JP6945883B2 - セルロース結合モジュールを含む組換えベクター及び前記ベクターを用いてタンパク質を分離・精製する方法 - Google Patents

Description

本発明は、セルロース結合モジュールを含む組換えベクター及び前記ベクターを用いてタンパク質を分離・精製する方法に関する。

セルロースは、植物の細胞膜及び木質部を構成する基本成分であって、植物体の約３０％以上を占める有機化合物の一種である。多糖類に属し、化学構造は、Ｄ−グルコースがβ−１，４−グルコシド結合で多数重合され、天然状態の分子量が数万〜数十万に至る。セルロースは、無臭の白色固体であって、水、エタノール及びエーテルには溶けず、アルカリに非常に強い耐性を有しているが、酸や銅アンモニア溶液内では加水分解されて中間産物としてセロビオースを多量生成し、最終的には、グルコースに変換される。セルロースは、自然界で最も豊かな天然資源の一種類であって、これを利用しようとする多くの研究が進行中である。

一方、セルロースを分解するセルラーゼは、セルロース結合ドメイン（ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｄｏｍａｉｎ、ＣＢＤ）を有しており、セルロースに特異的に結合してセルロースを効果的に分解する。上記のようなセルロース結合ドメインを必要とする目的タンパク質に結合させてセルロースに特異的に結合する組換えタンパク質を製造しようとする試みが活発に行われている（大韓民国登録特許第１０−０６１８５６３号）。しかし、このような試みは、微生物を用いて組換えタンパク質を製造する方法に限られており、植物を用いた例はまだ知られていない。

しかし、最近、植物由来の組換えタンパク質、ワクチンなどの生産と関連して関心が集中しており、植物体を用いて大量の組換えタンパク質を生産し、高純度の組換えタンパク質を大量に迅速で且つ低価で分離する方法の開発が切実に求められているという実情がある。

本発明は、上記のような従来技術上の問題点を解決するために案出されたもので、植物体内で目的タンパク質を生成した後、生成された目的タンパク質を大量に迅速で簡単に分離するために、セルロース結合モジュール３（Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｍｏｄｕｌｅ ３、ＣＢＭ３）を含む組換えベクターと、前記組換えベクターを用いて目的タンパク質を分離・精製する方法を提供することをその目的とする。

しかし、本発明が達成しようとする技術的課題は、上記で言及した課題に制限されず、言及しなかったまた他の課題は、下の記載から当業者に明確に理解されるべきである。

上記のような本発明の目的を達成するために、本発明は、セルロース結合モジュール３をコードする配列番号１の塩基配列を含む組換えベクターを提供するものとして、前記組換えベクターの構成は、図１に示した通りである。

本発明の一具現例において、前記組換えベクターは、セルロース結合モジュール３、連結ペプチド、エンテロキナーゼの切断部位及び目的タンパク質のコード遺伝子が順次に連結されているものであってもよい。

本発明の他の具現例において、前記目的タンパク質のコード遺伝子は、配列番号３の塩基配列で構成されるものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記連結ペプチドは、配列番号５の塩基配列で構成されるものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記エンテロキナーゼの切断部位は、配列番号６の塩基配列で構成されるものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記組換えベクターは、植物細胞で目的タンパク質を小胞体にターゲティングすることができるＢｉＰ（Ｂｉｎｄｉｎｇ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｐｒｏｔｅｉｎ）タンパク質をコードする遺伝子が追加的に作動可能に連結されたものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記ＢｉＰタンパク質をコードする遺伝子は、配列番号７の塩基配列で構成されるものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記組換えベクターは、ＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）ペプチドをコードする塩基配列が追加的に作動可能に連結されたものであってもよい。

また、本発明は、下記ステップを含む目的タンパク質の分離・精製方法を提供する：

前記組換えベクターを用いて形質転換された植物体とタンパク質抽出緩衝溶液を混合して植物体混合液を製造するステップ（ステップＳ１）；
前記ステップＳ１の混合液をセルロースが満たされたカラムに注入してセルロース結合モジュール３及び目的タンパク質が融合された融合タンパク質をセルロースに吸着させるステップ（ステップＳ２）；及び
前記ステップＳ２で前記融合タンパク質が吸着されたセルロースを遠心分離して沈澱させた後、エンテロキナーゼに懸濁して懸濁液を収得するステップ（ステップＳ３）。

本発明の一具現例において、前記ステップＳ３後、セファロースカラムに前記懸濁液を注入してエンテロキナーゼを除去するステップをさらに含むものであってもよい。

本発明の他の具現例において、前記タンパク質抽出緩衝溶液は、１０〜１００ｍＭのトリス（Ｔｒｉｓ）緩衝液、１００〜２００ｍＭの塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）溶液、０．０１〜０．５％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００及びプロテアーゼインヒビターを含むものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記形質転換植物体は、
ａ）前記組換えベクターを菌株に導入して形質転換菌株を製造するステップ；及び
ｂ）前記形質転換菌株を用いて植物体を形質転換するステップを含む方法で製造されるものであってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記菌株は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）であってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記植物体は、シロイヌナズナ、大豆、タバコ、ナス、トウガラシ、ジャガイモ、トマト、白菜、大根、キャベツ、チシャ、桃、梨、イチゴ、スイカ、マクワウリ、キュウリ、ニンジン及びセロリからなる群より選択される双子葉植物；又は稲、麦、小麦、ライ麦、トウモロコシ、サトウキビ、エンバク及びタマネギからなる群より選択される単子葉植物であってもよい。

本発明のまた他の具現例において、前記セルロースは、微細結晶セルロース（Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）であってもよい。

本発明の組換えベクターを用いたタンパク質の分離方法は、セルロースに対する高い親和度を有するセルロース結合モジュール３を用いることで、非特異的なタンパク質が結合することを防止して多様なタンパク質が混合されている植物体の総抽出物（ｔｏｔａｌ ｅｘｔｒａｃｔ）からも目的とするタンパク質を高純度で迅速に分離し得、低い濃度のタンパク質でも分離が可能である。また、目的とするタンパク質と前記タンパク質をタグ化するセルロース結合ドメインを、エンテロキナーゼ処理して迅速に分離し得る。したがって、本発明のタンパク質分離方法は、植物体から大量の目的タンパク質を高純度で迅速に且つ低価で効率的に分離することを可能にするため、産業的に多様な分野に応用が可能であると期待される。

図１は、本発明で用いた組換えベクターの構成を示した図である。 図２は、微細結晶セルロースにＣＢＭ３融合タンパク質（ＣＢＭ３：Ａｇ８５Ａ）の吸着を確認した結果を示した図である。 図３は、エンテロキナーゼを用いてＣＢＭ３融合タンパク質から目的タンパク質（Ａｇ８５Ａ）が分離されたかを確認した結果を示した図である。 図４は、アフィニティークロマトグラフィーでエンテロキナーゼを除去した後、目的タンパク質（Ａｇ８５Ａ）が分離・精製されたことを確認した結果を示した図である。

本発明は、セルロース結合モジュール３（Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｍｏｄｕｌｅ ３、ＣＢＭ３）をコードする配列番号１の塩基配列を含む組換えベクターを提供することにその特徴がある。

本発明者らは、高純度の目的タンパク質を植物体から大量に迅速で且つ低価に分離する方法に対して研究した結果、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明の一実施例では、目的タンパク質をコーディングする遺伝子の３’末端方向に配列番号１の塩基配列又は配列番号２のアミノ酸配列で構成されるセルロース結合モジュール３（Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｍｏｄｕｌｅ ３、ＣＢＭ３）を結合して組換えベクターを作製し、前記組換えベクターを用いて目的タンパク質を生産する形質転換された植物体を製造した後、微細結晶セルロース（Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ、ＭＣＣ）を用いてＣＢＭ３融合タンパク質を分離した後、エンテロキナーゼを処理して目的タンパク質を分離できることを確認した（実施例１〜４参照）、

上記から本発明者らは、セルロース結合ドメインを含む組換えベクターを用いて目的タンパク質が発現された植物体からセルロースを用いて容易に目的タンパク質を精製し得る事実が分かった。

したがって、本発明は、前記組換えベクターを用いる目的タンパク質の分離方法を提供し得る。

さて、本発明は、下記ステップを含む目的タンパク質の分離・精製方法を提供する：

前記組換えベクターを用いて形質転換された植物体とタンパク質抽出緩衝溶液を混合して植物体混合液を製造するステップ（ステップＳ１）；
前記ステップＳ１の混合液をセルロース（ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）が満たされたカラムに注入してセルロース結合モジュール３及び目的タンパク質が融合された融合タンパク質をセルロースに吸着させるステップ（ステップＳ２）；及び
前記ステップＳ２で前記融合タンパク質が吸着されたセルロースを遠心分離して沈澱させた後、エンテロキナーゼに懸濁して懸濁液を収得するステップ（ステップＳ３）。

より具体的に、本発明で前記セルロースは、微細結晶セルロース（Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）を用いることが好ましく、非結晶セルロース（ａｍｏｒｐｈｏｕｓ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）も用いることができるが、微細結晶セルロースを用いることが、分離効率などを考慮すると、より好ましい。

本発明で前記組換えベクターは、セルロース結合モジュール３、連結ペプチド、エンテロキナーゼの切断部位及び目的タンパク質のコード遺伝子が順次に連結されて構成され、前記セルロース結合モジュールの３’末端には、植物細胞で小胞体に目的タンパク質をターゲティングすることができるＢｉＰ（Ｂｉｎｄｉｎｇ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｐｒｏｔｅｉｎ）タンパク質のシグナルペプチドが連結され、前記目的タンパク質のコード遺伝子のカルボキシル末端には、連結されたベクターが小胞体に保持されるようにするＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）が連結され得る。前記セルロース結合モジュール３は、配列番号１の塩基配列でコードされるものであってもよい。前記組換えベクターで生成されるタンパク質において、セルロース結合モジュール３は、配列番号２のアミノ酸配列で構成されるものである。

本発明で用いられた用語「目的タンパク質（又はタンパク質）」は、本発明による遺伝子工学的方法で生産しようとするタンパク質を指すもので、特にいずれか一つに制限されない。好ましくは、商業的用途に用いられて多量で生産される必要があるタンパク質が含まれ得る。

本発明の一具現例で、前記目的タンパク質のコード遺伝子は、配列番号３の塩基配列でコードされるＡｇ８５Ａであってもよいが、上述のように分離して生産しようと目的とするタンパク質の種類に応じて変更して用いることができる。前記目的タンパク質は、配列番号４のアミノ酸配列からなるものであってもよい。

本発明の他の具現例で、前記連結ペプチドは、配列番号５の塩基配列で構成されるものであってもよく、前記エンテロキナーゼの切断部位は、配列番号６の塩基配列で構成されるものであってもよく、前記ＢｉＰタンパク質のシグナルペプチドは、配列番号７の塩基配列で構成されるものであってもよい。

本発明で用語「融合タンパク質」は、セルロース結合ドメインと目的タンパク質が融合されたタンパク質を意味するもので、前記融合タンパク質でタグに該当するセルロース結合ドメインを目的タンパク質から除去することは、目的タンパク質の分離・精製において重要である。したがって、本発明は、セルロース結合ドメインをエンテロキナーゼ処理して容易に分離し得る。

本発明のまた他の具現例で、前記エンテロキナーゼを処理した後、アフィニティークロマトグラフィーであるセファロースカラム（ＳＴＩ−ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）に通過させてエンテロキナーゼを容易に除去し得る。

本発明のまた他具現例で、植物体の混合液を製造するとき添加されるタンパク質抽出緩衝溶液は、１０〜１００ｍＭのトリス（（Ｔｒｉｓ）緩衝液、１００〜２００ｍＭの塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）溶液、０．０１〜０．５％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００及びプロテアーゼインヒビターを含むものであってもよく、植物体の重量１ｇ当たり１〜１０ｍＬずつ用いられてもよく、より好ましくは、３〜８ｍＬずつ用いられてもよい。

本発明の方法で、形質転換植物体は、ａ）前記組換えベクターを菌株に導入して形質転換菌株を製造するステップ；及びｂ）前記形質転換菌株を用いて植物体を形質転換するステップを含む方法で製造されるものであってもよい。

前記形質転換菌株は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）を用いるものであってもよいが、これに制限されるものではなく、前記植物体は、シロイヌナズナ、大豆、タバコ、ナス、トウガラシ、ジャガイモ、トマト、白菜、大根、キャベツ、チシャ、桃、梨、イチゴ、スイカ、マクワウリ、キュウリ、ニンジン又はセロリなどの双子葉植物；又は稲、麦、小麦、ライ麦、トウモロコシ、サトウキビ、エンバク又はタマネギの単子葉植物が用いられ得るが、これに制限されない。

（発明の実施のための形態）
以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかし、下記の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものに過ぎず、下記実施例によって本発明の内容が限定されるものではない。

［実施例１．ＣＢＭ３融合タンパク質が発現される形質転換植物体の製造］
図１のように、植物体でＣＢＭ３融合タンパク質を発現させるように組換えをした植物体の形質転換用ベクターを作製した。ＣＢＭ３融合タンパク質を小胞体に移動させるようにＢｉＰ（ｃｈａｐｅｒｏｎｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）タンパク質のシグナルペプチドに該当するゲノムＤＮＡ配列を用いて目的タンパク質を小胞体に移動させ、融合タンパク質が小胞体に蓄積されるようにカルボキシル末端にＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）を付与して小胞体に保持した。目的タンパク質（Ａｇ８５Ａ）をコーディングする遺伝子の前方に融合タンパク質の分離に必要なセルロース結合モジュール３（Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｍｏｄｕｌｅ ３、ＣＢＭ３）と連結ペプチド（リンカー）及びエンテロキナーゼにより認識されて切断される配列を結合し、植物発現用ベクターであるｐＣＡＭＢＩＡ １３００に挿入して組換えベクターを製造した。前記ベクターをアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）ＬＢＡ−４４０４菌株に形質転換させた。前記形質転換されたアグロバクテリウム菌株を用いてシロイヌナズナを形質転換させて目的タンパク質を生産する形質転換植物体を製造し、その後、安定的にＣＢＭ３融合タンパク質を生産する形質転換植物体を選別した。前記組換えベクターで用いられた配列は、下記表１に示した。

［実施例２．微細結晶セルロースを用いたタンパク質の分離］
微細結晶セルロース（Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ、ＭＣＣ）にＣＢＭ３融合タンパク質を吸着させるために、微細結晶セルロース１ｇを蒸留水に添加して水和させた。以後、前記実施例１の方法で製造された形質転換植物体を土壌に植えて約３週間培養した後、根部分を除いた植物体を乳鉢に入れて液体窒素を用いて粉末化させた。前記粉末化された植物体１ｇを新しいチューブに移し、タンパク質抽出緩衝溶液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．２）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．２％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、プロテアーゼＩＸインヒビター）５ｍＬを添加してボルテックスしてよく混合した。フィルターでミラクロス（Ｍｉｒａｃｌｏｔｈ）を用いて植物破送物を除去した後、微細結晶セルロース１ｇを添加した後に１時間の間４℃でよく混合してＣＢＭ３融合タンパク質が微細結晶セルロースに吸着されるようにした。その後遠心分離（１４，０００ｒｐｍ、４℃、１０分）を通じて微細結晶セルロースに結合されないタンパク質を除去した後、５ｍＬの洗浄用緩衝溶液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．２）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ）で微細結晶セルロースを２回洗浄した。ＣＢＭ３融合タンパク質の微細結晶セルロースの吸着は、ＣＢＭ３抗体を用いてウエスタンブロッティングで確認した。

その結果、図２に示したように、植物で発現されたＣＢＭ３融合タンパク質は、ほとんど損失なしに微細結晶セルロースによく吸着され、洗浄段階でも微細結晶セルロースに吸着されているＣＢＭ３融合タンパク質がほとんど溶出されないことが確認できた。

［実施例３．エンテロキナーゼを用いた融合タンパク質の切断］
Ａｇ８５Ａを含んだ融合タンパク質が吸着されたセルロースを、遠心分離（１４，０００ｒｐｍ、４℃、１０分）を通じて沈澱させた後、エンテロキナーゼ反応溶液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．２）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＣａＣｌ_２）にまた懸濁させた。懸濁液にエンテロキナーゼを５単位ほど添加して２８℃で反応させた後、時間帯別に懸濁液を採取してＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った。エンテロキナーゼの処理時間による融合タンパク質の切断は、Ａｇ８５Ａ抗体を用いてウエスタンブロッティングで確認した。

その結果、図３から確認できるように、エンテロキナーゼの処理による融合タンパク質の切断反応は非常に効率的に起き、処理１時間後に約７０％の融合タンパク質が切断され、４時間後には融合タンパク質は完全に切断されてＣＢＭ３とＡｇ８５Ａに分離された。

［実施例４．アフィニティークロマトグラフィーでエンテロキナーゼの除去を通じたＡｇ８５Ａの分離・精製］
遠心分離（１４，０００ｒｐｍ、４℃、１０分）を通じてエンテロキナーゼと完全に切断されたＡｇ８５Ａを含む反応液をセルロースから分離した（図４の左側）。反応液からエンテロキナーゼを除去するためにアフィニティークロマトグラフィーを実施した。反応液にＳＴＩ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅを入れて４℃で１時間の間反応させた後、空のカラムに入れてＳＴＩ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合しない部分を回収した。図４の右側から確認できるように、ＳＴＩ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅアフィニティークロマトグラフィーを通じて反応液からエンテロキナーゼを除去して純粋分離されたＡｇ８５Ａを獲得し得ることがわかる。

前記結果を通じて、本発明の組換えベクターを用いたタンパク質の分離方法は、溶出過程なしにエンテロキナーゼを用いて容易に目的タンパク質に分離させ得、これを通じて、最終的にはタンパク質の分離に所要される時間を減少させ得ることを確認した。これは、大量のタンパク質を分離する場合には、用いられる試料の減少及び所要時間短縮により作業効率を極大化し得ることを意味する。

上述した本発明の説明は例示のためのもので、本発明が属する技術分野において通常の知識を有した者は、本発明の技術的思想や必須的な特徴を変更しなくても他の具体的な形態に容易に変形が可能であることが理解できる。したがって、以上で記述した実施例は、全ての面で例示的なものであり、限定的ではないことで理解すべきである。

本発明の組換えベクターを用いたタンパク質の分離方法は、植物体から大量の目的タンパク質を高純度に迅速、低価で且つ効率的に分離することが可能なので、産業的に多様な分野に応用が可能であると期待される。

Claims (15)

1. セルロース結合モジュール３をコードする配列番号１の塩基配列を含み、植物の形質転換用である、組換えベクター。
2. 前記組換えベクターは、セルロース結合モジュール３、連結ペプチド、エンテロキナーゼの切断部位及び目的タンパク質のコード遺伝子が順次に連結されていることを特徴とする、請求項１に記載の組換えベクター。
3. 前記目的タンパク質のコード遺伝子は、配列番号３の塩基配列で構成されることを特徴とする、請求項２に記載の組換えベクター。
4. 前記連結ペプチドのコード遺伝子は、配列番号５の塩基配列で構成されることを特徴とする、請求項２又は３に記載の組換えベクター。
5. 前記エンテロキナーゼの切断部位のコード遺伝子は、配列番号６の塩基配列で構成されることを特徴とする、請求項２〜４のいずれか一項に記載の組換えベクター。
6. 前記組換えベクターは、植物細胞で目的タンパク質を小胞体にターゲティングすることができるＢｉＰ（Ｂｉｎｄｉｎｇ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｐｒｏｔｅｉｎ）タンパク質をコードする遺伝子が追加的に作動可能に連結されたことを特徴とする、請求項２〜５のいずれか一項に記載の組換えベクター。
7. 前記ＢｉＰタンパク質をコードする遺伝子は、配列番号７の塩基配列で構成されることを特徴とする、請求項６に記載の組換えベクター。
8. 前記組換えベクターは、ＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）ペプチドをコードする塩基配列が追加的に作動可能に連結されたことを特徴とする、請求項２〜７のいずれか一項に記載の組換えベクター。
9. 下記ステップを含むことを特徴とする、目的タンパク質の分離・精製方法：
   請求項１に記載の組換えベクターを用いて形質転換された植物体とタンパク質抽出緩衝溶液を混合して植物体混合液を製造するステップ（ステップＳ１）；
   前記ステップＳ１の混合液をセルロースが満たされたカラムに注入してセルロース結合モジュール３及び目的タンパク質が融合された融合タンパク質をセルロースに吸着させるステップ（ステップＳ２）；及び
   前記ステップＳ２で前記融合タンパク質が吸着されたセルロースを遠心分離して沈澱させた後、エンテロキナーゼに懸濁して懸濁液を収得するステップ（ステップＳ３）。
10. 前記ステップＳ３の後、セファロースカラムに前記懸濁液を注入してエンテロキナーゼを除去するステップをさらに含むことを特徴とする、請求項９に記載の目的タンパク質の分離・精製方法。
11. 前記タンパク質抽出緩衝溶液は、１０〜１００ｍＭのトリス（Ｔｒｉｓ）緩衝液、１００〜２００ｍＭの塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）溶液、０．０１〜０．５％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００及びプロテアーゼインヒビターを含むことを特徴とする、請求項９又は１０に記載の目的タンパク質の分離・精製方法。
12. 前記形質転換された植物体は、
    ａ）請求項１に記載の組換えベクターを菌株に導入して形質転換菌株を製造するステップ；及び
    ｂ）前記形質転換菌株を用いて植物体を形質転換するステップ
    を含む方法で製造されることを特徴とする、請求項９〜１１のいずれか一項に記載の目的タンパク質の分離・精製方法。
13. 前記菌株は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）であることを特徴とする、請求項１２に記載の目的タンパク質の分離・精製方法。
14. 前記植物体は、シロイヌナズナ、大豆、タバコ、ナス、トウガラシ、ジャガイモ、トマト、白菜、大根、キャベツ、チシャ、桃、梨、イチゴ、スイカ、マクワウリ、キュウリ、ニンジン及びセロリからなる群より選択される双子葉植物；又は稲、麦、小麦、ライ麦、トウモロコシ、サトウキビ、エンバク及びタマネギからなる群より選択される単子葉植物であることを特徴とする、請求項９〜１３のいずれか一項に記載の目的タンパク質の分離・精製方法。
15. 前記セルロースは、微細結晶セルロース（Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）であることを特徴とする、請求項９〜１４のいずれか一項に記載の目的タンパク質の分離・精製方法。

Images