JP6322872B2 - 非シアル化抗炎症ペプチド - Google Patents
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Description
本出願は、2011年12月19日に出願された米国仮出願第61/577,361号の優先権を主張する。前記出願の内容はその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本明細書に開示された発明は、少なくとも一部は、国立衛生研究所からの助成金番号NIH AI035875の下で政府の支援を受けて完成された。従って、米国政府は本発明において一定の権利を有する。
本発明は、抗炎症剤、組成物、および炎症性疾患を治療するための方法に関する。
自己免疫疾患を含む炎症性疾患は、白血球の異常な活性化およびその後の身体の患部への移動を伴う疾患である。これらの症状は、世界中の何百万人もの人々の生活に影響を与える広範囲の病気を包含する。様々な治療法が現在利用可能であるが、多くはかなりの副作用を持っているか、または全ての症状を緩和するほど十分に有効ではない。したがって、炎症性疾患を治療するための抗炎症剤に対する要求、およびそのような薬剤を同定し評価する方法に対する要求が存在する。
本発明は、炎症性疾患、例えば、自己免疫疾患を治療するためのポリペプチドおよび抗体のような薬剤、および方法に関する。
本発明は、少なくとも部分的には、非シアル化IgG Fc変異体(variants)が抗炎症活性を付与し、抗炎症性メディエーターとして2,6シアル化Fcの効果を模倣するという予想外の発見に基づく。
IgGは、主要な血清免疫グロブリンである。2つの同一の重鎖および2つの軽鎖からなる糖タンパク質であり、可変および定常ドメインで順番に構成される。IgGは、その2つの重鎖のそれぞれの上のCH2ドメイン内のAsn297において単一のN−結合グリカンを含む。共有結合した複合糖質は、N−アセチルグルコサミン(GlcNAc)およびマンノース(man)を含むコア、二分岐ペンタ−多糖で構成されている。フコース、分岐したGlcNAc、ガラクトース(gal)および可変的に見出される末端シアル酸(sa)部分の存在により、コア糖質構造のさらなる改変が血清抗体で観察される。40を超える異なる糖型が、このように、この単一のグリコシル化部位に共有結合されていることが検出されている(フジイら,J.Biol.Chem. 265,6009,1990)。IgGのグリコシル化は、2つの重鎖の開いたコンフォメーションを維持することによって、すべてのFcyRへの結合に必須であることが示されている。ジェフリーズ(Jefferis)とルンド(Lund),Immune.1 Lett. 82,57(2002)、 ソンダーマン(Sondermann)ら,J.Mol.Biol. 309,737(2001)。FcyR結合のためのこのIgGグリコシル化は、脱グリコシル化IgG抗体が、ADCC、食作用(phagocytosis)および炎症性メディエーターの放出などのインビボにおいて誘発される炎症反応を媒介することができないことについての主要因であると考えられている。ニマージャーン(Nimmerjahn)とラヴェッチ(Ravetch), Immunity 24,19(2006)。IgGの個々の糖型は炎症反応を調節することに寄与し得るというさらなる所見が、フコースを含むまたは欠くIgG抗体について報告された個々のFcyRに対する変化した親和性、および細胞毒性に対するそれらの結果的な影響によって、示唆されている。シールズ(Shields)ら,J.Biol.Chem. 277,26733(2002)、 ニマージャーン(Nimmerjahn)とラヴェッチ(Ravetch), Science 310,1510(2005)。自己免疫状態とIgG抗体の特定のグリコシル化パターンとの間の関連性が、IgG抗体の減少したガラクトシル化およびシアル化が報告されている関節リウマチおよびいくつかの自己免疫血管炎(vasculities)を有する患者において、観察されている。パレク(Parekh)ら,Nature 316,452(1985)、 ラーデマッヘル(Rademacher)ら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91,6123(1994)、 マツモトら,128,621(2000)、 ホランド(Holland)ら,Biochim.Biophys.Acta,12月27日。IgG糖型の多様性はまた、加齢および免疫化の際に関連することが報告されているが、これらの変化のインビボでの重要性は究明されていない。シカタら,Glycoconj.J.15,683(1998)、 ラストラ(Lastra)ら,Autoimmunity 28,25(1998)。
ポリペプチド
本明細書に開示されるように、本発明は、上記のAsn297でのα2,6結合を介してガラクトース部分に接続された末端シアル酸を有する多糖鎖を欠く、ヒトIgG Fcの変異体の配列を有する単離されたポリペプチドを提供する。このような非シアル化IgG Fc変異体は、天然に存在する抗体に由来するか、または細胞株において発現されてもよい。
本発明の別の態様は、上述のポリペプチドまたはタンパク質をコードする配列を含む単離された核酸を特徴とする。核酸は、DNA分子(例えば、cDNAまたはゲノムDNA)、RNA分子(例えば、mRNA)、またはDNAもしくはRNAの類似体(analog)を指す。DNAまたはRNA類似体は、ヌクレオチド類似体から合成され得る。核酸分子は一本鎖または二本鎖であり得るが、好ましくは二本鎖DNAである。「単離された核酸」は、天然に存在する核酸のいずれのものまたは天然に存在するゲノム核酸のいずれの断片とも相同ではない構造の、核酸を意味する。従って、この用語は、例えば、(a)DNAは、天然に存在するゲノムDNA分子の一部の配列を有するが、天然に存在する生物のゲノム中の分子のその部分に隣接する(flank)コード配列の両方によって、隣接されていない;(b)結果として得られる分子がいずれの天然に存在するベクターまたはゲノムDNAとも相同でないような方法で、ベクター中または原核生物もしくは真核生物のゲノムDNAに組み込まれた核酸;(c)cDNA、ゲノム断片、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって生成された断片または制限断片などの、分離された(separate)分子;および(d)ハイブリッド遺伝子、すなわち融合タンパク質をコードする遺伝子、の一部である組換えヌクレオチド配列である。上記の核酸は、本発明の融合タンパク質を発現するために使用され得る。この目的のためには、発現ベクターを作り出すため、適切な調節配列に作動的に核酸を連結することができる。
適切な担体および非シアル化IgG Fc変異体のような上記の薬剤の1つ以上を含有する組成物は、本発明の範囲内である。組成物は、薬学的に許容される担体を含有する医薬組成物、または化粧品として許容される担体を含有する化粧品組成物であり得る。
記載された発明は、被験体における炎症性疾患を治療するための方法を提供する。用語「炎症性疾患」は、自己免疫疾患などの異常なまたは望ましくない炎症により特徴づけられる疾患を指す。自己免疫疾患は、非活性化条件下での免疫細胞の慢性的活性化によって特徴付けられる疾患である。例としては、乾癬、炎症性腸疾患(例えば、クローン病および潰瘍性大腸炎)、関節リウマチ、乾癬性関節炎、多発性硬化症、狼瘡、I型糖尿病、原発性胆汁性肝硬変、および移植が挙げられる。
この実施例では、実施例2〜7に用いられる一般的な方法および材料について説明する。
野生型C57BL/6マウスは、ジャクソン研究所(Jackson Laboratories)から購入された。SIGNR1−/−マウスは、A.マッケンジー(McKenzie)によって提供された。CD11c−DC−SIGN+トランスジェニックマウスは、T.スパーワッセル(Sparwasser)によって提供された。SIGNR1−/−バックグラウンドでのhDC−SIGN BACトランスジェニックマウスは、以前に説明したように発明者らの研究室で作り出された。KRN TCR C57BL/6マウス(D.マティス(Mathis)およびC.ベノア(Benoist)からの贈り物)は、K/BxNマウスを作り出すために、NODマウスと交配させられた。K/BxNマウス(6〜12週齢)からの血液が採取され、関節炎抗体を含む血清は一緒にプールされた。ナイーブマウス(8〜12週齢)への静脈内注射による200μL K/BxN血清の受動輸送は、関節炎を誘導した。炎症は、各脚について0〜3でスコア化され、マウス個体あたりの総臨床スコアために一緒に加算された。
IDEC−114、全長ヒトIgG1モノクローナル抗体の組換え源は、FabおよびFc断片を切断するため、37℃で一晩パパインにより消化された。消化後、反応は、2.5mg/mLヨードアセトアミド添加によって停止させられた。未消化の抗体から切断された断片を分離するため、試料は、HiPrep26/60 S−200HRサイズ排除カラム(GEヘルスケア)を通過させられた。Fc断片は、その後、プロテインGアガロースビーズで精製された。試料純度は、SDS−ポリアクリルアミドゲルのクーマシーブリリアントブルー染色により確認された。あるいは、組換えFcは、293T細胞へのヒトIgG1 Fc発現プラスミドの一過性発現によって産出され、続けて上清画分の硫酸アンモニウム沈殿およびプロテインG精製が行われた。ヒトIgG1のFc領域をコードする遺伝子配列は、標準PCRプロトコルによって4−4−20IgG1から増幅され、pSecTag2(インビトロジェン)にライゲーションされた。点突然変異が標準的な部位特異的突然変異誘発技術によってFcコード配列に導入され、DNAシーケンシングにより確認された。241位におけるPheからAlaへの置換(FA241)のためのPCRプライマーは
精製後、10〜50mg/mL Fc断片は、ガラクトシル化反応緩衝液(50mM MOPS、pH7.2;20mM MnCl2)にバッファー交換され、50mg UDP−ガラクトースおよび0.75U β1,4−ガラクトース転移酵素と共に37℃で一晩インキュベートされた。ガラクトシル化は、末端ガラクトース残基を認識するため、ECLを用いたレクチンブロットによって確認された。ガラクトシル化Fcは次に、シアル化反応緩衝液(100mM MOPS、0.2mg/mL BSA、0.5%TRITON X−100、pH7.4)にバッファー交換され、50mg CMP−シアル酸および0.75U α2,6−シアル酸転移酵素と共に37℃で一晩インキュベートされた。シアル化は、α2−6結合を有する末端シアル酸残基を認識するSNAを用いたレクチンブロットによって確認された。
骨髄細胞がDC−SIGNtgまたはSIGNR1−/−マウスの脛骨および大腿骨から流出され、10%FBS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、IL−3(5ng/mL、ペプロテック)およびM−CSF(5ng/mL、ペプロテック)が補充されたRPMI1640増殖培地で、非組織培養処理された10−cmプレート中に播種された。37℃での一晩インキュベーション後、非接着細胞が回収され、IL−3/M−CSF補充RPMI増殖培地を入れた非組織培養処理された10−cmプレートに移され、37℃で5〜7日間培養された。成熟したマクロファージはトリプシン処理され、6−ウェルプレートに2×106細胞/ウェルの密度で播種され、一晩付着させられた。翌日、マクロファージは、表示された(indicated)組換えFc調製物と共に、37℃で30分間パルスされた(pulsed)。細胞は回収され、冷PBSで洗浄され、1×106細胞が野生型C57BL/6マウスへ静脈内投与された。注射一時間後、レシピエントマウスは、K/BxN血清を負荷された(challenged)。
ヒトDC−SIGNの細胞外ドメイン(ECD)のcDNA配列を含むプラスミドは、K.ドリッカマー(Drickamer)によって提供された。DC−SIGN ECDをコードする配列は、標準的なPCR技術によりN末端strepタグを導入するために改変され、pET28b(+)にライゲーションされた。pET28b−strepDCSIGNは大腸菌株BL21/DE3に形質転換され、細菌培養物がOD600 0.7〜0.8に達するまで、37℃で3LのTB増殖培地中で増殖させられた。タンパク質発現が100mg/LのIPTGの添加によって誘導され、培養物は37℃で3.5時間インキュベートされた。細菌は、4℃で10分間4000xgの遠心分離によってペレット化された。細菌ペレットは、10mMトリス−HCl、pH7.8の中に再懸濁され、超音波処理により溶解させられた。封入体は、4℃で15分間10,000xgの遠心分離によってペレット化され、100mLの6Mグアニジン−HCl;100mMトリス−HCl、pH7.8;0.2%TRITON X−100に溶解させられた。粒子状物質は4℃で30分間20,000xgの遠心分離によって除去され、上清画分は250mM NaCl;25mMトリス−HCl、pH7.8;25mM CaCl2に対して透析された。透析後、不溶性の沈殿物が4℃で30分間20,000xgの遠心分離によって除去され、上清画分は、strepタグ化DC−SIGN ECDをプルダウンするためにstrep−tactin樹脂(ノバジェン)に適用された。結合したタンパク質は、製造業者(ノバジェン)によって供給される溶出緩衝液で樹脂から溶出させられた。画分はSDS−PAGEによって分析され、陽性画分は混合され、活性受容体を選択するためにマンノース−アガロースカラム上にロードされた。DC−SIGN ECDは、250mM NaCl;25mMトリス−HCl、pH7.8;5mM EDTAで溶出された。画分は、SDS−PAGEにより分析された。
可溶性hDC−SIGNまたはhFcγRへの種々の組換えFc調製物の相互作用を測定するため、定常状態親和性測定(steady−state affinity measurements)が、ビアコアT100センサーで記録された。NaOAc pH5.0中で20〜50μg/mLに希釈された受容体は、標準的なアミンカップリングにより、高密度(2000RU)でCM5チップ上に固定化された。hDC−SIGNの相互作用については、インジェクションは、pH9.0に調整され2mM CaCl2および500mM NaClが補充された市販のHBS−P+緩衝液により、20μL/分の流速で行われた。hFcγR相互作用については、インジェクションは、市販のHBS−EP+緩衝液により、20μL/分の流速で行われた。表面は、50mM NaOHの短いパルスにより再生された。Kd値は、ビアコア評価(Biacore Evaluation)ソフトウェアを用いて対照フローセルへのバックグラウンド結合を差し引いた後に算出された。
総RNAは、RNeasyミニキット(キアゲン)を用いて骨髄由来マクロファージから抽出された。1μgの総RNAが、OneStep RT−PCRキット(キアゲン)を用いたRT−PCRによりIL−33 mRNA発現を分析するために、用いられた。GAPDHの発現が、ローディングコントロールとしての役割を果たした。mIL−33についてのPCRプライマーは、5’−gaagatcccaacagaagacc−3’(配列番号:6)および5’−ttccggaggcgagacgtcac−3’(配列番号:7);であり、ならびに、mGAPDHについてのPCRプライマーは、5’−gccgcctggagaaacctgc−3’(配列番号:8)および5’−tgaggtccaccaccctgttg−3’(配列番号:9)であった。PCR条件は、94℃、30秒間;55℃、30秒間、;72℃、60秒間×35サイクル(IL−33)または25サイクル(GAPDH)であった。
IVIG調製物中の抗体の少数集団(minor population)が、自己抗体により誘導される炎症を抑制する。これらの抗体はFcグリカン上に末端α2,6−結合シアル酸を含み、辺縁帯マクロファージ上のSIGNR1、またはそのヒト相同分子種、骨髄細胞上のDC−SIGNに結合することによって、抗炎症反応を媒介する。
Asn297に接続するコアオリゴ糖は、Fcのアミノ酸骨格と広範な非共有結合相互作用を形成する。コアグリカンに接続した異なる糖残基によってもたらされるFcのコンフォメーション変化は、これらのタンパク質−糖質相互作用によって媒介される。Fc骨格とグリカン残基との重要な接触点を無効にするアラニン置換は、DC−SIGN結合活性を授けるように見える。
FA241およびFA243変異がsFcのDC−SIGN結合活性を模倣するのであれば、これらの変異がインビボでのsFcの抗炎症活性を再現できるのか調べるため、アッセイが実施された。年齢および性別が一致させられたSIGNR1−/−とhDC−SIGN+/SIGNR1−/−マウスは、関節炎K/BxN血清で負荷され、0.033g/kgの有効用量でsFc、FA241、またはFA243で治療された。これまでの知見と一致して、sFcはDC−SIGN+マウスの足底が腫れることを抑制したが、SIGNR1−/−では抑制されなかった。同様に、FA241は、hDC−SIGN+/SIGNR1−/−マウスにおいてsFcのそれに匹敵する抗炎症活性を示した。FA243が投与されたマウスは、関節炎の低下を示さなかった。これらの知見は、F241A変異(FA241)を有する組換えFcが、シアル酸修飾無しで、sFcのDC−SIGN結合および抗炎症活性を再現することを示唆している。
FA241の抗炎症活性についての決定要因を特定するため、CD11c.DC−SIGN+およびSIGNR1−/−マウスからの骨髄由来マクロファージ(ΒΜΜΦ)はFA241または他のFc調製物で刺激され、K/BxN血清で負荷されたWT C57BL/6レシピエントマウスに移植された。
241位でのアラニン置換がFcにおいてコンフォメーション変化を誘導するのであれば、おそらくヒトFcγ受容体に対する親和性が変更される。シアル化がFcγRに対するIgGの親和性を減少させ、結果として、インビボでのADCC活性を減弱させることが、以前に報告された。
sFcは、制御性(regulatory)マクロファージ上のFcγRIIBをアップレギュレートするために、FcεRI+白血球集団、おそらく好塩基球からのIL−4分泌を必要とするTH2−依存性の抗炎症パスウェイを、誘導する。インビボまたはインビトロにおいて、IL−33の投与は、好塩基球を刺激してIL−4の蓄えを放出させる。IL−33 mRNA発現は、sFcまたはIVIGによって処理されたWT C57BL/6マウスの脾臓中でアップレギュレートされるが、SIGNR1−/−マウスではされない。これは、sFcがSIGNR1+またはDC−SIGN+細胞においてIL−33発現を誘導する可能性を示唆している。この実施例においては、アッセイが実施され、FA241によってDC−SIGN+ΒΜΜΦを刺激すると、IL−33発現をアップレギュレートすると思われることを示す。
Claims (19)
- 配列番号:1の配列を含むIgG Fc領域に対して少なくとも90%相同な改変配列を含む単離されたポリペプチドであって、配列番号1のF32(KabatシステムにおけるFc hIgG1のF241)に対応する位置で置換を有し、前記置換はAであり、前記ポリペプチドは配列番号:1の配列を含む非シアル化親ポリペプチドのものよりも高い抗炎症活性を有する、単離されたポリペプチド。
- 前記改変配列はシアル化されていない、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記単離されたポリペプチドがDC−SIGNに結合する能力を有する、請求項1または2に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記単離されたポリペプチドがhFcγRIIAまたはRIIBに結合する能力を有する、請求項1〜3のいずれか1項に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記単離されたポリペプチドが2×10−5M以下のKD(すなわち、5.0×104M−1以上のKA)でhFcγRIIAまたはRIIBに結合する能力を有する、請求項1〜4のいずれか1項に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記改変配列が配列番号:2と少なくとも95%相同である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記改変配列が配列番号:2と少なくとも99%相同である、請求項6に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記改変配列が配列番号:2を含む、請求項7に記載の単離されたポリペプチド。
- 前記改変配列が配列番号:2からなる、請求項8に記載の単離されたポリペプチド。
- 請求項1〜9のいずれか1項に記載の抗炎症活性を有するポリペプチドを作製する方法であって、
IgG Fc領域の配列を有する親ポリペプチドをコードする第1の核酸配列を提供する工程;および
前記改変ポリペプチドが配列番号1のF32に対応する位置で置換を有し、且つ前記IgG Fc領域のシアル化形態の構造を模倣するように、前記第1の核酸配列を改変して改変されたポリペプチドをコードする第二の核酸を得る工程を含み、
前記置換がAである、前記方法。 - 前記親ペプチドが配列番号1を含む、請求項10に記載の方法。
- 請求項10または11に記載の方法によって作製されたポリペプチド。
- 請求項1〜9および12のいずれかに記載の前記ポリペプチドをコードする配列を含む、単離された核酸。
- 請求項13に記載の核酸を含む発現ベクター。
- 請求項13に記載の核酸を含む宿主細胞。
- 前記ポリペプチドの発現を可能にする条件下で培地中でポリペプチドをコードする配列を含む核酸を含む宿主細胞を培養すること、および前記培養した細胞または前記細胞の前記培地から前記ポリペプチドを精製することを含む、請求項1〜9および12のいずれかに記載のポリペプチドを製造する方法。
- (i)請求項1〜9および12のいずれかに記載の前記ポリペプチドまたは請求項13に記載の核酸、ならびに(ii)薬学的に許容される担体、を含む医薬製剤。
- 請求項1〜9および12のいずれかに記載のポリペプチドまたは請求項13に記載の核酸の治療上の有効量を含む、炎症性疾患を治療する薬剤。
- 炎症性疾患を治療するための医薬の製造における、請求項1〜9および12のいずれかに記載のポリペプチドまたは請求項13に記載の核酸の使用。
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