JP6982319B2 - 微生物ペプチドの検出 - Google Patents
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Description
(a)対象体、物質、又は試料をLCOと接触させること;
(b)a)のLCOの少なくとも1つの信号を検出すること;及び
(c)b)における前記検出信号に基づいて、塩基、前記対象体上又は前記試料中の1つ以上の微生物ペプチド又は微生物の有無、アイデンティティー、及び/又は量を決定することを含む。
(a)対象体、物質、又は試料をLCOと接触させること;
(b)a)のLCOの少なくとも1つの信号を検出すること;及び
(c)b)における前記検出された少なくとも1つの信号に基づいて、前記対象体上又は前記物質若しくは試料中の1つ以上の微生物ペプチド、微生物、又は微生物由来化合物の有無、アイデンティティー、及び/又は量を決定することを含む、1つ以上の微生物、微生物ペプチド、又は微生物由来化合物を検出、同定、及び/又は定量する方法である。
(a’)対象体、物質、又は試料をLCOと接触させること;
(b’)a’)のLCOの少なくとも1つの信号を検出すること;及び
(c’)b’)において得られた前記検出された少なくとも1つの信号を、微生物ペプチドの既知試料の検出信号のデータを含むデータベースと比較することを含む、1つ以上の微生物、微生物ペプチド、又は微生物由来化合物を生じる感染症を診断する且つ原因微生物を同定する方法である。
(a’’)対象体、物質、又は試料の前記少なくとも1つの検出信号を既知試料の検出信号のデータを含むデータベースと比較すること;
(b’’)前記検出信号を前記データベースの以前の試料のデータに関連させて統計分析すること;並びに
(c’’)ステップ(b’’)から得られた結果に基づいて同定及び/又は定量することをさらに含む。
a’’’)データエクスポート機能
b’’’)本発明によるLCO相互作用のデータが入っているデータベースとのデータ比較機能;並びに
c’’’)グラフ描画及び/又はデータ提示のための機能を含む。
a.微生物ペプチドの検出及び2つの微生物ペプチドの区別
1mlのi)スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)ステムペプチド(シグマ、30%体積/体積アセトニトリル/PBS中2mM);ii)スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)ペンタグリシンペプチド(シグマ、100%体積/体積ギ酸/PBS中2mM);iii)PBS中のスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)8325−4株の細胞(Novick,R.1967 Virology.33:1,p155−66)(トリプチックソイブロス(TSB)中での一晩培養物を1ml遠心分離することによって調製);及びiv)PBS、pH7.4が入ったチューブを調製した。図1は、抽出ステムペプチド(…・)、抽出ペンタグリシンペプチド(……)、スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)細胞(−−)、及びPBS(−−−−)にh−HTA−Glu(最終濃度3μM)を加えた後に記録した励起スペクトル(300〜550nm)を示す。PBS対照と比較して、ステムペプチド、ペンタグリシンペプチド、及び完全なスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)細胞はすべて、光学的特徴の変化を示し、その変化は異なる微生物ペプチドを区別するのに用いることができる。RFU=相対蛍光単位。
スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)(シグマ)及びミクロコッカス・ルテウス(M.luteus)(シグマ)から抽出されたペプチドグリカンの1mlの懸濁液(1mg/ml)が入った、凍結されたチューブを解凍した。h−HTA−Glu(最終濃度3μM)を加えた後に、チューブをインキュベーションし(37℃、1時間)、その後励起スペクトル(300〜550nm)を記録した(図2A)。スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)(−−−−)と混ぜたh−HTA−Gluと、ミクロコッカス・ルテウス(Micrococcus luteus)(ミクロコッカス・ルテウス(M.luteus))(……)のペプチドグリカンと混ぜたh−HTA−GluのピークRFUは明らかに互いに異なり、且つ陰性対照(蒸留水中3μM h−HTA−Glu)(−−)と異なった。正規化したスペクトルをプロットし、各スペクトルの最大値を1.0の設定することによって、スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)及びミクロコッカス・ルテウス(M.luteus)のペプチドグリカンのスペクトルの性質の変化は、陰性対照と比較して明白であった(図2B)。したがって、蛍光スペクトルは相異なる種のペプチドグリカンを区別する方法を提供する。
グラム陽性菌の細胞壁はペプチドグリカンペプチドの抽出に優れた供給源として役立つ一方で、グラム陰性菌のペリプラズムの薄いペプチドグリカン層は容易に精製のために利用できない。市販のグラム陰性菌のペプチドグリカンの非存在下において、ペプチドグリカンペプチド架橋結合に対するアンピシリンの効果のため、アンピシリンでの処理を、ペプチドグリカン構造を変えるのに用いることができる。この実験では、エシェリキア・コリ(Escherichia coli)(エシェリキア・コリ(E.coli))細菌を利用し、正常なペプチドグリカン構造や変化したペプチドグリカン構造を表すようにさまざまな濃度のアンピシリンで処理せずに又は処理して、h−HTA−Gluがi)グラム陰性菌やii)グラム陰性菌のペプチドグリカンペプチドに結合するかどうか分析した。100μg/mlアンピシリン(シグマ)から始まる段階希釈(100μl LB培地で1:1)を96ウェルプレートで調製した。各ウェルに、6μM h−HTA−Gluを含有するLBに1:50体積/体積希釈したエシェリキア・コリ(E.coli)分離株番号12(カロリンスカ大学病院の腎盂腎炎の小児から入手、Kai−Larsen et al.2010 PLoS Pathogens 6:7,e1001010で論文報告)の一晩培養物を100μl加えた。96ウェルプレートでのアンピシリンに対する添加エシェリキア・コリ(E.coli)の希釈効果により、最大アンピシリン濃度は50pg/mlであった。ブランク(3μM h−HTA−Glu含有LB中100μg/mlアンピシリン、細菌なし)も含めた。37℃で20時間インキュベーションした後、励起スペクトル(300〜550nm)を記録した。図3Aは、50pg/ml(−−−−−)、25pg/ml(− −)、12.5pg/ml(−− −−)、6.25pg/ml(−−−−)、及び3.13pg/ml(…・)アンピシリンに供したエシェリキア・コリ(E.coli)細胞と混ぜたh− HTA−Glu及びブランク(……)の正規化した励起スペクトルを示す。励起ピークのより長い波長へのシフトは、h−HTA−Gluがエシェリキア・コリ(E.coli)細菌に結合できることを示す。
真菌類の検出のためのLCOの使用を分析するために、p−HTEA(最終濃度3μM)を、カンジダ・アルビカンス(Candida albicans)(カンジダ・アルビカンス(C.albicans))、ATCC株MYA−2876)の一晩培養物の1%体積/体積接種菌を含有する2mlの酵母ポテトデキストロース(YPD)培地に加えた。ボルテックスした後、200μlアリコートを、陰性対照(3μM p−HTEA含有YPD、カンジダ・アルビカンス(C.albicans)なし)とともに96ウェルプレートに移した。プレートを加湿雰囲気で37℃にて48時間インキュベーションし、励起スペクトル(300〜500nm)を記録した。図4Aは、真菌類を含まないYPD(……)と比較して、YPD(−−−−−)中のカンジダ・アルビカンス(C.albicans)と混合したp−HTEAの小さいがはっきりとしたスペクトルのシフトを示す。次いで、真菌類細胞層を乱さないように培地を注意深く各ウェルから除去し、陽性対照を除いて、ウェルあたり200μlのヒト血液を加えた。陽性対照には新鮮なYPD培地を加えた。再度励起スペクトルを記録した。図4Bは、血液中のカンジダ・アルビカンス(C.albicans)(−−−−−)と混合したp−HTEAからの顕著な信号に対して、カンジダ・アルビカンス(C.albicans)を含まない血中p−HTEA(……)からの信号は非常に低かったことを示す。まとめると、これは、実験室条件下及びヒト試料を用いた酵母カンジダ・アルビカンス(C.albicans)を検出するためのLCO p−HTEAの使用を実証する。
細菌株の検出及び同定のためのLCOの使用は、近縁のスタフィロコッカス属(Staphylococci)の種の分離株を用いて示した。カロリンスカ大学病院から入手したスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)(HY−886株、HY−836/91株、HY−686株、HY−834株、HY−842株)及びスタフィロコッカス・エピデルミディス(Staphylococcus epidermidis)(スタフィロコッカス・エピデルミディス(S.epidermidis))、HY−840株、HY−822/1株、HY−839/91株、HY−844/1株、HY−842/1株、HY−829株、HY−832/10株)の臨床分離株のトリプチックソイブロス(TSB、シグマ)中での一晩培養物から100μlを10ml TSBで希釈し、次いでチューブに分注して1mlアリコートとし、h−HTA−Gluを2μMの最終濃度で加えた。混合した後に、200μlの各培養物を3連で96ウェルプレートに加え、37℃で18〜24時間インキュベーションした後、励起スペクトル(300〜550nm)を記録した。図5Aは、励起スペクトルのヒートマップ表示及びブレイ・カーティス階層的クラスタリング分析を示し、後者は、スタフィロコッカス・エピデルミディス(S.epidermidis)株を左方向に(……)、スタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)株を右方向(−−−−)にクラスタリング化し、2つのスタフィロコッカス属(Staphylococci)の種はっきりと区別する。図5Bは、励起スペクトルの主成分分析(PCA)を示し、グラフの上部にスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)(○)株の、下部にスタフィロコッカス・エピデルミディス(S.epidermidis)(●)株のクラスタリングを示している。したがって、階層的クラスタリング分析及びPCAは、2つの独立したLCOに基づく細菌種区別のための分析方法を表す。図5Cは、機械学習が入院患者から分離された未知の細菌株の同定を予測するのに使用することができることを示す。機械学習プロセス・方法由来線形判別予測が、既知のスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)株及び既知のコアグラーゼ陰性ブドウ球菌(CNS)株について示されている。未知の株の機械学習プロセス由来線形判別予測をスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)及びCNSと同じグラフに追加した際、我々は、CNS株として分類された陽性線形判別予想をもつ未知の株及びスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)として分類された陰性線形判別予想をもつ株を見出した。
、25:75(□)、及び0:100(○)の比で混ぜ、h−HTA−Glu(最終濃度3μM)を加えた。37℃で30分間インキュベーションした後、200μlの各試料を96ウェルプレートに移した。励起スペクトル(300〜550nm)を記録し、PCA分析を行った。図5Dは、PCAグラフの底部に位置する、純粋なスタフィロコッカス・アウレウス(S.aureus)を含む試料を示す。混合培養中でスタフィロコッカス・エピデルミディス(S.epidermidis)の量を増加させていくと、位置が予測可能なパターンでPC2軸に沿って上に移動し、純粋なスタフィロコッカス・エピデルミディス(S.epidermidis)試料の一番上の位置に達する。これは、h−HTA−Gluが混合試料に存在する細菌を同定し、且つそれら細菌の相対濃度を決定する実現可能性を明らかに示す。
遺伝的なばらつきに起因して、1つの細菌株のバリアントが多数存在する。特定遺伝子の明らかな変異を除いて同一の遺伝子型を有するこれらの株は、感染症の病態生理に大きな影響を及ぼしうる、タンパク質、微生物化合物、及び病原性因子の異なる発現パターンを示す。図6Aは、28℃でインキュベーションした、塩を含まない、コンゴーレッド含有LB寒天プレート上で見られたサルモネラ・エンテリティディス(Salmonella enteritidis)(S.enteritidis)3934株(Solano et al.1998 J Clin Microbiol.36(3):674−8)の赤く、乾いて、粗い(rdar)コロニーを示す。これは、カーリ及びセルロースを発現する細菌の特徴的な形態である。カーリを発現できない変異株(3934ΔcsgA)、セルロースを発現できない変異株(3934ΔbcsA)、又は両方を発現できない変異株(3934ΔcsgD)(Laiasa ei al 2005 Mol Microbiol.58(5):1322−39)は、明らかに異なるコロニー形態を示す。
Claims (28)
- 1つ以上の微生物ペプチドをインビトロで検出、同定、及び/又は定量する方法であって、以下の:
(a)対象体、物質、又は試料を発光性共役オリゴチオフェン(LCO)と接触させるステップであって、前記LCOが、四量体〜十五量体LCOであるステップ;
(b)(a)の前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)の少なくとも1つの信号を検出するステップ;及び
(c)(b)における少なくとも1つの検出信号に基づいて、前記対象体上又は前記物質若しくは試料中の前記1つ以上の微生物ペプチドの有無、アイデンティティー、及び/又は量を決定するステップ
を備えることを特徴とする方法。 - 1つ以上の微生物ペプチドを生じる感染症をインビトロで同定する方法であって、以下の:
(a’)対象体、物質、又は試料を発光性共役オリゴチオフェン(LCO)と接触させるステップであって、前記LCOが、四量体〜十五量体LCOであるステップ;
(b’)(a’)の前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)の少なくとも1つの信号を検出するステップ;及び
(c’)(b’)において得られた少なくとも1つの検出信号をデータベースと比較するステップであって、前記データベースが、微生物ペプチドの既知試料の検出信号のデータを含むステップ
を備えることを特徴とする方法。 - 請求項1又は2に記載の方法において、前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)が、微生物ペプチドに結合しているか、微生物ペプチドと接触しており、LCOの結合又は接触が、感染症の同定のためにデータベースと比較できる独自の信号を生じさせることを特徴とする方法。
- 請求項2又は3に記載の方法において、前記データベースが、少なくとも1つの微生物ペプチドの以前に得られた試料のデータを含み、前記データが、少なくとも1つの微生物ペプチドの前記以前に得られた試料の検出信号を含み、前記データが、複数の以前に得られた試料の平均又は単一試料のデータであることを特徴とする方法。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法において、以下の:
(a’’)前記対象体、物質、又は試料の前記少なくとも1つの検出信号を既知試料の検出信号のデータを含むデータベースと比較するステップ;
(b’’)前記少なくとも1つの検出信号を前記データベースの以前の試料のデータに関連させて統計分析するステップ;及び
(c’’)ステップ(b’’)から得られた結果に基づいて同定及び/又は定量するステップ
をさらに備えることを特徴とする方法。 - 請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法において、前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)が、五量体又は七量体発光性共役オリゴチオフェン(LCO)であることを特徴とする方法。
- 請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法において、前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)が、チオフェン単量体及び/又は1つ以上の官能基若しくは側鎖を有するチオフェン単量体を含むことを特徴とする方法。
- 請求項7に記載の方法において、前記官能基又は側鎖が、カルボン酸、酢酸、プロピオン酸、アミノ酸、アミノ酸誘導体、神経伝達物質、単糖類、多糖類、核酸及び誘導体、並びにそれらの組み合わせからなる群から選択されることを特徴とする方法。
- 請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法において、前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)が、少なくとも1つのチオフェン−構成単位を含み、前記チオフェン−構成単位が、インドール、セレノフェン、チアゾール、フェニルエン、フルオレン、ピロール、キノキサリン、又はベンゾジチアゾールからなる群から選択される他の複素環構成単位と交換されることを特徴とする方法。
- 請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法において、前記少なくとも1つの検出信号が、光信号、電気信号、電気化学信号、又は磁気信号であることを特徴とする方法。
- 請求項1〜10のいずれか一項に記載の方法において、細菌、ウイルス、藻類、又は真菌類の微生物ペプチドを検出、同定、及び/又は定量するためのものであることを特徴とする方法。
- 請求項1〜11のいずれか一項に記載の方法において、前記方法が、少なくとも2つの相異なる微生物、微生物ペプチド、微生物由来化合物、細菌、ウイルス、藻類、又は真菌類を区別することができることを特徴とする方法。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載の方法において、前記方法が、グラム陽性菌とグラム陰性菌を区別することができることを特徴とする方法。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法において、前記方法が、フィルミクテス門(Firmicutes)、プロテオバクテリア門(Proteobacteria)、クラミジア門(Chlamydiae)、アクチノバクテリア門(Actinobacteria)、及びスピロヘータ門(Spirochaetes)のうち少なくとも1つを検出、同定、及び/又は定量することを特徴とする方法。
- 請求項1〜14のいずれか一項に記載の方法において、前記方法が、フィルミクテス門(Firmicutes)とプロテオバクテリア門(Proteobacteria)を区別することができることを特徴とする方法。
- 請求項1に記載の方法において、前記方法が、ボルデテラ属(Bordetella)、ボレリア属(Borrelia)、ブルセラ属(Brucella)、カンピロバクター属(Campylobacter)、エシェリヒア属(Escherichia)、フランシセラ属(Francisella)、ヘモフィルス属(Haemophilus)、ヘリコバクター属(Helicobacter)、レジオネラ属(Legionella)、レプトスピラ属(Leptospira)、ナイセリア属(Neisseria)、シュードモーナス属(Pseudomonas)、リケッチア属(Rickettsia)、サルモネラ属(Salmonella)、シゲラ属(Shigella)、シェワネラ属(Shewanella)、ウレアプラズマ属(Ureaplasma)、トレポネーマ属(Treponema)、ビブリオ属(Vibrio)、エルシニア属(Yersinia)、ストレプトコッカス属(Streptococcus)、クラミジア属(Chlamydia)、クロストリジウム属(Clostridium)、コリネバクテリウム属(Corynebacterium)、エンテロコッカス属(Enterococcus)、リステリア属(Listeria)、スタフィロコッカス属(Staphylococcus)、ミクロコッカス属(Micrococcus)、カンジダ属(Candida)、マイコバクテリウム属(Mycobacterium)、又はマイコプラズマ属(Mycoplasma)からなる群から選択される属の細菌を検出、同定、及び/又は定量することを特徴とする方法。
- 請求項1に記載の方法において、前記方法が、ボルデテラ・パーツシス(Bordetella pertussis)、ボレリア・ブルグドルフェリ(Borrelia burgdorferi)、ブルセラ・アボルタス(Brucella abortus)、ブルセラ・カニス(Brucella canis)、ブルセラ・メリテンシス(Brucella melitensis)、ブルセラ・スイス(Brucella suis)、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)、カンジダ・アルビカンス(Candida albicans)、カンジダ・グラブラータ(Candida glabrata)、エシェリキア・コリ(Escherichia coli)、フランシセラ・ツラレンシス(Francisella tularensis)、ヘモフィルス・インフルエンザ(Haemophilus influenzae)、ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)、レジオネラ・ニューモフィラ(Legionella pneumophila)、レプトスピラ・インタロガンス(Leptospira interrogans)、ミクロコッカス・ルテウス(Micrococcus luteus)、ナイセリア・ゴノレア(Neisseria gonorrhoeae)、ナイセリア・メニンジティディス(Neisseria meningitides)、シュードモーナス・エルジノーサ(Pseudomonas aeruginosa)、リケッチア・リケッチイ(Rickettsia rickettsii)、サルモネラ・エンテリティディス(Salmonella enteritidis)、サルモネラ・チフィ(Salmonella typhi)、サルモネラ・チフィリウム(Salmonella typhimurium)、シゲラ・ソネイ(Shigella sonnei)、トレポネーマ・パリズム(Treponema pallidum)、ビブリオ・コレラエ(Vibrio cholerae)、エルシニア・ペスティス(Yersinia pestis)、クロストリジウム・ボツリヌム(Clostridium botulinum)、クロストリジウム・ディフィシル(Clostridium difficile)、クロストリジウム・パーフリンゲンス(Clostridium perfringens)、クロストリジウム・テタニ(Clostridium tetani)、コリネバクテリウム・ジフテリアエ(Corynebacterium diphtheriae)、エンテロコッカス・フェカリス(Enterococcus faecalis)、エンテロコッカス・フェシウム(Enterococcus faecum)、リステリア・モノサイトゲネス(Listeria monocytogenes)、スタフィロコッカス・アウレウス(Staphylococcus aureus)、スタフィロコッカス・エピデルミディス(Staphylococcus epidermidis)、スタフィロコッカス・サプロフィティカス(Staphylococcus saprophyticus)、ストレプトコッカス・アガラクティエ(Streptococcus agalactiae)、ストレプトコッカス・ニューモニエ(Streptococcus pneumoniae)、ストレプトコッカス・ピオゲネス(Streptococcus pyogenes)、クラミジア・ニューモニエ(Chlamydia pneumoniae)、クラミジア・シッタシ(Chlamydia psittaci)、クラミジア・トラコマチス(Chlamydia trachomatis)、マイコバクテリウム・レプラエ(Mycobacterium leprae)、マイコバクテリウム・ツベルクローシス(Mycobacterium tuberculosis)、及びマイコプラズマ・ニューモニエ(Mycoplasma pneumoniae)からなる群から選択される細菌を検出、同定、及び/又は定量することを特徴とする方法。
- 請求項1〜17のいずれか一項に記載の方法において、前記方法が、連続的に実行されうることを特徴とする方法。
- 請求項1〜18のいずれか一項に記載の方法において、前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)が、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリアクリルアミド、及びポリビニルピロリドンからなる群から選択される1つ以上からさらに構成される少なくとも1つのスペーサーを含むことを特徴とする方法。
- 請求項1〜19のいずれか一項に記載の方法において、前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)が、金属、半導体材料、及びポリマー化合物からなる群から選択される1つ以上から構成される少なくとも1つの有機又は無機材料に結合していることを特徴とする方法。
- 処理能力を有する装置によって実行されたときに請求項5のステップ(b’’)の前記分析を行うように適合された命令を有するコンピューター可読記録媒体を含むコンピュータープログラム製品。
- 請求項21に記載のコンピュータープログラム製品において、前記コンピュータープログラム製品が、得られた結果について比率分析又は多変量解析又は機械学習を行うように適合されたことを特徴とするコンピュータープログラム製品。
- 請求項22に記載のコンピュータープログラム製品において、前記多変量解析が、主成分分析(PCA)、及び階層的クラスタリングからなる群から選択される、及び/又は、前記機械学習が、回帰法であることを特徴とするコンピュータープログラム製品。
- 請求項23に記載のコンピュータープログラム製品において、前記機械学習が、線形判別分析であることを特徴とするコンピュータープログラム製品。
- 請求項21〜24のいずれか一項に記載のコンピュータープログラム製品において、発光性共役オリゴチオフェン(LCO)と接触した試料から集められた検出信号のアルゴリズム変換/数学的変換/統計的変換を実行する及び/又は発光性共役オリゴチオフェン(LCO)と接触した試料からの検出信号をユーザーに提示するように適合された命令を有するコンピューター可読記録媒体を含むことを特徴とするコンピュータープログラム製品。
- 請求項25に記載のコンピュータープログラム製品において、
a’’)データエクスポート機能;
b’’)先行請求項のいずれかに記載の発光性共役オリゴチオフェン(LCO)相互作用のデータが入っているデータベースとのデータ比較機能;及び
c’’)グラフ描画及び/又はデータ提示のための機能
を含むことを特徴とするコンピュータープログラム製品。 - 請求項1〜20のいずれか一項に言及された前記発光性共役オリゴチオフェン(LCO)並びに1つ以上の微生物ペプチドの検出、同定、及び/又は定量にその発光性共役オリゴチオフェンを使用するための取扱説明書を含むキット。
- 1つ以上の微生物ペプチドをインビトロで検出、同定、及び/又は定量するための少なくとも1つの発光性共役オリゴチオフェン(LCO)の使用。
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