JP7630831B2 - ガラクトースの迅速な定量的検出システムおよびその使用 - Google Patents

Description

本発明は、ガラクトース検出システムに関し、特に、生体試料中のガラクトース濃度を迅速に測定し、肝機能の機能障害度を評価することに関する。

肝臓は、異なる代謝経路または胆汁排泄を介して除去され得る多くの薬物の除去と密接に関連している。肝機能異常によって引き起こされる薬物の排泄または代謝の速度の変化は、薬物に活性代謝物の形成を蓄積または阻害させる可能性がある。血液中のガラクトースは、肝機能異常と感受性的に相関しており、研究文献によると、血液中のガラクトース値が肝機能の障害の程度と有意に関連していることが明白である。したがって、異常肝臓の残存機能は、血液中のガラクトース値に従って評価され得る。

従来的な検出方法は、８時間絶食後の０．５ｇ／ｋｇのガラクトースの静脈内注射に使用され、６０分後に血漿中のガラクトース濃度を測定される（Ｔａｎｇ Ｈ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ，５２：２２２－２３１、Ｒａｎｅｋ Ｌ．ｅｔ ａｌ．（１９８３）Ｃｌｉｎ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．３：１７３－１７８）。測定方法は、標準的なガラクトース溶液の異なる濃度と、その光吸収値との間の関係に従って測定曲線を描画することと、抽出した血液中にＨＣＩＯ_４を加えて、混合のために振とうし、次に遠心分離により浮遊物を採取することと、浮遊物にＫＯＨを加えて、混合のために振とうし、次に再度遠心分離により浮遊物を採取することと、次にガラクトースデヒドロゲナーゼを浮遊物に加えて、暗室に６０分間置いて、標本の調製およびその光吸収値の測定における色反応の不正確さを回避することと、最後に、測定曲線によって濃度値を見つけることと、を含む。しかしながら、検出プロセスは複雑で時間がかかるため、様々な薬剤の使用が必要となる。したがって、検出結果を知るには長い手順が必要となる。

台湾特許第Ｉ２９２４７８号は、肝機能およびサンプリング試験ストリップの決定のために試験標本を作製する方法を開示した。方法はまた、対象の体内にガラクトースを注射する必要があり、血液中のガラクトースの濃度を測定するために６０分間待機する。測定方法は、標準的なガラクトース溶液の異なる濃度とその光吸収値との間の関係に従って測定曲線を描画することと、トリクロロ酢酸を試験紙に加えて、３０分間振とうし、次に溶媒を取り出し、その中にガラクトース脱水素酵素を含有する溶媒を加えて、３０分間振とうし、次に色素生成剤を得られた溶媒に加えて、最後にその光吸収値を測定することと、を含む。しかしながら、方法は、人体内へのガラクトース注射に基づいており、試験標本を作製する必要がある。検出プロセスは、複雑で時間がかかる。したがって、ガラクトースを検出する必要がある患者については、当技術分野で迅速で単純なガラクトース検出方法が必要である。

台湾特許第Ｍ４８８６３５号は、生物学的試験ストリップを開示し、米国特許第ＵＳ９７１９９５号は、ヘマトクリット試験を検出するシステムを開示し、システムは、電気化学試験ストリップおよびメーターを含む。上記の先行技術により、これは、電気化学的方法によって体の状態を監視する非常に一般的な技術である。酵素タンパク質の不安定性によって、酵素は、アルカリ環境または乾燥状態では保存され得ない。それによって、酵素は、酸性アミン硫酸溶液中で非常に短い保存時間で貯蔵されるなど、酸性溶液中に一般的に保存される。したがって、長期間固体状態で保存され得る試験ストリップを提供することは、この分野で解決されるべき別の問題である。

本発明の目的は、ガラクトース組成物、試験ストリップまたはろ紙、およびメーターを含む、ガラクトースの迅速な定量的検出システムを提供することである。

ガラクトース組成物は、代謝後に人体内に入り、生体試料を生成する、ガラクトース、緩衝剤、および０～９９％の酸化防止剤を含む。

試験ストリップまたはろ紙は、酵素を含み、酵素は、電気化学情報を生成する生体試料と反応する。

メーターは、信号を提供するための電源ユニットを含む。コネクタは、電源ユニットによって提供される信号を受信し、信号を試験ストリップまたはろ紙に送信するために使用され、ここで、電気化学情報と反応する信号は、対応する応答信号を生成し、コネクタは、対応する応答信号をメーターに送信する。計算ユニットは、対応する応答信号を計算するために使用される。Ａ／Ｄコンバータは、計算ユニットから対応する応答信号を受信し、計算ユニットによって計算された対応する応答信号を、デジタル反応信号に変換するために使用される。プロセッサは、デジタル反応信号を処理するために使用される。デジタル反応信号を表示するための表示装置、およびデジタル反応信号を受信するためのデジタル端末。

上記の目的を達成するために、緩衝剤は、酢酸緩衝液、クエン酸塩緩衝剤、リン酸塩緩衝剤、酢酸塩緩衝剤、炭酸塩緩衝剤、アスコルビン酸緩衝液、およびトリエタノールアミン緩衝液を含む群から選択される。

上記の目的を達成するために、抗酸化剤は、ビタミンＣまたは／および亜硫酸水素ナトリウム、ビタミンＡ、ビタミンＥ、フラボノイド、ポリフェノール、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＤＴＰＡ）、およびＮＴＡ－ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）を含む群から選択される。

上記の目的を達成するために、Ｄ－（＋）－ガラクトース、Ｌ－（－）－ガラクトース、安定同位体ガラクトース、環状ガラクトース、またはガラクトース誘導体を含むガラクトース。

上記の目的を達成するために、ガラクトース組成物は、経口投与、注射、スプレー、吸入、バッカル、直腸、座薬、または他の医学的に許容可能な方法を介して投与される。

上述の目的を達成するために、経口投与の方法は、ユーザに事前にガラクトース組成物を摂取させることであり、次に、生体試料中のガラクトースの含有量を測定することによって、人体内のガラクトースの含有量が測定される。

上述の目的を達成するために、注射の方法は、ユーザの体内に事前にガラクトース組成物を注射させることであり、次に、生体試料中のガラクトースの含有量を測定することによって、体の生体試料中のガラクトースの含有量が測定される。

本発明の別の目的は、試験ストリップを提供することであり、試験ストリップは、絶縁基体と、絶縁基体上に構成された電極ユニットと、電極ユニットの一部を覆い、絶縁スペーサーの第１の縁部に設けられた反応ゾーンチャネルを含む、第１の絶縁スペーサーであって、電極ユニットの別の部分が、反応ゾーンチャネルに曝露されている、第１の絶縁スペーサーと、

第２の縁部を含む第２の絶縁スペーサーであって、第２の絶縁スペーサーが、第１の絶縁スペーサーの反応ゾーンチャネルを覆い、第１の絶縁スペーサーの第１の縁部、第２の絶縁スペーサーの第２の縁部、および絶縁基体の同じ側縁部が、すべて凸状円弧形状であり、絶縁基体の縁部が、反応ゾーンチャネルの前半分部分に対して内側に凹んでおり、反応ゾーンチャネルが、少なくとも反応層を含み、反応層が、少なくともガラクトースおよび導電性媒体を含む反応ゾーンチャネル内の電極ユニットによって覆われて、電気化学反応を介して生体試料と反応する、第２の絶縁スペーサーと、を含み、試験ストリップは、反応ゾーンチャネルの前半分部分に対して、第２の絶縁スペーサーの第２の縁部の凸状先端と絶縁基体の凹状構造を利用して、生体試料の凝集力を減少させ、および毛細管現象の作用下で生体試料を迅速に前進させることができ、酵素は、ガラクトースを酸化、還元、分解、または代謝することができる。

上記の目的を達成するために、試験ストリップ中のガラクトースの試験範囲は、５０～２０００μｇ／ｍｌである。

上記の目的を達成するために、絶縁基体は、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、ガラス繊維（ＦＲ－４）、ポリエステルスルホン、ベークライトプレート、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリエチレン（ＰＥ）、ポリスチレン（ＰＳ）、ガラスプレート、セラミック、またはそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、電極ユニットは、パラジウム、プラチナ、金コロイド、チタン、炭素、銀、銅、金、および銀からなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、反応層は、酵素、コエンザイム、緩衝液、安定剤、および界面活性剤からなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、導電性媒体は、フェロセン、フェロセニウム、メチレンブルー、トリス（アセトニトリル）ルテニウムトリクロリド、ジヒドロキシベンゾキノン、フェナジンメト硫酸塩、テトラチアフルバレン、テトラ－シアノ－キノ－ジメタン、メチルビオロゲン、トルイジンブルー、５，６－ジアミノ－１、１０－フェナントロリン、２，２’－ビピリジンからなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、導電性媒体は、金属イオン化合物をさらに含み、金属イオン化合物は、ＭｇＣ１_２’ＢｅＣ１_２’ＣａＣ１_２’ＳｒＣ１_２’、ＢａＣ１_２、およびそれらの任意の１つの組み合わせからなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、緩衝液は、Ｔｒｉｓ、Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ＰＢＳ、ＭＥＳ、ＣＨＥＳ、ホウ酸塩、ユニバーサル緩衝液混合物（ＣＰＢ）、ＭＯＰＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、ＴＡＰＳＯ、トリシン、ビシン、およびＴＡＰＳからなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、安定剤は、キシリトール、マンニトール、ポリキシロース、アラボキシラン、マンナン、トレハロース、ＰＥＧ、ＰＶＡ、ＰＥＯ、メトセル、アガロース、ゾル－ゲル、コラーゲン、キトサン、ＢＳＡ、カゼイン、ネオタンパク質、アミノ酸、およびそれらの任意の１つの組み合わせからなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、界面活性剤は、カチオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、中性イオン界面活性剤、および非イオン性界面活性剤からなる群から選択される。

上記の目的を達成するために、酵素は、乾燥され、固化され、および中性、酸性、またはアルカリ性の環境で保存され得る。

本発明の別の目的は、ユーザ内でガラクトースの迅速な定量的検出システムを実施する方法を提供することであり、方法は、
（１）ユーザが、事前にガラクトース組成物を摂取することと、
（２）生体試料が、生物学的サンプリングペンを使用して取得されることと、
（３）生体試料が、生物学的サンプリングペンからの試験ストリップによって吸収されることと、
（４）試験ストリップが、メーターに挿入されることと、
（５）ユーザまたは専門の医療スタッフが、ガラクトース濃度の値を読み取って、ユーザの疾患または肝臓の残存機能を決定することと、を含む。

上記の目的を達成するために、方法は、対象または専門のスタッフによって操作され得る。

上記の目的を達成するために、疾患は、新生児ガラクトース血症である。

ガラクトースの迅速な検出システムの正面外観図である。 ガラクトースの迅速な検出システムにおけるメーターシステムのブロック概略図である。 ガラクトースの迅速な検出システムについての正確度試験結果である。 ガラクトースの迅速な検出システムについての精度試験結果である。 試験ストリップ構造の概略図である。 一般的なろ紙の血液ボリューム分析である。 様々なボリュームの試験ストリップ下のガラクトースの正確度試験結果である。 試験ストリップの保存日の試験結果である。 ヘマトクリット評価試験の試験結果である。 再現性評価試験の試験結果である。 静脈内注射のガラクトースＧＳＰ結果と、経口投与のガラクトースＯＧＳＰ結果との間の一種の相関である。 静脈内注射のガラクトースＧＳＰ結果と、経口投与のガラクトースＯＧＳＰ結果との間の別の種類の相関である。 半自動ロボットアームによって完了した試験ストリップ検出結果である。

本発明は、以下の実施形態に例示されているが、これに限定されるものではない。別の言い方をすれば、本発明で使用される材料はすべて市場で入手可能である。

本発明の図１ａに示すガラクトースの迅速な検出システムは、酵素電気化学検知技術を採用する。システムは、主に使い捨ての乾燥酵素電極器具技術を採用し、酵素と反応して人体内の肝臓により代謝されるガラクトースまたはその代謝物を利用して、電気化学反応を介してマイクロ電流を生成し、次いで、マイクロ電流を測定することによって、ガラクトースの読取値を検出する。残存肝機能は、読取値に従って評価される。本発明のガラクトースの迅速な定量的検出システムは、肝機能の評価に限定されず、また新生児ガラクトース血症などのガラクトースに関連する疾患を診断することができる。さらに、本発明のガラクトースは、ガラクトースおよびその誘導体をさらに含む。生体試料は、血液、唾液、尿、洗浄液、または任意の他の体液であり得る。

実施形態１：ガラクトースの迅速な定量的検出システムの使用方法
１－１ ガラクトース検出のための試験ストリップの使用
図１ｂに示すガラクトース試験ストリップは、アルミニウムホイル袋に封入され、４°Ｃ～１０°Ｃ（３９．２°Ｆ～５１．２°Ｆ）の温度で保存される。使用前に、試験ストリップを２０分間温める必要がある。開封後、ガラクトース試験ストリップを３０分以内に使用する必要がある。この時間が過ぎると、試験ストリップは破棄され、再度使用することはできない。

１－２ 試料の採取および調製
ユーザは、経口ガラクトース組成物を最初に飲む必要があり、ここで、ガラクトースの含有量は、合計ガラクトース組成物の重量でｌ％～８０％、好ましくは４％～４０％であり、ここで、緩衝溶液は、添加され得ず、または合計重量の０．００１％～５％で添加され得、酸化防止剤は、添加され得ず、または合計重量の０．００１％～５％で添加され得る。緩衝液および酸化防止剤を選択し、以下の含有量の成分を加えることによって、適切な配合物を調製することができる：ビタミンＣ、亜硫酸水素ナトリウム、ビタミンＡ、ビタミンＥ、フラボノイド、ポリフェノール、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）、およびＮＴＡ－ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）を含む群から選択された０．０１Ｍ～１Ｍの酸化防止剤、ならびに／またはｐＨ値を４．０～９．０の範囲に調整した、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝剤、リン酸塩緩衝剤、酢酸塩緩衝剤、炭酸塩緩衝剤、アスコルビン酸緩衝液、およびトリエタノールアミン緩衝液を含む群から選択された０．０１Ｍ～１Ｍの緩衝溶液。安定した配合物は、０．０１％クエン酸塩緩衝剤と０．５％亜硫酸水素ナトリウムを加えることで得られ、ｐＨ値は４．５となる。上記のガラクトース組成物を６０分間飲んだ後、指を石鹸およびぬるま湯で掃除し、拭き取り、次いで生物学的サンプリング前に指先をアルコール綿で拭き取る。指先が完全に乾燥した後、生物学的サンプリング装置を使用して、指先を軽く刺すことによって、生体試料が得られるが、生物学的サンプリング部分中の過剰な圧迫を避けるべきである。

１－３ 使用手順
（１）パスワードカードのキャリブレーション
正確なガラクトース値を測定するために、ガラクトース試験ストリップの新しい箱が毎回使用されるときに、ガラクトースメーターを再較正すべきである。キャリブレーション中、箱に取り付けられたパスワードカードのみが使用可能であり、パスワードカードのパスワードがガラクトース検出に使用される試験ストリップ箱のパスワードと同じであることを確認し、次に、パスワードカードの接触電極を、ガラクトースメーターのパスワードカードスロットに挿入する。ガラクトース試験ストリップをメーターの試験ストリップスロットに挿入した後、メーターは、自動的にｙがアクティブになり、画面に「

」の例が表示される。ユーザは、パスワードカードと同じパスワードであることを確認してから、パスワードカードを取り出す必要がある。これでキャリブレーションが完了し、ガラクトース試験を実行することができる。

（２）ガラクトース検出
ユーザは、まず指を洗浄し、完全に拭き取って乾燥させ、次いで、生物学的サンプリング針を固定された場所にある生物学的サンプリング装置内に置く。ガラクトース試験ストリップを、メーターの試験ストリップスロットに挿入した後、メーターが自動的に起動され、画面に「

」の例が表示される。ユーザは、画面上のパスワードが試験ストリップ箱のパスワードと同じであることを確認し、血液ドロップ記号「

」が画面上で点滅したときに生体試料をサンプリングしてもよい。

生体試料をサンプリングする前に、アルコール綿で指先を拭き取る。指先が完全に乾燥した後、生物学的サンプリング装置を使用して、指先を軽く刺すことによって、生体試料が得られる。生体試料を試験ストリップの生体試料吸収開口部に軽く接触させることを可能にすることによって、試験ストリップは、生体試料を反応ゾーンまで自動的に吸収する。試験ストリップ反応ゾーンの透明な試験ウィンドウが完全に赤色に見え、「ビープ」音が聞こえたことを確認したときに、指先の生体試料を移動することができる。試験終了時（約１分後）に、ガラクトース値が、画面に表示される。さらに、この読み出しの電位は、ブルートゥース（登録商標）または携帯電話もしくはコンピュータを介した類似の接続を介して、医師を含む他の者に送信され得る。

試験が完了した後、試験ストリップは、取り出され、適切に廃棄される。試験が連続して行われない場合、３分後に、自動的にメーターが非アクティブ化される。

実施形態２：検出システムの原理および試験
本発明は主に、生体試料中のガラクトース含有量を測定するためのシステムを提供する。ユーザは、前述のガラクトース組成物を予め摂取する。ガラクトース組成物が人体内で肝臓によって代謝された後、ガラクトースまたはその代謝物は、血液中に存在することになる。ユーザは、指先から血液試料を採取し、本発明によって請求される試験ストリップ上に試料をドロップする。試験ストリップ中の酵素により、酵素は、ガラクトースまたはその代謝物と反応し、その後電気化学反応を介して電流を生成することができる。試験ストリップを本発明のメーターに挿入すると、メーターは、試験ストリップ内の電流信号を検出することによって、人体内のガラクトースの量を検出する。これにより、ユーザは、ユーザの健康状態を監視することができる。検出のプロセスは非常に単純であるため、高い正確度および精度で先行技術と比較して、ガラクトースの検出時間を短縮することができる。

図２は、本発明の一実施形態による、ガラクトース検出システムのブロック概略図である。システムは、試験ストリップ１００およびメーター２００を含む。メーター２００は、外部に接続されたコネクタ２１０、濃度を計算するための計算ユニット２１１、Ａ／Ｄコンバータ２１２、プロセッサ２１３、および表示装置２１４を含む。電源ユニット２１５が信号（信号は、好ましくはｌｋＨｚ～２２ｋＨｚの周波数で方形波信号であり、電圧は、５０ｍＶ～５Ｖ、好ましくは３００ｍＶ～８００ｍＶである）をコネクタ２１０を介して試験ストリップに加えると、生体試料中のガラクトースまたはその代謝物、および試験ストリップ中の酵素は、電気化学反応を介して反応し、電気化学情報を生成する。電気化学情報と反応する信号は、対応する応答信号を生成し、対応する応答信号は、コネクタ２１０を介してメーター２００の計算ユニット２１１に送信される。次に、計算ユニット２１１は、対応する応答信号を計算し、対応する応答信号をＡ／Ｄコンバータ２１２に出力して、対応する応答信号を、プロセッサ２１３によってさらに処理されるデジタル反応信号に変換し、測定結果は、表示装置２１４を介して表示される。さらに、デジタル反応信号は、ガラクトース濃度の信号を、ブルートゥース（登録商標）または無線を介して携帯電話またはコンピュータに送信するなど、デジタル端末３００に送信され得る。

２－１ 正確度試験
まず、５つの異なる濃度のガラクトース試料（それぞれ２００μｇ／ｍｌ、５００μｇ／ｍｌ、９００μｇ／ｍＬ、１２００μｇ／ｍｌ、および１５００μｇ／ｍｌである）を準備し、それぞれ２４群を摂取し、それらに静脈血を加え、次いで、本発明のメーターを使用して、濃度値を試験し、それらの平均（μｇ／ｍｌ）、標準偏差（Ｓ．Ｄ．）、および変動係数（％Ｃ．Ｖ．）を計算し、回帰分析チャートを作成し、ここで、図３に示すように、検出環境は、室温（２５±５°Ｃ）であり、相対湿度は、２０～６０％である。本発明のメーターの読取値は、本発明のメーターについて高い正確度を表す、実際のガラクトース濃度の最大０．９８の高い相関係数を有する。

２－２ 精度試験
まず、５つの異なる濃度のガラクトース試料（それぞれ２００μｇ／ｍｌ、５００μｇ／ｍｌ、９００μｇ／ｍＬ、１２００μｇ／ｍｌ、および１５００μｇ／ｍｌである）を、室温（２５±５°Ｃ）、かつ２０～６０％の相対湿度で準備し、それぞれ３群を摂取し、それらに静脈血を加え、次いで、本発明のメーターを使用して、濃度値を試験し、試験を８日間繰り返し、変動係数（％Ｃ．Ｖ．）の平均を計算する（図４に示すように）。図４のデータから、８日間の５つの試料の平均変動係数（％Ｃ．Ｖ．）が６．５～７．５の範囲であり、試験器具の高精度を表すことが示されている。

前述の結果に照らして、本発明のガラクトース検出システムの手順は、簡単で迅速である。それは、本発明のガラクトース組成物の式が、人体内の肝臓によって迅速に代謝され得、血液または体液がガラクトースまたはその代謝物を含有することを可能にするからである。次に、試料を指先で採取する。試料が電気化学反応を介して試験ストリップ中の酵素と反応した後、試験標本を追加的に調製することなく、測定器でガラクトースを１分間のみ検出する。手順は、検出時間をさらに短縮するガラクトースを検出するための工程の量を減らす。したがって、本発明は、ガラクトースを検出する必要がある患者に、迅速、単純、かつ高正確度の検出ガラクトース方法を提供する。

実施形態３：試験ストリップ検出
図５は、本発明の一実施形態による、試験ストリップの概略図である。試験ストリップ１００は、絶縁基体１１０、電極ユニット１２０、第１の絶縁スペーサー１３０、および第２の絶縁スペーサー１４０を含む。試験ストリップは、ガラクトースまたはその代謝物と反応して、電気化学反応を有する酵素を含有する。

この実施形態では、絶縁基体１１０は、４０～１２０°Ｃの電気絶縁および耐熱性を有する、平坦な表面を有する。絶縁基体１１０の材料は、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、ガラス繊維（ＦＲ－４）、ポリエステルスルホン、ベークライトプレート、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリエチレン（ＰＥ）、ポリスチレン（ＰＳ）、ガラスプレート、セラミック、または上述の材料の任意の組み合わせから選択される。

図５に示すように、電極ユニット１２０は、絶縁基体１１０上に構成される。電極ユニット１２０は、対向する第１の端部１２２および第２の端部１２４を含む。本実施形態では、電極ユニット１２０は、互いに絶縁された複数の電極から構成されてもよい。電極ユニット１２０の材料は、パラジウム接着剤、白金接着剤、金接着剤、チタン接着剤、炭素接着剤、銀接着剤、銅接着剤、金銀混合接着剤、炭素銀混合接着剤、または上述の導電性材料の任意の組み合わせなどの任意の導電性物質であり得る。１つの実施形態では、電極ユニット１２０は、導電性炭素粉末層または金属層からなる。さらに別の実施形態では、電極ユニット１２０は、導電性接着剤銀層およびその上の導電性炭素粉末層からなり、導電性炭素粉末層のインピーダンスは、導電性銀接着剤層または他の金属層のインピーダンスよりも一般的にはるかに大きい。

第１の絶縁スペーサー１３０の材料は、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）絶縁接着剤テープ、エチレンテレフタル酸エステル絶縁接着剤テープ、熱乾燥絶縁ワニス、または紫外線光硬化絶縁ワニスを含み得るが、これらに限定されない。第１の絶縁スペーサー１３０は、電極ユニット１２０の一部（すなわち、第１の端部１２２の部分）を覆い、第１の絶縁スペーサー１３０の第１の縁部１３２上に位置する反応ゾーンチャネル１３４を含む。第１の端部１２２は、反応ゾーンチャネル１３４に曝露される。試料（例えば、血液）は、反応ゾーンチャネル１３４を充填して、後続の電気化学反応を実施するのに適している。反応ゾーンチャネル１３４の２つの長辺は、ラダー形状であり、第１の縁部１３２に隣接する反応ゾーンチャネル１３４の幅は、第１の縁部１３２から離れた幅よりも大きい。

反応ゾーンチャネル１３４は、反応ゾーンチャネル１３４内の少なくとも１つの電極ユニット１２０を覆い、少なくとも１つのガラクトースおよび導電性媒体を、化学反応を生成するために試料（血液など）とともに含有する、少なくとも１つの反応層１５０を有する。反応層１５０は、ガラクトース酵素測定領域および導電性媒体測定領域をさらに含み得る。

反応層１５０の組成物は、酵素、コエンザイム、導電性媒体、緩衝液、安定剤、および界面活性剤であり得るが、これらに限定されない。ここで、導電性媒体は、活性物質が試料と反応した後に生成された電子を受けるために使用され、電極ユニット１２０を介して電子をメーター２００に伝導し、フェロセン、フェロセニウム、メチレンブルー、トリス（アセトニトリル）三塩化ルテニウム、２，５－ジヒドロキシベンゾキノン、 フェナジンメト硫酸塩、テトラチアフルバレン、テトラ－シアノ－キノ－ジメタン、メチルビオロゲン、トルイジンブルー、５，６－ジアミノ－Ｌ、１０－フェナントロリン、［Ｍ（ｂｐｙ）３］２＋（Ｍ＝ＲｕまたはＯｓ；ＢＰＹ＝２，２’－ビピリジン）が含まれるが、これらに限定されない。さらに、導電性媒体は、金属イオン化合物であってもよく、ここで、金属イオン化合物は、電子と電荷の間の吸収作用の下で、金属イオンの方法で水溶液に溶解され得る、ＭｇＣ１_２、ＢｅＣ１_２、ＣａＣ１_２、ＳｒＣ１_２、ＢａＣ１_２、またはそれらの組み合わせを含むが、これらに限定されず、緩衝溶液は、トリス、トリス－ＨＣｌ、ＰＢＳ、ＭＥＳ’ＣＨＥＳ、ホウ酸塩、ユニバーサル緩衝液混合物（ＣＰＢ）、ＭＯＰＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、ＴＡＰＳＯ、リシン、ビシン、およびＴＡＰＳの中性およびアルカリ性緩衝溶液を含むが、これらに限定されず、安定剤は、キシリトール、マンニトール、ポリキシロース、アラボキシラン、マンナン、トレハロース、ＰＥＧ、ＰＶＡ、ＰＥＯ、メトセル、アガロース、ゾルゲル、コラーゲン、キトサン、ＢＳＡ、カゼイン、ネオタンパク質、アミノ酸、または任意の１つのそれらの組み合わせを含むが、これらに限定されず、界面活性剤は、カチオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、中性イオン性界面活性剤、および非イオン性界面活性剤を含むが、これらに限定されない。

本実施形態では、第２の絶縁スペーサー１４０は、第１の絶縁スペーサー１３０、電極ユニット１２０の一部、および絶縁基体１１０の一部を覆う。第２の絶縁スペーサー１４０が、第１の絶縁スペーサー１３０の反応ゾーンチャネル１３４を完全に覆うため、反応ゾーンチャネル１３４の上部、下部、左側、および右側の表面は、第２の絶縁スペーサー１４０、絶縁基体１１０、および反応ゾーンチャネル１３４の横にある第１の絶縁スペーサー１３０の３つの壁面によって囲まれて、五面体で囲まれたパイプを形成する。生物学的サンプリング開口部を介して試料が反応ゾーンチャネル１３４に入ったときに、反応ゾーンチャネル１３４内の生体試料の接着力は、生体試料の凝集力よりも大きくなり、その結果、生体試料は、持続的に前進することができる。

本実施形態では、第１の絶縁スペーサー１３０の第１の縁部１３２、第２の絶縁スペーサー１４０の第２の縁部１４２、および絶縁基体１１０の同じ側縁部は、全体として、すべて凸状円弧形状である。さらに、図５に示すように、絶縁基体１１０の縁部は、反応ゾーンチャネル１３４の前半分部分に対して内側に凹んでいる。本実施形態の試験ストリップ１００は、第２の絶縁スペーサー１４０の第２の縁部１４２の凸状先端と、反応ゾーンチャネル１３４の前半分部分に対する絶縁基体の凹状構造を利用して、生体試料の凝集力を減少させ、生体試料が毛細管現象の作用下で迅速に進むことを可能にする。さらに、本実施形態では、第２の絶縁スペーサー１４０は、第２の縁部１４２から離れた位置、すなわち、第１の絶縁スペーサー１３０の反応ゾーンチャネル１３４の端部に位置する通気孔１４４をさらに含む。生体試料が気泡によって遮断され、反応ゾーンチャネル１３４内で滑らかに前進することができない場合、通気孔１４４は、反応ゾーンチャネル１３４内の空気を放出するために使用される。

酵素タンパク質の不安定性によって、酵素は、アルカリ環境または乾燥状態では保存され得ない。したがって、酵素は、酸性アミン硫酸溶液中で非常に短い保存時間で貯蔵されるなど、酸性溶液中に一般的に保存される。酵素は、乾燥すると活性を失うため、酵素を固体状態で保存することができない。しかしながら、上記の配合物および構造を有する本発明における試験ストリップは、酵素を酸性環境中に保存することだけでなく、固化して中性またはアルカリ環境中に保存することを可能にする。さらに、配合物を有する酵素は、乾燥状態で活性を保持することができ、長期間保存され得る。したがって、本発明は、酵素が固化され、乾燥され、試験ストリップ上の酵素を乾燥するのに有効であり、なおも活性であることを確実にするために、以前の制限を破った。

３－１ 試験ストリップの検出可能なボリュームの検出
図６は、一般的なろ紙の生物学的ボリューム分析である。結果は、エラーが１５％未満であることを確実にするために、少なくとも３０μｌのろ紙の指先の生体試料ボリュームが使用され得ることを示している。しかしながら、本発明の試験ストリップは、少量の生体試料検出を達成することができる。実験方法は、３つの異なる濃度のガラクトース試料（それぞれ、２００μｇ／ｍｌ、９００μｇ／ｍｌ、および１５００μｇ／ｍｌである）を準備することであって、ガラクトース試料の各々が、データ値を検出するために、１、２、５、７、および１０μｌのボリュームである（図７を参照）、準備すること、ならびに次いで、平均（μｇ／ｍｌ）、標準偏差（Ｓ．Ｄ．）、および変動係数（％Ｃ．Ｖ．）を計算することであり、ここで、濃度２５０μｇ／ｍｌ以下のガラクトース試料の許容可能な平均Ｃ．Ｖ値は、２０％未満を必要とし、一方で、２５１～１５００μｇ／ｍｌの範囲のガラクトース試料の許容可能な平均Ｃ．Ｖは、１５％未満である必要がある。図７は、各ボリュームにおける２００μｇ／ｍｌの濃度を有するガラクトース試料の平均Ｃ．Ｖ値が、１５％未満である３．０３～８．１５％の範囲内にあり、一方で、各ボリュームにおける９００μｇ／ｍｌおよび１５００μｇ／ｍｌの濃度を有するガラクトース試料の平均Ｃ．Ｖ値が、両方とも、２０％未満である３．１４～６．５４％の範囲内にあることを示している。したがって、本発明の試験ストリップは、１μｌ以上のボリュームでガラクトースを検出することができる。

３－２ 試験ストリップの長期安定性の試験
厳しい環境下における試験ストリップの稼働状態を評価するために、４°Ｃの環境で保存日が推定される。５つの異なる濃度のガラクトース試料（それぞれ、２００μｇ／ｍｌ、５００μｇ／ｍｌ、１２００μｇ／ｍｌ、９００μｇ／ｍｌ、および１５００μｇ／ｍｌである）を準備し、それらをそれぞれ３０°Ｃ、４０°Ｃ、および４５°Ｃの３つのグループに分け、次いで、ガラクトースの読取値を１つずつ測定し、ここで、濃度２５０μｇ／ｍｌより低いガラクトースの許容可能な平均Ｃ．Ｖ値は、２０％未満であり、一方で２５１～１５００μｇ／ｍｌの範囲内のガラクトースの許容可能な平均Ｃ．Ｖ．値は、１５％未満を必要とし、相関係数（Ｒ）は、０．９より大きくなければならない。図８の結果によれば、本発明の試験ストリップは、４°Ｃで５４５．３２日間（最長）、３０°Ｃで３０日間、４０°Ｃで１１日間、および４５°Ｃで７日間保存され得る。本発明の試験ストリップに好ましい保存環境は、４°Ｃ～１０°Ｃである。ここで試験ストリップは、４°Ｃで１８０日間、および室温で６０日間、安定していることが分かる。本発明の試験ストリップは、加速試験により４°Ｃで保存されて最大５４５日間安定な状態を維持することができると推定される。

３－３ ヘマトクリット評価試験
試験ストリップが正常範囲内の試料の異なるヘマトクリット（ＨＣＴ）を検出することができるかどうかを評価するために、５つの異なる濃度のガラクトース生体試料（それぞれ、２００μｇ／ｍｌ、４５０μｇ／ｍｌ、８００μｇ／ｍｌ、ｌｌ５０μｇ／ｍｌ、および１５００μｇ／ｍｌ）を準備し、２０％、３０％、４０％、５０％、および６０％の各ＨＣＴ試料を準備した。次いで、ガラクトースの読取値を１つずつ測定した。その中で、２５０μｇ／ｍｌの濃度を下回るガラクトースの許容可能な平均Ｃ．Ｖ値は、２０％未満を必要とし、一方で、２５１～１５００μｇ／ｍｌの範囲のガラクトースの許容可能な平均Ｃ．Ｖ値は、１５％未満を必要とし、相関係数（Ｒ）は、０．９より大きくなければならない。図９に示すように、４５０～１５００μｇ／ｍｌの範囲のガラクトースの平均Ｃ．Ｖ値は、１５％未満であり、２００μｇ／ｍｌの濃度を有するガラクトースの平均Ｃ．Ｖ値は、２０％未満である。したがって、本発明の試験ストリップは、少なくとも２０％～６０％のＨＣＴ範囲の生体試料を検出することができる。

３－４ 再現性試験
ガラクトースの迅速な定量的検出システムの試験結果が再現可能であるかどうかを評価するために、以下の再現性試験を実施する：生体試料に添加するために、５つの異なる濃度のガラクトース試料（それぞれ、２００μｇ／ｍｌ、４５０μｇ／ｍｌ、９００μｇ／ｍｌ、１２００μｇ／ｍｌ、および１５００μｇ／ｍｌ）を準備し、ここで、各濃度を３つのメーターで試験し、各メーターは、試験を６回繰り返す。２５０μｇ／ｍｌの濃度を下回るガラクトースの許容可能な平均Ｃ．Ｖ値は、２０％未満を必要とし、２５１～１５００μｇ／ｍｌの範囲のガラクトースの許容可能な平均Ｃ．Ｖ値は、１５％未満を必要とする。図１０の結果から、５００～１５００μｇ／ｍｌの範囲内のガラクトース試料の平均Ｃ．Ｖ値は、１５％未満である７．１２～９．８３％の範囲内であり、２００μｇ／ｍｌの濃度を有するガラクトース試料の平均Ｃ．Ｖは、２０％未満である１４．５８％未満である。したがって、本発明のガラクトースの迅速な定量的検出システムの試験結果は、再現可能である。

前述の結果に照らして、本発明の試験ストリップは、最小でも生体試料の１μＬボリュームを検出することができる。前述の酵素および配合物により、試験ストリップは、室温で６０日間、４°Ｃで１８０日間保存され得る。それは、保存問題という障害を克服する。さらに、生体試料の最低ボリュームは１μＬであるため、試験結果の高い正確度を維持しながら、１回の試験当たりの大きな創傷によって引き起こされる不快感を回避する。本発明は、ユーザに、ガラクトースを検出するための好ましいツールを提供する。

実施形態４：検出システムを使用して、肝機能を決定する
４－１ 経口投与ガラクトースＯＧＳＰ結果と静脈内注射ガラクトースＧＳＰ結果との間の比較
図１１および図１２に示されるように、合計１２７人の対象（５６人の対象が正常な肝機能を有しており、７１人の対象が肝機能障害を有している）は、静脈内注射ガラクトースＧＳＰ結果と経口投与ガラクトースＯＧＳＰ結果との間の相関を決定するために試験される。Ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ １９９２，５２：２２２－２３１で示唆されるように、静脈内注射ガラクトースＧＳＰ試験に参加する対象は、３つの群に分けられ、ここで、２８０μｇ／ｍｌ未満のＧＳＰを有する対象は、肝機能正常群に定義され、２８０～４８０μｇ／ｍｌの範囲のＧＳＰを有する対象は、肝機能の中等度の障害の群に定義され、４８０μｇ／ｍｌを超えるＧＳＰを有する対象は、肝機能の重度の障害の群に定義される。図１０および図１１の結果から、経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、静脈内注射ガラクトースＧＳＰ値よりも高く、経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、肝機能の障害度とともに増加し、ここでＯＧＳＰおよびＧＳＰは、正に相関している。肝機能正常群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、最小値１８μｇ／ｍｌおよび最大値８８７μｇ／ｍｌで、３１８±２７μｇ／ｍｌ（平均±標準誤差）の範囲内である。肝機能の軽度または中等度の障害群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、最小値２９４μｇ／ｍｌおよび最大値１２８２μｇ／ｍｌを有する５９０±４０μｇ／ｍｌの範囲内である。肝機能の重度の障害群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、最小値２９３μｇ／ｍｌおよび最大値１４９９μｇ／ｍｌを有する７７７±４８μｇ／ｍｌの範囲内である。表５は、経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値が肝機能の障害度とともに増加する対象の３つの群における静脈内注射ガラクトースＧＳＰ結果および経口投与ガラクトースＯＧＳＰ結果を示している。特に、経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、静脈内注射ガラクトースＧＳＰ値よりも高い。図１１、図１２、および表５から、肝機能正常群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、主に２６４～３７２μｇ／ｍｌ（平均±２＊標準誤差）の範囲内であり、肝機能の軽度または中等度の障害群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、主に５１０～６７０μｇ／ｍｌの範囲内にあると決定することができる。肝機能の重度の障害群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、主に６８１～８７３μｇ／ｍｌ（平均±２＊標準誤差）の範囲内にある。個体差により対象の結果が変動したとしても、肝機能正常群の対象の経口投与ガラクトースＯＧＳＰ値は、概して６７０μｇ／ｍｌを超えず、肝機能障害群の対象のＯＧＳＰ値は、概して３７０μｇ／ｍｌよりも大きい。したがって、ＯＧＳＰ値が３７０μｇ／ｍｌよりも大きい対象では、さらなる肝機能試験を実施すべきである。静脈内注射に加えて、同様の結果が、他の注射または他の投与方法によって得られた。

実施形態５：新生児ガラクトース血症スクリーニング
ガラクトース血症は、患者に十分なガラクトース砕屑酵素がなく、その結果、ガラクトースが体内に蓄積するという事実に起因する遺伝性疾患である。これは、眠気、嘔吐、下痢、正常な成長の機能不全、黄斑などの症状をもたらす。新生のスクリーニングを通して、乳児の母乳に有害な影響がないことを確認することができる。本発明のガラクトースメーターは、新生児ガラクトース血症のスクリーニングに使用され得る。試験新生児ガラクトース血症スクリーニングは、タンパク質またはラクトースの消化に依存しないが、幼児の最初の生体試料を採用しているため、スクリーニング前にガラクトース組成物を採取する必要はなく、生体試料は、爪先からサンプリングされる。生体試料のガラクトース値がｌ００μｇ／ｍｌよりも大きいことが検出された場合、これは、新生における新生児のガラクトース血症のリスクを表し、さらなる検査が必要である。

実施形態６：半自動アーム動作分析
図１３は、ガラクトース単一点方法で半自動ロボットアームを使用して実施されるガラクトースの迅速な定量的検出システムの従来のろ紙酵素分析と酵素分析との間の比較を示している。分析は、静脈内注射ガラクトースＧＳＰおよび経口投与ガラクトースＯＧＳＰに分けられ、ここで、静脈内注射ガラクトースＧＳＰのガラクトースの迅速な定量的検出システムの従来のろ紙酵素分析および酵素分析の相関係数は、０．９６３であり、経口投与ガラクトースＯＧＳＰの相関係数は、０．９２７である。結論として、静脈内注射ガラクトースＧＳＰおよび経口投与ガラクトースＯＧＳＰの両方が、０．９を超える高い相関係数を有する。したがって、本発明のガラクトースの迅速な検出システムは、大規模生産を介して生産され得る。

要約すると、本発明によって提供されるガラクトースの迅速な定量的検出システムは、正確度および精度によって既に試験されており、肝機能を検出し、ガラクトース血症に対する新生児スクリーニングなどのガラクトース関連疾患を検査するために使用され得、医療スタッフまたは患者の身体状態を判定して、さらなる検査が必要かどうかを決定することができる。

Claims (20)

1. ガラクトース脱水素酵素である酵素と、
   前記酵素の安定性を維持するための安定剤であって、前記安定剤がトレハロースを含み、前記ガラクトース脱水素酵素が固化され、乾燥され、活性のままである、該安定剤と、
   絶縁基体と、
   前記絶縁基体上に構成された電極ユニットと、
   前記電極ユニットの一部を覆い、第１の絶縁スペーサーの第１の縁部に設けられた反応ゾーンチャネルを含む該第１の絶縁スペーサーであって、前記電極ユニットの別の部分が、前記反応ゾーンチャネルに曝露されている、該第１の絶縁スペーサーと、
   第２の縁部を有する第２の絶縁スペーサーであって、前記第２の絶縁スペーサーが前記第１の絶縁スペーサーの前記反応ゾーンチャネルを覆い、前記第１の絶縁スペーサーの前記第１の縁部、前記第２の絶縁スペーサーの前記第２の縁部、および前記絶縁基体の同じ側縁部が、すべて凸状円弧形状であり、前記絶縁基体の前記側縁部が、前記反応ゾーンチャネルの前半部分に対して内側に凹んでおり、前記反応ゾーンチャネルが、少なくとも反応層を含み、前記反応層が、電気化学反応によって生体試料と反応するための少なくとも前記酵素と導電性媒体とを含む前記反応ゾーンチャネル内の前記電極ユニットによって覆われている、第２の絶縁スペーサーと、を含み、
   前記反応ゾーンチャネルの前記前半部分に対して、前記第２の絶縁スペーサーの前記第２の縁部の前記凸状円弧形状と前記絶縁基体の凹状構造を利用して、前記生体試料の凝集力を減少させ、および毛細管現象の作用下で前記生体試料を前進させることができ、
   前記酵素がガラクトースを酸化、還元、分解または代謝し、
   前記酵素が前記生体試料と反応して電気化学情報を生成する、
   試験ストリップ。
2. 前記絶縁基体が、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、ガラス繊維（ＦＲ－４）、ポリエステルスルホン、ベークライトプレート、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリエチレン（ＰＥ）、ポリスチレン（ＰＳ）、ガラスプレート、セラミック、およびそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される、
   請求項１に記載の試験ストリップ。
3. 前記電極ユニットが、パラジウム、プラチナ、金コロイド、チタン、炭素、銀、銅、金、および銀からなる群から選択される、
   請求項１に記載の試験ストリップ。
4. 前記反応層が、コエンザイム、緩衝液、および界面活性剤をさらに含む、
   請求項１に記載の試験ストリップ。
5. 前記導電性媒体が、フェロセン、フェロセニウム、メチレンブルー、トリス（アセトニトリル）ルテニウムトリクロリド、ジヒドロキシベンゾキノン、フェナジンメト硫酸塩、テトラチアフルバレン、テトラシアノキノジメタン、メチルビオロゲン、トルイジンブルー、５，６－ジアミノ－１，１０フェナントロリン、および２，２’－ビピリジンからなる群から選択される、
   請求項１に記載の試験ストリップ。
6. 前記導電性媒体が、金属イオン化合物をさらに含み、前記金属イオン化合物が、ＭｇＣ１_２、ＢｅＣ１_２、ＣａＣ１_２、ＳｒＣ１_２、ＢａＣ１_２、およびそれらの任意の１つの組み合わせからなる群から選択される、
   請求項１に記載の試験ストリップ。
7. 前記緩衝液が、Ｔｒｉｓ、Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ＰＢＳ、ＭＥＳ、ＣＨＥＳ、ホウ酸塩、ＣＰＢ、ＭＯＰＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、ＴＡＰＳＯ、トリシン、ビシン、およびＴＡＰＳからなる群から選択される、
   請求項４に記載の試験ストリップ。
8. 前記安定剤が、キシリトール、マンニトール、ポリキシロース、アラボキシラン、マンナン、トレハロース、ＰＥＧ、ＰＶＡ、ＰＥＯ、アガロース、ゾル－ゲル、コラーゲン、キトサン、ＢＳＡ、カゼイン、ネオタンパク質、アミノ酸、およびそれらの任意の１つの組み合わせからなる群から選択される、
   請求項４に記載の試験ストリップ。
9. 前記界面活性剤が、カチオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、中性イオン界面活性剤、および非イオン性界面活性剤からなる群から選択される、
   請求項４に記載の試験ストリップ。
10. 前記試験ストリップ中のガラクトースの試験範囲が、５０～２０００μｇ／ｍｌである、
    請求項１に記載の試験ストリップ。
11. 前記酵素が、中性、酸性またはアルカリ性環境で保存される、
    請求項１に記載の試験ストリップ。
12. ガラクトースの迅速な定量的検出システムであって、
    請求項１に記載の試験ストリップと、
    体内に入り、肝臓による代謝後に生体試料の一部を構成する、ガラクトース、緩衝剤、および０．００１％～９９％の酸化防止剤を含む、溶液状のガラクトース組成物と、
    メーターとを含み、
    前記メーターが、
    信号を提供するための電源ユニットと、
    前記電源ユニットによって提供される前記信号を受信し、前記信号を前記試験ストリップに送信するためのコネクタであって、前記電気化学情報と反応する前記信号が、対応する応答信号を生成し、前記コネクタが、前記対応する応答信号を前記メーターに送信する、コネクタと、
    前記対応する応答信号を計算するための計算ユニットと、
    前記計算ユニットから前記対応する応答信号を受信し、前記計算ユニットによって計算された前記対応する応答信号を、デジタル反応信号に変換するためのＡ／Ｄコンバータと、
    前記デジタル反応信号を処理するためのプロセッサと、
    前記プロセッサによって処理された前記デジタル反応信号を表示するための表示装置と、
    前記プロセッサによって処理された前記デジタル反応信号を受信するためのデジタル端末と、を含む、
    ガラクトースの迅速な定量的検出システム。
13. 前記緩衝剤が、アスコルビン酸緩衝剤、クエン酸塩緩衝剤、リン酸塩緩衝剤、酢酸塩緩衝剤、炭酸塩緩衝剤、およびトリエタノールアミン緩衝剤からなる群から選択される、
    請求項１２に記載のシステム。
14. 前記酸化防止剤が、ビタミンＣ、亜硫酸水素ナトリウム、ビタミンＡ、ビタミンＥ、フラボノイド、ポリフェノール、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＤＴＰＡ）、およびＮＴＡ－ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）からなる群から選択される、
    請求項１２に記載のシステム。
15. 前記ガラクトースが、Ｄ－（＋）－ガラクトース、Ｌ－（－）－ガラクトース、安定同位体ガラクトース、または環状ガラクトースを含む、
    請求項１２に記載のシステム。
16. 前記ガラクトース組成物が、経口投与、注射、スプレー、吸入、バッカル、直腸、座薬、または他の医学的に許容可能な方法によって投与されるものである、
    請求項１２に記載のシステム。
17. 前記ガラクトース組成物が、前記生体試料中の前記ガラクトースの含有量を測定する前に、経口投与を介して投与されるものである、
    請求項１６に記載のシステム。
18. 前記ガラクトース組成物が、前記生体試料中の前記ガラクトースの含有量を測定する前に、注射を介して投与されるものである、
    請求項１６に記載のシステム。
19. 対象内で請求項１２に記載のシステムを用いてガラクトースを定量的に検出する方法であって、
    （１）生物学的サンプリング装置を使用して、ガラクトース組成物を投与された前記対象から取得した前記生体試料が、前記試験ストリップによって吸収されることを可能にすることと、
    （２）前記試験ストリップが、前記メーターに挿入されることと、
    （３）ユーザまたは専門の医療スタッフによって、前記対象のガラクトース濃度を示す、前記プロセッサによって処理された前記デジタル反応信号の値を読み取ることと、を含む、
    方法。
20. 前記方法が、前記ユーザまたは前記専門の医療スタッフによって操作される、
    請求項１９に記載の方法。