JP7360752B2 - Severe fever thrombocytopenia syndrome virus gene detection composition and method for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome using the same - Google Patents
Severe fever thrombocytopenia syndrome virus gene detection composition and method for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome using the same Download PDFInfo
- Publication number
- JP7360752B2 JP7360752B2 JP2022513876A JP2022513876A JP7360752B2 JP 7360752 B2 JP7360752 B2 JP 7360752B2 JP 2022513876 A JP2022513876 A JP 2022513876A JP 2022513876 A JP2022513876 A JP 2022513876A JP 7360752 B2 JP7360752 B2 JP 7360752B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- sfts
- virus
- severe fever
- thrombocytopenia syndrome
- seq
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
- C12Q1/701—Specific hybridization probes
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Virology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Description
本発明は、重症熱性血小板減少症候群ウイルス遺伝子検出用組成物及びこれを用いた重症熱性血小板減少症候群の診断方法に関する。 The present invention relates to a composition for detecting a virus gene of severe fever and thrombocytopenia syndrome and a method for diagnosing severe fever and thrombocytopenia syndrome using the same.
重症熱性血小板減少症候群(Severe fever with thrombocytopenia syndrome,SFTS)は、SFTSウイルスによって発生する急性発熱性疾患で、白血球、血小板数値減少、肝機能数値上昇、タンパク尿などの症状を特徴とする。SFTSウイルスに感染したダニが人をかんで組織液を吸い込むことにより感染し、媒介体としてHaemaphysalis longicornis(フタトゲチマダニ)、Amblyomma testudinarium(タカサゴキララマダニ)、Ixodes nipponensis(タネガタマダニ)などがある。 Severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS) is an acute febrile disease caused by the SFTS virus, and is characterized by symptoms such as decreased white blood cell and platelet values, increased liver function values, and proteinuria. A tick infected with the SFTS virus bites a person and inhales the tissue fluid, causing infection, and the vectors are Haemaphysalis longicornis, Amblyomma testudinarium, and Ixodes nipponensis. ) etc.
韓国全国的にSFTS患者の発生が増加傾向にあり、死亡率はSFTS認知度の増加によって2013年から2016年まで47.6%、29.1%、26.6%、11.5%と減少傾向であったが、2017年に死亡患者数が急激に増加し22.3%と前年比10.8%増であった。したがって、地球温暖化によるダニ個体数の増加によりSFTS患者は増加し続けると予想されるため、SFTS感染に対する迅速で且つ正確な診断が患者の予後改善のために必須とされる。 The incidence of SFTS patients is increasing nationwide in South Korea, and the mortality rate decreased from 2013 to 2016 by 47.6%, 29.1%, 26.6%, and 11.5% due to increased awareness of SFTS. Although this was a trend, the number of deaths rapidly increased in 2017 to 22.3%, an increase of 10.8% from the previous year. Therefore, since the number of SFTS patients is expected to continue to increase due to the increase in the tick population due to global warming, rapid and accurate diagnosis of SFTS infection is essential for improving patient prognosis.
現在、重症熱性血小板減少症候群の診断は、患者の血液を用いてウイルスを分離する方法、患者の血清を用いてIFAやELISA分析により抗体価の上昇を確認する方法、患者の血清や血漿を用いてリアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(real time RT-PCR)やnested RT-PCRで患者の血液内のSFTSウイルスRNAを増幅させて検査する方法がある。 Currently, severe fever thrombocytopenia syndrome is diagnosed by using the patient's blood to isolate the virus, by using the patient's serum to confirm an increase in antibody titer by IFA or ELISA analysis, or by using the patient's serum or plasma. There is a method of testing by amplifying SFTS virus RNA in the patient's blood using real time reverse transcription polymerase chain reaction (real time RT-PCR) or nested RT-PCR.
このうちウイルスを培養して診断する方法は、BSL3施設が必要で、培養に多少時間がかかる場合があり一般病院では施行が困難であるため、診断に主に使用されている検査方法は、血清学的検査である間接免疫蛍光抗体法、免疫酵素法である。しかし、このような方法も他の病原体との交差反応による偽陽性反応があり、症状発生から抗体形成まで数日かかるため、疾病の早期に来院して検査を施行する場合、感度が低く、確定診断のためには追跡検査が必要であるとの短所がある。 Among these methods, the method of diagnosing by culturing the virus requires a BSL3 facility, and culture may take some time, making it difficult to carry out in general hospitals.The test method mainly used for diagnosis is serum These are the indirect immunofluorescence antibody method and the immunoenzyme method, which are scientific tests. However, these methods are also prone to false-positive reactions due to cross-reaction with other pathogens, and it takes several days from the onset of symptoms to the formation of antibodies. The disadvantage is that follow-up tests are required for diagnosis.
特に、SFTSウイルスを疾病初期に迅速に診断するために患者の血液からウイルスの特異遺伝子を検出するPCR法には、伝統的な方法によるconventional RT-PCRと、これを変形してconventional RT-PCRよりも100倍敏感なnested RT-PCR方法とがあり、また、PCRの進行中に結果をリアルタイムで確認できるリアルタイム(real time)RT-PCR方法などがある。重症熱性血小板減少症候群ウイルスは、一本鎖RNAウイルスで、Bunyaviridaeと、phlebovirus属に属し、ウイルスゲノムは、Large(L)、Medium(M)、Small(S)セグメント(segment)から構成されている。SFTSウイルスを検出するためのRT-PCR診断方法として、これら3つのセグメント(L、M、S segment)をターゲットとしてリアルタイムRT-PCR及びnested RT-PCR法が主に用いられているが、nested RT-PCRの場合、2回のPCR施行で感度が上昇するが、2回のPCR遂行により必要以上の人力及び時間がかかり、潜在的な汚染可能性がより高いことから、たった一回でも感度の優れた新たな診断法の開発が非常に切実であるのが実情である。 In particular, the PCR method for detecting virus-specific genes from patient's blood in order to quickly diagnose SFTS virus at the early stage of the disease includes the traditional method of conventional RT-PCR and a modified version of this method called conventional RT-PCR. There are nested RT-PCR methods that are 100 times more sensitive than conventional methods, and real-time RT-PCR methods that allow you to check the results in real time while PCR is in progress. Severe fever thrombocytopenia syndrome virus is a single-stranded RNA virus that belongs to the genus Bunyaviridae and phlebovirus, and the virus genome is composed of Large (L), Medium (M), and Small (S) segments. . Real-time RT-PCR and nested RT-PCR are mainly used to target these three segments (L, M, and S segments) as RT-PCR diagnostic methods for detecting SFTS viruses, but nested RT - In the case of PCR, sensitivity increases by performing PCR twice, but performing PCR twice takes more manpower and time than necessary, and the possibility of potential contamination is higher, so it is difficult to increase sensitivity even with just one PCR. The reality is that the development of new, superior diagnostic methods is extremely urgent.
一方、SFTSウイルスの3つのセグメントは、RNA-dependent RNA polymerase、RdRpをコードするLセグメント、ウイルス膜タンパク質の構成成分であるglycoprotein(GnとGc)をコードするMセグメント、ウイルス核タンパク質でSFTSウイルス由来のタンパク質のうち発現量が多く感染宿主をして細胞性免疫反応を誘発するnucleocapsid protein(NP)と免疫回避機能をするnonstructural protein(NSs)をコードするSセグメントから構成されている。SFTSは、韓国、中国、日本が主に流行地域で、SFTSウイルスのMセグメントとSセグメントの塩基配列を基に系統分析するとき、各国別に発生するウイルスの遺伝子配列が相異なりJapanese(J) clade、Chinese(C) clade、及びKorean(K) cladeに分類可能である。 On the other hand, the three segments of the SFTS virus are the L segment that encodes RNA-dependent RNA polymerase and RdRp, the M segment that encodes glycoprotein (Gn and Gc), which are components of the viral membrane protein, and the viral nucleoprotein derived from the SFTS virus. Among these proteins, the S segment encodes nucleocapsid protein (NP), which is highly expressed and induces a cellular immune response in the infected host, and nonstructural protein (NSs), which has an immune evasion function. SFTS is mainly endemic in South Korea, China, and Japan, and when performing phylogenetic analysis based on the base sequences of the M and S segments of the SFTS virus, it was found that the genetic sequences of the viruses that occur in each country are different. , Chinese (C) clade, and Korean (K) clade.
よって、SFTS感染に対する迅速且つ正確な診断及び治療のために、Japanese(J) clade、Chinese(c) clade及びKorean(K) cladeのSFTSウイルス遺伝子を疾病初期に迅速に全て診断することができる感度及び特異度の優れた診断方法の開発が何よりも必要である。 Therefore, in order to quickly and accurately diagnose and treat SFTS infection, we need a sensitivity that allows us to quickly diagnose all the SFTS virus genes of the Japanese (J) clade, Chinese (c) clade, and Korean (K) clade at the early stage of the disease. What is most important is the development of diagnostic methods with excellent specificity.
したがって、本発明では、このような点を勘案して、SFTSウイルス遺伝子検出用組成物を提供し、これによりSFTSウイルスの確認及び重症熱性血小板減少症候群の診断方法を提供することを目的とする。 Therefore, in consideration of these points, the present invention aims to provide a composition for detecting the SFTS virus gene, thereby providing a method for confirming the SFTS virus and diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome.
本発明の他の目的は、本発明のSFTSウイルス遺伝子検出用組成物を含む、重症熱性血小板減少症候群(SFTS)診断用キットを提供することにある。 Another object of the present invention is to provide a kit for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome (SFTS), which includes the composition for detecting the SFTS virus gene of the present invention.
本発明のまた他の目的は、重症熱性血小板減少症候群(SFTS)感染診断のための情報提供方法を提供することにある。 Another object of the present invention is to provide a method for providing information for diagnosing Severe Fever Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) infection.
上記のような目的を達成するために、本発明は、配列番号2及び配列番号3のプライマ一対;及び配列番号4のプローブ;を含む、重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome;SFTS)ウイルス遺伝子検出用組成物を提供する。 In order to achieve the above objects, the present invention provides a method for treating Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome (SFTS), which comprises a pair of primers of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3; and a probe of SEQ ID NO: 4; A composition for detecting a virus gene is provided.
本発明の一実施例において、配列番号2及び配列番号3のプライマ一対;及び配列番号4のプローブ;は、配列番号1(SFTSV Sセグメントの塩基配列)からなる重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome)ウイルスのSセグメント(Small segment;S segment)に特異的に結合するものであってもよい。 In one embodiment of the present invention, a pair of primers of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3; and a probe of SEQ ID NO: 4; It may be one that specifically binds to the S segment (S segment) of the Thrombocytopenia Syndrome virus.
また、本発明は、本発明のSFTSウイルス遺伝子検出用組成物を含む、重症熱性血小板減少症候群(SFTS)診断用キットを提供する。 The present invention also provides a kit for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome (SFTS), which includes the composition for detecting the SFTS virus gene of the present invention.
また、本発明は、(1)重症熱性血小板減少症候群の感染が疑われる患者より分離された試料からウイルス性RNAを分離する段階;(2)上記RNAからcDNAを合成する段階;(3)上記段階(2)で合成したcDNAを鋳型にし、請求項3のキットを用いてリアルタイムRT-PCR増幅を遂行する段階;及び(4)上記段階(3)を通して重症熱性血小板減少症候群ウイルスの遺伝子を確認する段階;を含む、重症熱性血小板減少症候群(SFTS)感染診断のための情報提供方法を提供する。 The present invention also provides the following steps: (1) isolating viral RNA from a sample isolated from a patient suspected of having severe fever and thrombocytopenia syndrome; (2) synthesizing cDNA from the RNA; (3) as described above. Performing real-time RT-PCR amplification using the kit of claim 3 using the cDNA synthesized in step (2) as a template; and (4) confirming the gene of severe fever thrombocytopenia syndrome virus through step (3) above. Provided is a method for providing information for diagnosing Severe Fever Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) infection, including the steps of:
本発明の一実施例において、上記段階(1)の試料は、哺乳動物から収得した血液、組織、細胞、血清、血漿、唾液、喀痰又は尿;又はマダニ;であってもよい。 In one embodiment of the present invention, the sample in step (1) above may be blood, tissue, cells, serum, plasma, saliva, sputum, or urine obtained from a mammal; or a tick;
本発明の一実施例において、上記段階(2)で上記RNAからcDNAを合成することは、SFTSウイルスのRNAゲノムから逆転写酵素(reverse transcriptase)の作用を通した逆転写(reverse transcription)反応を別途遂行して相補的DNA(cDNA)を合成することであってもよい。 In one embodiment of the present invention, synthesizing cDNA from the RNA in step (2) involves performing a reverse transcription reaction from the RNA genome of the SFTS virus through the action of reverse transcriptase. Alternatively, complementary DNA (cDNA) may be synthesized separately.
本発明の一実施例において、上記段階(4)で重症熱性血小板減少症候群ウイルス遺伝子の確認は、キャピラリー電気泳動、DNAチップ、ゲル電気泳動、放射性測定、蛍光測定及びりん光測定からなる群から選択されるいずれか一つ以上の方法で遂行することであってもよい。 In one embodiment of the present invention, the confirmation of the severe fever thrombocytopenia syndrome virus gene in step (4) is performed using a method selected from the group consisting of capillary electrophoresis, DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement, and phosphorescence measurement. It may be accomplished by one or more of the following methods.
本発明の一実施例において、上記段階(4)で重症熱性血小板減少症候群ウイルスの遺伝子は、配列番号1からなる重症熱性血小板減少症候群ウイルスのSセグメント(Small segment;S segment)であってもよい。 In one embodiment of the present invention, the gene of the severe fever thrombocytopenia syndrome virus in step (4) may be the S segment (S segment) of the severe fever thrombocytopenia syndrome virus consisting of SEQ ID NO: 1. .
本発明による重症熱性血小板減少症候群(SFTS)ウイルス遺伝子検出用組成物及びこれを用いたSFTS診断方法は、SFTSウイルスのSセグメント遺伝子を特異的に検出することができ、既に知られている検出方法に比べて正確度及び感度が優れているばかりか短時間でSFTSウイルスの検出が可能であるため、重症熱性血小板減少症候群を迅速且つ正確に診断することができる効果がある。 The composition for detecting the severe fever thrombocytopenia syndrome (SFTS) virus gene according to the present invention and the SFTS diagnostic method using the same can specifically detect the S segment gene of the SFTS virus, and can be performed using already known detection methods. Not only is the accuracy and sensitivity superior to that of the method, but also the SFTS virus can be detected in a short time, so it is effective in quickly and accurately diagnosing severe fever-thrombocytopenia syndrome.
本発明は、重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome;SFTS)ウイルス遺伝子を迅速且つ正確に検出することができる新たな検出用組成物を提供することに特徴がある。 The present invention is characterized in that it provides a new detection composition that can rapidly and accurately detect Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) virus genes.
本発明者等は、SFTS感染に対する正確且つ迅速な診断及び治療のためにSFTSウイルス特異遺伝子を検出することができる方法を研究していたところ、同定されたSFTSウイルスのSセグメント(Small segment;S segment)に特異的に結合してSFTSウイルスを高い感度と正確度で検出することができるプライマー及びプローブを発見した。 The present inventors were researching a method capable of detecting SFTS virus-specific genes for accurate and rapid diagnosis and treatment of SFTS infection, and discovered that the S segment of SFTS virus (Small segment; We have discovered primers and probes that can specifically bind to the SFTS virus segment and detect the SFTS virus with high sensitivity and accuracy.
一方、先に従来技術でも記述したように、重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome;SFTS)ウイルスは、一本鎖RNAウイルスで、Bunyaviridaeと、phlebovirus属に属し、ウイルスゲノムは3つのセグメント(segment)から構成されている。SFTSウイルスの3つのセグメントは、RNA-dependent RNA polymerase、RdRpをコードするLセグメント(Large segment,L segment)、ウイルス膜タンパク質の構成成分であるglycoprotein(GnとGc)をコードするMセグメント(Medium segment,M segment)、ウイルス核タンパク質でSFTSウイルス由来のタンパク質のうち発現量が多く感染宿主をして細胞性免疫反応を誘発するnucleocapsid protein(NP)と免疫回避機能をするnonstructural S protein(NSs)をコードするSセグメント(Small segment,S segment)から構成されている。報告によると、BunyavirusesのSセグメント内でnonstructural S protein(NSs)は、ウイルスがヒトの先天的な抗ウイルス防御に対抗するようにすることから、NSタンパク質はウイルス感染において主な毒性決定因子の一つとしてよく知られている。 On the other hand, as previously described in the prior art, the Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) virus is a single-stranded RNA virus that belongs to the Bunyaviridae and Phlebovirus genera, and the virus genome consists of three segments. (segment). The three segments of the SFTS virus are the L segment (L segment), which encodes RNA-dependent RNA polymerase, RdRp, and the M segment (Medium segment, which encodes glycoproteins (Gn and Gc), which are constituent components of viral membrane proteins. t , M segment), nucleocapsid protein (NP), which is a viral nucleoprotein and is highly expressed among SFTS virus-derived proteins, induces a cellular immune response in the infected host, and nonstructural S protein (NSs), which has an immune evasion function. It is composed of a small segment (S segment) that codes. According to reports, nonstructural S proteins (NSs) within the S segment of Bunyaviruses enable the virus to counter humans' innate antiviral defenses, making NS proteins one of the major virulence determinants in viral infections. It is well known as one.
本発明では、韓国の患者及び媒介体より分離されたSFTSウイルス遺伝子の3つのセグメントのうち、Sセグメント(Small segment,S segment)内でnonstructural S protein(NSs)遺伝子を特異的に検出することができるプライマー及びプローブを発掘するための実験を行い、各々異なる塩基配列で構成された多くのプライマー及びプローブの中でSFTSウイルス遺伝子に対して感度及び特異度が著しく優秀なプライマー及びプローブを発掘し、発掘されたプライマーをSFTS-S 583F プライマー(5-AGAGGMATGAGCTTGAAC-3;配列番号2)及びSFTS-S 653R プライマー(5-TCCCAACAGTCTAAYAGA-3;配列番号3)と命名し、上記プローブは、SFTS-S 602P プローブ(5-ACCACTTATTCACTTCTTCCTCATTGC-3;配列番号4)と命名した。 In the present invention, it is possible to specifically detect the nonstructural S protein (NSs) gene within the S segment (S segment) among the three segments of the SFTS virus gene isolated from Korean patients and vectors. We conducted experiments to discover primers and probes that could be used, and among the many primers and probes each composed of different base sequences, we discovered primers and probes that had extremely high sensitivity and specificity for the SFTS virus gene. The discovered primers were named SFTS-S 583F primer (5-AGAGGMATGAGCTTGAAC-3; SEQ ID NO: 2) and SFTS-S 653R primer (5-TCCCAACAGTCTAAYAGA-3; SEQ ID NO: 3), and the above probe was SFTS-S 602P. The probe was named (5-ACCACTTATTCACTTCTTCCTCATTGC-3; SEQ ID NO: 4).
ここで、上記MはA又はC塩基であってもよく、上記YはC又はT塩基であってもよい。 Here, the above M may be an A or C base, and the above Y may be a C or T base.
したがって、本発明は、配列番号2及び配列番号3の塩基配列からなるプライマ一対;及び配列番号4の塩基配列からなるプローブ;を含む、重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome;SFTS)ウイルス遺伝子検出用組成物を提供することに特徴がある。 Therefore, the present invention provides a severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS) virus comprising a pair of primers consisting of the base sequences of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3; and a probe consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4; The present invention is characterized in that it provides a composition for gene detection.
また、本発明で、上記プライマー及びプローブは、重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome)ウイルスのSセグメント(Small segment;S segment)のnonstructural S protein(NSs)遺伝子に特異的に結合することができ、上記Sセグメントは配列番号1からなる塩基配列を有する。 Further, in the present invention, the primers and probes are derived from the nonstructural S protein (NSs) gene of the S segment of the Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome virus. to specifically bind to The above S segment has a base sequence consisting of SEQ ID NO:1.
また、本発明の実施例1では、SFTSウイルス遺伝子検出又は診断のために新たなプライマーとプローブをデザインした。実施例2では、実施例1でSFTSウイルス遺伝子検出又は診断のためにデザインしたプライマーとプローブを用いてリアルタイムRT-PCRを遂行し最適のプライマーとプローブを選別した。本発明で発掘した配列番号2及び配列番号3のプライマ一対及び配列番号4のプローブを用いてリアルタイムRT-PCRを遂行しSFTSウイルスの検出能を分析した結果、他の塩基配列で構成されたプライマー及びプローブに比べて本発明のプライマー及びプローブを用いた場合、感度及び特異度が最も優れており、ひいては、従来使用されているSFTSウイルス検出法に比べてもより優れた感度及び特異度を示すことにより、本発明が従来方法に比べてSFTSウイルス遺伝子をより高い正確度と感度で検出できることが分かった。 Furthermore, in Example 1 of the present invention, new primers and probes were designed for SFTS virus gene detection or diagnosis. In Example 2, real-time RT-PCR was performed using the primers and probes designed for SFTS virus gene detection or diagnosis in Example 1, and the optimal primers and probes were selected. As a result of performing real-time RT-PCR using a pair of primers with SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3 and the probe with SEQ ID NO: 4 discovered in the present invention and analyzing the detection ability of SFTS virus, it was found that primers composed of other base sequences When the primers and probes of the present invention are used, the sensitivity and specificity are the most excellent compared to the conventionally used SFTS virus detection method. As a result, it was found that the present invention can detect SFTS virus genes with higher accuracy and sensitivity than conventional methods.
本発明の実施例2では、配列番号2及び配列番号3のプライマ一対及び配列番号4のプローブを用いたリアルタイムRT-PCRを通して、71bpの大きさを有する配列番号5の塩基配列からなるSFTSウイルスのSセグメントの増幅産物を確認することができ、具体的に上記71bpの塩基配列は、agaggaatgagcttgaaccaccacttattcacttcttcctcattgcgtaagcctctattagactgttggga(配列番号5)である。 In Example 2 of the present invention, SFTS virus consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 having a size of 71 bp was detected through real-time RT-PCR using a pair of primers of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3 and a probe of SEQ ID NO: 4. The amplification product of the S segment can be confirmed, and specifically, the base sequence of 71 bp is agaggaatgagcttgaaccaccacttattcacttcttcctcattgcgtaagcctctattagactgttggga (SEQ ID NO: 5).
また、本発明による上記SFTSウイルス遺伝子検出用組成物は、SFTSウイルスのSセグメントを特異的に高い感度及び正確度で検出することができる本発明のプライマー及びプローブを含む組成物であり、分析しようとする試料にSFTSウイルスの存否に対する分析だけでなく重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome;SFTS)の診断のための診断用組成物としても使用可能である。 Further, the composition for detecting the SFTS virus gene according to the present invention is a composition containing the primer and probe of the present invention that can specifically detect the S segment of the SFTS virus with high sensitivity and accuracy, and is a composition that can be used for analysis. It can be used not only for analysis to determine the presence or absence of SFTS virus in a sample, but also as a diagnostic composition for diagnosing Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome (SFTS).
よって、本発明は、配列番号2及び配列番号3のプライマ一対;及び配列番号4のプローブ;を含む、重症熱性血小板減少症候群(Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome;SFTS)診断用組成物を提供することができる。 Therefore, the present invention provides a composition for diagnosing Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome (SFTS), which includes a pair of primers of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3; and a probe of SEQ ID NO: 4; can.
上記本発明の検出用又は診断用組成物は、上で言及した本発明によるプライマ一対及びプローブ以外にポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に使用可能な成分、例えば、反応用緩衝溶液、dNTP、Mg2+イオン、DNAポリメラーゼを含むことができる。 In addition to the above-mentioned pair of primers and the probe according to the present invention, the detection or diagnostic composition of the present invention includes components that can be used in polymerase chain reaction (PCR), such as a reaction buffer solution, dNTP, Mg2+ ion, It can include a DNA polymerase.
上記反応用緩衝溶液は、1~10mM TrisHCl、10~40mM KCl(pH9.0)を使用することができ、上記dNTPは、dATP、dTTP、dGTP、dCTPのうち選択されたいずれか一つ以上を使用することができる。 The reaction buffer solution can be 1-10mM TrisHCl, 10-40mM KCl (pH 9.0), and the dNTP is one or more selected from dATP, dTTP, dGTP, and dCTP. can be used.
また、上記組成物は、実験上の便宜、安定化及び反応性の向上のために安定化剤及び/又は非反応性染料などを含むことができる。 Further, the composition may contain a stabilizer and/or a non-reactive dye for experimental convenience, stabilization, and improvement of reactivity.
上記非反応性染料物質とは、ポリメラーゼ連鎖反応に影響を及ぼさない物質から選択されなければならず、ポリメラーゼ連鎖反応産物を用いた分析や識別のために使用されることを目的とする。このような条件を満たす物質としては、ローダミン、TAMRA、Lax、ブロモフェノールブルー、キシレンシアノール、ブロモクレゾールレッド、クレゾールレッドなどの水溶性染料が使用可能である。 The non-reactive dye substance must be selected from substances that do not affect the polymerase chain reaction, and is intended to be used for analysis or identification using polymerase chain reaction products. As substances that meet these conditions, water-soluble dyes such as rhodamine, TAMRA, Lax, bromophenol blue, xylene cyanol, bromocresol red, and cresol red can be used.
上記組成物は、液状形態で提供されることができ、安定性、保管の簡便性及び長期保管性の向上のために乾燥した状態であることが望ましい。上記乾燥は、一般的な常温乾燥、加温乾燥、凍結乾燥、減圧乾燥のような公知の乾燥方法によって遂行されることができ、組成物の成分が損失されない限り、任意の乾燥方法は全て使用可能である。上記のような乾燥方法は、使用される酵素の種類及び量により相異なって適用されることができる。 The above composition can be provided in a liquid form, and is preferably in a dry state to improve stability, ease of storage, and long-term storage. The above-mentioned drying can be carried out by a known drying method such as normal temperature drying, heating drying, freeze drying, and vacuum drying, and any drying method can be used as long as the components of the composition are not lost. It is possible. The drying method described above can be applied differently depending on the type and amount of enzyme used.
上記組成物は、一つの反応チューブ内で混合してから凍結または乾燥させて安定化された状態で製造し使用することにより、ポリメラーゼ連鎖反応中に別途の混合過程が必要ではないため、反応中の混合によるエラーを防止することができ、安定性、反応性及び保管性を向上させることができる。 Since the above composition is produced and used in a stabilized state by mixing in one reaction tube and then freezing or drying, a separate mixing process is not required during the polymerase chain reaction. Errors caused by mixing can be prevented, and stability, reactivity and storage properties can be improved.
上記の組成物は、プライマ一対及びプローブを除いた残りの成分である反応用緩衝溶液、dNTP、Mg2+ イオン、DNAポリメラーゼが既に含有された市場販売製品を使用することができる。 The above composition may be a commercially available product that already contains the remaining components, except for a pair of primers and a probe, such as a reaction buffer solution, dNTPs, Mg2+ ions, and DNA polymerase.
また、本発明は、上記本発明の組成物を含む、重症熱性血小板減少症候群(SFTS)診断用キットを提供することができる。 Furthermore, the present invention can provide a kit for diagnosing severe febrile thrombocytopenia syndrome (SFTS), which includes the composition of the present invention.
本発明による上記診断用キットには配列番号2及び配列番号3のプライマ一対;及び配列番号4のプローブ;を含んでいて重症熱性血小板減少症候群(SFTS)を非常に高い正確度で診断することができる。 The diagnostic kit according to the present invention includes a pair of primers of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3; and a probe of SEQ ID NO: 4; and is capable of diagnosing Severe Fever Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) with very high accuracy. can.
上記診断は、分析しようとする検体試料にSFTSウイルスが含まれているか否かを判別するためにポリメラーゼ連鎖反応法(polymerase chain reaction,PCR)を使用することができ、上記ポリメラーゼ連鎖反応は、一般的なポリメラーゼ連鎖反応、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(Reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR)及びリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応(real-time polymerase chain reaction,real-time PCR)などを含む。 The above diagnosis can use polymerase chain reaction (PCR) to determine whether or not the specimen sample to be analyzed contains the SFTS virus. Reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and real-time polymerase chain reaction (real-time polymerase chain reaction) -time PCR).
本発明の診断キットは、本発明のプライマ一対及びプローブ以外にも、逆転写酵素、ポリメラーゼ、ポリメラーゼ連鎖反応のための鋳型DNA(template DNA)として相補的DNA(cDNA)、及びバッファーなどの反応試薬をさらに含むことができる。 In addition to the pair of primers and the probe of the present invention, the diagnostic kit of the present invention also includes reverse transcriptase, polymerase, complementary DNA (cDNA) as template DNA for polymerase chain reaction, and reaction reagents such as buffers. may further include.
また、本発明の診断キットは、上記キットの使用方法を指示するマニュアルを含むことができる。 The diagnostic kit of the present invention can also include a manual that instructs how to use the kit.
本発明の一実施例によれば、本発明の診断キットは、一般的なポリメラーゼ連鎖反応又はリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応などに使用可能であるが、この場合、SFTSウイルスのRNAゲノムから逆転写酵素(reverse transcriptase)の作用を通した逆転写(reverse transcription)反応を別途遂行して相補的DNA(cDNA)を合成し、これをポリメラーゼ連鎖反応の鋳型DNAとして使用することができる。 According to one embodiment of the present invention, the diagnostic kit of the present invention can be used for general polymerase chain reaction or real-time polymerase chain reaction, and in this case, reverse transcriptase (reverse transcriptase) is extracted from the RNA genome of SFTS virus. Complementary DNA (cDNA) can be synthesized by separately performing a reverse transcription reaction through the action of transcriptase, and can be used as a template DNA for polymerase chain reaction.
ポリメラーゼ連鎖反応の結果物は、アガロースゲル電気泳動(agarose gel electrophoresis)又はキャピラリー電気泳動(capillary electrophoresis)などの方法で分離することができ、使用されたプライマ一対によって重合されたDNAに該当する長さを有するDNAの存在を確認して重症熱性血小板減少症候群を診断することができる。 The resultant product of the polymerase chain reaction can be separated by a method such as agarose gel electrophoresis or capillary electrophoresis, and the length corresponding to the DNA polymerized by the pair of primers used can be separated. Severe febrile thrombocytopenia syndrome can be diagnosed by confirming the presence of DNA having the following.
また、本発明では、SFTSウイルス遺伝子に特異的に結合することができる配列番号4のプローブ(probe)を使用したが、上記プローブは各末端に蛍光物質及びクエンチャー(quencher)を結合させて使用することができる。具体的に、上記プローブの5’末端には蛍光物質が結合され、3’末端にはクエンチャーが結合されたものであってよく、プローブの5’末端には赤色、緑色、青色など特定波長を放出する蛍光物質が結合され、3’末端にはブラックホールクエンチャー(black hole quencher,BHQ)が結合されてもよい。蛍光物質とクエンチャーがプローブに結合されている状態ではクエンチャーが蛍光物質が放出する光を吸収するため蛍光信号が検出されない。その反面、DNAの合成及び伸長過程でDNAポリメラーゼのexonuclease activityによって結合されていた蛍光物質が分離されれば、蛍光信号を検出することができる。ポリメラーゼ連鎖反応が進行する間、このような蛍光信号をリアルタイムで測定することができ、増加した蛍光信号を基にウイルス遺伝子存否を判別することができる。このようなプローブの使用は、リアルタイムポリメラーゼ連鎖反応に有用に使用可能である。 In addition, in the present invention, a probe with SEQ ID NO: 4 that can specifically bind to the SFTS virus gene was used, but the probe was used with a fluorescent substance and a quencher attached to each end. can do. Specifically, a fluorescent substance may be bound to the 5' end of the probe, a quencher may be bound to the 3' end, and a specific wavelength such as red, green, or blue may be bound to the 5' end of the probe. A fluorescent substance that emits ions may be bonded to the 3' end, and a black hole quencher (BHQ) may be bonded to the 3' end. When a fluorescent substance and a quencher are bound to a probe, no fluorescent signal is detected because the quencher absorbs the light emitted by the fluorescent substance. On the other hand, if the fluorescent substance bound by the exonuclease activity of DNA polymerase is separated during the DNA synthesis and elongation process, a fluorescent signal can be detected. While the polymerase chain reaction is progressing, such fluorescent signals can be measured in real time, and the presence or absence of viral genes can be determined based on the increased fluorescent signal. The use of such probes can be usefully used in real-time polymerase chain reactions.
さらに、本発明は、重症熱性血小板減少症候群(SFTS)感染診断方法を提供することができ、SFTS感染診断のための情報提供方法を提供することができる。 Further, the present invention can provide a method for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome (SFTS) infection, and can provide a method for providing information for diagnosing SFTS infection.
望ましくは、上記重症熱性血小板減少症候群(SFTS)感染診断のための情報提供方法は、(1)重症熱性血小板減少症候群の感染が疑われる患者より分離された試料からウイルス性RNAを分離する段階;(2)上記RNAからcDNAを合成する段階;(3)上記段階(2)で合成したcDNAを鋳型として、実施例3で使用されたキットを用いてリアルタイムRT-PCR増幅を遂行する段階;及び(4)上記段階(3)を通して重症熱性血小板減少症候群ウイルスの遺伝子を確認する段階;を含む。 Preferably, the method for providing information for diagnosing Severe Fever Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) infection includes the steps of: (1) isolating viral RNA from a sample isolated from a patient suspected of having Severe Fever Thrombocytopenia Syndrome infection; (2) a step of synthesizing cDNA from the above RNA; (3) a step of performing real-time RT-PCR amplification using the kit used in Example 3 using the cDNA synthesized in step (2) above as a template; and (4) Confirming the gene of severe fever thrombocytopenia syndrome virus through step (3) above;
上記試料はこれに制限されないが、哺乳動物から収得した血液、組織、細胞、血清、血漿、唾液、喀痰又は尿;又はマダニ;であってもよい。 The sample may be, but is not limited to, blood, tissue, cells, serum, plasma, saliva, sputum, or urine obtained from a mammal; or a tick;
また、上記方法で重症熱性血小板減少症候群ウイルス遺伝子の確認は、キャピラリー電気泳動、DNAチップ、ゲル電気泳動、放射性測定、蛍光測定及びりん光測定からなる群から選択されるいずれか一つ以上の方法を通して遂行することができる。 In addition, the severe fever thrombocytopenia syndrome virus gene can be confirmed by any one or more methods selected from the group consisting of capillary electrophoresis, DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement, and phosphorescence measurement. It can be carried out through.
また、本発明の方法において、上記SFTSは、SFTSウイルスに感染して誘発される疾病を称する。 Furthermore, in the method of the present invention, the above-mentioned SFTS refers to a disease induced by infection with SFTS virus.
以上、本発明で考案したSFTSウイルスのSセグメントに特異的に結合する配列番号2及び3のプライマ一対及び配列番号4のプローブを利用する場合、SFTSウイルスを高い感度と正確度で迅速に検出可能であるとの長所があり、下記本発明の実施例を通して実際にSFTSと疑われる患者の試料を対象として本発明のプライマー及びプローブを用いたリアルタイムRT-PCR分析法を遂行した結果、来院当時の患者の試料を対象とした分析で97%の高い感度と100%の特異度で迅速な診断が可能であることを確認しただけでなく、SFTS患者の病院来院が遅延した場合の感度を予測することができるSFTS疑い患者の入院全体期間中の採血検体を対象とした分析でも88%の高い感度と100%の特異度で正確度の優れた診断が可能であることを確認した。 As described above, when using the pair of primers of SEQ ID NO: 2 and 3 and the probe of SEQ ID NO: 4 that specifically bind to the S segment of SFTS virus devised in the present invention, SFTS virus can be rapidly detected with high sensitivity and accuracy. As a result of carrying out a real-time RT-PCR analysis method using the primers and probe of the present invention on samples of patients suspected of having SFTS through the following examples of the present invention, it was found that Analysis of patient samples not only confirmed that rapid diagnosis was possible with high sensitivity of 97% and specificity of 100%, but also predicted the sensitivity when hospital admission of SFTS patients was delayed. It was also confirmed that highly accurate diagnosis was possible with a high sensitivity of 88% and a specificity of 100% in an analysis of blood samples collected during the entire hospitalization period of patients suspected of having SFTS.
また、本発明の方法による上記のような診断正確度は、従来使用されていた診断方法を遂行した場合と他の種類のプライマーとプローブを用いた場合に比べて、著しく優れていることが分かった。 Furthermore, it has been found that the above-mentioned diagnostic accuracy achieved by the method of the present invention is significantly superior to that achieved by conventionally used diagnostic methods and when other types of primers and probes are used. Ta.
よって、本発明で考案したSFTS検出用組成物を用いたSFTS感染診断方法及び感染診断のための情報提供方法は、SFTSを早期に迅速且つ正確に診断することができ、リアルタイムでSFTSウイルスの検出が可能であるため、発病から時間が相当経過した時点でも高い正確度で診断することができ、他疾患とSFTSの疾病を高い特異度で区別することができる。 Therefore, the method for diagnosing SFTS infection and the method for providing information for diagnosing SFTS using the composition for detecting SFTS devised in the present invention can diagnose SFTS quickly and accurately at an early stage, and can detect SFTS virus in real time. As a result, it is possible to diagnose with high accuracy even after a considerable period of time has passed since the onset of the disease, and to distinguish SFTS from other diseases with high specificity.
以下、実施例を通して本発明をより詳しく説明する。これら実施例は、本発明をより具体的に説明するためのものであって、本発明の範囲がこれら実施例に限定されるものではない。 Hereinafter, the present invention will be explained in more detail through Examples. These Examples are for explaining the present invention more specifically, and the scope of the present invention is not limited to these Examples.
<実施例1>
SFTSウイルス遺伝子検出又は診断のためのプライマー及びプローブ製作
<Example 1>
Primer and probe production for SFTS virus gene detection or diagnosis
本発明者等は、SFTSウイルスのSセグメント配列を対象として、重症熱性血小板減少症候群を迅速且つ正確に高い感度で検出することができる新たな診断用プライマー及びプローブを下記表2のようにデザインした。 The present inventors have designed new diagnostic primers and probes targeting the S segment sequence of SFTS virus that can rapidly, accurately, and highly sensitively detect severe fever thrombocytopenia syndrome as shown in Table 2 below. .
また、下記表2のプライマー及びプローブのデザインのために、下記表1A~表1Cに記載のSFTSウイルスのSセグメント配列を参考とした。 In addition, for designing the primers and probes shown in Table 2 below, the S segment sequences of SFTS virus listed in Tables 1A to 1C below were used as reference.
表1A~表1C:韓国、中国及び日本の患者から同定されたSFTSウイルスのSセグメント(segment)に関する情報 Tables 1A to 1C: Information on the S segment of SFTS viruses identified from patients in South Korea, China, and Japan
表2:SFTSウイルス遺伝子検出のためにデザインしたプライマー及びプローブ Table 2: Primers and probes designed for SFTS virus gene detection
上記表でMはA又はC塩基であってもよく、上記YはC又はT塩基であってもよい。 In the table above, M may be an A or C base, and Y may be a C or T base.
<実施例2>
SFTSウイルス遺伝子検出又は診断のための最適のプライマーとプローブ選別
<Example 2>
Optimal primer and probe selection for SFTS virus gene detection or diagnosis
上記実施例1でデザインしたSFTSウイルス遺伝子検出又は診断のためのプライマーとプローブを対象としてリアルタイムRT-PCRを遂行し、感度及び特異度検査を遂行した。 Real-time RT-PCR was performed using the primers and probes designed in Example 1 for detecting or diagnosing the SFTS virus gene, and sensitivity and specificity tests were performed.
その結果、図1に示したように、プラスミドDNA(SFTSウイルスのS segmentがクローニングされた組み換えベクターDNA)を用いて検出限界(Limit of Detection,LOD)を確認したとき、上記表2のプライマー及びプローブのうち、No.1のプライマー及びプローブを使用した場合、他のプライマー及びプローブを使用した群に比べてより優れた感度及び特異度を示し、また、既存のSFTSウイルス検出のための検査法に比べてもより優れた感度及び特異度を示した。具体的に、No.1のプライマー及びプローブを使用した場合、リアルタイムRT-PCR分析の結果、95%検出(LOD95%)が39.739copy/test(ct 40.3)と確認され、既存のSFTSウイルス検出用検査法遂行時には、96.332copy/test(ct 38.9)であり、本発明で考案したプライマー及びプローブを使用した場合、リアルタイムRT-PCRの感度がより高いことから、SFTSウイルス遺伝子の検出及び診断のために時間とコストをいずれも節約することができ、検出効果が優れていることが分かった。 As a result, as shown in Figure 1, when the limit of detection (LOD) was confirmed using plasmid DNA (recombinant vector DNA in which the S segment of SFTS virus was cloned), the primers and the LOD in Table 2 above were confirmed. Among the probes, No. The use of primers and probe No. 1 showed superior sensitivity and specificity compared to groups using other primers and probes, and was also superior to existing test methods for SFTS virus detection. The sensitivity and specificity were demonstrated. Specifically, No. When using primers and probe 1, real-time RT-PCR analysis confirmed that 95% detection (LOD 95%) was 39.739 copies/test (ct 40.3), and the existing SFTS virus detection test method was performed. Sometimes 96.332 copies/test (ct 38.9), and due to the higher sensitivity of real-time RT-PCR when using the primers and probes devised in the present invention, it is recommended for the detection and diagnosis of SFTS virus genes. It was found that both time and cost can be saved and the detection effect is excellent.
<実施例3>
患者から収得した試料を対象として本発明のSFTSウイルス遺伝子検出又は診断用プライマーとプローブを用いたSFTS検出能分析
<Example 3>
SFTS virus gene detection or SFTS detectability analysis using diagnostic primers and probes of the present invention in samples obtained from patients
本発明者等は、本発明で考案したSFTSウイルス遺伝子検出又は診断用プライマーとプローブ(上記表1のNo.1のプライマー(SFTS-S 583F,653R プライマー)及びプローブ(SFTS-S 602P プローブ))が実際にSFTS感染を診断するのに使用可能か確認するために、次のような実験を遂行した。 The present inventors have proposed primers and probes for SFTS virus gene detection or diagnosis devised in the present invention (primers No. 1 in Table 1 above (SFTS-S 583F, 653R primers) and probes (SFTS-S 602P probe)). In order to confirm whether it can actually be used to diagnose SFTS infection, the following experiment was performed.
このために実験に使用した試料は下記3つを満たす患者から収得した試料を対象として分析した。 For this purpose, the samples used in the experiment were obtained from patients satisfying the following three conditions and analyzed.
1.満19歳以上の者
2.SFTS感染と考慮される者
症状発生後から研究参加評価時点までSFTS症状が客観的に確認された者であり、下記に該当する者
-発熱(腋窩温>37.8℃)
-血小板減少症(platelet<100 X 109/L)
-白血球減少症(WBC<5 X 109/L)
3.感染内科医によってSFTSが疑われる場合
1. Those who are 19 years of age or older 2. Persons considered to be infected with SFTS Persons for whom SFTS symptoms have been objectively confirmed from the onset of symptoms to the time of study participation evaluation, and those who fall under the following - Fever (axillary temperature >37.8℃)
- Thrombocytopenia (platelet<100 X 109/L)
-Leukopenia (WBC<5 x 109/L)
3. When SFTS is suspected by an infectious physician
上の3つを満たす患者を対象としてSFTS RT-PCR検査を施行し、SFTSの確定診断は、IFA4倍以上上昇またはウイルス分離と定義して各々のPCR法を遂行し、正確度を評価した。 SFTS RT-PCR tests were performed on patients who met the above three conditions, and a definitive diagnosis of SFTS was defined as a 4-fold increase in IFA or virus isolation, and each PCR method was performed to evaluate the accuracy.
また、感度確認検体は2018年度SFTS患者を対象として進められ、患者36人から119個の血液検体を収集して使用し、特異度確認のための検体は2008年から2018年の間に収集された検体でSFTSではない他疾患と確定診断された患者50人を対象として進められた。参考として、特異度検査のために陰性対照群として使用した病原体とウイルスのリストは、図4に示した。 In addition, sensitivity confirmation samples were collected and used for SFTS patients in 2018, and 119 blood samples were collected from 36 patients, and samples for specificity confirmation were collected between 2008 and 2018. The study was conducted on 50 patients who were confirmed to have other diseases other than SFTS using sample samples. For reference, a list of pathogens and viruses used as a negative control group for specificity testing is shown in Figure 4.
感度及び特異度の比較のために他のPCRを施行したが、患者のplasma、WB(whole blood)からウイルスRNAを抽出し、上記抽出はウイルスGene-spinTMウイルスDNA/RNA抽出キット(intron)を用いて遂行した。以後、上記RNAからSuperScript VILO MasterMix(Invitrogen)を用いてcDNAを合成し鋳型DNAとして使用し、リアルタイムRT-PCRが次のように進められた。 Other PCR was performed to compare sensitivity and specificity, but viral RNA was extracted from plasma and WB (whole blood) of patients, and the above extraction was performed using Virus Gene-spinTM Viral DNA/RNA Extraction Kit (intron). It was carried out using Thereafter, cDNA was synthesized from the above RNA using SuperScript VILO MasterMix (Invitrogen) and used as template DNA, and real-time RT-PCR was performed as follows.
SFTSウイルスのSセグメントをターゲットとするリアルタイムRT-PCRは、本発明で考案したプライマー及びプローブを用いた方法と下記表3の従来開示された方法のPCRで各々進行し、Sセグメントをターゲットとするnested RT-PCR及びMセグメントをターゲットとするRT-PCRを遂行した。リアルタイムRT-PCRは、LightCycler TaqMan Master(Roche Diagnostics,Indianapolis)を使用し、96 Excycler(Bioneer)機器でPCRを遂行した。RT-PCRとnested RT-PCRは、Accupower PCR premix(Bioneer)とcDNAを用いてPCRを遂行した。遂行された各々のPCRの情報は、下記表4に示した通りである。 Real-time RT-PCR targeting the S segment of the SFTS virus is performed by the method using the primers and probes devised in the present invention and the previously disclosed method of PCR shown in Table 3 below, and targets the S segment. Nested RT-PCR and RT-PCR targeting the M segment were performed. Real-time RT-PCR was performed on a 96 Excycler (Bioneer) instrument using a LightCycler TaqMan Master (Roche Diagnostics, Indianapolis). RT-PCR and nested RT-PCR were performed using Accupower PCR premix (Bioneer) and cDNA. Information on each PCR performed is shown in Table 4 below.
表3:PCRに使用したプライマー、プローブ情報 Table 3: Primer and probe information used for PCR
表4:PCR遂行条件 Table 4: PCR performance conditions
表5:感度及び特異度結果 Table 5: Sensitivity and specificity results
分析の結果、上記表5に示したように、他のPCR方法に比べて本発明で考案したプライマー及びプローブを用いて遂行したリアルタイムRT-PCR分析結果が感度及び特異度分析で最も優れた値を示したことから、検出効果が最も優れていることが分かり、既存の他の方法に比べて1~2時間の短い時間でSFTSウイルスを正確に診断及び検出できることが示されている。 As a result of the analysis, as shown in Table 5 above, the real-time RT-PCR analysis results performed using the primers and probes devised in the present invention had the best values in terms of sensitivity and specificity compared to other PCR methods. It was found that the detection effect was the best, and it was shown that the SFTS virus could be accurately diagnosed and detected in a short time of 1 to 2 hours compared to other existing methods.
<実施例4>
本発明のSFTSウイルス遺伝子検出又は診断用プライマーとプローブを用いたSFTS検出正確度検証
<Example 4>
Verification of SFTS detection accuracy using SFTS virus gene detection or diagnostic primers and probes of the present invention
<4-1>来院当時の検体を用いたPCR診断法の正確度
来院当時の患者検体(血液)を対象として本発明で考案したSFTSウイルス遺伝子検出用プライマー及びプローブを用いたPCR分析法でSFTS検出に対する感度及び特異度検証分析を遂行した。
<4-1> Accuracy of PCR diagnostic method using specimens obtained at the time of hospital visit SFTS was detected using the PCR analysis method using primers and probes for detecting the SFTS virus gene devised in the present invention using patient samples (blood) at the time of hospital visit. Sensitivity and specificity validation analysis for detection was performed.
表6:来院当時の検体を用いたPCR診断法の正確度 Table 6: Accuracy of PCR diagnostic method using samples at the time of visit
-SQ ref、リアルタイムRT-PCR(S-segment,reference);SQ design、リアルタイムRT-PCR(S-segment,design,本発明)
-SQ ref, real-time RT-PCR (S-segment, reference); SQ design, real-time RT-PCR (S-segment, design, present invention)
表7:来院当時の検体を用いたPCR診断法の正確度の比較 Table 7: Comparison of accuracy of PCR diagnostic method using samples at the time of visit
-SQ ref、リアルタイムRT-PCR(S-segment,reference);SQ design、リアルタイムRT-PCR(S-segment,design,本願発明)
-SQ ref, real-time RT-PCR (S-segment, reference); SQ design, real-time RT-PCR (S-segment, design, claimed invention)
その結果、上記表6及び図2に示したように、SFTSのSセグメントをターゲットとしたリアルタイムRT-PCR分析の結果、本発明で考案したプライマー及びプローブを使用した群が他の種類のプライマー及びプローブを使用した群に比べて最も優れた感度及び特異度を示し、具体的に、感度97.2%及び特異度100%の結果を確認することができた。一方、Sセグメントをターゲットとしたnested RT-PCR分析では91.67%の感度結果を示したが、nested RT-PCRは二回のPCRを遂行しなければならない手間があり、これによるPCR汚染可能性がより高いことを考慮するとき、本発明のプライマー及びプローブを使用する方がより正確で優れた検査結果を導出できることが分かった。 As a result, as shown in Table 6 and Figure 2 above, as a result of real-time RT-PCR analysis targeting the S segment of SFTS, the group using the primers and probe devised in the present invention was found to be superior to the group using other types of primers and probes. It showed the highest sensitivity and specificity compared to the group using a probe, and specifically, it was possible to confirm the results of a sensitivity of 97.2% and a specificity of 100%. On the other hand, nested RT-PCR analysis targeting the S segment showed a sensitivity of 91.67%, but nested RT-PCR requires the hassle of performing two PCRs, which can cause PCR contamination. It was found that using the primers and probes of the present invention can lead to more accurate and better test results when considering the higher sensitivity.
また、上記のような結果に対して、AUCを用いた各感度及び特異度の比較分析で、本発明で考案したプライマー及びプローブを用いたリアルタイムRT-PCR法がMセグメントをターゲットとしたconventional RT-PCRより統計的にも有意味に正確度が高いことが確認された(表7参照)。 In addition, with respect to the above results, a comparative analysis of each sensitivity and specificity using AUC revealed that the real-time RT-PCR method using the primers and probe devised in the present invention is a conventional RT-PCR method targeting the M segment. - It was confirmed that the accuracy was statistically significantly higher than that of PCR (see Table 7).
<4-2>SFTS疑い患者の入院期間中に採血した検体を対象として本発明のSFTSウイルス遺伝子検出又は診断用プライマーとプローブを用いたPCR診断法の正確度評価 <4-2> Accuracy evaluation of the PCR diagnostic method using SFTS virus gene detection or diagnostic primers and probes of the present invention using blood samples collected during the hospitalization period of patients suspected of SFTS
さらに、本発明者等は、本発明で考案したプライマー及びプローブを用いてSFTS疑い患者の入院期間中に患者から収得した血液検体を対象としてSFTS検出に対する感度及び特異度分析を遂行した。具体的に、SFTSの確定診断は、IFA4倍以上上昇またはウイルス分離及び確認と定義し、SFTS患者と確定診断された患者36人から119個の血液検体及び他疾患と確定診断された患者50人を対象として上記実施例<4-1>のような方法で正確度検査を遂行した。 Further, the present inventors performed a sensitivity and specificity analysis for SFTS detection using the primers and probes devised in the present invention on blood samples obtained from patients suspected of having SFTS during their hospitalization period. Specifically, a confirmed diagnosis of SFTS is defined as a 4-fold increase in IFA or virus isolation and confirmation, and 119 blood samples were collected from 36 patients who were confirmed to be SFTS patients and 50 patients who were confirmed to have other diseases. An accuracy test was performed using the method described in Example <4-1> above.
また、SFTS疑い患者の入院期間中に採血した検体を対象として分析を遂行したのは、普通、患者が症状は発生したが初期に来院せず遅く来院する場合が頻繁にあり、他の疾患と疑われて治療している途中にSFTSが疑われて入院期間中にSFTS PCR検査法を依頼する場合も多いが、このような場合、診断の感度が低くなる問題点があることから、入院期間中や又は遅く来院した患者の試料を対象としても高い感度と特異度でSFTSの診断が可能であることを確認するためである。 In addition, the analysis was carried out on blood samples taken during the hospitalization period of patients suspected of having SFTS because patients usually do not come to the hospital early even though they develop symptoms, but often come late, and this may be due to other diseases. There are many cases where SFTS is suspected during treatment and a request is made for SFTS PCR testing during the hospitalization period. This is to confirm that it is possible to diagnose SFTS with high sensitivity and specificity even when using samples from patients who came to the hospital mid or late.
表8:入院期間中の検体を用いたPCR診断法の正確度 Table 8: Accuracy of PCR diagnostic method using specimens during hospitalization period
-SQ ref、リアルタイムRT-PCR(S-segment,reference);SQ design、リアルタイムRT-PCR(S-segment,design,本発明)
-SQ ref, real-time RT-PCR (S-segment, reference); SQ design, real-time RT-PCR (S-segment, design, present invention)
表9:入院期間中の検体を用いたPCR診断法の正確度の比較 Table 9: Comparison of accuracy of PCR diagnostic method using specimens during hospitalization period
-SQ ref、リアルタイムRT-PCR(S-segment,reference);SQ design、リアルタイムRT-PCR(S-segment,design,本発明)
-SQ ref, real-time RT-PCR (S-segment, reference); SQ design, real-time RT-PCR (S-segment, design, present invention)
その結果、表8~表9及び図3に示したように、SFTSのSセグメントをターゲットとし、本発明のプライマー及びプローブを用いて遂行したリアルタイムRT-PCR(本発明の方法)が既存のreal time RT-PCR法やnested RT-PCR法に比べて統計的に有意味に正確度がより高いことが示されており、他のプライマー及びプローブを使用した場合に比べてもより優れた感度を示している。 As a result, as shown in Tables 8 to 9 and FIG. It has been shown to be statistically significantly more accurate than time RT-PCR and nested RT-PCR, and has superior sensitivity compared to other primers and probes. It shows.
<4-3>多様な病原体とウイルスを対象として本発明のSFTSウイルス遺伝子検出又は診断用プライマーとプローブを用いたPCR診断法の正確度分析 <4-3> Accuracy analysis of PCR diagnostic method using SFTS virus gene detection or diagnostic primers and probes of the present invention for various pathogens and viruses
本発明で考案したプライマー及びプローブを用いて図4のバクテリア及びウイルスを対象として特異度を分析した。 Specificity was analyzed using the primers and probes devised in the present invention for the bacteria and virus shown in FIG.
その結果、多様な疾病の原因であるバクテリアではいずれも陰性と確認され、また、SFTSVではない他のウイルスを対象とした場合、検出されず、デングウイルス、インフルエンザウイルス、A型肝炎ウイルス及びハンターンウイルス(Hantaan virus)に感染した患者の検体でいずれも検出されないことを確認した。 As a result, it was confirmed that all bacteria that cause various diseases were negative, and when other viruses other than SFTSV were detected, they were not detected, including dengue virus, influenza virus, hepatitis A virus, and Hantan virus. It was confirmed that none of the above was detected in samples from patients infected with (Hantaan virus).
したがって、このような結果を通して、本発明で考案したプライマー及びプローブは、SFTSウイルスに対して優れた特異度を示すことが分かり、他のバクテリア菌株及びウイルスに対しては増幅産物が検出されず、SFTSウイルスを特異的に検出できることが分かった。 Therefore, these results show that the primers and probes devised in the present invention exhibit excellent specificity for the SFTS virus, and no amplification products were detected for other bacterial strains or viruses. It was found that the SFTS virus could be specifically detected.
<実施例5>
韓国、日本及び中国系統群のSFTSウイルス検出可能性分析
<Example 5>
SFTS virus detectability analysis of Korean, Japanese and Chinese phylogenetic groups
最近の研究結果によれば、各国別に発生する重症熱性血小板減少症候群の原因となるSFTSウイルスの遺伝子配列が互いに異なることが確認された。一方、未だ多様な系統群(clade)のSFTSウイルスを同時に検出することができる検出技術が開発されていないが、本発明者等は本発明で考案したプライマー及びプローブを用いる場合、各々多様な系統群のSFTSウイルスをいずれも検出できるかを確認するために次のような実験を遂行した。 According to recent research results, it has been confirmed that the genetic sequences of SFTS viruses, which cause severe fever and thrombocytopenia syndrome that occur in different countries, are different from each other. On the other hand, although a detection technology that can simultaneously detect SFTS viruses of various clades has not yet been developed, the present inventors believe that when using the primers and probes devised in the present invention, In order to confirm whether all SFTS viruses in the group could be detected, the following experiment was performed.
具体的に、SFTSウイルスは、ウイルス遺伝子塩基配列によって系統群分析するとき、Korea、Japan、China cladeに分類されるが、韓国のSFTS患者は3ヶ国cladeがいずれも確認されている。よって、下記表10A~表10Bのように各々異なる系統群のSFTSVに感染した患者の試料を対象として本発明のプライマー及びプローブを用いて上述された実施例で遂行されたリアルタイムRT-PCRを行った。また、本発明で使用したSFTSVの系統群及び各試料に対する分類は、図5に示した。 Specifically, SFTS virus is classified into Korea, Japan, and China clades when analyzed by phylogenetic group based on the virus gene nucleotide sequence, and SFTS patients in South Korea have been confirmed to belong to all three clades. Therefore, as shown in Tables 10A and 10B below, real-time RT-PCR was performed using the primers and probes of the present invention on samples from patients infected with SFTSV of different phylogenetic groups as in the above-described embodiments. Ta. Furthermore, the phylogenetic group of SFTSV used in the present invention and the classification for each sample are shown in FIG.
表10A~表10B:韓国、日本及び中国系統群のSFTSウイルス検出可能性分析 Table 10A-Table 10B: SFTS virus detectability analysis of Korean, Japanese and Chinese phylogenetic groups
-C,Chinese clade;J,Japanese clade;K, Korean clade;SQ design、リアルタイムRT-PCR(S-segment,design,本発明)
-C, Chinese clade; J, Japanese clade; K, Korean clade; SQ design, real-time RT-PCR (S-segment, design, present invention)
分析の結果、上記表10に示したように、3ヶ国cladeに感染したすべてのSFTS患者の試料で本発明のプライマー及びプローブを使用する場合、すべての増幅物を確認することができ、このような結果を通して本発明者等は、本発明で考案した方法が韓国、日本及び中国系統群のSFTSウイルスをいずれも検出できることが分かった。 As a result of the analysis, as shown in Table 10 above, when using the primers and probes of the present invention in samples from all SFTS patients infected with clade from three countries, all the amplified products could be confirmed. Through these results, the present inventors found that the method devised in the present invention can detect SFTS viruses of Korean, Japanese, and Chinese phylogenetic groups.
<実施例6>
ダニ試料を対象として本発明のSFTSウイルス遺伝子検出又は診断用プライマーとプローブを用いたSFTSの検出
<Example 6>
SFTS virus gene detection of the present invention or detection of SFTS using diagnostic primers and probes in tick samples
ダニにかまれて病院に来院した患者からマダニ55個を採取し、これらを対象として本発明のプライマー(配列番号2、3)とプローブ(配列番号4)を用いてSFTSVに対するRT-PCRを遂行した結果、54個のダニ試料からは陰性と確認され、1個のダニ試料からは陽性と確認された。Nested RT-PCR検査においても同様に54個のダニ試料からは陰性と確認され、1個のダニについてのみ陽性と確認され、本発明のリアルタイムRT-PCRを施行した結果においても同様に陽性と確認され、塩基配列分析の結果、SFTSウイルスと確認された(図6参照)。 55 ticks were collected from a patient who came to the hospital after being bitten by a tick, and RT-PCR for SFTSV was performed on these using the primers (SEQ ID NO: 2, 3) and probe (SEQ ID NO: 4) of the present invention. As a result, 54 tick samples were confirmed to be negative, and 1 tick sample was confirmed to be positive. Similarly, in the nested RT-PCR test, 54 tick samples were confirmed to be negative, and only one tick was confirmed to be positive, and the results of the real-time RT-PCR of the present invention were also confirmed to be positive. As a result of nucleotide sequence analysis, it was confirmed to be SFTS virus (see Figure 6).
したがって、このような結果を通して本発明者等は、本発明で考案したプライマー及びプローブは、ヒト由来の試料だけではなくダニ試料を対象としてもSFTSV検出が可能であることが分かり(SFTS SQ-PCR(ref)Ct 30.25値を示し、SFTS SQ-PCR(design)Ct 27.98値を示した)(図6参照)、このような結果は、本発明のプライマー及びプローブを用いたRT-PCR分析結果を通してもSFTSV検出が可能であることが分かった(図6参照)。 Therefore, through these results, the present inventors found that the primers and probes devised in the present invention are capable of detecting SFTSV not only in human-derived samples but also in tick samples (SFTS SQ-PCR). (ref) Ct value of 30.25 and SFTS SQ-PCR (design) Ct value of 27.98) (see Figure 6), these results are consistent with the RT-PCR using the primers and probes of the present invention. It was found that SFTSV could also be detected through PCR analysis results (see Figure 6).
以上の結果を通して、本発明者等は、重症熱性血小板減少症候群の原因ウイルスであるSFTSウイルスのSセグメント内でnonstructural S protein(NSs)遺伝子の塩基配列を検出及び増幅させることができる本発明で考案されたプライマー及びプローブを用いてリアルタイムRT-PCRを遂行する場合、韓国だけでなく中国及び日本で流行する遺伝型のウイルスによって発生する重症熱性血小板減少症候群も正確且つ迅速に検出でき、優れた正確度で診断できることが分かった。 Through the above results, the present inventors have devised the present invention that can detect and amplify the base sequence of the nonstructural S protein (NSs) gene within the S segment of the SFTS virus, which is the causative virus of severe fever and thrombocytopenia syndrome. When real-time RT-PCR is performed using the primers and probes developed, severe fever and thrombocytopenia syndrome caused by the genetic type of virus prevalent not only in Korea but also in China and Japan can be detected accurately and quickly, and has excellent accuracy. It turns out that it can be diagnosed based on the degree of
以上、本発明についてその望ましい実施例を中心に考察した。本発明の属する技術分野において通常の知識を有する者は、本発明が本発明の本質的な特性から逸脱しない範囲で変形された形態で具現され得ることを理解できるはずである。よって、開示されている実施例は、限定的な観点ではなく説明的な観点で考慮されなければならない。本発明の範囲は、上述の説明ではなく特許請求の範囲に示されており、それと同等な範囲内にある全ての差異点は本発明に含まれているものと解釈されなければならないと言える。 The present invention has been discussed above, focusing on its preferred embodiments. Those skilled in the art to which the present invention pertains should be able to understand that the present invention may be embodied in modified forms without departing from the essential characteristics of the present invention. Accordingly, the disclosed embodiments are to be considered in an illustrative rather than a restrictive light. The scope of the present invention is indicated in the claims rather than the above description, and it can be said that all differences within the equivalent range must be construed as being included in the present invention.
Claims (7)
(2)上記RNAからcDNAを合成する段階;
(3)上記段階(2)で合成したcDNAを鋳型とし、請求項3のキットを用いてリアルタイムRT-PCR増幅を遂行する段階;及び
(4)上記段階(3)を通して重症熱性血小板減少症候群ウイルスの遺伝子を確認する段階;を含む、
重症熱性血小板減少症候群(SFTS)感染診断のための情報提供方法。 (1) Isolating viral RNA from a sample isolated from a patient suspected of having severe fever and thrombocytopenia syndrome;
(2) step of synthesizing cDNA from the above RNA;
(3) using the cDNA synthesized in step (2) as a template and performing real-time RT-PCR amplification using the kit of claim 3; and (4) performing severe fever thrombocytopenia syndrome virus through step (3) above. confirming the gene of;
A method for providing information for diagnosing Severe Fever Thrombocytopenia Syndrome (SFTS) infection.
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| KR1020190106466A KR102141369B1 (en) | 2019-08-29 | 2019-08-29 | Composition for detecting Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome viral RNA and method of diagnosing Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome using the same |
| KR10-2019-0106466 | 2019-08-29 | ||
| PCT/KR2020/009829 WO2021040245A1 (en) | 2019-08-29 | 2020-07-24 | Composition for detecting severe fever with thrombocytopenia syndrome virus gene and method for diagnosing severe fever with thrombocytopenia syndrome using same |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2022546507A JP2022546507A (en) | 2022-11-04 |
| JP7360752B2 true JP7360752B2 (en) | 2023-10-13 |
Family
ID=72041552
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2022513876A Active JP7360752B2 (en) | 2019-08-29 | 2020-07-24 | Severe fever thrombocytopenia syndrome virus gene detection composition and method for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome using the same |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP7360752B2 (en) |
| KR (1) | KR102141369B1 (en) |
| WO (1) | WO2021040245A1 (en) |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102618669B (en) | 2012-04-12 | 2014-01-29 | 中国人民解放军济南军区联勤部疾病预防控制中心 | Kit and method for quickly examining loop SFTSV (severe fever with thrombocytopenia syndrome bunyavirus) mediated isothermal amplification of severe fever with thrombocytopenia syndrome bunyavirus |
| CN106191307A (en) | 2016-07-14 | 2016-12-07 | 江苏省疾病预防控制中心 | A kind of new Bunyavirus detection kit |
| JP2020026953A (en) | 2018-08-09 | 2020-02-20 | 国立大学法人 宮崎大学 | Kit for detecting antibody of severe fever with thrombocytopenia syndrome virus and method for detecting antibody of severe fever with thrombocytopenia syndrome virus |
| JP2020065488A (en) | 2018-10-24 | 2020-04-30 | 国立感染症研究所長 | Severe febrile thrombocytopenia syndrome (SFTS) virus detection primer set |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR101630499B1 (en) * | 2013-10-11 | 2016-06-15 | 서울대학교산학협력단 | Viruses associated with Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome and Methods and Kits for diagnosing SFTS using the same |
| CN105296674A (en) * | 2015-12-03 | 2016-02-03 | 江苏省疾病预防控制中心 | Detecting kit for severe fever with thrombocytopenia syndrome viruses (SFTSV) and preparation method of detecting kit |
| KR101764321B1 (en) * | 2015-12-22 | 2017-08-04 | 대한민국 | Kits for diagnosing SFTS virus |
| KR101786311B1 (en) * | 2016-03-16 | 2017-10-17 | 이미영 | Primer set for detecting SFTS virus and kit for diagnosing SFTS using the same |
| KR101728420B1 (en) * | 2016-08-10 | 2017-04-21 | 대한민국 | The method for detecting Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome Virus using Multiplex Real-Time RT-PCR |
| KR102019804B1 (en) | 2017-09-28 | 2019-11-04 | 충북대학교 산학협력단 | Primer set for detection of SFTSV and SFTSV detection method using the same |
| KR102145657B1 (en) * | 2017-11-30 | 2020-08-18 | 가톨릭대학교 산학협력단 | A primer set for detecting Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome virus and a method of diagnosing Severe Fever with Thrombocytopenia Syndrome using the same |
-
2019
- 2019-08-29 KR KR1020190106466A patent/KR102141369B1/en active Active
-
2020
- 2020-07-24 JP JP2022513876A patent/JP7360752B2/en active Active
- 2020-07-24 WO PCT/KR2020/009829 patent/WO2021040245A1/en not_active Ceased
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102618669B (en) | 2012-04-12 | 2014-01-29 | 中国人民解放军济南军区联勤部疾病预防控制中心 | Kit and method for quickly examining loop SFTSV (severe fever with thrombocytopenia syndrome bunyavirus) mediated isothermal amplification of severe fever with thrombocytopenia syndrome bunyavirus |
| CN106191307A (en) | 2016-07-14 | 2016-12-07 | 江苏省疾病预防控制中心 | A kind of new Bunyavirus detection kit |
| JP2020026953A (en) | 2018-08-09 | 2020-02-20 | 国立大学法人 宮崎大学 | Kit for detecting antibody of severe fever with thrombocytopenia syndrome virus and method for detecting antibody of severe fever with thrombocytopenia syndrome virus |
| JP2020065488A (en) | 2018-10-24 | 2020-04-30 | 国立感染症研究所長 | Severe febrile thrombocytopenia syndrome (SFTS) virus detection primer set |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| WO2021040245A1 (en) | 2021-03-04 |
| KR102141369B1 (en) | 2020-08-05 |
| JP2022546507A (en) | 2022-11-04 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN111004870B (en) | Novel coronavirus N gene nucleic acid detection kit | |
| Fischer et al. | Detection and differentiation of field and vaccine strains of canine distemper virus using reverse transcription followed by nested real time PCR (RT-nqPCR) and RFLP analysis | |
| CN113862262B (en) | RAA primers, kits and applications for detecting hepatitis C virus | |
| Viedma et al. | Optimization of qRT-PCR assay for zika virus detection in human serum and urine | |
| CN104195268A (en) | Reagent box for detecting aftosa A type, O type and Asia 1 type viruses and preparing method thereof | |
| CN101967525B (en) | Real-time fluorescence quantitative PCR (Polymerase Chain Reaction) detection kit for BDV (Borna Disease Virus) p24 segment | |
| CN111286559B (en) | Primers, probes and kits for detection of African swine fever virus | |
| Postel et al. | Development of a new LAMP assay for the detection of CSFV strains from Cuba: a proof-of-concept study | |
| CN102367488B (en) | Enterovirus triple real-time fluorescent quantitative RT-PCR detection kit | |
| CN102952897A (en) | RT-PCR (Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction) fluorescence detection kit for rubella virus and detection method thereof | |
| TW201139687A (en) | Nucleic acid detection | |
| CN116622872A (en) | Salmonella gallinarum molecular detection kit and non-diagnostic detection method thereof | |
| CN103436637B (en) | SYBR Green I Real-time PCR method for quickly detecting and indentifying Hantaan virus infection | |
| CN111004869B (en) | Fluorescent quantitative PCR primers and reference standards for the identification of genetic evolutionary lineages of H1N1 subtype influenza viruses | |
| JP7360752B2 (en) | Severe fever thrombocytopenia syndrome virus gene detection composition and method for diagnosing severe fever thrombocytopenia syndrome using the same | |
| KR101503039B1 (en) | Diagnostic primer for the heatitis c virus, probe, kit including same, and method for diagnosing the hepatitis c virus using the kit | |
| CN117025845A (en) | Primer and probe for detecting RT-RPA-LFD method of sweet potato chlorosis dwarf virus | |
| Nejad et al. | An outlook on coronavirus disease 2019 detection methods | |
| CN103602762B (en) | For detecting nucleic acid and the real time fluorescent quantitative detection kit of new bunyavirus | |
| CN114592090A (en) | A dual fluorescence quantitative PCR detection primer, probe and kit for identifying genotype I and II African swine fever virus | |
| KR102870862B1 (en) | Composition for detecting filovirus and method for detecting filovirus using the same | |
| KR102826764B1 (en) | Detection method of Hantaan virus based Third-generation sequencing | |
| Diao et al. | Function, Development and Challenges of COVID-19 Diagnostic Methods in Two Areas: RT-PCR Tests and Serology Tests | |
| CN109943667A (en) | Primers, probes, kits and applications for detection of soybean mosaic virus based on RPA technology | |
| US12601017B2 (en) | Molecular detection of novel coronaviruses |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20220427 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20230418 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20230919 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20230925 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 7360752 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |