JP6325463B2 - 抗腫瘍活性を有する新規結合分子 - Google Patents
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Description
である。Fynは、59kDaの、Srcファミリーチロシンキナーゼのメンバーである。選択的スプライシングの結果、Fynタンパク質は、キナーゼドメインが異なる2種類のイソ型として存在する。第一の形態は胸腺細胞、脾細胞およびいくつかの血液リンパ細胞株で見られ、第二の形態は主に脳で蓄積する(クック(Cooke)およびペールムッター(Perlmutter)(1989)、新しい生物学(New Biol.)1(1):66〜74)。細胞内タンパク質であるFynの生物学的機能は多様であり、T細胞受容体を介したシグナル伝達、脳機能の制御ならびに接着介在性シグナル伝達を含む(レッシュ(Resh)(1998)国際生物化学・細胞生物学雑誌(Int. J. Biochem. Cell Biol.)30(11):1159〜62)。他のSH3ドメインと同様、FynのSH3は2つの逆平行β−シートから構成されており、他のタンパク質の相互作用するための2つの可動性ループ(RT−Src−ループとn−Src−ループ)を含んでいる。2の可動性ループの配列(RT−Src−ループおよびn−Src−ループと呼ばれている)はそれぞれ、下線および二重下線で示してある。Fyn SH3のアミノ酸配列は、ヒト、マウス、ラットおよびサル(テナガザル)で完全に保存されている。
GVTLFVALYDYX1X2X3X4X5X6X7X8X9X10LSFHKGEKFQILX11X12X13X14X15X16GX17WWX18ARSLTTGEX19GX20IPSX21YVAPVDSIQ(式I)
式中、X1〜X7およびX11〜X13およびX17〜X21はそれぞれ独立してG、V、T、L、F、A、Y、D、S、H、K、E、Q、I、W、R、M、P、NおよびCから、より好ましくはG、V、T、L、F、A、Y、D、S、H、K、E、Q、I、W、R、M、PおよびNから選択され;および
式中、X8〜X10およびX14〜X16はそれぞれ独立してG、V、T、L、F、A、Y、D、S、H、K、E、Q、I、W、R、M、P、NおよびCから、より好ましくはG、V、T、L、F、A、Y、D、S、H、K、E、Q、I、W、R、M、PおよびNから選択され、
または、式中、X8〜X10およびX14〜X16のうちの1つ以上が欠損している。
X1は、T、E、D、Q、Y、V、W、N、S、FまたはKから選択され、
X2は、S、A、RまたはTから選択され、
X3は、Y、R、H、T、N、V、WまたはSから選択され、
X4は、N、D、M、Y、R、P、E、L、H、T、GまたはFから選択され、
X5は、T、S、P、Q、R、K、G、Q、A、D、M、N、L、F、YまたはEから選択され、
X6は、R、M、K、D、F、T、G、H、S、P、N、Q、Y、L、AまたはPから選択され、
X7は、D、G、V、L、H、N、R、F、SまたはAから選択され、
X8は、G、S、E、D、P、Yから選択されるかまたは欠損しており、
X9は、Q、D、S、Hから選択されるかまたは欠損しており、
X10は、から選択されD、Vまたは欠損しており、
X11は、R、K、Q、N、S、G、W、M、H、L、F、E、T、P、A、DまたはVから選択され、
X12は、M、R、E、G、N、D、S、A、Q、F、P、K、Y、T、H、V、LまたはWから選択され、
X13は、E、W、P、R、K、S、V、N、D、H、G、T、Q、A、Y、LまたはMから選択され、
X14は、D、R、Q、S、A、N、P、I、H、T、Y、E、L、K、M、V、I、Wから選択されるかまたは欠損しており、
X15は、G、S、I、L、A、V、T、E、D、Q、R、P、K、M、H、Yから選択されるかまたは欠損しており、
X16は、K、G、R、A、T、V、S、I、E、Q、P、D、N、Hから選択されるかまたは欠損しており、
X17は、V、D、T、IまたはYから選択され、
X18は、E、A、R、TまたはQから選択され、
X19は、T、IまたはVから選択され、
X20は、Y、LまたはFから選択され、
X21は、NまたはSから選択される。
1)組換えHER2タンパク質のファージELISA
配列番号9〜121で示すアミノ酸をコードしているDNAを、グラブロフスキらでFyn SH3ライブラリーに関して記載されているように(グラブロフスキら(2007)JBC、282、3196〜3204頁)、ファージミドベクターpHEN1にクローニングした。ファージの産生は、標準的なプロトコール(ビティ(Viti),F.ら(2000)酵素学の方法(Methods Enzymol.)326、480〜505)に従って実施した。ELISAには、ファージを含有しているモノクローナルな細菌上清を使用した:完全長タンパク質の23〜652番目のアミノ酸を含んでいるHER2のビオチン化細胞外ドメイン(ベンダーメドシステムズから、またはヒトFcγ1との融合体としてR&Dから購入した;ビオチン化は、製造業者の説明に従って、スルホ−NHS−LC−ビオチン(ピアス)を使って行った)をストレプトアビジンでコーティングされているウェル(ストレプタウェル、ハイバインド、ロシュ)に固定化し、PBSに溶解した2%の脱脂粉乳(ラピライト(Rapilait)、ミグロス、スイス)でブロッキングした後、PBSに溶解した10%の脱脂粉乳を20μlと、ファージ上清80μlをアプライした。1時間インキュベートした後、未結合のファージを洗い落とし、結合したファージを抗M13−HRP抗体複合体(GEヘルスケア)で検出した。BMブルーPOD基質(ロシュ)を添加し、1MのH2SO4を添加して反応を停止させることで、ペルオキシダーゼ活性を検出した。ファージELISA陽性クローンを、ストレプトアビジン(ストレプタウェル、ハイバインド、ロシュ)およびヒトIgG(シグマ)に対する交差反応性がないことについて、ファージELISAによって試験した。
配列番号1〜8および配列番号122〜152に示すポリペプチドをコードしているDNAを、グラブロフスキら(グラブロフスキら(2007)JBC、282、3196〜3204頁)に記載されているように、生じる構築物がC末端myc−ヘキサヒスチジンタグ(配列番号162)を保有するように、細菌性発現ベクターのpQE12にサブクローニングした。ポリペプチドを大腸菌のサイトゾル中で発現させ、当初の培養1mlあたり1.8mlの清澄な溶菌液を調製した。ポリペプチドを含有している100μlの清澄な溶菌液を、PBS/1%FCS/0.2%アジ化ナトリウムに溶解した1.25×105個のSKOV−3細胞を含有している100μlの細胞懸濁液と混合した。氷上で60分間インキュベートした後、細胞を洗浄し、結合した配列を、10μg/mlの抗mycマウス抗体9E10(ロシュ)、次いで抗マウスIgG-アレクサ488複合体(インビトロジェン)を用いて検出した。その後、染色された細胞をFACSアナライザー中で解析した。特異的結合剤のDNA配列をDNAの配列決定によって確認した。
Fyn SH3由来HER2結合剤のアミノ酸配列は、配列リストに添付の通り、配列番号1〜152に示している。
Fyn SH3由来クローンC12(配列番号1)およびG10(配列番号2)をコードしているDNA配列を、生じる構築物がC末端myc−ヘキサヒスチジンタグ(配列番号162)を保有するように、細菌性の発現ベクターpQE12にサブクローニングし、2種類の構築物を発現させ、グラブロフスキら(グラブロフスキら(2007)JBC、282、3196〜3204頁)に記載されているように、ヘキサヒスチジンタグの手段によって精製した。
この実験の結果を図1に示す。抗体のいずれかでプレブロッキングすると、対応するビオチン化抗体の結合が劇的に低下した。このことは、2種類の異なる抗体のエピトープが、プレブロッキング工程によって効果的に、かつ、特異的にブロッキングされたことを示している(図1B)。
2種類の異なる結合特異性を有するHER2標的指向化分子を、C12を、グリシン−セリン(Gly4Ser)3リンカーを介して、抗HER2抗体1の軽鎖のN−末端に(COVA208と呼ばれるタンパク質を生じる)または抗HER2抗体2の軽鎖のN−末端に(COVA210と呼ばれる)に融合させることで作成した。
抗HER2抗体1(配列番号154と配列番号155)、抗HER2抗体2(配列番号160および配列番号163)、COVA208(配列番号154と配列番号159)およびCOVA210(配列番号160、配列番号161)を、CHO細胞内で一過的に同時に発現させ、培養上清から、マブセレクトシュアカラム(GEヘルスケア)を使ったアフィニティクロマトグラフィーによって精製した。二価の単一特異性フォーマットのクローンC12を、(Gly4Ser)3を介したヒトFcγ1のC−末端への融合によって作成し、Fc−C12(配列番号153)を得た。抗HER2抗体1、抗HER2抗体2、COVA208およびCOVA210に関して上で記載したのと同様に、タンパク質を発現させ、精製した。
SH3由来結合剤C12をヒトFcγ1のC−末端に繋いだ融合体であるFc−C12は、細胞の生存率にいかなる効果も及ぼさなかった(図2Aおよび2C)。抗HER2抗体1または抗HER2抗体2と組み合わせて添加した場合には、Fc−C12は、これらの2種類の抗体の活性を有意に増加もまたは低下もさせなかった(図2Aおよび2C)。しかしながら、クローンC12を、抗HER2抗体1(COVA208)または抗HER2抗体2(COVA210)の軽鎖のN−末端に融合させて、抗原に対し、2つの異なる結合特異性を有する分子を生成した場合には、未改変の対応する抗体の抗増殖性効果を増強させた(図2Bおよび2D)。
Fyn SH3由来配列を抗体に結合したときの融合部位の影響を調査するために、複数の異なるC12-抗体融合体の、NCI−N87腫瘍細胞の成長阻害能を試験した。
COVA201(配列番号156;配列番号155)、COVA202(配列番号154;配列番号157)、COVA207(配列番号158;配列番号155)およびCOVA208(配列番号154;配列番号159)は全て、クローンC12を、重鎖のC−末端(COVA201)、軽鎖のC−末端(COVA202)、重鎖のN−末端(COVA207)および軽鎖のN−末端(COVA208)のいずれかに融合させた、C12−抗HER2抗体1融合体である。発現と精製は、実施例3でCOVA208に関して記載したのと同様に行った。細胞の成長阻害アッセイは、NCI−N87細胞を用い、実施例3で記載したのと同様に行った。
異なるフォーマットのC12−抗HER2抗体1が、異なる活性を示すことが分かった(図3Aおよび3B)。腫瘍細胞の成長阻害という点では、COVA208の効果が最も高く、相対生存率を37%まで抑えた。COVA207とCOVA201は中程度の活性を示し(生存率はそれぞれ、52%および61%)、COVA202の活性が最も弱く、生存率を67%までしか阻害しなかったが、それでも抗HER2抗体1(81〜82%の生存率)の活性よりは高かった。
ヒト乳腺腫瘍細胞株BT−474(ATCCから購入)に対するCOVA208(配列番号154と159)による腫瘍細胞の成長阻害を抗HER2抗体1(配列番号154と155)と比較した。このHER2を過剰発現している細胞株は、HER2標的指向化剤の活性を試験するための、最も解析が進んでいるモデルの1つである。BT−474細胞を、10%の熱不活性化したFBS(ギブコ)と10μg/mlのヒト組換えインスリンを補充したDMEM/F12培地(ギブコ)中で生育させた。アッセイは、実施例3でNCI−N87細胞に関して記載したのと同様に行った。
COVA208は、抗HER2抗体1よりも高い抗増殖性活性を示した(図4)。
COVA208を腫瘍成長の阻害に関してインビボで調査し、抗HER2抗体1と比較した。
5×106個のヒト胃腫瘍細胞(ATCC;CRL−5822)を、胸腺欠損CD−1ヌードマウス(チャールスリバー)の皮下に接種した。腫瘍体積と体重を、1週間に3回記録した。腫瘍体積は、式:溶液=(幅)2×長さ×π/6に従って計算した。腫瘍を接種して42日後、腫瘍の大きさの平均が約140mm3に達したら、マウスを6匹ずつ、無作為に3つの処理群に振り分け、処理を開始した。COVA208(配列番号154と159)および抗HER2抗体1(配列番号154と155)を1週間に1回、4週間にわたって腹腔内投与した(合計で5回の注射)。初回(負荷)投与量を30mg/kgとし、各その後の(維持)投与量は15mg/kgとした。対照群のマウスにはPBSを注射した。
抗HER2抗体1の処理は、弱い腫瘍成長の阻害しか生じなかった(図5)。COVA208は、処理を行っている期間にわたり、抗HER2抗体1よりも高い腫瘍成長の抑制効果を示した。32日目、COVA208で処理したマウスの腫瘍体積は、処理開始時(d=0)の最初の腫瘍の大きさと比較して、8%小さくなっていたが、抗HER2抗体1で処理したマウスでは、容積は88%の増加を示した。
C57BL/6マウス(チャールスリバー)におけるCOVA208の薬物動態プロファイルを調査し、抗HER2抗体1と比較した。3匹のC57BL/6マウスに、200μgのCOVA208(配列番号154と159)または抗HER2抗体1(配列番号154と155)を静脈注射した。10分、および6、24、48、96、120、144、168時間後、血液をEDTAでコーティングされた採血管(マイクロベット、ザルスタット)に採取し、9300gで10分間遠心分離し、そして、COVA208または抗HER2抗体1の血清レベルをELISAで決定した。黒のマキシソープマイクロタイタープレート(ヌンク(Nunc))を、50nMのHER2 ECD(ベンダーメドシステムズ)でコーティングした。PBSに溶解した4%の脱脂粉乳(ラピライト、ミグロス、スイス)でブロッキングした後、40μlのPBSと、適切に希釈した10μlの血清をアプライした。1時間インキュベートした後、ウェルをPBSで洗浄し、結合したCOVA208または抗HER2抗体1を、プロテインA−HRP複合体(シグマ)で検出した。クオンタレッド(QuantaRed)蛍光発生基質(ピアス)を使ってアッセイを発光させ、5〜10分後に、蛍光強度を544nm(励起)および590nm(発光)で測定した。COVA208および抗HER2抗体1の検量線(それぞれ333〜0.5ng/mlに希釈した)から、COVA208および抗HER2抗体1の血清レベルを決定した。決定した、血清中の様々な時点でのCOVA208および抗HER2抗体1の濃度、ならびに得られる排出相の勾配k(片対数目盛りでプロットした)から、式:t1/2=ln2/−kを使って半減期を計算した。
図6に示すように、排出相(ベータ相、24時間〜168時間の時点)から決定したCOVA208および抗HER2抗体1の半減期は非常に似ていた(それぞれ、247時間および187時間)。これらのデータは、COVA208が薬剤様のインビボPK特性を有していることを示している。
COVA208の完全性および安定性をSDS−PAGEおよびサイズ排除クロマトグラフィーで評価した。
精製したCOVA208(配列番号154と159)と抗HER2抗体1(配列番号154と155)をSDS−PAGEで解析した。還元したまたは還元していないいずれかのジスルフィド結合を有する4μgのタンパク質を、1×MOPS泳動用緩衝液(インビトロジェン)に入れた4−12%Bis/Trisノヴェックス(Novex)ゲルに、分子量マーカー(RPN800e;GEヘルスケア)と共に負荷した。タンパク質のバンドをクーマシー染色によって可視化した。
COVA208のSDS−PAGEの結果とSECプロファイルを図7に示す。COVA208は、SDS−PAGE上で、予想される分子量の、特徴のはっきりとしたバンドとして流れている(上図)。特に興味がもたれるのは、COVA208には検出可能な天然の軽鎖(MWおよそ30kDa)がないということが見出されることであり、このことは、Fyn SH3由来クローンC12の抗体軽鎖からの切断がないことを示している。
数種類の異なるHER2陽性細胞株に対するCOVA208(配列番号154と159)の抗増殖性活性を、抗HER2抗体1(配列番号154と155)と比較した。XTTアッセイは、実施例3に記載したのと本質的に同様に行った。この実験で使用した細胞株および実験条件を表1に示す。用量−反応曲線を実施例3で記載したのと同様に三パラメーター方程式に当てはめ、最大成長阻害を以下の式に従って計算した。
阻害の最大レベル(%)=100%−最低値
前記式における種々の最低値は、以下の式を使った、用量−反応曲線の非線形回帰から導く。
COVA208のNCI−N87細胞に対するアポトーシス誘導能を、カスパーゼ3/7の酵素活性を解析すること、およびTUNEL染色によってDNAの断片化を検出することによって調査した。
カスパーゼ3/7アッセイ:45,000個のNCI−N87細胞を、96ウェルのマイクロタイタープレートのウェルに播種した。1日後、100nMの抗HER2抗体1(配列番号154と155)、COVA208(配列番号154と159)またはPBSを細胞に添加した。それぞれの処理は三つ組で準備した。陽性対照としては、1μMのスタウロスポリンを添加した。2日間インキュベートした後、カスパーゼ−3およびカスパーゼ−7の活性を蛍光Apo−one(登録商標)同種カスパーゼ−3/7キット(ピアス)を使って決定した。
カスパーゼ3/7アッセイの結果を図10Aに示す。COVA208はカスパーゼ3/7活性を上昇させた。このことは、COVA208がNCI−N87細胞においてアポトーシスを誘導したことを示している。抗HER2抗体1は誘導性カスパーゼ3/7活性を生じなかった。
HER2下流シグナル伝達の活性化は、HER3のリン酸化を引き起こしてPI3K−Akt−mTOR経路を活性化させるか、またはMAPK/Erk経路の活性化を引き起こす。HER2を十分に高密度で表面に提示している腫瘍細胞株では、HER3リガンドが欠損している場合、これらの下流経路は恒常的に活性化されている(リガンド非依存性シグナル伝達)。HER2下流シグナル伝達のリガンド非依存性活性化に加えて、HER2とHER3のヘテロ二量体形成を促進するHER3リガンドによっても下流経路は活性化される可能性がある(リガンド依存性シグナル伝達)。
完全培地に入れたNCI−N87細胞(ATCC;CRL−5822)を、6ウェルの組織培養用プレートに、1ウェルあたり3mL、1×106細胞になるように分配した。一晩、37℃、5%CO2でインキュベートした後、40μg/mLの抗HER2剤を添加し、細胞を72時間、37℃、5%CO2でインキュベートした。その後細胞を氷上で、細胞溶解用緩衝液(1%トリトン−X、プロテアーゼ阻害剤およびホスファターゼ阻害剤カクテル含有、ロシュ・アプライド・サイエンス)中で溶解した。
この実験の結果を図11に示す。HER2下流シグナル伝達にHER3リガンドが必要とされるMCF−7細胞では、COVA208および抗HER2抗体1の両方がHER3のリン酸化を遮断し、AktおよびErk1/2も同様であった。このことは、COVA208がその親抗体の活性を保持していたことを示している。対照的に、抗HER2抗体2はHER3、AktまたはErk1/2のリガンド誘導性のリン酸化を遮断していない。
COVA208がインビトロにおいてHER2受容体の取り込みを促進するか否かを調査するために、NCI−N87細胞をCOVA208(配列番号154と159)または抗HER2抗体1(配列番号154と155)存在下で培養した。次いで細胞を固定し、透過処理した後、蛍光二次抗体を使った方法によって、抗HER2剤を検出した。顕微鏡画像法を用い、蛍光シグナルの細胞内分布を評価した。
ラブテック(Lab−Tek)II CC2チャンバースライドのウェル内で生育させたNCI−N87細胞の表面を、氷上で1時間、100nMのCOVA208または抗HER2抗体1で標識した。その後、結合しなかった抗HER2剤を洗い落とした。陽性対照として、HER2の迅速な取り込みを生じる1μMのゲルダナマイシン(Hsp90阻害剤)をいくつかのウェルに添加した。細胞を37℃、5%CO2に0時間または5時間移して内部移行させ、その後、ホルマリンで固定、次いでサポニンで透過処理した。アレクサ488で標識した抗ヒトIgG抗体(インビトロジェン)を使用し、透過処理した細胞上の抗HER2剤を検出し、また、核をヘキスト33342色素で染色した。染色した細胞を、ライカTCS SP2−AOBSレーザー走査共焦点顕微鏡で解析した。光学切片(z−スタック、d=0.2μm)を収集し、3つの領域について解析した。それぞれのドットに局在している抗HER2剤の量を、検出された球状ドット用のイマリスの表面ツールを用い、ドット内に含まれている抗HER2剤のパーセンテージを表すイマリス7.4.0ソフトウェア(ビットプレーン(Bitplane))で定量した。
ドット内の抗HER2剤(%)=(ドット体積/全抗HER2染色の体積)×100
表面を標識した後で、かつ、37℃でインキュベートする前、COVA208と抗HER2抗体1は細胞膜に局在していた。37℃で5時間インキュベートすると、COVA208はサイトゾル中のはっきりと識別できるドット内に含まれており、細胞膜は非常に薄くしか染色されなかった。一方、抗HER2抗体1は37℃で5時間インキュベートした後も細胞膜にとどまっており、サイトゾル内のごく僅かなドットしか検出されなかった。ゲルダナマイシンと一緒にインキュベートした場合には、抗HER2抗体1もドット内に見出され、細胞膜は抗体に関して陰性であった。これらの結果は、COVA208は抗HER2抗体1とは異なり、NCI−N87細胞内に迅速に取り込まれることを示している。
COVA208をKPL−4乳腺腫瘍の成長阻害に関してインビボで調査し、抗HER2抗体1と比較した。
3×106個のヒトKPL−4乳腺腫瘍細胞(クレバヤシ(Kurebayashi)ら(1999)英国癌学会誌79;707〜717)を、メスのSCIDベージュマウス(チャールスリバー)の乳腺脂肪体に移植した。腫瘍体積および体重を1週間につき3回記録した。腫瘍体積は、式:容積=(幅)2×長さ×π/6に従って計算した。腫瘍の大きさの平均が70mm3に達した時点でマウスを、1群がそれぞれ8匹のマウスから構成される、3処理銀に無作為に振り分け、処理を開始した。COVA208(配列番号154と159)、抗HER2抗体1(配列番号154と155)またはPBSを1週間に1回腹腔内投与し、これを4週間継続した(合計で5回注射した)。初回(負荷)投与量を30mg/kgとし、その後の(維持)投与量は各回15mg/kgとした。
抗HER2抗体1で処理しても、非常に弱い腫瘍成長の阻害しか生じなかった(図13)。COVA208は有意に高い腫瘍成長の制御を示した。この結果は、COVA208が抗HER2抗体1と比較して、インビボにおいて有意に優れた効力を示すということをさらに支持するものである。
Fyn SH3由来クローンC12(配列番号1)が結合するHER2のエピトープを、インテグラルモレキュラー社(Integral Molecular Inc.、フィラデルフィア、米国)で行った、アラニンスキャニング変異導入法によって同定した。パエス(Paes)ら(2009)米国化学学会誌131(20):6952〜6954に記載されているように、ショットガン突然変異生成により突然変異体のライブラリーを作成した。簡単に説明すると、完全長ヒトHER2をコードしている真核細胞用発現プラスミドを、C末端V5ヒス−エピトープタグを使って構築した。親cDNA構築物を鋳型として用い、アラニンスキャニングによる突然変異を、PCRを使った突然変異生成によって、HER2の細胞外ドメイン(配列番号171の23〜652番目のアミノ酸)に導入した。親構築物中で既にアラニンだった残基は、メチオニンに変異させた。変異を導入した構築物と親HER2対照構築物をHEK−293T細胞中で発現させた。形質転換して24時間後、細胞をPBSで洗浄し、4%パラホルムアルデヒドで固定した。細胞を対照の抗HER2モノクローナル抗体(MAB1129、R&Dシステムズ)と、またはFyn SH3由来クローンC12(N末端Fc融合体として発現させた)と、10%の正常ヤギ血清(NGS)を加えたCa2+/Mg2+添加PBS(PBS++)中で1時間インキュベートした。PBSで2回洗浄した後、細胞をヤギ抗ヒトアレクサフルオロ488結合二次抗体(ジャクソン、ウェストグローブ、ペンシルバニア)と、NGSを加えたPBS++中で1時間インキュベートし、その後PBSで2回洗浄した。マイクロプレートを、インテリサイト(Intellicyt)HTFCスクリーニングシステムを使ったフローサイトメトリーで測定し、フォアサイト(Forecyt)ソフトウェア(インテリサイト(Intellicyt Corporation)、アルバカーキ、ニューメキシコ)を使って定量した。
Claims (19)
- HER2の2種類の異なるエピトープに特異的に結合する結合分子であって、ここで該結合分子は、
(a)HER2の第一のエピトープに特異的に結合する第一の結合ポリペプチド、但し、前記第一の結合ポリペプチドは配列番号1のアミノ酸配列;または配列番号1のアミノ酸配列と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むかまたはこれからなり、前記配列番号1のアミノ酸配列と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列は、以下の式Iの配列を有し、GVTLFVALYDYX 1 X 2 X 3 X 4 X 5 X 6 X 7 X 8 X 9 X 10 LSFHKGEKFQILX 11 X 12 X 13 X 14 X 15 X 16 GX 17 WWX 18 ARSLTTGEX 19 GX 20 IPSX 21 YVAPVDSIQ(式I)
式中
X 1 は、T、E、D、Q、Y、V、W、N、S、FまたはKから選択され、
X 2 は、S、A、RまたはTから選択され、
X 3 は、Y、R、H、T、N、V、WまたはSから選択され、
X 4 は、N、D、M、Y、R、P、E、L、H、T、GまたはFから選択され、
X 5 は、T、S、P、Q、R、K、G、Q、A、D、M、N、L、F、YまたはEから選択され、
X 6 は、R、M、K、D、F、T、G、H、S、P、N、Q、Y、L、AまたはPから選択され、
X 7 は、D、G、V、L、H、N、R、F、SまたはAから選択され、
X 8 は、G、S、E、D、P、Yから選択されるかまたは欠損しており、
X 9 は、Q、D、S、Hから選択されるかまたは欠損しており、
X 10 は、D、Vから選択されるかまたは欠損しており、
X 11 は、R、K、Q、N、S、G、W、M、H、L、F、E、T、P、A、DまたはVから選択され、
X 12 は、M、R、E、G、N、D、S、A、Q、F、P、K、Y、T、H、V、LまたはWから選択され、
X 13 は、E、W、P、R、K、S、V、N、D、H、G、T、Q、A、Y、LまたはMから選択され、
X 14 は、D、R、Q、S、A、N、P、I、H、T、Y、E、L、K、M、V、I、Wから選択されるかまたは欠損しており、
X 15 は、G、S、I、L、A、V、T、E、D、Q、R、P、K、M、H、Yから選択されるかまたは欠損しており、
X 16 は、K、G、R、A、T、V、S、I、E、Q、P、D、N、Hから選択されるかまたは欠損しており、
X 17 は、V、D、T、I又はYから選択され、
X 18 は、E、A、R、T又はQから選択され、
X 19 は、T、I又はVから選択され、
X 20 は、Y、L又はFから選択され、
X 21 は、N又はSから選択される;および
(b)HER2の第二のエピトープに特異的に結合する第二の結合ポリペプチド、但し、前記第二の結合ポリペプチドは、重鎖が配列番号154のアミノ酸配列;または配列番号154のアミノ酸配列と少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むかまたはこれからなり、かつ、軽鎖が配列番号155のアミノ酸配列;または配列番号155のアミノ酸配列と少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むかまたはこれからなる抗体であって、前記抗体のCDRドメインは、配列番号154の31〜35(CDR1)、50〜66(CDR2)および99〜108(CDR3)番目のアミノ酸、および配列番号155の24〜34(CDR1)、50〜56(CDR2)および89〜97(CDR3)番目のアミノ酸である;
を含む。 - 前記第一の結合ポリペプチドは配列番号1のアミノ酸配列;または配列番号1のアミノ酸配列と少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むかまたはこれからなり、前記配列番号1のアミノ酸配列と少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列は、以下の式Iの配列を有し、GVTLFVALYDYX 1 X 2 X 3 X 4 X 5 X 6 X 7 X 8 X 9 X 10 LSFHKGEKFQILX 11 X 12 X 13 X 14 X 15 X 16 GX 17 WWX 18 ARSLTTGEX 19 GX 20 IPSX 21 YVAPVDSIQ(式I)
式中
X 1 は、T、E、D、Q、Y、V、W、N、S、FまたはKから選択され、
X 2 は、S、A、RまたはTから選択され、
X 3 は、Y、R、H、T、N、V、WまたはSから選択され、
X 4 は、N、D、M、Y、R、P、E、L、H、T、GまたはFから選択され、
X 5 は、T、S、P、Q、R、K、G、Q、A、D、M、N、L、F、YまたはEから選択され、
X 6 は、R、M、K、D、F、T、G、H、S、P、N、Q、Y、L、AまたはPから選択され、
X 7 は、D、G、V、L、H、N、R、F、SまたはAから選択され、
X 8 は、G、S、E、D、P、Yから選択されるかまたは欠損しており、
X 9 は、Q、D、S、Hから選択されるかまたは欠損しており、
X 10 は、D、Vから選択されるかまたは欠損しており、
X 11 は、R、K、Q、N、S、G、W、M、H、L、F、E、T、P、A、DまたはVから選択され、
X 12 は、M、R、E、G、N、D、S、A、Q、F、P、K、Y、T、H、V、LまたはWから選択され、
X 13 は、E、W、P、R、K、S、V、N、D、H、G、T、Q、A、Y、LまたはMから選択され、
X 14 は、D、R、Q、S、A、N、P、I、H、T、Y、E、L、K、M、V、I、Wから選択されるかまたは欠損しており、
X 15 は、G、S、I、L、A、V、T、E、D、Q、R、P、K、M、H、Yから選択されるかまたは欠損しており、
X 16 は、K、G、R、A、T、V、S、I、E、Q、P、D、N、Hから選択されるかまたは欠損しており、
X 17 は、V、D、T、I又はYから選択され、
X 18 は、E、A、R、T又はQから選択され、
X 19 は、T、I又はVから選択され、
X 20 は、Y、L又はFから選択され、
X 21 は、N又はSから選択される、請求項1に記載の結合分子。 - 前記第一の結合ポリペプチドと第二の結合ポリペプチドがリンカーで連結されている、請求項1又は2に記載の結合分子。
- 前記リンカーがペプチドリンカーである、請求項3に記載の結合分子。
- 前記リンカーが(Gly4Ser)3である、請求項4に記載の結合分子。
- 結合分子に非共有結合または共有結合してもよい薬学上および/または診断上有効な成分である少なくとも1つの追加のポリペプチドをさらに含み、かつポリペプチドの用語は、30までのアミノ酸からなる一群のペプチド、ならびに30を上回るアミノ酸からなる一群のポリペプチドを含む、一群の分子を指す、請求項1〜5のいずれか1項に記載の結合分子。
- (i)第一の結合ポリペプチドは配列番号1のアミノ酸配列からなる;および
(ii)前記第二の結合ポリペプチドの前記抗体は、配列番号154のアミノ酸配列からなる重鎖、および、配列番号155のアミノ酸配列からなる軽鎖を有する
請求項1〜6のいずれか1項に記載の結合分子。 - 配列番号1のC末端が配列番号155のN末端とリンクする、請求項7に記載の結合分子。
- 配列番号1のC末端が配列番号155のN末端と(Gly4Ser)3リンカーを介してリンクする、請求項8に記載の結合分子。
- (i)第一の結合ポリペプチドは、表面プラズモン共鳴で決定した場合に、HER2結合に関して少なくとも1×10-8Mの解離定数を有し、かつ
配列番号172内にあるエピトープと結合し;および
(ii)前記第二の結合ポリペプチドは、表面プラズモン共鳴で決定した場合に、HER2結合に関して少なくとも1×10-9Mの解離定数を有する、
請求項1〜9のいずれか1項に記載の結合分子。 - 前記エピトープは配列番号172のT166、R188、P197、S202およびR203の位置を含む、請求項10に記載の結合分子。
- 請求項1〜11のいずれか1項に記載の結合分子をコードしている核酸分子。
- 請求項12の核酸分子を含んでいるベクター。
- 請求項13のベクターで形質転換した宿主細胞または非ヒト宿主。
- 好適な条件における請求項14の宿主細胞の培養、および産生された結合分子の単離を含む、HER2の2種類の異なるエピトープに特異的に結合する結合分子の産生方法。
- 組成物であって、
(i)請求項1〜11のいずれか1項に記載の結合分子;
(ii)請求項12に記載の核酸分子;
(iii)請求項13に記載のベクター;または
(iv)請求項14に記載の宿主細胞、
のうちの少なくとも1つを含む、組成物。 - 腫瘍の治療に用いるための、請求項1〜11のいずれか1項に記載の結合分子であって、前記腫瘍が、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、唾液腺癌、子宮内膜癌、膵癌、甲状腺癌、腎臓癌、肺癌、上部消化管に関する癌、結腸癌、結腸直腸癌、前立腺癌、頭頸部の扁平細胞癌、子宮頸癌、膠芽腫、悪性腹水、リンパ腫および白血病からなる群より選択される、前記結合分子。
- 腫瘍の治療に用いるための、請求項12に記載の核酸分子であって、前記腫瘍が、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、唾液腺癌、子宮内膜癌、膵癌、甲状腺癌、腎臓癌、肺癌、上部消化管に関する癌、結腸癌、結腸直腸癌、前立腺癌、頭頸部の扁平細胞癌、子宮頸癌、膠芽腫、悪性腹水、リンパ腫および白血病からなる群より選択される、前記核酸分子。
- 腫瘍の治療に用いるための、請求項13に記載のベクターであって、前記腫瘍が、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、唾液腺癌、子宮内膜癌、膵癌、甲状腺癌、腎臓癌、肺癌、上部消化管に関する癌、結腸癌、結腸直腸癌、前立腺癌、頭頸部の扁平細胞癌、子宮頸癌、膠芽腫、悪性腹水、リンパ腫および白血病からなる群より選択される、前記ベクター。
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