JP6698022B2 - ピリジル部分を有する非ステロイド性抗アンドロゲン及び選択的アンドロゲン受容体モジュレーター - Google Patents
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Description
a)アンドロゲン受容体に結合する;
b)アンドロゲン結合性部位をヘリックス12に連結しているチャネルを通過するのに十分に細長い鎖によって、直接的又は間接的に、アンドロゲン受容体のヘリックス12の邪魔をする;
c)アンドロゲン受容体がアゴニストによって結合される場合に観察される正常なヘリックス12の位置を占めることを妨げる。
mは、0から1の整数であり;
J及びYは、独立して、直接結合であるか、又は-O-、-CO-、-CH2-、-S-、-SO-、-SO2-、-NH-、-CHR1-、-C(R1)2-及び-NR1-からなる群から選択され;
Ra及びRbは、独立して、水素、ハロゲン、-OCH3、C1〜C3アルキル、C2〜C3アルケニル、ニトリル、トリフルオロメチル、アミド、アミン及びアルキルスルホンからなる群から選択され;
R1は、水素、ハロゲン及びC1〜C3アルキルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
R3は、ハロゲン、ニトリル、-COCH3、-SO2CH3及び-NO2からなる群から選択され;
R4及びR5は、独立して、水素、C1〜C6アルキル、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2及びトリフルオロメチルからなる群から選択されるか、又はR4及びR5は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
R6及びR7は、独立して、水素及びC1〜C6アルキルからなる群から選択されるか、又はR6及びR7は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
G1、G2、G3、G4及びG5は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大2つの窒素又は窒素酸化物があり;
G6、G7、G8、G9及びG10は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物があり;
Yは、G1、G2又はG4に連結されている]の化合物又はその薬学的に許容される塩を提供することである。
R1は、水素、フルオロ及びメチルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
G2及びG3は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大1つの窒素又は窒素酸化物があり;
G6及びG7は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物がある]又はその薬学的に許容される塩を有する。
mは、0から1の整数であり;
Jは、独立して、直接結合であるか、又は-O-、-CO-、-CH2-、-S-、-SO-、-SO2-、-NH-、-CHR1-、-C(R1)2-及び-NR1-からなる群から選択され;
Ra及びRbは、独立して、水素、ハロゲン、-OCH3、C1〜C3アルキル、C2〜C3アルケニル、ニトリル、トリフルオロメチル、アミド、アミン及びアルキルスルホンからなる群から選択され;
R1は、水素、ハロゲン及びC1〜C3アルキルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
R3は、ハロゲン、ニトリル、-COCH3、-SO2CH3及び-NO2からなる群から選択され;
R4及びR5は、独立して、水素、C1〜C6アルキル、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2及びトリフルオロメチルからなる群から選択されるか、又はR4及びR5は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
R6及びR7は、独立して、水素及びC1〜C6アルキルからなる群から選択されるか、又はR6及びR7は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
L1、L2、L3及びL4は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大2つの窒素又は窒素酸化物があり;
L5、L6、L7及びL8は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物がある]
又はその薬学的に許容される塩を有する。
R1は、水素、フルオロ及びメチルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
L5、L6、L7及びL8は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物がある]又はその薬学的に許容される塩を有する。
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択される]又はその薬学的に許容される塩を有する。
a)アンドロゲン受容体に結合し;
b)アンドロゲン結合性部位をヘリックス12に連結しているチャネルを通過するのに十分に細長い鎖によって、直接的又は間接的に、アンドロゲン受容体のヘリックス12の邪魔をする;
c)アンドロゲン受容体がアゴニストによって結合される場合に観察される正常なヘリックス12の位置を占めることを妨げる
少なくとも1種の化合物の治療有効量を含む医薬組成物を提供する。
mは、0から1の整数であり;
J及びYは、独立して、直接結合であるか、又は-O-、-CO-、-CH2-、-S-、-SO-、-SO2-、-NH-、-CHR1-、-C(R1)2-及び-NR1-からなる群から選択され;
Ra及びRbは、独立して、水素、ハロゲン、-OCH3、C1〜C3アルキル、C2〜C3アルケニル、ニトリル、トリフルオロメチル、アミド、アミン及びアルキルスルホンからなる群から選択され;
R1は、水素、ハロゲン及びC1〜C3アルキルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
R3は、ハロゲン、ニトリル、-COCH3、-SO2CH3及び-NO2からなる群から選択され;
R4及びR5は、独立して、水素、C1〜C6アルキル、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2及びトリフルオロメチルからなる群から選択されるか、又はR4及びR5は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
R6及びR7は、独立して、水素及びC1〜C6アルキルからなる群から選択されるか、又はR6及びR7は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
G1、G2、G3、G4及びG5は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大2つの窒素又は窒素酸化物があり;
G6、G7、G8、G9及びG10は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物があり;
Yは、G1、G2又はG4に連結されている]。
R1は、水素、フルオロ及びメチルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
G2及びG3は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大1つの窒素又は窒素酸化物があり;
G6及びG7は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物がある]。
mは、0から1の整数であり;
Jは、独立して、直接結合であるか、又は-O-、-CO-、-CH2-、-S-、-SO-、-SO2-、-NH-、-CHR1-、-C(R1)2-及び-NR1-からなる群から選択され;
Ra及びRbは、独立して、水素、ハロゲン、-OCH3、C1〜C3アルキル、C2〜C3アルケニル、ニトリル、トリフルオロメチル、アミド、アミン及びアルキルスルホンからなる群から選択され;
R1は、水素、ハロゲン及びC1〜C3アルキルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
R3は、ハロゲン、ニトリル、-COCH3、-SO2CH3及び-NO2からなる群から選択され;
R4及びR5は、独立して、水素、C1〜C6アルキル、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2及びトリフルオロメチルからなる群から選択されるか、又はR4及びR5は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
R6及びR7は、独立して、水素及びC1〜C6アルキルからなる群から選択されるか、又はR6及びR7は一緒に、窒素、酸素及び硫黄からなる群から選択されるヘテロ原子を任意選択で有する環を形成し;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
L1、L2、L3及びL4は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大2つの窒素又は窒素酸化物があり;
L5、L6、L7及びL8は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物がある]。
R1は、水素、フルオロ及びメチルからなる群から選択され;
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
L5、L6、L7及びL8は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最低1つの窒素又は窒素酸化物がある]。
R2は、水素、ハロゲン、-OCH3、-SCH3、アルキルスルホキシド、アルキルスルホン、ニトリル、-NO2、C1〜C3アルキル及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択される]。
欄1に、抗アンドロゲンの実験名を記す。
欄2は、式:
% RBA=100×IC50 R1881/IC50(化合物)
によって算出される、トランスフェクト細胞におけるヒトアンドロゲン受容体への抗アンドロゲンの、R1881に対する相対的結合親和性(RBA)を百分率(%)で示したものを表す。より高い値が好ましい。
欄3は、式:
% RBA=100×IC50 R1881/IC50(化合物)
によって算出される、前立腺サイトゾルにおけるラットアンドロゲン受容体への抗アンドロゲンの、R1881に対する相対的結合親和性(RBA)を百分率(%)で示したものを表す。より高い値が好ましい。
欄4は、DHT刺激されたシオノギマウス乳腺癌細胞数を50%(IC50)阻害する用量(nMで表される)を表す。より低い値が好ましい。
欄5は、R1881刺激されたヒト前立腺癌LNCaP細胞における化合物10-7MでのPSAレベルの阻害の%を表す。より高い値が好ましい。
欄6は、阻害の百分率で表される、0.1mg/動物の用量でのラット前立腺における経口抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率(%の阻害)は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(対照DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より高い値が好ましい。
欄7は、阻害の百分率で表される、0.5mg/動物の用量でのラット前立腺における経口抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率(%の阻害)は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(対照DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より高い値が好ましい。
マウスアンドロゲン感受性シオノギ癌細胞において、10-7Mで、細胞増殖の基底レベルを刺激しないことに加えて、DHT刺激された細胞増殖を無効にする上で、OH-フルタミド及びビカルタミドよりも、それぞれ、EM-9150は5.2倍及び14.6倍強力であり、EM-9156は4.5倍及び12〜7倍強力である(例として図3)。ヒト前立腺癌細胞株LNCaPにおいて、10-7Mで、細胞増殖の基底レベルを刺激しないことに加えて、R1881刺激されたPSA分泌を遮断する上で、ビカルタミドよりも、EM-9150及びEM-9156は、それぞれ11.0倍及び9.2倍強力である(図4)。EM-9150並びにそれの代謝物EM-9156及びEM-9260の平均血漿レベルは、雄性ラットへの20mgのEM-9150/kgの単回経口投与に続いて、それぞれ、123ng.hr/mL、1708ng.hr/mL及び14931ng.hr/mLのAUC0-24hr値に至った(図5)。7日間毎日経口投薬をした後、EM-9150及びEM-9156は、未成熟の去勢ラットにおける腹側前立腺重量に対するアゴニスト活性を示さない(図7)一方で、DHTが補給された未成熟の去勢ラットにおけるアンタゴニスト活性は、ビカルタミド及びフルタミドに匹敵する(例として図6)。
欄1に、抗アンドロゲン又はSARMの分子構造及び実験名を記す。
欄2は、DHT刺激されたシオノギマウス乳腺癌細胞数を50%(IC50)阻害する用量(nMで表される)を表す。より低い値が好ましい。
欄3は、式:
% RBA=100×IC50 R1881/IC50(化合物)
によって算出される、トランスフェクト細胞におけるヒトアンドロゲン受容体への抗アンドロゲン又はSARMの、R1881に対する相対的結合親和性(RBA)を百分率(%)で示したものを表す。より高い値が好ましい。
欄4は、阻害の百分率で表される、ラット前立腺における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
で算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より高い値が好ましい。
欄5は、阻害の百分率で表される、ラット精嚢における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より高い値が好ましい。
欄6は、阻害の百分率で表される、ラット球海綿体筋における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
欄7は、刺激の百分率で表される、ラット前立腺におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より低い値が好ましい。
欄8は、刺激の百分率で表される、ラット精嚢におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より低い値が好ましい。
欄9は、刺激の百分率で表される、ラット球海綿体筋におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
下記の表に示したのは、好ましい化合物並びにそれらの特性及び効力のリストである。表3、表4及び表5は、ヒトアンドロゲン受容体への結合及びマウス乳腺癌シオノギ細胞に対する抗アンドロゲン活性を含むインビトロデータを示している。表3、表4及び表5は、未成熟ラットの3つの組織(腹側前立腺、精嚢及び球海綿体筋)に対するアンタゴニスト活性を含むインビボデータも示している。加えて、表4及び表5は、同じ組織に対するアゴニスト活性を報告している。どのようにデータが回収及び報告されているかについての詳述な説明が、該表に続いている。
欄1に、抗アンドロゲンの実験名を記す。
欄2は、抗アンドロゲンの分子構造が報告されている。
欄3は、DHT刺激されたシオノギマウス乳腺癌細胞数を50%(IC50)阻害する用量(nMで表される)を表す。より低い値が好ましい。
欄4は、式:
% RBA=100×IC50 R1881/IC50(化合物)
によって算出される、トランスフェクト細胞におけるヒトアンドロゲン受容体への抗アンドロゲンの、R1881に対する相対的結合親和性(RBA)を百分率(%)で示したものを表す。
より高い値が好ましい。
欄5は、阻害の百分率で表される、ラット前立腺における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率(%の阻害)は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
で算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より高い値が好ましい。
欄6は、阻害の百分率で表される、ラット精嚢における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率(%の阻害)は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より高い値が好ましい。
欄7は、阻害の百分率で表される、ラット球海綿体筋における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率(%の阻害)は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
より高い値が好ましい。
欄1に、SARMの分子構造及び実験名を記す。
欄2は、DHT刺激されたシオノギマウス乳腺癌腫細胞数を50%(IC50)阻害する用量(nMで表される)を表す。より低い値が好ましい。
欄3は、式:
% RBA=100×IC50 R1881/IC50(化合物)
によって算出される、トランスフェクト細胞におけるヒトアンドロゲン受容体へのSARMの、R1881に対する相対的結合親和性(RBA)を百分率(%)で示したものを表す。
より高い値が好ましい。
欄4は、阻害の百分率で表される、ラット前立腺における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
で算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より高い値が好ましい。
欄5は、阻害の百分率で表される、ラット精嚢における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より高い値が好ましい。
欄6は、阻害の百分率で表される、ラット球海綿体筋における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
より低い値が好ましい。
欄7は、刺激の百分率で表される、ラット前立腺におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より低い値が好ましい。
欄8は、刺激の百分率で表される、ラット精嚢におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より低い値が好ましい。
欄9は、刺激の百分率で表される、ラット球海綿体筋におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
より高い値が好ましい。
欄1に、抗アンドロゲン又はSARMの分子構造及び実験名を記す。
欄2は、DHT刺激されたシオノギマウス乳腺癌腫細胞数を50%(IC50)阻害する用量(nMで表される)を表す。より低い値が好ましい。
欄3は、式:
% RBA=100×IC50 R1881/IC50(化合物)
によって算出される、トランスフェクト細胞におけるヒトアンドロゲン受容体への抗アンドロゲン又はSARMの、R1881に対する相対的結合親和性(RBA)を百分率(%)で示したものを表す。より高い値が好ましい。
欄4は、阻害の百分率で表される、ラット前立腺における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
で算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より高い値が好ましい。
欄5は、阻害の百分率で表される、ラット精嚢における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より高い値が好ましい。
欄6は、阻害の百分率で表される、ラット球海綿体筋における抗アンドロゲン効力の%を表す。
阻害の百分率は、以下の式:
%阻害=100-[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
欄7は、刺激の百分率で表される、ラット前立腺におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、前立腺の重量である。
より低い値が好ましい。
欄8は、刺激の百分率で表される、ラット精嚢におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、精嚢の重量である。
より低い値が好ましい。
欄9は、刺激の百分率で表される、ラット球海綿体筋におけるアンドロゲン効力の%を表す。
刺激の百分率は、以下の式:
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出される。
Wは、球海綿体筋の重量である。
1)材料及び方法
A-アンドロゲン受容体(AR)アッセイ
ARトランスフェクション
ヒトアンドロゲン受容体(hAR)をトランスフェクトされたヒト胎児由来腎臓(HEK-293)細胞の調製:細胞を、6ウェルFalconフラスコ中で、およそ3×105細胞/ウェルに、10%の仔ウシ胎児血清が補充されたダルベッコの改変Eagle培地(DMEM)中にて37℃で95%の空気、5%のCO2加湿雰囲気下で培養する。pCMVneo-hARプラスミド5μgを、リポフェクチントランスフェクションキット(Life Technologies、Ontario、Canada)を使用してトランスフェクトする。37℃でインキュベーションの6時間後、トランスフェクション培地を除去し、2mlのDMEMを添加する。細胞を48時間の間更に培養し、次いで、10cmのペトリディッシュ中に移し、非トランスフェクト細胞の成長を阻害するために700μg/mlのG-418を含有するDMEM中で培養する。G-418を含有する培地を、抵抗性コロニーが観察されるまで2日毎に替える。陽性クローンをPCRによって選択する。hARをトランスフェクトされたHEK293細胞を、結合アッセイのために使用されるまで凍結する。
ヒドロキシルアパタイト(HAP)アッセイを使用して、アンドロゲン結合を測定する。簡潔には、エタノール中に可溶化された放射性ステロイド[3H]R1881を、緩衝液B(10mMのトリス-HCl、1.5mMのEDTAニナトリウム塩、10mMのα-モノチオグリセロール、pH7.4)中に希釈する。次いで、細胞又は前立腺サイトゾル調製物(0.1ml)を分取したものを、表示濃度の非標識化合物(0.1ml、30%のエタノールを含有する緩衝液B中に調製された)の存在又は非存在下において、16〜18時間の間0〜4℃で、5nMの[3H]R1881(0.1ml、約100000cpm)と共にインキュベートする。トリアムシノロンアセトニド(TAC;100nM)をマスクプロゲステロン受容体に添加する。非結合ステロイドをインキュベーションによって40分間0〜4℃で、緩衝液P(50mMのトリス-HCl、10mMのKH2PO4、pH7.4)中で調製され、0.3mlのHAPを用いて分離する。HAPとのインキュベーション、及び1000×gでの10分の遠心分離の後、ペレットを1mlの緩衝液Pで3回洗浄する。その後、放射能をペレットからインキュベーションによって室温で60分間、1mlのエタノールで抽出する。遠心分離後、上澄みをシンチレーションバイアルに注ぎ、ペレットを再びエタノールで抽出する。シンチレーション液の添加後、放射能を液体シンチレーションカウンター中で測定する。
重み付き反復非線形最小二乗回帰を使用して、試験化合物{[3H](R1881)の50%を押しのける化合物の濃度}の用量応答曲線並びにIC50値を算出した。
相対的結合親和性(RBA)を、以下の式:
RBA(%)[IC50(R1881)/IC50(化合物)]×100
によって算出した。
シオノギマウス乳腺癌細胞を使用して、インビトロのアンドロゲン/抗アンドロゲン活性を測定した(クローン107)(Labrieら、1988a; Labrieら、1988b; Labrieら、1988c)。
最小必須培養培地(MEM)及び非必須アミノ酸をGibco BRL社(NY、USA)から購入し、木炭処理(charcoal-stripped)ウシ胎児血清(FBS)をWisent Inc.社(Montreal、Canada)から購入した。ジヒドロテストステロン(DHT)をSteraloids社(Wilton、NH)から得、試験されるべき化合物を本発明者らの実験室で合成した。
シオノギ細胞を、100nMのDHT、5%(v/v)木炭処理FBS、100IUのペニシリン/ml、50μgの硫酸ストレプトマイシン/ml、及び1%(v/v)の非必須アミノ酸が補充されたMEM中で、すでに記載されている通りに、日常的に成長させた(Labrieら、1988a; Labrieら、1988b; Labrieら、1988c)。細胞を37℃にて5%のCO2及び95%空気の加湿雰囲気中でインキュベートした。細胞をコンフルエンス近くで、3mMのエチレンジアミン四酢酸(EDTA)(pH7.2)を含有するHepes緩衝液中の0.1%トリプシン(Wisent Inc.社)溶液で穏やかに消化することによって継代培養した。次いで細胞を遠心分離によってペレットし、培養培地中に再懸濁し、及び再平板培養した。
細胞を24ウェルプレート中にて18000細胞/ウェルの密度で平板培養し、プレートの表面に24時間の間付着させておいた。その後、2%(v/v) 木炭処理FBS、及びDHT(0.3nM)の存在又は非存在下において×1000濃度のストック溶液から99%再蒸留エタノール中に希釈された表示濃度の化合物を含有する新鮮培地で培地を置き換えた。対照細胞には、エタノールビヒクル(0.1% EtOH、v/v)だけを加える。エタノールのこうした濃度は、細胞成長に影響しない。表示された増加する濃度の薬剤をトリプリケートディッシュに添加し、2〜3日毎に培地を替えながら、細胞を10日間成長させた。細胞数を、すでに記載されているように、DNA量の測定によって決定した(Simardら、1990)。
重み付き反復非線形最小二乗回帰を使用して、試験化合物の用量応答曲線並びにIC50値を算出する。全ての結果は、記号だけが例示されている例において使用されている記号とSEMが重複する場合を除いて、平均±SEMとして表されている。IC50は、細胞成長に対してDHT作用の50%阻害を与える化合物の濃度である。化合物の特定の濃度(即ち10-7M)での基底レベルの刺激の百分率は、[(化合物ありでのDNA量-化合物なしでのDNA量)/化合物なしでのDNA量]×100によって算出される。
LNCaP細胞を、すでに記載されている通りに培養した(Qiら2001)。簡潔には、LNCaP細胞を、6日間、ホルモン枯渇0.25% FCSが補充された1.0mlのRPMI1640中で、各実験前に培養した。実験の開始時に、培地の半分(0.5ml)を、1.0nMのR1881の存在又は非存在下において、適切な濃度の試験化合物を含有する同一培地0.5mlで置き換えた。化合物ありでのLNCaP細胞のインキュベーションの72時間後、培養培地の0.5mlをPSA決定のために除去した。Izotop(Institute of Isotopes Ltd社、Budapest、Hungary)からのPSA[125I]IRMA KIT(REF:RK-10CT)を使用して、PSAレベルを測定した。
実験1
動物
150〜205gの重さである未処置の6週齢の雄性ラット(Crl:CD(SD))を、Charles-River Canada Inc.社(St-Constant、Quebec、Canada)から得て、温度(19℃から25℃)及び光(12時間の光/日)制御環境で、プラスチックビン中ケージ当たり最大3匹まで収容した。それらを薬物動態学的(PK)研究の前に2週間、実験条件に順化させた。ラットに、げっ歯類用固形飼料[PMI Nutrition International Certified Rodent Chow No. 5CR4(14%タンパク質)]及び水道水を無制限に給餌した。動物は、投薬時に165〜200gの重さであった。
EM-9150を経口的に胃管栄養法によって(午後に)20mg/kg(5ml/kg)の用量で9匹の未処置の雄性ラットに投与した。EM-9150を0.4%メチルセルロース水溶液(MeC)中の懸濁液として投与した。血液試料(約0.4mL/時点/ラット)を頸静脈穿刺によって、投薬後0.5時間、1時間、2時間、3.5時間、7時間及び24時間に、3匹の動物/時点から回収した。抗凝血薬としてEDTA(K3)を含有するチューブに血液試料を入れ、4℃にて10分間2700rpmで遠心分離した。結果として得られた血漿を分離し、2ポリプロピレンチューブに移し、ドライアイス上で直ちに凍結し、-80℃を維持するように設定された冷凍庫中で、分析まで保持した。
質量分析検出アッセイ(LC-MS/MS)とともにGLP認証の液体クロマトグラフィーを使用して、EM-9150及びそれの代謝物EM-9156及びEM-9260の血漿濃度を決定した。各化合物についての血漿濃度対時間をグラフにし(図5)、投与後0時間から24時間の血漿濃度曲線下の面積[AUC(0〜24h)]を算出するために使用した。線形台形方法を使用して、AUC(0〜24hr)値を算出した。
動物
275〜375gの重さである去勢された雄性スプラーグドーリーラット(Crl:CD(SD)Br)を、薬物動態学的研究のために使用した。動物を投薬日前の午後16時頃から絶食させた(水だけ入手可能)。
EM-9150を経口的に胃管栄養法によって(朝に)、0.5mg/動物(1.0ml/動物;3匹の動物/化合物)の用量で投与した。EM-9150をジメチルスルホキシド(DMSO、10%の最終濃度)中に溶解させ、0.9%のNaCl-1%のゼラチン中の溶液/懸濁液として投与した。投薬後1時間、2時間、3時間、4時間、7時間及び24時間にイソフルラン麻酔下で動物に頸静脈穿刺することによって、血液試料(約0.5mL/時点)を回収した。抗凝血薬としてEDTA(K3)を含有するチューブに血液試料を入れ、4℃にて10分間1700〜2400gで遠心分離した。結果として得られた血漿をドライアイス上で凍結し、分析まで-80℃で保持した。投薬後7時間の採血の後、EM-9150及びそれの代謝物EM-9156の前立腺内及び筋肉内濃度の決定のために1群当たり1匹のラットから、腹側前立腺及び球海綿体筋を回収した。前立腺及び球海綿体筋を液体窒素中で凍結し、使用されるまで-80℃で保持した。緩衝液及びエタノール-アセトン溶液を組織に添加し、ポリトロンでホモジナイズした。上澄みを回収し、蒸発乾固させ、緩衝液中で再構成した。
質量分析検出アッセイ(LC-MS/MS)とともに液体クロマトグラフィーを使用して、EM-9150及びそれの代謝物EM-9156の血漿濃度を決定した。投与後0時間から24時間の血漿濃度曲線下の面積[AUC(0〜24h)]を算出するため、各化合物の血漿濃度対時間を使用した。線形台形方法を使用して、AUC(0〜24hr)値を算出した。化合物の前立腺内及び筋肉内濃度もLC-MS/MSによって決定した。
動物
処置の開始時に60〜80gの重さである22日齢から24日齢の未成熟の雄性ラット(Crl:CD(SD)Br)をCharles-River、Inc.社(St-Constant、Quebec、Canada)から得て、温度(23±1℃)及び光(12時間の光/日、7時15分に光オン)制御環境で、プラスチックビン中ケージ当たり最大5匹まで収容した。ラットにげっ歯類用固形飼料及び水道水を無制限に給餌した。アンドロゲンが補充された(アンタゴニスト活性)又は補充されない(アゴニスト活性)去勢ラットにおいて、化合物を試験した。それらの到着の翌日、陰嚢経路を介してイソフルラン麻酔下で(研究当日)、指定された動物を精巣摘出し、次いで、3匹から5匹の動物の群に無作為に割り当てた。精巣摘出時に、ジヒドロテストステロンの1つのシラスティック移植片(DHT;それぞれ0.078インチ及び0.125インチの内径及び外径を有するシラスティックチュービング中における1cm長の純粋なDHT)を、抗アンドロゲン活性の評価に割り当てられた動物の背側部域における皮下に挿入した。未処置動物実験では、精巣摘出及びシラスティック移植片設置は省く。
試験化合物を、一般に0.1mg/動物及び0.5mg/動物の範囲の用量で、研究2日目から研究8日目の7日間1日1回経口的に投与した。化合物は、ジメチルスルホキシド(DMSO、10%の最終濃度)中に可溶化して0.9%のNaCl-1%のゼラチン中の溶液/懸濁液として投与するか、又は0.4%のメチルセルロース水溶液の懸濁液として投与するかのいずれかであった。対照群の動物には、対応するビヒクルを単独で7日の期間投与した。一部の動物を、基準として抗アンドロゲンフルタミド又はカソデックスで処置した。イソフルラン麻酔下の動物を頚椎脱臼によって、研究9日目、最後の投薬のおよそ24時間後に屠殺した。腹側前立腺、精嚢及び球海綿体筋を迅速に解剖し、秤量した。
アンタゴニスト活性について、以下の式:
%阻害=100-[[W(化合物)-W(対照CX)/W(対照DHT)-W(対照CX)]×100]
を使用して、阻害の百分率を算出した。
%刺激=[W(化合物)-W(対照CX)/W(対照DHT)-W(対照CX)]×100
によって算出した。
未処置動物を用いる算出には、対照DHTを未処置の対照によって置き換え、%刺激から100%を減算する。
Wは、前立腺、精嚢又は球海綿体筋の重量である。
非ステロイド骨格とアンドロゲン受容体との相互作用を修飾できるフェニルピリジン又はキノリン又はイソキノリンを含有する側鎖を有するアリールヒダントイン骨格又はアリールチオヒダントイン骨格を有する一連の非ステロイド化合物を合成した。表1から表5並びに図1及び図2に見られる通り、これらの化合物は、最も強力な天然アンドロゲンであるDHT(ジヒドロテストステロン)と同様のヒトアンドロゲン受容体に対する親和性を有する周知の合成及び代謝抵抗性合成アンドロゲンであるR1881についての値を100%としたものと比較して、約0.1%の中程度の値から3310%の高い値(EM-8851について)の範囲の相対的結合親和性(RBA)で、ヒトアンドロゲン受容体(及びラットアンドロゲン受容体)に対する親和性を示す。これらの新たな化合物について記録されたRBAは、抗アンドロゲン基準、即ちヒドロキシフルタミド及びビカルタミド(0.21%及び0.3%)よりも高い。例えば、本発明者らの好ましい抗アンドロゲンのいくつか、即ちEM-9150(74±19%)、EM-9198(22%)、EM-9204(22%)及びEM-9205(17.9%)のRBA値は、それぞれ、ヒドロキシフルタミドのRBA値よりも352倍、105倍、105倍及び85倍高い。更に、本発明者らの好ましいSARMのいくつかのRBA値、即ちEM-9251(253%)、EM-9253(125%)、EM-9290(197%)及びEM-9309(157%)は、それぞれ、ヒドロキシフルタミドのRBA値よりも1200倍、595倍、938倍及び748倍高い。一部の置換基を変えることによる、アンドロゲン受容体への親和性に対する効果は、段落[0071]で既に考察してある。
本発明の全ての抗アンドロゲンは、シオノギマウス乳腺癌細胞において、並びにインビボにてラットにおける前立腺及び精嚢の重量に対して強力及び純粋な抗アンドロゲン活性を示す。これらの化合物は、2.6nM(EM-9028)から126nMの範囲のIC50値で、0.3nMのDHT誘発細胞増殖を無効にした。一方、ヒドロキシフルタミド及びビカルタミドのIC50は、それぞれ、67±2nM及び190±36nMである(表1、表2、表3及び表5、並びに図3)。したがって、好ましい抗アンドロゲンの一部、即ちEM-9150(13±3nM)、EM-9198(5.3nM)、EM-9204(7.0nM)及びEM-9205(14.8nM)のIC50値は、同じ実験で比較した場合にヒドロキシフルタミドのIC50値よりも5.2倍、6.4倍、4.8倍及び2.3倍高い。
表2、表4及び表5に示されている通り、本発明のSARMは、通常、シオノギ細胞の増殖に対して混合アンドロゲン/抗アンドロゲン活性を有する。好ましいSARMのいくつか、即ちEM-9251(67.7nM)、EM-9253(29.9nM)、EM-9290(64.8nM)及びEM-9309(66.9nM)のIC50値は、ヒドロキシフルタミドのIC50値(67±2nM)と同様であるが、EM-9253(それぞれ、38%、25%及び13%)以外は、10-7Mで基底レベルを刺激する。
プロトンNMRスペクトルは、Bruker Avance 400 MHz機器によって記録した。以下の略語が使用されている:s、一重線;d、二重線;dd、二重線の二重線;t、三重線;q、四重線;p、五重線;b、ブロード;及びm、多重線。化学シフト(d)は、クロロホルム(1時間の間7.26ppm)、アセトン(1時間の間2.05ppm)又はメタノール(1時間の間3.33ppm)を基準とし、ppmで表した。薄層クロマトグラフィー(TLC)は、0.25mmのKieselgel 60F254プレート(E. Merck社、Darmstadt、FRG)上で実施した。フラッシュクロマトグラフィーのため、Merck-Kieselgel60(230〜400メッシュA.S.T.M.)を使用した。別段に注記されていない限り、出発材料及び反応物は市販されているものを入手し、そのまま使用するか、又は標準的な手段によって精製した。全ての精製及び乾燥させた溶媒及び反応物はアルゴン下で貯蔵した。無水反応は不活性雰囲気下で実施し、装置はアルゴン下で組立て、冷却した。有機溶液は、通常、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、回転式エバポレーター上及び減圧下で蒸発させた。出発材料及び試薬は、主に、Aldrich Chemical Company、Inc.社(Milwaukee、Wisconsin)から入手できた。
EM-9150及び誘導体の合成
28%水酸化アンモニア水溶液(240mL、1.7mol)中のシアン化ナトリウム(30.7g、0.62mol)及び塩化アンモニウム(39.5g、0.74mol)の溶液を、機械的攪拌機で撹拌し、0℃に冷却し、アセトン(1)(36.8mL、0.50mol)でゆっくり処理し、氷水浴を除去した後に終夜撹拌した。反応混合物をジクロロメタン(3×300mL)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、真空中で蒸発させることで、化合物2が清澄な液体として得られた(40g、95%)。
トルエン-エタノール-水(2:2:1、675mL)中の4-ブロモピリジン塩酸塩(52.8g、0.27mol)及び3-クロロ-4-メトキシフェニルボロン酸(3)(60.8g、0.33mol)の混合物を、アルゴンで15分間フラッシュし、炭酸ナトリウム(115g、1.08mol)でゆっくり処理し、アルゴンで追加の10分の期間の間フラッシュし、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(7.87g、6.81mmol)で処理し、90℃で4時間の間加熱した。反応混合物を室温に冷却し、蒸発させ(トルエン及びエタノール)、水(1.1L)で希釈し、濃HClでpH1に酸性化し、ブフナー漏斗上で濾過した。濾液を水酸化ナトリウムペレット、続いて炭酸ナトリウムでpH7に中和した。懸濁液をブフナー漏斗上で濾過し、得られた固体4を終夜乾燥させ、更に精製することなく次のステップで使用した(53.9g、90%)。
化合物4(53.9g、0.25mol)及びピリジン塩酸塩(280g、2.4mol)の混合物を220℃に3時間の間加熱し、室温に冷却し、水(1.2L)中に注ぎ、炭酸ナトリウムでpH7に中和し、ブフナー漏斗上で濾過した。得られた固体5を更に精製することなく終夜乾燥させた(38.3g、76%)。
アルゴン雰囲気下で、ジクロロメタン(700mL)中のトリホスゲン(8.31g、28mmol)の溶液を0℃に冷却し、重炭酸ナトリウム(33.6g、400mmol)及び4-アミノ-2-クロロベンゾニトリル(6)(12.2g、80mmol)で少しずつ処理し、機械的攪拌機で15分間、及び氷水浴を除去した後に2時間撹拌した。粗製イソシアネート誘導体を含有する反応混合物を0℃に冷却し、トリエチルアミン(25.7mL、184mmol)及び2-アミノ-2-メチルプロピオニトリル(2)(7.4mL、80mmol)でゆっくり処理し、氷水浴を除去した後に2時間の間撹拌した。反応混合物をブフナー漏斗上で濾過し、濾液を真空中で蒸発させた。粗製尿素中間体7をメタノール(200mL)中に溶解させた。溶液を機械的攪拌機で撹拌し、pH1になるまで10%塩酸水溶液で処理し、2時間の間還流した。反応混合物を室温に及び氷水浴で順次冷却し、冷水(250mL)で処理した。懸濁液を濾過し、次いで、濾液をジクロロメタン(2×300mL)で抽出した。合わせた有機層を真空中で蒸発させた。残渣をメタノール(100mL)中に溶解させ、得られた溶液を冷水(125mL)で処理し、濾過した。合わせた固体を終夜乾燥させ、ジクロロメタン(850mL)中に希釈した。懸濁液を機械的攪拌機で2時間の間撹拌し、濾過し、濾液を真空中で蒸発させることで、所望のEM-9260が得られた(18.0g、85%)。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(45mL)中の水素化ナトリウム(2.27g、0.095mol、ヘキサンで濯がれた)の懸濁液を0℃で冷却し、3-ブロモ-1-クロロプロパン(4.9mL、0.049mol)で、及び無水N,N-ジメチルホルムアミド(30mL)中のEM-9260(10.0g、0.038mol)の溶液でゆっくり処理した。反応混合物を5時間の間撹拌し、この期間中室温に徐々に加温した。次いで、反応混合物を冷却氷水(300mL)中に注ぎ、ブフナー漏斗上で濾過した。得られた固体8を終夜乾燥させ、更に精製することなく次のステップで使用した(11.0g、85%)。
無水N,N-ジメチルホルムアミド(325mL)中の化合物8(55.0g、0.16mol)及び化合物5(36.4g、0.18mol)の混合物を、炭酸セシウム(68.5g、0.21mol)で処理し、80℃で6時間の間加熱した。反応混合物を室温で冷却し、アセトン(1L)で希釈し、冷却氷水(2L)中に注ぎ、ブフナー漏斗上で濾過した。得られた淡オレンジ色の固体EM-9150を更に精製することなく終夜乾燥させた(70.6g、86%)。
完全溶解のためにわずかに加熱された1,4-ジオキサン(1.5L)中のEM-9150(100.7g、0.198mol)の溶液を、濃塩酸(14.75M)(14.8mL、0.218mol)でゆっくり処理した。反応混合物を0.5時間の間撹拌し、濾過した。淡ベージュ色の固体としての得られたEM-9287を乾燥させた。
メタノール-水/5:2(20mL)中のEM-9150(550mg、1.08mmol)の懸濁液に、モノペルオキシフタル酸マグネシウム(MMPP)(1.33g、2.7mmol)を添加した。溶液を50℃で終夜加熱した。反応完了後(TLC)、混合物を飽和重炭酸ナトリウム水溶液で希釈し、ジクロロメタン(3×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、20%アセトン-ジクロロメタン)によって精製することで、332mg(58%)のEM-9156が得られた。
EM-9251及び誘導体の合成
アルゴン雰囲気下で、ジクロロメタン(200mL)中のトリホスゲン(2.08g、7.01mmol)の溶液を、0℃に冷却し、重炭酸ナトリウム(8.5g、100mmol)及び3-クロロ-4-シアノ-2-メチルアニリン(9)(Li、J.J.ら、J. Med. Chem.、2007、50(13)、3015〜3025、参考情報、S2及びS3頁に記載されている手順から得られた)(3.33g、20mmol)で少しずつ処理し、15分間及び氷水浴を除去した後に2時間撹拌した。粗製イソシアネート誘導体を含有する反応混合物を0℃に冷却し、トリエチルアミン(6.2mL、44mmol)及び2-アミノ-2-メチルプロピオニトリル(2)(1.9mL、21mmol)でゆっくり処理し、氷水浴を除去した後に終夜撹拌した。反応混合物をブフナー漏斗上で濾過し、濾液を真空中で蒸発させた。粗製尿素中間体10を、メタノール(100mL)中に溶解させた。溶液を撹拌し、pH1になるまで10%塩酸水溶液で処理し、4時間の間還流した。反応混合物を室温に及び氷水浴で順次に冷却し、冷水(200mL)で処理した。懸濁液を濾過し、次いで、濾液をジクロロメタン(3×150mL)で抽出した。合わせた有機層を真空中で蒸発させた。固体を合わせることで、所望のEM-9289が得られた(4.04g、73%)。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(9mL)中の水素化ナトリウム(鉱物油中60%分散させた、75mg、1.9mmol)及びEM-9289(420mg、1.5mmol)の懸濁液を、30分間撹拌し、1,3-ジブロモプロパン(0.75mL、7.4mmol)でゆっくり処理した。反応混合物を50℃で5時間の間加熱した。次いで、反応混合物を室温で冷却し、水(50mL)で希釈し、エーテル(4×25mL)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、0〜100%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、400mg(70%)の化合物11が得られた。
アセトン(3mL)中の化合物11(100mg、0.25mmol)及び化合物5(70mg、0.34mmol)の混合物を、炭酸セシウム(148mg、0.46mmol)で処理し、60℃で2時間の間加熱した。反応混合物を室温で冷却し、セライト(商標)上で濾過した。濾液を減圧下で蒸発させ、残渣(ジクロロメタン中に可溶化された)をシリカゲル上で濾過した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、20%のアセトン-ジクロロメタン)によって精製することで、116mg(89%)のEM-9251が得られた。
ジクロロメタンの代わりに酢酸エチルで抽出が行われたことを除いてEM-9156について記載されている手順を使用することによって、EM-9251から出発してEM-9252を調製した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、5%メタノール-ジクロロメタン)によって精製することで、48mg(80%)のEM-9252が得られた。
EM-9052の合成
水(15mL)中の3-クロロ-4-シアノアニリン(6)(1.12g、7.3mmol)の懸濁液を、チオホスゲン(0.84mL、11mmol)でゆっくり処理し、2時間の間撹拌した。反応混合物を水で希釈し、ジクロロメタン(3×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗製イソチオシアネート12を更に精製することなく次のステップで使用した。
無水テトラヒドロフラン(35mL)中のイソチオシアネート12(1.43g、7.3mmol)、2-(3-ヒドロキシ-プロピルアミノ)-2-メチル-プロピオニトリル(13)(WO 2006/133567、58ページに記載されている手順から得られた)及びトリエチルアミン(0.1mL、0.7mmol)の溶液を、1時間の間還流した。反応混合物を室温に冷却し、減圧下で濃縮した。粗製アルコール14を更に精製することなく次のステップで使用した。
1:1比(36mL)におけるメタノール及び2N塩酸水溶液の混合物中のアルコール14(2.47g、7.3mmol)の溶液を、1時間の間還流した。次いで、反応混合物を室温で冷却し、水で希釈し、ジクロロメタン(3×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をクロマトグラフィー(Biotageシステム、シリカゲル、20〜30%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、1.58g(3つのステップで64%)の化合物15が得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水テトラヒドロフラン(3mL)中のアルコール15(102mg、0.30mmol)、フェノール5(60mg、0.29mmol)及びトリフェニルホスフィン(81mg、0.31mmol)の溶液を、0℃に冷却し、アゾジカルボン酸ジイソプロピル(二連子)(0.06mL、0.3mmol)でゆっくり処理した。氷水浴を除去した後、反応混合物を終夜撹拌した。反応混合物を減圧下で濃縮した。粗化合物(アセトン中に可溶化された)をシリカゲル上で濾過した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、40%アセトン-ヘキサン)によって精製することで、32mg(21%)のEM-9052が得られた。
EM-8799の合成
アルゴン雰囲気下で、ジクロロメタン(1mL)中の化合物16[3-クロロ-4-シアノ-2-メチルアニリン(9)(Li、J.J.ら J. Med. Chem. 2007、50(13)、3015〜3025、参考情報、S2及びS3頁に記載されている手順から得られた)から出発して、化合物15と同じ手順(メタノールを水で希釈することなく後処理前に蒸発させたことを除く)によって24%の収率で得られた](89mg、0.25mmol)の溶液、を0℃に冷却し、1,4-ジアザビシクロ[2.2.2]オクタン(DABCO)(62mg、0.55mmol)及びp-トルエンスルホニルクロリド(75mg、0.39mmol)で処理し、氷水浴を除去した後に1時間撹拌した。反応混合物を飽和塩化アンモニウム水溶液で希釈し、ジクロロメタン(2×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗製トシレート17を更に精製することなく次のステップで使用した。
アルゴン雰囲気下で、N,N-ジメチルホルムアミド(1mL)中のフェノール5(78mg、0.38mmol)の溶液を、水素化ナトリウム(鉱物油中60%分散させた、19mg、0.48mmol)で処理し、30分間撹拌し、N,N-ジメチルホルムアミド(2mL)中のトシレート17(128mg、0.25mmol)の溶液で処理し、80℃で15分間加熱した。反応混合物を室温で冷却し、エーテルで希釈し、水(2×)で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物(ジクロロメタン中に可溶化された)を、シリカゲル上で濾過した。粗化合物をその上2つのフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、30%のアセトン-ヘキサン及び20〜50%のエーテル-ジクロロメタン)によって精製することで、58mg(43%)のEM-8799が得られた。
EM-8798の合成
EM-8799について記載されている同じ手順によって、EM-8798を調製した。化合物15について記載されている手順によって調製された化合物18から出発する化合物17と同じ手順(反応混合物の希釈において、飽和重炭酸ナトリウム水溶液が水の代わりに使用されたことを除く)によって、4-シアノ-2-メチル-3-トリフルオロメチルアニリン(US 2004/0181064、41〜42ページに記載されている手順から得られた)から出発して、52%の収率で、化合物19を定量的に得た。粗製のEM-8798をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、30%アセトン-ヘキサン)によって精製することで、55mgの所望の化合物が42%の収率で得られた。
EM-9025の合成
EM-8799について記載されている同じ手順によって、EM-9025を調製した。4-シアノ-3-フルオロアニリンから出発して化合物15について記載されている手順によって調製された化合物20から出発して(メタノールを水で希釈することなく後処理前に蒸発させたことを除く)、化合物17と同じ手順によって、33%の収率で、化合物21を定量的に得た。WO 2009/079412(97ページ)に記載されている同様の手順によって、1-ブロモ-4-(メトキシメトキシ)ベンゼン及び4-ピリジンボロン酸を使用して、3つのステップにて57%で、化合物22を得た。粗製のEM-9025(抽出にはエーテルの代わりにジクロロメタンを使用し、シリカゲル上の濾過を省いた)をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、40%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、46mgの所望の化合物が35%の収率で得られた。
EM-9126の合成
ジクロロメタン(50mL)中の3-ブロモプロパノール(23)(2.0g、14mmol)の溶液を、塩化アセチル(1.2mL、17mmol)で処理し、20分間撹拌し、ピリジン(1.4mL、17mmol)で処理し、30分間撹拌した。反応混合物をエーテルで希釈し、水及び飽和重炭酸ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗製アセテート24(2.25g、86%)を更に精製することなく適切なステップで使用した。
ジクロロメタン(180mL)中の2-(Fmoc-アミノ)イソ酪酸(25)(6.48g、20.0mmol)の溶液を、塩化オキサリル(2.6mL、30mmol)及び数滴のN,N-ジメチルホルムアミドで処理し、1時間の間撹拌した。反応混合物を減圧下で濃縮した。粗製塩化アシル26を更に精製することなく次のステップで使用した。
無水テトラヒドロフラン(90mL)中の塩化アシル26(6.84g、20.0mmol)の溶液を、4-シアノ-3-トリフルオロメチルアニリン(27)(3.36g、18.1mmol)及び重炭酸ナトリウム(1.90g、22.6mmol)で処理し、60℃で1.5時間の間加熱した。反応混合物を室温で冷却し、エーテルで希釈し、飽和重炭酸ナトリウム水溶液(2×)及び水で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗製アミド28を更に精製することなく次のステップで使用した。
N,N-ジメチルホルムアミド(60mL)中のアミド28(8.9g、18mmol)の溶液を、テトラヒドロフラン(27mL、27mmol)中の1.0Mフッ化テトラブチルアンモニウム溶液で処理し、終夜撹拌した。反応混合物をエーテルで希釈し、飽和重炭酸ナトリウム水溶液(2×)及び水で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をクロマトグラフィー(Biotageシステム、シリカゲル、50〜100%の酢酸エチル-ヘキサン)によって精製することで、2.5g(3つのステップで51%)のアミン29が得られた。
無水テトラヒドロフラン(45mL)中のアミン29(2.5g、9.2mmol)の溶液を、0℃で冷却し、ジイソプロピルアミン(2.4mL、14mmol)及びクロロアセチルクロリド(0.81mL、10mmol)で処理し氷水浴を除去した後に1時間の間撹拌した。反応混合物を水で希釈し、ジクロロメタン(3×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗製ジアミド30(3.58g)を更に精製することなく次のステップで使用した。
無水テトラヒドロフラン(185mL)中のジアミド30(3.21g、9.2mmol)の溶液を、炭酸セシウム(7.55g、23mmol)でゆっくり処理し、終夜撹拌した。反応混合物をセライト(商標)上で濾過した。濾液を減圧下で蒸発させた。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、15〜20%のアセトン-ジクロロメタン)によって精製することで、1.76g(2つのステップで61%)の環状ジアミド31が得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(1.6mL)中の環状ジアミド31(106mg、0.34mmol)の溶液を、トルエン(0.81mL、0.40mmol)中の0.5Mカリウムビス(トリメチルシリル)アミド溶液で処理し、5分間撹拌し、無水N,N-ジメチルホルムアミド(0.5mL)中の3-ブロモプロピルアセテート(24)(88mg、0.49mmol)の溶液で処理し、45分間撹拌した。次いで、反応混合物をエーテルで希釈し、水(2×)で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、20%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、63mg(45%)のアセテート32(O-アルキル化生成物(22mg、16%)が得られ、出発材料31(24mg、22%)も得られた)。
メタノール(2mL)中のアセテート32(63mg、0.15mmol)の溶液を、炭酸カリウム(75mg、0.54mmol)で処理し、0.5時間の間撹拌した。反応混合物をエーテルで希釈し、水(2×)で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗製アルコール33を更に精製することなく次のステップで使用した。
アルゴン雰囲気下で、無水テトラヒドロフラン(1.5mL)中のアルコール33(44mg、0.12mmol)、フェノール22(20mg、0.12mmol)及びトリフェニルホスフィン(35mg、0.13mmol)の溶液を、0℃に冷却し、アゾジカルボン酸ジイソプロピル(二連子)(0.025mL、0.13mmol)でゆっくり処理した。氷水浴を除去した後に、反応混合物を60時間の間撹拌した。反応混合物を減圧下で濃縮した。粗化合物(アセトン中に可溶化)をシリカゲル上で濾過した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、50%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、18.5mg(2つのステップで30%)のEM-9126が得られた。
EM-9199の合成
ジクロロメタン(50mL)中の4-シアノ-3-トリフルオロメチルアニリン(27)(2.01g、10.8mmol)及び重炭酸ナトリウム(2.25g、26.8mmol)の懸濁液を、0℃で冷却し、トルエン(11mL、20.9mmol)中の20%のホスゲン溶液でゆっくり処理し、氷水浴を除去した後に2時間の間撹拌した。反応混合物を濾過し、減圧下で濃縮した。粗製イソシアネート34を更に精製することなく次のステップで使用した。
無水テトラヒドロフラン(40mL)中のイソシアネート35(2.29g、10.8mmol)、2-アミノ-2-メチルプロピオニトリル(2)(1.1g、13mmol)及びトリエチルアミン(0.15mL、1.1mmol)の溶液を、1時間の間還流した。反応混合物を室温に冷却し、減圧下で濃縮した。粗化合物35を更に精製することなく次のステップで使用した。
1:1比(36mL)におけるメタノール及び2N塩酸水溶液の混合物中の化合物35(3.19g、10.8mmol)の溶液を、0.5時間の間還流した。次いで、反応混合物を室温で冷却し、水で希釈し、ジクロロメタン(3×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮することで、3.07g(3つのステップで96%)の化合物36が得られた。粗化合物36を更に精製することなく次のステップで使用した。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(8mL)中の化合物36(501mg、1.69mmol)及び4-ブロモベンジルブロミド(630mg、2.5mmol)の溶液を、0℃で冷却し、水素化ナトリウム(鉱物油中60%分散された、100mg、2.5mmol)処理し、氷水浴を除去した後、0.5時間撹拌した。次いで、反応混合物をエーテルで希釈し、水(2×)で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をクロマトグラフィー(Biotageシステム、シリカゲル、0〜30%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、786mg(100%)の臭化物37が得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(2mL)中の臭化物37(100mg、0.21mmol)、4-ピリジンボロン酸(41mg、0.33mmol)及びリン酸三カリウム(136mg、0.64mmol)の懸濁液に、アルゴンを10分間吹き込み、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(25mg、0.022mmol)で処理し、100℃で1時間の間加熱した。次いで、反応混合物を室温に冷却し、エーテルで希釈し、水(2×)で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物を2つのフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、30%アセトン-ヘキサン及び2%メタノール-ジクロロメタン)によって精製することで、55mg(56%)のEM-9199が得られた。
EM-9340の合成
4-ブロモアニリン(38)(2.05g、11.9mmol)、エチルα-ブロモイソブチレート(3.0mL、20mmol)及び重炭酸ナトリウム(1.5g、18mmol)の混合物を、140℃で6時間の間加熱した。反応混合物を室温に冷却し、シリカゲルで処理し、フラッシュクロマトグラフ(10%エーテル-ヘキサン)することで、1.06g(31%)のエステル39が油として得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水テトラヒドロフラン(14mL)中のエステル39(1.17g、4.09mmol)の溶液を、0℃で冷却し、4-シアノ-3-トリフルオロメチルフェニルイソシアネート(34)(0.87mg、4.1mmol)及びトリエチルアミン(0.57mL、4.1mmol)で処理し、氷水浴を除去した後に終夜撹拌し、同じ量のイソシアネート(34)及びトリエチルアミンで処理し、1時間撹拌した。次いで、反応混合物をエーテルで希釈し、水(2×)で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、10%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、1:2.2比における臭化物40とエチル(4-シアノ-3-トリフルオロメチルフェニル)カルバメートとの混合物750mgが得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(3mL)中の不純な臭化物40(150mg、0.15mmol)、4-ピリジンボロン酸(80mg、0.65mmol)及びリン酸三カリウム(212mg、1.00mmol)の懸濁液に、アルゴンを10分間吹き込み、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(44mg、0.038mmol)で処理し、90℃で3時間の間加熱した(不完全な反応)。次いで、反応混合物を室温に冷却し、エーテルで希釈し、水(2×)で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物を2つのフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、20%のアセトン-ヘキサン及び10%のアセトン-ジクロロメタン)によって精製することで、45mg(2つのステップで12%)のEM-9340が得られた。
EM-9336の合成
アルゴン雰囲気下で、ジクロロメタン(200mL)中の4-(4-ブロモフェニル)-1-ブタノール(41)(Ando T.ら、Bull. Chem. Soc. Jpn.、1980、53(8)、2348〜2356に記載されている方法から得られた)(3.44g、15mmol)、トリフェニルホスフィン(4.6g、17mmol)及びテトラブロモメタン(7.5g、23mmol)の懸濁液を、終夜撹拌した。反応混合物を水でクエンチし、ジクロロメタン(3×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。粗化合物をクロマトグラフィー(Biotageシステム、シリカゲル、0〜10%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、2.43g(55%)の臭化物42が得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(10mL)中の水素化ナトリウム(鉱物油中60%分散された、120mg、3.0mmol)及びEM-9289(560mg、2.0mmol)の懸濁液を、30分間撹拌し、0℃で冷却し、無水N,N-ジメチルホルムアミド(2mL)中の臭化物42(900mg、3.1mmol)の溶液でゆっくり処理し、氷水浴を除去した後に終夜撹拌した。次いで、反応混合物を水で希釈し、ジクロロメタン(2×)及び酢酸エチル(2×)で抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をクロマトグラフィー(Biotageシステム、シリカゲル、0〜20%のアセトン-ヘキサン)によって精製することで、435mg(45%)の臭化物43が得られた。
アルゴン雰囲気下で、無水N,N-ジメチルホルムアミド(12mL)中の臭化物43(214mg、0.438mmol)、4-ピリジンボロン酸(65mg、0.53mmol)及びリン酸三カリウム(280mg、1.3mmol)の懸濁液に、アルゴンを15分間吹き込み、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(76mg、0.066mmol)で処理し、80℃で終夜加熱した。次いで、反応混合物を室温に冷却し、水で希釈し、ジクロロメタン(3×)及び酢酸エチルで抽出した。合わせた有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、減圧下で濃縮した。粗化合物をフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、0〜20%のアセトン-トルエン)によって精製することで、25mg(12%)のEM-9336が得られた。
下記に説明されているのは、例として及び限定ではなく、全身的使用のための好ましい活性抗アンドロゲンEM-9150を利用するいくつかの医薬組成物である。本発明の他の抗アンドロゲン若しくはSARM又はその組合せは、EM-9150の代わりに(又は、それに加えて)使用することができる。活性成分の濃度は、本明細書において考察されている通りの広い範囲にわたって変更してもよい。含まれ得る他の成分の量及び型は、当技術分野においてよく知られている。
(実施例A)
下記に説明されているのは、例として及び限定でなく、好ましい活性抗アンドロゲンEM-9150及び好ましいLHRHアゴニスト酢酸ロイプロリド(リュープロンデポー)を利用するいくつかのキットである。本発明の他の化合物又はその組合せは、EM-9150及び酢酸ロイプロリドの代わりに(又は、それに加えて)使用することができる。LHRHアンタゴニストは、LHRHアゴニストの代わりに使用することができる。活性成分の濃度は、本明細書において考察されている通りの広い範囲にわたって変更することができる。含まれ得る他の成分の量及び型は、当技術分野においてよく知られている。
Claims (26)
- 式
[式中nは、0から4の整数であり;
mは、0から1の整数であり;
Jは、直接結合であるか、又は-O-及び-CH 2 -からなる群から選択され;
Yは、直接結合又は-O-であり;
Raは、水素、ハロゲン、-OCH3、C 1 アルキル、ニトリル、及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
Rbは、水素、ハロゲン、C 1 アルキル、及びアミンからなる群から選択され;
R1は、水素及びC 1 アルキルからなる群から選択され;
R2は、ハロゲン及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
R3は、ニトリルであり;
R4及びR5は、水素であり;
R6及びR7は、C 1 アルキルであるか、又はR6及びR7は一緒に、(CH2)p基(pは4である)を有する環を形成し;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
G 1 は炭素又はメチンであり;
G 2、G3、G4及びG5は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には最大1つの窒素又は窒素酸化物があり;
G6、G7、G8、G9及びG10は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には1つ又は2つの窒素又は窒素酸化物があり;
Yは、G1、G2又はG4に連結されている]の化合物又はその薬学的に許容される塩。 - mが0であり;nが3であり;Jが酸素であり;G1、G8及びG10が炭素又はメチンであり;Yが直接結合であり;J及びYが互いに対しパラ位であり;G6又はG7又はG9が窒素又は窒素酸化物である、請求項1に記載の化合物。
- 式
[式中nは、3であり;
mは、0であり;
Jは、-O-であり;
Raは水素であり;
Rbは、水素及びC 1 アルキルからなる群から選択され;
R1は、水素及びC 1 アルキルからなる群から選択され;
R2は、ハロゲン及びトリフルオロメチルからなる群から選択され;
R3は、ニトリルであり;
R4及びR5は、水素であり;
R6及びR7は、C 1 アルキルであり;
Wは、酸素及び硫黄からなる群から選択され;
L1、L2、L3及びL4は、独立して、炭素、及びメチンからなる群から選択され;
L5、L6、L7及びL8は、独立して、炭素、メチン、窒素及び窒素酸化物からなる群から選択され、環内には1つ又は2つの窒素又は窒素酸化物がある]の化合物又はその薬学的に許容される塩。 - 請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物、及び薬学的に許容される希釈剤又は担体を含む医薬組成物。
- 請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量、及び薬学的に許容される希釈剤又は担体を含む、前立腺がん、良性前立腺肥大、ざ瘡、脂漏、多毛症、アンドロゲン性脱毛症、男性型脱毛症、多嚢胞性卵巣症候群、思春期早発症又は高アンドロゲン症候群を処置する又はそれらを発症するリスクを低減するための医薬組成物。
- 請求項1、2及び4から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量、及び薬学的に許容される希釈剤又は担体を含む、筋萎縮及び脱力、皮膚萎縮、骨減少、骨粗鬆症、貧血、アテローム性動脈硬化症、心血管疾患、エネルギーの減少、健康の喪失、性欲減退、男性性腺機能低下症、サルコペニア、性交不能症、勃起機能不全、女性性機能不全、2型糖尿病又は腹部脂肪蓄積からなる、アンドロゲン刺激の減少に関連した疾患を処置する又はそれらを発症するリスクを低減するための医薬組成物。
- 請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量、及び薬学的に許容される希釈剤又は担体を含む、前立腺がん又は良性前立腺肥大を処置する又はそれらを発症するリスクを低減するための医薬組成物。
- 前記希釈剤又は担体が経口投与に適した、請求項10から13のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前立腺がんを処置する又はそれを発症するリスクを低減する方法において使用される、請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量を含む医薬組成物。
- 15型17β-ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼの阻害剤、5型17β-ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼの阻害剤、5α-レダクターゼの阻害剤及び17α-ヒドロキシラーゼ/17,20-リアーゼの阻害剤からなる群から選択される、アンドロゲン合成酵素の少なくとも1種の阻害剤の治療有効量を更に含む、請求項15に記載の医薬組成物。
- 5α-レダクターゼの阻害剤及び15型17β-ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼの阻害剤を含む、請求項16に記載の医薬組成物。
- 前記前立腺がんを処置する又はそれを発症するリスクを低減する方法が、精巣摘出又はLHRHアゴニスト若しくはアンタゴニストを投与する工程を含む、請求項15に記載の医薬組成物。
- 前記前立腺がんを処置する又はそれを発症するリスクを低減する方法が、精巣摘出又はLHRHアゴニスト若しくはアンタゴニストを投与する工程を含む、請求項16に記載の医薬組成物。
- 前立腺がんを処置する又はそれを発症するリスクを低減する方法が、精巣摘出又はLHRHアゴニスト若しくはアンタゴニストを投与する工程を含む、請求項17に記載の医薬組成物。
- 良性前立腺肥大を処置する又はそれを発症するリスクを低減する方法において使用される、請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量を含む、医薬組成物。
- 抗エストロゲン薬、アロマターゼの阻害剤、15型17β-ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼの阻害剤、5型17β-ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼの阻害剤、5α-レダクターゼの阻害剤、17α-ヒドロキシラーゼ/17,20-リアーゼの阻害剤及びアンドロゲン合成酵素の阻害剤からなる群から選択される少なくとも1種の阻害剤の治療有効量を更に含む、請求項21に記載の医薬組成物。
- 5α-レダクターゼの阻害剤及び15型17β-ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼの阻害剤を含む、請求項22に記載の医薬組成物。
- (a)ざ瘡、脂漏、多毛症、アンドロゲン性脱毛症又は男性型脱毛症;又は(b)前立腺がん、良性前立腺肥大、多嚢胞性卵巣症候群、思春期早発症若しくは高アンドロゲン症候群;又は(c)筋萎縮及び脱力、皮膚萎縮、骨減少、骨粗鬆症、貧血、アテローム性動脈硬化症、心血管疾患、エネルギーの減少、健康の喪失、性欲減退、男性性腺機能低下症、サルコペニア、性交不能症、勃起機能不全、女性性機能不全、2型糖尿病若しくは腹部脂肪蓄積を処置する又はそれらを発症するリスクを低減する方法において使用される、請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量を含む、医薬組成物。
- 薬学的に許容される希釈剤又は担体をさらに含む、請求項15から24のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 請求項1から9のいずれか一項に記載の少なくとも1種の化合物の治療有効量を含有する第1の容器を含み、少なくとも1つのLHRHアゴニスト又はLHRHアンタゴニストの治療有効量を含有する第2の容器を更に含むキット。
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