JP7599684B2

JP7599684B2 - 皮膚癌又はその前癌病変治療用医薬用組成物

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Publication number: JP7599684B2
Application number: JP2020146700A
Authority: JP
Inventors: 新樹戸倉; 敦子船越
Original assignee: Hamamatsu University School of Medicine NUC
Current assignee: Hamamatsu University School of Medicine NUC
Priority date: 2020-09-01
Filing date: 2020-09-01
Publication date: 2024-12-16
Anticipated expiration: 2040-09-01
Also published as: JP2022041479A

Description

本発明は、皮膚癌又はその前癌病変の治療に用いられる医薬用組成物、及び皮膚癌又はその前癌病変の治療薬の候補化合物のスクリーニング方法に関する。

皮膚癌は、悪性細胞が生じる細胞によって、主に、有棘細胞癌（皮膚の扁平上皮癌）、基底細胞癌、悪性黒色腫（メラノーマ）に分類される。特に、メラノーマは、皮膚腫瘍の中でも悪性度が高く、５年生存率が低い腫瘍である。メラノーマの悪性度が高い原因の一つとして、高率に他臓器へ転移することが挙げられる。メラノーマは、病型により、末端黒子型、表在拡大型、結節型、及び悪性黒子型に分類される。日本では、末端黒子型が全体の約４０％を占める。一方、米国では、全体の約６０％が表在拡大型である。発癌には、ＢＲＡＦ等の遺伝子異常が関与しており、ＢＲＡＦ遺伝子変異が認められる患者が、日本人では全体の３０％未満であるが、白人では全体の４０～６０％である。

メラノーマの治療は、病変部を切除する外科療法が基本であるが、他臓器への転移が認められた場合は、薬物療法又はそれに加えて放射線療法が必要となる。メラノーマは、従来の抗がん剤に抵抗性を示すことが多かったが、２０１４年に、化学療法に加えて、ニボルマブ等の免疫チェックポイント阻害薬が上市され、次いでダブラフェニブ、トラメチニブ等の分子標的薬の新薬が実用化された。しかし、免疫チェックポイント阻害薬は、免疫関連副作用（immune-related adverse effect：irAE）と総括される自己免疫疾患を発症することがある。また、実用化された分子標的薬は、ＢＲＡＦ遺伝子変異を有する場合に適用が限られるため、ＢＲＡＦ遺伝子が変異していないメラノーマの治療では使用できない。そこで、これらの薬剤とは異なるメカニズムで効果を発揮し、副作用の少ない新規治療薬の開発が望まれている。

コレシストキニン（ＣＣＫ）はペプチドホルモンであり、その特異的受容体としては、ＣＣＫＡ受容体とＣＣＫＢ受容体の２種類がある。ＣＣＫ受容体は、主に消化管及び中枢神経系の細胞表面に存在しており、ＣＣＫは、胃液や胆汁、膵液の分泌を調節する作用を有する。このため、ＣＣＫ受容体拮抗物質（ＣＣＫ受容体アンタゴニスト）は、胃腸障害の治療薬の有効成分となり得る（特許文献１）。実際に、ＣＣＫＡ及びＣＣＫＢの両受容体に対する非選択的ＣＣＫ受容体拮抗物質であるプログルミド（CAS No.:6620-60-6）の経口投与用製剤は、胃炎及び胃潰瘍を治療するために用いられていた。プログルミドは、経口投与以外にも、静脈内投与、腹腔内投与によっても、ＣＣＫ受容体拮抗作用を発揮することが、動物実験により証明されている（非特許文献１）。

ＣＣＫは膵臓腺房に対し栄養作用を有しており、ＣＣＫＢ受容体のリガンドであるペプチドホルモンのガストリンは、消化上皮に対し栄養作用を有している。これらの作用を利用して、プログルミドはこれらの消化器系腫瘍に対して抗腫瘍効果を奏する。実際に、マウスモデルを用いた研究により、プログルミドを全身投与することによって、膵癌及び結腸癌の成長が抑制されることが報告されている（特許文献２）。

特表２００９－５３９９２９号公報特公平６－６７８３２号公報

Makovec，et al.，Arzneimittel Forschung Drug research, 1987, vol.37, p.1265-1268.

本発明は、メラノーマをはじめとする皮膚癌又はその前癌病変の治療に用いられる新規な医薬用組成物を提供することを目的とする。

本発明者らは、従来の薬物とは異なるメカニズムをもつ新規薬剤を開発するために、メラノーマ細胞の増殖及び生存維持に関与する因子を探索した結果、ＣＣＫ受容体拮抗物質がメラノーマ細胞の増殖抑制作用やアポトーシス誘導作用を有することを見出し、本発明を完成させた。

すなわち、本発明は、以下を提供するものである。
［１］コレシストキニン受容体拮抗物質を有効成分とし、
前記コレシストキニン受容体拮抗物質が、ロルグルミド、プログルミド、ロキシグルミド、デキシロキシグルミド、及びＫＳＧ－５０４からなる群より選択される１種以上であり、
皮膚癌又はその前癌病変の治療に用いられる、医薬用組成物。
［２］メラノーマ、有棘細胞癌、日光角化症、又は基底細胞癌の治療に用いられる、前記［１］の医薬用組成物。
［３］皮膚癌又はその前癌病変の治療薬の候補化合物をスクリーニングする方法であって、
低分子化合物ライブラリー、核酸ライブラリー、又はペプチドライブラリーに対して、コレシストキニンＡ受容体に対する結合試験を行い、コレシストキニンＡ受容体との解離定数（ＫＤ）がコレシストキニンよりも小さい物質を、前記候補化合物として選抜する、スクリーニング方法。

本発明に係る医薬用組成物は、コレシストキニン受容体拮抗物質を有効成分としており、従来のメラノーマ等の皮膚癌又はその前癌病変に対する治療薬とは作用機序が異なる新たな治療薬である。このため、本発明に係る医薬用組成物は、従来の治療薬に耐性のメラノーマ等に対する治療薬としても期待される。
また、本発明に係るスクリーニング方法により、当該医薬用組成物の有効成分の候補化合物を、効率よくスクリーニングすることができる。

参考例１において、メラノーマ患者から採取された病変部の組織切片に対して、抗ＣＣＫＡ受容体抗体を用いて免疫染色を行って得られた染色像である。参考例１において、マウスメラノーマ由来Ｂ１６細胞及びヒトメラノーマ由来Ａ３７５細胞を、抗ＣＣＫＡ受容体抗体又は抗ＣＣＫＢ受容体抗体と蛍光標識した二次抗体とを用いて染色した後、フローサイトメーターを用いて分析した結果を示した図である。参考例１において、マウスメラノーマ由来Ｂ１６細胞及びヒトメラノーマ由来Ａ３７５細胞から抽出したＲＮＡに対してＲＴ－ＰＣＲを行い、ＣＣＫのｍＲＮＡのＰＣＲ増幅産物の電気泳動像である。参考例１において、ヒト扁平上皮癌由来のＨＳＣ－１細胞及びＡ４３１細胞を、抗ＣＣＫＡ受容体抗体又は抗ＣＣＫＢ受容体抗体と蛍光標識した二次抗体とを用いて染色した後、フローサイトメーターを用いて分析した結果を示した図である。実施例１において、ロルグルミドで処理したＢ１６細胞（Ａ）及びＡ３７５細胞（Ｂ）に対してＷＳＴ－８試薬を用いたアッセイを行い、波長４５０ｎｍの吸光度の測定結果を示した図である。実施例１において、ロルグルミド、プログルミド、又はロキシグルミドで処理したＢ１６細胞に対してＷＳＴ－８試薬を用いたアッセイを行い、波長４５０ｎｍの吸光度の測定結果を示した図である。実施例１において、ロルグルミドで処理したＢ１６細胞のＣＦＳＥの平均蛍光強度の測定結果を示した図である。実施例２において、ロルグルミドで処理して４８時間培養したＢ１６細胞（Ａ）及びＡ３７５細胞（Ｂ）の、細胞全体に対する早期アポトーシス細胞と後期アポトーシス細胞の合計細胞数の割合（％）の測定結果を示した図である。実施例３において、ロルグルミドで処理して４８時間培養したＢ１６細胞の、カスパーゼ３／７活性の相対値（％）の測定結果を示した図である。実施例３において、カスパーゼ３特異的阻害剤であるＺ－ＤＥＶＤ－ＦＭＫで前処理した後にロルグルミドで処理して４８時間培養したＢ１６細胞の、細胞全体に対する早期アポトーシス細胞と後期アポトーシス細胞の合計細胞数の割合（％）の測定結果を示した図である。実施例４において、細胞増殖を停止させた後にロルグルミドで処理したＢ１６細胞の単層に傷をつけた後、当該傷を含む領域を、顕微鏡下で経時的に観察して得た透過光画像である。実施例４において、細胞増殖を停止させた後にロルグルミドで処理したＢ１６細胞の単層に傷をつけた後に２４時間培養した後の、当該傷の細胞間隙の相対面積（％）の測定結果を示した図である。実施例５において、Ｂ１６細胞を皮下移植したマウスに、ロルグルミドを経時的に腫瘍内投与し、腫瘍体積（ｍｍ^３）の経時的変化を測定した結果を示した図である。実施例５において、Ｂ１６細胞を皮下移植したマウスに、ロルグルミドを経時的に腫瘍内投与し、ロルグルミド投与開始から１４日目における腫瘍重量（ｍｇ）の測定結果を示した図である。実施例５において、Ｂ１６細胞を皮下移植したマウスに、ロルグルミドを経時的に外用投与（皮膚に塗布）し、腫瘍体積（ｍｍ^３）の経時的変化を測定した結果を示した図である。実施例５において、Ｂ１６細胞を皮下移植したマウスに、ロルグルミドを経時的に外用投与し、ロルグルミド投与開始から１４日目における腫瘍重量（ｍｇ）の測定結果を示した図である。

＜医薬用組成物＞
本発明に係る医薬用組成物は、ＣＣＫ受容体拮抗物質を有効成分とし、皮膚癌又はその前癌病変の治療に用いられる。本発明に係る医薬用組成物が治療に用いられる皮膚癌としては、有棘細胞癌、基底細胞癌、メラノーマのいずれであってもよい。また、本発明に係る医薬用組成物が治療に用いられる皮膚癌の前癌病変としては、日光角化症等が挙げられる。本発明に係る医薬用組成物は、メラノーマ、有棘細胞癌、日光角化症、又は基底細胞癌の治療に用いられるものであることが好ましく、メラノーマの治療に用いられるものが特に好ましい。以降において、「皮膚癌又はその前癌病変」を、「皮膚癌等」と称することがある。

後記実施例に示すように、ＣＣＫ受容体拮抗物質は、メラノーマ細胞をはじめとする皮膚癌細胞又はその前癌病変細胞に対する増殖抑制作用、アポトーシス誘導作用、及び走化性（遊走能）抑制作用を有する。ＣＣＫ受容体拮抗物質は、従来のメラノーマ等の治療薬とは異なり、ＣＣＫ受容体を標的とする新規な作用機序に基づく抗腫瘍作用を奏する。このため、本発明に係る医薬用組成物は、ＢＲＡＦ遺伝子変異の有無にかかわらず、メラノーマ細胞をはじめとする皮膚癌細胞等に対する抗腫瘍効果を奏する。

本発明において有効成分とするＣＣＫ受容体拮抗物質は、ＣＣＫ受容体に対する拮抗作用を有する物質であれば、特に限定されるものではなく、競合的拮抗作用を有する物質であってもよく、非競合的拮抗作用を有する物質であってもよい。当該物質としては、低分子化合物であってもよく、核酸アプタマーであってもよく、ペプチドアプタマーであってもよく、抗体等のタンパク質であってもよい。

本発明において有効成分とするＣＣＫ受容体拮抗物質は、ＣＣＫＡ受容体に対する選択的拮抗物質であってもよく、ＣＣＫＢ受容体に対する選択的拮抗物質であってもよく、ＣＣＫＡ受容体とＣＣＫＢ受容体の両方に対して非選択的に作用する拮抗物質であってもよい。本発明において有効成分とするＣＣＫ受容体拮抗物質としては、ＣＣＫＡ受容体に対する拮抗作用を有する物質が好ましい。

本発明において有効成分とするＣＣＫ受容体拮抗物質としては、ＣＣＫ受容体拮抗作用を有する公知の物質の中から適宜選択して用いることができる。ＣＣＫ受容体拮抗物質のうち、低分子化合物としては、例えば、プログルミド、ロルグルミド（CAS No.:97964-56-2）、ロキシグルミド（CAS No.:107097-80-3）、デキシロキシグルミド（119817-90-2）、スピログルミド（CAS No.:137795-35-8）、イトリグルミド（CAS No.:201605-51-8）、ＫＳＧ－５０４（CAS No.:137005-17-5）、ＹＭ０２２（CAS No.:145084-28-2）、及びこれらの誘導体等が挙げられる。なかでも、プログルミドは、胃炎及び胃潰瘍を治療するための経口投与薬として広く使用されてきたものであり、安全に摂取可能なため好ましい。

本発明に係る医薬用組成物は、ＣＣＫ受容体拮抗物質を、その薬理学的に許容される塩として含有していてもよい。薬理学的に許容される塩としては、無機酸塩であってもよく、アミンのような塩基性部位を有する有機酸塩であってもよく、アルカリ塩であってもよく、有機塩であってもよい。

本発明に係る医薬用組成物の有効成分としては、遊離のＣＣＫ受容体拮抗物質の溶媒和物、又はＣＣＫ受容体拮抗物質の薬理学的に許容される塩の溶媒和物であってもよい。当該溶媒和物を形成する溶媒としては、水、エタノール等が挙げられる。

本発明に係る医薬用組成物に含有させるＣＣＫ受容体拮抗物質の量は、皮膚癌等に対する治療上有効な量、すなわち、皮膚癌等に対する治療効果が得られるために十分な量であれば特に限定されるものではなく、皮膚癌の種類、投与経路、投与の形態（剤型）、１日当たりの投与回数、投与間隔、投与対象の生物種、性別、年齢、体重等を考慮して適宜決定される。

本発明に係る医薬用組成物が、プログルミド等の現在又は過去に既に医薬品として承認を受けている薬剤を有効成分とする場合、投与経路、剤型、１回の投与における有効成分の投与量、投与間隔等の用法用量は、これらの薬剤が既に承認を得ている他の疾患に対する治療薬に準ずることができ、これらを改良してもよい。

本発明に係る医薬用組成物の投与経路は、特に限定されるものではなく、経口投与、静脈投与、経皮投与、経腸投与、経鼻投与等、各種の投与経路の中から適宜選択することができる。本発明に係る医薬用組成物は、目的の投与経路等を考慮して、通常の方法によって、散剤、顆粒剤、カプセル剤、錠剤、チュアブル剤、徐放剤などの経口用固形剤、溶液剤、シロップ剤などの経口用液剤；貼付剤、軟膏剤、ゲル剤、クリーム剤、スプレー剤、ローション剤、リニメント剤などの外用剤；注射剤、坐剤などに製剤化することができる。

本発明に係る医薬用組成物に含まれるその他の成分としては、例えば、賦形剤、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、流動化剤、溶剤、溶解補助剤、緩衝剤、懸濁化剤、乳化剤、等張化剤、安定化剤、防腐剤、抗酸化剤、矯味矯臭剤、着色剤等の薬理学的に許容される添加剤が挙げられる。また、当該医薬用組成物は、ＣＣＫ受容体拮抗物質以外の他の有効成分を含有していてもよい。

賦形剤としては、乳糖、ブドウ糖、Ｄ－マンニトールなどの糖類、デンプン、結晶セルロースなどのセルロース類、エリスリトール、ソルビトール、キシリトールなどの糖アルコール類、リン酸二カルシウム、炭酸カルシウム、カオリンなどが挙げられる。結合剤としては、α化デンプン、ゼラチン、アラビアゴム、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、結晶セルロース、Ｄ－マンニトール、トレハロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコールなどが挙げられる。滑沢剤としては、ステアリン酸、ステアリン酸カルシウム、タルク、ショ糖脂肪酸エステル、ポリエチレングリコールなどが挙げられる。崩壊剤としては、クロスポビドン（架橋ポリビニルピロリドン）、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、デンプン、アルギン酸、アルギン酸ナトリウムなどが挙げられる。流動化剤としては、ケイ酸、無水ケイ酸、ケイ酸アルミニウム、ケイ酸カルシウム、メタケイ酸アルミン酸マグネシウム化合物、酸化アルミニウム、水酸化アルミニウム、酸化マグネシウム、水酸化マグネシウムなどが挙げられる。溶剤としては、精製水、生理的食塩水などが挙げられる。溶解補助剤としては、デキストラン、ポリビニルピロリドン、安息香酸ナトリウム、エチレンジアミン、サリチル酸アミド、ニコチン酸アミド、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油誘導体などが挙げられる。緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム水和物、酢酸ナトリウム水和物、炭酸水素ナトリウム、トロメタモール、ホウ酸、ホウ砂、リン酸水素ナトリウム水和物、リン酸二水素ナトリウムなどが挙げられる。懸濁化剤又は乳化剤としては、ラウリル硫酸ナトリウム、アラビアゴム、ゼラチン、レシチン、モノステアリン酸グリセリン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシメチルセルロースナトリウムなどのセルロース類、ポリソルベート類、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油などが挙げられる。等張化剤としては、乳糖、ブドウ糖、Ｄ－マンニトールなどの糖類、塩化ナトリウム、塩化カリウム、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、尿素などが挙げられる。安定化剤としては、ポリエチレングリコール、デキストラン硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウムなどが挙げられる。防腐剤としては、パラオキシ安息香酸エステル類、クロロブタノール、ベンジルアルコール、フェネチルアルコール、クロロクレゾール、デヒドロ酢酸、ソルビン酸などが挙げられる。抗酸化剤としては、亜硫酸塩、アスコルビン酸などが挙げられる。矯味矯臭剤としては、医薬及び食品分野において通常に使用される甘味料、香料などが挙げられる。着色剤としては、医薬及び食品分野において通常に使用される着色料が挙げられる。

本発明に係る医薬用組成物は、皮膚癌等を発症している動物又は発症している疑いのある動物に対して投与される。当該医薬用組成物は、哺乳動物に投与されるものであることが好ましく、ヒトや、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ハムスター、サル、ヒツジ、ウマ、ウシ、ブタ、ロバ、イヌ、ネコ等の家畜や実験動物に投与されるものであることがより好ましく、ヒトに投与されるものであることがさらに好ましい。

＜皮膚癌等の治療薬の候補化合物をスクリーニングする方法＞
メラノーマ細胞を始めとする皮膚癌細胞やその前癌病変細胞の細胞表面にもＣＣＫ受容体が発現しており、当該受容体の下流のシグナリングは、細胞増殖、アポトーシス、走化性等に関与している。このため、ＣＣＫ受容体拮抗物質は、皮膚癌細胞等に対して増殖抑制作用、アポトーシス誘導作用、及び走化性抑制作用を有しており、抗腫瘍効果を奏する。そこで、ＣＣＫ受容体に対する拮抗作用を有する物質を、皮膚癌等の治療薬の候補化合物として選抜することができる。

ＣＣＫ受容体拮抗物質は、例えば、各種の低分子化合物ライブラリー、核酸ライブラリー、ペプチドライブラリー等に対して、ＣＣＫ受容体に対する結合試験を用いたスクリーニングを行うことにより選抜することができる。選抜された物質のうち、ＣＣＫよりもＣＣＫ受容体に対する結合親和性が高い、すなわち、解離定数（Ｋ_Ｄ）が小さい物質は、メラノーマ細胞をはじめとする皮膚癌細胞等におけるＣＣＫ受容体の下流の細胞シグナリングをより効果的に競合阻害でき、皮膚癌等の治療薬の候補化合物として有望である。

ＣＣＫ受容体拮抗物質は、例えば、ＣＣＫ受容体を発現しており、ＣＣＫ刺激によって特定の物質が分泌される細胞を用いてスクリーニングすることもできる。例えば、胃体部壁細胞のように、ＣＣＫ受容体が発現しており、ＣＣＫ刺激によって胃酸分泌がなされる細胞を用いることができる。当該細胞をＣＣＫと候補化合物を含有する培養培地で培養した場合の胃酸分泌量が、ＣＣＫのみを含有する培養培地で培養した場合の胃酸分泌量よりも明らかに少ない場合に、当該候補化合物をＣＣＫ受容体拮抗物質として選抜される。

次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。

［参考例１］
メラノーマ細胞におけるＣＣＫＡ受容体の発現を調べた。

（１）メラノーマ病変部組織におけるＣＣＫＡ受容体の発現
治療目的で採取したメラノーマ患者の病変部組織におけるＣＣＫＡ受容体の発現を、免疫組織学的手法により調べた。具体的には、表在拡大型メラノーマ患者３名と末端黒子型メラノーマ患者３名からそれぞれ採取されたメラノーマ病変部の組織切片に対して、ウサギ抗ＣＣＫＡ受容体抗体（Invitrogen社製）を用いて免疫染色を行った。染色像を図１に示す。図中、矢印で示した部位は、抗ＣＣＫＡ受容体抗体で染色された部位である。図１に示すように、表在拡大型及び末端黒子型のメラノーマ病変部において、ＣＣＫＡ受容体の発現が認められた。

（２）メラノーマ由来培養細胞におけるＣＣＫＡ受容体及びＣＣＫＢ受容体の発現
マウスメラノーマ由来Ｂ１６細胞及びヒトメラノーマ由来Ａ３７５細胞のＣＣＫ受容体発現を、フローサイトメトリー法により調べた。具体的には、各細胞を、ウサギ抗ＣＣＫＡ受容体抗体（Bioss社製）で１時間インキュベートした後、蛍光標識した二次抗体（抗ウサギＩｇＧ抗体、Biolegend社製）と３０分間インキュベートして染色した。また、ウサギ抗ＣＣＫＡ受容体抗体に代えて、ウサギ抗ＣＣＫＢ受容体抗体（Alomone labs社製）を用いた以外は同様にして、Ｂ１６細胞及びＡ３７５細胞を染色した。染色後の細胞を、フローサイトメーターを用いて分析した。対照として、蛍光標識した二次抗体のみで染色した細胞についても同様にフローサイトメーターを用いて分析した。分析結果を図２に示す。図２に示すように、Ｂ１６細胞とＡ３７５細胞の両方とも、ＣＣＫＡ受容体の発現が確認された。ＣＣＫＢ受容体については、Ａ３７５細胞において、抗ＣＣＫＢ受容体抗体で染色した細胞のヒストグラムが、二次抗体のみで染色した細胞のヒストグラムよりも右にシフトしていたことから、Ａ３７５細胞ではＣＣＫＢ受容体が発現していることが確認された。

細胞からＲＮＡを抽出し、ＲＴ－ＰＣＲ法により、ＣＣＫの発現を調べた。対照として、β－アクチンの発現も調べた。ＲＴ－ＰＣＲの結果、得られた増幅産物のアガロースゲル電気泳動像を図３に示す。図３に示すように、Ｂ１６細胞とＡ３７５細胞の両方とも、ＣＣＫのｍＲＮＡのＲＴ－ＰＣＲ増幅産物が確認され、両細胞においてＣＣＫが発現していることが確認された。これらの結果から、メラノーマ細胞は、オートクリン／パラクリン機構によってＣＣＫによる制御を受けていることが示唆された。

（３）非メラノーマ皮膚癌由来培養細胞におけるＣＣＫＡ受容体及びＣＣＫＢ受容体の発現
ヒト扁平上皮癌由来のＨＳＣ－１細胞及びＡ４３１細胞のＣＣＫ受容体発現を、フローサイトメトリー法により同様にして調べた。分析結果を図４に示す。図４に示すように、ＨＳＣ－１細胞とＡ４３１細胞の両方とも、ＣＣＫＡ受容体とＣＣＫＢ受容体の両方の発現が確認された。

［実施例１］
ＣＣＫ受容体拮抗物質のメラノーマ細胞に対する増殖抑制作用を調べた。ＣＣＫ受容体拮抗物質として、ＣＣＫＡ受容体選択的拮抗物質であるロルグルミド、並びに、非選択的ＣＣＫ受容体拮抗物質であるプログルミド及びロキシグルミドを用いた。細胞の増殖能は、ＷＳＴ－８試薬を用いたＷＳＴアッセイ、又は、ＣＦＳＥ（Carboxyfluorescein Succinimidyl Ester）を用いたアッセイで測定した。

（１）Ｂ１６細胞及びＡ３７５細胞の増殖に対するロルグルミドの作用
Ｂ１６細胞及びＡ３７５細胞を、９６ウェルプレートに播種して一晩培養した後、ロルグルミドを添加して、４８時間培養した。その後、ＷＳＴ－８試薬（Dojindo社製）を各ウェルに１０μＬずつ添加して、更に３時間培養した後、プレートリーダーを用いて波長４５０ｎｍの吸光度を測定した。ＷＳＴ－８は細胞内の脱水素酵素によって還元され、黄色を呈するホルマザンが生成される。このため、ＷＳＴアッセイにおいて、吸光度と生細胞数は比例関係にある。

各ウェルの波長４５０ｎｍの吸光度の測定結果を図５に示す（＊＊：ｐ＜０．０１ｖｓ. 無処置対照群）。図に示すように、Ｂ１６細胞とＡ３７５細胞の両方において、ロルグルミドは濃度依存的に生細胞数を減少させた。

（２）Ｂ１６細胞の増殖に対するロルグルミド、プログルミド及びロキシグルミドの作用
Ｂ１６細胞を、９６ウェルプレートに播種して一晩培養した後、ロルグルミド、プログルミド、又はロキシグルミドを添加して、４８時間培養した後、前記（１）と同様にしてＷＳＴ－８試薬を用いたアッセイを行った。

各ウェルの波長４５０ｎｍの吸光度の測定結果を図６に示す（＊：ｐ＜０．０１ｖｓ. 無処置対照群、＊＊：ｐ＜０．０１）。図に示すように、プログルミド及びロキシグルミドも、ロルグルミドと同様に濃度依存的に生細胞数を減少させたが、その細胞数減少効果は、ロルグルミドが最も高かった。

（３）細胞増殖アッセイ
標識したＢ１６細胞にロルグルミドを添加して４８時間培養した。次いで、フローサイトメーターを用いて、培養後の細胞のＣＦＳＥの輝度（蛍光強度）を測定した。ＣＦＳＥの輝度は、細胞分裂のたびに半減する。ＣＦＳＥ標識は、CFSE Cell Division Assay Kit（Cayman社製）を用いて行った。

ＣＦＳＥの平均蛍光強度の測定結果を図７に示す。ロルグルミド添加群では、無処置対照群と比較して、細胞のＣＦＳＥの平均蛍光強度が有意に高く、すなわち細胞分裂回数が少ないことが明らかとなった（＊＊：ｐ＜０．０１ｖｓ. 無処置対照群）。これらの結果から、ロルグルミドは、メラノーマ細胞の増殖を抑制することが明らかとなった。

［実施例２］
ＣＣＫ受容体拮抗物質のメラノーマ細胞に対するアポトーシス誘導作用を調べた。ＣＣＫ受容体拮抗物質としてロルグルミドを用いた。アポトーシス誘導作用は、蛍光標識ＡｎｎｅｘｉｎＶを用いたアポトーシス検出アッセイを用いて調べた。ＡｎｎｅｘｉｎＶは、細胞膜構成脂質であるホスファチジルセリンと結合する。ホスファチジルセリンは、生細胞では細胞膜内側に存在しており、アポトーシスが誘導されると細胞膜表面に露出するため、蛍光標識ＡｎｎｅｘｉｎＶにより、アポトーシスが誘導された細胞は蛍光を発する。

Ｂ１６細胞又はＡ３７５細胞にロルグルミドを添加して４８時間培養した後、蛍光物質ＰＥ（R-Phycoerythrin）で標識されたＡｎｎｅｘｉｎＶと、死細胞核染色剤７ＡＡＤ（7-Amino-Actinomycin D）で染色した。染色後の細胞をフローサイトメーターで分析した。アポトーシスの初期段階の細胞は、７ＡＡＤでは染色されないが、後期アポトーシス細胞は７ＡＡＤで染色される。すなわち、早期アポトーシス細胞は７ＡＡＤ－/ＡｎｎｅｘｉｎＶ＋、後期アポトーシス細胞は７ＡＡＤ＋/ＡｎｎｅｘｉｎＶ＋、生細胞は７ＡＡＤ－/ＡｎｎｅｘｉｎＶ－の分画に、それぞれ出現する。

フローサイトメーターの分析結果に基づき、細胞全体に対する、早期アポトーシス細胞と後期アポトーシス細胞の合計細胞数の割合（％）の測定結果を図８に示す。図に示す通り、ロルグルミドを添加して培養したＢ１６細胞とＡ３７５細胞では、早期及び後期アポトーシス細胞の割合が有意に増加した（＊＊：ｐ＜０．０１ｖｓ. 無処置対照群）。これらの結果から、ロルグルミドは、メラノーマ細胞にアポトーシスを誘導することが明らかとなった。

［実施例３］
細胞にアポトーシス誘導シグナルが伝わると、カスパーゼと呼ばれるシステインプロテアーゼ群から成る複雑なカスケードが開始され、アポトーシスが実行される。カスパーゼは、誘導型、実行型、及び炎症性の３種類に分類されるが、実行型カスパーゼに分類されるカスパーゼ３、６及び７は、アポトーシス実行のシグナル伝達経路において特に重要な役割を果たす。そこで、ＣＣＫ受容体拮抗物質により誘導されたアポトーシスにおけるカスパーゼ３／７活性を調べた。カスパーゼ３／７活性は、Caspase-Glo 3/7 Assay System（Promega社製)を用いて調べた。

Ｂ１６細胞を９６ウェルプレートに播種し、ロルグルミド（２００μＭ）を添加して、４８時間培養した。試薬の提供元のマニュアルに従い、培養後の細胞に基質溶液を加えて更に２時間培養した後、プレートリーダーを用いて相対発光量（％）をカスパーゼ３／７活性として測定した。測定結果を図９に示す。図に示すように、ロルグルミドを添加して培養した群では、カスパーゼ３／７活性が、無処置対照群の１．７倍程度に亢進していた（＊＊：ｐ＜０．０１ｖｓ. 無処置対照群）。

そこで、カスパーゼ３の特異的阻害剤であるＺ－ＤＥＶＤ－ＦＭＫでＢ１６細胞を２時間前処置した後、ロルグルミドを添加して４８時間培養し、アポトーシス陽性細胞をフローサイトメーターで分析した。分析結果を図１０に示す。図に示す通り、Ｚ－ＤＥＶＤ－ＦＭＫで前処置することにより、アポトーシスが有意に抑制された。これらの結果から、ロルグルミドによって誘導されるアポトーシスのシグナル伝達には、カスパーゼ３が関与することが示唆された。

［実施例４］
ＣＣＫ受容体拮抗物質のメラノーマ細胞に対する走化性抑制作用を調べた。ＣＣＫ受容体拮抗物質としてロルグルミドを用いた。

細胞の増殖を停止させるために、Ｂ１６細胞をマイトマイシンＣで１．５時間前処置した後、９６ウェルプレートに単層に播種して一晩培養した。培養後のＢ１６メラノーマ単層にイエローチップで傷をつけた後、ロルグルミドを添加して２４時間培養した。当該傷を含む領域を、顕微鏡下で経時的に観察した。観察結果を図１１に示す。図に示すように、ロルグルミド無処置の対照群では、傷をつけた領域へ細胞が遊走し、経時的に間隙の面積が縮小した。一方、ロルグルミドを添加した群では、細胞遊走が抑制され、間隙の面積はほとんど縮小しなかった。傷をつけたのち２４時間培養後における、傷により生じた間隙の面積を、画像解析ソフトウェアＩｍａｇｅＪを用いて算出した。傷をつけた後、２４時間の培養後の細胞間隙の相対面積（％：［傷をつけてから２４時間培養した時点の間隙の面積］／［傷をつけた時点の間隙の面積］×１００）の測定結果を図１２に示す。図に示すように、ロルグルミドの濃度が高い程、培養後の間隙の相対面積は広く、Ｂ１６細胞の遊走能が低かった。これらの結果から、ＣＣＫ受容体拮抗物質は、メラノーマ細胞の遊走を抑制することが明らかとなった。細胞の遊走能は、局所での組織浸潤や遠隔転移に深く関与することから、ＣＣＫ受容体拮抗物質は、アポトーシス誘導作用により抗腫瘍効果を発揮するのみならず、細胞の遊走を抑制することにより腫瘍の成長や転移を抑制する可能性が示唆された。

［実施例５］
メラノーマ皮下移植モデルマウスにおける、ロルグルミドの抗腫瘍効果を調べた。メラノーマ皮下移植モデルマウスは、Ｃ５７ＢＬ／６マウスの腹部皮下に、Ｂ１６細胞（１０^５個）を移植して作製した。

（１）ロルグルミドの腫瘍内投与の効果
皮下移植したＢ１６細胞による腫瘍の体積が１０～３０ｍｍ^３に達したところで、ロルグルミド（１００μｇ、４ｍｇ／ｋｇ）を腫瘍内に投与した。対照として、ロルグルミドに代えて、同量の生理食塩水を腫瘍内に投与した。その後、３～４日おきに同様のロルグルミド投与を繰り返した。各マウスの腫瘍体積（［腫瘍体積（ｍｍ^３）］＝［長径（ｍｍ）］×［短径（ｍｍ）］^２×１/２）を経時的に計測した結果を図１３に示す。また、ロルグルミド投与開始から１４日目に、腫瘍塊を採取し、腫瘍重量（ｍｇ）を測定した。腫瘍重量の測定結果を図１４に示す。

図１３に示すように、ロルグルミド投与群では、生理食塩水投与群と比較して、腫瘍体積の増加が有意に抑制された（＊＊：ｐ＜０．０１ｖｓ. 生理食塩水投与群）。また、図１４に示すように、ロルグルミドを投与することにより、腫瘍重量も有意に減少した（＊：ｐ＜０．０５ｖｓ. 生理食塩水投与群）。

（２）ロルグルミドの外用療法の効果
皮下移植したＢ１６細胞による腫瘍が肉眼で観察できるようになったメラノーマ皮下移植モデルマウスに対して、親水軟膏に溶解したロルグルミド（４００μｇ）を、２、５、９及び１２日目を除く毎日、１日１度腫瘍に塗布した。対照群には、ロルグルミド含有親水軟膏に代えて、同量の親水軟膏を塗布した。また、いずれのマウスも、皮膚透過性を高めるために、ロルグルミド含有親水軟膏塗布直前に、腫瘍組織にアセトン（３０μＬ）を塗布した。各マウスの腫瘍体積及びロルグルミド投与開始から１４日目の腫瘍重量を、ロルグルミド腫瘍内投与のマウスと同様にして測定した。

各マウスの腫瘍体積（ｍｍ^３）を経時的に計測した結果を図１５に、ロルグルミド投与開始から１４日目の腫瘍重量（ｍｇ）の測定結果を図１６に、それぞれ示す。図１５に示す通り、ロルグルミドを外用することにより、腫瘍体積の増加が有意に抑制された。また、図１６に示す通り、ロルグルミド外用開始から１４日後の腫瘍重量は、ロルグルミド外用群の方が対照群と比較して、有意に低かった。これらの結果から、マウスの腫瘍モデルにおいて、ＣＣＫ受容体拮抗物質を腫瘍内投与又は外用することにより、腫瘍の成長を抑制できることが明らかとなった。

Claims

コレシストキニン受容体拮抗物質を有効成分とし、
前記コレシストキニン受容体拮抗物質が、ロルグルミド、プログルミド、ロキシグルミド、デキシロキシグルミド、及びＫＳＧ－５０４からなる群より選択される１種以上であり、
皮膚癌又はその前癌病変の治療に用いられる、医薬用組成物。
メラノーマ、有棘細胞癌、日光角化症、又は基底細胞癌の治療に用いられる、請求項１に記載の医薬用組成物。
皮膚癌又はその前癌病変の治療薬の候補化合物をスクリーニングする方法であって、
低分子化合物ライブラリー、核酸ライブラリー、又はペプチドライブラリーに対して、コレシストキニンＡ受容体に対する結合試験を行い、コレシストキニンＡ受容体との解離定数（ＫＤ）がコレシストキニンよりも小さい物質を、前記候補化合物として選抜する、スクリーニング方法。