JP7445752B2 - 新規の抗pd-l1抗体 - Google Patents
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Description
本出願は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、2019年9月25日出願PCT/CN2019/107689の優先権を主張する。
本出願は、配列表を含み、それは、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本出願は、概して、抗体に関する。より具体的には、本出願は、PD-L1に特異的に結合する単一ドメイン抗体、それを調製する方法、およびその使用に関する。
免疫チェックポイントを標的とすることが、がんを有する患者を処置するのにもっとも有望なアプローチとなっていることを示している、前臨床および臨床結果による根拠が増加している。
これらおよび他の目的が、本開示により提供されるが、本開示は、広義において、改善された有効性を有する抗体を提供する化合物、方法、組成物、および製品を対象とする。本開示によって提供される利点は、抗体治療薬および診断薬の分野において広く適用可能であり、様々な標的と反応する抗体と併せて使用することができる。本開示は、抗PD-L1抗体、好ましくは単一ドメイン抗体を提供する。抗体を調製するための方法、抗PD-L1抗体をコードする核酸分子、発現ベクターおよび抗PD-L1抗体の発現のために使用される宿主細胞も提供される。本開示の抗体は、PD-L1に関連する状態を処置するまたは予防するための方法を提供する。
一部の実施形態では、PD-L1結合分子は、以下の特性:
(a)ヒトPD-L1に1×10-9Mまたはそれよりも低いKDで結合すること;
(b)PD-L1のPD-1への結合を阻害すること;
(c)CD4+T細胞においてIFN-γまたはIL-2の産生を誘導すること;
(d)ヒトPD-L2、CD80およびCD86に実質的に結合しないこと;
(e)ヒト、マウスまたはカニクイザルPD-L1に交差反応性を有すること;および
(f)少なくとも60℃で安定であること
のうちの1つまたは複数を有する。
(A)配列番号4に記載されるアミノ酸配列;
(B)配列番号4と少なくとも85%、少なくとも90%もしくは少なくとも95%同一であるアミノ酸配列;または
(C)配列番号4と比較して1個もしくは複数(例えば、1個、2個、3個、4、5個、6個、7個、8個、9個もしくは10個)のアミノ酸の付加、欠失および/もしくは置換を含むアミノ酸配列
を含む。
一部の実施形態では、VHHは、アルパカまたはラマを含むラクダ類動物由来である。
一部の態様では、本開示は、がんなどの増殖性障害を処置するまたは予防するための医薬の製造における、本明細書において開示されるPD-L1結合分子の使用を対象とする。
一部の実施形態では、がんは、乳房、肺、結腸、卵巣、メラノーマ、膀胱、腎臓、肝臓、唾液腺、胃、神経膠腫、甲状腺、胸腺、上皮、頭頸部がん、胃および膵臓がんからなる群から選択される。
一部の態様では、本開示は、本明細書に開示されるPD-L1結合分子を使用するキットまたはデバイスおよび関連する方法ならびにがんなどの増殖性障害の処置のために有用である本明細書に開示される医薬組成物を対象とする。この目的で、本開示は、好ましくは、そのような障害を処置するのに有用な製品であって、本明細書に開示されるPD-L1結合分子を含む容器、ならびに本明細書に開示されるPD-L1結合分子を増殖性障害またはその進行もしくは再発の処置、緩和、または予防に使用するための指示材料を含む、製品を提供する。選択された実施形態では、デバイスおよび関連方法は、少なくとも1つの循環腫瘍細胞を本明細書に開示されるPD-L1結合分子に接触させるステップを含む。
本開示は、多数の異なる形態で実施され得るが、本明細書では、本開示の原理を例示する、その特定の例示的な実施形態が開示される。本開示は、例示される特定の実施形態に限定されないことが強調されるべきである。さらに、本明細書に使用される任意の節見出しは、構成上の目的のためのものにすぎず、記載される主題を制限するものとみなされるものではない。
本開示をより理解するために、関連する用語の定義および説明を、以下に提供する。
一部の態様では、本開示はPD-L1結合分子を含む。
本開示の抗体は、抗体の特定の機能的特長または特性によって特徴付けられる。一部の実施形態では、抗体は、以下の特性:
(a)ヒトPD-L1に1×10-9Mまたはそれよりも低いKDで結合すること;
(b)PD-L1のPD-1への結合を阻害すること;
(c)CD4+T細胞においてIFN-γまたはIL-2の産生を誘導すること;
(d)ヒトPD-L2、CD80およびCD86に実質的に結合しないこと;
(e)ヒト、マウスまたはカニクイザルPD-L1に交差反応性を有すること;および
(f)少なくとも60℃で安定であること
のうちの1つまたは複数を有する。
一部の実施形態では、本明細書に開示される抗PD-L1抗体は、少なくとも1つの免疫グロブリン単一可変ドメイン(例えば、VHH)を含み、ここでVHHはCDR1、CDR2およびCDR3を含み、CDR1は配列番号1に記載されるアミノ酸配列を含み、CDR2は配列番号2に記載されるアミノ酸配列を含み、CDR3は配列番号3に記載されるアミノ酸配列を含む。
一部の実施形態では、抗PD-L1抗体は少なくとも1つの免疫グロブリン単一可変ドメイン(例えば、VHH)を含み、ここでVHHは、
(A)配列番号4に記載されるアミノ酸配列;
(B)配列番号4に少なくとも85%、少なくとも90%もしくは少なくとも95%同一であるアミノ酸配列;または
(C)配列番号4と比較して1個もしくは複数(例えば、1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個もしくは10個)のアミノ酸の付加、欠失および/もしくは置換を含むアミノ酸配列
を含むかまたはそれからなる。
開示される抗体が、選択された標的またはその断片によって提示される分離したエピトープまたは免疫原決定基(immunogenic determinant)と会合する、またはそれに結合することはさらに理解される。一部の実施形態では、エピトープまたは免疫原決定基として、アミノ酸、糖側鎖、リン酸基またはスルホニル基などの化学的に活性な表面の分子グループが挙げられる。一部の実施形態では、エピトープは、特定の三次元的構造特徴および/または特定の電荷特徴を有する場合がある。したがって、本明細書において使用される場合、用語「エピトープ」は、免疫グロブリンもしくはT細胞受容体に特異的に結合できるまたは、そうでなければ分子と相互作用できる任意のタンパク質決定基を含む。一部の実施形態では、タンパク質および/または高分子の複合混合物中のその標的抗原を選択的に認識する場合に、抗体は抗原に特異的に結合する(または免疫特異的に結合もしくは反応する)と称される。一部の実施形態では、平衡解離定数(KD)が10-6M以下または10-7M以下である場合、より好ましくはKDが10-8M以下である場合、およびさらにより好ましくはKDが10-9M以下である場合に、抗体は抗原に特異的に結合すると称される。
一部の態様では、本開示は、本明細書において開示されるVHHをコードする核酸配列を含む単離された核酸分子を対象とする。
一部の態様では、本開示は、本明細書に開示される少なくとも1つのPD-L1結合分子および薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を対象とする。
医薬組成物は、別の抗体または薬物などの1つまたは複数の追加的な薬学的活性成分を任意選択で含有し得る。本開示の医薬組成物は、抗PD-L1抗体がワクチンに対する免疫応答を増強するように、例えば別の免疫刺激剤、抗がん剤、抗ウイルス剤またはワクチンを用いた併用治療で投与されてよい。薬学的に許容される担体として、例えば、薬学的に許容される液体、ゲルまたは固体担体、水性媒体、非水性媒体、抗菌剤、等張剤、緩衝液、抗酸化剤、麻酔剤、懸濁剤/分散剤、キレート剤、希釈剤、アジュバント、賦形剤または無毒性補助物質、構成成分の当技術分野において周知の他の種々の組合せなどが少なくとも挙げられる。
本開示の医薬組成物は、これだけに限らないが、経口、静脈内、動脈内、皮下、非経口、鼻腔内、筋肉内、頭蓋内、心臓内、脳室内、気管内、頬側、直腸内、腹腔内、皮内、局所、経皮的およびくも膜下腔内が挙げられる種々の経路によって、または他にインプラントまたは吸入によってそれを必要とする対象にin vivoで投与され得る。対象組成物は、これだけに限らないが、錠剤、カプセル、粉剤、顆粒剤、軟膏、液剤、座薬、浣腸、注射、吸入薬およびアエロゾルが挙げられる;固体、流動体、液体またはガス形態にある調製物に製剤化され得る。適切な製剤および投与の経路は、目的の適用および治療レジメンにより選択され得る。
本開示のPD-L1結合分子は、多数のin vitroおよびin vivoにおける有用性を有する。例えばこれらの分子は、培養中、in vitroもしくはex vivoの細胞に、またはヒト対象に、例えばin vivoで、種々の状況において免疫を増強するために投与され得る。免疫応答は、増大、刺激または上方制御され得る。
PD-L1に関連する状態および障害は、免疫関連疾患または障害である場合がある。
化学療法との併用使用
抗体は、抗がん剤、細胞傷害剤または化学療法剤との併用で使用され得る。
本開示は、抗体と、放射線療法(すなわち、腫瘍細胞内で局所的にDNAの損傷を誘導するための任意の機構、例えばガンマ線照射、X線、UV照射、マイクロ波、電子放出など)との併用も提供する。放射性同位元素の腫瘍細胞への方向付けられた送達を使用する併用療法も検討され、開示されるコンジュゲートは、標的化抗がん剤または他の標的化手段に関連して使用され得る。典型的には、放射線治療は、約1から約2週間の期間にわたってパルスで投与される。放射線治療は、頭頸部がんを有する対象に約6から7週間投与され得る。任意選択で放射線治療は、単一用量として、または複数、逐次用量として投与され得る。
本開示は、増殖性障害を検出する、診断するまたはモニタリングするためのin vitroおよびin vivo方法、および腫瘍原性細胞を含む腫瘍細胞を同定するための患者由来の細胞のスクリーニング方法を提供する。かかる方法は、患者または患者から得た試料(in vivoまたはin vitroのいずれか)を本明細書に記載の抗体と接触させること、試料中の標的分子に結合するまたはそれを遊離する抗体の存在もしくは不在または会合のレベルを検出することを含む、がんの処置またはその進行をモニタリングするためにがんを有する個体を同定することを含む。一部の実施形態では、抗体は、本明細書に記載の検出可能な標識またはレポーター分子を含む。
1つまたは複数の容器を含み、抗体の1または複数用量を含む医薬パックおよびキットも提供される。一部の実施形態では、例えば、1つまたは複数の追加的薬剤を含んでまたは含まずに、抗体を含む組成物の所定量を含有する単位投与量は、提供される。他の実施形態について、かかる単位投与量は、注射用の使い捨ての予め充填されたシリンジで供給される。さらに他の実施形態では、単位投与量に含有される組成物は、生理食塩水、ショ糖など;リン酸などの緩衝液を含んでよく;および/または安定で有効なpH範囲に製剤化されてよい。代替的に、一部の実施形態では、コンジュゲート組成物は、適切な液体、例えば滅菌水または生理食塩水の添加で再構成され得る凍結乾燥粉剤として提供されてよい。ある特定の好ましい実施形態では、組成物は、これだけに限らないがショ糖およびアルギニンが挙げられる、タンパク質凝集を阻害する1つまたは複数の物質を含む。容器(複数可)上のまたは関連する任意の表示は、封入されたコンジュゲート組成物が選択される新生物疾患状態を処置するために使用されることを示す。
多数の核酸およびアミノ酸配列を含む配列表が本出願に添付されている。以下の表Aは、含まれている配列の概要を提供する。
材料の調製
1.材料の調製
1.1 市販の材料
実施例において使用される市販されている材料についての情報を表1に提供する。供給源を指定しない材料は市販もされている、または標準的分子または遺伝生物学的方法に従って当業者により容易に調製され得る。
基準抗体、細胞外ドメインおよび細胞を含む材料についてのコードおよび略称を表2にまとめる。
抗原W305-hPro1.ECD.mFc(NP_005009.2)、W315-hPro1.ECD.mFc(NP_054862.1)およびW305-mPro1.ECD.mFc(NP_032824.1)、W315-mPro1.ECD.mFc(NP_068693.1)を標準的分子生物学的方法により調製した。簡潔には、抗原の細胞外ドメインセグメントをコードするDNA配列を、各抗原遺伝子の対応する受託番号に基づいてGENEWIZ(Suzhou、中国)で合成し、次に、C末端のマウスFcタグと共にpcDNA3.3発現ベクター(Thermo Fisher Scientific)にサブクローニングした。次に組換えプラスミドをExpi293細胞(Invitrogen-A14527)にトランスフェクトした。細胞培養物を加湿したプラットホーム振とう器で150rpmの回転速度で増殖させた。CO2レベル8%で温度を37℃に維持した。5日間のインキュベーション後に、精製のために上清を回収し、ろ過した。
3.基準抗体の産生
抗ヒトPD-L1対照抗体BMK6.uIgG1K(LFLEPS)およびBMK6.hIgG4の可変配列をMedImmuneによって出願されたPCT出願WO2015036499からのクローンMEDI4736の配列に基づいて合成した;BMK6.uIgG1K(LFLEPS)およびBMK6.hIgG4を市販されているイミフィンジの配列に基づいて調製した。BMK8.uIgG1K(RKNA)およびBMK8.hIgG4の可変配列をRocheによって出願されたPCT出願WO2010077634からのクローンYW243.55.S70の配列に基づいて調製した。BMK8.uIgG1K(RKNA)およびBMK8.hIgG4をテセントリク(Genentechから市販されている)の配列に基づいて調製した。BMK9.Fc(IgG1)をSuzhou ALPHAMABによって出願されたPCT出願WO2017020802からのクローンKN035の配列に基づいて調製した。同じ可変領域を共有するヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ対照抗体は、WuXi Biologics Discovery HD groupによって発見され、PS groupによって調製された。
ヒトPD-L1発現細胞株(W315-CHO-K1.hPro1.C11)、マウスPD-L1発現細胞株(W315-293F.mPro1.C1)、カニクイザルサルPD-L1発現細胞株(W315-293F.cynoPro1.2A2)、ヒトCD80発現細胞株(CHO-K1.CD80.B9)は、WuXi Biologics Discovery PS groupによって生成された。
VHHおよびVHH-Fc融合抗体の産生
1.免疫処置
ラクダ類動物においてPD-L1に指向された液性免疫応答を誘導するために、動物にヒトおよびマウスPD-L1 ECDタンパク質(実施例1の「2.抗原の産生」を参照されたい)を交互に8用量、1から3週間間隔で皮下注射した。用量は注射1回あたり50ugから200ugの範囲であった。
免疫処置後、動物血清中に存在する抗PD-L1特異的抗体血清力価をELISAによって決定した。簡潔には、ELISAプレート(Nunc、Rochester、MN、USA)を1μg/mlの組換えhisタグ化ヒトおよびマウスPD-L1 ECDタンパク質を用いてそれぞれコートし、4℃で一晩インキュベートした。ブロッキングおよび洗浄後、プレ免疫または免疫血清の系列希釈物を加え、室温2時間、次にヤギ抗ラマIgG-HRP(Novas Biologicals、Littleton、CO、USA)と室温、1時間インキュベートした。洗浄後、TMB基質(Invitrogen、Carlsbad、CA、USA)を加え、反応を2M HClによって停止させた。450nMでの吸光度をマイクロプレートリーダー(Molecular Device、Sunnyvale、CA、USA)を使用して読み取った。
50mlの血液試料を最後の2回の注射の6~7日後にそれぞれ回収した。末梢血単核細胞(PBMC)をFicoll-Paque PLUS(GE Healthcare、Little Chalfont、UK)上での密度勾配遠心分離によって精製し、およそ1×108個のPBMCを単離した。全RNAをこれらのPBMCから抽出し、オリゴ-dTプライマーおよびSuperScript III First-Strand Synthesis SuperMix System(Invitrogen、Carlsbad、CA、USA)を製造者の推奨に従って使用してcDNAに転写した。
PD-L1に効果的に結合するVHH断片を選択するために、タンパク質パニング法を使用した。
所望のパニングステップ後、プレート上で増殖させたファージ感染TG1細胞コロニーを掻きとり、VHH断片を含有するpFL249ファージミドを抽出した。VHH断片をSfi IおよびNot Iを用いたpFL249プラスミドの消化によってクローニングし、ヘキサ-ヒスチジン-およびc-Myc-タグの遺伝子を含有する発現ベクターpETbacにライゲーションした。ライゲーション産物を大腸菌BL21(DE3)コンピテント細胞に形質転換し、次にZYM-5052培地で25℃、48時間、230rpmで振とうしながら培養した。次に細菌培養上清をELISAまたはFACS試験のために回収した。
目的のクローンをVHH-Fc(hIgG1)融合抗体に転換した。簡潔には、VHH遺伝子を適切な制限部位を含有するVHH特異的クローニングプライマーを使用してpET-bacベクターからPCR増幅し、次に、VHH-Fc(hIgG1)キメラ抗体の対応クローンを創出するために、ヒトhIgG1のFcを含有する改変発現pcDNA3.3ベクターへの融合によってクローニングした。293FまたはExpi293細胞を抗体発現のためのベクターを用いて一過的にトランスフェクトした。抗体を含有する細胞培養上清を採取し、プロテインAクロマトグラフィーを使用して精製した。
抗体のヒト化
ELISAおよびFACSスクリーニング後、PD-L1に対する所望の親和性および特異性を有する1つのVHHリードをヒト化のために選択した。「最良のフィット」アプローチをVHH鎖をヒト化するために使用した。
in vitroにおける特徴付け
1.FACSによって測定したAP3R2-1A3-z12-hIgG1のヒト、マウスおよびカニクイザルPD-L1への結合
1.1ヒトPD-L1結合
ヒトPD-L1トランスフェクトW315-CHO-K1.hPro1.C11細胞を細胞1×105個/ウェルで96ウェルU底プレート(BD)に蒔き、種々の濃度の抗PD-L1抗体(133.3nMから0.008nMに4倍系列希釈)と4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いた洗浄後、二次抗体PE標識ヤギ抗ヒトIgGを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。抗ヒトPD-L1抗体BMK6.hIgG4、BMK8.hIgG4およびBMK9.Fc(IgG1)を陽性対照として使用した。ヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ抗体を陰性対照として使用した。次に細胞を1×PBS/1%BSA中で洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーター(BD)によって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。データを図1Aおよび表3に示した。
マウスPD-L1トランスフェクトW315-293F.mPro1.C1細胞を細胞2×105個/ウェルで96ウェルU底プレートに蒔き、種々の濃度の抗PD-L1抗体(133.3nMから0.0068nMに3倍系列希釈)と4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いた洗浄後、二次抗体PE標識ヤギ抗ヒトIgGを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。抗ヒトPD-L1抗体BMK8.hIgG4およびBMK9.Fc(IgG1)を対照抗体として使用した。ヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ抗体を陰性対照として使用した。次に細胞を1×PBS/1%BSA中で洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーター(BD)によって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。データを図1Bおよび表4に示した。
カニクイザルPD-L1トランスフェクト293F.cynoPro1細胞を細胞2×105個/ウェルで96ウェルU底プレートに蒔き、種々の濃度の抗PD-L1抗体(133.3nMから0.0068nMに3倍系列希釈)と4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いた洗浄後、二次抗体PE標識ヤギ抗ヒトIgGを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。抗ヒトPD-L1抗体BMK6.hIgG4、BMK8.hIgG4およびBMK9.Fc(IgG1)を対照抗体として使用した。ヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ抗体を陰性対照として使用した。次に細胞を1×PBS/1%BSA中で洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーター(BD)によって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。データを図1Cおよび表5に示した。
hisタグ化ヒトPD-L1(R&D-9049-B7)、hisタグ化カニクイザルPD-L1(Sino Biological-90251-C08H)およびhisタグ化マウスPD-L1(Sino Biological-50010-M08H)への抗体結合親和性を表面プラズモン共鳴(SPR)アッセイによってソフトウェアProteOnを使用して検出した。試験用抗体をGLMチップ(Bio-rad)に固定した抗ヒトIgG Fc抗体に捕捉した。チップを90°回転させ、泳動用緩衝液を用いてベースラインが安定するまで洗浄した。さまざまな濃度のhPro1.ECD.His、cynoPro1.ECD.HisおよびmPro1-ECD-Hisを流速100uL/分で120秒の会合相の間センサーチップに注入し、240~800秒間の解離が続いた。チップを解離相ごとに続いて10mMグリシン(pH1.5)によって再生した。
試験用抗体の細胞表面ヒト、カニクイザルおよびマウスPD-L1への結合親和性を、操作した細胞株それぞれについてフローサイトメトリーによって決定した。細胞を96ウェルU底プレート(BD)に細胞5×104個/ウェルの密度で移した。試験する抗体を1%BSA/1XPBS中に1:2倍で系列希釈し、細胞と4℃、1時間インキュベートした。次にプレートを1500rpm、4分間遠心分離し、上清を廃棄した。二次抗体Alexa647コンジュゲートヤギ抗ヒトIgG Fc(Jackson、カタログ番号109-605-098、ロット番号121363)を細胞を再懸濁するために加え、4℃、暗所で30分間インキュベートした。細胞を1回洗浄し、100μL 1%BSA/1XPBSに再懸濁し、次いでフローサイトメトリー(BD Canto II)によって測定し、FlowJoによって分析した。蛍光強度を定量的ビーズ(Quantum(商標)MESFキット、Bangs Laboratories)に基づいて結合分子/細胞に変換した。KD値をGrphpad Prism5によって算出した。
4.1 FACSによって測定するヒトPD-1/PD-L1遮断
ヒトPD-L1トランスフェクトW315-CHO-K1.hPro1.C11細胞を細胞1×105個/ウェルの密度で96ウェルU底プレートに移した。種々の濃度の抗体(266.7nMから0.016nMに4倍系列希釈)および一定濃度、5μg/mLのヒトPD-1 ECDタンパク質(hPro1.ECD.mFc)を予め混合し、細胞と4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いて洗浄後、二次抗体PE標識ヤギ抗マウスIgGを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。抗ヒトPD-L1抗体BMK6.hIgG4、BMK8.hIgG4およびBMK9.Fc(IgG1)を陽性対照として使用した。ヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ抗体を陰性対照として使用した。次に細胞を1×PBS/1%BSA中で洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーター(BD)によって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。データを図2Aおよび表8に示した。
マウスPD-L1トランスフェクトW315-293F.mPro1.C1細胞を細胞2×105個/ウェルの密度で96ウェルU底プレートに移した。種々の濃度の抗PD-L1抗体(133.3nMから0.068nMに3倍系列希釈)および一定濃度5μg/mLのマウスPD-1 ECDタンパク質(W305-mPro1.ECD.mFc)を予め混合し、細胞と4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いた洗浄後、二次抗体PE標識ヤギ抗マウスIgGを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。抗ヒトPD-L1抗体BMK8.hIgG4およびBMK9.Fc(IgG1)を対照抗体として使用した。ヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ抗体を陰性対照として使用した。次に細胞を1×PBS/1%BSA中で洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーター(BD)によって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。
ヒトCD80発現細胞(CHO-K1.CD80.B9)を細胞1×105個/ウェルの密度で96ウェルU底プレートに移した。種々の濃度の抗体(667nM、66.7nMおよび6.67nM)ならびに一定濃度5μg/mLのヒトPD-1 ECDタンパク質(W315-hPro1.ECD.mFc)を半時間予め混合し、細胞と4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いた洗浄後、二次抗体PE標識ヤギ抗マウスIgGを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。抗ヒトPD-L1抗体BMK6.hIgG4、BMK8.hIgG4およびBMK9.Fc(IgG1)を陽性対照として使用した。ヒトIgG1およびIgG4アイソタイプ抗体を陰性対照として使用した。次に細胞を1×PBS/1%BSA中で洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーター(BD)によって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。データを図2Cに示した。
96ウェルプレートを1μg/mL、ウェルあたり100μLのヒトPD-L1 ECDタンパク質(R&D-9049-B7)、hPD-L2.ECD.His(SinoBiological-10292-H08H)、hCD80.ECD.His(SinoBiological-10698-H08H)またはhCD86.ECD.His(SinoBiological-10699-H08H)を用いて4℃、一晩プレコーティングした。200μLの1×PBS/2%BSAを使用した1時間のブロッキング後、試験用抗体をプレートに濃度66.7nMで加えた。プレートを周囲温度で1時間インキュベートした。抗体の固定化タンパク質への結合をHRP標識ヤギ抗ヒトIgG抗体によって検出した。100μLのTMB基質を分注することによって発色させ、次に100μLの2N HClによって停止させた。吸光度を450nmおよび540nmでマイクロプレート分光光度計を使用してそれぞれ読み取った。データを図3に示した。
ヒトPD-L1発現細胞W315-CHO-K1.hPro1.C11を細胞1×105個/ウェルの密度で96ウェルU底プレートに移した。種々の濃度のW3156抗体(133.3nMから0.0068nMに3倍系列希釈)を一定濃度のビオチン化BMK6.hIgG4(0.5μg/mL)またはビオチン化BMK8.hIgG4(0.5μg/mL)とそれぞれ混合した。次に混合物を96ウェルプレート中の細胞に加え、4℃、1時間インキュベートした。1×PBS/1%BSAを用いて洗浄後、二次抗体SA-PEを加え、細胞と4℃、1時間インキュベートした。次に細胞を1×PBS/1%BSAで洗浄および再懸濁した。細胞のMFIをフローサイトメーターによって測定し、FlowJo(バージョン7.6.1)によって分析した。
一方向混合リンパ球反応(一方向MLR)をヒトCD4+T細胞のサイトカイン分泌および増殖への抗PD-L1抗体のアゴニスト効果を試験するために使用した。
ヒト末梢血液単核細胞(PBMC)を健常ドナーからFicoll-Paque PLUS勾配遠心分離を使用して新たに単離した。単離PBMCを100U/mL組換えヒトIL-2を補充した完全RPMI-1640(10%FBSおよび1%PSを含有)中で培養した。
ヒト同種MLRについて、精製CD4+T細胞を同種成熟DC(mDC)と共培養した。
ヒトIFN-γおよびIL-2放出を対応する抗体対を使用してELISAによって測定した。組換えヒトIFN-γおよびIL-2を標準としてそれぞれ使用した。IFN-γの系列濃度は、8、4、2、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125ng/mLであり、IL-2のものは、8、4、2、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125ng/mLであった。プレートをヒトIFN-γまたはIL-2に対して特異的な捕捉抗体を用いてそれぞれプレコーティングした。ブロッキング後、50μLの標準物質または試料を各ウェルにピペットで入れ、2時間、周囲温度でインキュベートした。未結合物質の除去後、対応するサイトカインに特異的なビオチン-コンジュゲート検出抗体をウェルに加え、1時間インキュベートした。次にストレプトアビジン-HRPを30分間、周囲温度でウェルに加えた。50μLのTMB基質を分注することによって発色させ、次に50μLの2N HClによって停止させた。吸光度を450nmおよび540nmでマイクロプレート分光光度計を使用して読み取った。上清中のサイトカインの濃度を標準曲線から算出した。データを図5A、5Bおよび5Cに示した。
一方向MLRをマウスCD4+T細胞のサイトカイン分泌および増殖へのPD-L1抗体のアゴニスト効果を試験するために使用した。
Balb/cおよびC57BL/6マウスをShanghai SLAC Laboratory Animal Co.,Ltd.から購入した。
MLRを完全RPMI-1640培地を使用して96ウェル丸底プレートに準備した。Balb/cマウス由来のCD4+T細胞、種々の濃度の抗体(166.7nM、66.7nM、6.67nM、0.667nM、0.0667nMおよび0.0067nM)ならびにC57BL/6マウス由来mDCを適切な比でプレートに加えた。プレートを37℃、5%CO2でインキュベートした。IL-2産生を3日目に決定した。細胞を3H-TDRによってCD4+T細胞増殖を測定するために5日目に採取した。
マウスIL-2放出を対応する抗体対を使用してELISAによって測定した。組換えマウスIL-2を標準として使用した。IL-2の系列濃度は、0.8、0.4、0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125、0.00625、0.003125ng/mLであった。プレートをマウスIL-2に対して特異的な捕捉抗体を用いてプレコーティングした。ブロッキング後、50μLの標準物質または試料を各ウェルにピペットで入れ、2時間、周囲温度でインキュベートした。未結合物質の除去後、ビオチン-コンジュゲート検出抗体をウェルに加え、1時間インキュベートした。次にストレプトアビジン-HRPを30分間、周囲温度でウェルに加えた。50μLのTMB基質を分注することによって発色させ、次に50μLの2N HClによって停止させた。吸光度を450nmおよび540nmでマイクロプレート分光光度計を使用して読み取った。上清中のサイトカインの濃度を標準曲線から算出した。
3H-チミジンを0.9%NaCl溶液中に希釈し、細胞培養プレートに0.5uCi/ウェルで加えた。増殖中の細胞への3H-チミジンの取込みを決定する前に、プレートを16から18時間、37℃、5%CO2インキュベーターにおいて培養した。
細胞W315-CHO-K1.hPro1.C11および種々の濃度の試験用抗体(66.7nMから0.00667pMに10倍希釈)を96ウェルプレートで混合し、PBMCを50:1(細胞数)のエフェクター/標的比で加えた。プレートを37℃、5%CO2インキュベーターにおいて4~6時間保った。標的細胞溶解をLDH-ベース細胞毒性検出キットによって決定した。BT-474細胞でのハーセプチン誘導ADCC効果を陽性対照として使用した。ADCC試験についての結果を図7に示した。
細胞W315-CHO-K1.hPro1.C11および種々の濃度の試験用抗体(200nM、20nMおよび2nM)を96ウェルプレートで混合した。ヒト補体を1:50の希釈比で加えた。プレートを37℃に5%CO2インキュベーターで2~3時間保った。標的細胞溶解をCellTiter-Gloによって決定した。リツキシマブ誘導Raji細胞溶解を陽性対照として使用した。ADCC試験についての結果を図8に示した。
新鮮なヒト血清を健常ドナーから遠心分離によって調製した。試験用抗体を血清と混合し、合計容量中の血清含有量>90%とした。混合アリコートを37℃で0日間、1日間、4日間、7日間および14日間それぞれインキュベートした。示した時点で、試料を液体窒素中で急速凍結し、分析まで-80℃で保存した。上記の時点でのアリコートのPD-L1への結合をフローサイトメトリーによってそれぞれ評価した。ADCC試験についての結果を図9に示す。
試験用抗体の熱安定性をDSFアッセイによって測定した。DSFアッセイを7500 Fast Real-Time PCR system(Applied Biosystems)を使用して実施した。簡潔には、19μLの抗体溶液を1μLの62.5XSYPRO Orange溶液(Invitrogen)と混合し、96ウェルプレート(Biosystems)に加えた。プレートを26℃から95℃に2℃/分の速度で加熱し、生じた蛍光データを回収した。異なる温度に関する蛍光変化の負の微分係数を算出し、最大値を融解温度Thと定義した。タンパク質が複数のアンフォールディング遷移状態を有する場合、最初の2つのThをTh1およびTh2と名付けて報告した。異なるタンパク質間の比較を促進するためにTh1が常に正式な融解温度Tmと解釈される。データ回収およびTh算出は、その操作用ソフトウェアによって自動的に算出された。DSFアッセイによる熱安定性についての結果を図10および表10に示す。
非特異的結合ELISAを96ウェル高結合プレート(Nunc-Immuno Plate、Thermo Scientific)で実施した。プレートを種々の抗原(表11の左カラムに列挙されるとおり)を2μg/mLで用いて一晩、4℃でコーティングした。2%BSA-PBSを用いてブロッキングした後、10μg/ml抗体をプレートに加え、2時間インキュベートした。次にプレートを二次抗体ヤギ抗ヒトIgG Fc-HRP(Bethyl、A80-304P)とさらに1時間インキュベートした。HRPシグナルをTMBペルオキシダーゼ基質を加えることによって検出し、反応を2M HClを使用して12分間後に停止させた。450nMでの吸光度をマイクロプレートリーダー(Molecular Device)を使用して読み取った。すべてのインキュベーションステップは室温で実施した。プレートはステップの間にPBST(0.05%Tween20-PBS)を用いて洗浄した。この試験によって、AP3R2-1A3-z12-hIgG1は非特異的結合を示さない。結果を表11に示す。
Claims (20)
- 少なくとも1つの抗PD-L1特異的免疫グロブリン単一可変ドメインVHHを含む抗PD-L1抗体であって、前記VHHがCDR1、CDR2およびCDR3を含み、CDR1が配列番号1に記載されるアミノ酸配列を含むか配列番号1に記載されるアミノ酸配列からなり、CDR2が配列番号2に記載されるアミノ酸配列を含むか配列番号2に記載されるアミノ酸配列からなり、CDR3が配列番号3に記載されるアミノ酸配列を含むか配列番号3に記載されるアミノ酸配列からなる、抗PD-L1抗体。
- 前記VHHが配列番号4に記載されるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の抗PD-L1抗体。
- 抗PD-L1抗体がPD-1アンタゴニストである、請求項1または2に記載の抗PD-L1抗体。
- 抗PD-L1抗体が単一ドメイン抗体、キメラ抗体またはヒト化抗体である、請求項1~3のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体。
- 抗PD-L1抗体が重鎖単一ドメイン抗体である、請求項4に記載の抗PD-L1抗体。
- 前記VHHがアルパカまたはラマを含むラクダ類動物由来である、請求項1~5のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体。
- 前記VHHがイムノグロビン(immunoglobin)のFcドメイン、蛍光タンパク質または別の特異性を有するVHHを含む別の分子に融合されている、請求項1~6のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体。
- 前記VHHがIgGのFcドメインに融合されている、請求項1~7のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体。
- 抗PD-L1抗体がラクダ類動物由来のVHHとヒトIgGのFcドメインとのキメラ抗体である、請求項8に記載の抗PD-L1抗体。
- 抗PD-L1抗体がラクダ類動物由来のVHHとヒトIgG1またはIgG4のFcドメインとのキメラ抗体である、請求項9に記載の抗PD-L1抗体。
- 請求項1~10のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体をコードする核酸配列を含む単離された核酸分子。
- 配列番号5に記載の核酸配列を含むかまたはそれからなる、請求項11に記載の単離された核酸分子。
- 請求項11または12に記載の単離された核酸分子を含む、発現ベクター。
- 請求項11または12に記載の単離された核酸分子または請求項13に記載の発現ベクターを含む、宿主細胞。
- 請求項1~10のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体を少なくとも1つおよび薬学的に許容される担体を含む、患者におけるPD-L1に関連する状態を処置するための医薬組成物。
- PD-L1に関連する状態ががんを含む増殖性障害または感染症であり、
ここにおいて前記がんは乳房、肺、結腸、卵巣、メラノーマ、膀胱、腎臓、肝臓、唾液腺、胃、神経膠腫、甲状腺、胸腺、上皮、頭頸部、胃および膵臓がんからなる群から選択され、
感染症が慢性感染症である、請求項15に記載の医薬組成物。 - - 請求項1~10のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体をコードする核酸配列を含む宿主細胞を、抗PD-L1抗体を前記宿主細胞において発現する条件下で培養するステップ;および
- 前記宿主細胞から前記抗PD-L1抗体を単離するステップ
のステップを含む、請求項1~10のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体を調製するための方法。 - 対象においてPD-L1に関連する状態の処置に用いるための請求項1~10のいずれかに1項に記載の抗PD-L1抗体であって、ここにおいて処置は、請求項1~10のいずれかに1項に記載の抗PD-L1抗体の治療有効量を対象に投与するステップを含む、抗PD-L1抗体。
- PD-L1に関連する状態が、がんを含む増殖性障害または感染症であり、
前記がんが、乳房、肺、結腸、卵巣、メラノーマ、膀胱、腎臓、肝臓、唾液腺、胃、神経膠腫、甲状腺、胸腺、上皮、頭頸部、胃および膵臓がんからなる群から選択され、
前記感染症が慢性感染症である、請求項18に記載の抗PD-L1抗体。 - PD-L1に関連する状態を処置するまたは診断するためのキットであって、請求項1~10のいずれか1項に記載の抗PD-L1抗体を含む容器を含むキット。
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