JP6959482B2 - 成形体及びその製造方法、並びに成形体のタフネスを向上させる方法 - Google Patents

Description

本発明は、成形体及びその製造方法、並びに成形体のタフネスを向上させる方法に関する。

近年、環境保全意識の高まりから、石油由来の材料の代替物質の検討が進められており、強度などの点で優れるタンパク質がその候補として挙げられる。タンパク質は、従来は主に石油由来の材料で形成されてきたフィルム、ファイバー等の成形体にも適用可能である。例えば特許文献１には、タンパク質と可塑剤に、分解遅延剤及び／又は耐水性付与剤を加えたことを特徴とする生分解性成形体が開示されている。

特開平８−７３６１３号公報

本発明は、タフネスに優れる成形体及びその製造方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、タンパク質を含有する成形体について検討したところ、相対湿度が高い環境に成形体を曝露することで、そのメカニズムや曝露後の成形体の構造及び特性は不明であるものの、成形体のタフネスが向上することを見出した。

本発明は、一側面において、タンパク質を含有する成形体前駆体を、相対湿度が９０％以上である環境に曝露して成形体を得る成形体の製造方法を提供する。

本発明は、他の一側面において、相対湿度が９０％以上である環境への曝露履歴を有するタンパク質を含有する成形体を提供する。

本発明は、他の一側面において、タンパク質を含有する成形体を、相対湿度が９０％以上である環境に曝露することにより、成形体のタフネスを向上させる方法を提供する。

本発明によれば、タフネスに優れる成形体及びその製造方法を提供することができる。

試料を飽和塩水環境に曝露する方法を説明するための模式図である。 蚕フィルムの相対湿度とタフネスとの関係を示すグラフである。

以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。

本実施形態に係る成形体の製造方法は、少なくとも、タンパク質を含有する成形体前駆体を、相対湿度が９０％以上である環境に曝露する曝露工程を備える。

本実施形態に係る成形体及び成形体前駆体（以下、これらをまとめて単に「成形体」ともいう）は、タンパク質を好ましくは主成分として含有する。成形体全体に対するタンパク質の含有量は、特に限定されるものではない。成形体には主成分たるタンパク質以外の夾雑物等を含有していてもよい。タンパク質の種類も特に制限されず、例えば、構造タンパク質又は当該構造タンパク質に由来するタンパク質等を挙げることができる。構造タンパク質とは、生体内で構造、形態等を形成又は保持するタンパク質を意味する。構造タンパク質としては、例えば、フィブロイン、ケラチン、コラ−ゲン、エラスチン及びレシリン等を挙げることができる。

構造タンパク質は、フィブロイン及びケラチンからなる群より選択される１種以上を含んでいてよい。フィブロインは、例えば、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びホーネットシルクフィブロインからなる群より選択される１種以上であってよい。構造タンパク質は、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン又はこれらの組み合わせであってもよい。絹フィブロインとクモ糸フィブロインとを併用する場合、絹フィブロインの割合は、例えば、クモ糸フィブロイン１００質量部に対して、４０質量部以下、３０質量部以下、又は１０質量部以下であってよい。

絹は、カイコガ（Ｂｏｍｂｙｘ ｍｏｒｉ）の幼虫である蚕の作る繭から得られる繊維である。一般に、１本の繭糸は、２本の絹フィブロインと、これらを外側から覆うニカワ質（セリシン）とから構成される。絹フィブロインは、多数のフィブリルで構成される。絹フィブロインは、４層のセリシンで覆われる。実用的には、精錬により外側のセリシンを溶解して取り除いて得られる絹フィラメントが、衣料用途に使用されている。一般的な絹は、１．３３の比重、平均３．３ｄｅｃｉｔｅｘの繊度、及び１３００〜１５００ｍ程度の繊維長を有する。絹フィブロインは、天然若しくは家蚕の繭、又は中古若しくは廃棄のシルク生地を原料として得られる。

絹フィブロインは、セリシン除去絹フィブロイン、セリシン未除去絹フィブロイン、又はこれらの組み合わせであってもよい。セリシン除去絹フィブロインは、絹フィブロインを覆うセリシン、及びその他の脂肪分などを除去して精製したものである。このようにして精製した絹フィブロインは、好ましくは、凍結乾燥粉末として用いられる。セリシン未除去絹フィブロインは、セリシンなどが除去されていない未精製の絹フィブロインである。

ホーネットシルクフィブロインは、蜂の幼虫が産生するタンパク質であり、天然ホーネットシルクタンパク質、及び、天然ホーネットシルクタンパク質に由来するポリペプチドからなる群より選ばれるポリペプチドを含有していてよい。

クモ糸フィブロインは、天然クモ糸タンパク質、及び天然クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドからなる群より選ばれるクモ糸ポリペプチドを含有していてよい。

天然クモ糸タンパク質としては、例えば、大吐糸管しおり糸タンパク質、横糸タンパク質、及び小瓶状腺タンパク質が挙げられる。大吐糸管しおり糸は、結晶領域と無定形領域（非晶領域とも言う。）からなる繰り返し領域を持つため、高い応力と伸縮性を併せ持つと推測される。クモ糸の横糸は、結晶領域を持たず、無定形領域からなる繰り返し領域を持つという特徴を有する。一方、横糸は、大吐糸管しおり糸に比べると応力は劣るが、高い伸縮性を持つ。これは、横糸の大部分が無定形領域によって構成されているためだと考えられる。

大吐糸管しおり糸タンパク質は、クモの大瓶状線で産生され、強靭性に優れるという特徴を有する。大吐糸管しおり糸タンパク質としては、例えば、アメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する大瓶状腺スピドロインＭａＳｐ１及びＭａＳｐ２、並びに二ワオニグモ（Ａｒａｎｅｕｓ ｄｉａｄｅｍａｔｕｓ）に由来するＡＤＦ３及びＡＤＦ４が挙げられる。ＡＤＦ３は、ニワオニグモの２つの主要なしおり糸タンパク質の一つである。天然クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドは、これらのしおり糸タンパク質に由来するポリペプチドであってもよい。ＡＤＦ３に由来するポリペプチドは、比較的合成し易く、また、強伸度及びタフネスの点で優れた特性を有する。

横糸タンパク質は、クモの鞭毛状腺（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ ｇｌａｎｄ）で産生される。横糸タンパク質としては、例えばアメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する鞭毛状絹タンパク質（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ ｓｉｌｋ ｐｒｏｔｅｉｎ）が挙げられる。

天然クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドは、組換えクモ糸タンパク質であってよい。組換えクモ糸タンパク質としては、天然型クモ糸タンパク質の変異体、類似体又は誘導体等が挙げられる。このようなポリペプチドの好適な一例は、大吐糸管しおり糸タンパク質の組換えクモ糸タンパク質（「大吐糸管しおり糸タンパク質に由来するポリペプチド」ともいう）である。

フィブロイン様タンパク質である、大吐糸管しおり糸由来のタンパク質及びカイコシルク由来のタンパク質としては、例えば、式１：［（Ａ）_ｎモチーフ−ＲＥＰ１］_ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式１中、（Ａ）_ｎモチーフは４〜２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）_ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８０％以上である。ＲＥＰ１は１０〜２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは８〜３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）_ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰ１は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。）を挙げることができる。具体的には配列番号１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。

横糸タンパク質に由来するタンパク質としては、例えば、式２：［ＲＥＰ２］_ｏで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式２中、ＲＥＰ２はＧｌｙ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｘから構成されるアミノ酸配列を示し、Ｘはアラニン（Ａｌａ）、セリン（Ｓｅｒ）、チロシン（Ｔｙｒ）及びバリン（Ｖａｌ）からなる群から選ばれる一つのアミノ酸を示す。ｏは８〜３００の整数を示す。）を挙げることができる。具体的には配列番号２で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号２で示されるアミノ酸配列は、ＮＣＢＩデータベースから入手したアメリカジョロウグモの鞭毛状絹タンパク質の部分的な配列（ＮＣＢＩアクセッション番号：ＡＡＦ３６０９０、ＧＩ：７１０６２２４）のリピート部分及びモチーフに該当するＮ末端から１２２０残基目から１６５９残基目までのアミノ酸配列（ＰＲ１配列と記す。）と、ＮＣＢＩデータベースから入手したアメリカジョロウグモの鞭毛状絹タンパク質の部分配列（ＮＣＢＩアクセッション番号：ＡＡＣ３８８４７、ＧＩ：２８３３６４９）のＣ末端から８１６残基目から９０７残基目までのＣ末端アミノ酸配列を結合し、結合した配列のＮ末端に配列番号７で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。

コラーゲン由来のタンパク質として、例えば、式３：［ＲＥＰ３］_ｐで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式３中、ｐは５〜３００の整数を示す。ＲＥＰ３は、Ｇｌｙ一Ｘ一Ｙから構成されるアミノ酸配列を示し、Ｘ及びＹはＧｌｙ以外の任意のアミノ酸残基を示す。複数存在するＲＥＰ３は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。）を挙げることができる。具体的には、配列番号３で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号３で示されるアミノ酸配列は、ＮＣＢＩデータベースから入手したヒトのコラーゲンタイプ４の部分的な配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号：ＣＡＡ５６３３５．１、ＧＩ：３７０２４５２）のリピート部分及びモチーフに該当する３０１残基目から５４０残基目までのアミノ酸配列のＮ末端に配列番号７で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。

レシリン由来のタンパク質として、例えば、式４：［ＲＥＰ４］_ｑで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式４中、ｑは４〜３００の整数を示す。ＲＥＰ４はＳｅｒ一Ｊ一Ｊ一Ｔｙｒ一Ｇｌｙ一Ｕ−Ｐｒｏから構成されるアミノ酸配列を示す。Ｊは任意のアミノ酸残基を示し、特にＡｓｐ、Ｓｅｒ及びＴｈｒからなる群から選ばれるアミノ酸残基であることが好ましい。Ｕは任意のアミノ酸残基を示し、特にＰｒｏ、Ａｌａ、Ｔｈｒ及びＳｅｒからなる群から選ばれるアミノ酸残基であることが好ましい。複数存在するＲＥＰ４は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。）を挙げることができる。具体的には、配列番号４で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号４で示されるアミノ酸配列は、レシリン（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号ＮＰ ６１１１５７、Ｇｌ：２４６５４２４３）のアミノ酸配列において、８７残基目のＴｈｒをＳｅｒに置換し、かつ９５残基目のＡｓｎをＡｓｐに置換した配列の１９残基目から３２１残基目までのアミノ酸配列のＮ末端に配列番号７で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。

エラスチン由来のタンパク質として、例えば、ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号ＡＡＣ９８３９５（ヒト）、Ｉ４７０７６（ヒツジ）、ＮＰ７８６９６６（ウシ）等のアミノ酸配列を有するタンパク質を挙げることができる。具体的には、配列番号５で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号５で示されるアミノ酸配列は、ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号ＡＡＣ９８３９５のアミノ酸配列の１２１残基目から３９０残基目までのアミノ酸配列のＮ末端に配列番号７で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。

ケラチン由来のタンパク質として、例えば、カプラ・ヒルクス（Ｃａｐｒａ ｈｉｒｃｕｓ）のタイプＩケラチン等を挙げることができる。具体的には、配列番号６で示されるアミノ酸配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号ＡＣＹ３０４６６のアミノ酸配列）を含むタンパク質を挙げることができる。

上述した構造タンパク質及び当該構造タンパク質に由来するタンパク質は、１種を単独で、又は２種以上を組み合わせて用いることができる。

タンパク質成形体及びタンパク質成形体前駆体に主成分として含まれるタンパク質は、例えば、当該タンパク質をコードする核酸配列と、当該核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する発現ベクターで形質転換された宿主により、当該核酸を発現させることにより生産することができる。

タンパク質成形体及びタンパク質成形体前駆体に主成分として含まれるタンパク質をコードする核酸の製造方法は、特に制限されない。例えば、天然の構造タンパク質をコードする遺伝子を利用して、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などで増幅しクローニングする方法、又は、化学的に合成する方法によって、当該核酸を製造することができる。核酸の化学的な合成方法も特に制限されず、例えば、ＮＣＢＩのウェブデータベースなどより入手した構造タンパク質のアミノ酸配列情報をもとに、ＡＫＴＡ ｏｌｉｇｏｐｉｌｏｔ ｐｌｕｓ １０／１００（ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社）などで自動合成したオリゴヌクレオチドをＰＣＲなどで連結する方法によって遺伝子を化学的に合成することができる。この際に、タンパク質の精製及び／又は確認を容易にするため、上記のアミノ酸配列のＮ末端に開始コドン及びＨｉｓ１０タグからなるアミノ酸配列を付加したアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする核酸を合成してもよい。

調節配列は、宿主における組換えタンパク質の発現を制御する配列（例えば、プロモーター、エンハンサー、リボソーム結合配列、転写終結配列等）であり、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。プロモーターとして、宿主細胞中で機能し、目的とするタンパク質を発現誘導可能な誘導性プロモーターを用いてもよい。誘導性プロモーターは、誘導物質（発現誘導剤）の存在、リプレッサー分子の非存在、又は温度、浸透圧若しくはｐＨ値の上昇若しくは低下等の物理的要因により、転写を制御できるプロモーターである。

発現ベクターの種類は、プラスミドベクター、ウイルスベクター、コスミドベクター、フォスミドベクター、人工染色体ベクター等、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。発現ベクターとしては、宿主細胞において自立複製が可能、又は宿主の染色体中への組込みが可能で、目的とするタンパク質をコードする核酸を転写できる位置にプロモーターを含有しているものが好適に用いられる。

宿主として、原核生物、並びに酵母、糸状真菌、昆虫細胞、動物細胞及び植物細胞等の真核生物のいずれも好適に用いることができる。

原核生物の宿主の好ましい例として、エシェリヒア属、ブレビバチルス属、セラチア属、バチルス属、ミクロバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属及びシュードモナス属等に属する細菌を挙げることができる。エシェリヒア属に属する微生物として、例えば、エシェリヒア・コリ等を挙げることができる。ブレビバチルス属に属する微生物として、例えば、ブレビバチルス・アグリ等を挙げることができる。セラチア属に属する微生物として、例えば、セラチア・リクエファシエンス等を挙げることができる。バチルス属に属する微生物として、例えば、バチルス・サチラス等を挙げることができる。ミクロバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム等を挙げることができる。ブレビバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ブレビバクテリウム・ディバリカタム等を挙げることができる。コリネバクテリウム属に属する微生物として、例えば、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス等を挙げることができる。シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物として、例えば、シュードモナス・プチダ等を挙げることができる。

原核生物を宿主とする場合、目的タンパク質をコードする核酸を導入するベクターとしては、例えば、ｐＢＴｒｐ２（ベーリンガーマンハイム社製）、ｐＧＥＸ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＵＣ１８、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ、ｐＳｕｐｅｘ、ｐＥＴ２２ｂ、ｐＣｏｌｄ、ｐＵＢ１１０、ｐＮＣＯ２（特開２００２−２３８５６９号公報）等を挙げることができる。

真核生物の宿主としては、例えば、酵母及び糸状真菌（カビ等）を挙げることができる。酵母としては、例えば、サッカロマイセス属、ピキア属、シゾサッカロマイセス属等に属する酵母を挙げることができる。糸状真菌としては、例えば、アスペルギルス属、ペニシリウム属、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）属等に属する糸状真菌を挙げることができる。

真核生物を宿主とする場合、目的タンパク質をコードする核酸を導入するベクターとしては、例えば、ＹＥＰ１３（ＡＴＣＣ３７１１５）、ＹＥｐ２４（ＡＴＣＣ３７０５１）等を挙げることができる。上記宿主細胞への発現ベクターの導入方法としては、上記宿主細胞へＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができる。例えば、カルシウムイオンを用いる方法〔Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ，６９，２１１０（１９７２）〕、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、プロトプラスト法、酢酸リチウム法、コンピテント法等を挙げることができる。

発現ベクターで形質転換された宿主による核酸の発現方法としては、直接発現のほか、モレキュラー・クローニング第２版に記載されている方法等に準じて、分泌生産、融合タンパク質発現等を行うことができる。

タンパク質は、例えば、発現ベクターで形質転換された宿主を培養培地中で培養し、培養培地中に当該タンパク質を生成蓄積させ、該培養培地から採取することにより製造することができる。宿主を培養培地中で培養する方法は、宿主の培養に通常用いられる方法に従って行うことができる。

宿主が、大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物である場合、培養培地として、宿主が資化し得る炭素源、窒素源及び無機塩類等を含有し、宿主の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。

炭素源としては、上記形質転換微生物が資化し得るものであればよく、例えば、グルコース、フラクトース、スクロース、及びこれらを含有する糖蜜、デンプン及びデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸及びプロピオン酸等の有機酸、並びにエタノール及びプロパノール等のアルコール類を用いることができる。窒素源としては、例えば、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム及びリン酸アンモニウム等の無機酸又は有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びにペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕及び大豆粕加水分解物、各種発酵菌体及びその消化物を用いることができる。無機塩類としては、例えば、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅及び炭酸カルシウムを用いることができる。

大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物の培養は、例えば、振盪培養又は深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行うことができる。培養温度は、例えば、１５〜４０℃である。培養時間は、通常１６時間〜７日間である。培養中の培養培地のｐＨは３．０〜９．０に保持することが好ましい。培養培地のｐＨの調整は、無機酸、有機酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム及びアンモニア等を用いて行うことができる。

また、培養中、必要に応じて、アンピシリン及びテトラサイクリン等の抗生物質を培養培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド等を、ｔｒｐプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。

発現させたタンパク質の単離、精製は通常用いられている方法で行うことができる。例えば、当該タンパク質が、細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後、宿主細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液に懸濁した後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー及びダイノミル等により宿主細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、タンパク質の単離精製に通常用いられている方法、すなわち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）−セファロース、ＤＩＡＩＯＮ ＨＰＡ−７５（三菱化成社製）等のレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、Ｓ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ＦＦ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の方法を単独又は組み合わせて使用し、精製標品を得ることができる。

また、タンパク質が細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、同様に宿主細胞を回収後、破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分としてタンパク質の不溶体を回収する。回収したタンパク質の不溶体はタンパク質変性剤で可溶化することができる。該操作の後、上記と同様の単離精製法によりタンパク質の精製標品を得ることができる。当該タンパク質が細胞外に分泌された場合には、培養上清から当該タンパク質を回収することができる。すなわち、培養物を遠心分離等の手法により処理することにより培養上清を取得し、その培養上清から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。

タンパク質又はポリペプチドの分子量は、大腸菌等の微生物を宿主とした組み換えタンパク質生産を行う場合の生産性の観点から、５００ｋＤａ以下、３００ｋＤａ以下、２００ｋＤａ以下又は１００ｋＤａ以下であってよく、１０ｋＤａ以上であってよい。タンパク質又はポリペプチドは、上記の分子量を有するものが互いに架橋することなどにより、更に高分子量化していてもよい。

絹糸フィブロイン、及びクモ糸フィブロイン等の上述の構造タンパク質と、その他のタンパク質とを組み合わせてもよい。その他のタンパク質としては、例えば、コラーゲン、大豆タンパク質、カゼイン、ケラチン、及び乳清タンパク質が挙げられる。その他のタンパク質を構造タンパク質と併用することにより、タンパク質に由来する物性を調整することができる。併用する場合のその他のタンパク質の割合は、例えば、構造タンパク質１００質量部に対して、４０質量部以下、３０質量部以下、又は１０質量部以下であってよい。

本実施形態に係る成形体は、特に制限されず、フィルム、ファイバー、フォーム、樹脂板等であってよい。フィルムは、例えば、タンパク質及び溶媒を含有するタンパク質溶液の膜を形成し、形成された膜から溶媒を除去する方法により得られる。ファイバーは、例えば、タンパク質及び溶媒を含有するタンパク質溶液を紡糸し、紡糸されたタンパク質溶液から溶媒を除去する方法により得られる。すなわち、本実施形態に係る成形体の製造方法は、曝露工程の前に、例えばタンパク質及び溶媒を含有するタンパク質溶液から成形体前駆体を成形する成形工程を更に備えていてもよい。

成形工程において用いられる溶媒は、例えば極性溶媒であってよい。極性溶媒は、例えば、水、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ヘキサフルオロアセトン（ＨＦＡ）及びヘキサフルオロイソプロパノール（ＨＦＩＰ）からなる群より選択される１種以上の溶媒を含んでいてよい。極性溶媒は、より高濃度の溶液を得る観点からは、ジメチルスルホキシド単独又はジメチルスルホキシドと水との混合溶媒であってよく、環境に対する悪影響を低減する観点からは水であってよい。

タンパク質溶液におけるタンパク質の含有量は、タンパク質溶液の全質量を基準として、１５質量％以上、３０質量％以上、４０質量％以上又は５０質量％以上であってよい。タンパク質の含有量は、タンパク質溶液の製造効率の観点から、タンパク質溶液の全質量を基準として、７０質量％以下、６５質量％以下、又は６０質量％以下であってよい。

タンパク質溶液は、タンパク質及び溶媒に加えて、１種又は２種以上の無機塩を更に含有していてもよい。無機塩は、例えば、以下に示すルイス酸とルイス塩基とからなる無機塩が挙げられる。ルイス塩基は、例えば、オキソ酸イオン（硝酸イオン、過塩素酸イオン等）、金属オキソ酸イオン（過マンガン酸イオン等）、ハロゲン化物イオン、チオシアン酸イオン、シアン酸イオンなどであってよい。ルイス酸は、例えば、アルカリ金属イオン、アルカリ土類金属イオン等の金属イオン、アンモニウムイオン等の多原子イオン、錯イオンなどであってよい。無機塩の具体例としては、塩化リチウム、臭化リチウム、ヨウ化リチウム、硝酸リチウム、過塩素酸リチウム、及びチオシアン酸リチウムのようなリチウム塩、塩化カルシウム、臭化カルシウム、ヨウ化カルシウム、硝酸カルシウム、過塩素酸カルシウム、及びチオシアン酸カルシウムのようなカルシウム塩、塩化鉄、臭化鉄、ヨウ化鉄、硝酸鉄、過塩素酸鉄、及びチオシアン酸鉄のような鉄塩、並びに、塩化アルミニウム、臭化アルミニウム、ヨウ化アルミニウム、硝酸アルミニウム、過塩素酸アルミニウム、及びチオシアン酸アルミニウムのようなアルミニウム塩、塩化カリウム、臭化カリウム、ヨウ化カリウム、硝酸カリウム、過塩素酸カリウム、及びチオシアン酸カリウムのようなカリウム塩、塩化ナトリウム、臭化ナトリウム、ヨウ化ナトリウム、硝酸ナトリウム、過塩素酸ナトリウム、及びチオシアン酸ナトリウムのようなナトリウム塩、塩化亜鉛、臭化亜鉛、ヨウ化亜鉛、硝酸亜鉛、過塩素酸亜鉛、及びチオシアン酸亜鉛のような亜鉛塩、塩化マグネシウム、臭化マグネシウム、ヨウ化マグネシウム、硝酸マグネシウム、過塩素酸マグネシウム、及びチオシアン酸マグネシウムのようなマグネシウム塩、塩化バリウム、臭化バリウム、ヨウ化バリウム、硝酸バリウム、過塩素酸バリウム、及びチオシアン酸バリウムのようなバリウム塩、塩化ストロンチウム、臭化ストロンチウム、ヨウ化ストロンチウム、硝酸ストロンチウム、過塩素酸ストロンチウム、及びチオシアン酸ストロンチウムのようなストロンチウム塩などが挙げられる。

無機塩の含有量は、タンパク質の全量１００質量部に対して、１．０質量部以上、５．０質量部以上、９．０質量部以上、１５質量部以上又は２０．０質量部以上であってよい。無機塩の含有量は、タンパク質の全量１００質量部に対して、４０質量部以下、３５質量部以下又は３０質量部以下であってよい。

タンパク質溶液は、必要に応じて、各種の添加剤を更に含有していてもよい。添加剤としては、例えば、可塑剤、レベリング剤、架橋剤、結晶核剤、酸化防止剤、紫外線吸収剤、着色剤、フィラー、及び合成樹脂が挙げられる。添加剤の含有量は、タンパク質の全量１００質量部に対して、５０質量部以下であってよい。

曝露工程では、例えば上記のようにして得られた成形体前駆体を、相対湿度が９０％以上である環境（以下「曝露環境」ともいう）に曝露する。本発明における相対湿度は、湿度計（例えば（株）佐藤計量器製作所ハイエストＩＩ型湿度計 温度計付き７５４２−００）によって測定される相対湿度を２５℃での相対湿度に換算した値を意味する。

曝露環境の相対湿度は、成形体のタフネスを更に向上させる観点から、好ましくは、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９４．５％以上、９５％以上、９５．５％以上、９６％以上、９６．５％以上、又は９７％以上、より好ましくは、９８％以上、又は９９％以上である。この際、曝露環境に置かれている成形体前駆体（成形体中間体）の含水率が成形体中間体の全量を基準として８．５質量％以上、１０質量％以上、１３質量％以上、１５質量％以上、１７質量％以上、又は１８質量％以上となるように、曝露環境の相対湿度を調整することが好ましい。

曝露環境の温度は、特に制限されず、例えば０℃以上、５℃以上、１５℃以上、２０℃以上、又は２５℃以上であってよく、また、例えば１２０℃以下、１００℃以下、８０℃以下、６０℃以下、又は４０℃以下であってよい。

成形体前駆体を相対湿度が９０％以上である環境に曝露する時間は、特に限定されず、成形体前駆体の形状、大きさ、厚み等に応じて適宜選択されるが、例えば１０秒間以上、１０分間以上、１時間以上又は２４時間以上であってよく、また、例えば３３６時間以下又は１６８時間以下であってよい。

曝露環境の雰囲気は、特に制限されず、例えば大気雰囲気であってよい。曝露環境の圧力は、特に制限されず、例えば大気圧であってよく、加圧下であってもよい。

本実施形態に係る製造方法では、曝露工程の前に成形体前駆体を乾燥させてもよい（乾燥工程）。これにより、曝露工程前における成形体前駆体の含水量をゼロ乃至はゼロに近い値にまで低減させることが可能となる。その結果、曝露環境に置かれている成形体前駆体の含水率が、成形体前駆体（成形体中間体）の全量を基準として所望の値となるように、曝露環境の相対湿度を調整する操作が、曝露工程前の成形体前駆体の含水量が不明な場合（乾燥工程を行わない場合）に比して容易に実施され得る。曝露工程前の乾燥は、例えば真空乾燥、加熱乾燥又は真空加熱乾燥であってよい。

以上のように曝露工程を経ることにより、タフネスに優れる成形体が得られる。すなわち、本実施形態は、一態様において、タンパク質を含有する成形体を、相対湿度が９０％以上である環境に曝露することにより、当該成形体のタフネスを向上させる方法であるともいえる。

なお、上記のようにして成形体のタフネスを向上させる態様においても、曝露工程の前に成形体を乾燥させてもよい。これにより、前記した成形体の製造方法と同様に、曝露工程前の成形体の含水量をゼロ乃至はゼロに近い値にまで低減させることができる。その結果、曝露環境の相対湿度の調整操作が容易となる。

本実施形態は、一態様において、上述の製造方法により得られる成形体、すなわち、相対湿度が９０％以上である環境への曝露履歴を有するタンパク質を含有する成形体である。得られる成形体がフィルムである場合は、フィルムの厚みは、例えば３〜１０００μｍ、又は５〜１００μｍであってよい。得られる成形体がファイバーである場合は、ファイバーの平均径は、例えば５〜３００μｍ又は５〜５０μｍであってよい。

以下、実施例に基づき本発明を更に具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。

（実施例１）
天然の蚕（Bombyxmori）の繭を用い、D.N.Rockwood et al., Nature Protocols, vol.6 [10] (2011)に記載の手順に従ってフィルムを作製した。以下に手順の概要を示す。

まず、中身を除去した蚕の繭を小さく切断し、０．０２Ｍの炭酸ナトリウム（Ｎａ_２ＣＯ_３）水溶液で３０分間煮た。その後、得られた絹をＭｉｌｌｉＱ水で２０分間水洗いする工程を３回繰り返した。次いで、絹の水気を切って、乾燥させた。乾燥後の絹を９．３Ｍ臭化リチウム（ＬｉＢｒ）水溶液に浸し、６０℃で４時間程度かけて溶解させた。得られた溶液を透析膜に移し、７２時間程度透析を行った。透析後の溶液を４℃、１２７００Ｇで２０分間遠心分離し、不純物を取り除いた。これを数回繰り返した後に、溶液の上清（タンパク質濃度は７．４質量％）をプレートに流し、乾燥させた。このようにして蚕フィルム（絹タンパク質を含有するフィルム）を得た。得られた蚕フィルムの厚さは、およそ５５μｍ〜７５μｍであった。

別途、任意の湿度環境をつくるために、ＭｉｌｌｉＱ水と複数種類の塩とを用い、飽和塩水を準備した。使用した塩の種類及びその飽和塩水で実現される湿度環境を表１に示す（ＪＩＳ Ｂ ７９２０に記載された値を示す）。

次に、作製した蚕フィルムを１２ｍｍ×１２ｍｍの大きさに切断し、複数枚のフィルムを得た。その後、それら各フィルムを４０℃で２４時間真空乾燥した。次いで、図１（ａ），（ｂ）（図１（ｂ）は図１（ａ）のＩ−Ｉ線矢視断面図である）に示すように、支持体１の中央に設けられた窓部２に乾燥後のフィルム３を配置し、フィルム３の両端を固定部４で支持体１に固定して試料５を作製した。これと同様にして、フィルムの数と同数の試料５を作製した。作製した複数の試料５を、それぞれ異なる飽和塩水（湿度）環境に２４．２℃で１週間程度曝露した。この際、図１（ｃ）に示すように、各試料５をシリンジ６内に収容し、当該シリンジ６を飽和塩水７と共に密閉容器８内に収容することで、フィルム３を飽和塩水７に浸けずに大気雰囲気の各湿度環境に曝露した。また、上記の各湿度環境とは別に、４０℃で２４時間真空乾燥させた直後のフィルムをシリンジ６内に収容し、乾燥剤を敷き詰めた密閉容器８内（ただし、飽和塩水７は収容されていない）に収容することで相対湿度０％（ｄｒｙ）の環境を準備し、当該環境に上記の各湿度環境に曝露したものとは別の試料５を１週間程度曝露した。

上記のようにして互いに異なる湿度環境に曝露した複数の各フィルムを５ｍｍの長さにそれぞれ切断した。その後、引張試験機（ＥＺ−ＬＸ／ＴＲＡＰＥＺＩＵＭＵ、島津製作所）を用いて、切断後の各フィルムを長さ方向に引っ張り、応力（縦軸）−ひずみ（横軸）曲線（Ｓ−Ｓ曲線）を測定した。試験条件は、以下のとおりである。
引張速度：１０ｍｍ／ｍｉｎ
ロードセル：５００Ｎ
相対湿度：２５％〜３０％程度
温度：室温（２３〜２５℃程度）

得られたＳ−Ｓ曲線と横軸（ひずみ）とで囲まれた領域の面積として、タフネス（ＭＪ／ｍ^３）を算出した。曝露環境の相対湿度とフィルムのタフネスとの関係を図２に示す。

図２から明らかなように、絹タンパク質を含有する成形体（フィルム）は、相対湿度が９０％以上である環境に曝露されることで、そのタフネスが向上することが確認された。

（実施例２）
次に、組換えクモ糸タンパク質を用いて、以下のとおりフィルムを作製した。

＜１．組換えクモ糸タンパク質（組換えクモ糸フィブロイン：ＰＲＴ４１０）の製造＞
（クモ糸タンパク質をコードする遺伝子の合成、及び発現ベクターの構築）
ネフィラ・クラビペス（Ｎｅｐｈｉｌａ ｃｌａｖｉｐｅｓ）由来のフィブロイン（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：Ｐ４６８０４．１、ＧＩ：１１７４４１５）の塩基配列及びアミノ酸配列に基づき、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する改変フィブロイン（以下、「ＰＲＴ４１０」ともいう。）を設計した。

配列番号１で示されるアミノ酸配列は、ネフィラ・クラビペス由来のフィブロインのアミノ酸配列に対して、生産性の向上を目的としてアミノ酸残基の置換、挿入及び欠失を施したアミノ酸配列を有し、さらにＮ末端に配列番号７で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されている。

次に、ＰＲＴ４１０をコードする核酸を合成した。当該核酸には、５’末端にＮｄｅＩサイト及び終止コドン下流にＥｃｏＲＩサイトを付加した。当該核酸をクローニングベクター（ｐＵＣ１１８）にクローニングした。その後、同核酸をＮｄｅＩ及びＥｃｏＲＩで制限酵素処理して切り出した後、タンパク質発現ベクターｐＥＴ−２２ｂ（＋）に組換えて発現ベクターを得た。

ＰＲＴ４１０をコードする核酸を含むｐＥＴ２２ｂ（＋）発現ベクターで、大腸菌ＢＬＲ（ＤＥ３）を形質転換した。当該形質転換大腸菌を、アンピシリンを含む２ｍＬのＬＢ培地で１５時間培養した。当該培養液を、アンピシリンを含む１００ｍＬのシード培養用培地（表２）にＯＤ_６００が０．００５となるように添加した。培養液温度を３０℃に保ち、ＯＤ_６００が５になるまでフラスコ培養を行い（約１５時間）、シード培養液を得た。

当該シード培養液を５００ｍｌの生産培地（下記表３）を添加したジャーファーメンターにＯＤ_６００が０．０５となるように添加した。培養液温度を３７℃に保ち、ｐＨ６．９で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の２０％に維持するようにした。

生産培地中のグルコースが完全に消費された直後に、フィード液（グルコース４５５ｇ／１Ｌ、Ｙｅａｓｔ Ｅｘｔｒａｃｔ １２０ｇ／１Ｌ）を１ｍＬ／分の速度で添加した。培養液温度を３７℃に保ち、ｐＨ６．９で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の２０％に維持するようにし、２０時間培養を行った。その後、１Ｍのイソプロピル−β−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を培養液に対して終濃度１ｍＭになるよう添加し、ＰＲＴ４１０を発現誘導させた。ＩＰＴＧ添加後２０時間経過した時点で、培養液を遠心分離し、菌体を回収した。ＩＰＴＧ添加前とＩＰＴＧ添加後の培養液から調製した菌体を用いてＳＤＳ−ＰＡＧＥを行い、ＩＰＴＧ添加に依存したＰＲＴ４１０に相当するサイズのバンドの出現により、ＰＲＴ４１０の発現を確認した。

（ＰＲＴ４１０の精製）
ＩＰＴＧを添加してから２時間後に回収した菌体を２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）で洗浄した。洗浄後の菌体を約１ｍＭのＰＭＳＦを含む２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）に懸濁させ、高圧ホモジナイザー（ＧＥＡ Ｎｉｒｏ Ｓｏａｖｉ社）で細胞を破砕した。破砕した細胞を遠心分離し、沈殿物を得た。得られた沈殿物を、高純度になるまで２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）で洗浄した。洗浄後の沈殿物を１００ｍｇ／ｍＬの濃度になるように８Ｍ グアニジン緩衝液（８Ｍ グアニジン塩酸塩、１０ｍＭ リン酸二水素ナトリウム、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．０）で懸濁し、６０℃で３０分間、スターラーで撹拌し、溶解させた。溶解後、透析チューブ（三光純薬株式会社製のセルロースチューブ３６／３２）を用いて水で透析を行った。透析後に得られた白色の凝集タンパク質（ＰＲＴ４１０）を遠心分離により回収し、凍結乾燥機で水分を除き、凍結乾燥粉末を回収した。

得られた凍結乾燥粉末におけるＰＲＴ４１０の精製度は、粉末のポリアクリルアミドゲル電気泳動の結果をＴｏｔａｌｌａｂ（ｎｏｎｌｉｎｅａｒ ｄｙｎａｍｉｃｓ ｌｔｄ．）を用いて画像解析することにより確認した。その結果、ＰＲＴ４１０の精製度は約８５％であった。

＜２．クモ糸タンパク質フィルム（クモ糸フィブロインフィルム）の製造＞
（ドープ液の調製）
上述の組換えクモ糸フィブロイン（ＰＲＴ４１０）１８ｇ、純水５７ｇ、クリンソルブＰ−７ ２４ｇ、及びグリセリン１ｇを高圧マイクロリアクター（オーエムラボテック株式会社製、型式“ＭＭＪ−５００”）に投入した。リアクターの蓋を閉め、１００℃で４０分間加熱してクモ糸フィブロインを溶解させ、ドープ液を調製した（タンパク質の割合は１８質量％）。

（フィルムキャスト成形）
調製したドープ液を、塗工機（株式会社井元製作所製、型番“ＩＭＣ−７０Ｆ−Ｂ”）を使用して基板の表面にキャスト成形し、濡れ膜を作成した。基板として、厚さ７５μｍのポリエチレンテレフタレートフィルム（ＰＥＴ）表面にシリコーン化合物を固定化させた離形フィルム（帝人デュポンフィルム株式会社製、商標名“ピューレックス”、３８μｍ）を使用した。

（乾燥）
成形した濡れ膜を６０℃で２分間、１００℃で２分間静置させて乾燥した。その後、フィルムを基板から剥離した。このようにして得られたクモ糸フィブロインフィルム（クモ糸フィブロインを含有するフィルム）の厚みは、およそ１６μｍであった。

次に、作製したクモ糸フィブロインフィルムを１０ｍｍ×１５０ｍｍの大きさに切断し、３枚のフィルムを得た。用いた塩の種類をＮａＢｒ、ＮａＣｌ及びＫ_２ＳＯ_４とした他は、実施例１と同様に、それぞれ異なる飽和塩水（湿度）環境に４０℃で１日間程度曝露した。その後、恒温恒湿槽（ｅｓｐｅｃ社製、ＬＨＬ−１１３）で２０℃／６５％の条件下で３日程度静置した。

上記のようにして互いに異なる湿度環境下に曝露した各フィルムを、引張試験機（ＥＺ−ＬＸ／ＴＲＡＰＥＺＩＵＭＵ、島津製作所）を用いて長さ方向に引っ張り、応力（縦軸）−ひずみ（横軸）曲線（Ｓ−Ｓ曲線）を測定した。試験条件は、以下のとおりである。
引張速度：１０ｍｍ／ｍｉｎ
ロードセル：１Ｎ
相対湿度：６５％
温度：２０℃

得られたＳ−Ｓ曲線と横軸（ひずみ）とで囲まれた領域の面積として、タフネス（ＭＪ／ｍ^３）を算出した。曝露環境の相対湿度とフィルムのタフネスとの関係を表４に示す。

表４の結果から明らかなように、組み換えクモ糸タンパク質を含有する成形体（フィルム）は、相対湿度が９０％以上である環境に曝露されることで、タフネスが向上した成形体が得られることが確認された。

（実施例３）
次に、実施例２と同様にして得られた組換えクモ糸タンパク質を用いて、以下のとおりファイバーを作製した。

＜クモ糸タンパク質を含むファイバーの製造＞
（紡糸用ドープ液の調製）
ＤＭＳＯに４質量％の塩化リチウム（ＬｉＣｌ）を加えて９０℃に加熱した溶液に、上記クモ糸タンパク質の凍結乾燥粉末をタンパク質濃度が２０質量％になるように添加した。ローテーターで６時間溶解した後、ゴミと泡を取り除いた。溶液粘度は、５０００ｃＰ（センチポイズ）であった。これを紡糸液（ドープ液）とした。

（紡糸−延伸工程）
紡糸工程から延伸工程までは常法を用いて行った。紡糸液をシリンダーに充填し、０．３ｍｍ径のノズルからシリンジポンプを用い、２．０ｍＬ／ｈの速度で押し出し、１００質量％メタノール凝固液中で溶媒を抽出して未延伸糸を作製した。凝固液槽の長さは２５０ｍｍ、巻き取り速度は２．１ｍ／ｍｉｎとした。次いで、未延伸糸を５０℃の温水で４．５倍に延伸した。巻き取り速度は、９．３５ｍ／ｍｉｎとした。このようにして得られたクモ糸タンパク質を含む繊維の平均径は、およそ２１μｍ〜２５μｍであった。

次に、作製した繊維から２ｃｍの長さの繊維を３０本切り出した。用いた塩の種類をＫＣｌとＫ_２ＳＯ_４とした他は上述の蚕フィルムと同様にして、上記３０本の繊維の内の２０本をそれぞれ異なる飽和塩水（湿度）環境に２５℃で３日間程度曝露した。その後、恒温恒湿槽（ｅｓｐｅｃ社製、ＬＨＬ−１１３）で２０℃／６５％の条件下で１日程度静置した。また、残りの１０本の繊維を恒温恒湿槽で２０℃／６５％の条件下で４日程度静置した（曝露湿度条件の変化なし）。このようにして互いに異なる湿度環境に曝露した３０本の繊維について、上記蚕フィルムと同様の条件で引っ張り試験を行い、Ｓ−Ｓ曲線を作成し、タフネス（ＭＪ／ｍ^３）を算出した。曝露環境の相対湿度と繊維のタフネスとの関係を表５に示す。

表５の結果から明らかなように、組み換えクモ糸タンパク質を含有する成形体（ファイバー）は、相対湿度が９０％以上である環境に曝露されることで、タフネスが向上した成形体が得られることが確認された。

１…支持体、２…窓部、３…フィルム、４…固定部、５…試料、６…シリンジ、７…飽和塩水、８…密閉容器。

Claims (3)

1. タンパク質を含有する成形体前駆体を、相対湿度が９０％以上かつ温度が４０℃以下である環境に曝露して成形体を得る工程（ただし、前記成形体前駆体を延伸しながら前記環境に曝露する場合を除く）と、
   前記成形体前駆体を前記曝露する前に乾燥させる工程と、を備える成形体の製造方法であって、
   前記成形体がフィルム又はファイバーであり、
   前記タンパク質がクモ糸フィブロインである、成形体の製造方法（ただし、前記成形体が、フィブロインとは異なる高分子材料であって、ラット腹腔内での分解期間が４日以上３６０日以下であり、ヤング率が０．４ＭＰａ以上４，０００ＭＰａ以下である、高分子材料を含む場合を除く）。
2. 相対湿度が９０％以上かつ温度が４０℃以下である環境に曝露する（ただし、延伸しながら前記環境に曝露する場合を除く）履歴を有するタンパク質を含有する成形体であって、
   前記曝露する前に乾燥させ、
   前記成形体がフィルム又はファイバーであり、
   前記タンパク質がクモ糸フィブロインである、成形体（ただし、前記成形体が、フィブロインとは異なる高分子材料であって、ラット腹腔内での分解期間が、４日以上３６０日以下であり、ヤング率が、０．４ＭＰａ以上４，０００ＭＰａ以下である、高分子材料を含む場合を除く）。
3. タンパク質を含有する成形体を、相対湿度が９０％以上かつ温度が４０℃以下である環境に曝露する工程（ただし、前記成形体を延伸しながら前記環境に曝露する場合を除く）と、
   前記成形体を前記曝露する前に乾燥させる工程と、を備え、
   前記成形体がフィルム又はファイバーであり、
   前記タンパク質がクモ糸フィブロインである、成形体のタフネスを向上させる方法（ただし、前記成形体が、フィブロインとは異なる高分子材料であって、ラット腹腔内での分解期間が、４日以上３６０日以下であり、ヤング率が、０．４ＭＰａ以上４，０００ＭＰａ以下である、高分子材料を含む場合を除く）。

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