JP7249346B2 - ツムスタチンアッセイ - Google Patents
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Description
- ストレプトアビジン被覆ウェルプレート、
- ビオチン化ペプチドPGLKGKRGDS-L-ビオチン(配列番号:6)(配列中:Lは任意選択的なリンカーである)、
- サンドイッチイムノアッセイにおいて使用される二次抗体、
- 配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)を含むキャリブレーターペプチド、
- 抗体ビオチン化キット
- 抗体HRP標識キット
- 抗体放射性標識キット
- アッセイ可視化キット、のいずれか1つと、を具備するアッセイキットに関する。
定義
実験に使用された試薬はいずれも、米国ミズーリ州のセントルイスのシグマアルドリッチ社(Sigma Aldrich)、および米国ニュージャージー州ホワイトハウスステーションのメルク社(Merck)などの企業製の高品質基準であった。免疫化およびアッセイの開発に使用された合成ペプチドは、米国ニュージャージー州のゲンスクリプト社(Genscript)から購入された。
アミノ酸配列1426’PGLKGKRGDS’1436(配列番号:1)は、IV型コラーゲンのα3鎖に位置する。この配列は、ヒトのツムスタチンに対して生成される。ラットではアミノ酸(AA)6位にミスマッチがあり、マウスではAA5位にミスマッチがある。フロイントの不完全アジュバントを使用して、4~6週齢のBalb/Cマウスに200μLの乳化抗原および50μgの免疫原性ペプチド(PGLKGKRGDS-GGC-KLH;配列番号:5)を皮下注射することにより、免疫を開始した。予防接種は、安定した血清抗体価レベルに到達するまで、2週間ごとに繰り返した。血清力価が最も高いマウスを融合用に選択し、1か月間休息させた。続いて、細胞融合用に脾臓を単離する3日前に、マウスを0.9%NaCl溶液100μL中の50μg免疫原性ペプチドで静脈内追加免疫した。ハイブリドーマ細胞を作製するため、マウス脾臓細胞は、Gefter et alにより記載されたようにSP2/0骨髄腫細胞と融合された。ハイブリドーマ細胞を、半固体培地法を使用して、培養皿にクローン化した。次いで、クローンを96ウェルマイクロタイタープレートに平板播種し、更に増殖させ、限界希釈法を適用してモノクローナル増殖を促進した。ストレプトアビジンで被覆されたプレートに対して実施された間接ELISAを、上清の反応性スクリーニングに使用した。PGLKGKRGDS-K-ビオチン(配列番号:6)をスクリーニングペプチドとして使用し、標準ペプチドPGLKGKRGDS(配列番号:1)をクローンの特異性の更なる試験に使用した。ハイブリドーマ細胞から上清を収集し、製造元の指示書に従って、HiTrapアフィニティカラム(英国バッキンガムシャー州リトルチャルフロントのGEヘルスケアライフサイエンス社(GE Healthcare Life Science)を使用して精製した。マウスにおいて実施されたモノクローナル抗体の作製は、承認番号2013-15-2934-00956下で国家当局(動物実験検査局(Animal Experiments Inspectorate))によって承認された。全ての動物を、動物福祉ガイドラインに従って、処置した。
標準ペプチドに対するネイティブの反応性およびペプチド親和性は、商業供給者(米国バージニア州22602のバレーバイオメディカル(Valley Biomedical)から購入したヒト血清およびヒト尿を使用して評価した。抗体特異性の試験は、予備アッセイにて切断ペプチド(GLKGKRGDS;配列番号:3)および伸長ペプチド(LPGLKGKRGDS;配列番号:2)を使用して行った。モノクローナル抗体のアイソタイプは、Clonotyping System-HRPキット、カタログ番号5300-05(米国アラバマ州バーミングハムのサザンバイオテック社(Southern Biotech))を使用して判別した。
TUM競合的ELISAの手順は、以下の通り:
96ウェルのストレプトアビジン被覆ELISAプレート(ロッシュ社(Roche)製、カタログ番号11940279)を、アッセイバッファー(25mM Tris-BTB2g、NaCl/L、pH8.0、100μL/ウェル)内で溶解された10ng/mLビオチン化ペプチドPGLKGKRGDS-K-ビオチン(配列番号:6)で被覆し、暗所で20℃、300rpmにて30分間振盪させて、インキュベートした。プレートを洗浄バッファー(20mM TRIS、50mM NaCl、pH7.2)にて5回洗浄した。続いて、標準ペプチドまたは試料20μLを適切なウェルに加え、7ng/mLホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)標識モノクローナル抗体溶液100μLを加えた。プレートを振盪させながら20℃で1時間インキュベートし、続いて洗浄バッファー中で洗浄した。最後に、3,3’,5,5’-テトラメチルベンジニジン(TMB)(Kem-En-Tecカタログ番号438OH)100μLを添加し、20℃にて15分間インキュベートした。TMBの酵素反応を停止するため、停止液(1%H2SO4)100μLを加えた。プレートを、ELISAリーダー(米国カリフォルニア州バーサマックスのモレキュラーデバイス社(Molecular Devices)で、650nmを基準として用い、450nmで分析した。標準曲線は、標準ペプチドの段階希釈により実施し、4パラメータの数学的適合モデルを使用して、プロットした。標準濃度は、0ng/mL、0.3125ng/mL、0.625ng/mL、1.25ng/mL、2.5ng/mL、5ng/mL、10ng/mL、および20ng/mLであった。各プレートには、アッセイ間変動をモニターするための、5つのキット対照が含まれていた。全ての試料は、アッセイの範囲内で測定した。測定範囲の下限(LLMR)未満の試料はいずれも、LLMRの値として報告した。
4つのヒト血清およびヒト尿試料の2倍希釈を用いて、直線性を評価した。直線性は、未希釈試料の回収率(パーセンテージ)として計算した。
2つの異なるコホートからの血清試料中のTUMを測定した。両方のコホートは、商業ベンダー(米国カリフォルニア州カルバーシティのプロテゲネックス社(Proteogenex)から得たものである。コホート1には、IPF、COPD、非小細胞肺癌(NSCLC)と診断された患者と、症候性疾患または慢性疾患に罹患していない結腸鏡検査陰性の対照とが、含まれていた。患者の人口統計を、表1に示す。コホート2には、癌の病期(I期、II期、III期およびIV期)にありNSCLCと診断された患者と、症状または慢性疾患のない結腸鏡検査陰性対照とが、含まれていた。このコホートの患者の人口統計は、表2に見出すことができる。
血清試料中のTUMレベルは、ダンの多重比較検定(ノンパラメトリックデータ)用に調整されたクラスカルウォリス(Kruskal-Wallis)を使用して比較した。結果は、平均値±平均値の標準誤差(SEM)として表されている。
2つの異なる患者コホートにおいてTUMを測定した。コホート1(患者18例)には、ループス腎炎(LN)および健常対照が含まれていた。TUMレベルは、血清試料および尿試料の両方について測定した。コホート2(患者126例)には、全身性エリテマトーデス(SLE)および健常対照が含まれていた。TUMレベルは、血清試料についてのみ測定した。コホート1の患者の人口統計を、下表3に示す。
クローンの特性評価
競合的ELISAで、最良の抗体産生ハイブリドーマを、標準ペプチドおよび天然物質に対する反応性に関してスクリーニングした。クローンNBH134#102-3GFを、反応性に基づき、開発されたアッセイ用に選択した。このクローンは、IgG1サブタイプであると断定された。ヒト血清および尿において生来的な反応性が観察された(図1)一方、伸長ペプチド、切断ペプチド、ナンセンス標準ペプチド、およびナンセンスコーターに対する反応性は全く見られなかった(図2)。
TUM ELISAアッセイを評価するための、一連の技術検証を実施した。検証データの概要は、表4に見出すことができる。アッセイの測定範囲(LLMR-ULMR)は、0.26~9.92ng/mLと算定した。アッセイ間変動およびアッセイ内変動はそれぞれ、8.04%および10.96%であった。ヒト試料の直線性の観察は、ヒト血清では無希釈ないし1:4であるとされ、ヒト尿では無希釈ないし1:2であるとされた。スパイクにより、ヒト血清中のトグ(tog)標準ペプチド、およびヒト血清中のヒト血清を回収する。結果として、平均回収率はそれぞれ90%および99%となった。ヘモグロビン、脂質またはビオチンのいずれも、ヒト血清中のTUM検体の測定を妨げなかった。4℃および20℃(102.4%および80.1%)でのヒト血清試料の長期保管時と、凍結/解凍サイクル(80.8%)の両方において、検体安定性は許容範囲内であった。
2つの異なる患者コホート(コホート1およびコホート2)においてTUMを測定した。
2つの異なる患者コホート(コホート1およびコホート2)においてTUMを測定した。コホート1における健常対照、およびループス腎炎(LN)患者由来の血清試料および尿試料中のTUMを測定した(図5を参照)。コホート2における健常対照および全身性エリテマトーデス(SLE)患者由来の血清試料中のTUMを測定した。結果を図6に示す。TUMレベルは、全身性エリテマトーデス(SLE)患者およびループス腎炎(LN)患者の血清では、最大2倍上方制御され、LN患者の尿では、10倍上方制御されることが判明した。
ツムスタチンの検出を目的として、モノクローナル抗体を用いた新規な競合的ELISA(本明細書中では「TUM ELISA」と呼ばれる)が、開発されてきた。このアッセイは、技術的に堅牢であり、アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対して特異的であった。TUM断片は、ヒト血清および尿中で検出可能とされた。NSCLC患者では、IPF、COPDおよび健常対照と比較して、有意に上昇していることが判明した。SLE患者またはLN患者では、健常対照と比較して有意に上昇し、糖尿病性腎疾患のラットモデルでは有意に上昇した。
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Claims (13)
- 患者の生体液試料中の、N末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)を有するツムスタチンを定量化するためのイムノアッセイ法であって、
前記患者から得られた生体液試料を、前記N末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対し特異的に反応するモノクローナル抗体に接触させることと、
前記モノクローナル抗体と前記N末端アミノ酸配列との間の結合量を算定することと、を含み、
前記モノクローナル抗体が、前記N末端アミノ酸配列のN延在伸長バージョンもしくは前記N末端アミノ酸配列のN切断短縮バージョンを、特異的に認識することもないし、また結合することもない、イムノアッセイ法。 - 前記患者の生体液試料が、血液、尿、滑液、血清または血漿である、請求項1に記載の方法。
- 患者における肺癌の検出のための指標を提供するためのイムノアッセイ法であって、
患者から得られた生体液試料をN末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対し特異的に反応するモノクローナル抗体に接触させることと、
前記モノクローナル抗体と前記N末端アミノ酸配列含有ツムスタチンとの間の結合量を算定することと、
前記結合量を、i)正常な健常被験対象に関連する値および/またはii)既知の肺癌の重篤度に関連する値および/またはiii)以前の時点で前記患者から得られた値、および/またはiv)所定のカットオフ値と比較することと、
を含み、
前記モノクローナル抗体が、前記N末端アミノ酸配列のN延在伸長バージョンもしくは前記N末端アミノ酸配列のN切断短縮バージョンを、特異的に認識することもないし、また結合することもない、イムノアッセイ法。 - 前記肺癌が非小細胞肺癌(NSCLC)である、請求項3に記載の方法。
- 前記所定のカットオフ値が少なくとも2.00ng/mLである、請求項3または4に記載の方法。
- 前記生体液試料が、血液、尿、滑液、血清または血漿である、請求項3~5のいずれか一項に記載の方法。
- 患者における慢性腎臓病(CKD)の検出のための指標を提供するためのイムノアッセイ法であって、
患者から得られた生体液試料をN末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対し特異的に反応するモノクローナル抗体に接触させることと、
前記モノクローナル抗体と前記N末端アミノ酸配列含有ツムスタチンとの間の結合量を算定することと、
前記結合量を、正常な健常被験対象に関連する値および/または既知のCKDの重篤度に関連する値および/または以前の時点で前記患者から得られた値、および/または所定のカットオフ値と比較することと、
を含み、
前記モノクローナル抗体が、前記N末端アミノ酸配列のN延在伸長バージョンもしくは前記N末端アミノ酸配列のN切断短縮バージョンを、特異的に認識することもないし、また結合することもない、イムノアッセイ法。 - 前記慢性腎臓病が、全身性エリテマトーデス、ループス腎炎または糖尿病に起因する慢性腎臓病である、請求項7に記載の方法。
- 前記生体液試料が、血液、尿、滑液、血清または血漿である、請求項7または8に記載の方法。
- 患者における全身性エリテマトーデス(SLE)またはループス腎炎(LN)の検出のための指標を提供するためのイムノアッセイ法であって、
患者から得られた生体液試料をN末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対し特異的に反応するモノクローナル抗体に接触させることと、
前記モノクローナル抗体と前記N末端アミノ酸配列含有ツムスタチンとの間の結合量を算定することと、
前記結合量を、正常な健常被験対象に関連する値および/または既知のSLEもしくはLNの重篤度に関連する値および/または以前の時点で前記患者から得られた値、および/または所定のカットオフ値と比較することと、
を含み、
前記モノクローナル抗体が、前記N末端アミノ酸配列のN延在伸長バージョンもしくは前記N末端アミノ酸配列のN切断短縮バージョンを、特異的に認識することもないし、また結合することもない、イムノアッセイ法。 - 前記生体液試料が、血液、尿、滑液、血清または血漿である、請求項10に記載の方法。
- ツムスタチンのN末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対し特異的に反応し、前記N末端アミノ酸配列のN延在伸長バージョンもしくは前記N末端アミノ酸配列のN切断短縮バージョンを特異的に認識することもないし、また結合することもない、モノクローナル抗体。
- N末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)を有するツムスタチンを定量化するためのアッセイキットであって、
N末端アミノ酸配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)に対し特異的に反応し、前記N末端アミノ酸配列のN延在伸長バージョンもしくは前記N末端アミノ酸配列のN切断短縮バージョンを特異的に認識することもないし、また結合することもないモノクローナル抗体と、少なくとも以下:
- ストレプトアビジン被覆ウェルプレート、
- ビオチン化ペプチドPGLKGKRGDS-L-ビオチン(配列番号:6)(配列中:Lは任意選択的なリンカーである)、
- サンドイッチイムノアッセイにおいて使用される二次抗体、
- 配列PGLKGKRGDS(配列番号:1)を含むキャリブレーターペプチド、
- 抗体ビオチン化キット
- 抗体HRP標識キット
- 抗体放射性標識キット
- アッセイ可視化キット、のいずれか1つと、を具備する、アッセイキット。
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