JP6872782B2 - カチオン性グルカンナノスフェア、複合体、核酸導入剤及びがん治療剤 - Google Patents
カチオン性グルカンナノスフェア、複合体、核酸導入剤及びがん治療剤 Download PDFInfo
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Description
本発明は、カチオン性グルカンナノスフェア、複合体、核酸導入剤及びがん治療剤に関する。
現在化学合成によって得られる低分子薬剤が医薬品として広く用いられているが、標的指向性の低さや副作用といった問題から新規薬剤の開発が求められている。タンパク質や合成ペプチドが新たな医薬として期待されるが、分子の安定性や合成コストなどの問題点も有している。そこで注目されているのがプラスミドDNAやsiRNA (small interfering RNA)と呼ばれる核酸医薬である。核酸は合成が比較的安価であること、また塩基配列を特異的に認識するといった利点を有している。しかし、ほかの薬剤と同様に生体内での安定性が課題であり、目的の場所に核酸を輸送するキャリアの開発が求められる。
両親媒性高分子は、水中でその疎水基が疎水性相互作用により会合し自己組織化することで粒子を形成する。近年、ナノサイズの高分子ゲルは医療、バイオテクノロジーなど色々な分野から注目されている（特許文献１）。
また、デンプンから酵素反応によって合成される環状の分岐状グルカン（ＧＤ）に対して、複数の非還元末端にグルコサミンを導入したアミノ糖含有グルカンが合成され、核酸との複合体形成が開示されている（特許文献２）。
本発明は、効率的に核酸を細胞内に導入する技術を提供することを目的とする。
本発明は、以下のカチオン性グルカンナノスフェア、複合体、核酸導入剤及びがん治療剤を提供するものである。
項１． 多価塩基性化合物で球状構造を有するグルカンデンドリマー（ＧＤ）を修飾してなり、前記多価塩基性化合物がスペルミジン、スペルミン、ジエチルアミノエチルアミン（ＤＥＡＥ）、ポリ塩基性アミノ酸及びポリエチレンイミンからなる群から選ばれる少なくとも１種である、カチオン性グルカンナノスフェア。
項２． 多価塩基性化合物がスペルミン又はスペルミジンである、項１に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
項３． 疎水性基でさらに修飾された、項１又は２に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
項４． 疎水性基がコレステリル基または炭素数６〜１８のアルキルカルボニル基である、項１〜３のいずれか１項に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
項５． 項１〜４のいずれかに記載のカチオン性グルカンナノスフェアと核酸との複合体。
項６． 核酸がＤＮＡ，ＲＮＡ，プラスミド、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ又はアンチセンス核酸である、項５に記載の複合体。
項７． 項１〜４のいずれかに記載のカチオン性グルカンナノスフェアからなる核酸導入剤。
項８． 項５又は６に記載の複合体を有効成分とするがん治療剤。
項１． 多価塩基性化合物で球状構造を有するグルカンデンドリマー（ＧＤ）を修飾してなり、前記多価塩基性化合物がスペルミジン、スペルミン、ジエチルアミノエチルアミン（ＤＥＡＥ）、ポリ塩基性アミノ酸及びポリエチレンイミンからなる群から選ばれる少なくとも１種である、カチオン性グルカンナノスフェア。
項２． 多価塩基性化合物がスペルミン又はスペルミジンである、項１に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
項３． 疎水性基でさらに修飾された、項１又は２に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
項４． 疎水性基がコレステリル基または炭素数６〜１８のアルキルカルボニル基である、項１〜３のいずれか１項に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
項５． 項１〜４のいずれかに記載のカチオン性グルカンナノスフェアと核酸との複合体。
項６． 核酸がＤＮＡ，ＲＮＡ，プラスミド、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ又はアンチセンス核酸である、項５に記載の複合体。
項７． 項１〜４のいずれかに記載のカチオン性グルカンナノスフェアからなる核酸導入剤。
項８． 項５又は６に記載の複合体を有効成分とするがん治療剤。
グルカンデンドリマー（ＧＤ）にカチオン性基（多価塩基性化合物で修飾することによりＧＤに導入された多価塩基性基）と必要に応じてさらに疎水性基を導入した本発明のカチオン性グルカンナノスフェアは、核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ）と複合体を形成することができ、細胞への核酸の導入剤として優れている。
本発明で使用する球状構造を有するグルカンデンドリマー(ＧＤ)は、デンプンの部分分解物から３種類の酵素(branching enzyme, sucrose phosphorylase, α-glucan phosphorylase) により合成することができる。得られたＧＤは、α-1,4:α-1,6-グルカン である。ＧＤは極めて分岐性が高く、糖鎖密度の高い球状構造の単分散なナノ粒子を形成し、水への溶解性が高い。ＧＤは、酵素反応の条件を制御することにより分子量、サイズの異なる粒子の形成が可能である。
本発明のカチオン性グルカンナノスフェアの直径は、好ましくは１〜２００ｎｍ程度、より好ましくは２〜１００ｎｍ程度、さらに好ましくは３〜８０ｎｍ程度、特に好ましくは５〜６０ｎｍ程度である。
本発明のカチオン性グルカンナノスフェアは、疎水性有機基で修飾されていてもよい。疎水性有機基としては、Ｒ、ＣＯＲ又はＣＯＮＨＲで表される基（Ｒは炭素数８〜２０の直鎖又は分枝を有するアルキル基、炭素数８〜２０の直鎖又は分枝を有するアルケニル基又はコレステリル基である）が挙げられる。疎水性有機基（Ｒ、ＣＯＲ又はＣＯＮＨＲ）による修飾は、ＧＤを構成するグルコース残基のＯＨ基と疎水性有機基がエーテル結合（ＯＲ）、エステル結合（ＯＣＯＲ）、ウレタン結合（ＯＣＯＮＨＲ）を形成することで行われる。
炭素数８〜２０の直鎖又は分枝を有するアルキル基としては、オクチル、２−エチルヘキシル、ノニル、デシル、ウンデシル、ドデシル、トリデシル、テトラデシル、ヘキサデシル、オクタデシル、アイコシル、イソステアリルなどが挙げられる。
炭素数８〜２０の直鎖又は分枝を有するアルケニル基としては、オクテニル、デセニル、ウンデセニル、ドデセニル、テトラデセニル、パルミトオレイル、オレイルなどが挙げられる。
疎水性有機基により修飾されたＧＤは、ＧＤとハロゲン化合物（Ｒ−Ｃｌ、Ｒ−Ｂｒ、Ｒ−Ｉなど）、酸ハロゲン化物（Ｃｌ−ＣＯＲ、Ｂｒ−ＣＯＲなど）、イソシアネート化合物（Ｒ−ＮＣＯ、或いはジイソシアネート化合物とＲＯＨの反応生成物）を適当な非プロトン性溶媒中で必要に応じて塩基の存在下に０℃から溶媒の沸点程度の温度で１〜２４時間程度反応させることにより得ることができる。非プロトン性溶媒としては、テトラヒドロフラン、ピリジン、アセトニトリル、アセトン、ジエチルエーテル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、クロロホルム、塩化メチレン、ジオキサン、Ｎ−メチルピロリドンなどが挙げられ、これらを単独或いは２種以上を組み合わせて使用することができる。塩基としては、炭酸ナトリウム、炭酸カリウムなどのアルカリ金属炭酸塩、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウムなどのアルカリ金属水素炭酸塩、トリエチルアミン、ジイソプロピルエチルアミンなどが挙げられる。ジイソシアネート化合物としては、ヘキサメチレンジイソシアネートなどの脂肪族ジイソシアネート、イソホロンジイソシアネートなどの脂環族ジイソシアネート、キシリレンジイソシアネートなどの芳香族ジイソシアネートが挙げられる。
ＧＤは、グルコースから構成されている。疎水性有機基は、好ましくはグルコース１００ユニットあたり０．０１〜５０個、より好ましくは０．１〜１０個、さらに好ましくは０．２〜５個、特に０．３〜３個含む。疎水性基を有するＧＤは、細胞内への核酸の導入効率が高くなるために好ましい。
更に、ＧＤおよび疎水性基によって修飾されたＧＤは多価塩基性基によって修飾されて、本発明のカチオン性グルカンナノスフェアになる。
多価塩基性化合物は、酸性条件下で３価以上のカチオン性基を形成できればよく、例えばスペルミジン、スペルミン、ジエチルアミノエチルアミン（ＤＥＡＥ）、ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）、ポリリジン、ポリアルギニンなどのポリ塩基性アミノ酸（塩基性アミノ酸はリジン又はアルギニンであり、塩基性アミノ酸の数は３個以上、例えば３〜２０個、好ましくは３〜１５個、より好ましくは４〜１０個である。）などが挙げられ、スペルミジン、スペルミン、ポリリジン、ポリアルギニンが好ましく、スペルミジン、スペルミンがより好ましく、スペルミンが最も好ましい。多価塩基性基は、好ましくはグルコース１００ユニットあたり１〜１００個、より好ましくは３〜８０個、さらに好ましくは５〜６０個、特に６〜４０個含む。多価塩基性基が多いと多数の核酸（例えばｓｉＲＮＡ）或いは分子量の大きな核酸（例えばプラスミド）と複合体を形成することができ、核酸の導入効率が向上するが、グルコース１００ユニットあたりの多価塩基性基の数が多すぎると細胞毒性が高くなる傾向にある。
本発明のカチオン性グルカンナノスフェアと核酸の相互作用を模式的に図１に示す。
本発明の複合体は、カチオン性グルカンナノスフェアと核酸との複合体である。核酸としては、ＤＮＡ，ＲＮＡが挙げられる。核酸としては、具体的には、アンチセンス核酸、プラスミド、遺伝子構築物、ｓｉＲＮＡ、ｍiＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｄｓＲＮＡなどが挙げられる。好ましい核酸はプラスミド、ｓｉＲＮＡであり、ｓｉＲＮＡがより好ましい。核酸のリン酸残基数（Ｐ）と多価塩基性基の数（Ｃ）の比は、Ｐ／Ｃ＝０．５〜５程度、好ましくは０．６〜３程度、より好ましくは０．７〜２程度、さらに好ましくは０．８〜１．５程度である。Ｐ／Ｃは１前後であるのが最も好ましい。複合体におけるカチオン性グルカンナノスフェア数と核酸数の比は、１：１０〜１０：１程度、好ましくは１：５〜５：１程度である。複合体におけるトータルの陽電荷の総数（＋）と陰電荷の総数（−）の比（＋／−）は、＋／−＝０．５〜３０程度、好ましくは０．８〜２０程度、より好ましくは１〜１５程度、より好ましくは１．２〜１０程度、さらに好ましくは１．５〜８程度である。
以下、本発明を実施例を用いてより詳細に説明するが、本発明が実施例に限定されないことはいうまでもない。
なお、実施例では以下の試薬及び略号を用いた。
・Spe：スペルミン
・CH：コレステリル基又はコレステロール
・CHGD(コレステリル基で修飾されたＧＤ：コレステリル基は、ヘキサンジイソシアネートを用いてＧＤのＯＨ基とコレステロールのＯＨ基が２つのウレタン結合（−ＯＣＯＮＨ（ＣＨ２）６ＮＨＣＯＯ−）で結合したもの。)
・CHP(コレステリル基で修飾されたプルラン：コレステリル基は、ヘキサンジイソシアネートを用いてプルランのＯＨ基とコレステロールのＯＨ基が２つのウレタン結合（−ＯＣＯＮＨ（ＣＨ２）６ＮＨＣＯＯ−）で結合したものである。）
・C12GD（ドデシル基で修飾されたＧＤ；ドデシル基は、ドデシルイソシアネートを用いてウレタン結合でＧＤのＯＨ基と結合したものである。）
・Spe：スペルミン
・CH：コレステリル基又はコレステロール
・CHGD(コレステリル基で修飾されたＧＤ：コレステリル基は、ヘキサンジイソシアネートを用いてＧＤのＯＨ基とコレステロールのＯＨ基が２つのウレタン結合（−ＯＣＯＮＨ（ＣＨ２）６ＮＨＣＯＯ−）で結合したもの。)
・CHP(コレステリル基で修飾されたプルラン：コレステリル基は、ヘキサンジイソシアネートを用いてプルランのＯＨ基とコレステロールのＯＨ基が２つのウレタン結合（−ＯＣＯＮＨ（ＣＨ２）６ＮＨＣＯＯ−）で結合したものである。）
・C12GD（ドデシル基で修飾されたＧＤ；ドデシル基は、ドデシルイソシアネートを用いてウレタン結合でＧＤのＯＨ基と結合したものである。）
製造例1
1. DEAE 置換GD の合成
1-1. 試薬
・GD15 （分子量Mw２２万 サイズ１５nm ）
・CHP1.2 (コレステリル基 : 1.2 個/100 単糖)
・CHGD15 (コレステリル基: 1.9 個/100 単糖)
・C12GD15 (ドデシル基 : 3.2 個/100 単糖)
・1,1’-carbonyl diimidazole (CDI) (SIGMA)
・N,N-diethylethylenediamine (DEAE) (Aldrich)
・DMSO (超脱水) (WAKO)
以下において、CHGD15を「CHGD」と略すことがあり、C12GD15を「C12GD」と略すことがあり、CHGD15-DEAEを「CHGD-DEAE」と略すことがあり、C12GD15-DEAEを「C12GD-DEAE」と略すことがあり、CHGD15-speを「CHGD-spe」と略すことがあり、C12GD15-speを「C12GD-spe」と略すことがある。
1. DEAE 置換GD の合成
1-1. 試薬
・GD15 （分子量Mw２２万 サイズ１５nm ）
・CHP1.2 (コレステリル基 : 1.2 個/100 単糖)
・CHGD15 (コレステリル基: 1.9 個/100 単糖)
・C12GD15 (ドデシル基 : 3.2 個/100 単糖)
・1,1’-carbonyl diimidazole (CDI) (SIGMA)
・N,N-diethylethylenediamine (DEAE) (Aldrich)
・DMSO (超脱水) (WAKO)
以下において、CHGD15を「CHGD」と略すことがあり、C12GD15を「C12GD」と略すことがあり、CHGD15-DEAEを「CHGD-DEAE」と略すことがあり、C12GD15-DEAEを「C12GD-DEAE」と略すことがあり、CHGD15-speを「CHGD-spe」と略すことがあり、C12GD15-speを「C12GD-spe」と略すことがある。
1-2. 方法
GD15、CHP、CHGD15、C12GD15 を表 1 の重量比で脱水DMSO にN2 下で溶解し、CDI を32/100単糖の割合で添加した。室温で3 時間反応後、DEAEをCDI の10 倍量添加しさらに24 時間反応した。反応後純水で透析（MWCO : 3,500）、精製し、凍結乾燥により合成物を得た。合成物は1H NMR でDEAE の置換率を算出した（10 mg/mL in D2O）。
GD15、CHP、CHGD15、C12GD15 を表 1 の重量比で脱水DMSO にN2 下で溶解し、CDI を32/100単糖の割合で添加した。室温で3 時間反応後、DEAEをCDI の10 倍量添加しさらに24 時間反応した。反応後純水で透析（MWCO : 3,500）、精製し、凍結乾燥により合成物を得た。合成物は1H NMR でDEAE の置換率を算出した（10 mg/mL in D2O）。
1-3. 結果および考察
上記方法によって、GD15-DEAE は1043 mg、CHP-DEAE は1203 mg、CHGD-DEAE は183 mg、C12GD-DEAE は217 mg回収できた。各誘導体のDEAE置換率を表2 に示し、DEAE置換GDの構造式を図３に示した。
上記方法によって、GD15-DEAE は1043 mg、CHP-DEAE は1203 mg、CHGD-DEAE は183 mg、C12GD-DEAE は217 mg回収できた。各誘導体のDEAE置換率を表2 に示し、DEAE置換GDの構造式を図３に示した。
2. スペルミン置換GD の合成
2-1. 試薬
・GD15 （分子量Mw２２万 サイズ１５nm）
・CHP1.2 (コレステリル基 : 1.2 個/100 単糖)
・CHGD15 (コレステリル基: 1.9 個/100 単糖)
・C12GD15 (ドデシル基 : 3.2 個/100 単糖)
・1,1’-carbonyl diimidazole (CDI) (SIGMA)
・spermine (Aldrich)
・DMSO (超脱水) (WAKO)
2-1. 試薬
・GD15 （分子量Mw２２万 サイズ１５nm）
・CHP1.2 (コレステリル基 : 1.2 個/100 単糖)
・CHGD15 (コレステリル基: 1.9 個/100 単糖)
・C12GD15 (ドデシル基 : 3.2 個/100 単糖)
・1,1’-carbonyl diimidazole (CDI) (SIGMA)
・spermine (Aldrich)
・DMSO (超脱水) (WAKO)
2-2. 方法
GD15、CHP、CHGD15、C12GD15 を表3 の重量比で脱水DMSO にN2 下で溶解し、CDI を32/100単糖で添加した。室温でCHP は3 時間、GD は5 時間反応後、スペルミンをCDI の10 倍量添加しさらに24 時間反応した 。反応後純水で透析（MWCO : 3,500）、精製し、凍結乾燥により合成物を得た。合成物は1H NMR でスペルミンの置換率を算出した（10 mg/mL in D2O）。
GD15、CHP、CHGD15、C12GD15 を表3 の重量比で脱水DMSO にN2 下で溶解し、CDI を32/100単糖で添加した。室温でCHP は3 時間、GD は5 時間反応後、スペルミンをCDI の10 倍量添加しさらに24 時間反応した 。反応後純水で透析（MWCO : 3,500）、精製し、凍結乾燥により合成物を得た。合成物は1H NMR でスペルミンの置換率を算出した（10 mg/mL in D2O）。
2-3. 結果および考察
上記方法によって、GD15-spe は1043 mg、CHP-spe は1203 mg、CHGD-spe は183 mg、C12GD-spe は217 mgを得た。各誘導体のスペルミン置換率を表４に示し、スペルミン置換GDの構造式を図３に示す。
上記方法によって、GD15-spe は1043 mg、CHP-spe は1203 mg、CHGD-spe は183 mg、C12GD-spe は217 mgを得た。各誘導体のスペルミン置換率を表４に示し、スペルミン置換GDの構造式を図３に示す。
試験例１
1. 合成物の物性評価
合成したDEAE 置換GD とスペルミン置換GD の粒径（動的光散乱法DLS）とζ ポテンシャルを測定した。
1-1. 測定サンプルと試薬
・GD15-DEAE
・CHP-DEAE
・CHGD-DEAE
・C12GD-DEAE
・GD15-spe
・CHP-spe
・CHGD-spe
・C12GD-spe
・PBS (gibco)
1. 合成物の物性評価
合成したDEAE 置換GD とスペルミン置換GD の粒径（動的光散乱法DLS）とζ ポテンシャルを測定した。
1-1. 測定サンプルと試薬
・GD15-DEAE
・CHP-DEAE
・CHGD-DEAE
・C12GD-DEAE
・GD15-spe
・CHP-spe
・CHGD-spe
・C12GD-spe
・PBS (gibco)
1-2. 測定方法
DEAE 誘導体およびスペルミン誘導体をそれぞれ2 mg/mL でPBS に溶解し、超音波、遠心（20,000G）、フィルター（0.22 μm, PVDF）処理を行い、粒径とζ ポテンシャルを測定した。
DEAE 誘導体およびスペルミン誘導体をそれぞれ2 mg/mL でPBS に溶解し、超音波、遠心（20,000G）、フィルター（0.22 μm, PVDF）処理を行い、粒径とζ ポテンシャルを測定した。
1-3. 結果および考察
DEAE置換GDおよびスペルミン置換GDのサイズおよびζ ポテンシャルを表5、 表6 に示す。アミノ基を3 つ持つスペルミン置換GDのほうが正電荷が強く、いずれも比較的単分散な粒子であることがわかった。
DEAE置換GDおよびスペルミン置換GDのサイズおよびζ ポテンシャルを表5、 表6 に示す。アミノ基を3 つ持つスペルミン置換GDのほうが正電荷が強く、いずれも比較的単分散な粒子であることがわかった。
試験例２
・カチオン性GDによるsiRNA複合化
DEAE置換GDおよびスペルミン置換GDを用いてsiRNAとの複合化を行い、電気泳動による複合化の確認を行った。
・カチオン性GDによるsiRNA複合化
DEAE置換GDおよびスペルミン置換GDを用いてsiRNAとの複合化を行い、電気泳動による複合化の確認を行った。
1-1. 試薬
・GD15-DEAE
・CHP-DEAE
・CHGD-DEAE
・C12GD-DEAE
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・siRNA
・PBS（gibco）
・SYBR Green Ｉ Nucleic Acid Gel Stain (TAKARA)
・GD15-DEAE
・CHP-DEAE
・CHGD-DEAE
・C12GD-DEAE
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・siRNA
・PBS（gibco）
・SYBR Green Ｉ Nucleic Acid Gel Stain (TAKARA)
1-2. 方法
GD15-DEAE、CHP-DEAE、CHGD-DEAE、C12GD-DEAEを20 mg/mLでPBSに溶解し、超音波、遠心（20,000G）、フィルター（0.22 μm, PVDF）処理を行った。DEAE1分子をC、siRNAの1塩基をPとしてC/P比を0.5から32になるように室温で30 min混合した (siRNA = 0.3 μg)。複合体にloading bufferを添加して2% アガロースゲルにアプライし、100Vで15 min電気泳動した。ゲルをSYBR Greenで10 min染色しLASで測定した。
GD15-DEAE、CHP-DEAE、CHGD-DEAE、C12GD-DEAEを20 mg/mLでPBSに溶解し、超音波、遠心（20,000G）、フィルター（0.22 μm, PVDF）処理を行った。DEAE1分子をC、siRNAの1塩基をPとしてC/P比を0.5から32になるように室温で30 min混合した (siRNA = 0.3 μg)。複合体にloading bufferを添加して2% アガロースゲルにアプライし、100Vで15 min電気泳動した。ゲルをSYBR Greenで10 min染色しLASで測定した。
1-3. 結果および考察
ゲル電気泳動の結果を図４、図５に示す。いずれもC/P比が1以下ではフリーのsiRNAがみられたが、C/P比が高くなるとDEAE置換GDおよびスペルミン置換GDとsiRNAとの複合化が観察された。
ゲル電気泳動の結果を図４、図５に示す。いずれもC/P比が1以下ではフリーのsiRNAがみられたが、C/P比が高くなるとDEAE置換GDおよびスペルミン置換GDとsiRNAとの複合化が観察された。
2. 核酸複合体のサイズ測定
2-1. 測定方法
DEAE置換GDとスペルミン置換GDそれぞれ4 種類を20 mg/mL 溶液として用いた。陰性対照としてsiRNA とナノゲル（CHP-DEAE、CHP-spe）を混合し、DLS測定を行った（ナノゲル終濃度 = 1 mg/mL）。
2-1. 測定方法
DEAE置換GDとスペルミン置換GDそれぞれ4 種類を20 mg/mL 溶液として用いた。陰性対照としてsiRNA とナノゲル（CHP-DEAE、CHP-spe）を混合し、DLS測定を行った（ナノゲル終濃度 = 1 mg/mL）。
2-2. 結果および考察
C/P 比を変化させたときの複合体サイズを図６，図７に示す。カチオン性ナノゲル（CHP-DEAE）とアニオン性のsiRNA を混合すると中性付近で凝集体を形成し、CHP-DEAEの複合体 サイズが大きくなった。一方、DEAE置換GDおよびスペルミン置換GD ではほとんど複合体サイズの変化が見られなかったことから、siRNAとの複合体はいずれも安定な微粒子を形成していると考えられる。
C/P 比を変化させたときの複合体サイズを図６，図７に示す。カチオン性ナノゲル（CHP-DEAE）とアニオン性のsiRNA を混合すると中性付近で凝集体を形成し、CHP-DEAEの複合体 サイズが大きくなった。一方、DEAE置換GDおよびスペルミン置換GD ではほとんど複合体サイズの変化が見られなかったことから、siRNAとの複合体はいずれも安定な微粒子を形成していると考えられる。
3. カチオン性GDによるsiRNAデリバリー
3-1. siRNAデリバリーによるRNA干渉評価
カチオン性GDを用いた、細胞内へのsiRNAデリバリー実験において、siRNAの標的となるmRNAのノックダウン効率を評価した。
3-1. siRNAデリバリーによるRNA干渉評価
カチオン性GDを用いた、細胞内へのsiRNAデリバリー実験において、siRNAの標的となるmRNAのノックダウン効率を評価した。
3-1-1. 試薬
・GD15-DEAE (DEAE : 13個/100単糖)
・CHP-DEAE (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, DEAE : 29個/100単糖)
・CHGD-DEAE (コレステリル基: 1.9個/100単糖, DEAE : 8個/100単糖)
・C12GD-DEAE (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, DEAE : 11個/100単糖)
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・ReverTraAce (東洋紡)
・VEGF siRNA（VEGFをコードするmRNAを標的とする siRNA (Invitrogen)）
・Alexa488-siRNA（蛍光標識したsiRNA）
・Universal Probe Library #12 (Roche)
・18S rRNA Probe (FAM-atccattggagggcaagtctggtgc-BHQ)
・VEGFA Fw (gcagcttgagttaaacgaacg)
・VEGFA Rv (ggttcccgaaaccctgag)
・18S rRNA Fw (atgagtccactttaaatcctttaacga)
・18S rRNA Rv (ctttaatatacgctattggagctggaa)
・Light Cycler 480 Probes Master (Roche)
・AllStars Neg. siRNA AF488 (QIAGEN)
・Maxwell RSC simply RNA Cells
・GD15-DEAE (DEAE : 13個/100単糖)
・CHP-DEAE (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, DEAE : 29個/100単糖)
・CHGD-DEAE (コレステリル基: 1.9個/100単糖, DEAE : 8個/100単糖)
・C12GD-DEAE (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, DEAE : 11個/100単糖)
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・ReverTraAce (東洋紡)
・VEGF siRNA（VEGFをコードするmRNAを標的とする siRNA (Invitrogen)）
・Alexa488-siRNA（蛍光標識したsiRNA）
・Universal Probe Library #12 (Roche)
・18S rRNA Probe (FAM-atccattggagggcaagtctggtgc-BHQ)
・VEGFA Fw (gcagcttgagttaaacgaacg)
・VEGFA Rv (ggttcccgaaaccctgag)
・18S rRNA Fw (atgagtccactttaaatcctttaacga)
・18S rRNA Rv (ctttaatatacgctattggagctggaa)
・Light Cycler 480 Probes Master (Roche)
・AllStars Neg. siRNA AF488 (QIAGEN)
・Maxwell RSC simply RNA Cells
3-1-2. 方法
DEAE誘導体4種類およびスペルミン誘導体4種類の20 mg/mL溶液を用いた。マウスVEGF siRNAをRNase freeの水に溶解し、DEAE誘導体ではC/P = 4, 8, 16、スペルミン誘導体ではC/P = 2, 4, 8で複合化を行った（siRNA = 50 pmol）。室温で30分間複合化を行い、RPMI培地990 μLと混合し培地を交換した。37℃で24時間トランスフェクションした。
DEAE誘導体4種類およびスペルミン誘導体4種類の20 mg/mL溶液を用いた。マウスVEGF siRNAをRNase freeの水に溶解し、DEAE誘導体ではC/P = 4, 8, 16、スペルミン誘導体ではC/P = 2, 4, 8で複合化を行った（siRNA = 50 pmol）。室温で30分間複合化を行い、RPMI培地990 μLと混合し培地を交換した。37℃で24時間トランスフェクションした。
トランスフェクション後に培地を除き、Maxwell RSC simply RNA Cellsキットを用いて全RNAを抽出した。NanoDropでRNAの濃度を測定し、水で100 ng/μLに希釈した。このRNA水溶液と逆転写試薬キットReverTraAceとを混合し、37℃15min、95℃1min、4℃でPCRを行いcDNAを合成した。マウスRNAのうちノックダウンを行うVEGF mRNAとハウスキーピング遺伝子である18S rRNAの配列を用い、これを96wellプレートに添加しTaqManプローブ法でRealTime-PCRを行った。ノックダウンの効率は18S rRNAの量に対するVEGF RNAの産生量を相対的に評価した。
3-1-3. 結果および考察
DEAE誘導体におけるノックダウン効率を図８に、スペルミン誘導体におけるノックダウン効率を図９に示す。DEAE誘導体では細胞内への送達効率が低いためノックダウンはほとんど見られなかった。一方、スペルミン誘導体はいずれも顕著なノックダウンが見られ、特に疎水性基を導入したスペルミン誘導体（CHGD-spe、C12GD-spe）は効率よくRNA干渉を示し、VEGF mRNAに対する高いノックダウン効率が見られた。
DEAE誘導体におけるノックダウン効率を図８に、スペルミン誘導体におけるノックダウン効率を図９に示す。DEAE誘導体では細胞内への送達効率が低いためノックダウンはほとんど見られなかった。一方、スペルミン誘導体はいずれも顕著なノックダウンが見られ、特に疎水性基を導入したスペルミン誘導体（CHGD-spe、C12GD-spe）は効率よくRNA干渉を示し、VEGF mRNAに対する高いノックダウン効率が見られた。
3.2. siRNA複合体の細胞取り込み挙動（フローサイトメトリー）
蛍光標識したsiRNA（Alexa488-siRNA）を用いて、DEAE誘導体とスペルミン誘導体による細胞内への取り込み量をフローサイトメーターにより評価した。
蛍光標識したsiRNA（Alexa488-siRNA）を用いて、DEAE誘導体とスペルミン誘導体による細胞内への取り込み量をフローサイトメーターにより評価した。
3-2-1. 方法
DEAE誘導体4種類とスペルミン誘導体4種類のそれぞれ20 mg/mL溶液を用いた。Alexa488-siRNAをRNase freeの水に溶解し、ナノゲルとC/P = 4で複合化を行った（siRNA = 50 pmol）。複合体を上と同じ条件で細胞に添加し、t=24 hにおいてフローサイトメトリーで測定した。
DEAE誘導体4種類とスペルミン誘導体4種類のそれぞれ20 mg/mL溶液を用いた。Alexa488-siRNAをRNase freeの水に溶解し、ナノゲルとC/P = 4で複合化を行った（siRNA = 50 pmol）。複合体を上と同じ条件で細胞に添加し、t=24 hにおいてフローサイトメトリーで測定した。
3-2-2. 結果および考察
スペルミン誘導体およびDEAE誘導体により細胞内に取り込まれた蛍光標識したsiRNAの平均蛍光強度を図１０に示す。スペルミン誘導体（GD-spe、CHGD-spe、C12GD-spe）はいずれも効率よくsiRNAを細胞に導入した。DEAE誘導体では取り込み効率が低いことがわかった。
スペルミン誘導体およびDEAE誘導体により細胞内に取り込まれた蛍光標識したsiRNAの平均蛍光強度を図１０に示す。スペルミン誘導体（GD-spe、CHGD-spe、C12GD-spe）はいずれも効率よくsiRNAを細胞に導入した。DEAE誘導体では取り込み効率が低いことがわかった。
スペルミン誘導体およびDEAE誘導体のノックダウン効率の結果（図９）および取込み効率の結果（図１０）より、siRNAの細胞内導入量とノックダウン効率とは良い相関があることがわかった。
3.3. siRNA/GD複合体のエンドサイトーシス経路の特定
細胞導入におけるエンドサイトーシス経路を調べるために阻害実験を行った。
細胞導入におけるエンドサイトーシス経路を調べるために阻害実験を行った。
3-3-1. 試薬
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・AllStars Neg. siRNA AF488 (QIAGEN)
・Renca cell
・RPMI1640 (Gibco)
・Chlorquine (WAKO)
・Methyl-β-cyclodextrin (WAKO)
・Cytochalasin D (WAKO)
・Chlorpromazine (WAKO)
・EIPA (sigma)
・PBS (Gibco)
・Stain buffer
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・AllStars Neg. siRNA AF488 (QIAGEN)
・Renca cell
・RPMI1640 (Gibco)
・Chlorquine (WAKO)
・Methyl-β-cyclodextrin (WAKO)
・Cytochalasin D (WAKO)
・Chlorpromazine (WAKO)
・EIPA (sigma)
・PBS (Gibco)
・Stain buffer
3-3-2. 実験
C12GD-speをPBSに溶解し、蛍光標識siRNA（Alexa488-siRNA）とC/P=4で複合化した (siRNA = 25 pmol, total 50 μL)。Renca細胞を4×104 cells/wellになるようにガラスベースディッシュに播種し、37°C, 5% CO2下で約20 h前培養を行った。エンドサイトーシス阻害剤として、chlorquine、methyl-β-cyclodextrin、cytochalasin D、chlorpromazine、EIPAをPBSに溶解した。前培養した細胞に、[chlorquine] = 50 μM、[methyl-β-cyclodextrin] = 5 mM、[cytochalasin D] = 5 μM、[chlorpromazine] = 50 μM、[EIPA] = 50 μMとなるように添加し、30分間インキュベートした。RPMI 1 mLで2回洗浄後、RPMI 950 μLとsiRNA複合体50 μLを混合し細胞に加え4時間複合化し、フローサイトメトリーで測定した。
C12GD-speをPBSに溶解し、蛍光標識siRNA（Alexa488-siRNA）とC/P=4で複合化した (siRNA = 25 pmol, total 50 μL)。Renca細胞を4×104 cells/wellになるようにガラスベースディッシュに播種し、37°C, 5% CO2下で約20 h前培養を行った。エンドサイトーシス阻害剤として、chlorquine、methyl-β-cyclodextrin、cytochalasin D、chlorpromazine、EIPAをPBSに溶解した。前培養した細胞に、[chlorquine] = 50 μM、[methyl-β-cyclodextrin] = 5 mM、[cytochalasin D] = 5 μM、[chlorpromazine] = 50 μM、[EIPA] = 50 μMとなるように添加し、30分間インキュベートした。RPMI 1 mLで2回洗浄後、RPMI 950 μLとsiRNA複合体50 μLを混合し細胞に加え4時間複合化し、フローサイトメトリーで測定した。
3-3-3. 結果と考察
阻害剤を加えた細胞のポジティブコントロールに対する蛍光強度の低下を図１１に示す。GDの原料と同じくsiRNA複合体でもmethyl-β-CDで取り込み阻害が起こったことから、細胞内取り込みのエンドサイトーシス経路はカベオラエンドサイトーシスであることが示唆された。これはsiRNAとの複合化でも粒径が小さいことに起因すると考えられる。
阻害剤を加えた細胞のポジティブコントロールに対する蛍光強度の低下を図１１に示す。GDの原料と同じくsiRNA複合体でもmethyl-β-CDで取り込み阻害が起こったことから、細胞内取り込みのエンドサイトーシス経路はカベオラエンドサイトーシスであることが示唆された。これはsiRNAとの複合化でも粒径が小さいことに起因すると考えられる。
試験例3
1. カチオン性GDによるプラスミドDNA複合化
スペルミン置換GDを用いてプラスミドDNA(pGL3)の複合化実験を行った。
1. カチオン性GDによるプラスミドDNA複合化
スペルミン置換GDを用いてプラスミドDNA(pGL3)の複合化実験を行った。
1-1. 電気泳動による複合化確認
1-1-1. スペルミン置換GDと試薬
・GD15分子量Mw２２万 サイズ１５nm
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・PBS（gibco）
・pGL3-Control Vector (Promega)
1-1-1. スペルミン置換GDと試薬
・GD15分子量Mw２２万 サイズ１５nm
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・PBS（gibco）
・pGL3-Control Vector (Promega)
1-2. 複合体検出方法
GD15-spe、CHP-spe、CHGD-spe、C12GD-speをPBSに溶解し、超音波、遠心（20,000G）、フィルター（0.22μm, PVDF）処理を行った。スペルミン1分子をC、プラスミド（pGL3）の1塩基をPとして、混合比（C/P比）が0.125から8になるようにプラスミド(pGL3 = 0.2 μg)とスペルミン置換GDを室温で30 min混合した。複合体にloading bufferを添加して2% アガロースゲルにアプライし、100Vで30 min電気泳動した。ゲルをSYBR Goldで40 min染色しLASで測定した。
GD15-spe、CHP-spe、CHGD-spe、C12GD-speをPBSに溶解し、超音波、遠心（20,000G）、フィルター（0.22μm, PVDF）処理を行った。スペルミン1分子をC、プラスミド（pGL3）の1塩基をPとして、混合比（C/P比）が0.125から8になるようにプラスミド(pGL3 = 0.2 μg)とスペルミン置換GDを室温で30 min混合した。複合体にloading bufferを添加して2% アガロースゲルにアプライし、100Vで30 min電気泳動した。ゲルをSYBR Goldで40 min染色しLASで測定した。
1-3. 結果および考察
電気泳動の画像を図１２、図１３に示す。スペルミン置換GDはいずれもC/P=1以上で複合体を形成していることが分かった。
電気泳動の画像を図１２、図１３に示す。スペルミン置換GDはいずれもC/P=1以上で複合体を形成していることが分かった。
2. カチオン性GDとプラスミドDNA複合体のサイズ
2-1. 測定方法
GD15-speを水に溶解し、プラスミド（pGL3）とC/P=0.5〜32で複合化した(GD-spe = 1 mg/ mL)。室温30分間静置後動的光散乱法DLSで粒径を測定した。
2-1. 測定方法
GD15-speを水に溶解し、プラスミド（pGL3）とC/P=0.5〜32で複合化した(GD-spe = 1 mg/ mL)。室温30分間静置後動的光散乱法DLSで粒径を測定した。
2-2. 結果および考察
pGL3とGD15-speの複合体のDLS結果を図１４に示す。従来のカチオン性CHPと同様にC/P=1付近の複合体で凝集体を形成することが分かった。これはプラスミドDNAがsiRNAに比べて大きいため、GD-speの粒子を介して凝集してしまっていると考えられる。C/P=４以上では比較的サイズの小さい安定な複合体が形成された。
pGL3とGD15-speの複合体のDLS結果を図１４に示す。従来のカチオン性CHPと同様にC/P=1付近の複合体で凝集体を形成することが分かった。これはプラスミドDNAがsiRNAに比べて大きいため、GD-speの粒子を介して凝集してしまっていると考えられる。C/P=４以上では比較的サイズの小さい安定な複合体が形成された。
3. カチオン性GDによるプラスミドDNAデリバリー
スペルミン置換GDを用いて遺伝子のトランスフェクション実験を行った。ルシフェラーゼの遺伝子を含むプラスミドを用い、ルシフェラーゼタンパク質の発現をその酵素活性としてルシフェラーゼ発光量を測定して評価した。
スペルミン置換GDを用いて遺伝子のトランスフェクション実験を行った。ルシフェラーゼの遺伝子を含むプラスミドを用い、ルシフェラーゼタンパク質の発現をその酵素活性としてルシフェラーゼ発光量を測定して評価した。
3-1. スペルミン置換GDと試薬
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・pGL3 (大腸菌合成)
・Lipofectamine 2000
・COS7 cell
・DMEM (10% FBS, Gibco)
・PBS (Gibco)
・Glo-lysis
・Bright-glo
・BCA Protein assay kit
・GD15-spe (spe : 25個/100単糖)
・CHP-spe (コレステリル基 : 1.2個/100単糖, spe : 23個/100単糖)
・CHGD-spe (コレステリル基: 1.9個/100単糖, spe : 33個/100単糖)
・C12GD-spe (ドデシル基 : 3.2個/100単糖, spe : 22個/100単糖)
・pGL3 (大腸菌合成)
・Lipofectamine 2000
・COS7 cell
・DMEM (10% FBS, Gibco)
・PBS (Gibco)
・Glo-lysis
・Bright-glo
・BCA Protein assay kit
3-2. 測定方法
COS7細胞を4×104 cells/wellになるように12wellプレートに播種し、37℃, 5% CO2下で約20 h前培養を行った。スペルミン誘導体をPBSに溶解し、pGL3とC/P=4, 8で複合化した (pGL3 = 1 μg, total 50 μL)。前培養した細胞の培地を除きOptiMEM 950 μLとプラスミド複合体50 μLを添加し、2時間インキュベートした。RPMIで2回洗浄後、RPMI 1 mLを細胞に加え22時間培養した。培地を取り除きGlo-lysis 200 μLで細胞を溶解し、BCAアッセイでタンパク質濃度を、Bright-Gloでルシフェラーゼ発現量を測定した。
COS7細胞を4×104 cells/wellになるように12wellプレートに播種し、37℃, 5% CO2下で約20 h前培養を行った。スペルミン誘導体をPBSに溶解し、pGL3とC/P=4, 8で複合化した (pGL3 = 1 μg, total 50 μL)。前培養した細胞の培地を除きOptiMEM 950 μLとプラスミド複合体50 μLを添加し、2時間インキュベートした。RPMIで2回洗浄後、RPMI 1 mLを細胞に加え22時間培養した。培地を取り除きGlo-lysis 200 μLで細胞を溶解し、BCAアッセイでタンパク質濃度を、Bright-Gloでルシフェラーゼ発現量を測定した。
3-3. 結果および考察
スペルミン置換GDによる、細胞へのプラスミド導入後のルシフェラーゼ発光量を図１５に示す。GD15-speとC12GD-speにおいて、PEI系よりも高いルシフェラーゼの発現がみられ、スペルミン置換GDとプラスミドとの複合体形成により、プラスミドが効率的に細胞に送達されたことが明らかになった。
スペルミン置換GDによる、細胞へのプラスミド導入後のルシフェラーゼ発光量を図１５に示す。GD15-speとC12GD-speにおいて、PEI系よりも高いルシフェラーゼの発現がみられ、スペルミン置換GDとプラスミドとの複合体形成により、プラスミドが効率的に細胞に送達されたことが明らかになった。
試験例４
1. カチオン性GD によるsiRNAデリバリーに基づく担癌マウスの治療実験
siRNAのデリバリーキャリアとしてカチオン性GDを用い、担癌マウスの治療実験を行った。カチオン性GDはドデシル基を有するスペルミン置換GDであるC12GD-speおよびドデシル基を有さないGD15-speを選択し、siRNAはVEGFをコードするmRNAを標的とするsiRNA（siVEGF）およびネガティブコントロールとしてのsiNegaを選択した。２種類のスペルミン置換GDと２種類のsiRNAの組合せからなる４種類のsiRNA/カチオン性GD複合体を担癌マウスに投与することにより、治療実験を行った。
1. カチオン性GD によるsiRNAデリバリーに基づく担癌マウスの治療実験
siRNAのデリバリーキャリアとしてカチオン性GDを用い、担癌マウスの治療実験を行った。カチオン性GDはドデシル基を有するスペルミン置換GDであるC12GD-speおよびドデシル基を有さないGD15-speを選択し、siRNAはVEGFをコードするmRNAを標的とするsiRNA（siVEGF）およびネガティブコントロールとしてのsiNegaを選択した。２種類のスペルミン置換GDと２種類のsiRNAの組合せからなる４種類のsiRNA/カチオン性GD複合体を担癌マウスに投与することにより、治療実験を行った。
1-1. 担癌マウスの作製
1-1-1. 試薬
・BALB/C ：19匹 (メス、7-9週齢)
・Renca細胞 (マウス腎ガン細胞)
・RPMI 1640 (10% FBS, 100 μg/mL streptomycin, 100 U/mL penicillin)
1-1-1. 試薬
・BALB/C ：19匹 (メス、7-9週齢)
・Renca細胞 (マウス腎ガン細胞)
・RPMI 1640 (10% FBS, 100 μg/mL streptomycin, 100 U/mL penicillin)
1-1-2. 担癌マウスの作製実験
BALB/Cマウス19匹の背部を剃毛し、Renca細胞1.0×106 cellsを皮下移植した。腫瘍形成を観察しながら、腫瘍が平均で50 mm3となるまで成長させた。腫瘍サイズの測定はノギスを用いて、長径をA (mm)、短径をB (mm)とし(A2×B)/2の計算式を用いて測定した。
BALB/Cマウス19匹の背部を剃毛し、Renca細胞1.0×106 cellsを皮下移植した。腫瘍形成を観察しながら、腫瘍が平均で50 mm3となるまで成長させた。腫瘍サイズの測定はノギスを用いて、長径をA (mm)、短径をB (mm)とし(A2×B)/2の計算式を用いて測定した。
1-2. カチオン性GDによるVEGF mRNA標的siRNA (siVEGF)の局所投与
1-2-1. 試薬
・担癌マウス : 19匹
・VEGF mRNA標的siRNA (siVEGF, macrogen)
・Negative control siRNA (siNega, invitrogen)
・C12GD-spe
・GD15-spe
1-2-1. 試薬
・担癌マウス : 19匹
・VEGF mRNA標的siRNA (siVEGF, macrogen)
・Negative control siRNA (siNega, invitrogen)
・C12GD-spe
・GD15-spe
1-2-2. siRNA投与実験
C12GD-speおよび GD15-speを水に溶解し、siVEGFおよびsiNegaとそれぞれC/P=8で混合し、それぞれsiRNA/カチオン性GD複合体（siVEGF/ C12GD-spe、siNega/ C12GD-spe、siVEGF/ GD15-spe、siNega/ GD15-spe、）とした。マウス一匹あたりsiRNA 20 μg(50 μL)を、t = 0, 4, 8, 12, 16dayで腫瘍に5回局所投与した。投与群（Ａ〜Ｆ）を表７に示す。体重および腫瘍サイズをt = 0, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20dayで測定した。20日後に安楽死させ、血液採取・腫瘍摘出・脾臓摘出を行った。摘出した腫瘍は重量を測定し凍結保存を行った。
C12GD-speおよび GD15-speを水に溶解し、siVEGFおよびsiNegaとそれぞれC/P=8で混合し、それぞれsiRNA/カチオン性GD複合体（siVEGF/ C12GD-spe、siNega/ C12GD-spe、siVEGF/ GD15-spe、siNega/ GD15-spe、）とした。マウス一匹あたりsiRNA 20 μg(50 μL)を、t = 0, 4, 8, 12, 16dayで腫瘍に5回局所投与した。投与群（Ａ〜Ｆ）を表７に示す。体重および腫瘍サイズをt = 0, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20dayで測定した。20日後に安楽死させ、血液採取・腫瘍摘出・脾臓摘出を行った。摘出した腫瘍は重量を測定し凍結保存を行った。
1-2-3. 結果と考察担癌マウスにsiRNA/カチオン性GD複合体を投与したときの体重変化を図１６に、腫瘍サイズの変化を図１７に、担癌マウスの写真を図１８に、投与20日後に摘出した腫瘍の重量を図１９に示した。
図１６から、siRNAとカチオン性GD複合体を投与しても体重は減少せず、毒性は観察されなかった。
図１７、図１８から、VEGFをコードするmRNAを標的とするsiRNA （siVEGF）と２種類のカチオン性GD複合体（siVEGF/C12GD-spe、siVEGF/GD15-spe）を投与した群では腫瘍サイズの増加が抑制されており、抗腫瘍効果が見られた。ネガティブコントロールとしてのsiRNA（siNega）とカチオン性GD複合体を投与した群では腫瘍サイズの抑制はなく、経時的に増加した。
また、図１９から、siVEGFとカチオン性GD複合体（siVEGF/C12GD-spe、siVEGF/GD15-spe）を投与した群とネガティブコントロールとしてのカチオン性GD複合体（siNega/C12GD-spe、siNega/GD-spe）を投与した群の摘出した腫瘍重量の比較から、siVEGFとカチオン性GD複合体で抗腫瘍効果が見られた。
スペルミン置換カチオン性GD（C12GD-spe、GD15-spe）はVEGFをコードするmRNAを標的とするsiRNA（siVEGF）と複合体を形成し、siVEGFを腫瘍細胞にデリバリーする機能によって、抗腫瘍作用を示すことが明らかになった。
Claims (8)
- 多価塩基性化合物で球状構造を有するグルカンデンドリマー（ＧＤ）を修飾してなり、前記多価塩基性化合物がスペルミン、又はスペルミジンであり、前記多価塩基性化合物がアミド結合を介してグルカンデンドリマーに結合している、カチオン性グルカンナノスフェア。
- 多価塩基性化合物がスペルミンである、請求項１に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
- 疎水性基でさらに修飾された、請求項１又は２に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
- 疎水性基がコレステリル基または炭素数６〜１８のアルキルカルボニル基である、請求項３に記載のカチオン性グルカンナノスフェア。
- 請求項１〜４のいずれかに記載のカチオン性グルカンナノスフェアと核酸との複合体。
- 核酸がＤＮＡ，ＲＮＡ，プラスミド、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ又はアンチセンス核酸である、請求項５に記載の複合体。
- 請求項１〜４のいずれかに記載のカチオン性グルカンナノスフェアからなる核酸導入剤。
- 請求項５又は６に記載の複合体を有効成分とするがん治療剤。
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