JP7410862B2 - プロセスクロマトグラフィーにおける故障モード検出のためのシステムおよび方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2018年2月15日に出願された米国特許出願第62/631,167号の利益を主張し、その内容は参照することにより全体が本明細書に組み込まれる。
本開示のシステムおよび方法は、分取または分析クロマトグラフィーのために使用されてもよい。一部の実施形態では、本開示の方法は、疾患の治療用の組成物において使用され得るタンパク質を精製するために使用される。特に、治療用タンパク質の大規模または大容量精製のための分取クロマトグラフィーを伴う方法について、精製プロセスの効率は本質的である。本開示のシステムおよび方法は、任意の規模において使用されてもよい。しかしながら、それらは、多数の調製物が処理されている場合、ならびに、機能障害のあるシステム(例えば、価値のある分析物を捕捉すべき場合に該分析物が分離組成物を通過するクロマトグラフィーカラム)が、価値のある製品および価値のある製造時間の損失を結果としてもたらす場合に特に有用である。本開示のシステムおよび方法は、リアルタイムでクロマトグラフィープロセスにおける機能不良を予測および検出し、機能障害のあるプロセスを同定した結果として、機能障害のあるプロセスを使用して追加の作業を行う前に機能の回復および効率的かつ信頼できる精製に戻すことを可能とする。
本開示は、湿式法および乾式法といった、カラムクロマトグラフィーの任意の形態を包含する。乾式法では、分離組成物は乾燥マトリックスを含み、乾燥マトリックスはその後に液体出発組成物と接触させられ、最適には、マトリックス全体を湿らせ、かつプロセス全体の終了までマトリックスが乾燥しないことを可能とする。湿式法では、分離組成物は、マトリックスおよび溶出液の懸濁液またはスラリーを含み、これがカラム中に導入された後、液体出発組成物と接触させられる。
本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、電荷に基づいて移動相の要素を分離する能力を有する任意の材料を含んでもよい。例えば、分離組成物は、出発組成物からの荷電したタンパク質分析物に可逆的に結合するマトリックスを含んでもよい。したがって、分離マトリックスは、陰イオンまたは陽イオン交換クロマトグラフィーのために好適なものであってもよく、それぞれ正味の負または正電荷を有するマトリックスを含んでもよい。本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、セファロースまたはQセファロースを含むマトリックスを含む。本開示の一部の実施形態では、クロマトグラフィーカラムはQカラムである。
本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、抗原/抗体結合パートナー、酵素/基質結合パートナー、受容体/リガンド結合パートナー、タンパク質/タンパク質結合パートナー、タンパク質/核酸結合パートナー、および核酸/核酸結合パートナーが挙げられるがこれらに限定されない結合パートナー間の特異的相互作用に基づいて移動相の要素を分離する能力を有する任意の材料を含んでもよい。例えば、分離組成物は、結合パートナーの他のパートナーを含むことにより結合パートナーの1つのパートナー(例えば、出発組成物からの分析物)に可逆的に結合するマトリックスを含んでもよい。例として、分離組成物は、出発組成物の分析物が特異的に結合して出発材料からの抗体分析物を選択的に精製する抗原を含むマトリックスを含んでもよい。さらなる実例として、分離組成物は、VEGF-Trapが選択的に結合して出発材料からのVEGF-Trap分析物を選択的に精製するVEGFタンパク質のエピトープを含むマトリックスを含んでもよい。
本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、相対的な疎水性に基づいて移動相の要素を分離する能力を有する任意の材料を含んでもよい。HICは、より低い変性性の条件下で作動する条件およびマトリックスの使用の結果としてその生物学的活性を維持しながらタンパク質分析物を選択的に精製するために使用されてもよい。一部の実施形態では、疎水性および親水性領域を含有する本開示の分析物は、高塩緩衝液中でHICカラムに接触させられる。緩衝液中の塩は、出発材料中の分析物の溶質の溶媒和を低減する。溶媒和が減少するにつれて、曝露される疎水性領域は媒体により吸着される。出発材料中の分子がより疎水性になればなるほど、結合を促進するためにより少ない塩が必要とされる。疎水性を増加させるために、塩勾配の減少を使用してカラムから試料を溶出させてもよい。本開示の溶出緩衝液はまた、穏やかな有機調節剤または穏やかな洗浄剤を含んでもよい。
本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、相対的なサイズ、または一部の場合には、相対的な分子量に基づいて移動相の要素を分離する能力を有する任意の材料を含んでもよい。SECは、タンパク質およびポリマーなどの大きい分子または高分子複合体を選択的に精製するために使用されてもよい。一部の実施形態、例えば、カラムを通じて移動相を輸送するために水性溶液が使用される実施形態では、技術は、ゲル濾過クロマトグラフィーとして公知である。一部の実施形態、例えば、カラムを通る移動相として有機溶媒が使用される実施形態では、技術はゲル浸透クロマトグラフィーとして公知である。一部の実施形態では、クロマトグラフィーカラムは、例えば、デキストランポリマー(Sephadex)、アガロース(Sepharose)、またはポリアクリルアミド(SephacrylまたはBioGel P)から構成される微細な多孔性ビーズを充填される。これらのビーズの孔径は、高分子の寸法を推定するために使用される。ゲル濾過クロマトグラフィーを使用してタンパク質分析物および他の水溶性ポリマーを分別することができ、ゲル浸透クロマトグラフィーを使用して、分子量分布に基づいて有機可溶性ポリマーを分別することができる。
本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、吸着剤材料との分離組成物の相互作用に基づいて移動相の要素を分離する能力を有する任意の材料を含んでもよく、該相互作用は、異なる成分について異なる流速を引き起こし、それらがカラムから流出する際の成分の分離に繋がる。移動相中の分析物は、例えば、疎水性、イオン性または双極子-双極子相互作用を通じて分離され得る。HPLCは、ポンプに依拠して、移動相を含有する加圧された液体溶媒を、固体吸着剤材料を充填したカラムに通す。一部の実施形態では、カラムの活性成分、吸着剤は、固体粒子(例えば、シリカまたはポリマー)から作られた粒状材料を含む。例示的な粒子サイズとしては2~50ミクロンの粒子が挙げられ、この小さいサイズは、HPLCクロマトグラフィーに優れた分解能力を与えることができる。一部の実施形態では、加圧される移動相は、水、アセトニトリルおよび/またはメタノールなどの溶媒の混合物である。一部の実施形態では、HPLCポンプは、時間と共に変化する比で複数の溶媒を混合して、移動相中の勾配組成物を生成する。一部の実施形態では、移動相の水性成分は、酸(例えば、ギ酸、リン酸もしくはトリフルオロ酢酸)または塩を含有して試料成分の分離を補助する。一部の実施形態では、HPLCは、分配クロマトグラフィー、順相クロマトグラフィー、置換クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、疎水性(hydropobic)相互作用クロマトグラフィーまたは水性順相クロマトグラフィーを含む。
本開示の一部の実施形態では、分離組成物は、分離組成物についての異なる親和性に基づいて移動相の要素を分離する能力を有する任意の材料を含んでもよい。高速タンパク質液体クロマトグラフィー(FPLC)は、タンパク質分析物の混合物を分離するために使用される液体クロマトグラフィーの形態である。一部の実施形態では、移動相の異なる成分が移動相および固定相(分離組成物)について異なる親和性を有するので分離が可能である。一部の実施形態では、移動相は、水性溶液、または緩衝液である。緩衝液の流速は、容積式ポンプにより制御され得る。一部の実施形態では、緩衝液の流速は一定であり、かつ、緩衝液の組成は変化する。一部の実施形態では、固定相は、ビーズ、例えばアガロースビーズから構成される樹脂である。当業者は、特定の応用の移動相および分析物に依存してビーズサイズおよび固定相の表面リガンドを変更することができる。
本開示の方法の一部の実施形態では、固定相を通る移動相の流れは重力により制御される。一部の実施形態では、脱塩および親和性応用のような単一ステップ精製のために重力クロマトグラフィーが使用される。典型的な重力カラムは、底部に出口を有するクロマトグラフィーカラムに作動可能に連結された上部の緩衝液リザーバー要素を含む。流れは、緩衝液リザーバーとカラムとの間に止め栓またはチューブピンチャーを使用して制御される。試料投入のばらつきを最小化するためにフローアダプターを使用することができる。一部の実施形態では、重力クロマトグラフィーは、分配クロマトグラフィー、順相クロマトグラフィー、置換クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィーまたは水性順相クロマトグラフィーを含む。
本開示は、溶出液、溶媒、無菌溶媒、および薬学的に許容される担体が挙げられるがこれらに限定されない、移動相の任意の形態を包含する。本開示の溶出組成物は、薬学的に許容される担体を含んでもよい。
本開示は、シリカ、アルミナ(Al2O3)、セルロース、セファロースおよびQセファロースが挙げられるがこれらに限定されない、固定相の任意の形態を包含する。例示的な本開示の分離組成物は、マトリックス、ポリマー、樹脂、タンパク質、またはその組合せを含んでもよい。一部の実施形態では、分離組成物は、セファロースまたはQセファロースを含む。
本明細書において使用される場合、クロマトグラムはクロマトグラフのビジュアルな出力である。典型的には、溶出液の保持時間および/または流出体積はクロマトグラムのx軸に表され、シグナルはy軸にプロットされる。例示的なシグナルとしては、電気コンダクタンス、吸光度および質量分析が挙げられるがこれらに限定されず、クロマトグラフを出る分析物に対する検出器の応答に対応する。一部の実施形態では、このシグナルは、クロマトグラフにより分離されている特定の分析物の濃度に比例する。
本開示の方法の一部の実施形態では、分析物は、タンパク質、ペプチド、核酸またはウイルスを含む。一部の実施形態では、核酸はデオキシリボ核酸(DNA)またはリボ核酸(RNA)である。一部の実施形態では、ウイルスは、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルスまたはレンチウイルスである。
精製用の例示的な分析物としてVEGF-Trapを使用して、図1~8は、例示的な参照クロマトグラム(図1および図2)の他に、非定型プロファイルを有する例示的なプロセスクロマトグラム(図3~5)の両方を示す。
Claims (21)
- クロマトグラフィープロセスの機能不良を検出する方法であって、
(a)クロマトグラフィーカラムから参照クロマトグラムを生成すること、
(b)前記クロマトグラフィーカラムからプロセスクロマトグラムを生成すること、ここで前記プロセスクロマトグラムが、測定された吸光強度、最大吸光強度、および全体的体積ウィンドウを含む、
(c)前記プロセスクロマトグラムにおける非定型プロファイルを検出すること、ここで、前記非定型プロファイルは、前記クロマトグラフィープロセスの潜在的なまたは実際の機能不良を指し示し、
(i)前記参照クロマトグラム上の同等の位置と比較した場合の前記プロセスクロマトグラム上の追加のピーク、または
(ii)全体的体積ウィンドウの間の最大吸光強度を超える測定された吸光強度、ここで前記最大吸光強度は、少なくとも1つの参照クロマトグラムから推定される、を含む、
(d)前記非定型プロファイルが検出された場合に警告シグナルを生成すること、および
(e)前記クロマトグラフィーカラムの潜在的なまたは実際の機能不良が解消されるまで、前記クロマトグラフィープロセスを中止すること、
を含む、方法。 - (f)前記クロマトグラフィーカラムを再充填することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記クロマトグラフィープロセスが、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、または疎水性相互作用クロマトグラフィーにおいて使用するために好適なものである、請求項1または2に記載の方法。
- 前記クロマトグラフィープロセスの前記潜在的なまたは実際の機能不良がカラム劣化により引き起こされる、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記追加のピークが、前記クロマトグラフィープロセス中の洗浄ステップの間に起こる、または前記追加のピークが前記クロマトグラフィープロセスの洗浄ステップの間に起こり、かつ前記洗浄ステップが、前記クロマトグラフィープロセス中の溶出ステップに先行する、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記追加のピークの大きさが、前記クロマトグラフィープロセスの前記潜在的なまたは実際の機能不良の深刻度を指し示す、請求項5に記載の方法。
- 前記追加のピークの大きさの増加が、前記クロマトグラフィープロセスの前記潜在的なまたは実際の機能不良の深刻度の増加であることを指し示す、請求項5または6に記載の方法。
- 前記測定された吸光強度が、紫外(UV)光に対応する波長において決定される、請求項1~7のいずれか1項に記載の方法。
- 前記測定された吸光強度が、端点を含めて260ナノメートル(nm)~280nmの波長において決定される、請求項8に記載の方法。
- 前記最大吸光強度が、少なくとも0.05のA260値またはA280値を有し、ここで、前記A260値は260nmの波長における前記測定された吸光強度を含み、および前記A280値は280nmの波長における前記測定された吸光強度を含む、請求項1~9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記参照クロマトグラムが、全体的体積ウィンドウの間の最大吸光強度を超えない測定された吸光強度を含み、かつ、前記最大吸光強度が、0.05以下のA260値またはA280値を有し、ここで、前記A260値は260nmの波長における前記測定された吸光強度を含み、および前記A280値は280nmの波長における前記測定された吸光強度を含む、請求項1~10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記全体的体積ウィンドウが、端点を含めて1000L~2500Lの流出体積において起こり、ここで前記流出体積は、前記クロマトグラフィーカラムを通過する液体の体積を含む、請求項1~11のいずれか1項に記載の方法。
- 前記クロマトグラフィーカラムが陰イオン交換樹脂を含む、請求項1~12のいずれか1項に記載の方法。
- 参照クロマトグラムを生成する前記ステップ(a)およびプロセスクロマトグラムを生成する前記ステップ(b)が、
(1)複数の予備決定された分析物を含む出発組成物と、マトリックスを含む分離組成物とを、前記出発組成物の少なくとも1つの分析物が前記マトリックスに可逆的に結合するために充分な条件下で接触させ、ここで、前記クロマトグラフィーカラムが前記分離組成物を含み、分析物結合カラムおよび第1の廃棄物組成物を生成すること;
(2)(1)の前記分析物結合カラムおよび洗浄組成物を接触させ、前記出発組成物の前記少なくとも1つの分析物が前記マトリックスに結合したままとなり、精製された分析物結合カラムおよび第2の廃棄物組成物を生成すること;
(3)(2)の前記精製された分析物結合カラムおよび溶出組成物を接触させ、前記少なくとも1つの分析物が前記マトリックスから前記溶出組成物中に放出されて、溶出した分析物の組成物を生成すること;
(4)前記溶出した分析物の組成物を回収すること;
(5)ステップ(1)~(4)のそれぞれと同時に、前記第1の廃棄物組成物、前記第2の廃棄物組成物、および前記溶出した分析物の組成物のそれぞれを紫外(UV)光と接触させること、
(6)前記第1の廃棄物組成物、前記第2の廃棄物組成物、および前記溶出した分析物の組成物のそれぞれの前記UV光の吸光度を測定して、前記第1の廃棄物組成物、前記第2の廃棄物組成物、および前記溶出した分析物の組成物のそれぞれについて吸光度値を生成すること;ならびに
(7)前記クロマトグラフィーカラムを通過する液体の体積の関数として前記第1の廃棄物組成物、前記第2の廃棄物組成物、および前記溶出した分析物の組成物のそれぞれの前記吸光度値をプロットすることによりクロマトグラムを生成すること
を含む、請求項1~13のいずれか1項に記載の方法。 - 前記接触ステップ(5)および測定ステップ(6)が連続的である、請求項14に記載の方法。
- 前記マトリックスが樹脂を含む、請求項14または15に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの分析物が生物学的組成物である、請求項14~16のいずれか1項に記載の方法。
- 前記生物学的組成物が、ヒト対象の治療方法において使用するための治療用組成物である、請求項17に記載の方法。
- 前記生物学的組成物が、VEGF-Trapタンパク質を含む、請求項17または18に記載の方法。
- 前記警告シグナルがプロセッサーに電子的に伝達され、かつ、前記プロセッサーが前記クロマトグラフィーカラムに作動可能に連結されている、請求項1~19のいずれか1項に記載の方法。
- 前記プロセッサーが前記警告シグナルを受信し、かつ前記クロマトグラフィーカラムの前記潜在的なまたは実際の機能不良が解消されるまで前記クロマトグラフィープロセスを中止しまたはさらなるクロマトグラフィープロセスの開始を防止する、請求項20に記載の方法。
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