JP6532141B2 - 肝細胞増殖因子及びストローマ細胞由来因子１αを用いた末梢動脈疾患の予防または治療用組成物 - Google Patents

Description

本発明は、肝細胞増殖因子（Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ：ＨＧＦ）またはその異型体、及びストローマ細胞由来因子１α（Ｓｔｒｏｍａｌ Ｃｅｌｌ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｆａｃｔｏｒ １α：ＳＤＦ−１α）；または前記タンパク質をコードするポリヌクレオチドを有効成分として含む末梢動脈疾患の予防または治療用組成物に関する。

本願は、２０１４年９月２６日付で大韓民国特許庁に提出された大韓民国特許出願第１０−２０１４−０１２９３６１号に対して優先権を主張し、前記特許出願の開示事項は、本明細書に参考として組み込まれる。

心血管疾患（Ｃａｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ ｄｉｓｅａｓｅ）は、動脈硬化などの原因で血管が細くなるか、閉塞されて発生する疾患であって、大きく冠状動脈疾患（Ｃｏｒｏｎａｒｙ Ａｒｔｅｒｙ Ｄｉｓｅａｓｅ；ＣＡＤ）と末梢動脈疾患（Ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ Ａｒｔｅｒｙ Ｄｉｓｅａｓｅ；ＰＡＤ）とに大きく分けることができる。そのうち、末梢動脈疾患の代表的な種類として虚血肢疾患（Ｉｓｃｈｅｍｉｃ Ｌｉｍｂ Ｄｉｓｅａｓｅ）がある。

現在のところ、心血管疾患の治療は、血管を拡張させる薬物の使用や外科的手術がほとんどを占めている。しかし、虚血肢疾患の場合、腐って行く苦痛が過度に激しくて、患者によって抗全身性鎮痛剤を服用し、ひどくなれば、足を切断するか、死亡に至る場合もあって、根本的な治療が必要な実情である。

一方、遺伝子治療のための遺伝子伝達体としての発現ベクターは、特許文献１に記載されている。また、特許文献２には、ＨＧＦ遺伝子を用いた虚血性下肢疾患の治療効果について記載されている。

本明細書の全般に亘って多数の論文及び特許文献が参照され、その引用が表示されている。引用された論文及び特許文献の開示内容は、その全体として本明細書に参照して挿入されて、本発明が属する技術分野のレベル及び本発明の内容がより明確に説明される。

国際公開第２０００／０４０７３７号 国際公開第２００３／０７８５６８号

本発明者らは、末梢動脈疾患を予防または治療することができる薬物を開発するために鋭意研究した。その結果、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）またはその異型体、及びストローマ細胞由来因子１α（ＳＤＦ−１α）；または前記タンパク質をコードするポリヌクレオチドを併用する場合、ＨＧＦ、ＳＤＦ−１αまたはそのタンパク質をコードするポリヌクレオチドのそれぞれを単独で用いる場合よりも末梢動脈疾患に対する治療効果が顕著であることを確認することによって、本発明を完成した。

したがって、本発明の目的は、末梢動脈疾患（Ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ Ａｒｔｅｒｙ Ｄｉｓｅａｓｅ）の予防または治療用薬剤学的組成物を提供することである。

本発明の他の目的は、末梢動脈疾患の予防または治療方法を提供することである。

本発明の他の目的及び利点は、下記の発明の詳細な説明、特許請求の範囲及び図面によってより明確になる。

本発明の一態様によれば、本発明は、（ａ）肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）またはその異型体、及びストローマ細胞由来因子１α（ＳＤＦ−１α）；または（ｂ）ＨＧＦをコードするポリヌクレオチド及びＳＤＦ−１αをコードするポリヌクレオチドを有効成分として含む末梢動脈疾患の予防または治療用薬剤学的組成物を提供する。

本発明者らは、末梢動脈疾患を予防または治療することができる薬物を開発するために鋭意研究した。その結果、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）またはその異型体、及びストローマ細胞由来因子１α（ＳＤＦ−１α）；または前記タンパク質をコードするポリヌクレオチドを併用する場合、ＨＧＦ、ＳＤＦ−１αまたはそのタンパク質をコードするポリヌクレオチドのそれぞれを単独で用いる場合よりも末梢動脈疾患に対する治療効果が顕著であることを確認した。

本発明の治療戦略は、大きくタンパク質治療及び遺伝子治療の２つに分類されうる。本発明のタンパク質治療剤の戦略によれば、ＨＧＦまたはその異型体、及びＳＤＦ−１αタンパク質を併用する。一方、本発明の遺伝子治療剤の戦略によれば、ＨＧＦをコードする１つ以上のヌクレオチド配列及びＳＤＦ−１αをコードする１つ以上のヌクレオチド配列を投与する。ＨＧＦをコードする１つ以上のヌクレオチド配列及びＳＤＦ−１αをコードする１つ以上のヌクレオチド配列は、１つのポリヌクレオチドで提供されるか、別途のポリヌクレオチドで提供されうる。本発明の一具現例によれば、本発明のＨＧＦをコードする１つ以上のヌクレオチド配列及びＳＤＦ−１αをコードする１つ以上のヌクレオチド配列は、別途のポリヌクレオチドで提供される。

本発明の特徴及び利点を要約すれば、次の通りである：
（ａ）本発明は、末梢動脈疾患（ＰＡＤ）の予防または治療用薬学的組成物を提供する。
（ｂ）本発明の組成物を用いれば、血管内皮細胞の遊走及び血管生成の顕著な促進を通じてＨＧＦ、その異型体、ＳＤＦ−１αまたはそのタンパク質をコードするポリヌクレオチドを単独で用いた場合よりも末梢動脈疾患（例えば、虚血肢疾患）を効果的に予防または治療することができる。

ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αの併用が、ＨＵＶＥＣの細胞遊走に及ぼす影響を示す。 ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αの併用が、血管生成に及ぼす影響を示す。 ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αの併用が、血管生成に及ぼす影響を示す。 経時的にｐＣＫ−ＨＧＦ及びｐＣＫ−ＳＤＦ−１αの併用が、下肢虚血マウスモデルの足の状態に及ぼす影響を示す。

以下、本発明について詳しく記載する。

本明細書で使われる用語“ＨＧＦの異型体（ｉｓｏｆｏｒｍ）”は、あらゆる対立遺伝子変形体（ｖａｒｉａｎｔｓ）を含む、動物で自然に生成される（ｎａｔｕｒａｌｌｙ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ）ＨＧＦアミノ酸配列と少なくとも８０％の同じアミノ酸配列とを有するＨＧＦポリペプチドを意味する。例えば、ＨＧＦ異型体は、ＨＧＦの正常型（ｎｏｒｍａｌ ｆｏｒｍ）または野生型（ｗｉｌｄ ｔｙｐｅ）、そして、ＨＧＦの多様な変異体（例えば、スプライシング変異体及び欠損変異体）をいずれも包括する意味を有する。

本明細書で使われる用語“予防”は、本発明の組成物の投与で末梢動脈疾患を抑制または進行を遅延させるあらゆる行為を意味する。

本明細書で使われる用語“治療”は、（ａ）末梢動脈疾患の発展の抑制；（ｂ）末梢動脈疾患の軽減；または（ｃ）末梢動脈疾患の除去を意味する。

本発明の一具現例によれば、本発明のＨＧＦは、組換えヒトＨＧＦタンパク質を含む。本発明の他の具現例によれば、本発明のＨＧＦは、配列表の配列番号：１のアミノ酸配列を含む。

本発明の一具現例によれば、本発明のＨＧＦ異型体は、全長ＨＧＦ（ｆｕｌｌ ｌｅｎｇｔｈ ＨＧＦ；ｆｌＨＧＦ）及び欠損した変異型ＨＧＦ（ｄｅｌｅｔｅｄ ｖａｒｉａｎｔ ＨＧＦ；ｄＨＧＦ）を含む。

本明細書で使われる用語“ｆｌＨＧＦ”は、動物ＨＧＦのアミノ酸１〜７２８配列、一具現例によれば、哺乳動物ＨＧＦのアミノ酸１〜７２８配列、他の具現例によれば、ヒトＨＧＦのアミノ酸１〜７２８配列を意味する。

本明細書で使われる用語“ｄＨＧＦ”は、動物ＨＧＦ遺伝子、一具現例によれば、哺乳動物ＨＧＦ遺伝子の選択的スプライシングによって生成されるＨＧＦタンパク質の欠損した変形体を意味する。本発明の他の具現例によれば、本発明のｄＨＧＦは、全長ＨＧＦ配列からα鎖の最初のクリングルドメインで５個のアミノ酸（Ｆ、Ｌ、Ｐ、Ｓ及びＳ）が欠損した７２３個のアミノ酸からなるヒトＨＧＦである。

本発明の一具現例によれば、本発明の全長ＨＧＦは、配列表の配列番号：２のアミノ酸配列を含み、本発明の欠損した変異型ＨＧＦは、配列表の配列番号：３のアミノ酸配列を含む。

本発明の一具現例によれば、本発明のＳＤＦ−１αは、配列表の配列番号：４または配列表の配列番号：８のアミノ酸配列を含む。

下記の実施例から立証したように、本発明のＨＧＦ及びＳＤＦ−１αタンパク質をＨＵＶＥＣに併用処理した場合、それぞれのタンパク質を単独で処理した場合よりも血管内皮細胞の遊走程度及び血管の生成程度をさらに効果的に促進したので、ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αタンパク質の併用投与が、末梢動脈疾患の予防または治療に効果的に用いられるということを確認した。

本発明の一具現例によれば、本発明のＨＧＦの異型体は、別途のヌクレオチド配列によってコードされるか、または単一のポリヌクレオチドによってコードされる。本発明である薬剤学的組成物は、ＨＧＦの異型体が別途のポリヌクレオチドによってコードされる場合に、２つ以上のポリヌクレオチドを含み、ＨＧＦの異型体が単一のポリヌクレオチドによってコードされる場合には、前記単一のポリヌクレオチドを含む１つ以上のポリヌクレオチドを含む。本発明のポリヌクレオチドは、ＨＧＦ異型体の発現を調節する１つ以上の調節配列（例えば、プロモーターまたはエンハンサー）に作動可能に連結されうる。

ＨＧＦの異型体が別途のポリヌクレオチドによってコードされる場合、２つの方式で発現カセットを構築することができる。最初の方式によれば、異型体のそれぞれに対するＣＤＳ（ｃｏｄｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ）に発現調節配列を連結して発現カセットを構築する。二番目の方式によれば、“発現調節配列−第１異型体ＣＤＳ−ＩＲＥＳ−第２異型体ＣＤＳ−転写終結配列”のような方式でＩＲＥＳ（ｉｎｔｅｒｎａｌ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ｅｎｔｒｙ ｓｉｔｅ）または２Ａペプチドを用いて発現カセットを構築する。ＩＲＥＳは、遺伝子の翻訳をＩＲＥＳ配列で開始させることによって、２個以上の関心遺伝子を同じ構造物で発現させる。

ＨＧＦの異型体が単一のポリヌクレオチドによってコードされる場合、前記異型体をいずれもコードしているポリヌクレオチドは、単一の発現調節配列に作動可能に連結される。

本発明において、ＨＧＦの異型体は、２つ以上の互いに異なる種類の異型体、例えば、ｆｌＨＧＦ及びｄＨＧＦを同時に発現するハイブリッド（ｈｙｂｒｉｄ）ＨＧＦ遺伝子によってコードされうる。

本発明の一具現例によれば、前記ハイブリッドＨＧＦ遺伝子は、ヒトＨＧＦ遺伝子のエキソン１〜４に該当する配列、ヒトＨＧＦ遺伝子のイントロン４またはその断片配列、及びヒトＨＧＦ遺伝子のエキソン５〜１８に該当する配列を含む。

前記イントロン４を含むハイブリッドＨＧＦ遺伝子は、７１１３ｂｐ長であり、配列表の配列番号：７のヌクレオチド配列を含む。前記ハイブリッドＨＧＦ遺伝子は、選択的にＨＧＦ ｃＤＮＡのエキソン４と５との間にイントロン４の断片を含みうる。本発明の特定の具現例によれば、前記ハイブリッドＨＧＦ遺伝子は、配列表の配列番号：５のヌクレオチド配列を含む。

本発明の“ＨＧＦ異型体”、ハイブリッドＨＧＦ遺伝子（例えば、ＨＧＦ−Ｘ７）に関しては、特許文献２に報告されたことがあり、前記特許文献の開示内容は、その全体として本明細書に参考として組み込まれる。

本発明で利用可能なＨＧＦ異型体のアミノ酸またはヌクレオチド配列は、野生型ヒトＨＧＦ異型体の配列と実質的な同一性を示すアミノ酸またはヌクレオチド配列も含むものと解釈される。前記実質的な同一性は、野生型ヒトＨＧＦ異型体のアミノ酸またはヌクレオチド配列と任意の異なる配列とを最大限対応してアラインし、当業者に通用されるアルゴリズムを用いてアラインされた配列を分析した場合に、少なくとも８０％の相同性、より望ましくは、少なくとも９０％の相同性、最も望ましくは、少なくとも９５％の相同性を示すアミノ酸配列またはヌクレオチド配列を意味する。配列の比較のためのアラインメント方法は、当業者に公知されている。アラインメントに対する多様な方法及びアルゴリズムは、Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｗａｔｅｒｍａｎ，Ａｄｖ．Ａｐｐｌ．Ｍａｔｈ．２：４８２（１９８１）；Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．４８：４４３（１９７０）；Ｐｅａｒｓｏｎ ａｎｄ Ｌｉｐｍａｎ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２４：３０７−３１（１９８８）；Ｈｉｇｇｉｎｓ ａｎｄ Ｓｈａｒｐ，Ｇｅｎｅ ７３：２３７−４４（１９８８）；Ｈｉｇｇｉｎｓ ａｎｄ Ｓｈａｒｐ，ＣＡＢＩＯＳ ５：１５１−３（１９８９）；Ｃｏｒｐｅｔ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１６：１０８８１−９０（１９８８）；Ｈｕａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｃｏｍｐ．Ａｐｐｌ．ＢｉｏＳｃｉ．８：１５５−６５（１９９２）、及びＰｅａｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２４：３０７−３１（１９９４）に開示されている。ＮＣＢＩ Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ（ＢＬＡＳＴ）（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０（１９９０））は、ＮＢＣＩ（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）などで入手可能であり、インターネット上でｂｌａｓｔｐ、ｂｌａｓｍ、ｂｌａｓｔｘ、ｔｂｌａｓｔｎ及びｔｂｌａｓｔｘのような配列分析プログラムと連動して用いられる。ＢＬＳＡＴは、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／で接続可能である。このプログラムを用いた配列相同性の比較方法は、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／ｂｌａｓｔ＿ｈｅｌｐ．ｈｔｍｌで確認することができる。

本発明の一具現例によれば、本発明のＳＤＦ−１αをコードするポリヌクレオチドは、配列表の配列番号：６を含む。

本発明の一具現例によれば、本発明の末梢動脈疾患は、虚血肢疾患である。下記の実施例から立証したように、本発明の組成物は、下肢虚血を誘導したマウスモデルでｐＣＫ投与群、ｐＣＫ−ＳＤＦ−１ａ投与群、及びｐＣＫ−ＨＧＦ投与群の足の状態が悪くなることとは異なって、定常状態を継続的に保持させる効果がある。

本発明の一具現例によれば、本発明のポリヌクレオチドは、裸ＤＮＡ（ｎａｋｅｄ ＤＮＡ）または遺伝子運搬体に含まれているヌクレオチドである。本発明の組成物は、遺伝子治療分野で通常の公知の多様な運搬方法を通じて生体内に適用可能であり、前記遺伝子運搬体は、例えば、ベクター、プラスミド及びウイルスベクターを含むが、これらに限定されるものではない。

（ｉ）プラスミド（ベクター）
本発明のポリヌクレオチドを運ぶ運搬体としてプラスミド（ベクター）が用いられうる。ベクターに含まれるポリヌクレオチドは、適した発現カセット内に存在することが望ましい。前記発現カセットでポリヌクレオチドは、プロモーターに作動的に連結されることが望ましい。

本明細書で使われた用語“作動的に連結された”は、核酸発現調節配列（例：プロモーター、シグナル配列または転写調節因子結合位置のアレイ）と他の核酸配列との間の機能的な結合を意味し、これにより、前記調節配列は、前記他の核酸配列の転写及び／または解毒を調節する。

本発明において、ポリヌクレオチド配列に結合されたプロモーターは、一具現例によれば、動物細胞、他の具現例によれば、哺乳動物細胞、特定の具現例によれば、ヒト細胞で作動してヌクレオチド配列の転写を調節することができるものであって、哺乳動物ウイルス由来のプロモーター及び哺乳動物細胞のゲノム由来のプロモーターを含み、例えば、ＣＭＶ（ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏ ｖｉｒｕｓ）プロモーター、アデノウイルス後期プロモーター、ワクシニアウイルス７．５Ｋプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＨＳＶのｔｋプロモーター、ＲＳＶプロモーター、ＥＦ１αプロモーター、メタロチオネインプロモーター、β−アクチンプロモーター、ヒトＩＬ−２遺伝子のプロモーター、ヒトＩＦＮ遺伝子のプロモーター、ヒトＩＬ−４遺伝子のプロモーター、ヒトリンホトキシン遺伝子のプロモーター、及びヒトＧＭ−ＣＳＦ遺伝子のプロモーターを含むが、これらに限定されるものではない。本発明の一具現例によれば、本発明で用いられるプロモーターは、ヒトＣＭＶ（ｈＣＭＶ）のＩＥ（ｉｍｍｅｄｉａｔｅｌｙ ｅａｒｌｙ）遺伝子由来のプロモーターまたはＥＦ１αプロモーターであり、他の具現例によれば、ＣＭＶ ＩＥ遺伝子のプロモーター／エンハンサー及びエキソン１全体配列からエキソン２のＡＴＧ開始コドン直前までを含む５’−ＵＴＲ（ｕｎｔｒａｎｓｌａｔｅｄ ｒｅｇｉｏｎ）である。

本発明で用いられる発現カセットは、ポリアデニル化配列を含み、例えば、ウシ成長ホルモンターミネーター（Ｇｉｍｍｉ，Ｅ．Ｒ．，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１７：６９８３−６９９８（１９８９））、ＳＶ４０由来ポリアデニル化配列（Ｓｃｈｅｋ，Ｎ，ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１２：５３８６−５３９３（１９９２））、ＨＩＶ−１ ｐｏｌｙＡ（Ｋｌａｓｅｎｓ，Ｂ．Ｉ．Ｆ．，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２６：１８７０−１８７６（１９９８））、β−グロビンｐｏｌｙＡ（Ｇｉｌ，Ａ．，ｅｔ ａｌ，Ｃｅｌｌ ４９：３９９−４０６（１９８７））、ＨＳＶ ＴＫ ｐｏｌｙＡ（Ｃｏｌｅ，Ｃ．Ｎ．ａｎｄ Ｔ．Ｐ．Ｓｔａｃｙ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：２１０４−２１１３（１９８５））、またはポリオーマウイルスｐｏｌｙＡ（Ｂａｔｔ，Ｄ．Ｂ ａｎｄ Ｇ．Ｇ．Ｃａｒｍｉｃｈａｅｌ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１５：４７８３−４７９０（１９９５））を含むが、これらに限定されるものではない。

本発明の他の具現例によれば、本発明の遺伝子運搬体は、ｐＣＫ、ｐＣＰ、ｐＶＡＸ１またはｐＣＹベクターを用い、本発明の特定の具現例によれば、ｐＣＫベクターを利用できる。前記ｐＣＫベクターは、特許文献１に詳しく開示されており、前記特許文献の開示内容は、その全体として本明細書に参考として組み込まれる。

（ｉｉ）レトロウイルス
レトロウイルスは、自身の遺伝子を宿主のゲノムに挿入させ、大量の外来遺伝物質を運び、感染させることができる細胞のスペクトルが広いために、遺伝子伝達ベクターとして多用されている。

レトロウイルスベクターを構築するために、本発明のポリヌクレオチド配列は、レトロウイルスの配列の代わりに、レトロウイルスゲノムに挿入されて複製不能のウイルスを生産する。ビリオンを生産するために、ｇａｇ、ｐｏｌ及びｅｎｖ遺伝子を含むが、ＬＴＲ（ｌｏｎｇ ｔｅｒｍｉｎａｌ ｒｅｐｅａｔ）とψ配列はないパッケージング細胞株を構築する（Ｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ，３３：１５３−１５９（１９８３））。本発明のポリヌクレオチド配列、ＬＴＲ及びψ配列を含む組換えプラスミドを、前記細胞株に移入すれば、ψ配列は、組換えプラスミドのＲＮＡ転写体の生産を可能にし、この転写体は、ウイルスでパッケージングされ、ウイルスは、培地に排出される（Ｎｉｃｏｌａｓ ａｎｄ Ｒｕｂｉｎｓｔｅｉｎ “Ｒｅｔｒｏｖｉｒａｌ ｖｅｃｔｏｒｓ，” Ｉｎ：Ｖｅｃｔｏｒｓ：Ａ ｓｕｒｖｅｙ ｏｆ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ ｖｅｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｕｓｅｓ，Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ ａｎｄ Ｄｅｎｈａｒｄｔ（ｅｄｓ．），Ｓｔｏｎｅｈａｍ：Ｂｕｔｔｅｒｗｏｒｔｈ，４９４−５１３（１９８８））。組換えレトロウイルスを含有する培地を収集し、濃縮して遺伝子伝達システムとして用いる。

２世代レトロウイルスベクターを用いた遺伝子伝達が発表された。Ｋａｓａｈａｒａなど（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６６：１３７３−１３７６（１９９４））は、モロニーマウス白血病ウイルス（Ｍｏｌｏｎｅｙ ｍｕｒｉｎｅ ｌｅｕｋａｅｍｉａ ｖｉｒｕｓ）の変異体を製造し、ここで、ＥＰＯ（ｅｒｙｔｈｒｏｐｏｉｅｔｉｎ）配列をエンベロープ部位に挿入して新たな結合特性を有するキメリックタンパク質を生産した。本発明のポリヌクレオチド配列も、このような２世代レトロウイルスベクターの構築戦略によって、レトロウイルスに搭載されうる。

（ｉｉｉ）アデノウイルス
アデノウイルスは、中間程度のゲノムサイズ、操作の便宜性、高いタイター、幅広いターゲット細胞及び優れた感染性のために、遺伝子伝達ベクターとして多用されている。ゲノムの両末端は、１００〜２００ｂｐのＩＴＲ（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｔｅｒｍｉｎａｌ ｒｅｐｅａｔ）を含み、これは、ＤＮＡ複製及びパッケージングに必須的なシスエレメントである。ゲノムのＥ１領域（Ｅ１Ａ及びＥ１Ｂ）は、転写及び宿主細胞遺伝子の転写を調節するタンパク質をコードする。Ｅ２領域（Ｅ２Ａ及びＥ２Ｂ）は、ウイルスＤＮＡ複製に関与するタンパク質をコードする。

現在開発されたアデノウイルスベクターのうち、Ｅ１領域が欠けた複製不能アデノウイルスが多用されている。一方、Ｅ３領域は、通常のアデノウイルスベクターから除去されて、外来遺伝子が挿入される位置を提供する（Ｔｈｉｍｍａｐｐａｙａ，Ｂ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ，３１：５４３−５５１（１９８２）；及びＲｉｏｒｄａｎ，Ｊ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４５：１０６６−１０７３（１９８９））。したがって、本発明のポリヌクレオチド配列は、欠失したＥ１領域（Ｅ１Ａ領域及び／またはＥ１Ｂ領域）またはＥ３領域に挿入されることが望ましい。また、前記ヌクレオチド配列は、欠失したＥ４領域にも挿入されうる。本明細書で、ウイルスゲノム配列と関連して使われる用語、“欠失”は、当該配列が完全に欠失したものだけではなく、部分的に欠失したものも含む意味を有する。また、アデノウイルスは、野生型ゲノムの約１０５％までパッキングすることができるために、約２ｋｂを追加的にパッケージングすることができる（Ｇｈｏｓｈ−Ｃｈｏｕｄｈｕｒｙ ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ．，６：１７３３−１７３９（１９８７））。したがって、アデノウイルスに挿入される前述した外来配列は、アデノウイルスのゲノムに追加的に結合させることもできる。

アデノウイルスは、４２個の異なる血清型及びＡ−Ｆのサブグループを有する。そのうち、サブグループＣに属するアデノウイルスタイプ５が、本発明のアデノウイルスベクターを得るための最も望ましい出発物質である。アデノウイルスタイプ５についての生化学的及び遺伝的情報は、よく知られている。アデノウイルスによって運ばれる外来遺伝子は、エピソームと同じ方式で複製され、これにより、宿主細胞に対して遺伝的毒性が非常に低い。したがって、アデノウイルス遺伝子伝達システムを用いた遺伝子治療が安全であると判断される。

（ｉｖ）ＡＡＶベクター
アデノ関連ウイルス（ＡＡＶ）は、非分裂細胞を感染させ、多種の細胞に感染することができる能力を有しているために、本発明の遺伝子伝達システムとして適している。ＡＡＶベクターの製造及び用途についての詳細な説明は、米国特許第５，１３９，９４１号及び第４，７９７，３６８号に詳細に開示されている。

遺伝子伝達システムとしてのＡＡＶについての研究は、ＬａＦａｃｅ ｅｔ ａｌ，Ｖｉｏｌｏｇｙ，１６２：４８３４８６（１９８８）、Ｚｈｏｕ ｅｔ ａｌ．，Ｅｘｐ．Ｈｅｍａｔｏｌ．（ＮＹ），２１：９２８−９３３（１９９３）、Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．，９４：１４４０−１４４８（１９９４）、及びＦｌｏｔｔｅ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ，２：２９−３７（１９９５）に開示されている。最近、ＡＡＶベクターは、嚢胞性繊維症の治療剤として臨床Ｉを実施している。

典型的に、ＡＡＶウイルスは、２つのＡＡＶ末端リピートが横に位置されている目的の遺伝子配列を含むプラスミド（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６２：１９６３−１９７３（１９８８）；及びＳａｍｕｌｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６３：３８２２−３８２８（１９８９））及び末端リピートのない野生型ＡＡＶコーディング配列を含む発現プラスミド（ＭｃＣａｒｔｙ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６５：２９３６−２９４５（１９９１））を同時形質転換させて製造される。

（ｖ）他のウイルスベクター
他のウイルスベクターも、本発明のポリヌクレオチド配列を生体内に運ぶのに用いられる。ワクシニアウイルス（Ｐｕｈｌｍａｎｎ Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １０：６４９−６５７（１９９９）；Ｒｉｄｇｅｗａｙ， “Ｍａｍｍａｌｉａｎ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｖｅｃｔｏｒｓ，” Ｉｎ：Ｖｅｃｔｏｒｓ：Ａ ｓｕｒｖｅｙ ｏｆ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ ｖｅｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｕｓｅｓ．Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ ａｎｄ Ｄｅｎｈａｒｄｔ，ｅｄｓ．Ｓｔｏｎｅｈａｍ：Ｂｕｔｔｅｒｗｏｒｔｈ，４６７−４９２（１９８８）；Ｂａｉｃｈｗａｌ ａｎｄ Ｓｕｇｄｅｎ， “Ｖｅｃｔｏｒｓ ｆｏｒ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎｉｍａｌ ＤＮＡ ｖｉｒｕｓｅｓ：Ｔｒａｎｓｉｅｎｔ ａｎｄ ｓｔａｂｌｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｇｅｎｅｓ，” Ｉｎ：Ｋｕｃｈｅｒｌａｐａｔｉ Ｒ，ｅｄ．Ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ．Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ：Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ，１１７−１４８（１９８６）、及びＣｏｕｐａｒ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ，６８：１−１０（１９８８））、レンチウイルス（Ｗａｎｇ Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１０４（１１）：Ｒ５５−６２（１９９９））またはヘルペスシンプレックスウイルス（Ｃｈａｍｂｅｒ Ｒ．，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ＵＳＡ ９２：１４１１−１４１５（１９９５））由来のベクターも、前記ポリヌクレオチドを細胞内に運ぶことができる運搬システムとして用いられる。

（ｖｉ）リポソーム
リポソームは、水相に分散されたリン脂質によって自動的に形成される。外来ＤＮＡ分子をリポソームで成功的に細胞内に運んだ例は、Ｎｉｃｏｌａｕ及びＳｅｎｅ，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，７２１：１８５−１９０（１９８２）、及びＮｉｃｏｌａｕ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１４９：１５７−１７６（１９８７）に開示されている。本発明のポリヌクレオチド配列を内包したリポソームは、エンドサイトーシス、細胞表面への吸着またはプラズマ細胞膜との融合などの機転を通じて細胞と相互作用して、細胞内にポリヌクレオチド配列を運ぶ。

本発明で、本発明のポリヌクレオチド配列が裸（ｎａｋｅｄ）組換えＤＮＡ分子またはプラスミド（ベクター）に搭載された場合には、微小注入法（Ｃａｐｅｃｃｈｉ，Ｍ．Ｒ．，Ｃｅｌｌ，２２：４７９（１９８０）；及びＨａｒｌａｎｄとＷｅｉｎｔｒａｕｂ，Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１０１：１０９４−１０９９（１９８５））、リン酸カルシウム沈澱法（Ｇｒａｈａｍ，Ｆ．Ｌ．ｅｔ ａｌ．，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，５２：４５６（１９７３）；及びＣｈｅｎとＯｋａｙａｍａ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．７：２７４５−２７５２（１９８７））、電気穿孔法（Ｎｅｕｍａｎｎ，Ｅ．ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ．，１：８４１（１９８２）；及びＴｕｒ−Ｋａｓｐａ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，６：７１６−７１８（１９８６））、リポソーム−媒介形質感染法（Ｗｏｎｇ，Ｔ．Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ，１０：８７（１９８０）；Ｎｉｃｏｌａｕ及びＳｅｎｅ，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，７２１：１８５−１９０（１９８２）；及びＮｉｃｏｌａｕ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１４９：１５７−１７６（１９８７））、ＤＥＡＥ−デキストラン処理法（Ｇｏｐａｌ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，５：１１８８−１１９０（１９８５））、及び遺伝子ボンバードメント（Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，８７：９５６８−９５７２（１９９０））方法によって、ポリヌクレオチド配列を細胞内に移入させることができる。

本発明のポリヌクレオチド配列がウイルスベクターに基づいて製作された場合には、当業者に公知の多様なウイルス感染方法によってポリヌクレオチド配列を細胞内に運ぶことができる。ウイルスベクターを用いた宿主細胞の感染は、前述した引用文献に記載されている。

本発明の他の具現例によれば、本発明の遺伝子運搬体は、ベクターである。

本発明の一具体例によれば、本発明のベクターは、プラスミドであり、本発明の特定の具現例によれば、本発明のプラスミドは、ｐＣＫである。ｐＣＫを用いてＨＧＦの２つ以上の異型体を発現する単一ポリヌクレオチドを含む組換えベクターは、特許文献１及び特許文献２に詳しく記載されている。

本発明の組成物は、薬剤学的に許容される担体を含みうる。本発明の組成物に含まれる薬剤学的に許容される担体は、製剤時に通用されるものであって、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、澱粉、アカシアゴム、リン酸カルシウム、アルギン酸、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微小結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、シロップ、メチルセルロース、ヒドロキシ安息香酸メチル、ヒドロキシ安息香酸プロピル、滑石、ステアリン酸マグネシウム、ミネラルオイルなどを含むが、これらに限定されるものではない。本発明の薬剤学的組成物は、前記成分の以外に、潤滑剤、湿潤剤、甘味剤、香味剤、乳化剤、懸濁剤、保存剤などをさらに含みうる。適した薬剤学的に許容される担体及び製剤は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（１９ｔｈ ｅｄ．，１９９５）に詳しく記載されている。

本発明の一具現例によれば、本発明の薬剤学的組成物は、非経口投与する。例えば、静脈内投与、腹腔内投与、皮下投与、皮内投与、脊髄内投与、脊髄腔内投与、脳室内投与、脳実質内投与、頭蓋腔内投与、筋肉内投与または局部投与を用いて投与することができる。本発明の他の具現例によれば、本発明の薬剤学的組成物は、筋肉内、脊髄内、脊髄腔内、脳室内、脳実質内、頭蓋腔内に投与することができる。

本発明の薬剤学的組成物は、注射で製剤化されて投与される。本発明の薬剤学的組成物の適した投与量は、製剤化方法、投与方式、患者の年齢、体重、性、疾病症状の程度、投与時間、投与経路、排泄速度、及び反応感応性のような要因によって多様であり、通常熟練された医師は、目的する治療に効果的な投与量を容易に決定及び処方することができる。

本発明の一具現例によれば、本発明のＨＧＦ、その異型体、及びＳＤＦ−１αは、それぞれ１０ｎｇ〜１００ｍｇの投与量で投与され、前記タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、それぞれ１０μｇ〜１００ｍｇの投与量で投与される。前記ＨＧＦ、その異型体、ＳＤＦ−１αまたはそれをコードするポリヌクレオチドの投与が一回を超過して反復される時、投与量は毎回同一または異なる。

本発明の薬剤学的組成物は、当業者が容易に実施することができる方法によって、薬剤学的に許容される担体及び／または賦形剤を用いて製剤化されることによって、単位容量の形態で製造されるか、または多容量容器内に内入させて製造可能である。この際、剤形は、オイルまたは水性媒質中の溶液、懸濁液または乳液の形態であるか、エクストラクト剤、粉末剤、顆粒剤、錠剤、またはカプセル剤の形態でもあり、分散剤または安定化剤をさらに含みうる。

本発明の他の態様によれば、本発明は、（ａ）肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）またはその異型体、及びストローマ細胞由来因子１α（ＳＤＦ−１α）；または（ｂ）ＨＧＦまたはその異型体をコードするポリヌクレオチド及びＳＤＦ−１αをコードするポリヌクレオチドを有効成分として含む組成物を、それを必要とする個体に投与する段階を含む末梢動脈疾患の予防または治療方法を提供する。

本明細書で使われた用語、“投与”または“投与する”は、本発明の組成物の治療的有効量を前記組成物を必要とする個体（すなわち、対象体）に直接に投与することによって、対象体の体内で同量を形成させることを言う。したがって、用語“投与”は、本発明の組成物を病変部位に注入することを含むので、用語“投与する”は、“注入する”のような意味として使われる。

組成物の“治療的有効量”は、組成物を投与しようとする個体に治療的または予防的効果を提供するのに十分な組成物の含量を意味し、これにより、“予防的有効量”を含む意味である。本明細書で使われた用語、“個体”は、制限なしにヒト、マウス、ラット、ギニーピッグ、犬、猫、馬、牛、豚、猿、チンパンジー、ヒヒまたは赤毛猿を含む。具体的には、本発明の個体は、ヒトである。

本発明である末梢動脈疾患の予防または治療方法の場合、本発明の一態様である末梢動脈疾患の予防または治療用薬学的組成物を投与する段階を含む方法なので、重複される内容については、本明細書の記載の過度な複雑性を避けるために省略する。

以下、実施例を通じて本発明をさらに詳しく説明する。これら実施例は、単に本発明をより具体的に説明するためのものであって、本発明の要旨によって、本発明の範囲が、これら実施例によって制限されないということは、当業者にとって自明である。

実施例１．ＨＵＶＥＣ（Ｈｕｍａｎ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ ｖｅｉｎ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ）の細胞遊走にＨＧＦとＳＤＦ−１αとの組合せが及ぼす効能確認の実験方法
ヒトの臍帯から静脈の内皮細胞のみを取って、単一細胞化した後、培養して得たＨＵＶＥＣをＬｏｎｚａで購買した。

ＨＵＶＥＣの細胞遊走で、ＨＧＦ（配列表の配列番号：１、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ Ｃａｔ Ｎｏ．２９４−ＨＧ−０２５／ＣＦ、米国）及びＳＤＦ−１α（配列表の配列番号：４、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ Ｃａｔ Ｎｏ．３５０−ＮＳ−０１０／ＣＦ、米国）が及ぼす影響を確認するために、トランスウェル（Ｃｏｒｎｉｎｇ、ｃａｔ＃３４２２）を１％ゼラチンでコーティングした後、ウェル当たり２×１０^４個の細胞を播種した。細胞が貼り付けられるように１時間培養した後、それぞれ次のように実験群を編成した（５０ｎｇ／ｍｌ ＨＧＦ；５０ｎｇ／ｍｌ ＳＤＦ−１α；２５ｎｇ／ｍｌ ＨＧＦ＋２５ｎｇ／ｍｌ ＳＤＦ−１α）。各実験群に当該タンパク質を２時間処理し、細胞遊走の程度を測定するために、細胞をクリスタルバイオレットで染色した後、顕微鏡を用いてトランスウェルを移動した細胞の個数を測定した。

その結果、５０ｎｇ／ｍｌ ＨＧＦを単独で処理した場合、対照群に比べて、１．８倍細胞遊走が増加し、５０ｎｇ／ｍｌ ＳＤＦ−１αを単独で処理した場合、対照群に比べて、１．５倍細胞遊走が増加した。ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αを各２５ｎｇ／ｍｌずつ共に処理した場合には、細胞遊走が対照群に比べて、２．５倍増加して、それぞれを単独で処理したよりも細胞遊走に対する効果がさらに優れることを確認した（図１）。

実施例２．マトリゲルプラグ分析（Ｍａｔｒｉｇｅｌ ｐｌｕｇ ａｓｓａｙ）でＨＧＦとＳＤＦ−１αとの組合せが血管生成に及ぼす効能確認
マトリゲルプラグ分析を用いて血管生成にＨＧＦとＳＤＦ−１αとが及ぼす影響を確認した。

５週齢のＣ５７ＢＬ／６マウスを次のように分けて実験群を編成した（ＰＢＳ；３００ｎｇ ＨＧＦ；１５０ｎｇ ＨＧＦ＋１５０ｎｇ ＳＤＦ−１α）。４００μｌマトリゲルマトリックス（Ｃｏｒｎｉｎｇ、ｃａｔ＃３５６２３１）にヘパリン１ユニットを入れ、それぞれ実験群に該当するタンパク質を添加した。このように作られたマトリゲル混合物をマウス腹部に皮下注射した。７日後に、マウスを犠牲させた後、移植したマトリゲルマトリックスを分離し、血管の生成程度を定量化するために、それぞれのマトリゲルに含まれたヘモグロビン（ｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎ）数値をＤｒａｂｋｉｎ’ｓ ａｓｓａｙを通じて測定した。

その結果、３００ｎｇ ＨＧＦを入れた群の場合、ＰＢＳを入れた群に比べて、ヘモグロビンの数値が約１．８倍増加し、ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αをそれぞれ１５０ｎｇずつ入れた群の場合、ＰＢＳ群に比べて、ヘモグロビンの数値が約２．３倍増加して、ＨＧＦ単独投与時よりも血管の生成程度が向上したことを確認した（図２ａ及び図２ｂ）。

実施例３．下肢虚血（ｈｉｎｄｌｉｍｂ ｉｓｃｈｅｍｉａ；ＨＬＩ）マウスモデルでのＨＧＦ及びＳＤＦ−１αの投与の効能確認

実施例３−１：プラスミドＤＮＡの製造
ｐＣＫ−ＨＧＦプラスミドの製造
下肢虚血マウスモデルに対する実験に先立って、使用するプラスミドＤＮＡを次のような方式で製造した。ｐＣＫベクターは、発現しようとする対象をヒトサイトメガロウイルス（ｈＣＭＶ）のエンハンサー／プロモーターの調節下にあるように構築されたベクターであり、Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２７２：２３０（２０００）；特許文献１に詳しく開示されている。本発明で用いたｐＣＫ−ＨＧＦプラスミドは、特許文献２に記載されている方法によって、ヒトＨＧＦ遺伝子のエキソン４及び５の間にヒトＨＧＦ遺伝子のイントロン４の断片配列が挿入されたハイブリッド遺伝子（すなわち、ＨＧＦ−Ｘ７遺伝子；配列表の配列番号：５）をｐＣＫベクターに挿入して製作した。

ｐＣＫ−ＳＤＦ−１αプラスミドの製造
ヒトＳＤＦ−１αの遺伝子情報（ＮＣＢＩ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＭ＿１９９１６８．３）に基づいて両端にＮｈｅＩとＮｏｔＩ制限酵素配列を追加して遺伝子合成を行った。合成されたヒトＳＤＦ−１α切片をＮｈｅＩとＮｏｔＩとを用いてｐＣＫベクターに挿入した。ｐＣＫベクターに挿入されたヒトＳＤＦ−１α遺伝子の配列は、配列表の配列番号：６と同じである。

実施例３−２：下肢虚血（ＨＬＩ）マウスモデルの製造及びプラスミドＤＮＡの投与
ＨＬＩマウスモデルは、ヒトの重症下肢虚血（Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｌｉｍｂ Ｉｓｃｈｅｍｉａ；ＣＬＩ）を模倣する最も代表的なマウスモデルである［１、２］。前記マウスモデルの制作方法は、次の通りである。Ｂａｌｂ／ｃマウス７週齢の雄をゾレチル（ｚｏｌｅｔｉｌ）とルンプン（ｒｕｍｐｕｎ）混合液で麻酔させた後、太もも側の皮膚を約１ｃｍ切開させた。その後、太ももの内側にある大腿部動脈（ｆｅｍｏｒａｌ ａｒｔｅｒｙ）の位置を探し出して、６−０太さの糸で動脈の約１ｃｍ程度の長さをよく縛り、その間の組織を切り取って血管を除去した。このような方法を通じて太ももの下に下がる血管を除去することによって、虚血条件を誘導することができる。ＨＬＩ誘導と同時に、除去した血管付近の筋肉に評価しようとするプラスミドＤＮＡを投与した。以後、切開した部分をよく縫合し、マウスが麻酔からよく回復するかを見守った。

ＨＬＩマウスモデルは、群当たり６匹ずつ編成して、下記のプラスミドをそれぞれ投与した：２００μｇ ｐＣＫ；２００μｇ ｐＣＫ−ＨＧＦ；２００μｇ ｐＣＫ−ＳＤＦ−１α；２００μｇ ｐＣＫ−ＨＧＦ＋２００μｇ ｐＣＫ−ＳＤＦ−１αのプラスミドを投与した。投与後、それぞれ３日、１０日、１７日、２２日及び２７日に足の状態を観察して、一定の基準によって点数を付けて数値化した。この際、使用した基準は、下記のようである［３］：０＝定常状態；１＝足爪の壊死；２＝足指の壊死；３＝足の組織の壊死。

その結果、ＨＬＩを誘導した後、ｐＣＫ投与群の場合、足の平均的な状態が徐々に悪くなり始めて、約２週後の点数が１．８３程度に上がった。ｐＣＫ−ＨＧＦ投与群の場合も、経時的に点数が０．６６〜０．８３程度に上がった。一方、ｐＣＫ−ＨＧＦ及びｐＣＫ−ＳＤＦ−１α併用投与群の場合、ＨＬＩ誘導後、点数が０に保持された（図３）。

結果的に、前記の実施例１〜３を通じてＨＧＦ及びＳＤＦ−１αの併用投与、ＨＧＦ及びＳＤＦ−１αをそれぞれコードするポリヌクレオチドを併用投与した場合、それぞれのタンパク質またはポリヌクレオチドを単独で投与した場合よりも血管内皮細胞の遊走及び血管生成の促進効果、そして、虚血肢疾患に対する治療効果が顕著であることを確認することができた。

参考文献
１．Ｌｉｍｂｏｕｒｇ，Ａ．，ｅｔ ａｌ．，Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｓｔｎａｔａｌ ａｒｔｅｒｉｏｇｅｎｅｓｉｓ ａｎｄ ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ ｉｎ ａ ｍｏｕｓｅ ｍｏｄｅｌ ｏｆ ｈｉｎｄ−ｌｉｍｂ ｉｓｃｈｅｍｉａ．Ｎａｔ Ｐｒｏｔｏｃ．４（１２）：ｐ．１７３７−４６，２００９。
２．Ｃｏｕｆｆｉｎｈａｌ，Ｔ．，ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｕｓｅ ｍｏｄｅｌ ｏｆ ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ．Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ．１５２（６）：ｐ．１６６７−７９，１９９８。
３．Ｃｌａｙｔｏｎ，Ｊ．Ａ．，Ｄ．Ｃｈａｌｏｔｈｏｒｎ，ａｎｄ Ｊ．Ｅ．Ｆａｂｅｒ，Ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ−Ａ ｓｐｅｃｉｆｉｅｓ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｎａｔｉｖｅ ｃｏｌｌａｔｅｒａｌｓ ａｎｄ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｉｎ ｉｓｃｈｅｍｉａ．Ｃｉｒｃ Ｒｅｓ．１０３（９）：ｐ．１０２７−３６，２００８。

以上、本発明の特定の部分を詳しく記述したところ、当業者にとって、このような具体的な技術は、単に望ましい具現例であり、これにより、本発明の範囲が制限されるものではないという点は明白である。したがって、本発明の実質的な範囲は、添付の請求項とその等価物とによって定義される。

Claims (5)

1. ＨＧＦの異型体をコードするポリヌクレオチド及びＳＤＦ−１αをコードするポリヌクレオチドを有効成分として含む末梢動脈疾患（ＰＡＤ）の予防または治療用薬剤学的組成物であって、
   前記ＨＧＦの異型体は、配列表の配列番号：２のアミノ酸配列を含む全長ＨＧＦ（ｆｌＨＧＦ）、又は配列表の配列番号：３のアミノ酸配列を含む欠損した変異型ＨＧＦ（ｄＨＧＦ）であり、
   前記ポリヌクレオチドは、遺伝子運搬体に含まれているヌクレオチドであり、
   前記遺伝子運搬体は、ベクターであり、
   前記ベクターは、プラスミドであり、
   前記プラスミドは、ｐＣＫであり、
   前記末梢動脈疾患は、虚血肢疾患である薬剤学的組成物。
2. 前記ＳＤＦ−１αは、配列表の配列番号：４または配列表の配列番号：８のアミノ酸配列を含むことを特徴とする請求項１に記載の組成物。
3. 前記ＨＧＦの異型体をコードするポリヌクレオチドは、ヒトＨＧＦ遺伝子のエキソン１〜４に該当する配列、ヒトＨＧＦ遺伝子のイントロン４またはその断片配列、及びヒトＨＧＦ遺伝子のエキソン５〜１８に該当する配列を含むことを特徴とする請求項１に記載の組成物。
4. 前記ＨＧＦの異型体をコードするポリヌクレオチドは、配列表の配列番号：５であることを特徴とする請求項３に記載の組成物。
5. 前記ＳＤＦ−１αをコードするポリヌクレオチドは、配列表の配列番号：６のヌクレオチド配列を含むことを特徴とする請求項１に記載の組成物。