JP7624932B2 - (2S,3S,4S,5R,6S)-3,4,5-トリヒドロキシ-6-(((4aR,10aR)-7-ヒドロキシ-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロベンゾ[g]キノリン-6-イル)オキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-2-カルボン酸及びその中間体の製造方法 - Google Patents
(2S,3S,4S,5R,6S)-3,4,5-トリヒドロキシ-6-(((4aR,10aR)-7-ヒドロキシ-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロベンゾ[g]キノリン-6-イル)オキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-2-カルボン酸及びその中間体の製造方法 Download PDFInfo
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Description
を有する(2S,3S,4S,5R,6S)-3,4,5-トリヒドロキシ-6-(((4aR,10aR)-7-ヒドロキシ-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロベンゾ[g]キノリン-6-イル)オキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-2-カルボン酸を、以下の式(I)
を有する化合物(4aR,10aR)-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロベンゾ[g]キノリン-6,7-ジオールから製造するための新規方法に関する。
に従って化合物(A2)を(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテートと反応させて化合物(A3)を得ることを含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法に関する。
以下のステップ
3)反応スキーム3に従って化合物(A3)を求核試薬と接触させることにより化合物(A3)を脱保護して化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩を得ること
を含む方法に関する。
化合物の言及
化合物(I)、化合物(Id)、(A2)及び(A3)の言及は、前記化合物の遊離物質(両性イオン)、前記化合物の塩、例えば、酸付加塩又は塩基付加塩、並びに本発明の化合物及びその塩の多形及び無形質形態を含む溶液状態の化合物及び固体形態の化合物を含む。さらに、前記化合物及びそれらの塩は、非溶媒和状態及び水、エタノール等の薬学的に許容される溶媒との溶媒和状態で潜在的に存在し得る。
本発明に関連して、薬学的に許容される塩は、非毒性、すなわち生理学的に許容される塩を表すことが意図される。
本発明に関連して、「プロドラッグ」又は「プロドラッグ誘導体」という用語は、哺乳動物、好ましくはヒトなどの生体対象に投与した後、体内で薬理学的活性部位に転化される化合物を意味する。転化は、好ましくは、マウス、ラット、イヌ、ミニブタ、ウサギ、サル及び/又はヒトなどの哺乳動物内で起こる。本発明に関連して、「化合物(4aR,10aR)-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロ-ベンゾ[g]キノリン-6,7-ジオールのプロドラッグ」、又は「式(I)の化合物のプロドラッグ」、又は「化合物(I)のプロドラッグ」は、投与後、体内で化合物(4aR,10aR)-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロ-ベンゾ[g]キノリン-6,7-ジオールに転化される化合物であると理解される。前記投与は、当技術分野で公知の医薬組成物の従来の投与経路により、好ましくは経口投与であり得る。
本明細書で使用される「PKプロファイル」は、「薬物動態学的プロファイル」の略語である。本明細書に記載の薬物動態学的プロファイル及び薬物動態学的パラメーターは、ノンコンパートメントモデリングを用いて、本発明の化合物(Id)を経口投与した後、式(I)の化合物について得られた血漿中濃度-時間データに基づく。省略されたPKパラメーターは、Cmax(最高濃度);tmax(Cmax到達時間);t1/2(半減期);AUC0-24(投与時点から投与24時間後までの曲線下面積)であり、「24時間曝露」は、投与24時間後に測定された濃度である。
本発明に関連して、化合物の「治療有効量」という用語は、前記化合物の投与を含む治療的介入において所定の疾患及びその合併症の臨床症状を軽減するか、阻止するか、部分的に阻止するか、取り除くか又は遅らせるのに十分な量を意味する。これを達成するのに適した量は、「治療有効量」と定義される。それぞれの目的に有効な量は、例えば、疾患又は損傷の重症度並びに対象の体重及び全身状態に応じて異なる。
本発明に関連して、「治療」又は「処置」は、疾患の臨床症状を緩和するか、阻止するか、部分的に阻止するか、取り除くか又はその進行を遅らせる目的のための患者の管理及びケアを示すことが意図される。治療されるべき患者は、好ましくは、哺乳動物、特にヒトである。
本発明の方法により得られる化合物は、パーキンソン病及び/又はドーパミンアゴニストでの治療が治療上有益である他の症状など、神経変性又は精神神経疾患及び障害の治療に対して意図される。
単独の活性化合物として又は他の活性化合物と併せて、式(Id)の化合物を含む医薬組成物は、経口、経直腸、経鼻、経頬粘膜、舌下、経肺、経皮及び非経口的(例えば、皮下、筋肉内及び静脈内)経路などのいずれかの適切な経路による投与のために特に製剤化され得る。本発明に関連して、経口経路が好ましい投与経路である。
以下において、「賦形剤」又は「薬学的に許容される賦形剤」という用語は、限定されないが、担体、充填剤、希釈剤、付着防止剤、結合剤、コーティング、着色剤、崩壊剤、風味、流動促進剤(glidant)、滑沢剤、保存剤、吸着剤、甘味料、溶媒、賦形剤(vehicle)及び補助剤などの医薬品賦形剤を意味する。
一実施形態において、本発明の方法により得られる化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩は、1日あたり約0.0001~約5mg/kg体重の量で投与される。特に、1日量は、1日あたり0.001~約1mg/kg体重の範囲であり得る。正確な投薬量は、処置すべき対象の頻度及び投与形式、性別、年齢、体重及び全身状態、処置すべき状態の性質及び重症度、処置されるべき付随する疾患、処置の所望の効果並びに当業者に公知の他の因子に応じて異なる。
本発明は、以下の式(Id)
を有する化合物(2S,3S,4S,5R,6S)-3,4,5-トリヒドロキシ-6-(((4aR,10aR)-7-ヒドロキシ-1-プロピル-1,2,3,4,4a,5,10,10a-オクタヒドロベンゾ[g]キノリン-6-イル)オキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-2-カルボン酸及びその塩を製造する方法に関する。
以下において、本発明の実施形態が開示される。第1実施形態は、E1で示され、第2実施形態は、E2で示される。
を有する化合物(Id)を、以下の式
を有する化合物(I)から製造する方法であって、
以下のステップ
2)以下の反応スキーム
に従って化合物(A2)を(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテートと反応させて化合物(A3)を得ること
を含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法。
以下のステップ
2)以下の反応スキーム
に従って化合物(A2)を(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテートと反応させて化合物(A3)を得ること
を含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法。
を有する化合物(Id)を、以下の式
を有する化合物(I)から製造する方法であって、
以下のステップ
3)以下の反応スキーム
に従って化合物(A3)を塩基と接触させることにより化合物(3)を脱保護して化合物(Id)を得ること
を含む方法。
3)以下の反応スキーム
に従って化合物(A3)を塩基と接触させることにより化合物(A3)を脱保護して化合物(Id)を得ること
を行う、実施形態1及び3~5のいずれかに記載の方法。
1)以下の反応スキーム
に従って化合物(I)を塩化トリイソプロピルシリルと反応させて化合物(A2)を得ること
により得られたものであり、
反応を、非プロトン性溶媒中で塩基の存在下で行う、実施形態1~5及び9~11のいずれかに記載の方法。
実施形態1及び3~5のいずれかに記載のステップ2);とそれに続く
実施形態8及び10~11のいずれかに記載のステップ3)
を含み、
ステップ2)において用いられる化合物A2は、
実施形態12~17のいずれかに記載のステップ1)
により得られたものである方法。
以下の項は、本発明及びその実施形態を記載するように機能する。
を有する化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩を、以下の式
を有する化合物(I)から製造する方法であって、
以下のステップ
2)以下の反応スキーム
に従って化合物(A2)を(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテートと反応させて化合物(A3)を得ること
を含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法。
2)以下の反応スキーム
に従って化合物(A2)を(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテートと反応させて化合物(A3)を得ること
を含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法。
を有する化合物(Id)又はその薬学的に許容される塩を、以下の式
を有する化合物(I)から製造する方法であって、
以下のステップ
3)以下の反応スキーム
に従って化合物(A3)を求核試薬と接触させることにより化合物(A3)を脱保護して化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩を得ること
を含む方法。
3)以下の反応スキーム。
に従って化合物(A3)を求核試薬と接触させることにより化合物(A3)を脱保護して化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩を得ること
を含む、項1~6のいずれか一項に記載の方法。
1)以下の反応スキーム
に従って化合物(I)、又はその塩を塩化トリイソプロピルシリルと反応させて化合物(A2)を得ること
により得られたものであり、
反応を、非プロトン性溶媒中で塩基の存在下で行う、項1~6及び10~20のいずれか一項に記載の方法。
項1及び3~6のいずれか一項に記載のステップ2);とそれに続く
項11~20のいずれか一項に記載のステップ3)
を含み、
ステップ2)において用いられる化合物(A2)は、
項21~29のいずれか一項に記載のステップ1)
により得られたものである方法。
式(Id)の化合物及び中間体の製造
NMR法
QNMR(600MHz):
1)待ち時間 40秒
2)取得時間 3.76秒
3)時間領域 64k
4)サイズ 32k
5)ダミースキャン 4回
6)スキャン 8回
7)パルス 30deg
方法A:カラムマネジャー、二成分溶媒マネジャー、試料オーガナイザー、PDA検出器(254nMで動作)、ELS検出器及び陽イオンモードで動作するAPPI源を備えたTQ-MSを含む、Waters AquityからなるWaters Aquity UPLC-MSでLC-MSを行った。
LC条件:カラムは、水+0.05%トリフルオロ酢酸(A)及びアセトニトリル/水(95:5)+0.05%トリフルオロ酢酸からなる二成分勾配0.6ml/分を用いて、60℃で動作する、Acquity UPLC BEH C18 1.7μm;2.1×150mmであった。
勾配(線形):
0.00分 10%B
3.00分 100%B
3.60分 10%B
合計実施時間:3.6分
LC条件:カラム:水+0.05%トリフルオロ酢酸(A)及びアセトニトリル+0.05%トリフルオロ酢酸(B)からなる二成分勾配1.2ml/分を用いて、35℃で動作するInertsustain AQ-C18 HP3.0μm;3.0×50mm。
勾配(線形):
0.00分 0%B
3.00分 95%B
4.00分 95%B
合計実施時間:4.0分
装置:Shimadzu LCMS-2020
カラム:Phenomenex Kinetex EVO C18、100×2.1mm、2.6μm、ULC-016、UV-Vis検出器:190~800nm、流量:0.5ml/分、移動相A:H2O+0.1%HCOOH、移動相B:アセトニトリル
勾配(線形):
1.00分 2%B
10.00分 90%B
13.00分 90%B
13.10分 2%B
合計実施時間:13.1分
カラム:AQゲル、UV検出器:210nm、流量:1L/分、移動相A:水(0.05%NH4HCO3)、移動相B:アセトニトリル。
勾配(線形):
0.00分 5%B
30.0分 30%B
合計実施時間:30.0分
カラム:RP-C18、360gカラム、流量:150ml/分、UV検出器波長:210nm。移動相A:水、移動相B:アセトニトリル
勾配(線形):
0.00分 5%B
4.00分 30%B
合計実施時間:4.0分
カラム:Phenomenex Synergi Polar RP、150×4,6mm×4,0μm、Thermo-Dionex Ultimate 3000ポンプ、オートサンプラー、カラムコンパートメント、可変波長検出器、流量:1ml/分、UV検出器波長:210nm。移動相A:水-アセトニトリル98:2+0.1%トリフルオロ酢酸、移動相B:アセトニトリル+0.1%トリフルオロアセトニトリル。
勾配(線形):
0.00分 2%B
6.00分 90%B
9.00分 90%B
9.50分 2%B
15.0分 2%B
合計実施時間:15.0分
実施例1a:
1L三首フラスコに、化合物(I)のHCl塩15g(50.4mmol、1当量)、乾燥ジクロロメタン450ml、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)40.4ml(232mmol)及び塩化トリイソプロピルシリル20.5ml(96mmol、1.9当量)を入れた。混合物を不活性雰囲気下で20~25℃で撹拌した。48時間後、反応混合物を0~5℃に冷却し、飽和NH4Cl溶液を添加した(300ml)。混合物を10分間撹拌し、次いで相を分離した。有機層を脱イオン水(2×150ml)で洗浄し、Na2SO4上で乾燥させ、蒸発させ、化合物(A2)(27.8g)を得た。次のステップ(実施例2a)において直接用いた。
LC-MS(方法A):保持時間(RT)=2.71分、[M+H]+=418.2m/z。
窒素の不活性雰囲気でパージされ、維持された3L三首丸底フラスコ中に、化合物(I)のHCl塩(68g、228mmol)、ジクロロメタン(1.8L)、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)(83.6g)及び塩化トリイソプロピルシリル(135.7g、704.0mmol)を装入した。得られた溶液を25℃で2日間撹拌した。次いで、反応をNH4Cl1000mLの添加によりクエンチした。得られた溶液をジクロロメタン(2×1L)で抽出し、有機層を合わせ、真空下で濃縮した。シリカゲルカラムクロマトグラフィー(溶離剤:酢酸エチル/石油エーテル(1:1))を用いて残留物を精製した。これにより、化合物(A2)(78g)をオイルとして得た。次のステップ(実施例2b)において直接用いた。
LC-MS(方法B):RT=1.606分、[M+H]+=418m/z
1H NMR(CDCl3,ppm): δ 6.64(d,J=8.2Hz,1H),6.49(d,J=8.2Hz,1H),3.11(dd,J=15.5,5.0Hz,1H),2.97(dd,J=17.5,5.0Hz,1H),2.80-2.50(m,3H),2.23(dd,J=17.5,11.5Hz,1H),1.95(d,J=13.0Hz,1H),1.80-1.65(m,3H),1.41-1.23(m,3H),1.16-1.03(m,33H,TIPS不純物を含む),0.91(t,J=7.5Hz,3H).
実施例2a:
CaCl2チューブを備えた500ml三首フラスコに、化合物(A2)(8.7g、21mmol)、無水ジクロロメタン(260mL)及び(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテート(20g、42mmol)を入れた。溶液を0~5℃に冷却し、三フッ化ホウ素ジエチルエーテラート(5.2mL、42mmol)を滴加した。反応混合物を室温に温め、一晩撹拌した。反応混合物をNaHCO3の氷冷飽和溶液(770mL)中に注いだ。10分の撹拌後、相を分離し、水相をジクロロメタン(235mL)で抽出した。合わせた有機相をNa2SO4上で乾燥させ、乾燥状態まで蒸発させて粗生成物27.9gをオイルとして得た。
LC-MS(方法C):RT=8.33分、[M+H]+=418.4m/z
1H NMR:(CDCl3,ppm):δ 6.98(d,J=8.5Hz,1H),6.84(d,J=8.5Hz,1H),5.38-5.30(m,3H),5.12(d,J=6.0Hz,1H),4.26-4.17(m,1H),3.77(s,3H),3.18(dd,J=16.0,5.0Hz,1H),3.10-2.96(m,2H),2.86-2.70(m,1H),2.31(s,3H),2.15-2.00(m,10H),1.91(d,J=13.0Hz,1H),1.55(q,J=7.5Hz,2H),1.35-1.20(m,3H),1.16-1.04(m,1H),1.01-0.90(m,24H).
窒素の不活性雰囲気でパージされ、維持された3L三首丸底フラスコ中に、化合物(A2)(60.0g、144mmol、1.0当量)、ジクロロメタン(1.2L)及び(2S,3S,4S,5R,6R)-2-(メトキシカルボニル)-6-(2,2,2-トリクロロ-1-イミノエトキシ)テトラヒドロ-2H-ピラン-3,4,5-トリイルトリアセテート(351.3g、733.9mmol)を装入した。次いで、三フッ化ホウ素ジエチルエーテラート(150g、1.25当量)を室温で滴加した。得られた溶液を25℃で2日間撹拌した。反応混合物を濾過し、濾液を真空下で濃縮した。残留物をシリカゲルカラム(溶離剤:酢酸エチル/石油エーテル(1:10))上にアプライし、化合物(A3)(75g)のを固形物として得た。
LC-MS(方法B):RT=3.531分、[M+H]+=720m/z
1H NMR:(CDCl3,ppm):δ 6.98(d,J=8.5Hz,1H),6.84(d,J=8.5Hz,1H),5.38-5.30(m,3H),5.12(d,J=6.0Hz,1H),4.26-4.17(m,1H),3.77(s,3H),3.18(dd,J=16.0,5.0Hz,1H),3.10-2.96(m,2H),2.86-2.70(m,1H),2.31(s,3H),2.15-2.00(m,10H),1.91(d,J=13.0Hz,1H),1.55(q,J=7.5Hz,2H),1.35-1.20(m,3H),1.16-1.04(m,1H),1.01-0.90(m,24H).
実施例3a(KOHを使用)
窒素の不活性雰囲気でパージされ、維持された10L三首丸底フラスコ中に、化合物(A3)(75g、102mmol)、メタノール(4L)、及び水(375mL)を装入した。これに続いて、水酸化カリウム(28.7g)、NH4F(3.8g)を0℃で添加した。得られた溶液を25℃で一晩撹拌した。得られた溶液を1N HCl(約200mL、pHを7.1に調整した)で中和し、減圧下で濃縮して溶液250mLを得た。溶液を分取HPLC(方法A)により精製し、化合物(Id)(40g)を固形物として得た。得られた化合物(Id)を化合物(Id)の七水和物として得る。
LC-MS(方法B):RT=1.902分、[M+H]+=438.3m/z。
1H NMR(300MHz,D2O): δ 6.83(d,J=8.5Hz,1H),6.74(d,J=8.5Hz,1H),4.74(d,J=7.5Hz,1H),3.59-3.54(m,2H),3.54-3.45(m,3H) 3.36-3.13(m,4H),3.08-2.99(m,2H),2.72(dd,J=14.5,12.0Hz,1H),2.27(dd,J=17.5,11.5Hz,1H),1.95(t,J=15.0Hz,2H),1.88-1.68(m,3H),1.68-1.58(m,1H),1.31(dq,J=13.5,3.5Hz,1H),0.91(t,J=7.5Hz,3H).
三首フラスコ中で、化合物(A3)6.1g(8.2mmol)をMeOH/水(12:1)の混合物260ml中で溶解し、KCN10.0g(19当量)で0℃で処理した。添加後、反応混合物を室温で撹拌した。16時間後、反応混合物を濾過して不溶性無機塩を除去した。濾液を乾燥状態まで蒸発させて粗化合物(Id)15.2gを得た。粗生成物を分取HPLC(方法B)により精製し、化合物(Id)(2.8g)を固形物として得た。得られた化合物(Id)を化合物(Id)のカリウム塩として得る。
LC-MS(方法C):RT=4.17分、[M+H]+=438.3m/z.
実施例4a:ラット及びヒト肝細胞における式(Id)の化合物の転化
HEPES(4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジンエタンスルホン酸)を含むDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地)(pH7.4)に懸濁されたヒト又はラット由来の肝細胞と共に、1μg/mLにおいて化合物(Id)をインキュベートした。インキュベーションでの細胞濃度は、1×106生細胞/mLであった。インキュベーションは、ガラス管内において37℃で実施し、総インキュベーション体積3.5mLであり、それぞれの試験アイテムに対して二重反復でインキュベーションを行った。肝細胞懸濁液3.5mLを37℃に設定された水浴中で10分間平衡化し、その後、DMSO(ジメチルスルホキシド)中の試験アイテムのストック溶液3.5μLを添加し、穏やかにチューブを反転させることにより、インキュベーションが開始された。インキュベーションにおける最終溶媒濃度は、0.1%DMSOであった。肝細胞懸濁液の均一性が確実になった後、0.25、5、15、30及び60分の所定の時点で600μLの試料をインキュベーションから採取した。0.5Mクエン酸中に氷冷アスコルビン酸(100mg/mL)60μL及び氷冷100mM糖酸1.4-ラクトン30μLを含有する、湿った氷上の1mL Nuncクライオチューブに、採取された体積を添加した。チューブを混合し、氷冷の20%ギ酸溶液35μLを添加した。チューブを十分に混合し、-80℃で保管して分析を待った。化合物(Id)の投与からの(I)の分析のために使用される分析方法及び装置は、「化合物(Ic)の投与からの化合物(I)の分析のために使用される装置」のセクションにおいて実施例7に記載の方法及び装置であった。
ヒト血液(ドナー3名の平均)及びラット血液(ドナー45匹の平均)中の(Id)の(I)への転化を、(Id)1μg/mLでスパイクされた37℃の新鮮血液中で示し、(I)を単離血漿中で0、5、15、30及び60分において測定した。「化合物(Ic)の投与からの化合物(I)の分析に使用される装置」のセクションにおいて以下の実施例7に記載される分析方法及び装置である。
ドーパミンD1受容体アゴニズム
HD Biosciences(China)によって開発されたプロトコルを用いて、CisBioからのHTRF cAMPを使用してドーパミンD1受容体アゴニズムを測定した。簡潔には、アッセイは、細胞によって産生された天然cAMPと、XL-665で標識化されたcAMPとの競合イムノアッセイにおける細胞によるcAMPの産生を測定する、ホモジニアス時間分解-蛍光共鳴エネルギー移動(HTRF)アッセイである。クリプテート標識化抗cAMP抗体がトレーサーを可視化する。製造元からの説明書に従ってアッセイを実施した。
y=(A+((B-A)/(1+((C/x)^D))))
式中、yは、試験化合物の所定の濃度に対する正規化されたHTRF比測定値であり、xは、試験化合物の濃度であり、Aは、無限化合物希釈での推定効力であり、Bは、最大効力である。Cは、EC50値であり、Dは、ヒル(Hill)勾配係数である。EC50推定値は、非依存的実験から得られ、対数平均が計算された。
HD Biosciences(China)によって開発されたカルシウム動員アッセイプロトコルを用いて、ドーパミンD2受容体アゴニズムを測定した。簡潔には、ヒトD2受容体を発現するHEK293/G15細胞を、密度15000細胞/ウェルにおいて透明底のマトリゲル(Matrigel)コート384ウェルプレートにプレーティングし、5%CO2の存在下において37℃で24時間増殖させた。細胞をカルシウム感受性蛍光染料Fluo8と共に、37℃において暗所で60~90分間インキュベートした。Ca2+及びMg2+を有する1×HBSSバッファー中の3倍濃縮溶液で試験化合物を調製した。化合物プレートからFLIPR(Molecular Devices)の細胞プレートに化合物を添加した後、カルシウム流入シグナルを直ちに記録した。蛍光データを正規化して、0%及び100%刺激のそれぞれの刺激なし(バッファー)及び完全刺激(ドーパミン1μM)に対する反応を得た。Xlfit4(IDBS,Guildford,Surrey,UK,モデル205)を使用して、シグモイド型用量反応(可変勾配)を用いて、非線形回帰によって試験化合物効力(EC50)を推定した。
y=(A+((B-A)/(1+((C/x)^D))))
式中、yは、試験化合物の所定の濃度に対する正規化された比測定値であり、xは、試験化合物の濃度であり、Aは、無限化合物希釈での推定効力であり、Bは、最大効力である。Cは、EC50値であり、Dは、ヒル勾配係数である。EC50推定値は、非依存的実験から得られ、対数平均が計算された。
5-HT2Bアゴニスト活性アッセイ
HTRF検出法を用いて、Eurofins/Cerep(France)により、イノシトール一リン酸(IP1)産生に対する化合物の作用を測定して、ヒト5-HT2B受容体での化合物(I)、(Ia)、(Ib)、(Ic)及び(Id)のアゴニスト活性の評価を行った。簡潔には、ヒト5-HT2B受容体がトランスフェクトCHO細胞において発現された。10mM Hepes/NaOH(pH7.4)、4.2mM KCl、146mM NaCl、1mM CaCl2、0.5mM MgCl2、5.5mMグルコース及び50mM LiClを含有するバッファー中に細胞を懸濁し、次いで密度4100細胞/ウェルにおいてマイクロプレートに分配し、バッファー(基礎コントロール)、試験化合物又は参照アゴニストの存在下において37℃で30分間インキュベートした。刺激されたコントロールの測定のために、個々のアッセイウェルは、1μM 5-HTを含有した。インキュベーション後、細胞を溶解し、蛍光受容体(フルオロフェン(fluorophen)D2標識化IP1)及び蛍光供与体(ユーロピウムクリプテートで標識化された抗IP1抗体)を添加した。室温において60分後、λ(Ex)337nm並びにλ(Em)620及び665nmにおいて、マイクロプレートリーダー(Rubystar,BMG)を使用して蛍光の移行を測定した。665nmで測定されたシグナルを620nmで測定されたシグナルで割ることにより、IP1濃度を決定した(比率)。その結果を1μM 5-HTに対するコントロールの応答のパーセントとして表した。標準参照アゴニストは、5-HTであり、それを数通りの濃度でそれぞれの実験で試験して、濃度反応曲線を作成し、その曲線から、そのEC50値は、ドーパミン機能性アッセイについて上述のように計算される。
ヒト5-HT2B受容体に対する化合物(Id)の親和性の評価をEurofins/Cerep(フランス(France))で放射性リガンド結合アッセイにおいて決定した。50mM トリスHCl(pH7.4)、5mM MgCl2、10μMパージリン及び0.1%アスコルビン酸を含有するバッファー中の試験化合物の非存在下又は存在下において、ヒト5HT2B受容体を発現するCHO細胞から調製された膜ホモジネートを0.2nM[125I](±)DOI(1-(4-ヨード-2,5-ジメトキシフェニル)プロパン-2-アミン)と共に室温で60分間インキュベートした。非特異的な結合は、1μM(±)DOIの存在下において決定される。インキュベーション後、0.3%ポリエチレンイミン(PEI)で予浸されたガラス繊維フィルター(GF/B,Packard)を通して、試料を真空下において迅速に濾過し、96試料細胞ハーベスター(Unifilter,Packard)を使用して、氷冷50mMトリスHClで数回すすいだ。フィルターを乾燥させ、シンチレーションカクテル(Microscint 0,Packard)を使用してシンチレーション計数器(Topcount,Packard)において放射能についてカウントした。コントロール放射性リガンド特異的な結合の抑制パーセントとして結果を表す。標準参照化合物は、(±)DOIであり、それを数通りの濃度でそれぞれの実験で試験して、競合曲線が得られ、その曲線からそのIC50が計算される。
すべての実験に関して、約0.68mLの血液試料を尾又は舌下静脈から採取し、予め冷却されており、且つ水中のアスコルビン酸80μL及び100mMD-糖酸1,4ラクトン40μLからなる安定化溶液で調製されたK3EDTAチューブに血液試料を入れた。チューブを6~8回穏やかに反転させ、十分に混合し、次いで湿った氷上に置いた。遠心分離するまで、回収チューブを湿った氷上に30分までの間置いた。湿った氷から除去した後、遠心分離を直ちに開始した。遠心分離が終了した直後に試料を湿った氷上に戻した。予め冷却されたギ酸(20%)を含有する適切に標識された3つのクライオチューブのそれぞれに血漿130μLの3つの副試料を移した(チューブは、予めスパイクされており、使用前に冷蔵保存された)。チューブの蓋を直ちに取り換え、穏やかに6~8回反転させることにより、血漿溶液を完全に混合した。サンプリング後60分以内に試料を名目上-70℃において凍結保存した。遠心条件は、4℃で3000Gにおいて10分間であった。回収後、血漿を氷水上に置いた。約-70℃での最終保存。
質量分析計(LC-MS/MS)Waters Acquity-Sciex API 5000。分析カラムWaters BEH UPLC Phenyl 100×2.1mmカラム、粒径1.7μm。移動相A:20mMギ酸アンモニウム(水性)+0.5%ギ酸。移動相B:アセトニトリル。6.1分で95/5%から2/98に移動する勾配。流量0.5mL/分。試験アイテム及び追加された分析標準のMRMモニタリング(多重反応モニタリング)。
Charles River Laboratories,Sulzfeld,GermanyによってHanウィスターラットが供給された。自動制御の人工的な12時間の明及び暗サイクルを維持した。Brogaardenから入手した標準実験室食餌(Altromin1324ペレット)がラットに与えられた。ラットは、食餌に自由にアクセスできた。研究(4週間の毒性研究)中、経管栄養法によってラットに(Ia)の用量を1日1回経口投与した。(Ia)300μg/kgが投与されたラットから、雄のサテライト動物3匹からの血液試料)を29日目の以下の時点:投与後0.5、1、2、4、6、8、12及び24時間で採取した。
質量分析計(LC-MS/MS)Waters Acquity -Sciex API5000。分析カラムWaters BEH UPLC Phenyl 100×2.1mmカラム、粒径1.7μm。移動相A:20mMギ酸アンモニウム(水性)+0.5%ギ酸。移動相B:アセトニトリル。6.1分で95/5%から2/98に移動する勾配。流量0.5mL/分。試験アイテム及び追加された分析標準のMRMモニタリング。
Charles River Laboratories(UK)によってHanウィスターラットが供給された。自動制御の人工的な12時間の明及び暗サイクルを維持した。標準実験室食餌(Teklad 2014C Diet)がラットに与えられた。ラットは、食餌に自由にアクセスできた。研究(26週間の毒性研究)中、経管栄養法によってラットに(Ib)の用量を1日1回経口投与した。(Ib)300μg/kgが投与されたラットから、雄のサテライト動物3匹からの血液試料を182日目の以下の時点:投与後0.5、1、2、4、8及び24時間で採取した。
質量分析計(LC-MS/MS)Waters Acquity-Waters Xevo TQ-S。分析カラムAcquity BEH C18 100×2.1mm、1.7μm。移動相A:20mMギ酸アンモニウム+0.2%ギ酸。移動相B:アセトニトリル+0.2%ギ酸。11.0分で95/5%から5/95%に移動する勾配。流量0.3mL/分。試験アイテム及び追加された分析標準のMRMモニタリング。
Charles River Laboratories,Wiga GmbH,GermanによってHanウィスターラットが供給された。自動制御の人工的な12時間の明及び暗サイクルを維持した。Brogaardenから入手した標準実験室食餌(Altromin1324ペレット)がラットに与えられた。ラットは、食餌に自由にアクセスできた。化合物(Id)を単回経口経管栄養法投与で雄のHanウィスターラットに経管栄養法によって経口投与した。化合物(Id)633μg/kgが投与されたラットから、雄の動物3匹からの血液試料を1日目の以下の時点:投与後1、2、4、6、8及び24時間で採取した。
Envigo,UKによってHanウィスターラットが供給された。自動制御の人工的な12時間の明及び暗サイクルを維持した。標準実験室食餌Teklad 2014Cがラットに与えられた。ラットは、食餌に自由にアクセスできた。(Ic)を単回経口経管栄養法で雄のHanウィスターラットに投与した。ラットに(Ic)494μg/kgを投与した。雄の動物3匹からの血液試料を1日目の以下の時点:投与後1、2、4、6、8及び24時間で採取した。
質量分析計(UPCLC-MS/MS)Waters Acquity I-Class-Waters Xevo TQ-S。分析カラムAcquity HSS T3 C18 50×2.1mm、1.8μm。移動相A:10mMギ酸アンモニウム0.2%ギ酸:アセトニトリル(95:5)。移動相B:10mMギ酸アンモニウム0.2%ギ酸:アセトニトリル(5:95)。2.40分で95/5%から5/95%に移動する勾配。流量0.3mL/分。試験アイテム及び追加された分析標準のMRM検出。
試験用動物は、化合物(Id)の投与及び血液サンプリングに記載されたものであった。さらに、ラットにアポモルヒネを単回投与で皮下投与した。3000μg/kg(アポモルヒネ)が投与されたラットから、3匹の雄動物からの血液試料を1日目の以下の時点:SC投与の投与後0.25、0.5、1、1.5、2、3、5及び7時間で採取した。
動物
合計で体重200~250グラム(到着時165~190グラム)の雄のCDラット(Charles River,Germany)206匹を研究に使用した。動物を標準温度(22±1℃)において、且つ食餌及び水に自由にアクセスできる光制御環境(午前7時から午後8時まで点灯)において動物を収容した。Charles River Discovery Research Services Finland Ltd.の標準作業手順に従い、且つ動物試験に関するThe National Animal Experiment Board of Finland(Elainkoelautakunta,ELLA)authorityに従って以下に記載の実験を実施した。
試験デバイスは、正方形のプレキシグラス領域(測定値40×40×40cm)であり、その中でのラットの移動経路が活動モニター(Med.Associates Inc.)によって記録される。試験期間が開始される前にラットをその試験ケージに60分間慣らす。慣らしが完了したら、動物を化合物又は賦形剤のいずれかで処置し、オープンフィールド装置内に戻す。測定される主要な試験パラメーターは移動距離である(5分区間で記録される)。最初の処置を受けた後の全体の測定時間は、360分であった。研究における総経過観察時間は、慣らしの60分を含む420分であった。
化合物(Id)の経口投与がラットの歩行活動アッセイにおいて評価され、次いで、この機能的読み取り値は、化合物(I)の血漿中濃度と相関した。アポモルヒネ及びプラミペキソールも、比較としてこのアッセイにおいて同時に試験され(すなわちパーキンソン病分野で公知の標準治療(SoC))、アポモルヒネについて血漿中濃度を分析した。
米国特許第4543256号明細書
国際公開第2001/078713号パンフレット
国際公開第02/100377号パンフレット
国際公開第2009/026934号パンフレット
国際公開第2009/026935号パンフレット
国際公開第2010/097092号パンフレット
国際公開第2019101917号パンフレット
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本発明は以下の態様を含み得る。
[1]
以下の式
を有する化合物(Id)又はその薬学的に許容される塩を、以下の式
を有する化合物(I)から製造する方法であって、
以下のステップ
2)以下の反応スキーム
を含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法。
[2]
以下の化合物(A3)を製造する方法であって、以下のステップ
2)以下の反応スキーム
を含み、
前記反応を、非プロトン性溶媒中でルイス酸の存在下で行う方法。
[3]
前記非プロトン性溶媒は、ジクロロメタン又はベンゾトリフルオリドであり、且つ前記ルイス酸は、三フッ化ホウ素ジエチルエーテラートである、請求項1~2のいずれか一項に記載の方法。
[4]
以下の式(A3)
[5]
式(Id)の化合物、又はその薬学的に許容される塩を製造する方法における、請求項4に記載の化合物の使用。
[6]
以下の式
以下のステップ
3)以下の反応スキーム
を含む方法。
[7]
ステップ2)に続き、以下のステップ
3)以下の反応スキーム
を行う、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
[8]
ステップ3)において用いられる前記求核試薬は、水酸化カリウム及び水酸化ナトリウムから選択される、請求項6又は7に記載の方法。
[9]
前記脱保護を、メタノール及び水の混合物中で行う、請求項6~8のいずれか一項に記載の方法。
[10]
化合物(A2)は、以下のステップ
1)以下の反応スキーム
により得られたものであり、
前記反応を、非プロトン性溶媒中で塩基の存在下で行う、請求項1~3及び6~9のいずれか一項に記載の方法。
[11]
前記非プロトン性溶媒は、ジクロロメタンであり、且つ前記塩基は、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)である、請求項10に記載の方法。
[12]
前記N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)は、化合物(I)に対して4~5当量の量で存在する、請求項11に記載の方法。
[13]
化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩を化合物(I)から製造する方法であって、
請求項1及び3のいずれか一項に記載のステップ2);とそれに続く
請求項7~9のいずれか一項に記載のステップ3)
を含み、
ステップ2)において用いられる化合物A2は、
請求項10~12のいずれか一項に記載のステップ1)
により得られたものである方法。
[14]
請求項1、3、6及び8~13のいずれか一項に記載の方法により得られる、以下の式
[15]
化合物(Id)、又はその薬学的に許容される塩を固体経口剤形に製剤化する追加のステップを含む、請求項1及び3、6、8~9、及び10~12のいずれか一項に記載の方法。
Claims (13)
- 前記非プロトン性溶媒は、ジクロロメタン又はベンゾトリフルオリドであり、且つ前記ルイス酸は、三フッ化ホウ素ジエチルエーテラートである、請求項1~2のいずれか一項に記載の方法。
- ステップ3)において用いられる前記求核試薬は、水酸化カリウム及び水酸化ナトリウムから選択される、請求項6又は7に記載の方法。
- 前記脱保護を、メタノール及び水の混合物中で行う、請求項6~8のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非プロトン性溶媒は、ジクロロメタンであり、且つ前記塩基は、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)である、請求項10に記載の方法。
- 前記N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)は、化合物(I)に対して4~5当量の量で存在する、請求項11に記載の方法。
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