JP6489658B2

JP6489658B2 - 肝細胞癌において分子標的治療の感受性を増加させるための分析方法

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Publication number: JP6489658B2
Application number: JP2016510611A
Authority: JP
Inventors: パク，ジニョン; ムン，ヨンホ; クォン，ジョンヒ
Original assignee: シービーエスバイオサイエンス，カンパニー，リミテッド
Priority date: 2013-04-25
Filing date: 2014-04-16
Publication date: 2019-03-27
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Description

本発明は、肝細胞癌において分子標的治療の感受性を増加させるための分析方法に関する。さらに詳しくは、本発明は、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法に関する。

肝細胞癌（HCC）は、原発性肝悪性腫瘍として最もよく見られる癌である。HCCは、世界的に６番目に多い癌であり、世界における癌死の原因の第３位となっている（Yang JD, et al., (2010) Nat Rev Gastroenterol Hepatol 7: 314 448-458）。多くの分子標的薬が、HCCに対する緩和治療や補助治療としての臨床試験に進んでいる（Villanueva A, et al., (2011) Gastroenterology 140: 316 1410-1426）。マルチキナーゼ阻害薬であるソラフェニブは、２つの無作為化比較試験において全生存期間および無増悪期間の統計的有意な中程度の改善が示され、進行HCCの第一選択療法として承認された（Llovet JM， et al.， (2008) N Engl J Med 359: 378-390およびCheng AL, et al., (2009) Lancet Oncol 10: 25-34）。また、ソラフェニブとの併用療法または補助療法として他の分子標的薬も試験されている（Zhu AX (2012), Semin Oncol 39: 493-502.およびHuynh H (2010) Biochem Pharmacol 80: 550-560）。しかし、ソラフェニブを包含する現在の分子標的薬の効果は、かなり限定的であることが当技術分野でよく知られている。ソラフェニブを用いた第III相臨床試験での奏効率はかなり低く、わずか２．３％〜３．３０％に留まっている（Villanueva A, et al., (2012) Clin Cancer Res 18: 1824-1826）。

バイオマーカーは、様々な癌の診断や予後診断、治療法の選択（therapeutic decision making）に使用されることが増えており、癌の管理に対する考え方を根本的に変えつつある。臨床においてバイオマーカーを使用すると患者の階層分類が容易となり、ひいては特定の薬物からより良好な転帰を得やすくなる。HER2標的化モノクローナル抗体であるトラスツズマブは、免疫組織化学的検査（IHC）やHER2遺伝子増幅による評価でHER2 3+の過剰発現を示す転移性乳癌患者に有効である（Vogel CL, et al., (2002) J Clin Oncol 20: 719-726）。また、EGFRのキナーゼドメインに活性化変異を有する非小細胞肺癌患者は、EGFR阻害薬であるゲフィチニブに対して目覚ましい臨床応答を示す（Lynch TJ, et al., N Engl J Med 350: 2129-2139）。標的治療が有効であり得る分子サブタイプに個々の腫瘍を階層分類するこのような分子レベルでの分類は、実用的な分子サブタイピングとして報告されている（West L, et al., PLoS One 7: e31906.およびVidwans SJ, et al., PLoS One 6: e18257）。

本発明者らは、特定の遺伝子（すなわち、VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、EGFR、c-RAF、mTOR、およびFGFR1）のmRNA発現をバイオマーカーとしたクラスター分析によりHCC患者を階層分類することによって、分子標的薬の一つであるソラフェニブを用いた治療に感受性を持つ患者を選択できることを見出した。特に、ソラフェニブによる治療に対する感受性とFGFR1との間に関連性があることが新たに見出された。したがって、任意に他のバイオマーカー（すなわち、VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAF、EGFRおよび／またはmTOR）のmRNA発現の分析と組み合わせて、FGFR1のmRNA発現を分析することによって、ソラフェニブを用いた分子標的治療を行う前に、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者とソラフェニブによる治療に対して抵抗性を持つ患者とを選別することができる。

したがって、本発明は、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、FGFR1をバイオマーカーとして使用すること、またはVEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAF、EGFRおよび／もしくはmTORとFGFR1との組み合わせをバイオマーカーとして使用すること含む分析方法を提供することを目的とする。

本発明の一態様によれば、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、（i）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、および（ii）肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比を求めることを含む分析方法が提供される。

一実施形態において、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための上記分析方法であって、（i'）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１の遺伝子のmRNA発現量および配列番号２〜７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、ならびに（ii'）肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比；および肝細胞癌組織での配列番号２〜７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号２〜７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量の比を求めることを含む分析方法が提供される。

別の一実施形態において、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための上記分析方法であって、（i''）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１、３、４、６および７の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、ならびに（ii''）肝細胞癌組織での配列番号１、３、４、６および７の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号１、３、４、６および７の遺伝子のmRNA発現量の比を求めることを含む分析方法が提供される。

さらにまた別の一実施形態において、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、（i'''）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織において、配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、および（ii'''）mRNA発現量の合計を算出することを含む分析方法が提供される。

本発明の上記分析方法において、上記mRNA発現量は、リアルタイム逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応によって測定してもよい。

特定の遺伝子（すなわち、VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、EGFR、c-RAF、mTOR、およびFGFR1）のmRNA発現をバイオマーカーとしたクラスター分析によりHCC患者を階層分類することによって、分子標的薬の一つであるソラフェニブを用いた治療に感受性を持つ患者を選択できることが本発明により見出された。また、上記７種のマーカー遺伝子の発現量の合計を利用することを含む腫瘍組織のみを用いた分析で、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者を選択できることが本発明により見出された。特に、ソラフェニブによる治療に対する感受性とFGFR1との間に関連性があることが新たに見出された。したがって、任意に他のバイオマーカー（すなわち、VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAF、EGFRおよび／またはmTOR）のmRNA発現の分析と組み合わせて、FGFR1のmRNA発現を分析することによって、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者を選択することができる。

130名の患者のHCC組織および同じ患者に由来する非腫瘍組織における、ソラフェニブの有効性と関連することが知られている４種のマーカー遺伝子（VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAF）のmRNA過剰発現の頻度を示す。腫瘍組織および同じ患者に由来する非腫瘍組織におけるマーカー遺伝子の発現量をBCLCステージ（A：早期、B：中間期、C：進行期）に従って示す。図２において、A〜GはそれぞれVEGFR2（A）、PDGFRβ（B）、c-KIT（C）、c-RAF（D）、EGFR（E）、mTOR（F）、およびFGFR1（G）の発現量を示す。 130名のHCC患者由来の腫瘍組織と同じ患者に由来する非腫瘍組織において７種のマーカー遺伝子の発現量を測定したときの、非腫瘍組織と比較した腫瘍組織における過剰発現の頻度を示す。 130名のHCC患者由来の腫瘍組織と同じ患者に由来する非腫瘍組織において７種のマーカー遺伝子の発現量を測定したときの、BCLCステージごとに非腫瘍組織と比較した腫瘍組織における過剰発現の頻度を示す。マーカー遺伝子の発現パターンに従って階層的クラスター分析を行い、患者をクラスター化した結果を示す。ソラフェニブを投与した２３名の患者由来のサンプルにおける、マーカー遺伝子発現パターンとソラフェニブの有効性との関連性を示す。ソラフェニブを投与した２３名の患者から得られたNTBS値のインタラクティブドットダイアグラム（A）、およびNTBS値から得られたROC（受信者動作特性）曲線（B）を示す。

本明細書において「ソラフェニブ」とは、下記化学式１の化合物を意味し、薬学的に許容されるその塩、例えばｐ-トルエンスルホン酸塩を含む。

「ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者」とは、ソラフェニブの投与により奏功（すなわち腫瘍縮小効果（tumor response））を示す肝細胞癌患者を意味する。「腫瘍縮小効果（tumor response）」とは、Llovet JM, et al. (2008) Sorafenib in advanced hepatocellular carcinoma. N Engl J Med 359：378-390で定義されたRECIST（Response Evaluation Criteria in Solid Tumors）による完全奏功（complete response）、部分奏功（partial response）または安定（stable disease）を意味する。

「肝細胞癌組織」および「正常組織」とは、肝細胞癌患者の肝細胞癌組織およびその周囲の非腫瘍組織から、例えば生検などにより体外に採取された組織サンプルを意味する。臨床では一般に、肝細胞癌の診断および／または治療レジメンの確立のために、腫瘍組織およびその周囲の正常組織を患者から採取し、その組織検査を行う。したがって、「肝細胞癌組織」および「正常組織」とは、例えば臨床での組織検査などを目的として、患者から体外に採取された組織サンプルを意味する。

本発明者らは、ソラフェニブの非常に低い奏効率（約３％）を改善するため、HCC患者由来の組織サンプルにおいて様々な標的バイオマーカーの発現パターンの分析（階層的クラスター分析を含む）を行った。その結果、驚くべきことに、ソラフェニブによる治療に対する感受性とFGFR1との間に関連性があることが本発明によって見出されたが、このような関連性は過去の文献では報告されていない。すなわち、腫瘍組織におけるFGFR1遺伝子（配列番号１の遺伝子）のmRNA発現量が正常組織よりも低い患者は、ソラフェニブによる治療に対して高い抵抗性を示し、このことによって治療有効性が顕著に低くなっていることが新たに見出された。したがって、正常組織でのFGFR1（配列番号１の遺伝子）のmRNA発現量と肝細胞癌組織でのFGFR1（配列番号１の遺伝子）のmRNA発現量の比を分析することによって、ソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つ患者を事前に選別することができ、それによってソラフェニブによる治療に対する奏効率を大幅に上昇させることができる。

したがって、本発明は、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、（i）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、および（ii）肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比を求めることを含む分析方法を提供する。本発明の上記分析方法において、正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比（腫瘍／非腫瘍の比）が２よりも大きい場合、その患者をソラフェニブによる治療に対して抵抗性が低い患者、すなわち、ソラフェニブによる治療に対する感受性が高い患者として分類することができる。

また、本発明者らは、FGFR1（配列番号１の遺伝子）に加えて、VEGFR2（配列番号２の遺伝子）、PDGFRβ（配列番号３の遺伝子）、c-KIT（配列番号４の遺伝子）、c-RAF（配列番号５の遺伝子）、EGFR（配列番号６の遺伝子）、およびmTOR（配列番号７の遺伝子）について階層的クラスター分析を行った。その結果、FGFR1（配列番号１の遺伝子）の分析と組み合わせて、このような遺伝子に対する分析を行うことによって、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ肝細胞癌患者をより高効率に選択できることが見出された。したがって、一実施形態において、本発明は、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、（i'）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１の遺伝子のmRNA発現量および配列番号２〜７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、ならびに（ii'）肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比；および肝細胞癌組織での配列番号２〜７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号２〜７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量の比を求めることを含む分析方法を提供する。この実施形態において、（１）正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比（腫瘍／非腫瘍の比）が２よりも大きく；（２）正常組織での配列番号２〜５からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号２〜５からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比が２よりも大きく；かつ（３）正常組織での配列番号６および７からなる群から選択される１種以上の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号６および７の１種以上の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比が２未満である場合、その患者をソラフェニブによる治療に対する抵抗性が低い患者、すなわちソラフェニブによる治療に対する感受性が高い患者として分類することができる。

また、配列番号２〜７の遺伝子のうち、配列番号３、４、６および７の遺伝子が、配列番号１の遺伝子と組み合わせて分析するための遺伝子としてより好ましいことが見出された。したがって、別の一実施形態において、本発明は、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、（i''）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１、３、４、６および７の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、および（ii''）肝細胞癌組織での配列番号１、３、４、６および７の遺伝子のmRNA発現量と正常組織での配列番号１、３、４、６および７の遺伝子のmRNA発現量の比を求めることを含む分析方法を提供する。この実施形態において、（１）正常組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号１の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比が２よりも大きく；（２）正常組織での配列番号３および４の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号３および４の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比が２よりも大きく；かつ（３）正常組織での配列番号６および７の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号６および７の遺伝子のmRNA発現量の比であるＴ／Ｎ比が２未満である場合、その患者をソラフェニブによる治療に対する抵抗性が低い患者、すなわちソラフェニブによる治療に対する感受性が高い患者として分類することができる。

また、腫瘍組織のみを用いた分析でソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者を選択できることが見出され、この分析は、新規パラメータであるNTBS（Nexavar Treatment Benefit Score）を利用することを含む。NTBSは、上記７種のマーカー遺伝子の発現量の合計である。すなわち、NTBS値は、配列番号１〜７のマーカー遺伝子それぞれのmRNA発現量（2^-ΔCT）の合計である。したがって、さらに別の一実施形態において、本発明は、肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、（i'''）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織において、配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量を測定すること、および（ii'''）mRNA発現量の合計を算出することを含む分析方法を提供する。この実施形態において、肝細胞癌組織での配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量の合計（すなわち、NTBS値）が、閾値（例えば、0.0758）よりも大きい場合、好ましくは0.1よりも大きい場合、その患者をソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者として分類することができる。

本発明の上記分析方法において、上記mRNA発現量は、生命工学分野で使用される通常の方法、例えば、リアルタイム逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（リアルタイムRT-PCR）によって測定してもよい。リアルタイムRT-PCRは、各遺伝子に対して適切なプライマーセットを使用して行ってもよい。プライマーセットは、公知のプライマーセットであってもよく、または通常の方法に従って製造されたものであってもよい。

以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明する。これらの実施例は、本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を限定するものではない。

１.実験方法
（１）患者、材料および方法
肝細胞癌（HCC）組織および同じ患者に由来する非腫瘍性肝組織は、1998年〜2006年の間に、韓国のアジュ大学校病院およびサムスンメディカルセンターで原発性HCCの治療的切除を受けた１３０名の患者からインフォームドコンセントの下で入手した。実験プロトコルは、各病院の治験審査委員会（Institutional Review Board）によって承認された。表１は、本研究において調査した１３０名のHCC患者の人口統計的特性の要約である。本発明者らは、以前に報告されている基準に従ってBCLCステージおよびEdmondson-Steiner分類を使用した（Forner A, et al., (2010) Semin Liver Dis 30: 61-74. 346;およびEdmondson HA, et al., (1954) Cancer 7: 462-503）。

＜２＞RNA抽出、cDNA合成、およびリアルタイムRT-PCR
販売元の指示に従ってRNeasy Mini kit（Qiagen社製、ドイツ）を使用し、HCC組織およびその周囲の正常組織から全RNAを抽出した。得られた全RNA抽出物をBioanalyzer 2100（Agilent Technologies社製、USA）を用いて定量分析した。抽出の際、DNase IでRNA抽出物を処理することによって汚染物質（すなわち、ゲノムDNA）を除去した。それぞれの全RNA（4μg）を、１μM oligo d(T)18プライマー（Genotech社製、韓国）２μlと７０℃で７分間反応させた後、氷上で５分間冷却した。酵素混合物［0.1M DTT（Duchefa社製、オランダ）2μl、10×逆転写酵素緩衝液 2μl、2mM dNTP 5μl、200U/μl MMLV 逆転写酵素 1μl、および40U/μl RNase阻害剤（Enzynomics社製、韓国）1μl；総量11μl］をそれぞれのRNA含有混合物に対して準備した。この酵素混合物をRNA含有混合物に加えた。得られた混合物を４２℃で９０分間インキュベートした後、８０℃で１０分間インキュベートして逆転写酵素を不活性化した。ジエチルピロカーボネート（DEPC）で処理した水を混合物に加えて、最終容量400μlのcDNA含有溶液を得た。得られた溶液を定量的リアルタイムRT-PCRに使用した。

リアルタイムRT-PCRは、以前の報告（Kwon JH, et al., (2010) Clin Cancer Res 16: 350 5511-5521）に従って行った。すなわち、販売元の指示に従いPRISM 7900HT（Applied Biosystems社製、USA）を使用して各cDNAサンプルのリアルタイムRT-PCRを行い、遺伝子マーカーを検出した。リアルタイムRT-PCRは、2×TaqMan Gene Expression Master Mix（Applied Biosystems社製、USA）5μl、5μMセンスプライマー1μl、5μMアンチセンスプライマー1μl、1μMプローブ（Genotech社製、韓国）1μl、およびcDNA 2μl（対照群の場合、同じ容量の水）を含有する溶液（総量10μl）を使用して行った。９５℃で１０分間初期変性を行った後、９５℃で１５秒間の変性および６０℃で１分間の伸長のサイクルで増幅を行った。上記プライマーおよびプローブは、Primer Express 3.0（Applied Biosystems社製、USA）を用いて製造した後、５’末端および３’末端にそれぞれFAMおよびTAMRAを標識した。各マーカー遺伝子の発現を３連で測定した後、５種の参照遺伝子（B2M、GAPDH、HMBS、HPRT1、およびSDHA）のmRNAレベルの平均値を差し引くことによって参照遺伝子による補正を行った。各マーカー遺伝子のCT（閾値に達するサイクル数）を測定した。ΔCT値（マーカー遺伝子のCT−参照遺伝子の平均CT）から、各マーカー遺伝子のmRNA発現量を2^-ΔCTとして算出した。各マーカー遺伝子のプライマーおよびプローブを以下の表２に示す。

＜３＞NTBS（Nexavar Treatment Benefit Score）の算出
腫瘍組織のみを用いてソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者を選択できるかどうかを評価するため、本発明者らは、腫瘍組織における７種のマーカー遺伝子の発現量に基づいた新規のパラメータであるNTBS（Nexavar Treatment Benefit Score）を導入した。NTBS値は、以下の式によって算出した。
NTBS = G_VEGFR2 + G_PDGFRβ + G_c-KIT + G_c-RAF + G_EGFR + G_mTOR + G_FGFR1
式中、G_VEGFR2、G_PDGFRβ、G_c-KIT、G_c-RAF、G_EGFR、G_mTOR、およびG_FGFR1は、腫瘍組織におけるそれぞれのマーカー遺伝子のmRNA発現量（2^-ΔCT）を表す。

＜４＞統計分析
本研究における統計分析は、オープンソースの統計プログラミング環境Ｒを用いて行った。各遺伝子の2^-ΔCT値を箱ひげ図で示し、腫瘍組織と非腫瘍組織との差の有意性をスチューデントのt検定を用いて評価した。遺伝子発現と臨床病理学的変数との関連性を、χ2検定およびFisher's exact testsを用いて評価した。腫瘍組織とその周囲の非腫瘍組織における2^-ΔCT値のfold differenceを用いて、アップレギュレートされた遺伝子発現、変化しなかった遺伝子発現、またはダウンレギュレートされた遺伝子発現を評価した。患者を階層分類するため、2^-ΔCT値のＴ／Ｎ比（腫瘍／非腫瘍）の階層的クラスター分析を行った。

２.試験結果
（１）ソラフェニブの有効性に関連したマーカー遺伝子のmRNA過剰発現の頻度
多くの種類の癌において、マーカー遺伝子の発現は正常に制御されないことが分かっている。これを踏まえ、本発明者らは、１３０名の患者のHCC組織および同じ患者に由来する非腫瘍組織において４種のマーカー遺伝子（すなわち、ソラフェニブの有効性に関連することが知られている遺伝子、VEGFR2、PDGFRβ、c-KITおよびc-RAF）のmRNA過剰発現を調査した。結果を図１に示した。腫瘍組織における各マーカー遺伝子の発現量（2^-ΔCT）が非腫瘍組織の２倍またはそれ以上である場合、過剰発現されているとみなした。

図１に示すように、患者の80.0％が４種のマーカー遺伝子のうち少なくとも１種のマーカー遺伝子の過剰発現を示した。患者の21.54％は１種のマーカー遺伝子のみの過剰発現を示し、患者の23.1％は２種のマーカー遺伝子の過剰発現を示し、患者の18.5％は３種のマーカー遺伝子の過剰発現を示し、患者の16.9％は４種すべてのマーカー遺伝子の過剰発現を示した。この結果から、ソラフェニブの有効性は、ソラフェニブの有効性に関連することが以前から知られている上記マーカー遺伝子の過剰発現のみでは判断できないことが示唆される。したがって、本発明者らは、上記マーカー遺伝子（VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAF）に加えて、様々なマーカー遺伝子の発現を分析し、その階層的クラスター分析を行った。その結果、ソラフェニブによる治療に対する有効性プロファイルおよび安全性プロファイルが異なる患者をクラスター化するためには、上記マーカー遺伝子（VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAF）だけでなく、さらに３種のマーカー遺伝子（EGFR、mTOR、FGFR1）を分析する必要があることが確認された（データ示さず）。

（２）７種のマーカー遺伝子の発現の特性分析
７種のマーカー遺伝子の発現量（2^-ΔCT）を、箱ひげ図法により非腫瘍組織（NT）および腫瘍組織（T）において分析した。さらに、各BCLCステージ（A：早期、B：中間期、C：進行期）でのマーカー遺伝子の発現量を非腫瘍組織および腫瘍組織（T）において分析した。腫瘍組織と非腫瘍組織との間での各マーカー遺伝子の発現の差の有意性をスチューデントのt検定を用いて評価し、P値が＜0.05である場合に統計的に有意であるとみなした。結果を図２に示す。図２において、A〜GはそれぞれVEGFR2（A）、PDGFRβ（B）、c-KIT（C）、c-RAF（D）、EGFR（E）、mTOR（F）およびFGFR1（G）の発現量を示す。

VEGFR2の場合（図２A）、全患者の腫瘍組織における発現は非腫瘍組織と比べてアップレギュレートされていたが、その差は統計的に有意ではなかった。しかし、BCLCステージAの患者の腫瘍組織において発現量は有意に高かった。また、BCLCステージBおよびCの患者の腫瘍組織においても発現量は高かったが、統計的有意差は見られなかった。

PDGFRβの場合（図２B）、その発現は、非腫瘍組織よりも全患者の腫瘍組織ならびにBCLCステージA、BおよびCの患者の腫瘍組織すべてにおいて有意に高かった。

c-KITの場合（図２C）、その発現は、非腫瘍組織よりも全患者の腫瘍組織ならびにBCLCステージAおよびBの患者の腫瘍組織において有意に高かった。また、BCLCステージCの患者の腫瘍組織でも発現量は非腫瘍組織よりも高かったが、統計的有意差は見られなかった。

c-RAFの場合（図２D）、その発現は、非腫瘍組織よりも全患者の腫瘍組織ならびにBCLCステージA、BおよびCの患者の腫瘍組織すべてにおいて有意に高かった。

EGFRの場合（図２E）、全患者の腫瘍組織における発現量は非腫瘍組織よりも有意に高かった。しかし、BCLCステージ別では発現量が有意に高かったのは、BCLCステージAの患者の腫瘍組織のみであった。BCLCステージBの患者の腫瘍組織においても発現量は高かったが、統計的有意差は見られなかった。また、BCLCステージCの患者の腫瘍組織における発現量は低かったが、統計的有意差は見られなかった。

mTORの場合（図２F）、その発現は、非腫瘍組織よりも全患者の腫瘍組織ならびにBCLCステージA、BおよびCの患者の腫瘍組織すべてにおいて有意に高かった。

FGFR1の場合（図２G）、その発現は、非腫瘍組織よりも全患者の腫瘍組織ならびにBCLCステージA、BおよびCの患者の腫瘍組織すべてにおいて低かったが、統計的有意差は見られなかった。

（３）７種のマーカー遺伝子の発現頻度の特性分析
本発明者らは、130名のHCC患者由来の腫瘍組織およびその周囲の非腫瘍組織において７種のマーカー遺伝子の発現量を測定し、非腫瘍組織と比較したときの腫瘍組織における過剰発現の頻度を調査した。結果を図３に示す。図３において、赤色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の２倍またはそれ以上であった患者を表し、緑色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の２分の１以下であった患者を表し、黒色は、非腫瘍組織と比較したときの腫瘍組織における発現が２分の１より大きく２倍未満であった患者、すなわち、有意差がないと見られた患者を表す。EGFR mRNAレベルは、腫瘍の35.4%でアップレギュレートされ、腫瘍の47.7%で変化が見られなかった。VEGFR2は、腫瘍の42.3%でアップレギュレートされ、39.2%で変化が見られず、18.5%でダウンレギュレートされていた。PDGFRβは、高い割合（61.5%）の腫瘍でアップレギュレートされていた。FGFR1では、患者の40%で発現に変化が見られず、患者の35.4%が発現のダウンレギュレーションを示したのに対し、患者のわずか24.6％が腫瘍においてFGFR1のアップレギュレーションを示した。mTORは、半数の腫瘍でアップレギュレートされていたことが見出された。

また、本発明者らは、130名のHCC患者由来の腫瘍組織およびその周囲の非腫瘍組織において７種のマーカー遺伝子の発現量を測定し、BCLCステージごとに非腫瘍組織と比較したときの腫瘍組織における過剰発現の頻度を検討した。結果を図４に示す。図４において、赤色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の２倍またはそれ以上であった患者を表し、緑色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の２分の１以下であった患者を表し、黒色は、非腫瘍組織と比べたときの腫瘍組織における発現が２分の１より大きく２倍未満であった患者、すなわち、有意差がないと見られた患者を表す。EGFRのアップレギュレーションは、BCLCステージAにおいて腫瘍の41.9%で観察されたが、ステージが進むとその割合は17.6%に減少し、進行期腫瘍ではEGFRのダウンレギュレーションが顕著に見られた（35.3%）。VEGFR2のアップレギュレーションと腫瘍ステージとの関連性はEGFRと類似していた。PDGFRβのアップレギュレーションは、BCLCステージAにおいては腫瘍の66.2%、BCLCステージBにおいては腫瘍51.3%、およびBCLCステージCにおいては腫瘍の64.7%で観察された。FGFR1レベルは、腫瘍ステージに関係なく、腫瘍の約20%でアップレギュレートされていた。mTORは、全ステージを通して約半数の腫瘍でアップレギュレートされていた。

（４）マーカー遺伝子発現と臨床的特徴との関連性
HCCにおけるバイオマーカー遺伝子の発現に関するさらなる洞察を得るために、これらの遺伝子のmRNAレベルと臨床病理学的特徴との関連性を調査した。EGFRのmRNA高発現とBCLCステージとの間には相関関係が見られた（p=0.049、表３および表４）。腫瘍の分化度（Edmondson分類）は、EGFRの発現およびVEGFR2の発現と有意に関連しており（それぞれp=0.003およびp=0.004）、これによって、高分化HCCではEGFRおよびVEGFR2が高レベルに発現される傾向があることが示された。EGFRは、単発腫瘍で有意に過剰発現されていた（P=0.001）。

（５）階層的クラスター分析
本発明者らは、患者をクラスター化するための階層的クラスター分析を行った。結果を図５に示す。各マーカー遺伝子の発現量（2^-ΔCT）から、非腫瘍組織におけるマーカー遺伝子の発現量に対する腫瘍組織におけるマーカー遺伝子の発現量の比（すなわち、腫瘍／非腫瘍）を算出した。図５において、赤色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の４倍またはそれ以上であった患者を表し、暗赤色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の２倍またはそれ以上であった患者を表し、黒色は、非腫瘍組織と比べたときの腫瘍組織における発現が２分の１より大きく２倍未満であった患者、すなわち、発現量に有意差がなかった患者を表し、暗緑色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の２分の１以下であった患者を表し、緑色は、腫瘍組織における発現が非腫瘍組織の４分の１以下であった患者を表す。肝細胞癌のステージを示すBCLCステージにおいて、Aは早期HCC（青色）を表し、Bは中間期HCC（緑色）を表し、Cは進行期HCC（赤色）を表す。図５において、行は個々の標的分子を意味し、列は130名の個々の患者を意味する。患者を一次的にBCLCステージごとに分類した後、標的分子の発現比（腫瘍／非腫瘍）に従ってクラスター化した。

図５に示したように、BCLCステージおよびマーカー遺伝子に従って130名の患者を特定のクラスターに分類できることが分かる。すなわち、BCLCステージAにおいて７種のマーカー遺伝子すべてを過剰発現している患者は「患者グループaI」に分類することができ、BCLCステージAにおいて５種のマーカー遺伝子（VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、c-RAFおよびFGFR1）を過剰発現しているが、２種の遺伝子（EGFRおよびmTOR）の発現が低下している患者は「患者グループaII」に分類することができ、BCLCステージAにおいて７種のマーカー遺伝子すべての発現が低下している患者は「患者グループaIII」に分類することができる。BCLCステージBおよびCの患者も、BCLCステージAと同様に分類することができる。したがって、階層的クラスター分析を行うことによって、患者におけるバイオマーカーの発現が異なれば、分子標的薬（例えばソラフェニブ）に対する有効性プロファイルおよび安全性プロファイルも異なってくると予測することができる。

（６）ソラフェニブ投与患者における感受性アッセイ
ソラフェニブを投与した２３名の患者由来のサンプルを用いて、７種のマーカー遺伝子発現パターンとソラフェニブの有効性との関連性を分析した。図５の階層的クラスター分析結果において、BCLCステージごとの一次的な分類をせずに標的分子の発現比（腫瘍／非腫瘍）に従ってクラスター化を行った後、得られたクラスタリング結果に対応させて２３名のソラフェニブ投与患者（i〜xxiii）を配置した（図６）。２３名のソラフェニブ投与患者のうち、患者「viii, x, xi」のみがソラフェニブによる治療に対して感受性を示し、すなわち、Llovet JM, et al. (2008) Sorafenib in advanced hepatocellular carcinoma. N Engl J Med 359: 378-390で定義されたRECIST（Response Evaluation Criteria in Solid Tumors）による部分奏功（partial response）を示した。残りの20名の患者は、ソラフェニブによる治療に対して感受性を示さなかった。

２３名のソラフェニブ投与患者を感受性反応の有無に基づいて上記階層的クラスター分析結果に対応させて配置すると、腫瘍組織においてFGFR1遺伝子（配列番号１の遺伝子）のmRNA発現が低下していた患者（すなわち、患者i〜vii、ix、およびxii〜xxiii）がソラフェニブによる治療に対して感受性を示さなかったことが分かる。したがって、HCC腫瘍組織におけるFGFR1遺伝子のmRNA発現量が正常組織よりも高い場合［すなわち、FGFR1遺伝子のＴ／Ｎ（腫瘍／非腫瘍）比が２よりも大きい場合]、ソラフェニブによる治療に対する抵抗性が低い患者として、すなわちソラフェニブによる治療に対する感受性が高い患者として分類することができる。ソラフェニブとFGFR1遺伝子との関連性に関する報告はなされていないため、これは非常に驚くべき結果である。

また、FGFR1遺伝子のmRNA発現の分析と組み合わせて、ソラフェニブの標的遺伝子として知られているVEGFR2（配列番号２の遺伝子）、PDGFRβ（配列番号３の遺伝子）、c-KIT（配列番号４の遺伝子）およびc-RAF（配列番号５の遺伝子）のmRNA発現、ならびに／またはソラフェニブ耐性遺伝子として知られているEGFR（配列番号６の遺伝子）およびmTOR（配列番号７の遺伝子）のmRNA発現を分析することによって、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者をより効率的に選択することができる。例えば、（１）FGFR1遺伝子のＴ／Ｎ比が２よりも大きく、（２）VEGFR2、PDGFRβ、c-KIT、およびc-RAFからなる群から選択される１種以上の遺伝子のＴ／Ｎ比が２よりも大きく、かつ（３）EGFRおよびmTORからなる群から選択される１種以上の遺伝子のＴ／Ｎ比が２未満である場合、ソラフェニブによる治療に対して抵抗性が低い患者として、すなわちソラフェニブによる治療に対して感受性が高い患者として分類することができる。

図６の結果から、分析した遺伝子のうち、PDGFRβ（配列番号３の遺伝子）、c-KIT（配列番号４の遺伝子）、EGFR（配列番号６の遺伝子）およびmTOR（配列番号７の遺伝子）がFGFR1遺伝子と組み合わせて分析するための遺伝子としてより好ましいことが分かる。したがって、例えば、（１）FGFR1遺伝子のＴ／Ｎ比が２よりも大きく、（２）PDGFRβおよびc-KITのＴ／Ｎ比が２よりも大きく、かつ（３）EGFRおよびmTORのＴ／Ｎ比が２未満である場合、ソラフェニブによる治療に対して抵抗性が低い患者として、すなわちソラフェニブによる治療に対して感受性が高い患者として分類することができる。

（７）ソラフェニブ投与患者におけるNTBS値に基づいた感受性アッセイ
さらに、本発明者らは、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者を腫瘍組織のみを用いて選択することができるかどうかを評価した。２３名のソラフェニブ投与患者それぞれの腫瘍組織における７種のマーカー遺伝子のmRNA発現量に基づいてNTBS値を算出した。結果を図７（A）および以下の表５に示す。

図７（A）において、Sは、ソラフェニブによる治療に対して感受性を示す患者（すなわち、患者viii、xおよびxi）から得られたNTBS値を表し、Rは、ソラフェニブによる治療に対して感受性を示さない患者（すなわち、患者i〜vii、ixおよびxii〜xxiii）から得られたNTBS値を表す。これらのNTBS値から得られたROC（受信者動作特性）曲線を図７（B）に示す。ROC曲線の分析から算出された閾値は0.0758であった。これらの結果から、このパラメータ、すなわち、NTBSを用いて、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者を選択できることが分かる。すなわち、NTBS値が閾値（すなわち、0.0758）よりも大きい場合、好ましくは0.1よりも大きい場合、ソラフェニブによる治療に対して感受性を持つ患者として分類することができる。

Claims

肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、
（i'）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織と正常組織において、配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量を、配列番号１〜７の遺伝子に対するプライマーセットを用いたリアルタイム逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応によって測定すること、
（ii'）肝細胞癌組織と正常組織での配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量の比を求めること、および
（iii'）
（１）正常組織での配列番号１〜５の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号１〜５の遺伝子のmRNA発現量の各比が２よりも大きく；（２）正常組織での配列番号６〜７の遺伝子のmRNA発現量に対する肝細胞癌組織での配列番号６〜７の遺伝子のmRNA発現量の各比が２未満である場合、その患者をソラフェニブによる治療に対する感受性を有する患者と決定すること
を含む分析方法。
肝細胞癌の患者がソラフェニブによる治療に対して感受性または抵抗性を持つかどうかを決定するための分析方法であって、
（i'''）肝細胞癌の患者から体外に採取された肝細胞癌組織において、配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量を、配列番号１〜７の遺伝子に対するプライマーセットを用いたリアルタイム逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応を行って、各発現量を測定すること、
（ii'''）配列番号１〜７の遺伝子のmRNA発現量の合計（ここで、前記mRNA発現量の合計は、mRNA発現量（2 ^-ΔCT ）の合計の、2を底とする対数換算値である）を算出すること、および
（iii'''）合計が0.0758よりも大きい場合、その患者をソラフェニブによる治療に対する感受性を有する患者とし、合計が0.0758よりも小さい場合、その患者をソラフェニブによる治療に対する抵抗性を有する患者として、ソラフェニブによる治療に対する感受性または抵抗性をもつかどうかを決定すること
を含む分析方法。