ、ヒマワリ、トマトなどの植物に存在することが知られている（米国特許Ｎｏ． ７，１８６，８８４）ので、必要に応じて、これらの植物から上記文献記載のクローニング手法を用いて上記のβアミリン合成酵素、αアミリン合成酵素およびルペオール合成酵素をコードするＤＮＡを取得し、周知のＤＮＡ組換え技術、ＰＣＲ法などを使用して該ＤＮＡを微生物細胞または植物細胞に導入して該合成酵素を発現するようにすることも可能である。このようにして得られた形質転換細胞または植物細胞から再生されたトランスジェニック植物は、これにさらに２８位酸化酵素をコードするＤＮＡを発現可能に組み込むことによって、オレアノール酸、ウルソール酸、ベツリン酸などの、２８位がカルボキシル化された五環系トリテルペンを生成可能になる。

本発明で使用可能な２８位酸化酵素は、以下のものに限定されないが、例えばタルウマゴヤシ、トマト、ミヤコグサ、オリーブ、ビート、コーヒーおよびブドウ由来のものであり、それぞれ、例えば配列番号２〜８に示されるアミノ酸配列を含む酵素を包含する。さらに、本発明で使用可能な該酵素は、配列番号２〜８に示されるアミノ酸配列に部分的に変異を有するアミノ酸配列を含み、かつ、オレアノール酸合成酵素活性を有するタンパク質を包含する。

上記の特定のアミノ酸配列を含むオレアノール酸合成酵素のなかで、配列番号４及び６〜８のいずれかのアミノ酸配列を含む酵素、並びに、該酵素をコードするＤＮＡ、具体的に配列番号１２及び１４〜１６のいずれかに示される塩基配列を含むＤＮＡは、全長配列及び機能についてこれまで知られていなかったために、新規である。

ここで、「部分的に変異を有するアミノ酸配列」としては、配列番号２〜８に示されるアミノ酸配列において１もしくは複数、好ましくは１もしくは数個、例えば、１〜１０個、好ましくは１〜７個、さらに好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個、さらに好ましくは１個もしくは２個、のアミノ酸が欠失、置換、挿入および／または付加されたアミノ酸配列、または該アミノ酸配列と、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡなどの相同性検索のための公知のアルゴリズム（例えば、デフォルトすなわち初期設定のパラメータを使用する。）を用いて計算したときに、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、好ましくは少なくとも９０％、さらに好ましくは少なくとも９５％、特に好ましくは少なくとも９７％、９８％もしくは９９％の配列同一性を有しているアミノ酸配列が挙げられる。因みに、上記配列番号２〜８に示されるアミノ酸配列を含む酵素タンパク質間の配列同一性は約７０〜約８０％である。

本明細書で使用する「配列同一性」は、例えば２つのアミノ酸配列または塩基（ヌクレオチド）配列をアラインメントしたとき（ただしギャップを導入してもよいしギャップを導入しなくてもよいが、好ましくはギャップを導入する。）、ギャップを含むアミノ酸または塩基の総数に対する同一アミノ酸または塩基の数の割合（％）を指す。

本発明の２８位酸化酵素は、植物体から単離された天然の２８位酸化酵素および遺伝子工学的手法により製造された組換え２８位酸化酵素を含む。

２． ２８位酸化酵素をコードするＤＮＡ
本明細書中で使用する「ＤＮＡ」という用語は、ゲノムＤＮＡ、遺伝子、ｃＤＮＡおよび化学修飾ＤＮＡを包含するものとする。

本発明で使用する２８位酸化酵素をコードするＤＮＡは、ある特定の五環系トリテルペン化合物、とりわけオレアナン型、ウルサン型又はルパン型の五環系トリテルペン化合物の２８位のメチル基を酸化してヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有する酵素をコードするＤＮＡである。

上記の２８位酸化酵素をコードするＤＮＡは、例えば上記配列番号２〜８に示されるアミノ酸配列をそれぞれコードする塩基配列を含むものであり、具体的には配列番号１０〜１６に示される塩基配列を含むものである。

本発明で使用可能な２８位酸化酵素をコードするＤＮＡはまた、配列番号１０〜１６に示される各塩基配列に相補的な塩基配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡ、あるいは、配列番号１０〜１６に示される塩基配列と、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡなどの相同性検索のための公知のアルゴリズム（例えば、デフォルトすなわち初期設定のパラメータを使用する。）を用いて計算したときに、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、好ましくは少なくとも９０％、さらに好ましくは少なくとも９５％、特に好ましくは少なくとも９７％、９８％もしくは９９％の配列同一性を有するＤＮＡ、あるいは、これらのＤＮＡによりコードされるタンパク質のアミノ酸配列に対して１もしくは複数、好ましくは１もしくは数個、例えば、１〜１０個、好ましくは１〜７個、さらに好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個、さらに好ましくは１個もしくは２個、のアミノ酸が欠失、置換、挿入および／または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするＤＮＡであるが、ただし２８位酸化酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡを包含する。

これらのＤＮＡは、配列番号１０〜１６に示される塩基配列を含むＤＮＡのホモログ（相同体）、アナログ（類似体）または変異体である。このようなＤＮＡは、タルウマゴヤシ、トマト、ミヤコグサ、オリーブ、ビート、コーヒーおよびブドウの他に、オレアノール酸、ウルソール酸またはベツリン酸を産生する植物、例えば前述のクローブ、センブリ、ゲンチアナ、カリン、ウメ、タイム、ナツメ、キンモクセイ、ネズミモチ、サンシュユ、カキ、ビワ、レンギョウ、サンザシ、チクセツニンジン、サトウダイコン、クローブ、タイソウ、ナツメ、カキ、カバノキ科植物などの植物の根、種子などからハイブリダイゼーション、ＰＣＲ増幅などによって得ることが可能である。

本明細書中で使用する「ストリンジェントな条件」という用語は、例えば、「１×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳ、３７℃」程度の条件であり、より厳しい（中ストリンジェントな）条件としては「０．５×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳ、４２℃」程度の条件であり、さらに厳しい（高ストリンジェントな）条件としては「０．１〜０．２×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳ、６５℃」程度の条件である。ハイブリダイゼーションの後でさらに、例えば０．１×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳ、５５〜６８℃で洗浄を行う操作を含んでもよく、この操作によってストリンジェンシーを高めることができる。ここで、１×ＳＳＣバッファーは、１５０ ｍＭ塩化ナトリウム、１５ ｍＭクエン酸ナトリウム、ｐＨ７．０である。

ハイブリダイゼーション条件やＰＣＲ反応の手順については、例えばＦ．Ｍ． Ａｕｓｂｅｌ ｅｔ ａｌ．， Ｓｈｏｒｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ３ｒｄ ｅｄ．， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， １９９５などに記載されている。

さらに、本発明で使用可能な２８位酸化酵素をコードするＤＮＡは、配列番号１０〜１６に示す塩基配列において遺伝暗号の縮重に基く配列（縮重配列）を含むＤＮＡも包含する。

本発明のＤＮＡは、上記のとおり、２８位酸化酵素活性を有するタンパク質、すなわち以下の（ａ）〜（ｃ）：
（ａ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
（ｂ） 配列番号２〜８のいずれかに示すに示すアミノ酸配列において１または数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、２８位酸化酵素活性を有するタンパク質；
（ｃ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、２８位酸化酵素活性を有するタンパク質；
のいずれかからなる群から選択されるタンパク質をコードする。

さらに具体的には、上記ＤＮＡは、以下の（ｄ）〜（ｇ）：
（ｄ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列を含むＤＮＡ；
（ｅ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列を含むＤＮＡに相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、２８位酸化酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ；
（ｆ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列と７０％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、２８位酸化酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ；
（ｇ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列において縮重配列を含むＤＮＡ；
のいずれかからなる群から選択される。

３． 組換えベクター
本発明のＤＮＡは、それを発現可能にするために、制御配列を含む適切なベクターに挿入される。このようにして得られた組換え体ＤＮＡが組換えベクターである。

ベクターとしては、原核または真核生物の細胞で使用可能なあらゆるベクターを意図し、例えば細菌（エシェリシア属、シュードモナス属、バチルス属、ロドコッカス属など）、糸状菌（アスペルギルス属、ニューロスポラ属、フザリウム属、トリコデルマ属、ペニシリウム属など）、担子菌（白色腐朽菌など）、酵母（サッカロマイセス属、ピチア属、カンジダ属など）等の微生物用ベクター、植物細胞用ベクター、昆虫細胞用ベクターなどを使用できる。

例えば、細菌用ベクターとしては、ｐＢＲ、ｐＵＣ、ｐＥＴ、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔシリーズのベクター類などが挙げられ、酵母用ベクターとしては、非限定的にｐＤＲ１９６、ｐＹＥＳ−ＤＥＳＴ ５２、Ｙｉｐ５、Ｙｒｐ１７、Ｙｅｐ２４などが挙げられ、植物細胞用ベクターとしては、非限定的にｐＧＷＢ ｖｅｃｔｏｒ、ｐＢｉＥｌ２−ＧＵＳ、ｐＩＧ１２１−Ｈｍ、ｐＢＩ１２１、ｐＢｉＨｙｇ−ＨＳＥ、ｐＢ１１９、ｐＢＩ１０１、ｐＧＶ３８５０、ｐＡＢＨ−Ｈｍ１などが挙げられ、昆虫細胞用ベクターとしては、非限定的にｐＢＭ０３０、ｐＢＭ０３４、ｐＢＫ２８３などが挙げられる。

本発明において使用されるベクターには、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、シャインダルガルノ配列、リボソーム結合配列、シグナル配列等の遺伝子の発現、調節、分泌に関する構成要素が組込まれ、必要に応じて、選択マーカー（例えば、薬剤耐性遺伝子、レポーター遺伝子）を含有する。

プロモーターには、ｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｒｅｃＡプロモーター、ｔａｃプロモーター、λＰＬプロモーター、Ｔ７プロモーター、ＣａＭＶ３５Ｓプロモーター、ＡＤＨ１プロモーター、ＧＡＬプロモーター、ＰＨＯ５プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＧＡＰＤＨプロモーターなどが非限定的に含まれる。

薬剤耐性遺伝子には、カナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ハイグロマイシン耐性遺伝子などが含まれる。レポーター遺伝子には、ｌａｃＺ遺伝子、ＧＦＰ遺伝子、ＧＵＳ遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子などが含まれる。その他の選択マーカーには、例えばＮＰＴＩＩ遺伝子、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子などが含まれる。

遺伝子の発現、調節、分泌に関する構成要素は、その性質に応じて、それぞれが機能し得る形で組換えベクターに組み込まれることが好ましい。そのような操作は、当業者であれば適切に行うことができる。

４． 形質転換体
本発明の形質転換体は、本発明の組換えベクターを保持する形質転換体である。形質転換体は、２８位酸化酵素をコードするＤＮＡを挿入した組換えベクターを、目的ＤＮＡが発現し得るように宿主細胞中に導入することにより得ることができる。

宿主細胞は、ベクターに適したものを使用すればよい。例えば、細菌、糸状菌、酵母等の微生物細胞、植物細胞、昆虫細胞（Ｓｆ９など）、動物細胞などが挙げられる。好ましくは、酵母、糸状菌、昆虫細胞または植物細胞である。

上記の宿主細胞が、αアミリン、βアミリン、ルペオールなどの五環系トリテルペン化合物の生合成系を有している細胞、あるいは、該生合成系を有していない細胞であっても外因的に（または外来的に）αアミリン合成酵素、βアミリン合成酵素、ルペオール合成酵素などのトリテルペン合成酵素をコードするＤＮＡが発現可能に組み込まれた細胞のいずれかである場合には、上記の形質転換によってさらにオレアノール酸合成酵素をコードするＤＮＡが発現可能に含まれるため、これらの細胞を適当な基質を含む培地で培養することによってウルソール酸、オレアノール酸、ベツリン酸を生産することができる。

αアミリン、βアミリン、ルペオールなどの五環系トリテルペン化合物の生合成系を有している細胞には、植物細胞やある特定の酵母細胞、糸状菌細胞のように本来該生合成系を備えている細胞が含まれる。また、上記の生合成系を有していない細胞には、該生合成系に関わる酵素類のゲノム領域を外因的に含む細胞などが包含される。外因的ゲノム領域は、通常、植物由来であり、例えばプラスミド、ファージミド、ＢＡＣ、ＰＡＣ、ＹＡＣ、ウイルスなどのベクターに挿入されて宿主細胞内に移入されうる。

いずれにしても、上記例示の細胞の形質転換によって、該細胞は、場合により誘導的に、オレアノール酸合成酵素を過剰発現する。宿主細胞が真核細胞の場合には、オレアノール酸合成酵素をコードするＤＮＡの５’端にシグナル配列を連結することによって細胞外への該酵素の分泌を可能にする。

組換えベクターの導入方法は、微生物にＤＮＡを導入する方法であれば特に限定されるものではないが、例えばカルシウムイオンを用いる方法［Ｃｏｈｅｎ， Ｓ．Ｎ．ｅｔ ａｌ．：Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， ＵＳＡ， ６９：２１１０ （１９７２）］、エレクトロポレーション法、トリペアレンタルメイティング（ｔｒｉ−ｐａｒｅｎｔａｌ ｍａｔｉｎｇ）法、アグロバクテリウム法、プロトプラストもしくはスフェロプラスト融合法、パーティクルガン法などが含まれる。

さらにまた、形質転換植物体（「トランスジェニック植物」とも称する。）を作出する方法として、ウイルスベクター、アグロバクテリウムのＴｉプラスミド、Ｒｉプラスミド等をベクターとして用いるアグロバクテリウム法が好適に使用できる。宿主植物としては、特に限定されないが、例えばイネ、ムギ、トウモロコシ等の単子葉植物、ダイズ、ナタネ、トマト、バレイショ等の双子葉植物が挙げられる。形質転換植物体は、オレアノール酸合成酵素をコードするＤＮＡを含むベクターで形質転換された植物細胞から植物体を再生させることにより得ることができる。植物細胞からの植物体の再生は公知の方法、例えばカルス培養等により行うことができる。

５． 本発明のタンパク質の製造法
本発明のタンパク質は、モレキュラー・クローニング第２版、カレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー等に記載された方法等を用い、例えば以下の方法により、本発明のタンパク質をコードするＤＮＡを宿主細胞中で発現させて、製造することができる。本発明のタンパク質をコードするＤＮＡをもとにして、必要に応じて、本発明のタンパク質をコードする部分を含む適当な長さのＤＮＡ断片を調製する。また、該タンパク質をコードする部分の塩基配列を、宿主の発現に最適なコドンとなるように、塩基を置換することにより、該タンパク質の生産率を向上させることができる。

該ＤＮＡ断片を適当な発現ベクターのプロモーターの下流に挿入することにより、組換え体ＤＮＡを作製する。該組換え体ＤＮＡを、該発現ベクターに適合した宿主細胞に導入することにより、本発明のタンパク質を生産する形質転換体を得ることができる。

宿主細胞としては、細菌、酵母、動物細胞、昆虫細胞等、植物細胞等、目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。発現ベクターとしては、上記宿主細胞において自立複製可能ないしは染色体中への組込が可能で、本発明のＤＮＡまたは本発明の製造法に用いられるＤＮＡを転写できる位置にプロモーターを含有しているものが用いられる。

細菌等の原核生物を宿主細胞として用いる場合は、本発明のＤＮＡまたは本発明の製造法に用いられるＤＮＡを有する組換え体ＤＮＡは、原核生物中で自立複製可能であると同時に、プロモーター、リボソーム結合配列、本発明のＤＮＡまたは本発明の製造法に用いられるＤＮＡ、転写終結配列より構成された組換え体ＤＮＡであることが好ましい。プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。

発現ベクターとしては、ｐＢＴｒｐ２、ｐＢＴａｃ１、ｐＢＴａｃ２（いずれもベーリンガーマンハイム社製）、ｐＨｅｌｉｘ１（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）、ｐＫＫ２３３−２（アマシャム・ファルマシア・バイオテク社製）、ｐＳＥ２８０（インビトロジェン社製）、ｐＧＥＭＥＸ−１（プロメガ社製）、ｐＱＥ−８（キアゲン社製）、ｐＥＴ−３（ノバジェン社製）、ｐＫＹＰ１０（特開昭５８−１１０６００）、ｐＫＹＰ２００［Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，４８，６６９（１９８４）］、ｐＬＳＡ１［Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，５３，２７７（１９８９）］、ｐＧＥＬ１［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８２，４３０６（１９８５）］、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ ＳＫ（＋）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＫＳ（−）（ストラタジーン社製）、ｐＴｒＳ３０［エシェリヒア・コリＪＭ１０９／ｐＴｒＳ３０（ＦＥＲＭ ＢＰ−５４０７）より調製］、ｐＴｒＳ３２［エシェリヒア・コリＪＭ１０９／ｐＴｒＳ３２（ＦＥＲＭ ＢＰ−５４０８）より調製］、ｐＰＡＣ３１（ＷＯ９８／１２３４３）、ｐＵＣ１９［Ｇｅｎｅ，３３，１０３（１９８５）］、ｐＳＴＶ２８（宝酒造社製）、ｐＵＣ１１８（宝酒造社製）、ｐＰＡ１（特開昭６３−２３３７９８）等を例示することができる。

プロモーターとしては、エシェリヒア・コリ等の宿主細胞中で機能するものであればいかなるものでもよい。例えば、ｔｒｐプロモーター（Ｐｔｒｐ）、ｌａｃプロモーター（Ｐｌａｃ）、ＰＬプロモーター、ＰＲプロモーター、ＰＳＥプロモーター等の、大腸菌やファージ等に由来するプロモーター、ＳＰＯ１プロモーター、ＳＰＯ２プロモーター、ｐｅｎＰプロモーター等をあげることができる。またＰｔｒｐを２つ直列させたプロモーター、ｔａｃプロモーター、ｌａｃＴ７プロモーター、ｌｅｔ Ｉプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーター等も用いることができる。

リボソーム結合配列であるシャイン−ダルガノ（Ｓｈｉｎｅ−Ｄａｌｇａｒｎｏ）配列と開始コドンとの間を適当な距離（例えば６〜１８塩基）に調節したプラスミドを用いることが好ましい。

本発明のＤＮＡまたは本発明の製造法に用いられるＤＮＡを発現ベクターに結合させた組換え体ＤＮＡにおいては、転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。

原核生物としては、エシェリヒア属、セラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）属、バチルス属、ブレビバクテリウム（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属、ミクロバクテリウム属（Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物等をあげることができる。

組換え体ＤＮＡの導入方法としては、上記宿主細胞へＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、カルシウムイオンを用いる方法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，６９，２１１０（１９７２）］、プロトプラスト法（特開昭６３−２４８３９４）、エレクトロポレーション法［Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１６，６１２７（１９８８）］等をあげることができる。

酵母菌株を宿主細胞として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、ＹＥｐ１３（ＡＴＣＣ３７１１５）、ＹＥｐ２４（ＡＴＣＣ３７０５１）、ＹＣｐ５０（ＡＴＣＣ３７４１９）、ｐＨＳ１９、ｐＨＳ１５等を用いることができる。

プロモーターとしては、酵母菌株中で機能するものであればいずれのものを用いてもよく、例えば、ＰＨＯ５プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＧＡＰプロモーター、ＡＤＨプロモーター、ｇａｌ １プロモーター、ｇａｌ １０プロモーター、ヒートショックポリペプチドプロモーター、ＭＦα１ プロモーター、ＣＵＰ １プロモーター等のプロモーターをあげることができる。

宿主細胞としては、サッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、シゾサッカロマイセス（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、クルイベロマイセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）属、トリコスポロン（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ）属、シワニオマイミセス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ）属、ピチア（Ｐｉｃｈｉａ）属、またはキャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属等に属する酵母菌株をあげることができ、具体的には、サッカロマイセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｐｏｍｂｅ）、クルイベロマイセス・ラクティス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓｌａｃｔｉｓ）、トリコスポロン・プルランス（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎｐｕｌｌｕｌａｎｓ）、シワニオマイセス・アルビウス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓａｌｌｕｖｉｕｓ）、ピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓ）、キャンディダ・ウティリス（Ｃａｎｄｉｄａｕｔｉｌｉｓ）等をあげることができる。

組換え体ＤＮＡの導入方法としては、酵母にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法［Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１９４，１８２（１９９０）］、スフェロプラスト法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８１，４８８９（１９８４）］、酢酸リチウム法［Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１５３，１６３（１９８３）］等をあげることができる。

動物細胞を宿主として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、ｐｃＤＮＡＩ、ｐｃＤＭ８（フナコシ社より市販）、ｐＡＧＥ１０７（特開平３−２２９７９）、ｐＡＳ３−３（特開平２−２２７０７５）、ｐＣＤＭ８［Ｎａｔｕｒｅ，３２９，８４０（１９８７）］、ｐｃＤＮＡＩ／Ａｍｐ（インビトロジェン社製）、ｐＲＥＰ４（インビトロジェン社製）、ｐＡＧＥ１０３［Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ，１０１，１３０７（１９８７）］、ｐＡＧＥ２１０、ｐＡＭｏ、ｐＡＭｏＡ等を用いることができる。

プロモーターとしては、動物細胞中で機能するものであればいずれも用いることができ、例えば、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）のＩＥ（ｉｍｍｅｄｉａｔｅ ｅａｒｌｙ）遺伝子のプロモーター、ＳＶ４０の初期プロモーターあるいはメタロチオネインのプロモーター、レトロウイルスのプロモーター、ヒートショックプロモーター、ＳＲαプロモーター等をあげることができる。また、ヒトＣＭＶのＩＥ遺伝子のエンハンサーをプロモーターと共に用いてもよい。

宿主細胞としては、マウス・ミエローマ細胞、ラット・ミエローマ細胞、マウス・ハイブリドーマ細胞、ヒトの細胞であるナマルバ（Ｎａｍａｌｗａ）細胞またはナマルバＫＪＭ−１細胞、ヒト胎児腎臓細胞、ヒト白血病細胞、アフリカミドリザル腎臓細胞、チャイニーズ・ハムスターの細胞であるＣＨＯ細胞、ＨＢＴ５６３７（特開昭６３−２９９）等をあげることができる。

マウス・ミエローマ細胞としては、ＳＰ２／０、ＮＳＯ等、ラット・ミエローマ細胞としてはＹＢ２／０等、ヒト胎児腎臓細胞としてはＨＥＫ２９３（ＡＴＣＣ ＣＲＬ−１５７３）、ヒト白血病細胞としてはＢＡＬＬ−１等、アフリカミドリザル腎臓細胞としてはＣＯＳ−１、ＣＯＳ−７等をあげることができる。

組換え体ＤＮＡの導入方法としては、動物細胞にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法［Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３，１３３（１９９０）］、リン酸カルシウム法（特開平２−２２７０７５）、リポフェクション法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８４，７４１３（１９８７）］、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，５２，４５６（１９７３）に記載の方法等をあげることができる。

昆虫細胞を宿主として用いる場合には、例えばＢａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｖｅｃｔｏｒｓ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９９２）、カレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，６，４７（１９８８）等に記載された方法によって、タンパク質を生産することができる。

即ち、組換え遺伝子導入ベクターおよびバキュロウイルスを昆虫細胞に共導入して昆虫細胞培養上清中に組換えウイルスを得た後、さらに組換えウイルスを昆虫細胞に感染させ、タンパク質を生産させることができる。

該方法において用いられる遺伝子導入ベクターとしては、例えば、ｐＶＬ１３９２、ｐＶＬ１３９３、ｐＢｌｕｅＢａｃＩＩＩ（いずれもインビトロジェン社製）等をあげることができる。

バキュロウイルスとしては、例えば、夜盗蛾科昆虫に感染するウイルスであるアウトグラファ・カリフォルニカ・ヌクレアー・ポリヘドロシス・ウイルス（Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ ｎｕｃｌｅａｒ ｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓ ｖｉｒｕｓ）等を用いることができる。

昆虫細胞としては、スポドプテラ・フルギペルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）の卵巣細胞、トリコプルシア・ニ（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａｎｉ）の卵巣細胞、カイコ卵巣由来の培養細胞等を用いることができる。

スポドプテラ・フルギペルダの卵巣細胞としてはＳｆ９、Ｓｆ２１（バキュロウイルス・イクスプレッション・ベクターズ ア・ラボラトリー・マニュアル）等、トリコプルシア・ニの卵巣細胞としてはＨｉｇｈ５、ＢＴＩ−ＴＮ−５Ｂ１−４（インビトロジェン社製）等、カイコ卵巣由来の培養細胞としてはボンビクス・モリ（Ｂｏｍｂｙｘｍｏｒｉ）Ｎ４等をあげることができる。

組換えウイルスを調製するための、昆虫細胞への上記組換え遺伝子導入ベクターと上記バキュロウイルスの共導入方法としては、例えば、リン酸カルシウム法（特開平２−２２７０７５）、リポフェクション法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８４，７４１３（１９８７）］等をあげることができる。

植物細胞を宿主細胞として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、Ｔｉプラスミド、タバコモザイクウイルスベクター等をあげることができる。

プロモーターとしては、植物細胞中で機能するものであればいずれのものを用いてもよく、例えば、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓプロモーター、イネアクチン１プロモーター等をあげることができる。

宿主細胞としては、タバコ、ジャガイモ、トマト、ニンジン、ダイズ、アブラナ、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ等の植物細胞等をあげることができる。

組換えベクターの導入方法としては、植物細胞にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、アグロバクテリウム（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）を用いる方法（特開昭５９−１４０８８５、特開昭６０−７００８０、ＷＯ９４／００９７７）、エレクトロポレーション法（特開昭６０−２５１８８７）、パーティクルガン（遺伝子銃）を用いる方法（特許第２６０６８５６、特許第２５１７８１３）等をあげることができる。

酵母、動物細胞、昆虫細胞または植物細胞により発現させた場合には、糖あるいは糖鎖が付加されたタンパク質を得ることができる。

以上のようにして得られる形質転換体を培地に培養し、培養物中に本発明のタンパク質を生成蓄積させ、該培養物から採取することにより、該タンパク質を製造することができる。

本発明のタンパク質を製造するための上記形質転換体の宿主としては、細菌、糸状菌、酵母等の微生物細胞、植物細胞、昆虫細胞（Ｓｆ９など）、動物細胞などが挙げられる。好ましくは、酵母、糸状菌、昆虫細胞または植物細胞である。

上記形質転換体を培地に培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。

エシェリヒア・コリ等の原核生物あるいは酵母等の真核生物を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、該生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。

炭素源としては、該生物が資化し得るものであればよく、グルコース、フラクトース、スクロース、これらを含有する糖蜜、デンプンあるいはデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール類等を用いることができる。

窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びに、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕および大豆粕加水分解物、各種発酵菌体、およびその消化物等を用いることができる。

無機塩としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウム等を用いることができる。

培養は、通常振盪培養または深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行う。培養温度は１５〜４０℃がよく、培養時間は、通常５時間〜７日間である。培養中ｐＨは３．０〜９．０に保持する。ｐＨの調整は、無機または有機の酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム、アンモニア等を用いて行う。

また、培養中必要に応じて、アンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。

プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド等を、ｔｒｐプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。

動物細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているＲＰＭＩ１６４０培地［Ｊ．Ａｍ．Ｍｅｄ．Ａｓｓｏｃ．，１９９，５１９（１９６７）］、イーグル（Ｅａｇｌｅ）のＭＥＭ培地［Ｓｃｉｅｎｃｅ，１２２，５０１（１９５２）］、ＤＭＥＭ培地［Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，８，３９６（１９５９）］、１９９培地［Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．，７３，１（１９５０）］またはこれら培地に牛胎児血清等を添加した培地等を用いることができる。

培養は、通常ｐＨ６〜８、２５〜４０℃、５％ＣＯ_２存在下等の条件下で１〜７日間行う。

また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ペニシリン、ストレプトマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。

昆虫細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているＴＮＭ−ＦＨ培地（ファーミンジェン社製）、Ｓｆ−９００ ＩＩ ＳＦＭ培地（ライフ・テクノロジーズ社製）、ＥｘＣｅｌｌ４００、ＥｘＣｅｌｌ４０５［いずれもＪＲＨバイオサイエンシーズ社製］、Ｇｒａｃｅ’ｓ Ｉｎｓｅｃｔ Ｍｅｄｉｕｍ［Ｎａｔｕｒｅ，１９５，７８８（１９６２）］等を用いることができる。

培養は、通常ｐＨ６〜７、２５〜３０℃等の条件下で１〜５日間行う。

また、培養中必要に応じて、ゲンタマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。

植物細胞を宿主として得られた形質転換体は、細胞として、または植物の細胞や器官に分化させて培養することができる。該形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているムラシゲ・アンド・スクーグ（ＭＳ）培地、ホワイト（Ｗｈｉｔｅ）培地、またはこれら培地にオーキシン、サイトカイニン等、植物ホルモンを添加した培地等を用いることができる。

培養は、通常ｐＨ５〜９、２０〜４０℃の条件下で３〜６０日間行う。

また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ハイグロマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。

上記のとおり、本発明のタンパク質をコードするＤＮＡを発現ベクターに連結した組換え体ＤＮＡを保有する微生物、昆虫細胞、動物細胞、あるいは植物細胞由来の形質転換体を、通常の培養方法に従って培養し、本発明のタンパク質を生成蓄積させ、該培養物より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を製造することができる。

本発明のタンパク質の生産方法としては、宿主細胞内に生産させる方法、宿主細胞外に分泌させる方法、あるいは宿主細胞外膜上に生産させる方法があり、選択した方法に応じて、生産させるタンパク質の構造を変えることができる。

本発明のタンパク質が宿主細胞内あるいは宿主細胞外膜上に生産される場合、ポールソンらの方法［Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６４，１７６１９（１９８９）］、ロウらの方法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８６，８２２７（１９８９）、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌｏｐ．，４，１２８８（１９９０）］、または特開平０５−３３６９６３、ＷＯ９４／２３０２１等に記載の方法を準用することにより、該タンパク質を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。

すなわち、遺伝子組換えの手法を用いて、本発明のタンパク質の活性部位を含むタンパク質の手前にシグナルペプチドを付加した形で生産させることにより、該タンパク質を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。

また、特開平２−２２７０７５号公報に記載されている方法に準じて、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子等を用いた遺伝子増幅系を利用して生産量を上昇させることもできる。

さらに、遺伝子導入した動物または植物の細胞を再分化させることにより、遺伝子が導入された動物個体（トランスジェニック非ヒト動物）または植物個体（トランスジェニック植物）を造成し、これらの個体を用いて本発明のタンパク質を製造することもできる。

本発明のタンパク質を生産する形質転換体が動物個体または植物個体の場合は、通常の方法に従って、飼育または栽培し、該タンパク質を生成蓄積させ、該動物個体または植物個体より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を製造することができる。

動物個体を用いて本発明のタンパク質を製造する方法としては、例えば公知の方法［Ａｍ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｎｕｔｒ．，６３，６３９Ｓ（１９９６）、Ａｍ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｎｕｔｒ．，６３，６２７Ｓ（１９９６）、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，９，８３０（１９９１）］に準じて遺伝子を導入して造成した動物中に本発明のタンパク質を生産する方法があげられる。

動物個体の場合は、例えば、本発明のＤＮＡまたは本発明の製造法に用いられるＤＮＡを導入したトランスジェニック非ヒト動物を飼育し、本発明のタンパク質を該動物中に生成、蓄積させ、該動物中より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を製造することができる。該動物中の該タンパク質を生成、蓄積させる場所としては、例えば、該動物のミルク（特開昭６３−３０９１９２）、卵等をあげることができる。この際に用いられるプロモーターとしては、動物で機能するものであればいずれも用いることができるが、例えば、乳腺細胞特異的なプロモーターであるαカゼインプロモーター、βカゼインプロモーター、βラクトグロブリンプロモーター、ホエー酸性プロテインプロモーター等が好適に用いられる。

植物個体を用いて本発明のタンパク質を製造する方法としては、例えば本発明のタンパク質をコードするＤＮＡを導入したトランスジェニック植物を公知の方法［組織培養，２０（１９９４）、組織培養，２１（１９９５）、Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１５，４５（１９９７）］に準じて栽培し、該タンパク質を該植物中に生成、蓄積させ、該植物中より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を生産する方法があげられる。

本発明のタンパク質を生産する形質転換体を用いて製造された本発明のタンパク質を単離・精製する方法としては、通常の酵素の単離、精製法を用いることができる。

例えば、本発明のタンパク質が、細胞内に溶解状態で生産された場合には、培養終了後、細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液にけん濁後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー、ダイノミル等により細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。

該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、通常の酵素の単離精製法、即ち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）−セファロース、ＤＩＡＩＯＮ ＨＰＡ−７５（三菱化成社製）等レジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、Ｓ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ＦＦ（ファルマシア社製）等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の手法を単独あるいは組み合わせて用い、精製標品を得ることができる。

また、該タンパク質が細胞内に不溶体を形成して生産された場合は、同様に細胞を回収後破砕し、遠心分離を行うことにより得られた沈殿画分より、通常の方法により該タンパク質を回収後、該タンパク質の不溶体をタンパク質変性剤で可溶化する。

該可溶化液を、タンパク質変性剤を含まないあるいはタンパク質変性剤の濃度がタンパク質が変性しない程度に希薄な溶液に希釈、あるいは透析し、該タンパク質を正常な立体構造に構成させた後、上記と同様の単離精製法により精製標品を得ることができる。

本発明のタンパク質またはその糖修飾体等の誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清に該タンパク質またはその糖付加体等の誘導体を回収することができる。

即ち、該培養物を上記と同様の遠心分離等の手法により処理することにより可溶性画分を取得し、該可溶性画分から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。

また、本発明のタンパク質を他のタンパク質との融合タンパク質として生産し、融合したタンパク質に親和性をもつ物質を用いたアフィニティークロマトグラフィーを利用して精製することもできる。例えば、ロウらの方法［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８６，８２２７（１９８９）、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌｏｐ．，４，１２８８（１９９０）］、特開平５−３３６９６３、ＷＯ９４／２３０２１に記載の方法に準じて、本発明のタンパク質をプロテインＡとの融合タンパク質として生産し、イムノグロブリンＧを用いるアフィニティークロマトグラフィーにより精製することができる。

また、本発明のタンパク質をＦｌａｇペプチドとの融合タンパク質として生産し、抗Ｆｌａｇ抗体を用いるアフィニティークロマトグラフィーにより精製することができる［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８６，８２２７（１９８９）、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌｏｐ．，４，１２８８（１９９０）］。更に、該タンパク質自身に対する抗体を用いたアフィニティークロマトグラフィーで精製することもできる。

上記で取得されたタンパク質のアミノ酸配列情報を基に、Ｆｍｏｃ法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）、ｔＢｏｃ法（ｔ−ブチルオキシカルボニル法）等の化学合成法により、本発明のタンパク質を製造することができる。また、Ａｄｖａｎｃｅｄ ＣｈｅｍＴｅｃｈ社、パーキン・エルマー社、Ｐｈａｒｍａｃｉａ社、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ社、Ｓｙｎｔｈｅｃｅｌｌ−Ｖｅｇａ社、ＰｅｒＳｅｐｔｉｖｅ社、島津製作所等のペプチド合成機を利用して化学合成することもできる。

６． ２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有するトリテルペン化合物の製造方法
本発明は、無細胞系で、あるいは細胞又は植物を用いて、外因性の２８位酸化酵素活性を有するタンパク質存在下または２８位酸化酵素をコードするＤＮＡの発現下で、αアミリン、βアミリン、ルペオールなどの五環系トリテルペン化合物の２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する方法を提供する。

本明細書で使用される「外因性」とは、細胞または植物が本来もつ酵素またはその遺伝子自体ではなく、該細胞または植物に、あるいは上記の五環系トリテルペン化合物原料の反応系に、人為的に該酵素またはそれをコードするＤＮＡを導入することを意味する。

本発明はまた、上記の変換方法によって２８位のメチル基がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換された五環系トリテルペン化合物を生成し、該化合物を回収することを含む、２８位のメチル基がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換された五環系トリテルペン化合物の製造方法を提供する。

本発明では、２８位酸化酵素は、粗製、半精製もしくは精製された、あるいは多糖類、多孔性ポリマー、多孔性無機物（例えばガラス、鉱物、セラミックス等）などの支持体などに共有結合もしくは非共有結合によって固定化された、酵素として反応系で使用されてもよいし、該酵素を産生する細胞または植物体自体が反応系で使用されてもよい。

本発明で使用可能な２８位酸化酵素は膜結合型チトクロームＰ４５０モノオキシダーゼの一種であり、上述の製造法で得ることができる。

ＤＮＡ組換え技術によって、高い酵素活性を持ったタンパク質の発現が可能であるため、形質転換微生物（例えば、酵母、糸状菌）や昆虫細胞の培養液に上記２８位酸化酵素の基質、例えばαアミリン、βアミリン、ルペオール、またはそれらの置換誘導体、を添加することにより、２８位がヒドロキシメチル化またはカルボキシル化された五環系トリテルペン化合物を生産することができる。例えば、形質転換微生物の培養液にβ−アミリン等の五環系トリテルペン類を基質として投与することにより、２８位がヒドロキシメチル化またはカルボキシル化された五環系トリテルペン化合物を効率的に大量に生産することが可能である。

特に酵母がサイトゾルにＤＭＡＰＰ（ジメチルアリルピロリン酸）を生合成する経路（メバロン酸経路）を有していることや、大腸菌にメバロン酸経路を導入することやスクワレンエポキシダーゼ、オキシドスクワレン環化酵素で前駆体や基質を生産・増強することを可能にしたことが報告されている［原田と三沢２００９ Ａｐｐｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ８４：１０２１−３１，仲野ら２００７ Ｂｉｏｓｃｉ． Ｂｉｏｔｅｃｈ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ７１：２５４３−２５５０］。例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのＧＩＬ７７株（Ｔ． Ｋｕｓｈｉｒｏ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２５６：２３８−２４４ （１９９８））又はその変異株をβアミリン合成酵素をコードするＤＮＡを発現可能に含むプラスミドで形質転換するとき、βアミリンを産生することが知られている（Ｈ． Ｈａｙａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｌ． Ｐｈａｒｍ． Ｂｕｌｌ． ２４：９１２−９１６ （２００１））。これらの方法を利用して他の遺伝子（例えば基質生合成酵素遺伝子）と２８位酸化酵素をコードするＤＮＡを同時に発現させることによって、２８位がヒドロキシメチル化またはカルボキシル化された五環系トリテルペン化合物を生産することが可能となる。類似の膜結合型チトクロームＰ４５０モノオキシダーゼを発現し代謝物を得た例としては、大腸菌ではＣｈａｎｇら［２００７ Ｎａｔ． Ｃｈｅｍ． Ｂｉｏｌ． ３：２７４−２７７］の報告がある。また、酵母では関ら［２００８ ＰＮＡＳ １０５：１４２０４−１４２０９］の報告があるので、このような方法を組み合わせることで目的の五環系トリテルペン化合物を生産することが可能となる。また、トランスジェニック植物において２８位酸化酵素を過剰発現させて目的の五環系トリテルペン化合物を生成し、根や種子等から回収することもできる。

（１）酵素的製造法
無細胞系では、上記形質転換体の培養液から２８位酸化酵素を含有する無細胞抽出液を調製し、その一部を、αアミリン、βアミリン、ルペオール、またはそれらの置換誘導体などの五環系トリテルペン化合物を含有するバッファーに加えて変換反応を行うことによって、２８位がヒドロキシメチル化またはカルボキシル化された五環系トリテルペン化合物を製造することができる。

収穫した細胞の懸濁液、あるいは適量のバッファー中の形質転換植物を、ホモジナイザー、超音波破砕機あるいはフレンチプレス等により破砕後、遠心分離して無細胞抽出液を得る。バッファーには、ポリペプチドの失活を防ぐため、抗酸化剤、酵素の安定化剤、ポリフェノール吸着剤、金属配位子などを添加することができる。さらに比活性を高めるにはポリペプチドを精製することが有効であり、超遠心機による遠心分離法、硫安等による塩析方、ゲル濾過法、イオン交換クロマトグラフィー法、アフィニティクロマトグラフィー法、電気泳動法などの手法を単独で、あるいは組み合わせて用いることができる。得られたポリペプチドを含むバッファーに、基質となる上記の五環系トリテルペンおよび補酵素を添加してインキュベートする。補酵素としてはＮＡＤＨあるいはＮＡＤＰＨが利用でき、グルコース−６−リン酸とグルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼを用いたＮＡＤＰＨ再構成系も併用できる。また、形質転換体が産生するＮＡＤＰＨ-Ｐ４５０リダクターゼ以外のＮＡＤＰＨ - Ｐ４５０リダクターゼを外部から加えて酸化反応を行うことも可能である。

上記製造法において、本発明のタンパク質は、基質として用いるトリテルペン１ｍｇあたり０．０１〜１００ｍｇ、好ましくは０．１ｍｇ〜１０ｍｇ添加する。

上記製造法において、基質として用いる五環系トリテルペンは、０．１〜５００ｇ／Ｌ、好ましくは０．２〜２００ｇ／Ｌの濃度になるように反応水性媒体に初発または反応途中に添加する。上記製造法で用いられる水性媒体としては、２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンの生成反応を阻害しない限り、いかなる成分、組成の水性媒体であってもよく、例えば、水、りん酸塩、炭酸塩、酢酸塩、ほう酸塩、クエン酸塩、トリスなどの緩衝液などをあげることができる。また、メタノール、エタノールなどのアルコール類、酢酸エチルなどのエステル類、アセトンなどのケトン類、アセトアミドなどのアミド類を含有していてもよい。

２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンの生成反応は水性媒体中、ｐＨ５〜１１、好ましくはｐＨ６〜１０、２０〜５０℃、好ましくは２５〜４５℃の条件で２〜１５０時間、好ましくは６〜１２０時間行う。

（２）形質転換体または微生物の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源として用いる製造法
形質転換体または微生物の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源として用いる２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンの製造法としては、本発明のタンパク質を生産する能力を有する形質転換体の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、および五環系トリテルペンを水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に２８位ヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンを生成、蓄積させ、該媒体から２８位ヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンを採取する製造法をあげることができる。

上記製造法に用いられる形質転換体としては、上記４．や５．の方法により製造することができる、本発明のタンパク質を生産する形質転換体をあげることができる。さらに宿主が産生するＮＡＤＰＨ-Ｐ４５０リダクターゼ以外のＮＡＤＰＨ-Ｐ４５０リダクターゼを外部から加えることも可能である。

培養物の処理物としては、培養物の濃縮物、培養物の乾燥物、培養物を遠心分離して得られる菌体、該菌体の乾燥物、該菌体の凍結乾燥物、該菌体の界面活性剤処理物、該菌体の超音波処理物、該菌体の機械的摩砕処理物、該菌体の溶媒処理物、該菌体の酵素処理物、該菌体のタンパク質分画物、該菌体の固定化物あるいは該菌体より抽出して得られる酵素標品などをあげることができる。

上記製造法において、基質として用いる五環系トリテルペンの種類、使用濃度および添加時期、並びに生産される２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンは、上記（１）の酵素的製造法のものと同様である。

また、微生物の培養物または該培養物の処理物を酵素源とした製造法において用いられる水性媒体としては、上記（１）の酵素的製造法に用いられる水性媒体に加え、酵素源として用いた形質転換体または微生物の培養液も水性媒体として用いることができる。

また必要に応じて、水性媒体中に界面活性剤あるいは有機溶媒を添加してもよい。界面活性剤としては、ポリオキシエチレン・オクタデシルアミン（例えばナイミーンＳ−２１５、日本油脂社製）などの非イオン界面活性剤、セチルトリメチルアンモニウム・ブロマイドやアルキルジメチル・ベンジルアンモニウムクロライド（例えばカチオンＦ２−４０Ｅ、日本油脂社製）などのカチオン系界面活性剤、ラウロイル・ザルコシネートなどのアニオン系界面活性剤、アルキルジメチルアミン（例えば三級アミンＦＢ、日本油脂社製）などの三級アミン類など、五環系トリテルペンの生成を促進するものであればいずれでもよく、１種または数種を混合して使用することもできる。界面活性剤は、界面活性剤は、通常０．１〜５０ｇ／ｌの濃度で用いられる。有機溶剤としては、キシレン、トルエン、脂肪族アルコール、アセトン、酢酸エチルなどが挙げられ、通常０．１〜５０ｍｌ／ｌの濃度で用いられる。

培養物または該培養物の処理物を酵素源として用いる場合、該酵素源の量は、当該酵素源の比活性等により異なるが、例えば、基質として用いる五環系トリテルペン１ｍｇあたり湿菌体重量として５〜１０００ｍｇ、好ましくは１０〜４００ｍｇ添加する。

２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンの生成反応は水性媒体中、ｐＨ５〜１１、好ましくはｐＨ６〜１０、２０〜５０℃、好ましくは２５〜４５℃の条件で２〜１５０時間、好ましくは６〜１２０時間行う。

上記（１）または（２）の製造法において、水性媒体中に生成、蓄積した２８位ヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有するトリテルペンの採取は、活性炭やイオン交換樹脂などを用いる通常の方法あるいは、有機溶媒による抽出、結晶化、薄層クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー等により行うことができる。

７． ２８位酸化酵素遺伝子の変異、多型または遺伝子発現変異の選抜
本発明による２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物の製造方法においては、植物において２８位酸化酵素遺伝子の突然変異、一塩基多型（ＳＮＰ）等の多型、または遺伝子発現変異の存在を検出し、そのような変異や多型をもつ該遺伝子のなかから、２８位酸化酵素活性が高く２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物の生産性を高める変異型遺伝子を選抜することができる。そのような変異は、２８位酸化酵素遺伝子を有する、かつ、五環系トリテルペン化合物生産能をもつ植物において、放射線、ＵＶ照射、変異原等の化学処理などの人工的突然変異処理、あるいは自然突然変異、によって誘導することができる。

上記の変異型オレアノール酸合成酵素遺伝子の選抜のための方法には、ゲノムＤＮＡやｍＲＮＡを変異個体、様々な品種や育成個体の植物から単離し、ｍＲＮＡの場合には逆転写しｃＤＮＡを合成したのち、ＤＮＡ増幅技術の使用によりゲノムＤＮＡまたはｃＤＮＡからオレアノール酸合成酵素遺伝子を含有する遺伝子断片を増幅する工程と、このＤＮＡ中に突然変異の存在を決定する工程が含まれる。ＤＮＡやＲＮＡを抽出する方法には市販のキット（例えばＤＮｅａｓｙやＲＮｅａｓｙ（キアゲン社）など）が使用できる。ｃＤＮＡを合成する方法も市販キット（例えばスーパースクリプト ファーストストランド システム（インビトロジェン社）など）を使うことができる。

ＤＮＡ増幅技術の使用により遺伝子断片を増幅する方法としては、いわゆるＰＣＲ法やＬＡＭＰ法などの技術を用いることができる。これらは継続的なポリメラーゼ反応により特異的なＤＮＡ配列の増幅（つまり、コピー数を増やすこと）を達成するためにポリメラーゼを使用することを基にした、一群の技術である。この反応は、クローニングの代わりに使用することができるが、必要であるのは、核酸配列に関する情報のみである。ＤＮＡの増幅を行うために、増幅しようとするＤＮＡの配列に相補的なプライマーを設計する。次にそのプライマーを自動ＤＮＡ合成により作製する。ＤＮＡ増幅方法は、当技術分野で周知であり、本明細書中で与えられる教示及び指示に基づき、当業者であれば容易に行うことができる。いくつかのＰＣＲ法（ならびに関連技術）は、例えば、米国特許第４，６８３，１９５号、同第４，６８３，２０２号、同第４，８００，１５９号、同第４，９６５，１８８号、およびＩｎｎｉｓら編、ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓで述べられている。

上記ＤＮＡ中に突然変異や多型の存在を決定する工程では、塩基配列の決定（アプライドバイオシステムズ社）や、ミスマッチペアの片側を切断する酵素を用いて突然変異体を検出するＴＩＬＬＩＮＧ法（Ｔｉｌｌ ｅｔ ａｌ．， ２００３， Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ １３：５２４−５３０）など変異遺伝子と正常遺伝子の相同性を利用し検出する方法を用いればよい。これらは該技術から得られた配列データを遺伝子部分に関する２８位酸化酵素をコードする遺伝子の塩基配列、例えば配列番号１０〜１６に示されるような塩基配列と比較することによって行うことができる。

ｍＲＮＡ量の違いを決定する工程では、上記ｃＤＮＡに対し、配列既知の２８位酸化酵素をコードする遺伝子の塩基配列に基づいて作製したプライマーを利用してリアルタイムＰＣＲ法（ロシュ・ダイアグノスティックス社製のライトサイクラーなど）等の定量的ＰＣＲを採用すればよい。その後、例えば、ブドウ品種「キャンベル ベリーＡ」から得られたｃＤＮＡの量と比較することでｍＲＮＡ量の違いを決定することができる。

特に好ましい実施形態において、上述したような２８位酸化酵素遺伝子変異の存在の決定方法を、オリーブ（Ｏｌｅａ ｅｕｒｏｐｅａ）から得られた材料に適用する。

上記の突然変異および／または多型を決定する方法により、２８位酸化酵素をコードする遺伝子の突然変異や多型を塩基レベルで同定することができ、さらに２８位酸化酵素をコードする遺伝子に突然変異および／または多型を有する植物体を選抜し、変異型２８位酸化酵素をコードする遺伝子を得ることができる。

また、突然変異や多型の決定やｍＲＮＡ量の違いの決定により、２８位酸化酵素をコードする遺伝子の発現能または２８位酸化酵素の活性が変化している植物を選抜することが可能になる。ここで、２８位酸化酵素をコードする遺伝子の発現能または２８位酸化酵素の活性の変化とは、人為的突然変異等の突然変異による遺伝子の発現能または２８位酸化酵素の活性の改変および多型による遺伝子の発現能または２８位酸化酵素の活性が異なっていることを意味する。

ある植物の２８位酸化酵素活性の突然変異による改変は、その植物の種に含まれる既存品種に対する改変をいい、既存品種には野生型も含まれる。既存の品種は、２８位酸化酵素をコードする遺伝子が改変された植物を得るためのすべての品種をいい、交配、遺伝子操作等の人為的操作により作出された品種を含む。また、活性の改変において、すべての既存品種に対して、活性が変化している必要はなく、特定の既存品種に対して改変されていれば、「２８位酸化酵素の活性が改変された植物」に含まれる。「２８位酸化酵素の活性が改変された植物」は、人為的操作を受けず自然状態で突然変異により活性が改変された植物も含み、上記の選抜方法により、自然状態で活性が変化した植物を選抜することができ、新たな品種として確立することもできる。また、ある既存品種に変異誘発処理を行い、２８位酸化酵素の活性が改変された植物を作出した場合、比較対象は変異誘発処理を行った既存品種でもよいし、それ以外の他の既存品種でもよい。また、自然状態で選抜された活性が変化した植物又は変異誘発処理により活性が変化した植物を交配することにより、２８位酸化酵素をコードする遺伝子の変異が固定された新品種として得ることもできる。

例えば、植物がオリーブ（Ｏｌｅａ ｅｕｒｏｐｅａ）の場合、既存品種として、「ネバディロブロンコ」、「マンザニロ」、「ミッション」、「レッチーノ」等がある。ここで、２８位酸化酵素をコードする遺伝子の発現能または２８位酸化酵素の活性が既存品種に対して改変された植物とは、既存品種に対して２８位酸化酵素をコードする遺伝子の発現能が増強あるいは減少した植物を含み、さらに、２８位酸化酵素の活性が既存品種に対して上昇あるいは低下した植物を含む。本発明は、このような２８位酸化酵素をコードする遺伝子の発現能または２８位酸化酵素の活性が既存品種に対して改変された植物体も包含する。

このようにして得られた２８位酸化酵素をコードする遺伝子に突然変異や多型を有する植物は、本発明の方法によって、２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である五環系トリテルペン化合物の製造のために使用することができる。

（実施例）
以下、本発明を、実施例を示してより詳しく説明するが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。

共発現解析を用いたトリテルペンサポニン生合成関連候補P450の選抜
タルウマゴヤシの遺伝子共発現解析データベース（http://bioinfo.noble.org/gene-atlas/v2/correlation_search_form.php、Version: V2 (July 2009)# of Experiments: 64, # of GeneChips: 156）を利用して、β-アミリン合成酵素遺伝子（プローブID = Mtr.32384.1.S1_s_at）と共発現係数0.8以上を示す遺伝子配列プローブ２２１見つかった。このうちプローブ配列の相同性を検索していったところ、シトクロームP450モノオキシゲナーゼ遺伝子断片を示すものとして、CYP93E2（プローブID = Mtr.8618.1.S1_at、共発現係数0.791）とCYP716A12（プローブID = Mtr.43018.1.S1_at、共発現係数0.8566）をβ-アミリン合成酵素遺伝子と共発現をしている可能性のあるP450遺伝子として見出し以下の解析を進めた。ただし、より高い共発現計数を持つプローブID=Mtr.37298.1.S1_at（共発現係数0.9441）はCYP72クランに属すると考え解析を行わなかった。

タルウマゴヤシCYP93E2遺伝子の単離
タルウマゴヤシ、エコタイプR108-1を人工気象器内（23℃、日長１６時間）で育成し、発芽後４週間目の植物の葉、茎、根からそれぞれトータルRNAを調製した。得られたトータルRNAを1μg用いて、SMART RACE cDNA amplification kit (Clontech社)を用いて添付のプロトコルに従いファーストストランドcDNA合成を行った。

3種のファーストストランドcDNA各2μlを鋳型として、CYP93E2（GenBankアクセション番号、ABC59085）のポリペプチド（514アミノ酸）のN末端とC末端に相当する箇所のオリゴＤＮＡ、すなわち配列番号17（caccATGCTTGAAATCCAAGGCTACGTAGTATT）と配列番号18（TTAGGCAGAAGAGAATGGAACAAAATGTGGAAC）、をプライマーに用い、アニール温度58℃でPCR（30サイクル、TOYOBO社製 KOD plus ver.2 polymeraseを使用）を行った。なお、pENTR^TM/D-TOPO（登録商標）エントリーベクター（Invitrogen社）へのクローニングの際に必要であることから、配列番号１７のプライマーには、5’末端に４塩基（cacc）が人工的に付加されている。PCRの結果、いずれのファーストストランドcDNAを鋳型に用いた場合にも、約1.5kbのDNA断片が同程度増幅された。茎由来のファーストストランドcDNAから増幅されたDNA断片をpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクターにクローニング（エントリークローンの作製）し、得られた3個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号9であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号1）は、GenBankに登録されているABC59085のアミノ酸配列に対して99％の同一性を有していた。

タルウマゴヤシCYP716A12遺伝子の単離
実施例2で作製した３種のファーストストランドcDNA各2μlを鋳型として、CYP716A12（GenBankアクセション番号、ABC59076）のポリペプチド（479アミノ酸）のN末端とC末端に相当する箇所のオリゴＤＮＡ、すなわち配列番号19（caccATGGAGCCTAATTTCTATCTCTCCCT）と配列番号20（TTAAGCTTTGTGTGGATAAAGGCGA）、をプライマーに用い、アニール温度58℃でPCR（30サイクル、TOYOBO社製 KOD plus ver.2 polymeraseを使用）を行った。なお、pENTR^TM/D-TOPO（登録商標）エントリーベクター（Invitrogen社）へのクローニングの際に必要であることから、配列番号19のプライマーには、5’末端に4塩基（cacc）が人工的に付加されている。PCRの結果、いずれのファーストストランドcDNAを鋳型に用いた場合にも、約1.5kbのDNA断片が同程度増幅された。茎由来のファーストストランドcDNAから増幅されたDNA断片をpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクターにクローニングし、得られた3個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号10であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号2）は、GenBankに登録されているABC59076のアミノ酸配列に対して99％の同一性を有していた。

ミヤコグサβ-アミリン合成酵素（OSC1）遺伝子cDNAの酵母発現ベクターpYES3-ADH-OSC1の構築
マメ科のモデル植物としてEST及びゲノム解析が進んでいるミヤコグサ（Lotus japonicus）を用いて、β-アミリン合成酵素（OSC1）遺伝子の酵母発現ベクターを構築した。ミヤコグサOSC1遺伝子cDNA導入プラスミド（Sawai et al. (2006) Plant Sci 170: 247-257）をKpnI、XbaIで消化し、OSC１ cDNA領域を切り出した。pAUR123（TaKaRa社）も同様にKpnI、XbaIで消化し、DNA ligation Kit Ver. 2.1（TaKaRa社）で両者をライゲーションし、pAUR123-OSC1を得た。pAUR123-OSC1のPADH1からTADH1領域を配列番号21（GGATGATCCACTAGTGGATCCTCTAGCTCCCTAACATGTAGGTGG）及び配列番号22（TAATGCAGGGCCGCAGGATCCGTGTGGAAGAACGATTACAACAGG）の両プライマーを用いて、KOD-Plus-DNAポリメラーゼ(TOYOBO社)により94℃で２分間処理した後、（94℃20秒間→55℃40秒間→68℃90秒間）×20サイクルからなるPCRを行った。その後、68℃で２分間保温した。また、pYES3/CT（Invitrogen社）の１番から960番塩基(PGAL1からCYC1TT)を除く領域を配列番号23（TGCGGCCCTGCATTAATGAATCGGCCAACG）及び配列番号24（ACTAGTGGATCATCCCCACGCGCCCTGTAG）の両プライマーを用いてKOD-Plus- DNAポリメラーゼ(TOYOBO社)により前記と同様にPCRを行った。両PCR産物をIn-Fusion Dry-Down PCR Cloning Kit（clontech社）を用いて結合し、ミヤコグサOSC1酵母発現ベクターpYES3-ADH-OSC1を得た。

ミヤコグサチトクロームP450還元酵素を含む酵母発現ベクターpELC-MCS2-GWの構築
ミヤコグサESTデータベース(かずさDNA研究所)を検索し、シロイヌナズナチトクロームP450還元酵素とアミノ酸レベルで70％以上の相同性を有する核酸配列を選抜した。全長コード領域を含むと思われるESTクローン(accession no. AV778635)をかずさDNA研究所より入手し、DNA配列を決定した(以下、LjCPR1とする)。LjCPR1導入プラスミド(pBluescript SK (-))を鋳型にして、配列番号25（GGGCGGCCGCACTAGTATCGATGGAAGAATCAAGCTCCATGAAG）及び配列番号26（TTAATTAATCACCATACATCACGCAAATAC）の両プライマーを用い、KOD-Plus- DNAポリメラーゼ(TOYOBO社)により94℃で２分間処理した後、（94℃20秒間→60℃40秒間→68℃120秒間）×15サイクルからなるPCRを行った。その後、68℃で２分間保温した。PCR産物をTAget Clone -Plus-（TOYOBO社）を用いて、pT7Blue T-vector（Novagen社）とライゲーションした。塩基配列を確認後、NotI、PacIで消化し、また酵母発現用ベクターpESC-LEU（Stratagene社）も同様にNotI, PacIで消化した。その後、DNA ligation Kit Ver. 2.1（TaKaRa社）を用いて両者をライゲーションし、LjCPR1の酵母発現ベクターpESC-LjCPR1を得た。次に、pAM-PAT-GWベクター（Max Planck InstituteのBekir Ulker博士とImre E. Somssich博士より贈与）を制限酵素XhoI及びSpeIで二重消化し、Gateway conversion cassette（Invitrogen社）を含むDNA断片を切り出した。得られたDNA断片を、pESC-LjCPR1をSalIとNheIの二重消化して得られる２つの断片のうち大きい断片と連結することによってpELC-MCS2-GWを構築した。pELC-MCS2-GWの構築には、大腸菌DB3.1株（Invitrogen社）を使用した。

LjCPR1とCYP93E2の酵母同時発現ベクターpELC-CYP93E2の構築
実施例2で作製した、配列番号9に示すポリヌクレオチドを有するプラスミド（エントリークローン）とpELC-MCS2-GWとを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（Invitrogen社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）により、配列番号9で示すDNA断片をpELC-MCS2-GWに移し替えることでLjCPR1と配列番号9に示す遺伝子の同時発現ベクターpELC-CYP93E2を得た。

LjCPR1とCYP716A12の酵母同時発現ベクターpELC-CYP716A12の構築
実施例3で作製した、配列番号10に示すポリヌクレオチドを有するプラスミド（エントリークローン）とpELC-MCS2-GWとを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（Invitrogen社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）により、配列番号10で示すＤＮＡ断片をpELC-MCS2-GWに移し替えることでLjCPR1と配列番号10に示す遺伝子の同時発現ベクターpELC-CYP716A12を得た。

OSC1とCYP93E2を同時発現する形質転換酵母の作製
INVSc1株（Invitrogen社）（MATa his3D1 leu2 trp1-289 ura3-52 MATAlpha his3D1 leu2 trp1-289 ura3-52）の形質転換は、Frozen-EZ Yeast Transformation II（Zymo Research社）を用いて行った。最初に、酵母INVSc1株をpYES3-ADH-OSC1で形質転換し、続いて、得られた形質転換酵母をpELC-CYP93E2あるいはコントロールとしてpESC-LjCPR1で形質転換した。

OSC1とCYP716A12を同時発現する形質転換酵母の作製
実施例8と同様に、酵母INVSc1株をpYES3-ADH-OSC1で形質転換し、続いて、得られた形質転換酵母をpELC-CYP716A12で形質転換した。

形質転換酵母（pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP93E2）における生成物の確認
pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP93E2の２つのベクターを保持する酵母を5mlのSC-Trp/Leu培地30℃、135rpm、１日間培養した。培養した酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し、ガラクトース（20mg/ml）、塩化ヘミン（13μg/ml）を添加した10mlのSC-Trp/Leu-グルコース培地に懸濁し、30℃、135rpm、2日間培養した。酵母培養液に5mlの酢酸エチルを加え混合した後、酢酸エチル抽出物を回収した。この操作を3回繰り返した。酢酸エチル抽出物を減圧下で濃縮した。pYES3-ADH-OSC1、pESC-LjCPR1の2つのベクターを保持する酵母についても同様に、培養、抽出を行なった。酢酸エチル区は溶媒を乾燥除去した後、Ｎ−メチル−Ｎ−トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを加え、80℃で30分間加熱し、トリメチルシリルエーテル体に誘導体化しGC-MS分析の試料とした。変換物の同定は標品をGCの保持時間ならびにMSスペクトルを比較することで決定した。

pYES3-ADH-OSC1及びpELC-CYP93E2の2つのベクターを保持する酵母の抽出物（図2、OSC1/LjCPR1/CYP93E2と示したGCチャート）からは、β-アミリン（点線矢印）に加えて、特異的な2本のピーク（ピーク１とピーク2）が検出された。その内、ピーク１のマススペクトルは24-ヒドロキシβ-アミリン（24-OH-β-amyrin）のマススペクトルと非常に良く一致した。ピーク2はマススペクトルパターンから、さらに酸化された化合物である24のacid（β-amyrin-24-oic acid）であった。一方、pYES3-ADH-OSC1及びpESC-LjCPR1の２つのベクターを保持する酵母の抽出物（図2、OSC1/LjCPR1と示したGCチャート）からはβ−アミリン（点線矢印）は検出されたがピーク１およびピーク2に相当する化合物は検出されなかった。以上の結果から、CYP93E2は、β-アミリン合成酵素（OSC1）を発現する酵母において生じるβ-アミリンの24位を水酸化、さらに酸化し、24-OH-β-amyrinとβ-amyrin-24-oic acidを生成し得ることが明らかとなった。

形質転換酵母（pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP716A12）における生成物の確認
pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP716A12の2つのベクターを保持する酵母について、実施例１０に示した方法により培養、抽出ならびに、抽出物の分析を行なった。pYES3-ADH-OSC1及びpELC-CYP716A12の2つのベクターを保持する酵母の抽出物（図3、OSC1/LjCPR1/CYP716A12と示したGCチャート）からは、β-アミリン（点線矢印）に加えて、特異的な2本のピーク（ピーク１とピーク2）が検出された。その内、ピーク2のマススペクトルはオレアノール酸の標品のマススペクトルと非常に良く一致した。これにより、ピーク2は、オレアノール酸に相当することが判明した。ピーク1はマススペクトルパターンから、β-アミリンの28位が水酸化されたエリトリジオールであった。

一方、pYES3-ADH-OSC1及びpESC-LjCPR1の２つのベクターを保持する酵母の抽出物（図3、OSC1/LjCPR1と示したGCチャート）からはβ−アミリン（矢印）は検出されたがピーク１およびピーク2に相当する化合物は検出されなかった。以上の結果から、CYP716A12は、β-アミリン合成酵素（OSC1）を発現する酵母において生じるβ-アミリンの28位メチル基をカルボキシル基に変換し、オレアノール酸を生成し得ることが明らかとなった。

このことは以下のことから驚くべきことである。いままでにトリテルペンの酸化の過程ではCYP93、CYP88、CYP72のファミリーにのみ活性が確認されており、CYP716ファミリーに属するものではなかった。さらにP450の命名を行っているNelson博士のHP(http://drnelson.uthsc.edu/cytochromeP450.html)のJune 22, 2010更新版によると機能推定や同定されているCYP716ファミリーには３つの配列（CYP716A14 Artemisia annua putative taxadiene 5-alpha-hydroxylase、CYP716D4 Stevia rebaudiana ent-kaurenoic acid 13-hydroxylase、CYP716D6 Artemisia annua putative taxane 13-alpha-hydroxylase）がある。いずれもトリテルペンではなくジテルペンの骨格に水酸化を行う酵素をコードするとしている。またCYP716A12をNCBIのblastPで相同検索すると、トップ100の配列の中で酵素活性が特定されているものは上記３配列のほかにQ8W4T9.1 Taxane 13-alpha-hydroxylase (97%領域においてE value= 2e-104以下同じ)、AAU93341.1 taxadiene 5-alpha hydroxylase（94% 3e-101）、AAN52360.1 5-alpha-taxadienol-10-beta-hydroxylase（94% 2e-97）、AAO66199.1 taxane 14b-hydroxylase（95% 3e-95）、AAS89065.2 taxoid 2-alpha-hydroxylase（93% 1e-92）、Q9AXM6.1 5-alpha-taxadienol-10-beta-hydroxylase（94% 4e-92）、AAT47183.1 taxoid 10-beta hydroxylase（94% 1e-91）、AAV54171.1 taxoid 2-alpha-hydroxylase（97% 3e-91）等で、酵素の種類はこれだけであった。いずれもこれらはトリテルペンではなくジテルペンを酸化する酵素をコードするとしている。これらの情報からはCYP716ファミリーの遺伝子がトリテルペンの酸化能を有するとは考えられなかった。

OSC1とCYP93E2およびCYP716A12を同時発現する形質転換酵母の作製
実施例3において作製した、配列番号10に示すポリヌクレオチドを有するプラスミド（エントリークローン）とデスティネーションベクターpYES-DESTTM52（Invitrogen社）を混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（Invitrogen社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（GATEWAYTM attL × attR反応）により、配列番号10で示すDNA断片をpYES-DESTTM52に移し替えることで配列番号10に示す遺伝子の酵母発現ベクターpDEST52-CYP716A12を得た。次に、実施例10において作製した、pYES3-ADH-OSC1とpELC-CYP93E2の2つのベクターを保持する酵母にpDEST52-CYP716A12、又は空ベクターに相当するpYES2（Invitrogen社）で形質転換した。

形質転換酵母（pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP93E2、pDEST52-CYP716A12）における生成物の確認
pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP93E2、pDEST52-CYP716A12の３つのベクターを保持する酵母を5mlのSC-Trp/Leu/Ura培地30℃、135rpm、１日間培養した。培養した酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し、ガラクトース（20mg/ml）、塩化ヘミン（13μg/ml）を添加した10mlのSC-Trp/Leu/Ura-グルコース培地に懸濁し、30℃、135rpm、2日間培養した。酵母培養液に5mlの酢酸エチルを加え混合した後、酢酸エチル抽出物を回収した。この操作を3回繰り返した。酢酸エチル抽出物を減圧下で濃縮した。pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP93E2、pYES2の3つのベクターを保持するコントロールの酵母についても同様に、培養、抽出を行なった。酢酸エチル区は溶媒を乾燥除去した後、N−メチル−N−トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを加え、80℃で30分間加熱し、トリメチルシリルエーテル体に誘導体化しGC-MS分析の試料とした。

pYES3-ADH-OSC1、pESC-CYP93E2、pDEST52-CYP716A12の3つのベクターを保持する酵母の抽出物（図4：bAS/CPR/CYP93E2/CYP716A12と示したGCチャート）からは、β-アミリンに加えて、（実施例10）と（実施例11）で示した24-OH-β-amyrin、β-amyrin-24-oic acid、エリトリジオール、オレアノール酸のピークの他に特異的な4本のピークが検出された。その内、ピーク１のマススペクトル（図5）はヘデラゲニンの標品のマススペクトルと非常に良く一致した。

一方、対照実験として行ったpYES3-ADH-OSC1、pESC-CYP93E2、pYES2の3つのベクターを保持する酵母の抽出物（図4：OSC1/CPR/CYP93E2と示したGCチャート）からは28位に水酸化もしくはさらに酸になったものは検出されなかった。以上の結果から、β-アミリン合成酵素（OSC1）を発現する酵母において、CYP93E2とCYP716A12を同時発現させることによって、β-アミリンを基本骨格にもつオレアノール酸および類縁トリテルペノイドを生成し得ることが明らかとなった。

CYP716A12相同遺伝子の公開データベースからの配列抽出
本発明のオレアナン型トリテルペンの28位のメチル基を酸化する活性を有する酵素が、タルウマゴヤシに限定されないことを検証するために、相同性検索により、数種の植物の公開ESTデータベースに登録されている塩基配列の中から、CYP716A12の全長コード領域と高い塩基配列同一性を示すポリヌクレオチド配列を探索した。

トマトの完全長cDNAデータベースである（http://www.pgb.kazusa.or.jp/kaftom/blast.html）からLEFL3159E12を見出した。LEFL3159E12から推定される全長コード領域は配列番号11であり、それから推定されるポリペプチド配列は配列番号3である。配列番号3はCYP716A12のアミノ酸配列に対して７４．２％の同一性を有していた。

ミヤコグサの公開ESTデータベース（http://est.kazusa.or.jp/en/plant/lotus/EST/blast.html）から、ミヤコグサcDNA断片の部分配列に相当するAV768711を見出した。AV768711の配列を含むcDNAクローン（MWL008g03）を、ナショナルバイオリソースプロジェクトミヤコグサ・ダイズから入手し、MWL008g03に含まれるミヤコグサ由来cDNAの全長配列を決定した。MWL008g03から推定される全長コード領域は配列番号12であり、それから推定されるポリペプチド配列は配列番号4である。配列番号4はCYP716A12のアミノ酸配列に対して79.5％の同一性を有していた。

ブドウの公開されているゲノム情報をNCBI(The National Center for Biotechnology Information advances science and health)が持つBlast検索サイト(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/Blast.cgi?)を利用して、ゲノム配列から予想される遺伝子配列accession no. XM_002268434.1 (Vitis vinifera hypothetical protein LOC100251813)を見出した。この配列は全長をコードすることが予想できた。

ビートの公開されているcDNAデータ情報をDFCI(Dana-Farber Cancer Institute, Harvard School of Public Health)が持つGene Index Projectサイト(http://compbio.dfci.harvard.edu/tgi/tgipage.html)を利用してBeet Release 2.0 (May 19, 2008)の情報から１つの遺伝子断片であるTC8082を見出した。一方、NCBIのBlast検索サイトでビートの公開されているESTデータ情報から1つの遺伝子断片であるaccession no. FG344256.1(SF_01-a06 Bv_T1 Beta vulgaris subsp. vulgaris cDNA clone SF_01-a06 reverse, mRNA sequence.)を見出した。両方の配列とも全長の遺伝子を含んでいないが、相同性の解析から、TC8082はＮ末端配列を、FG344256.1はC末端配列を、それぞれ含むことが予想できた。

オリーブの公開されているESTデータ情報をNCBIのBlast検索サイトでオリーブの公開されているデータ情報から1つの遺伝子断片であるaccession no. GO244188.1(OEAA-070810_Plate3p13.b1 cDNA library from Olive leaves and fruits Olea europaea cDNA, mRNA sequence)を見出した。本配列は全長の遺伝子を含んでいないが、相同性の解析から、C末端配列を含むことが予想できた。

コーヒーの公開されているESTデータ情報をNCBIのBlast検索サイトでオリーブの公開されているデータ情報から１つの遺伝子断片であるaccession no. GT020247.1(TransId-279278 CarCatBudEnri2 Coffea arabica cDNA clone CarCatBudEnri2_59-D09-PAL17d similar to Cytochrome P450 monooxygenase CYP716A12 - Medicago truncatula (Barrel medic), mRNA sequence.)を見出した。本配列は全長の遺伝子を含んでいないが、相同性の解析から、C末端配列を含むことが予想できた。

CYP716A12相同遺伝子の全長配列の取得
実施例14で得た配列のうち、オレアノール酸を含むことが報告されているブドウ(CasadoとHeredia1、J. Exp. Bot.,50, 175-182, 1999)、ビート（Connolly、Phytochemistry, 37, 1994, 1667-1670）、オリーブ(Bianchiら、Phytochemistry, 32, 1992, 49-52)と、ウルソール酸を蓄積することが知られているコーヒー（Jagerら、Molecules 2009, 14, 2016-2031）から全長配列を取得を試みた。

ブドウについては、食料品店で購入した生食用に販売されているブドウ（品種レッドグローブ）の果皮を液体窒素にて破砕した。CTAB(Cetyltrimethylammonium bromide)法(Changら、1993. Plan Mol Biol Rep 11: 113-116)を用いて全RNAを抽出した。全cDNAの合成はスーパースクリプト ファーストストランド システム（インビトロジェン社）を用いて行った。このcDNAを鋳型に用い、（実施例14）のN末端とC末端に相当する箇所をプライマー配列番号27（U910:caccATGGAGGTGTTCTTCCTCTC）と配列番号28（U911:CTATGGTTTGCGAGGATGGA）、で、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社製 PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクター（Invitrogen社）へクローニングした。得られた8個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号13であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号5）は、GenBankに登録されているXM_002268434.1のアミノ酸配列に対して100％の同一性を有していた。CYP716A12のアミノ酸配列に対しては75.3％の同一性を有していた。このベクターをpTOPO-PSGrapeとした。

ビートについては、デトロイトダークレッド（タキイ種苗社）の種子を市販の培養土に播種後、一週間後の全草を液体窒素にて破砕した。RNAの抽出はRNeasy（キアゲン社）で行い、全cDNAの合成はスーパースクリプト ファーストストランド システム（インビトロジェン社）を用いて行った。（実施例14）のN末端とC末端に相当する箇所をプライマー配列番号29（U908:caccATGGAGCTCTTCTTCCTTT）と配列番号30（U909:TTAAGCAGCAACAATTTGAGGAT）、で、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社製 PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクター（Invitrogen社）へクローニングした。得られた8個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号14であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号6）は、CYP716A12のアミノ酸配列に対しては71.2％の同一性を有していた。このベクターをpTOPO-PSBeetとした。

オリーブについては、品種ネバディロブロンコの葉を液体窒素にて破砕した。RNAの抽出はRNeasy（キアゲン社）で行い、全cDNAの合成はGeneRacer^TM キット（インビトロジェン社）を用いて行った。（実施例14）の一部配列からプライマー(配列番号31 U912:ATTCCCCAGGAGCTTTTGAT)とGeneRacer^TM キット付属の5’raceプライマーを用いてN末端配列を決定した。N末端とC末端に相当する箇所をプライマー配列番号32（U916:caccATGGAGTTCTTCTATGTCTCTCTTC）と配列番号33（U907: TTAAGCATTAAGGGGATAAAGAC）、で、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社製 PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクター（Invitrogen社）へクローニングした。得られた８個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号15であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号7）は、CYP716A12のアミノ酸配列に対しては78.0％の同一性を有していた。このベクターをpTOPO-PSOliveとした。

コーヒーについては、品種ブルーマウンテンの葉を液体窒素にて破砕した。RNAの抽出はRNeasy（キアゲン社）で行い、全cDNAの合成はGeneRacer^TM キット（インビトロジェン社）を用いて行った。（実施例14）の一部配列からプライマー(配列番号34 U914:CGCTCACAAACAATCTGGAA)とGeneRacer^TM キット付属の5’raceプライマーを用いてN末端配列を決定した。N末端とC末端に相当する箇所をプライマー配列番号35（U917:caccATGGAGTTTTTCTATGTCTCTTTG）と配列番号36（U906: TTAGGCCTTGTGTGGAAAAA）で、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社製 PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクター（Invitrogen社）へクローニングした。得られた８個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号16であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号8）は、CYP716A12のアミノ酸配列に対しては71.3％の同一性を有していた。このベクターをpTOPO-PSCoffeeとした。

OSC1とCYP716A12相同遺伝子を同時発現する形質転換酵母の作製
実施例15で作製した、各４つのプラスミド（pTOPO-PSGrape, pTOPO-PSBeet, pTOPO-PSOlive, pTOPO-PSCoffee）とpELC-MCS2-GWとをそれぞれ混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（Invitrogen社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）により、それぞれをpELC-MCS2-GWに移し替えることでLjCPR1とそれぞれの遺伝子の同時発現ベクターpELC-Grape, pELCBeet, pELC-Olive, pELC-Coffeeを得た。実施例8と同様に、酵母INVSc1株をpYES3-ADH-OSC1で形質転換し、続いて、得られた形質転換酵母をpELC-Grape、pELCBeet、pELC-Olive、またはpELC-Coffeeで形質転換した。

形質転換酵母（pYES3-ADH-OSC1とpELC-Grape、pYES3-ADH-OSC1とpELC-Beet、pYES3-ADH-OSC1とpELC-Olive、pYES3-ADH-OSC1とpELC-Coffee）における生成物の確認
pYES3-ADH-OSC1、pELC-CYP716A12の２つのベクターを保持する酵母について、実施例10に示した方法により培養、抽出ならびに、抽出物の分析を行なった。pYES3-ADH-OSC1とpELC-Grape、pYES3-ADH-OSC1とpELC-Beet、pYES3-ADH-OSC1とpELC-Olive、pYES3-ADH-OSC1とpELC-Coffeeの各々２つのベクターを保持する４種の酵母の抽出物（図６〜図9、OSC1/LjCPR1/Grape、OSC1/LjCPR1/Beet、OSC1/LjCPR1/Olive、OSC1/LjCPR1/Coffeeと示したGCチャート）からは、β-アミリン（点線矢印）に加えて、特異的な2本のピーク（ピーク１とピーク2）が検出された。その内、ピーク2のマススペクトルはオレアノール酸の標品のマススペクトルと非常に良く一致し、ピーク2はオレアノール酸に相当することが判明した。ピーク1はマススペクトルパターンから、β-アミリンの28位が水酸化されたエリトリジオールであった。

以上の結果から、オレアノール酸を蓄積するブドウ、ビート、オリーブから得られたCYP716A12の相同遺伝子産物は、β-アミリン合成酵素（OSC1）を発現する酵母において生じるβ-アミリンの28位のメチル基をカルボキシル基に変換し、オレアノール酸を生成し得ることが明らかとなった。その活性はタルウマゴヤシの遺伝子よりもはるかに高活性であることも示すことができた。一方、五環系トリテルペン化合物であるウルソール酸を蓄積するコーヒーでもβ-アミリンの28位のメチル基をカルボキシル基に変換し、オレアノール酸を生成し得ることが明らかとなった。

ブドウ組織での遺伝子発現解析
ブドウ品種「キャンベル ベリーA」の葉と果皮(CTAB)を用いて全RNAを抽出した。cDNAはSuperScript IIIファーストストランド合成システム（インビトロジェン）で合成した。ブドウのオレアノール酸合成酵素遺伝子である配列番号13に基づいてプライマー（CACTTTCTGGCTAGCTTGCCG（配列番号37）:U919とCATGAATATCTCATCTTTTG（配列番号38）:U920)を作製しRT-PCR（条件：95℃5分、(95℃30秒、55℃30秒、72℃3分)を25回、72℃5分）を行った。ブドウにおいてオレアノール酸は果皮に対して葉ではその含量が1/10以下であることが知られている（GRNCAREVICとRADLER (1971) A review of the surface lipids of grapes and their importance in the drying process. Am. J. Enol. Vitic. 22 : 80-86.）。図10に示すように果皮では葉に対してのオレアノール酸合成酵素遺伝子の発現が高いことがわかった。このようにオレアノール酸含量の高い組織の同定が遺伝子の発現解析で可能であり、オレアノール酸化合物と組成との相関を解析することで、組織含量の増加のみならず、品種評価、QTLなどの遺伝子解析が可能になり、遺伝子発現マーカーを作製することができることが示された。

ウラルカンゾウ由来ルペオール合成酵素（GuLUS）遺伝子cDNAの酵母発現ベクターpYES-ADH-GuLUSの構築
最初に、ウラルカンゾウ由来ルペオール合成酵素（GuLUS1）遺伝子の導入に使用したpYES3/CT(AUR)-Gateway-1ベクターを以下に示す方法により作製した。

pAUR123（TaKaRa社）の5968番から6959番塩基（PADH1からTADH1領域）を配列番号39（GGATGATCCACTAGTGGATCCTCTAGCTCCCTAACATGTAGGTGG）及び配列番号40（TAATGCAGGGCCGCAGGATCCGTGTGGAAGAACGATTACAACAGG）の両プライマーを用いて、KOD-Plus-DNAポリメラーゼ(TOYOBO社)により94℃で２分間処理した後、（94℃20秒間→55℃40秒間→68℃90秒間）×20サイクルからなるPCRを行った。その後、68℃で２分間保温した。また、pYES3/CT（Invitrogen社）の１番から960番塩基(PGAL1からCYC1TT)を除く領域を配列番号41（TGCGGCCCTGCATTAATGAATCGGCCAACG）及び配列番号42（ACTAGTGGATCATCCCCACGCGCCCTGTAG）の両プライマーを用いてKOD-Plus- DNAポリメラーゼ(TOYOBO社)により前記と同様にPCRを行った。両PCR産物をIn-Fusion Dry-Down PCR Cloning Kit（clontech社）を用いて結合し、pYES3/CT(AUR)ベクターを得た。得られたpYES3/CT(AUR)ベクターを制限酵素SmaIで切断し、Gateway Vector Conversion System Reading frame B (Invitrogen社)と連結することでpYES3/CT(AUR)-Gateway-1ベクターを構築した。

次に、ウラルカンゾウ（G.uralensis）のストロンからトータルRNAを調製した。得られたトータルRNAを1μg用いて、SMART RACE cDNA amplification kit (Clontech社)を用いて添付のプロトコルに従いファーストストランドcDNA合成を行った。得られたファーストストランドcDNA各2μlを鋳型として、スペインカンゾウから単離されていたルペオール合成酵素遺伝子のmRNA配列（AB116228、Hayashiら2004 Biol. Pharm. Bull. 27: 1086-1092）の５’の非翻訳領域および翻訳終止コドンを含む箇所に設計したPCRプライマー配列番号43（5’側＝CACCGTACTACTAGGCGAGGCAATTAAAGCG）と配列番号44（3’側＝TGGTCAATAACTGTGAGCACACAAGACT）を用いて、アニール温度53℃でPCR（30サイクル、TOYOBO社製 KOD plus ver.2 polymeraseを使用）を行った。なお、pENTR^TM/D-TOPOエントリーベクター（Invitrogen社）へのクローニングの際に必要であることから、配列番号追加1のプライマーには、5’末端に４塩基（cacc）が人工的に付加されている。PCRの結果増幅された約2.3kbのDNA断片をpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクターにクローニング（エントリークローンの作製）し、得られた３個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号45であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号46）は、スペインカンゾウのルペオール合成酵素のアミノ酸配列に対して99％の同一性を有していた。

ウラルカンゾウ由来ルペオール合成酵素（GuLUS）遺伝子を有するプラスミド（エントリークローン）とpYES3/CT(AUR)-Gateway-1ベクターとを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（Invitrogen社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）により、配列番号追加3で示すＤＮＡ断片をpYES3/CT(AUR)-Gateway-1に移し替えることでウラルカンゾウGuLUS遺伝子酵母発現ベクターpYES3-ADH-LUSを得た。

GuLUSとCYP716A12、GuLUSとブドウ、ビート、オリーブ、コーヒーから得られたCYP716A12の相同遺伝子を同時発現する形質転換酵母の作製と形質転換酵母（pYES3-ADH-LUSとpELC-CYP716A12, pELC-Grape, pELC-Beet, pELC-Olive, pELC-Coffee）における生成物の確認
実施例８と同様に、酵母INVSc1株をpYES3-ADH-LUSで形質転換し、続いて、得られた形質転換酵母をpELC-CYP716A12, pELC-Grape, pELC-Beet, pELC-Olive, pELC-Coffeeで形質転換し、GuLUSとCYP716A12、GuLUSとブドウ、ビート、オリーブ、コーヒーから得られたCYP716A12の相同遺伝子を同時発現する形質転換酵母を得た。これらの２つのベクターを保持する酵母について、実施例１０に示した方法により培養、抽出ならびに、抽出物の分析を行なった。pYES3-ADH-LUS及びpELC-CYP716A12の２つのベクターを保持する酵母の抽出物（図１２、LUS/CPR/CYP716A12と示したGCチャート）からは、ルペオール（点線矢印）に加えて、特異的な2本のピーク（ピーク１、ピーク2）が検出された。その内、ピーク１のマススペクトルはベツリンの標品のマススペクトルと非常に良く一致した。これにより、ピーク１は、ベツリンに相当することが判明した。また、ピーク2のマススペクトルはベツリン酸の標品のマススペクトルと非常に良く一致した。これにより、ピーク2は、ベツリン酸に相当することが判明した。

一方、pYES3-ADH-LUS及びpESC-LjCPR1の２つのベクターを保持する酵母の抽出物（図12、LUS/CPRと示したGCチャート）からはルペオール（点線矢印）は検出されたがピーク１、ピーク2に相当する化合物は検出されなかった。同様にタルウマゴヤシのCYP716A12の代わりにブドウ(図１３)、ビート（図１４）、オリーブ(図１５)、コーヒー(図１６)から得られたCYP716A12の相同遺伝子でもベツリン（ピーク１）とベツリン酸（ピーク２）が得られた。以上の結果から、CYP716A12および相同遺伝子は、ルペオール合成酵素（LUS）を発現する酵母において生じるルペオールの２８位のメチル基をカルボキシル基に変換し、ベツリン酸を生成し得ることが明らかとなった。

オリーブ由来αアミリン合成酵素（OeOEA）遺伝子cDNAの酵母発現ベクターpYES-ADH-OeOEAの構築
αアミリンのみを生成する遺伝子は知られていない。しかし我々はSaimaruらの報告(Chem. Pharm. Bull. 55 :784-788 (2007))から、当該遺伝子は、主にαアミリンを生成することを読み取り本遺伝子を使うこととした。(実施例１５)で得られた得られたファーストストランドcDNAを鋳型として、同論文からN末端とC末端に相当する箇所をプライマー配列番号47（U921:caccATGTGGAAGCTTAAGATTGCTG）と配列番号48（U922: TTACAGGCTTTGAGATGACCA）、で、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社製 PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR^TM/D-TOPOエントリーベクター（Invitrogen社）へクローニングした。得られた８個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号49であり、それから推定されるポリペプチド配列（配列番号50）は、同論文のアミノ酸配列に対しては99.7％の同一性を有していた。

オリーブ由来αアミリン合成酵素（OeOEA）遺伝子を有するプラスミド（エントリークローン）とpYES3/CT(AUR)-Gateway-1ベクターとを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（Invitrogen社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）により、配列番号追加3で示すＤＮＡ断片をpYES3/CT(AUR)-Gateway-1に移し替えることでオリーブOeOEA遺伝子酵母発現ベクターpYES3-ADH-OEAを得た。

OeOEAとCYP716A12、GuLUSとブドウ、ビート、オリーブ、コーヒーから得られたCYP716A12の相同遺伝子を同時発現する形質転換酵母の作製と形質転換酵母（pYES3-ADH-OEAとpELC-CYP716A12, pELC-Grape, pELCBeet, pELC-Olive, pELC-Coffee）における生成物の確認
実施例８と同様に、酵母INVSc1株をpYES3-ADH-OEA, pELC-Grape, pELC-Beet, pELC-Olive, pELC-Coffeeで形質転換し、続いて、得られた形質転換酵母をpELC-CYP716A12で形質転換し、OeOEAとCYP716A12、GuLUSとブドウ、ビート、オリーブ、コーヒーから得られたCYP716A12の相同遺伝子を同時発現する形質転換酵母を得た。これらの２つのベクターを保持する酵母について、実施例１０に示した方法により培養、抽出ならびに、抽出物の分析を行なった。pYES-ADH-OeOEA及びpELC-CYP716A12の２つのベクターを保持する酵母の抽出物（図１８、CPR/aAS/CYP716A12と示したGCチャート）からは、αアミリン（点線矢印）に加えて、特異的な2本のピーク（ピーク１、ピーク2）が検出された。その内、ピーク１のマススペクトルはウバオールの標品のマススペクトルと非常に良く一致した。これにより、ピーク１は、ウバオールに相当することが判明した。また、ピーク2のマススペクトルはウルソール酸の標品のマススペクトルと非常に良く一致した。これにより、ピーク2は、ウルソール酸に相当することが判明した。

一方、pYES-ADH-OeOEA及びpESC-LjCPR1の２つのベクターを保持する酵母の抽出物（図12、CPR/aASと示したGCチャート）からはαアミリン（点線矢印）は検出されたがピーク１、ピーク2に相当する化合物は検出されなかった。同様にタルウマゴヤシのCYP716A12の代わりにブドウ(図１９)、ビート（図２０）、オリーブ(図２１)、コーヒー(図２２)から得られたCYP716A12の相同遺伝子でもウバオール（ピーク１）とウルソール酸（ピーク２）が得られた。以上の結果から、CYP716A12および相同遺伝子は、αアミリン合成酵素（aAS）を発現する酵母において生じるαアミリンの２８位のメチル基をカルボキシル基に変換し、ウルソール酸を生成し得ることが明らかとなった。

比較例１

ブドウからのオレアノール酸合成遺伝子候補の特定
実施例１８のとおりブドウではオレアノール酸は果皮に多く含まれている。果皮のESTデータベースとして前述のDCFI(Release 7.0 (April 17, 2010))にはGreen Grape Skin Triplex2 Library (326 EST) 、Ripe Grape Skin Triplex2 Library (588 EST)、Green Grape Berry Skins Lambda Triplex2 Library (226 EST)、Ripe Grape Berry Skins Lambda Triplex2 Library (79 EST)が登録されている。この中からはP450として考えられる遺伝子断片、さらにはCYP716A16に相同な遺伝子は見出すことはできなかった。

本発明の２８位酸化酵素及びそれをコードする遺伝子を用いる、薬理活性のある五環系トリテルペン化合物の生産方法は、天然からの抽出法に比べて大量生産を可能にするため有用である。

配列番号１７〜４４、４７、４８： プライマー

Claims (9)

1. 形質転換体の培養物または該培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、および基質としての五環系トリテルペンまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を採取する、２８位にメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体の製造法であって、
   該形質転換体が、以下の（ａ）〜（ｅ）：
   （ａ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするＤＮＡ；
   （ｂ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ；
   （ｃ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＰ４５０のＤＮＡ；
   （ｄ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列を含むＤＮＡ；および
   （ｅ） 配列番号１０〜１６のいずれかに示す塩基配列と７０％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質をコードするＰ４５０のＤＮＡ、
   からなる群から選択されるＤＮＡを含有する組換え体ＤＮＡを含む形質転換体であり、
   該誘導体は、五環系トリテルペン化合物の、１位、２位、１１位、１２位、２９位および３０位から選択される１つ以上の水素原子が、メチル、エチル、プロピル、ブチル、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素、水酸基、アセトキシ、プロパノイルオキシ、ホルミル、アセチル、プロピオニル、メトキシ、エトキシ、プロポキシ、アミノ基、メチルアミノ、ジメチルアミノ、エチルアミノ、アミド基、アセタミド、オキソ基、シアノ基、ニトロ基、メチルチオ、エチルチオ、メシルおよび／またはエチルスルホニルで置換されており、ならびに／あるいは２８位カルボキシル基がアルキルエステル化またはアルキル−もしくはジアルキル−アミド化されており、１位、２位、１１位、１２位、２９位および３０位が水酸基で置換されている場合と２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である場合、該水酸基、該ヒドロキシメチル基および該カルボキシル基から選択される１つ以上にブドウ糖が付加されていてもよい、製造法。
2. 形質転換体が微生物または植物を宿主として得られる形質転換体である、請求項１記載の製造法。
3. 微生物が酵母である、請求項２記載の製造法。
4. 培養物の処理物が、培養物の濃縮物、培養物の乾燥物、培養物を遠心分離して得られる菌体、該菌体の乾燥物、該菌体の凍結乾燥物、該菌体の界面活性剤処理物、該菌体の超音波処理物、該菌体の機械的摩砕処理物、該菌体の溶媒処理物、該菌体の酵素処理物、該菌体の蛋白質分画物、該菌体の固定化物あるいは該菌体より抽出して得られる酵素標品であることを特徴とする、請求項１〜３のいずれかに記載の製造法。
5. タンパク質および基質としての五環系トリテルペンまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体を採取する、２８位にヒドロキシメチル基またはカルボキシル基を有する五環系トリテルペンまたはその誘導体の製造法であって、
   該タンパク質が、以下の（ａ）〜（ｃ）：
   （ａ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
   （ｂ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質；および
   （ｃ） 配列番号２〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換する活性を有するタンパク質、
   からなる群から選択されるタンパク質であり、
   該誘導体は、五環系トリテルペン化合物の、１位、２位、１１位、１２位、２９位および３０位から選択される１つ以上の水素原子が、メチル、エチル、プロピル、ブチル、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素、水酸基、アセトキシ、プロパノイルオキシ、ホルミル、アセチル、プロピオニル、メトキシ、エトキシ、プロポキシ、アミノ基、メチルアミノ、ジメチルアミノ、エチルアミノ、アミド基、アセタミド、オキソ基、シアノ基、ニトロ基、メチルチオ、エチルチオ、メシルおよび／またはエチルスルホニルで置換されており、ならびに／あるいは２８位カルボキシル基がアルキルエステル化またはアルキル−もしくはジアルキル−アミド化されており、１位、２位、１１位、１２位、２９位および３０位が水酸基で置換されている場合と２８位がヒドロキシメチル基またはカルボキシル基である場合、該水酸基、該ヒドロキシメチル基および該カルボキシル基から選択される１つ以上にブドウ糖が付加されていてもよい、製造法。
6. 基質としての五環系トリテルペンが、βアミリン、αアミリン又はルペオールである、請求項１〜５のいずれか１項に記載の製造法。
7. 以下の（ａ）〜（ｅ）からなる群から選択されるＤＮＡ：
   （ａ） 配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするＤＮＡ；
   （ｂ） 配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換するタルウマゴヤシの遺伝子よりも高い活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ；
   （ｃ） 配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換するタルウマゴヤシの遺伝子よりも高い活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ；
   （ｄ） 配列番号１４〜１６のいずれかに示す塩基配列からなるＤＮＡ；および
   （ｅ） 配列番号１４〜１６のいずれかに示す塩基配列と９０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換するタルウマゴヤシの遺伝子よりも高い活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。
8. 以下の（ａ）〜（ｃ）からなる群から選択されるタンパク質：
   （ａ） 配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列からなるタンパク質；
   （ｂ） 配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換するタルウマゴヤシの遺伝子よりも高い活性を有するタンパク質；および
   （ｃ） 配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ、五環系トリテルペンの２８位のメチル基をヒドロキシメチル基またはカルボキシル基に変換するタルウマゴヤシの遺伝子よりも高い活性を有するタンパク質。
9. 請求項８に記載のタンパク質を含む、五環系トリテルペンの２８位のメチル基のヒドロキシメチル基またはカルボキシル基への変換用組成物。

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