JP7565572B2 - 核酸増幅反応用多層化プレミクス試薬およびＲｅａｄｙ ｔｏ ｕｓｅ核酸増幅反応キット - Google Patents
核酸増幅反応用多層化プレミクス試薬およびＲｅａｄｙ ｔｏ ｕｓｅ核酸増幅反応キット Download PDFInfo
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Description
本発明は核酸増幅反応用多層化プレミクス試薬とそれを含むReady to use核酸増幅反応キットに関する。
PCR（ポリメラーゼ連鎖反応）やLAMP（Loop-Mediated Isothermal Amplification）法など遺伝子検査の検査反応液には、プライマーオリゴヌクレオチドやヌクレオシド三リン酸、反応緩衝剤に加え、核酸ポリメラーゼが含有される。反応操作の簡便化のためにこれらの複数を事前に混合したプレミックス試薬やその凍結乾燥試薬も販売されているが、一般的には核酸ポリメラーゼが比較的不安定なため、少なくとも核酸ポリメラーゼとそれ以外に分けて試薬を調製することが好ましい。そして実際に反応液を調製する際には、精密に容量を取り分けられるマイクロピペット等を使用する慎重な操作を要する。これは、ポリメラーゼ（酵素）の量が、検出反応の効率を大きく作用し、時として、擬陽性や偽陰性をもたらすからである。
現在、世界的にパンデミックを引き起こしているCOVID-19の感染検査にRT-PCR法が用いられているが、専用の試薬キットを用いれば比較的容易に反応液を調製できるとはいえ、上記理由で、ある程度トレーニングを受けた者による慎重なオペレーションとマイクロピペット等の一般人にとって馴染みのない理化学機材を要するのが現状であり、これは、RT-LAMP法やSATIC法（特許文献１および非特許文献１）等の他の遺伝子検査法でも同様である。
Anal. Chem., 2016, 88 (14), pp 7137-7144
本発明は、検体を混合するだけで核酸増幅反応を簡便に行うことのでき、保存安定性に優れた、核酸増幅反応用プレミクス試薬とそれを含むReady to use核酸増幅反応キットを提供することを課題とする。
本発明者らは上記課題を解決すべき鋭意検討を行った。その結果、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、プライマーオリゴヌクレオチドセットを含む第２試薬層と、第１試薬層と第２試薬層を隔てる、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜と、を含む積層状態で凍結保存された多層化試薬プレミックスを開発することに成功し、この多層化試薬プレミックスを容器に収容した核酸増幅反応キットを用いることで、試薬の性能を維持した状態で、核酸増幅反応に基づく遺伝子検査を簡便に実施することができることを見出し、本発明を完成させるに至った。
本発明の要旨は以下の通りである。
［１］反応容器と、該反応容器内に収容された核酸増幅反応用試薬を含む核酸増幅反応用
キットであって、
前記試薬は、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、
プライマーオリゴヌクレオチドを含む第２試薬層と、
第１試薬層と第２試薬層を隔てる、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜と、
を含む積層状態で凍結保存された多層化試薬プレミックスであることを特徴とする、核酸増幅反応用キット。
［２］第２試薬層はさらに核酸基質および反応緩衝剤を含む、［１］に記載の核酸増幅反応用キット。
［３］核酸増幅反応がPCR（ポリメラーゼ連鎖反応）である、［１］または［２］に記載の核酸増幅反応用キット。
［４］核酸増幅反応がLAMP（Loop-Mediated Isothermal Amplification）法である、［１］または［２］に記載の核酸増幅反応用キット。
［５］核酸増幅反応がSATIC法であり、第２試薬層は第１プライマーおよび第２プライマーを含み、さらに、第１試薬層と第２試薬層の間に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む中間試薬層を含み、当該中間試薬層は第１試薬層および第２試薬層のそれぞれと、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜で隔離されている、［１］に記載の核酸増幅反応用キット。
［６］中間試薬層はさらに核酸基質および反応緩衝剤を含む、［５］に記載の核酸増幅反応用キット。
［７］前記第１プライマーおよび第２プライマーは担体に固定化されている、［５］または［６］に記載の核酸増幅反応用キット。
［８］前記０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質は、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、糖鎖化合物、ポリアミド鎖化合物、または自己組織化能を有する水溶性複素環式化合物である、［１］～［７］のいずれかに記載の核酸増幅反応用キット。
［９］［１］～［８］のいずれかに記載の核酸増幅反応用キットを温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程とを含む、核酸含有試料中の核酸の増幅方法。
［１０］核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体を添加して第１試薬層を形成する工程、
第１試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、および
０℃未満の温度下で、前記膜上にプライマーオリゴヌクレオチドを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程、を含む、反応容器内に多層化試薬プレミックスを収容する、核酸増幅反応用キットの製造方法。
［１１］前記核酸増幅反応がＰＣＲまたはＬＡＭＰ法である、［１０］に記載の核酸増幅反応用キットの製造方法。
［１２］核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体を添加して第１試薬層を形成する工程、
第１試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む液体を添加して中間試薬層を形成する工程、
０℃未満の温度下で、中間試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１プライマーおよび第２プライマーを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程、を含む、反応容器内に多層化試薬プレミックスを収容する、ＳＡＴＩＣ反応用キットの製造方法。
［１］反応容器と、該反応容器内に収容された核酸増幅反応用試薬を含む核酸増幅反応用
キットであって、
前記試薬は、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、
プライマーオリゴヌクレオチドを含む第２試薬層と、
第１試薬層と第２試薬層を隔てる、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜と、
を含む積層状態で凍結保存された多層化試薬プレミックスであることを特徴とする、核酸増幅反応用キット。
［２］第２試薬層はさらに核酸基質および反応緩衝剤を含む、［１］に記載の核酸増幅反応用キット。
［３］核酸増幅反応がPCR（ポリメラーゼ連鎖反応）である、［１］または［２］に記載の核酸増幅反応用キット。
［４］核酸増幅反応がLAMP（Loop-Mediated Isothermal Amplification）法である、［１］または［２］に記載の核酸増幅反応用キット。
［５］核酸増幅反応がSATIC法であり、第２試薬層は第１プライマーおよび第２プライマーを含み、さらに、第１試薬層と第２試薬層の間に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む中間試薬層を含み、当該中間試薬層は第１試薬層および第２試薬層のそれぞれと、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜で隔離されている、［１］に記載の核酸増幅反応用キット。
［６］中間試薬層はさらに核酸基質および反応緩衝剤を含む、［５］に記載の核酸増幅反応用キット。
［７］前記第１プライマーおよび第２プライマーは担体に固定化されている、［５］または［６］に記載の核酸増幅反応用キット。
［８］前記０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質は、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、糖鎖化合物、ポリアミド鎖化合物、または自己組織化能を有する水溶性複素環式化合物である、［１］～［７］のいずれかに記載の核酸増幅反応用キット。
［９］［１］～［８］のいずれかに記載の核酸増幅反応用キットを温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程とを含む、核酸含有試料中の核酸の増幅方法。
［１０］核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体を添加して第１試薬層を形成する工程、
第１試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、および
０℃未満の温度下で、前記膜上にプライマーオリゴヌクレオチドを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程、を含む、反応容器内に多層化試薬プレミックスを収容する、核酸増幅反応用キットの製造方法。
［１１］前記核酸増幅反応がＰＣＲまたはＬＡＭＰ法である、［１０］に記載の核酸増幅反応用キットの製造方法。
［１２］核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体を添加して第１試薬層を形成する工程、
第１試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む液体を添加して中間試薬層を形成する工程、
０℃未満の温度下で、中間試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１プライマーおよび第２プライマーを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程、を含む、反応容器内に多層化試薬プレミックスを収容する、ＳＡＴＩＣ反応用キットの製造方法。
本発明によれば、検体をプレミックスに加えるだけで核酸増幅反応を簡便に行うことができるので、複数回のマイクロピペット等による操作が必要とせず、特別な技能を持たない一般人でも取り扱いが可能となるとともに、PCR検査等、遺伝子検査のスループットを大幅に向上できる。そして、操作を大幅に簡略化できるため、コンタミネーションによる擬陽性や、試薬の入れ忘れ等による偽陰性を大幅に低減できる。また、反応直前まで核酸ポリメラーゼとプライマーオリゴヌクレオチド等が混合されないので、試薬劣化等の問題がなく、保存安定性に優れる。
＜核酸増幅反応用キット＞
本発明の核酸増幅反応用キットは、
反応容器と、該反応容器内に収容された核酸増幅反応用試薬を含む核酸増幅反応用キットであって、
前記試薬は、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、
プライマーオリゴヌクレオチドを含む第２試薬層と、
第１試薬層と第２試薬層を隔てる、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜と、
を含む積層状態で凍結（０℃未満、例えば－１０℃～－３０℃）保存された多層化試薬プレミックスであることを特徴とする。
本発明の核酸増幅反応用キットは、
反応容器と、該反応容器内に収容された核酸増幅反応用試薬を含む核酸増幅反応用キットであって、
前記試薬は、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、
プライマーオリゴヌクレオチドを含む第２試薬層と、
第１試薬層と第２試薬層を隔てる、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜と、
を含む積層状態で凍結（０℃未満、例えば－１０℃～－３０℃）保存された多層化試薬プレミックスであることを特徴とする。
核酸増幅反応としては、標的核酸にプライマーをハイブリダイズさせ、そこから核酸ポリメラーゼによってポリヌクレオチド鎖を伸長させる反応であればよく、PCR、LAMP法、SATIC法、SmartAmp法などが挙げられるがこれらには限定されず、本発明のキットは幅広く核酸増幅反応に利用できる。
本発明の核酸増幅反応用キットでは、反応容器内に収容された核酸増幅反応用試薬において、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層とプライマーオリゴヌクレオチドを含む第２試薬層とが「少なくとも０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜」を介して分離されている（図１A）。
この膜に上記物質を用いることにより、凍結保存時には、核酸ポリメラーゼとプライマーオリゴヌクレオチド等が分離された状態にあり、使用時に試薬を解凍し、温度を上げていく途中で０℃から３５℃の間で当該膜が第1試薬層および第２試薬層の水溶液に溶解してそれらが混合されることで（図１A）、反応液が自動的に調製され、そこに検体（核酸含有試料）を添加し、反応容器を反応温度にセットするだけで核酸増幅反応を進行させることができる。
当該物質としては、少なくとも０℃未満では固体であるが０～３５℃（好ましくは１０～３０℃）の間で水溶液に溶解する物質であればよいが、ポリメラーゼ反応に干渉しない物質が好ましく、具体的には、所定範囲（６００～８０００、好ましくは１０００～６０００）の分子量を有するポリエチレングリコール（例えばPEG1000またはその代替物（分子
量の異なるPEG、分岐PEGおよびそれらの混合物）、ポリビニルアルコール、デンプン・セルロース・アガロース・デキストラン・デキストリン・オリゴ糖などの分岐していてもよい糖鎖化合物およびそれらの混合物、ポリ（オリゴ）リシン・ポリ（オリゴ）グルタミン酸・コラーゲンなどの分岐していてもよいポリアミド鎖化合物およびそれらの混合物、メラミン・グアニンなどの自己組織化能を有する水溶性複素環式化合物などが挙げられる。
量の異なるPEG、分岐PEGおよびそれらの混合物）、ポリビニルアルコール、デンプン・セルロース・アガロース・デキストラン・デキストリン・オリゴ糖などの分岐していてもよい糖鎖化合物およびそれらの混合物、ポリ（オリゴ）リシン・ポリ（オリゴ）グルタミン酸・コラーゲンなどの分岐していてもよいポリアミド鎖化合物およびそれらの混合物、メラミン・グアニンなどの自己組織化能を有する水溶性複素環式化合物などが挙げられる。
第１試薬層は核酸ポリメラーゼを含む水溶液である。核酸ポリメラーゼはDNAポリメラーゼであってもよいし、RNAポリメラーゼであってもよい。DNAポリメラーゼは目的とする反応によって任意に選択することができるが、耐熱性DNAポリメラーゼ（TaqやPfuなど）、鎖置換型DNAポリメラーゼ、逆転写酵素などが例示される。鎖置換型DNAポリメラーゼとしては、phi29 polymerase、Klenow DNA Polymerase (5'-3', 3'-5' exo minus)、Aac DNA Polymerase、Sequenase（登録商標）Version 2.0 T7 DNA Polymerase (USB社)、Bsu DNA Polymerase, Large Fragment (NEB社)などの中温性の鎖置換型DNAポリメラーゼや、Bst DNA Polymerase (Large Fragment) 、Bsm DNA Polymerase, Large Fragment (Fermentas社)、BcaBEST DNA polymerase (TakaraBio社)、Vent DNA polymerase (NEB社)、Deep Vent DNA polymerase (NEB社)、DisplaceAce (登録商標) DNA Polymerase (Epicentre社)等の耐熱性の鎖置換型DNAポリメラーゼなどが挙げられる。
例えば、PCRには耐熱性DNAポリメラーゼが使用でき、LAMP法やSATIC法には鎖置換型DNAポリメラーゼが使用できる。
核酸ポリメラーゼの含有量は核酸増幅反応に必要な量であれば特に制限はなく、酵素の比活性などに応じて必要量含有させればよい。核酸ポリメラーゼは２種類以上組み合わせてもよい。
第１試薬層は核酸ポリメラーゼを安定化させるためにグリセロールなどの安定化剤を含んでもよい。
核酸ポリメラーゼの含有量は核酸増幅反応に必要な量であれば特に制限はなく、酵素の比活性などに応じて必要量含有させればよい。核酸ポリメラーゼは２種類以上組み合わせてもよい。
第１試薬層は核酸ポリメラーゼを安定化させるためにグリセロールなどの安定化剤を含んでもよい。
第２試薬層はプライマーオリゴヌクレオチドを含む水溶液である。プライマーオリゴヌクレオチドは核酸増幅反応の種類によって必要な数のプライマーオリゴヌクレオチドを使用することができる。例えば、PCRのためには標的核酸の目的部位を増幅するためのフォワードプライマーとリバースプライマーのセットであればよいが、nested PCRなどでは３種類以上のプライマーオリゴヌクレオチドを含有させることもできる。
また、LAMP法（参考文献：LAMP法の原理と応用 モダンメディア60巻、7号、2014年、p211-213）では、FIP、BIP、F3プライマー、B3プライマーの４種類でもよいし、FIP、BIP、Loop プライマーB、Loop プライマーFの４種類でもよいし、FIP、BIP、F3プライマー、B3プライマー、Loop プライマーB、Loop プライマーFの６種類でもよい。
また、SmartAmp法（参考文献：PLoS ONE, 2012, doi:10.1371/journal.pone.0030236）では、ＴＰ、ＦＰ、ＯＰ、ＢＰの４種類でもよい。
また、SATIC法では、後述のような、第１プライマーと第２プライマーの２種類でもよい。
なお、RNAポリメラーゼ反応や逆転写反応の場合はプライマーは１種類でもよい。
また、LAMP法（参考文献：LAMP法の原理と応用 モダンメディア60巻、7号、2014年、p211-213）では、FIP、BIP、F3プライマー、B3プライマーの４種類でもよいし、FIP、BIP、Loop プライマーB、Loop プライマーFの４種類でもよいし、FIP、BIP、F3プライマー、B3プライマー、Loop プライマーB、Loop プライマーFの６種類でもよい。
また、SmartAmp法（参考文献：PLoS ONE, 2012, doi:10.1371/journal.pone.0030236）では、ＴＰ、ＦＰ、ＯＰ、ＢＰの４種類でもよい。
また、SATIC法では、後述のような、第１プライマーと第２プライマーの２種類でもよい。
なお、RNAポリメラーゼ反応や逆転写反応の場合はプライマーは１種類でもよい。
第２試薬層はさらに核酸基質（デオキシヌクレオシド３リン酸など）および反応緩衝剤を含んでもよい。反応緩衝剤は酵素に応じて適宜選択できる。
また、第２試薬層はさらに塩や界面活性剤、発色試薬や発光試薬などの検出試薬などを含んでもよい。
プライマー、核酸基質などの濃度は最終的な反応液の容量を考慮して適宜調整すればよい。
なお、SATIC法用プレミックスにおいて、後述のように、中間試薬層を設ける場合は、中間試薬層に核酸基質（デオキシヌクレオシド３リン酸など）および反応緩衝剤、さらには塩や界面活性剤、発色試薬や発光試薬などの検出試薬などを含有させてもよい。
また、第２試薬層はさらに塩や界面活性剤、発色試薬や発光試薬などの検出試薬などを含んでもよい。
プライマー、核酸基質などの濃度は最終的な反応液の容量を考慮して適宜調整すればよい。
なお、SATIC法用プレミックスにおいて、後述のように、中間試薬層を設ける場合は、中間試薬層に核酸基質（デオキシヌクレオシド３リン酸など）および反応緩衝剤、さらには塩や界面活性剤、発色試薬や発光試薬などの検出試薬などを含有させてもよい。
なお、第１試薬層と第２試薬層はどちらが上層でもよいが、第１試薬層を下層とすることが好ましい。
以下、SATIC法について説明する。
SATIC法は、特許文献１に開示されている一本鎖環状DNAとプライマーを用い、標的（鋳型）核酸と一本鎖環状DNAとプライマーの三者複合体を形成させ、等温（３７℃）で核酸を増幅させる方法であり、好ましくは以下で説明する第１および第２の一本鎖環状DNAと第１および第２のプライマーを用いる方法を意味する。
SATIC法は、特許文献１に開示されている一本鎖環状DNAとプライマーを用い、標的（鋳型）核酸と一本鎖環状DNAとプライマーの三者複合体を形成させ、等温（３７℃）で核酸を増幅させる方法であり、好ましくは以下で説明する第１および第２の一本鎖環状DNAと第１および第２のプライマーを用いる方法を意味する。
好ましいSATIC法の態様においては、
（i）標的核酸の第１の部位に相補的な１０～３０塩基の配列と、
該配列の５’側に隣接した、７～８塩基の第１プライマー結合配列と、
第２一本鎖環状DNA結合配列と、
を含む第１一本鎖環状DNAと、
（ii）標的核酸の、第１の部位の３’側に隣接した第２の部位に相補的な８～１５塩基の配列と、
該配列の３’側に隣接した、第１一本鎖環状DNAの第１プライマー結合部位に相補的な７～８塩基の配列と、
を含む第１のオリゴヌクレオチドプライマーと、
（iii）第１一本鎖環状DNAの第２一本鎖環状DNA結合配列と同一の配列と、
該配列の５’側に隣接した、第２プライマー結合配列と、
を含む、第２一本鎖環状DNAと、
（iv）第１一本鎖環状DNAの第２一本鎖環状DNA結合配列の５’側に隣接した部位と同一の配列と、
該配列の３’側に隣接した、第２一本鎖環状DNAの第２プライマー結合配列に相補的な配列と、
を含む、第２のオリゴヌクレオチドプライマーと、
が使用され、
より好ましくは、
前記第１のオリゴヌクレオチドプライマーは、その５’末端を介して、担体と結合しており、
前記第２のオリゴヌクレオチドプライマーは、その５’末端を介して、前記第１のオリゴヌクレオチドプライマーが結合している前記担体と結合している。
（i）標的核酸の第１の部位に相補的な１０～３０塩基の配列と、
該配列の５’側に隣接した、７～８塩基の第１プライマー結合配列と、
第２一本鎖環状DNA結合配列と、
を含む第１一本鎖環状DNAと、
（ii）標的核酸の、第１の部位の３’側に隣接した第２の部位に相補的な８～１５塩基の配列と、
該配列の３’側に隣接した、第１一本鎖環状DNAの第１プライマー結合部位に相補的な７～８塩基の配列と、
を含む第１のオリゴヌクレオチドプライマーと、
（iii）第１一本鎖環状DNAの第２一本鎖環状DNA結合配列と同一の配列と、
該配列の５’側に隣接した、第２プライマー結合配列と、
を含む、第２一本鎖環状DNAと、
（iv）第１一本鎖環状DNAの第２一本鎖環状DNA結合配列の５’側に隣接した部位と同一の配列と、
該配列の３’側に隣接した、第２一本鎖環状DNAの第２プライマー結合配列に相補的な配列と、
を含む、第２のオリゴヌクレオチドプライマーと、
が使用され、
より好ましくは、
前記第１のオリゴヌクレオチドプライマーは、その５’末端を介して、担体と結合しており、
前記第２のオリゴヌクレオチドプライマーは、その５’末端を介して、前記第１のオリゴヌクレオチドプライマーが結合している前記担体と結合している。
＜第１一本鎖環状DNA＞
第１一本鎖環状DNAは、標的核酸の第１の部位に相補的な１０～３０塩基の配列と、
該配列の５’側に隣接した、７～８塩基のプライマー結合配列と、
第２一本鎖環状DNA結合配列と、
を含む。
第１一本鎖環状DNAは、標的核酸の第１の部位に相補的な１０～３０塩基の配列と、
該配列の５’側に隣接した、７～８塩基のプライマー結合配列と、
第２一本鎖環状DNA結合配列と、
を含む。
SATIC法について、図２を参照して説明する。ただし、一本鎖環状DNAでは、時計回りに５’→３’である。また、図２では、便宜上、担体は記載していない。
第１一本鎖環状DNA２０は標的核酸２１の第1の部位２１１に相補的な配列２０１と、その５’側に連結したプライマー結合配列２０２と、第２一本鎖環状DNA結合配列２０３を含む。
配列２０１の長さは、通常、１０～３０塩基であり、好ましくは１５～２５塩基であり、GC含量は好ましくは３０～７０％である。配列２０２の長さは７塩基または８塩基であり、配列は特に制限されないが、GC含量は好ましくは３０～７０％である。第１一本鎖環状DNA２０全体の長さは、好ましくは３５～１００塩基である。
第１一本鎖環状DNA２０は標的核酸２１の第1の部位２１１に相補的な配列２０１と、その５’側に連結したプライマー結合配列２０２と、第２一本鎖環状DNA結合配列２０３を含む。
配列２０１の長さは、通常、１０～３０塩基であり、好ましくは１５～２５塩基であり、GC含量は好ましくは３０～７０％である。配列２０２の長さは７塩基または８塩基であり、配列は特に制限されないが、GC含量は好ましくは３０～７０％である。第１一本鎖環状DNA２０全体の長さは、好ましくは３５～１００塩基である。
第１一本鎖環状DNA２０は、一本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）を環状化することによって得ることができる。一本鎖ＤＮＡの環状化は、任意の手段によって行うことができるが、例えば、CircLigase（登録商標）、CircLigase II（登録商標）、ssDNA Ligase（Epicentre社）、ThermoPhage ligase（登録商標） single-stranded DNA（Prokzyme社）を用いて行うことができる。
＜第１オリゴヌクレオチドプライマー＞
第１オリゴヌクレオチドプライマー２２は、標的核酸２１の、第１の部位２１１の３’側に隣接した第２の部位２１２に相補的な８～１５塩基の配列２２１と、その３’側に連結された、第１一本鎖環状DNA２０のプライマー結合部位２０２に相補的な７～８塩基の配列２２２と、を含む。
第１オリゴヌクレオチドプライマー２２は、標的核酸２１の、第１の部位２１１の３’側に隣接した第２の部位２１２に相補的な８～１５塩基の配列２２１と、その３’側に連結された、第１一本鎖環状DNA２０のプライマー結合部位２０２に相補的な７～８塩基の配列２２２と、を含む。
第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２は、その５’末端を介して、担体と結合している。
第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２の５’末端として、例えば、ビオチン、アミノ基、アルデヒド基、又はＳＨ基で修飾されたものなどが挙げられる。担体としては、これらのそれぞれと結合できる担体が挙げられ、例えば、アビジン（その誘導体、すなわち、例えば、ストレプトアビジン、ニュートラビジンなどを含む。）が固定されている担体、また、アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基などを有するシランカップリング剤で表面処理された担体などが挙げられる。固定化は常法に従えばよい。
第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２の５’末端として、例えば、ビオチン、アミノ基、アルデヒド基、又はＳＨ基で修飾されたものなどが挙げられる。担体としては、これらのそれぞれと結合できる担体が挙げられ、例えば、アビジン（その誘導体、すなわち、例えば、ストレプトアビジン、ニュートラビジンなどを含む。）が固定されている担体、また、アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基などを有するシランカップリング剤で表面処理された担体などが挙げられる。固定化は常法に従えばよい。
担体は、第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２と後述する第２オリゴヌクレオチドプライマー２５とを近傍に固定できるものが好ましい。両者が近傍に存在することで、第１オリゴヌクレオチドプライマー２２から第１増幅産物２３が増幅される段階と、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５から第２増幅産物２６が増幅される段階とが、溶液中に遊離の状態にある２種類のプライマーを用いた場合と比較して、効率的に行われ、結果として検出感度の著しい向上が達せられるからである。
好ましい担体として、例えばビーズや、センサー等で用いる基板のような平面担体が挙げられる。ビーズとは、粒子状の不溶性担体であり、その平均粒径は例えば10 nm～100 μmであり、好ましくは30nm～１0μmであり、より好ましくは30nm～１μm、さらに好ましくは30nm～500nmである。ビーズの材質は特に限定されない。例えば、磁性体（フェライトやマグネタイトなどの酸化鉄、酸化クロム、コバルトなどの磁性材料）、シリカ、アガロース、セファロースなどが挙げられる。磁性体ビーズは、「磁気ビーズ」と称されることがある。また、金コロイドなどの金属コロイド粒子も使用できる。
＜第２一本鎖環状DNA＞
第２一本鎖環状DNA２４は、第１一本鎖環状DNA２０の第２一本鎖環状DNA結合配列２０３と同一の配列２４１と、
該配列の５’側に隣接した、第２プライマー結合配列２４２と、
を含む。
配列２０３の長さは、通常、１０～３０塩基であり、好ましくは１５～２５塩基であり、GC含量は好ましくは３０～７０％である。配列２４２の長さは７塩基または８塩基であり、配列は特に制限されないが、GC含量は好ましくは３０～７０％である。配列２４２の長さは７塩基または８塩基であり、配列は特に制限されないが、GC含量は好ましくは３０～７０％である。第２一本鎖環状DNA２４全体の長さは、好ましくは３５～１００塩基である。第２一本鎖環状DNA２４は上述した方法で、一本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）を環状化することによって得ることができる。
第２一本鎖環状DNA２４は、第１一本鎖環状DNA２０の第２一本鎖環状DNA結合配列２０３と同一の配列２４１と、
該配列の５’側に隣接した、第２プライマー結合配列２４２と、
を含む。
配列２０３の長さは、通常、１０～３０塩基であり、好ましくは１５～２５塩基であり、GC含量は好ましくは３０～７０％である。配列２４２の長さは７塩基または８塩基であり、配列は特に制限されないが、GC含量は好ましくは３０～７０％である。配列２４２の長さは７塩基または８塩基であり、配列は特に制限されないが、GC含量は好ましくは３０～７０％である。第２一本鎖環状DNA２４全体の長さは、好ましくは３５～１００塩基である。第２一本鎖環状DNA２４は上述した方法で、一本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）を環状化することによって得ることができる。
第２一本鎖環状DNA２４は、検出用試薬結合配列に相補的な配列を含むことが好ましい。該検出用試薬結合配列としては、例えばグアニン四重鎖形成配列が挙げられる。
グアニン四重鎖形成配列としては、Nat Rev Drug Discov. 2011 Apr; 10(4): 261-275.に記載されたような配列が挙げられ、Ｇ3Ｎ1-10Ｇ3Ｎ1-10Ｇ3Ｎ1-10Ｇ3で表されるが、具体的には、特許文献１に記載の配列などが例示される。よって、グアニン四重鎖形成配列に相補的な配列２４３としては、Ｃ3Ｎ1-10Ｃ3Ｎ1-10Ｃ3Ｎ1-10Ｃ3が例示される。すなわち、連続する３つのＣが、１～１０個（好ましくは１～５個）の任意の塩基（Ｎ＝Ａ，Ｔ，ＧまたはＣ）からなる配列をスペーサーとして、４回繰り返される配列である。
グアニン四重鎖形成配列としては、Nat Rev Drug Discov. 2011 Apr; 10(4): 261-275.に記載されたような配列が挙げられ、Ｇ3Ｎ1-10Ｇ3Ｎ1-10Ｇ3Ｎ1-10Ｇ3で表されるが、具体的には、特許文献１に記載の配列などが例示される。よって、グアニン四重鎖形成配列に相補的な配列２４３としては、Ｃ3Ｎ1-10Ｃ3Ｎ1-10Ｃ3Ｎ1-10Ｃ3が例示される。すなわち、連続する３つのＣが、１～１０個（好ましくは１～５個）の任意の塩基（Ｎ＝Ａ，Ｔ，ＧまたはＣ）からなる配列をスペーサーとして、４回繰り返される配列である。
なお、図２では、第２一本鎖環状DNA２４がグアニン四重鎖形成配列に相補的な配列２４３を含む場合について説明したが、第２一本鎖環状DNA２４はこのほかにも、例えば、検出試薬結合配列をアプタマー配列もしくは分子ビーコン（FRETを生じさせる蛍光基（ドナー）と消光基（アクセプター）を有するヘアピン状のオリゴヌクレオチド）結合配列とし、検出試薬として、アプタマー結合性発色分子もしくは分子ビーコンを用いて検出することも可能である（ChemBioChem 2007, 8, 1795-1803；J. Am. Chem. Soc. 2013, 135, 7430-7433）。
＜第２オリゴヌクレオチドプライマー＞
第２オリゴヌクレオチドプライマー２５は、第１一本鎖環状DNA２０の第２一本鎖環状DNA結合配列２０３の５’側に隣接した部位２０４と同一の配列２５１（好ましくは８～１５塩基の配列）と、
該配列の３’側に隣接した、第２一本鎖環状DNA２４の第２プライマー結合配列２４２に相補的な配列２５２（好ましくは７～８塩基の配列）と、
を含む。
第２オリゴヌクレオチドプライマー２５は、第１一本鎖環状DNA２０の第２一本鎖環状DNA結合配列２０３の５’側に隣接した部位２０４と同一の配列２５１（好ましくは８～１５塩基の配列）と、
該配列の３’側に隣接した、第２一本鎖環状DNA２４の第２プライマー結合配列２４２に相補的な配列２５２（好ましくは７～８塩基の配列）と、
を含む。
第２のオリゴヌクレオチドプライマー２５は、その５’末端を介して、第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２が結合している前記担体と結合している。
すなわち、第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２は、その５’末端がビオチンで修飾されており、該ビオチンを介して、アビジンが固定されている担体と結合しており、第２のオリゴヌクレオチドプライマー２５は、その５’末端がビオチンで修飾されており、該ビオチンを介して、第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２が結合している前記担体と結合していることが好ましい。
すなわち、第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２は、その５’末端がビオチンで修飾されており、該ビオチンを介して、アビジンが固定されている担体と結合しており、第２のオリゴヌクレオチドプライマー２５は、その５’末端がビオチンで修飾されており、該ビオチンを介して、第１のオリゴヌクレオチドプライマー２２が結合している前記担体と結合していることが好ましい。
担体に固定化された、第１オリゴヌクレオチドプライマー２２と第２オリゴヌクレオチドプライマー２５の量比は、モル比で、好ましくは1:10～1:100であり、より好ましくは1:10～1:30であり、さらに好ましくは1:10～1:25である。
増幅反応時（使用時）の第１オリゴヌクレオチドプライマー２２の濃度は、モル比で、好ましくは0.0025 pmol/μL以上、より好ましくは0.005 pmol/μL以上であり、一方で、好ましくは0.04 pmol/μL以下、より好ましくは0.02 pmol/μL以下である。
また、増幅反応時（使用時）の第２オリゴヌクレオチドプライマー２５の濃度は、モル比で、好ましくは0.0125 pmol/μL以上、より好ましくは0.025 pmol/μL以上であり、一方で、0.8 pmol/μL以下、より好ましくは0.4 pmol/μL以下である。
また、増幅反応時（使用時）の第２オリゴヌクレオチドプライマー２５の濃度は、モル比で、好ましくは0.0125 pmol/μL以上、より好ましくは0.025 pmol/μL以上であり、一方で、0.8 pmol/μL以下、より好ましくは0.4 pmol/μL以下である。
増幅反応時（使用時）の第１一本鎖環状DNA２０と第２一本鎖環状DNA２４の量比は、モル比で、好ましくは1:2～1:1000、より好ましくは1:3～1:500、さらに好ましくは1:4～1:400である。
また、増幅反応時（使用時）の第１一本鎖環状DNA２０の濃度は、下限が例えば0.1nM以上、1nM以上、10nM以上、50nM以上であり、一方で、上限が例えば500nM以下、200nM以下である。
また、増幅反応時（使用時）の第２一本鎖環状DNA２４の濃度は、下限が例えば20nM以上、40nM以上、100nM以上、200nM以上であり、一方で、上限が例えば1000nM以下、500nM以下である。
また、増幅反応時（使用時）の第１一本鎖環状DNA２０の濃度は、下限が例えば0.1nM以上、1nM以上、10nM以上、50nM以上であり、一方で、上限が例えば500nM以下、200nM以下である。
また、増幅反応時（使用時）の第２一本鎖環状DNA２４の濃度は、下限が例えば20nM以上、40nM以上、100nM以上、200nM以上であり、一方で、上限が例えば1000nM以下、500nM以下である。
＜増幅方法＞
図２に示されるように、まず、標的核酸２１に第１一本鎖環状DNA２０およびプライマー２２をハイブリダイズさせて三者の複合体を形成させた後、ローリングサークル増幅（RCA）法によって標的核酸２１に基づく核酸増幅反応を行う。
図２に示されるように、まず、標的核酸２１に第１一本鎖環状DNA２０およびプライマー２２をハイブリダイズさせて三者の複合体を形成させた後、ローリングサークル増幅（RCA）法によって標的核酸２１に基づく核酸増幅反応を行う。
ハイブリダイゼーションの条件は、当業者であれば、一本鎖環状DNA２０と標的核酸２１とプライマーの組み合わせを検討し、適宜設定できる。
RCA法はLizardi et al., Nature Genet. 19: 225-232 (1998);米国特許第５，８５４，０３３号及び同第６，１４３，４９５号；ＰＣＴ出願ＷＯ９７／１９１９３などに記載されている。RCA法は、例えば、上述したようなphi29 DNA polymeraseなどの鎖置換型ＤＮＡポリメラーゼを用いることで行うことができる。
RCAによるＤＮＡの伸長反応は、例えば、２５℃～６５℃の範囲の一定の温度において実施される。反応温度は、酵素の至適温度とプライマー鎖長に基づく変性温度（プライマーがＤＮＡに結合（アニール）／解離する温度帯）に基づいて通常の手順により適宜設定される。さらに、一定の比較的低温においても実施される。例えば、鎖置換型ＤＮＡ合成酵素としてphi29ＤＮＡポリメラーゼを使用する場合は、好ましくは２５℃～４２℃、より好ましくは約３０～３７℃で反応する。
RCAによって、標的核酸２１依存的に、プライマー２２から第１一本鎖環状DNA２０に沿って第１増幅産物２３が増幅される。
増幅産物２３は、第１一本鎖環状DNA２０の第２一本鎖環状DNA結合配列２０３に相補的な配列２３３を含むため、この配列２０３と同一の配列２４１を含む第２一本鎖環状DNA２４は、第１増幅産物２３の配列２３３に、配列２４１を介してハイブリダイズする。
このようにしてできた、第１増幅産物２３と、第２一本鎖環状DNA２４の複合体に、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５がハイブリダイズして三者の複合体ができる。
このようにしてできた、第１増幅産物２３と、第２一本鎖環状DNA２４の複合体に、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５がハイブリダイズして三者の複合体ができる。
すなわち、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５は、第１一本鎖環状DNA２０の第２一本鎖環状DNA結合配列２０３の５’側に隣接した部位２０４と同一の配列２５１を有するので、第１増幅産物２３の、第１一本鎖環状DNA２０の部位２０４に相補的な領域２３４に、配列２５１を介してハイブリダイズする。
また、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５は、配列２５１の３’側に、第２一本鎖環状DNA２４の第２プライマー結合配列２４２に相補的な配列２５２を有するので、第２一本鎖環状DNA２４にも配列２５２を介してハイブリダイズする。
この第１増幅産物２３と、第２一本鎖環状DNA２４と、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５との三者複合体から、RCAにより、第２増幅産物２６が増幅される。第２増幅産物２６は、例えばグアニン四重鎖を含む配列２６１を含んでおり、グアニン四重鎖検出試薬２６２によって検出される。第１増幅産物２３に含まれる領域２３１のそれぞれに第２一本鎖環状DNA２４がハイブリダイズしてRCA反応が起こる。
第１オリゴヌクレオチドプライマー２２と第２オリゴヌクレオチドプライマー２５が同一担体上に固定化されることにより、第１オリゴヌクレオチドプライマー２２から第１増幅
産物２３が増幅される段階と、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５から第２増幅産物２６が増幅される段階とが、近傍で行われるため、検出感度の著しい向上が達せられる。
産物２３が増幅される段階と、第２オリゴヌクレオチドプライマー２５から第２増幅産物２６が増幅される段階とが、近傍で行われるため、検出感度の著しい向上が達せられる。
第２一本鎖環状DNA２４が検出用試薬結合配列に相補的な配列を含むことにより、RCAによって得られる第２増幅産物２６には検出用試薬結合配列が含まれる。該検出用試薬結合配列がグアニン四重鎖形成配列等である場合には、RCAによって得られる増幅産物は、グアニン四重鎖結合試薬を用いて検出することができる。グアニン四重鎖結合試薬としては、特許文献１に開示されたチオフラビンT（ThT）またはその誘導体などが挙げられる。
また、以下のPEG鎖を含むThT誘導体（ThT-PEG）を使用することもできる。
ここで、R5はアミノ基、水酸基、アルキル基、またはカルボキシル基であり、ｎは４～５０の整数であり、好ましくは５～２０の整数であり、より好ましくは８～１５の整数であり、特に好ましくは１１である。ThT-PEGとしては、R5がアミノ基の化合物がより好ましい。
ここで、R5はアミノ基、水酸基、アルキル基、またはカルボキシル基であり、ｎは４～５０の整数であり、好ましくは５～２０の整数であり、より好ましくは８～１５の整数であり、特に好ましくは１１である。ThT-PEGとしては、R5がアミノ基の化合物がより好ましい。
以下のThTがPEG鎖で連結されたThT誘導体（ThT-PEG-ThT）を使用することもできる。
ここで、ｎは４～５０の整数であり、好ましくは５～２０の整数であり、より好ましくは８～１５の整数であり、特に好ましくは１１である。また、ThT-PEG-ThTのPEG鎖はスペルミンリンカーで置換されてもよい。
ここで、ｎは４～５０の整数であり、好ましくは５～２０の整数であり、より好ましくは８～１５の整数であり、特に好ましくは１１である。また、ThT-PEG-ThTのPEG鎖はスペルミンリンカーで置換されてもよい。
検出は、例えば、ThT誘導体と、RCA産物を含む試料を接触させ、グアニン四重鎖構造に結合したThT誘導体を、ThT誘導体が発する蛍光に基づいて検出することにより、被検ＤＮＡ中のグアニン四重鎖構造を検出することができる。ThT誘導体はあらかじめ反応液に添加されていることが好ましい。
なお、グアニン四重鎖結合試薬としてThT-PEGやThT-PEG-ThTを使用する場合には、RCA産物にThT-PEGまたはThT-PEG-ThTが結合すると特異的な凝集が起こるため、その凝集を目視で観察することによって蛍光検出装置を用いなくとも簡便にRCA増幅の有無を確認できる。なお、ThT-PEGとThT-PEG-ThTを同時に使用してもよい。ThT-PEGまたはThT-PEG-ThTの濃度は例えば、5～50μM、好ましくは5～20μMである。
SATIC法用の試薬プレミックスは、第１試薬層にphi29 DNA polymeraseなどの核酸ポリメラーゼが含まれ、第２試薬層にそれ以外の試薬、すなわち、第１および第２のプライマー、第１および第２の環状DNAさらにはdNTPや緩衝剤や検出試薬（ThT-PEGなど）が含まれてもよいが、第２試薬層が第１プライマーと第２プライマーを含むとき、第１および第２の環状DNAさらにはdNTPや緩衝剤や検出試薬（ThT-PEGなど）を含む中間試薬層を第１試薬層と第２試薬層の間に、それぞれ前記PEGなどの少なくとも０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜で隔離して設けてもよい（図１B）。そして、第２試薬層に含まれる第１プライマーと第２プライマーは同一の担体に固定化されていてもよい。
＜核酸増幅方法＞
本発明の核酸増幅反応用キットを使用して核酸増幅反応を行うには、核酸増幅反応用キットを温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程を行えばよい。
温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程はいずれを先に行ってもよい。
温度制御装置としては、ＰＣＲの場合はサーマルサイクラーが挙げられ、ＬＡＭＰ法やSATIC法などの等温増幅法の場合は恒温装置（槽）が挙げられる。
本発明の核酸増幅反応用キットを使用して核酸増幅反応を行うには、核酸増幅反応用キットを温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程を行えばよい。
温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程はいずれを先に行ってもよい。
温度制御装置としては、ＰＣＲの場合はサーマルサイクラーが挙げられ、ＬＡＭＰ法やSATIC法などの等温増幅法の場合は恒温装置（槽）が挙げられる。
＜核酸増幅反応用キットの製造方法＞
本発明の核酸増幅反応用キットは、核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体（水溶液）を添加して第１試薬層を形成する工程、
第１試薬層上に０℃未満では固体であり０～３５℃で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、すなわち、前記膜が溶解しない状態で、前記物質の膜上にプライマーオリゴヌクレオチド等を含む液体（水溶液）を添加して第２試薬層を形成する工程、により製造することができる。
なお、第１試薬層が上層に配置される場合は、第２試薬層を先に形成し、その上に、膜を積層し、さらに第２試薬層を形成してもよい。
本発明の核酸増幅反応用キットは、核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体（水溶液）を添加して第１試薬層を形成する工程、
第１試薬層上に０℃未満では固体であり０～３５℃で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、すなわち、前記膜が溶解しない状態で、前記物質の膜上にプライマーオリゴヌクレオチド等を含む液体（水溶液）を添加して第２試薬層を形成する工程、により製造することができる。
なお、第１試薬層が上層に配置される場合は、第２試薬層を先に形成し、その上に、膜を積層し、さらに第２試薬層を形成してもよい。
反応容器としては、エッペンドルフチューブのような反応チューブ（マイクロチューブ）でもよいし、マルチウェルプレートのような容器でもよい。
第１試薬層の上に、０℃未満では固体であり０～３５℃で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層するには、当該物質を適当な溶媒に溶解し、溶解液を第１試薬層の上に積層し、真空乾燥などにより、溶媒を揮発させる方法が挙げられる。溶媒は物質の種類によって適宜選択できるが、有機溶媒が好ましい。積層法は特に制限されないが、薄膜を形成するためにはスプレー法が好ましい。当該物質の濃度は、膜が溶解したときに、核酸増幅反応系の終濃度として３～２０w/v％となるような濃度が好ましく、５～１２w/v％となるような濃度がより好ましい。
その後、当該膜が水に溶解しない温度、好ましくは０℃未満（例えば、氷上）に反応容器を置き、膜上に、プライマーオリゴヌクレオチド等を含む水溶液を添加することで第２試薬層を形成することができる。
そして、得られた多層化プレミックス試薬を含む核酸増幅反応キットを膜が溶解しない程度の低温、好ましくは０℃未満（例えば、－１０～－３０℃）に凍結した状態で使用時まで保存することができる。
なお、SATIC法用に、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、第１および第２プライマーを含む第２試薬層と、これらの間に位置し、第１試薬層および第２試薬層のそれぞれと上記物質の膜を介して配置された、ポリヌクレオチドプライマー等を含む中間試薬層を含む多層化プレミックス試薬を製造する場合は、以下のような工程を行うことで製造することができる。
核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体を添加して第１試薬層を形成する工程、第１試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む液体を添加して中間試薬層を形成する工程、
０℃未満の温度下で、中間試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、ならびに
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１プライマーおよび第２プライマーを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程。
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む液体を添加して中間試薬層を形成する工程、
０℃未満の温度下で、中間試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、ならびに
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１プライマーおよび第２プライマーを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程。
それぞれの膜を積層する工程は、上述したのと同様にすることができる。
また、中間試薬層や第２試薬層の積層方法も上記で述べたのと同様にすることができる。なお、第１プライマーおよび第２プライマーが担体に固定化されているときは、当該担体を含む懸濁液を積層すればよい。
また、中間試薬層や第２試薬層の積層方法も上記で述べたのと同様にすることができる。なお、第１プライマーおよび第２プライマーが担体に固定化されているときは、当該担体を含む懸濁液を積層すればよい。
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例の態様には限
定されない。
定されない。
実施例1. 多層化プレミックスの作製と検証(SATIC法)
1-1) プライマー固定化ナノ粒子の調製
a) ビオチン化プライマーの調製
ビオチン化プライマー(P1-1(ターゲット領域1に対応))とビオチン化プライマー(P2)を1×φ29 DNA polymerase reaction bufferに溶解させ、P1(1μM)、P2(20μＭ)のP1・P2混合溶液を調製した。
b) ナノ粒子の使用前の準備・洗浄
FGビーズ(FG beads streptavidin)をよくボルテックスし、均一な粒子になるまで撹拌し、40μLすくいとり、1.5 mLのエッペンドルフ社製チューブに入れた。
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した(5 分)。上清を抜き取り、1×φ29 DNA polymerase reaction bufferを40μL加えてピペッティングした。
上記操作をさらに2回行った。
c) ナノ粒子にプライマーを固定化・洗浄
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した(5 分)。上清を抜きとった。
洗浄したFGビーズに上記P1・P2混合溶液4μLを加えた。
25°C、30分間インキュベーションした。その際、5分おきにボルテックスを行った。
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した（5 分）。上清を抜き取り、1×φ29 DNA polymerase reaction bufferを40μL加えてピペッティングした。
上記操作をさらに2回行った。
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した（5 分）。上清を抜き取り、水を40μL加えてピペッティングした。
上記操作をさらに2回行った。これを使用するまで冷蔵保存した。
プレミックスの作製時に磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した（5 分）。上清を抜き取った。その後、加熱溶解したPEG1000 20μLと10μg/μL BSA 20μLを加えた（液２）。
1-1) プライマー固定化ナノ粒子の調製
a) ビオチン化プライマーの調製
ビオチン化プライマー(P1-1(ターゲット領域1に対応))とビオチン化プライマー(P2)を1×φ29 DNA polymerase reaction bufferに溶解させ、P1(1μM)、P2(20μＭ)のP1・P2混合溶液を調製した。
b) ナノ粒子の使用前の準備・洗浄
FGビーズ(FG beads streptavidin)をよくボルテックスし、均一な粒子になるまで撹拌し、40μLすくいとり、1.5 mLのエッペンドルフ社製チューブに入れた。
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した(5 分)。上清を抜き取り、1×φ29 DNA polymerase reaction bufferを40μL加えてピペッティングした。
上記操作をさらに2回行った。
c) ナノ粒子にプライマーを固定化・洗浄
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した(5 分)。上清を抜きとった。
洗浄したFGビーズに上記P1・P2混合溶液4μLを加えた。
25°C、30分間インキュベーションした。その際、5分おきにボルテックスを行った。
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した（5 分）。上清を抜き取り、1×φ29 DNA polymerase reaction bufferを40μL加えてピペッティングした。
上記操作をさらに2回行った。
磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した（5 分）。上清を抜き取り、水を40μL加えてピペッティングした。
上記操作をさらに2回行った。これを使用するまで冷蔵保存した。
プレミックスの作製時に磁気ラック(磁石のついたチューブたて)にチューブをセットして、磁気ビーズと上清を分離した（5 分）。上清を抜き取った。その後、加熱溶解したPEG1000 20μLと10μg/μL BSA 20μLを加えた（液２）。
1-2）多層化プレミックスの作製
i.チューブの底に1μLの10U/μLのφ29 DNA polymeraseを入れた。
ii.チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（ポリメラーゼの上にPEG1000をコーティングし層を作る）
iii.チューブ冷やしながら（0℃）真空乾燥させた（5分）。
iv.チューブを-21℃に冷却した。チューブを氷上で冷却しながらiiの上に冷却した液１を加えた。43μLを加えた。
v.チューブを-21℃に冷却した（液１を氷結させる）。
vi. チューブを冷やしながら（0℃）、チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（氷結した液１の上にPEG1000をコーティングし層を作る）
vii. 液２を1μL丁寧にPEG1000の層の上に加えた。
viii. これをSATICプレミックス試薬とし冷凍保管した。
i.チューブの底に1μLの10U/μLのφ29 DNA polymeraseを入れた。
ii.チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（ポリメラーゼの上にPEG1000をコーティングし層を作る）
iii.チューブ冷やしながら（0℃）真空乾燥させた（5分）。
iv.チューブを-21℃に冷却した。チューブを氷上で冷却しながらiiの上に冷却した液１を加えた。43μLを加えた。
v.チューブを-21℃に冷却した（液１を氷結させる）。
vi. チューブを冷やしながら（0℃）、チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（氷結した液１の上にPEG1000をコーティングし層を作る）
vii. 液２を1μL丁寧にPEG1000の層の上に加えた。
viii. これをSATICプレミックス試薬とし冷凍保管した。
1-3) プライマー固定化ナノ粒子を用いた反応
SATICプレミックス試薬に、さらにターゲットDNA(精製した1kbp DNA断片(10pM)または、細胞破砕液)を5μL加えた。
37°C、1500rpmの振動で20分反応させた。
SATICプレミックス試薬に、さらにターゲットDNA(精製した1kbp DNA断片(10pM)または、細胞破砕液)を5μL加えた。
37°C、1500rpmの振動で20分反応させた。
1-4) 目視による観察
ナノ粒子の変化を目視で観察した。
ナノ粒子の変化を目視で観察した。
結果
SATIC反応で冷凍凍結したプレミックス試薬を用いたところターゲットDNAを特異的に検出した（図３）。
SATIC反応で冷凍凍結したプレミックス試薬を用いたところターゲットDNAを特異的に検出した（図３）。
実施例2. 多層化プレミックスの作製と検証(PCR用)
2-1）多層化プレミックスの作製
i.チューブの底に1μLの5U/μLのTaq DNA polymeraseを入れた。
ii.チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（ポリメラーゼの上にPEG1000をコーティングし層を作る）
iii.チューブ冷やしながら（0℃）真空乾燥させた（5分）。
iv.チューブを-21℃に冷却した。チューブを氷上で冷却しながらiiの上に冷却した液３を加えた。44μLを加えた。チューブを-21℃に冷却した（液３を氷結させる）。
v.これをPCRプレミックス試薬とし冷凍保管した。
2-1）多層化プレミックスの作製
i.チューブの底に1μLの5U/μLのTaq DNA polymeraseを入れた。
ii.チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（ポリメラーゼの上にPEG1000をコーティングし層を作る）
iii.チューブ冷やしながら（0℃）真空乾燥させた（5分）。
iv.チューブを-21℃に冷却した。チューブを氷上で冷却しながらiiの上に冷却した液３を加えた。44μLを加えた。チューブを-21℃に冷却した（液３を氷結させる）。
v.これをPCRプレミックス試薬とし冷凍保管した。
2-2) PCR反応
PCRプレミックス試薬に、ターゲットDNA(精製した1kbp DNA断片(10pM)または、細胞破砕液)を5μL加えた(陰性対照には水を5μL加えた)。
PCRサイクルを行なった
1. 95℃ 5min
2. 95℃ 0.5min
3. 62℃ 0.5min
4. 72℃ 2min
2→4のサイクルを28回
5. 72℃ 5min
PCRプレミックス試薬に、ターゲットDNA(精製した1kbp DNA断片(10pM)または、細胞破砕液)を5μL加えた(陰性対照には水を5μL加えた)。
PCRサイクルを行なった
1. 95℃ 5min
2. 95℃ 0.5min
3. 62℃ 0.5min
4. 72℃ 2min
2→4のサイクルを28回
5. 72℃ 5min
2-3) アガロース電気泳動
アガロース電気泳動でPCR産物の観察をした。
アガロース電気泳動でPCR産物の観察をした。
結果：
冷凍凍結したプレミックス試薬を用いたところ1kbpのPCR産物が得られた（図４）。
冷凍凍結したプレミックス試薬を用いたところ1kbpのPCR産物が得られた（図４）。
実施例3. 多層化プレミックスの作製と検証(LAMP法)
3-1）多層化プレミックスの作製
i.チューブの底に1μLの1.6U/μLのBst3.0 DNA polymeraseを入れた。
ii.チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（ポリメラーゼの上にPEG1000をコーティングし層を作る）
iii.チューブ冷やしながら（0℃）真空乾燥させた（5分）。
iv.チューブを-21℃に冷却した。チューブを氷上で冷却しながらiiの上に冷却した液４を加えた。44μLを加えた。チューブを-21℃に冷却した（液４を氷結させる）。
v. これをLAMPプレミックス試薬とし冷凍保管した。
3-1）多層化プレミックスの作製
i.チューブの底に1μLの1.6U/μLのBst3.0 DNA polymeraseを入れた。
ii.チューブ上から0.5g/mL PEG 1000 ジクロロメタン溶液を霧吹で吹きかけた。（ポリメラーゼの上にPEG1000をコーティングし層を作る）
iii.チューブ冷やしながら（0℃）真空乾燥させた（5分）。
iv.チューブを-21℃に冷却した。チューブを氷上で冷却しながらiiの上に冷却した液４を加えた。44μLを加えた。チューブを-21℃に冷却した（液４を氷結させる）。
v. これをLAMPプレミックス試薬とし冷凍保管した。
3-2) LAMP反応
LAMPプレミックス試薬に、ターゲットDNA(精製した1kbp DNA断片(10pM)または、細胞破砕液)を5μL加えた。
60°C、30分反応させた。
LAMPプレミックス試薬に、ターゲットDNA(精製した1kbp DNA断片(10pM)または、細胞破砕液)を5μL加えた。
60°C、30分反応させた。
3-3) 目視による観察
HNBの呈色変化を目視で観察した。
HNBの呈色変化を目視で観察した。
結果：
LAMP反応で冷凍凍結したプレミックス試薬を用いたところターゲットDNAを特異的に検出した（図５）。
LAMP反応で冷凍凍結したプレミックス試薬を用いたところターゲットDNAを特異的に検出した（図５）。
使用した鋳型DNAおよびプライマー等の配列
精製した1kbp DNA断片:
TTGTCTACAGACTTTGCAGACTGATGTGATTCCCTCTGAAACTTGAATTATTTGGTTTCTAAAAAAGTCTCTTTTTTTCTTTCCAAAGTAAAAGACAAATAGGCCGGGAATGTAAATTTAGCATTTGAGCAACCATTATTTAACCAGCTAGGCTGTAATTGTTAATTCGAGATTAATGTAAAAGTGATGTGTTGATTTTATGCATGCCAAACTCTTTTTTGCTTTTAAGGGAATTCATAGGTAAGATATTACTTAAAATTTCTAAACTATTATTATCTGTTAACAAATATGAAGTGTTTTATATCTAATGTTTACTCATATTTTAAAATTGTTTCCAATCATTTAGCTTCACCCTGTGATCCCACTTTCATCCTGGGCTGTGCTCCCTGCAATGTGATCTGCTCCATTATTTTCCAGAAACGTTTCGATTATAAAGATCAGCAATTTCTTAACTTGATGGAAAAATTGAATGAAAACATCAGGATTGTAAGCACCCCCTGGATCCAGGTAAGGCCAAGTTTTTTGCTTCCTGAGAAACCACTTACAGTCTTTTTTTCTGGGAAATCCAAAATTCTATATTGACCAAGCCCTGAAGTACATTTTTGAATACTACAGTCTTGCCTAGACAGCCATGGGGTGAATATCTGGAAAAGATGGCAAAGTTCTTTATTTTATGCACAGGAAATGAATATCCCAATATAGATCAGGCTTCTAAGCCCATTAGCTCCCTGATCAGTGTTTTTTCCACTAAACTCCAAAGCCCTGTTTCTATAAAGTACTTTGGTGACAGCCCCAAAGCGTGCTTATATCACTCCATGGACATCCAGGCACTTTGGAGTCTTCCATTACTCACAAGGCTTGTCCTTCAATTCACACTTTGTCATATTGTGTGACAGAAATATCCTAATCTAAAAGACATTATCTCCTTCAAGGACAGAGAATATTTGGAACCACAGAAGCTGCCAAGAAACACTGAATAGGGCAGAGGTGTTTGATGTCTC（配列番号１）長さ：1001bp
cT1(CYP2C19*3):CAA AAA ACA GGG GGT GCT TAC AAT CCT AGG ATT GTA TAG AAG CTG TTG TAT TGT TGT CGA AGA AGA AAA GTC C（配列番号２）長さ：73base
cT2 CCC AAC CCT ACC CAC CCT CAA GAA AAA AAA GTG ATA ATT GTT GTC GAA GAA GAA AAA AAA TT（配列番号３）長さ：62base
P1(CYP2C19*3): TTA CCT GGA TCT TTT TTG（配列番号４）長さ：18base
P2 GAA GCT GTT GTT ATC ACT（配列番号５）長さ：18base
PCR-FP（CYP2C19*3）: TTGTCTACAGACTTTGCAGACTGATGTGAT （配列番号６）長さ：30base
PCR-RP（CYP2C19*3）: GAGACATCAAACACCTCTGCCCTATTCAGT （配列番号７）長さ：30base
FIP（CYP2C19*3）: TCCAGGGGTCTTAACTTGATGGAAAAAT （配列番号８）長さ：28base
BIP（CYP2C19*3）:GGATCCAGGCCCAGAAAAAAAGACTGT（配列番号９）長さ：28base
F3（CYP2C19*3）: TCCAGAAACGTTTCG（配列番号１０）長さ：15base
B3（CYP2C19*3）: AGGGCTTGGTCAATAT（配列番号１１）長さ：16base
LoopF（CYP2C19*3）: GCTTACAATCCTGATGTT（配列番号１２）長さ：18base
LoopB（CYP2C19*3）: GTAAGGCCAAGTTTTTTG（配列番号１３）長さ：18base
精製した1kbp DNA断片:
TTGTCTACAGACTTTGCAGACTGATGTGATTCCCTCTGAAACTTGAATTATTTGGTTTCTAAAAAAGTCTCTTTTTTTCTTTCCAAAGTAAAAGACAAATAGGCCGGGAATGTAAATTTAGCATTTGAGCAACCATTATTTAACCAGCTAGGCTGTAATTGTTAATTCGAGATTAATGTAAAAGTGATGTGTTGATTTTATGCATGCCAAACTCTTTTTTGCTTTTAAGGGAATTCATAGGTAAGATATTACTTAAAATTTCTAAACTATTATTATCTGTTAACAAATATGAAGTGTTTTATATCTAATGTTTACTCATATTTTAAAATTGTTTCCAATCATTTAGCTTCACCCTGTGATCCCACTTTCATCCTGGGCTGTGCTCCCTGCAATGTGATCTGCTCCATTATTTTCCAGAAACGTTTCGATTATAAAGATCAGCAATTTCTTAACTTGATGGAAAAATTGAATGAAAACATCAGGATTGTAAGCACCCCCTGGATCCAGGTAAGGCCAAGTTTTTTGCTTCCTGAGAAACCACTTACAGTCTTTTTTTCTGGGAAATCCAAAATTCTATATTGACCAAGCCCTGAAGTACATTTTTGAATACTACAGTCTTGCCTAGACAGCCATGGGGTGAATATCTGGAAAAGATGGCAAAGTTCTTTATTTTATGCACAGGAAATGAATATCCCAATATAGATCAGGCTTCTAAGCCCATTAGCTCCCTGATCAGTGTTTTTTCCACTAAACTCCAAAGCCCTGTTTCTATAAAGTACTTTGGTGACAGCCCCAAAGCGTGCTTATATCACTCCATGGACATCCAGGCACTTTGGAGTCTTCCATTACTCACAAGGCTTGTCCTTCAATTCACACTTTGTCATATTGTGTGACAGAAATATCCTAATCTAAAAGACATTATCTCCTTCAAGGACAGAGAATATTTGGAACCACAGAAGCTGCCAAGAAACACTGAATAGGGCAGAGGTGTTTGATGTCTC（配列番号１）長さ：1001bp
cT1(CYP2C19*3):CAA AAA ACA GGG GGT GCT TAC AAT CCT AGG ATT GTA TAG AAG CTG TTG TAT TGT TGT CGA AGA AGA AAA GTC C（配列番号２）長さ：73base
cT2 CCC AAC CCT ACC CAC CCT CAA GAA AAA AAA GTG ATA ATT GTT GTC GAA GAA GAA AAA AAA TT（配列番号３）長さ：62base
P1(CYP2C19*3): TTA CCT GGA TCT TTT TTG（配列番号４）長さ：18base
P2 GAA GCT GTT GTT ATC ACT（配列番号５）長さ：18base
PCR-FP（CYP2C19*3）: TTGTCTACAGACTTTGCAGACTGATGTGAT （配列番号６）長さ：30base
PCR-RP（CYP2C19*3）: GAGACATCAAACACCTCTGCCCTATTCAGT （配列番号７）長さ：30base
FIP（CYP2C19*3）: TCCAGGGGTCTTAACTTGATGGAAAAAT （配列番号８）長さ：28base
BIP（CYP2C19*3）:GGATCCAGGCCCAGAAAAAAAGACTGT（配列番号９）長さ：28base
F3（CYP2C19*3）: TCCAGAAACGTTTCG（配列番号１０）長さ：15base
B3（CYP2C19*3）: AGGGCTTGGTCAATAT（配列番号１１）長さ：16base
LoopF（CYP2C19*3）: GCTTACAATCCTGATGTT（配列番号１２）長さ：18base
LoopB（CYP2C19*3）: GTAAGGCCAAGTTTTTTG（配列番号１３）長さ：18base
［合成例］
ThT誘導体の合成
以下のスキームに従ってThT-PEG-ThTを合成した。なお、ThT-AEの合成法は参考文献（Kataoka, Y.; Fujita, H.; Afanaseva, A.; Nagao, C.; Mizuguchi, K.; Kasahara, Y.; Obika, S.; Kuwahara, M. Biochemistry, 2019, 58, 493.）に記載の通りである。
ThT誘導体の合成
以下のスキームに従ってThT-PEG-ThTを合成した。なお、ThT-AEの合成法は参考文献（Kataoka, Y.; Fujita, H.; Afanaseva, A.; Nagao, C.; Mizuguchi, K.; Kasahara, Y.; Obika, S.; Kuwahara, M. Biochemistry, 2019, 58, 493.）に記載の通りである。
[化合物T1の合成]
ThT-AE (32 mg, 0.10 mmol)にdry Dichloromethane (CH2Cl2) (0.30 mL)を加えて撹拌し、そこにTriethylamine (TEA) (85 μL, 0.61 mmol)を加えた後にSuccinic anhydride (11 mg, 0.11 mmol)を加え、室温で30分撹拌した。反応混合物を減圧留去した後、残渣を水で懸濁させ、CH2Cl2で洗浄した。水層を減圧留去することで化合物T1を定量的に得た。ESI-MS (positive ion mode) m/z, found =412.15, calculated for [M+] =412.17.
ThT-AE (32 mg, 0.10 mmol)にdry Dichloromethane (CH2Cl2) (0.30 mL)を加えて撹拌し、そこにTriethylamine (TEA) (85 μL, 0.61 mmol)を加えた後にSuccinic anhydride (11 mg, 0.11 mmol)を加え、室温で30分撹拌した。反応混合物を減圧留去した後、残渣を水で懸濁させ、CH2Cl2で洗浄した。水層を減圧留去することで化合物T1を定量的に得た。ESI-MS (positive ion mode) m/z, found =412.15, calculated for [M+] =412.17.
[ThT-PEG-ThTの合成]
ThT-PEG (10 mg, 10 μmol)にdry DMF (0.3 mL)を加えて撹拌し、そこにHOBt・H2O (4.
2 mg, 26 μmol)、PyBOP (14 mg, 26 μmol)を加えた後にDIPEA (14 μL, 80 μmol)を
加えた。そこに、dry DMF (0.2 mL)に溶解した化合物T1 (5.6 mg, 13 μmol)を加え、室温で5時間撹拌した。反応混合物を減圧留去した後、残渣をCH2Cl2で溶解し、水で洗浄した。有機層を減圧留去し、ジエチルエーテルで固液抽出した後にHPLCを用いて精製することでThT-PEG-ThTを得た。
収量 : 0.82 mg 収率 : 6.1%
ThT-PEG (10 mg, 10 μmol)にdry DMF (0.3 mL)を加えて撹拌し、そこにHOBt・H2O (4.
2 mg, 26 μmol)、PyBOP (14 mg, 26 μmol)を加えた後にDIPEA (14 μL, 80 μmol)を
加えた。そこに、dry DMF (0.2 mL)に溶解した化合物T1 (5.6 mg, 13 μmol)を加え、室温で5時間撹拌した。反応混合物を減圧留去した後、残渣をCH2Cl2で溶解し、水で洗浄した。有機層を減圧留去し、ジエチルエーテルで固液抽出した後にHPLCを用いて精製することでThT-PEG-ThTを得た。
収量 : 0.82 mg 収率 : 6.1%
1H NMR (500 MHz, Deuterium oxide) δ 8.01 (2H, d) 7.97 (2H, s) 7.75 (6H, t) 6.95
(4H, d) 5.12 (4H, t) 3.86 (4H, s) 3.68 (44H, q) 3.61 (4H, q) 3.42-3.35 (4H, m) 3.10 (12H, s) 2.65 (4H, t) 2.57 (3H, s) 2.54 (3H, t); ESI-MS (positive ion mode)
m/z, found = 1348.51, calculated for [H+]= 1348.67.
(4H, d) 5.12 (4H, t) 3.86 (4H, s) 3.68 (44H, q) 3.61 (4H, q) 3.42-3.35 (4H, m) 3.10 (12H, s) 2.65 (4H, t) 2.57 (3H, s) 2.54 (3H, t); ESI-MS (positive ion mode)
m/z, found = 1348.51, calculated for [H+]= 1348.67.
２０・・・一本鎖環状DNA、２１・・・標的核酸、２２・・・第１オリゴヌクレオチドプライマー、２３・・・第１増幅産物、２４・・・第２一本鎖環状DNA、２５・・・第２オリゴヌクレオチドプライマー、２６・・・第２増幅産物、２０１・・・第１の部位に相補的な配列、２０２・・・第１プライマー結合配列、２０３・・・第２一本鎖環状DNA結合配列、２０４・・・２０３の５’側に隣接した部位、２１１・・・第１の部位、２１２・・・第２の部位、２２１・・・第２の部位に相補的な配列、２２２・・・第１プライマー結合部位に相補的な配列、２３１・・・、２０３の相補領域、２３２・・・部位２０４に相補的な領域、２３３・・・配列２０３に相補的な配列、２４１・・・第２一本鎖環状DNA結合配列２０３と同一の配列、２４２・・・第２プライマー結合配列、２４３・・・グアニン四重鎖形成配列に相補的な配列、２５１・・・部位２０４と同一の配列、２５２・・・第２一本鎖環状DNAの第２プライマー結合配列２４２に相補的な配列、２６１・・・グアニン四重鎖を含む配列、２６２・・・グアニン四重鎖検出試薬
Claims (6)
- 反応容器と、該反応容器内に収容された核酸増幅反応用試薬を含む核酸増幅反応用キットであって、
前記核酸増幅反応はSATIC法であり、
前記試薬は、核酸ポリメラーゼを含む第１試薬層と、
プライマーオリゴヌクレオチドを含む第２試薬層と、
前記第１試薬層と前記第２試薬層の間に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む中間試薬層と、
を含み、
前記中間試薬層は前記第１試薬層および前記第２試薬層のそれぞれと、０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される、第一の膜および第二の膜で隔離され、
前記第２試薬層は第１プライマーおよび第２プライマーを含み、
前記各層および前記各膜が、前記第１試薬層上に、前記第１試薬層からみて、前記第一の膜、前記中間試薬層、前記第二の膜、前記第２試薬層の順の積層状態で凍結保存された多層化試薬プレミックスであることを特徴とする、核酸増幅反応用キット。 - 中間試薬層はさらに核酸基質および反応緩衝剤を含む、請求項１に記載の核酸増幅反応用キット。
- 前記第１プライマーおよび第２プライマーは担体に固定化されている、請求項１または２に記載の核酸増幅反応用キット。
- 前記０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質は、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、糖鎖化合物、ポリアミド鎖化合物、または自己組織化能を有する水溶性複素環式化合物である、請求項１～３のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用キット。
- 請求項１～４のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用キットを温度制御装置に配置する工程と、核酸含有試料を反応容器内に添加する工程とを含む、核酸含有試料中の核酸の増幅方法。
- 核酸増幅反応容器に核酸ポリメラーゼを含む液体を添加して第１試薬層を形成する工程、第１試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１一本鎖環状ＤＮＡおよび第２一本鎖環状ＤＮＡを含む液体を添加して中間試薬層を形成する工程、
０℃未満の温度下で、中間試薬層上に０℃未満では固体であるが０～３５℃の間で水溶液に溶解する物質で構成される膜を積層する工程、ならびに
０℃未満の温度下で、当該膜上に第１プライマーおよび第２プライマーを含む液体を添加して第２試薬層を形成する工程、を含む、反応容器内に多層化試薬プレミックスを収容する、ＳＡＴＩＣ反応用キットの製造方法。
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|---|---|---|---|---|
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| JP2007300899A (ja) | 2006-05-15 | 2007-11-22 | National Institute Of Advanced Industrial & Technology | 新規ｄｎａ複製因子 |
| JP2011045279A (ja) | 2009-08-26 | 2011-03-10 | Olympus Corp | 核酸増幅用の試薬入り反応容器 |
-
2020
- 2020-06-12 JP JP2020102479A patent/JP7565572B2/ja active Active
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2021
- 2021-06-10 WO PCT/JP2021/022008 patent/WO2021251445A1/ja not_active Ceased
Patent Citations (3)
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Also Published As
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