JP6766037B2 - Fgfr阻害剤による治療に応答性であるがん患者を同定する際の、fgfr変異遺伝子パネルの使用 - Google Patents
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Description
本出願は、2014年9月26日に出願された米国特許仮出願第62/056,159号に対する優先権を主張するものであり、その開示の全容は本明細書に参照により援用されている。
本出願には、ASCIIフォーマットで電子的に提出された配列表が含まれており、その配列表の全容は本明細書に参照により援用されている。2015年8月6日に作成された前記ASCIIコピーは、「103693.000782_SL.txt」というファイル名で、サイズは66,185バイトである。
[技術分野]
本明細書で使用するとき、「FGFR変異体」という語句は、FGFR融合遺伝子、FGFR一塩基多型、又は両方を指す。
ボールドの下線が付いたヌクレオチドは、SNPを表す。
*文献中でY375Cと誤称される場合がある。
当業者に公知であるように、核酸の増幅には、増幅しようとする領域の側面に位置する核酸ストランドの5'及び3'領域に相補的であり、かつ結合するプライマーが必要とされる。本明細書で使用するとき、「プライマー対」とは、増幅する工程において用いられる順方向プライマー及び逆方向プライマーを指す。開示される方法を実行するうえで好適なプライマー対は、表3に記載されている。
本明細書において、開示される方法に用いるための好適なFGFR阻害剤が提供される。
本明細書において、患者由来の生体試料をFGFR変異遺伝子パネル由来の1つ以上のFGFR変異体について評価する工程と、試料中に1つ以上のFGFR変異体が存在する場合に患者をFGFR阻害剤で治療する工程と、を含む、患者におけるがんの治療方法が開示される。
の任意の組み合わせ、及び対応するプライマー対であり得る。
a.プライマー対が配列番号5と配列番号6の配列を有し、プローブが配列番号43の配列を有するか;
b.プライマー対が配列番号7と配列番号8の配列を有し、プローブが配列番号44の配列を有するか;
c.プライマー対が配列番号9と配列番号10の配列を有し、プローブが配列番号46の配列を有するか;
d.プライマー対が配列番号11と配列番号12の配列を有し、プローブが配列番号47の配列を有するか;
e.プライマー対が配列番号13と配列番号14の配列を有し、プローブが配列番号45の配列を有するか;
f.プライマー対が配列番号15と配列番号16の配列を有し、プローブが配列番号48の配列を有するか;
g.プライマー対が配列番号17と配列番号18の配列を有し、プローブが配列番号49の配列を有するか;
h.プライマー対が配列番号19と配列番号20の配列を有し、プローブが配列番号50の配列を有するか;
i.プライマー対が配列番号21と配列番号22の配列を有し、プローブが配列番号51の配列を有するか;
j.プライマー対が配列番号23と配列番号24の配列を有し、プローブが配列番号52の配列を有するか;
k.プライマー対が配列番号25と配列番号26の配列を有し、プローブが配列番号53の配列を有するか;
l.プライマー対が配列番号27と配列番号28の配列を有し、プローブが配列番号54の配列を有するか;
m.プライマー対が配列番号29と配列番号30の配列を有し、プローブが配列番号55の配列を有するか;
n.プライマー対が配列番号31と配列番号32の配列を有し、プローブが配列番号52の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号39の配列を有するか;
o.プライマー対が配列番号33と配列番号34の配列を有し、プローブが配列番号53の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号40の配列を有するか;
p.プライマー対が配列番号35と配列番号36の配列を有し、プローブが配列番号54の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号41の配列を有するか;
q.プライマー対が配列番号37と配列番号38の配列を有し、プローブが配列番号55の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号42の配列を有するか;又は
r.これらの任意の組み合わせにより実行することができる。
本明細書において、患者由来の生体試料をFGFR変異遺伝子パネル由来のFGFR変異体について評価する工程であって、FGFR変異体が、FGFR融合遺伝子又はFGFR一塩基多型であり、前記評価する工程が、FGFR変異遺伝子パネル由来の1つ以上のFGFR変異体に結合し増幅するプライマー対を用いてcDNAを増幅することと、遺伝子パネル由来の1つ以上のFGFR変異体が試料中に存在するかどうかを判定することであって、1つ以上のFGFR変異体の存在は、患者がFGFR阻害剤による治療に応答性であることを示唆する、判定することと、を含む、線維芽細胞成長因子受容体(FGFR)阻害剤による治療に応答性であるがん患者を同定する方法が開示される。
更に、配列番号5と配列番号6、配列番号7と配列番号8、配列番号9と配列番号10、配列番号11と配列番号12、配列番号13と配列番号14、配列番号15と配列番号16、配列番号17と配列番号18、配列番号19と配列番号20、配列番号21と配列番号22、配列番号23と配列番号24、配列番号25と配列番号26、配列番号27と配列番号28、配列番号29と配列番号30、配列番号31、配列番号32、配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、又はこれらの任意の組み合わせの配列を有するプライマー対と、1つ以上のFGFR変異遺伝子を検出するためのアッセイを実行するための指示と、を備える、生体試料中にFGFR変異遺伝子が1つ以上存在するかどうかを同定するためのキットが開示される。
a.プライマー対が配列番号5と配列番号6の配列を有し、プローブが配列番号43の配列を有するか;
b.プライマー対が配列番号7と配列番号8の配列を有し、プローブが配列番号44の配列を有するか;
c.プライマー対が配列番号9と配列番号10の配列を有し、プローブが配列番号46の配列を有するか;
d.プライマー対が配列番号11と配列番号12の配列を有し、プローブが配列番号47の配列を有するか;
e.プライマー対が配列番号13と配列番号14の配列を有し、プローブが配列番号45の配列を有するか;
f.プライマー対が配列番号15と配列番号16の配列を有し、プローブが配列番号48の配列を有するか;
g.プライマー対が配列番号17と配列番号18の配列を有し、プローブが配列番号49の配列を有するか;
h.プライマー対が配列番号19と配列番号20の配列を有し、プローブが配列番号50の配列を有するか;
i.プライマー対が配列番号21と配列番号22の配列を有し、プローブが配列番号51の配列を有するか;
j.プライマー対が配列番号23と配列番号24の配列を有し、プローブが配列番号52の配列を有するか;
k.プライマー対が配列番号25と配列番号26の配列を有し、プローブが配列番号53の配列を有するか;
l.プライマー対が配列番号27と配列番号28の配列を有し、プローブが配列番号54の配列を有するか;
m.プライマー対が配列番号29と配列番号30の配列を有し、プローブが配列番号55の配列を有するか;
n.プライマー対が配列番号31と配列番号32の配列を有し、プローブが配列番号52の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号39の配列を有するか;
o.プライマー対が配列番号33と配列番号34の配列を有し、プローブが配列番号53の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号40の配列を有するか;
p.プライマー対が配列番号35と配列番号36の配列を有し、プローブが配列番号54の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号41の配列を有するか;
q.プライマー対が配列番号37と配列番号38の配列を有し、プローブが配列番号55の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号42からなる配列を有するか;又は
r.これらの任意の組み合わせを更に含み得る。
配列番号43〜55のいずれか1つの配列を有するオリゴヌクレオチドプローブも開示される。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号43の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号44の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号45の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号46の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号47の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号48の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号49の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号50の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号51の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号52の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号53の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号54の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、配列番号55の配列を有し得る。
本明細書において、配列番号39〜42のいずれか1つの配列を有するオリゴヌクレオチドも開示される。幾つかの実施形態において、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドは、配列番号39の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドは、配列番号40の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドは、配列番号41の配列を有し得る。幾つかの実施形態において、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドは、配列番号42の配列を有し得る。
FGFR融合プラスミドDNAを調製するための例示的な手技は、以下の通りである。
各FGFR融合を発現する発現ベクターを構築した。次いで、その発現ベクターを、正常ラット腎臓上皮細胞(NRK細胞)にトランスフェクトした。トランスフェクションに続いて、カナマイシン含有培地中の安定な細胞株を選択した。次いで、これらの細胞を生育し、mRNAを単離して、FGFR融合アッセイにかけることにより、特異的FGFR融合mRNAの存在を確証した。
以下のプロトコールには、NRK FGFR融合を過剰発現する細胞株を培養し維持するための、例示的な手技が記載されている。細胞株としては、限定されないが、NRK/FGFR3:TACC3v1、NRK/FGFR3:TACC3 v3、NRK/FGFR3:BAIAP2L1、NRK/FGFR2:BICC1、NRK/FGFR2:CASP7、NRK/FGFR2:CCDC6、NRK/FGFR2:AFF3、NRK/FGFR2:OFD1、及びNRK/空ベクター(プラスミド対照)が挙げられる。
FFPET SNPアッセイを実行するための例示的なワークフロー及びプロトコールについては、後述する。FFPET融合アッセイに対して同様な手技を実行し、結果を図2に示す。
増量したキシレンでスライド(Slides)を処理した後、アルコール処理を施してパラフィンを除去した。
下流遺伝子発現アッセイ用に乳がんのホルマリン固定パラフィン包埋組織試料からRNAを抽出するための手技については、後述する。
リアルタイムPCR(RT−PCR)解析を使用した、FFPETのSNPアッセイのcDNAの合成手技は、以下に開示される。
10X RTバッファーミックス2μl;
25X dNTPミックス0.8μl;
10X RTランダムプライマー2μl;
50U/μL MultiScribe逆転写酵素1μl;
RNase阻害剤1μl;及び
ヌクレアーゼ/RNase不含H20 3.2μl。
工程1:25℃で10分間
工程2:37℃で120分間
工程3:85℃で5秒間
工程4:4℃で無限保持
FFPET SNPアッセイのプレ増幅プロトコールに関連したプレ増幅アッセイプールミクスチャーを、後述の方法で調製した。
必須機器:プレートアダプタ付き遠心分離機(1500xgに対応);マイクロ遠心分離機;容積型又は空気容積型ピペッター;ボルテクサー;GeneAmp(登録商標)PCR System9700(ABI#4314879)又は同等物。
工程1:95℃で10分間
工程2:95℃で15秒間
工程3:60℃で4分間
工程4:設定工程2〜3を10サイクル
ゴールド又はシルバーブロック使用時には、最大モードを選択し、温度変化率(Ramp rate)を77%に設定した。アルミニウムブロック使用時には、標準モード(率変更なし)を選択した。
工程5:4℃で無限保持
反応容量を25μLに設定した。
リアルタイムPCR解析を使用した、ホルマリン固定パラフィン包埋組織のSNPアッセイの手技は、以下に開示される。
がん診断において、過剰な野生型対立遺伝子中の体細胞突然変異が検出されることはごく稀であり、こうした突然変異を検出することの重要性はますます高まってきている。関心対象の突然変異が相互に酷似している場合、この突然変異を検出することは困難である。FGFR SNPとFFPETとを同定し易くするために、SNP特異的qRT−PCRアッセイが開発され、このアッセイでは、Taqman MGBプローブを用いたSNP特異的増幅と、3'ジデオキシ野生型(WT)対立遺伝子遮断剤とを組み合わせて使用した。本アッセイは非特異的な結合を防ぎ、オンターゲット(on-target)増幅の数を向上させ、WT対立遺伝子からの偽陽性シグナルを最小限に抑え、アッセイの感受性を増強した。このRNAベースのSNP検出アッセイは、本アッセイにおけるプレ増幅工程と組み合わせて、突然変異シグナルが貧弱又は稀有な場合に、その増強を図るものである。
* Yは、T又はCであり得る。3’WTブロッキングオリゴは、合成中に、その特定位置にてT:50%及びC:50%を有する(その特定位置にてT又はCを提供するため、メーカーにより精製された)。
FMI/NGS=突然変異(3'ブロッキングオリゴヌクレオチドなし)を同定するための鋳型としてDNAを用いた、次世代配列決定技法;Janssen R&D=RNA鋳型(3'ブロッキングオリゴヌクレオチドなし)に対して実行;RNA鋳型(3'ブロッキングヌクレオチドあり)に対して実行されたSNP特異的PCR。
FGFR融合アッセイ用の陽性対照の生成
FGFR融合である「合成ミニ遺伝子」、FGFR融合をコードするプラスミド、及びFGFR融合を含む安定な細胞株を生成した。概説すると、約100塩基対の一連のヌクレオチドを、関心対象の遺伝子の標的DNA配列に対応するものに相互に連結することにより、合成ミニ遺伝子を人工的に構築した。様々なFGFR融合遺伝子をコードするcDNAを、発現ベクターにクローニングすることにより、FGFR融合をコードするプラスミドを生成した。FGFR遺伝子をコードするプラスミドを、正常ラット腎臓上皮細胞(NRK細胞)にトランスフェクトすることにより、FGFR融合を含む安定な細胞株を生成した。その安定な細胞株は、G418抗生物質下で選択されたものである。これらの細胞系から単離された全RNAに対してFGFR融合Taqmanアッセイを実行し、FGFR融合を発現する安定な細胞株が正常に生成されたことを確証した。FGFR融合を発現する安定な細胞株を、陽性対照として用いた。表15は、リアルタイムPCRアッセイ中に使用されるプローブの配列の一覧である。
FGFR融合遺伝子アッセイの定量下限値(LLOQ)及び効率を特定するため、FGFR融合産物を、TaqMan PCR(実施例4に記載)により生成し、サンガー配列決定法(図2)により確証した。融合陽性DNA100pgを、正常ヒトcDNA(融合陰性が確証されたもの)と混ぜ合わせ、1:10に系列希釈して、Applied Biosystems製ViiA7 Software v1.1を使用して解析した。効率標準曲線を、図6に示す。FGFR融合のLLOQ及び効率を、表11に示す。
膀胱がんにおけるFGFR3突然変異の評価
試験された膀胱がん試料のおよそ8%、およそ61%、及びおよそ19%においてそれぞれ、R248C、S249C、及びY373C SNPが観測された。
実施例4に記載の手技と同じ手技を用い、試料を解析した。結果を表13及び図7に示す。表13は、様々ながんにおけるFGFR融合の発生率を示している。FGFR融合は、qRT−PCR法を用いることにより、膀胱がん(原発性及び転移性)、NSCLC(腺がん及び扁平上皮がん)、卵巣がん、食道がん(原発性及び転移性)、頭頸部がん(H&N;原発性及び転移性)、子宮内膜がん(転移性)、乳がん、並びに前立腺がんなどの様々ながんのFFPE試料中に検出されたものである。試験された全てのFGFR融合が、前立腺がん試料に対して陰性であった。FGFR3:TACC3イントロン融合は、膀胱がん(原発性)、NSCLC(扁平上皮がん)、卵巣がん及び食道がん(原発性)、H&Nがん(原発性及び転移性)、及び乳がんにおいて陰性であった。FGFR2:OFD1融合は、膀胱がん(原発性及び転移性)、NSCLC(腺がん)、卵巣がん及び食道がん(原発性及び転移性)において陰性であった。FGFR2:CCDC6融合は、膀胱がん(原発性及び転移性)、NSCLC(腺がん)、卵巣がん、食道がん(原発性)、及びH&Nがん(原発性及び転移性)において陰性であった。
臨床試験を実施し、本臨床試験では、FGFR3:TACC3 v1、FGFR3:TACC3 v3、FGFR2:CCDC6、及びFGFR2:BICC1融合遺伝子を発現する様々な固形腫瘍を有する患者を、JNJ−42756493で治療した。図9は、qRT−PCRアッセイを使用して第I相JNJ−427493(EDI10001)治験試料中のFGFR融合が検出された、第I相患者試料から得られた例示的な結果を例証したものである。全てのFGFR融合アッセイを陽性対照(ST)及びGAPDHと同時に実行し、RNAの品質管理評価を行った。A)FGFR2:BICC1融合に対してのみ陽性のpt#1000081に関して生成されたqRT−PCRデータのグラフ図である(挿入画は、FGFR2:BICC1融合、ST陽性対照、及びGAPDHのCt値の詳細を示す)。B)FGFR3:TACC3v1融合に対してのみ陽性のpt#33000158に関して生成されたqRT−PCRデータのグラフ図である(挿入画は、FGFR3:TACC3v1融合、ST陽性対照、及びGAPDHのCt値の詳細を示す)。C)FGFR2:CCDC6融合に対してのみ陽性のpt#34000123に関して生成されたqRT−PCRデータのグラフ図である(挿入画は、FGFR2:CCDC6融合、ST陽性対照、及びGAPDHのCt値の詳細を示す)。D)FGFR3:TACC3v1、FGFR3:TACC#v3、及びFGFR2:CCDC6融合に対して陽性のpt#340000115に関して生成されたqRT−PCRデータのグラフ図である(FGFR融合、ST陽性対照、及びGAPDHのCt値の詳細は、挿入画に示してある)。
FGFR融合遺伝子を有する患者において、1日1回(QD)9mgを投与、1日1回12mgを投与、及び7日間12mgを投与/7日間休薬し、有意な臨床的応答性(RECIST)が観測された(図11に、全ての投与レジメンを表す)。
FGFR融合を過剰発現する細胞株
ラット腎臓上皮細胞(RK3E)は、ATCC(Manassas,VA,USA)から購入され、DMEM中で培養され、FBS及び抗生物質(Invitrogen,Grand Island,NY,USA)を補給されたものであった。FGFR融合遺伝子構築物をデザインし、HAタグを含むpReceiver発現ベクター(Genecopoeia,Rockville,MD,USA)にクローニングした。メーカーのプロトコールに従い、Amaxa Cell Line Nucleofector(Lonza,Basel,Switzerland)を使用してクローンをRK3E細胞にトランスフェクトした。800μg/mlのG418(Invitrogen)を有する完全培地で、安定的にトランスフェクトされた細胞を選択した。抗pFGFR抗体を用いたリアルタイムPCR及び免疫ブロッティングによって、安定的にトランスフェクトされた細胞における融合の過剰発現を確証した(図12)。図12に示すように、安定な細胞株は、FGFRのリン酸化の発現によって示される、活性なFGFR融合キナーゼの発現を呈した。
FGFR融合が安定的にトランスフェクトされたRK3E細胞の足場非依存性増殖を試験した。0.8%の低溶融点アガロースを有する培養培地1mlを、最初に6ウェルプレートの中の3つのウェルにそれぞれ平板培養した。寒天の凝固後、細胞100個を含有する培養培地中の別の0.4%寒天1mlを、各ウェルに捕捉した。14日後、コロニーが固定され、0.1%クレシルクリスタルバイオレットで染色した。三連のウェルから細胞株ごとに手動で計測することによって、コロニーの数を微視的に定量した。各融合を過剰発現した細胞株の代表的な図を、図13Aに示す。FGFR融合が安定的にトランスフェクトされた細胞では、軟寒天中での足場非依存性細胞成長を検出できたのに対して、空ベクター対照では検出できなかった。図13Bは、FGFR融合が安定的にトランスフェクトされたRK3E細胞及び空ベクター対照を対象の、軟寒天中のコロニーの定量解析を表す。全ての実験を二度にわたって実行し、結果を、平板培養された細胞100個当たりのコロニー数として表した。試験された全てのFGFR融合が、足場非依存性増殖を誘発したことから、それらの形質転換能力が強調された。
FGFR融合が安定的にトランスフェクトされたRK3E細胞を、完全増殖培地中で平板培養し、一晩血清飢餓させてから、0.5%FBS増殖培地を再補給した。リガンドの存在下にて細胞を、1μMのJNJ−42756493、AZD4547、又はNVP−BGJ398で1時間処理した。免疫ブロッティング用に、全細胞の可溶化物をRIPAバッファー(Thermo Scientific,Waltham,MA,USA)中に採取し、BCA Protein Assay(Thermo Scientific)を使用して、試料タンパク質濃度をアッセイした。等量のタンパク質(1レーンにつき30 μg)を4〜12%のビストリス(Bis-Tris)ゲル(Invitrogen製)上にロードしてから、SDS−PAGEを実行した。タンパク質をニトロセルロースメンブレンに移し、抗体をp−FGFR、総FGFR2、p−MAPK、総MAPK、p−S6、総S6、βアクチン(Cell Signaling Technology,Danvers,MA,USA)、及び総FGFR3(Santa Cruz,Dallas,TX,USA)に対してプローブした。メンブレンを、室温にてOdysseyブロッキングバッファーで1時間ブロッキングし、Odysseyブロッキングバッファーで希釈された原発性抗体溶液(1:1000)中で、4℃にて一晩インキュベートした。メンブレンを0.1%のTweenトリス緩衝生理食塩水(TBST)中で3回洗浄した後、Odysseyブロッキングバッファー中のヤギ抗マウス若しくはロバ抗ウサギIR染料670又は800cw標識二次抗血清を用い、室温で1時間プローブした。二次標識の後、洗浄を繰り返して、LiCor Odysseyスキャナ及びOdyssey3.0解析ソフトウェア(LiCor,Lincoln,NE,USA)を用いてメンブレンを撮像した。JNJ−42756493の薬効をAZD4547及びNVP−BGJ398と比較した。図14A〜図14Hに示すように、JNJ−42756493、AZD4547、及びNVP−BGJ398(各ブロット中のレーン2〜4)による治療によって、FGFR並びに下流標的(即ち、MAPK及びS6)のリン酸化が阻害された。
FGFR融合が安定的にトランスフェクトされたRK3E細胞を96ウェルプレート(1ウェル当たり細胞1000個)に播種し、リガンドFGF−1及びFGF−2を加えた完全増殖培地を、3組作製した。24時間後、細胞を一晩血清飢餓させてから、0.5%FBS増殖培地を再補給した。平板培養の72時間後に、JNJ493、AZD4547(AZD)、及びNVP−BGJ398(NVS)の濃度を様々に変えて(初期濃度=10μM、18ポイント、1:3の希釈系列で)、細胞を処理した。次いで、マイクロタイタープレートを72時間インキュベートし、メーカーの指示に従って修正を施し、Cell Titer−Glo(登録商標)Luminescent Cell Viabilityアッセイ(Promega Corp.,Madison,WI,USA)を使用して、アデノシン三リン酸(ATP;代謝的に活性な細胞のマーカー)の産生量(content)をアッセイした。概説すると、細胞を室温に平衡させ、その時点でCell Titer−Glo(登録商標)試薬の1:1混合物を添加した。次いで、細胞を軌道振盪機に2分間載置し、室温にて10分間インキュベートして、発光シグナルを安定させる。Envision Multilabelプレートリーダー(Perkin Elmer;Waltham,MA,USA)を使用して、蛍光を定量化し、測定を行った。GraphPad Prism 5.0を使用して、IC50値(表14に示す)を算出した。表14に示すように、FGFR融合を有する細胞は、生体外でFGFR阻害剤JNJ−42756493、AZD4547及びNVP−BGJ398に対する感受性を呈し、JNJ−42756493は、AZD4547及びNVP−BGJ398と比べて高い感受性(ナノモラー濃度範囲)を呈したのに対して、空ベクター対照は感受性を呈さなかった。
発現ベクターへと操作されたFGFR融合cDNAについてのヌクレオチド配列をを、表16に示す。下線付きの配列はFGFR3又はFGFR2のいずれかに対応し、通常フォントの配列は融合パートナーを表し、斜体フォントの配列はFGFR3遺伝子のイントロン配列を表す。
次の実施形態のリストは、上記説明を補完することを意図したものであって、上記説明に置き換わるものでも、又は上記説明に優先されるものではない。
患者由来の生体試料をFGFR変異遺伝子パネル由来のFGFR変異体について評価する工程であって、FGFR変異体が、FGFR融合遺伝子又はFGFR一塩基多型であり、前記評価する工程が、
FGFR変異遺伝子パネル由来の1つ以上のFGFR変異体に結合し増幅するプライマー対を用いてcDNAを増幅することと、
FGFR変異遺伝子パネル由来の1つ以上のFGFR変異体が試料中に存在するかどうかを判定することであって、1つ以上のFGFR変異体の存在は、患者がFGFR阻害剤による治療に応答性であることを示唆する、判定することと、
を含む、方法。
患者由来の生体試料をFGFR変異遺伝子パネル由来の1つ以上のFGFR変異体の存在について評価する工程を含み、FGFR変異体が、FGFR融合遺伝子又はFGFR一塩基多型であり、1つ以上のFGFR変異体の存在は、患者がFGFR阻害剤による治療に応答性であることを示唆する、方法。
FGFR3:TACC3 v1、及び配列番号5と配列番号6のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR3:TACC3 v3、及び配列番号7と配列番号8のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR3:TACC3イントロン、及び配列番号9と配列番号10のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR3:BAIAP2L1、及び配列番号11と配列番号12のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR2:BICC1、及び配列番号13と配列番号14のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR2:AFF3、及び配列番号15と配列番号16のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR2:CASP7、及び配列番号17と配列番号18のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR2:CCDC6、及び配列番号19と配列番号20のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR2:OFD1、及び配列番号21と配列番号22のヌクレオチド配列を有するプライマー;
R248C、及び配列番号23と配列番号24のヌクレオチド配列、若しくは配列番号31と配列番号32のヌクレオチド配列を有するプライマー;
S249C、及び配列番号25と配列番号26のヌクレオチド配列、若しくは配列番号33と配列番号34のヌクレオチド配列を有するプライマー;
G370C、及び配列番号27と配列番号28のヌクレオチド配列、若しくは配列番号35と配列番号36のヌクレオチド配列を有するプライマー;
Y373C、及び配列番号29と配列番号30のヌクレオチド配列、若しくは配列番号37と配列番号38のヌクレオチド配列を有するプライマー;
又はこれらの任意の組み合わせである、実施形態1〜18のいずれか1つに記載の方法。
生体試料由来のRNAを単離して、単離されたRNA由来のcDNAを合成することを含む、実施形態1〜19のいずれか1つに記載の方法。
配列番号5と配列番号6、配列番号7と配列番号8、配列番号9と配列番号10、配列番号11と配列番号12、配列番号13と配列番号14、配列番号15と配列番号16、配列番号17と配列番号18、配列番号19と配列番号20、配列番号21と配列番号22、配列番号23と配列番号24、配列番号25と配列番号26、配列番号27と配列番号28、配列番号29と配列番号30、配列番号31と配列番号32、配列番号33と配列番号34、配列番号35と配列番号36、配列番号37と配列番号38、又はこれらの任意の組み合わせの配列を有するプライマー対と、
1つ以上のFGFR変異遺伝子を検出するためのアッセイを実行する指示と、を含む、キット。
a.プライマー対が配列番号5と配列番号6の配列を有し、プローブが配列番号43の配列を有するか;
b.プライマー対が配列番号7と配列番号8の配列を有し、プローブが配列番号44の配列を有するか;
c.プライマー対が配列番号9と配列番号10の配列を有し、プローブが配列番号46の配列を有するか;
d.プライマー対が配列番号11と配列番号12の配列を有し、プローブが配列番号47の配列を有するか;
e.プライマー対が配列番号13と配列番号14の配列を有し、プローブが配列番号45の配列を有するか;
f.プライマー対が配列番号15と配列番号16の配列を有し、プローブが配列番号48の配列を有するか;
g.プライマー対が配列番号17と配列番号18の配列を有し、プローブが配列番号49の配列を有するか;
h.プライマー対が配列番号19と配列番号20の配列を有し、プローブが配列番号50の配列を有するか;
i.プライマー対が配列番号21と配列番号22の配列を有し、プローブが配列番号51の配列を有するか;
j.プライマー対が配列番号23と配列番号24の配列を有し、プローブが配列番号52の配列を有するか;
k.プライマー対が配列番号25と配列番号26の配列を有し、プローブが配列番号53の配列を有するか;
l.プライマー対が配列番号27と配列番号28の配列を有し、プローブが配列番号54の配列を有するか;
m.プライマー対が配列番号29と配列番号30の配列を有し、プローブが配列番号55の配列を有するか;
n.プライマー対が配列番号31と配列番号32との配列を有し、プローブが配列番号52の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号39の配列を有するか;
o.プライマー対が配列番号33と配列番号34の配列を有し、プローブが配列番号53からなる配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号40の配列を有するか;
p.プライマー対が配列番号35と配列番号36の配列を有し、プローブが配列番号54の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号41の配列を有するか;
q.プライマー対が配列番号37と配列番号38の配列を有し、プローブが配列番号55の配列を有し、3'ブロッキングオリゴヌクレオチドが配列番号42の配列を有するか;又は
r.これらの任意の組み合わせである、実施形態28に記載のキット。
Claims (13)
- 線維芽細胞成長因子受容体(FGFR)阻害剤による治療に応答性であるがん患者を同定する方法であって、
前記患者由来の生体試料を、少なくともFGFR3:TACC3 v1又はFGFR3:TACC3 v3を含むFGFR変異体について評価する工程であって、前記評価する工程が、
前記FGFR変異体を増幅するプライマー対を用いてcDNAを増幅することと、
前記FGFR変異体が前記試料中に存在するかどうかを判定することと、
を含み、FGFR3:TACC3 v1及び/又はFGFR3:TACC3 v3の存在は、前記患者が前記FGFR阻害剤による治療に応答性であることを示唆し、前記がんは副腎がん、尿路上皮がん及び神経膠芽腫から選択され、前記FGFR阻害剤は式(I)
の構造を有する化合物、そのN−酸化物、その医薬的に許容される塩、又はその溶媒和物を含む、方法。 - 前記FGFR変異体及びプライマー対が、
FGFR3:TACC3 v1、及び配列番号5と配列番号6のヌクレオチド配列を有するプライマー;
FGFR3:TACC3 v3、及び配列番号7と配列番号8のヌクレオチド配列を有するプライマー;
又はこれらの両方である、請求項1に記載の方法。 - 前記評価する工程が、前記生体試料由来のRNAを単離して、前記単離されたRNA由来のcDNAを合成することを含む、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記増幅する工程に先立って前記cDNAをプレ増幅することを更に含む、請求項3に記載の方法。
- 前記cDNAがプレ増幅されたものである、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記増幅する工程が、リアルタイムPCRを実行することを含む、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記リアルタイムPCRが、配列番号43、及び/又は配列番号44を含む1つ以上のプローブを用いて実行される、請求項6に記載の方法。
- 前記判定する工程が、前記増幅されたcDNAの配列を決定することを含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法に使用するためのキットであって、
配列番号5と配列番号6の配列を有するプライマー対、配列番号7と配列番号8の配列を有するプライマー対、又はこれらの両方と、
FGFR3:TACC3 v1及び/又はFGFR3:TACC3 v3を検出するためのアッセイを実行する指示と、を含む、キット。 - 1つ以上のプローブを更に含む、請求項9に記載のキット。
- a.前記プライマー対が配列番号5と配列番号6の配列を有し、前記プローブが配列番号43の配列を有するか;
b.前記プライマー対が配列番号7と配列番号8の配列を有し、前記プローブが配列番号44の配列を有するか;又は
c.これらの両方を含む、請求項10に記載のキット。 - 配列番号5と配列番号6、配列番号7と配列番号8、又はこれらの任意の組み合わせの配列を有する、請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法に使用するためのプライマーのセット。
- 配列番号43、配列番号44又はこれらの両方を有する、請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法に使用するためのオリゴヌクレオチドプローブ。
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