JP7633728B2 - トリアゾール系誘導体及びその製造方法並びに使用 - Google Patents
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Description
構造が式Iで表される、トリアゾール系誘導体又はその薬学的に許容される塩である。
Rは、水酸基、C1-6アルキル基、C1-6アルコキシ基又は-C(OR1)(=NR2)から選ばれ、
R1及びR2は、各々独立に水素、C1-6アルキル基、ハロゲン化C1-6アルキル基又はC1-6アルコキシ基である。)
R1及びR2は、各々独立に水素又はC1-4アルキル基である。
本発明の化合物は、上記に全体的に記述されるものを含み、ここに記載するクラス、サブクラス及び種類により更に説明する。ここで使用されるものは、別途説明しない限り、下記の定義を使用するものとする。本発明の目的を実現するために、元素周期表、CASバージョン、化学と物理マニュアル(Handbook of Chemistry and Physics)第75版に基づいてこれらの化学元素を判定する。
一.化合物の合成
本発明の化合物は下記の過程で製造される。
250mLナスフラスコに3,5-ビス(トリフルオロメチル)シアノフェニル1(10g、41.8mmol)を入れて、DMF(50mL)溶液に溶解させ、NaSH(7.8g、83.7mmol)及びMgCl2(8.5g、41.8mmol)をこの順で入れてから、室温で3h攪拌し続けながら反応させた。完全反応となるようにTLCにより監視した後、反応液を氷水混合溶液(500mL)に注いだ。酢酸エチル(100mL×3)で抽出し、有機相を合併して飽和塩化ナトリウム溶液(100mL×1)で洗浄し、無水Na2SO4で乾燥してろ過し、溶媒を減圧条件で蒸発によって除去して、粗製品3,5-ビス(トリフルオロメチル)ベンゼンスルホンアミド(10.9g、収率95.1%、純度84%)を得た。黄色油状液体である。MS(ESI)m/z 274.35 [M+H]+。次のステップに直接使用した。
250mLナスフラスコで、事前に得た(Z)-3-(3-(3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル)-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イル)アクリル酸エチル3(7.9g、20.6mmol)をジクロロメタン(40mL)に溶解させた。30min内で液体臭素(6.6g、41.2mmol)をゆっくりと滴下してから、室温で8h攪拌し続けながら反応させた。完全反応となるようにTLCにより監視した後、反応液を氷水混合溶液(100mL)に注いだ。ジクロロメタン(50mL×3)で抽出し、有機相を合併して飽和亜硫酸水素ナトリウム溶液(100mL×3)及び飽和塩化ナトリウム溶液(50mL×1)で洗浄し、無水Na2SO4で乾燥してろ過し、溶媒を減圧条件で蒸発によって除去した。カラムクロマトグラフィ(PE/ EtOAc=50:1)により分離し精製して、3-(3-(3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル)-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イル)-2,3-ジブロモアクリル酸イソプロピル(10.3g、収率92.7%、純度95%)を得た。白色固体である。MS (ESI)m/z 551.97 [M+H]+。
1つの25ml三つ口フラスコを取り、重要な中間体4(200mg、0.44mmol)及び5-ピリミジンボロン酸(81.9mg、0.66mmol)をそれぞれ量り取り、ジオキサン(5mL)と水(1mL)の混合溶液に溶解させた。その後、酢酸ナトリウム(86.4mg、0.88mmol)を量り取って反応液に入れ、窒素ガスで3回置換した後に室温で攪拌しながら反応させた。その後、反応液にPd(PPh3)Cl2(30.9mg、0.04mmol)を入れて、再び窒素ガスで3回置換した後に80℃で一晩攪拌しながら反応させた。完全反応となるようにTLCにより監視した後、室温となるまで反応させて、反応液に純水(50mL)を入れ、酢酸エチル(15mL×3)で抽出し、有機相を合併して飽和塩化ナトリウム溶液(20mL×1)で洗浄し、無水Na2SO4で乾燥してろ過し、溶媒を真空条件で蒸発によって除去して、化合物の粗製品を得た。カラムクロマトグラフィ(PE/EtOAc=8:1)により分離し精製して、(E)-3-(3-(3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル)-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イル)-2-(ピリミジン-5-イル)アクリル酸エチル5(125.3mg、収率62.3%、純度93%)を得た。白色固体である。PNMR (400 MHz, CDCl3) δ 9.28 (s, 1H, Pyrimidine), 8.89 (s, 2H, Pyrimidine), 8.72 (s, 1H, NCH), 8.59 (s, 2H, Ph), 7.96 (s, 1H, Ph), 7.40 (s, 1H, COCCH), 4.85 (m, 1H, CH), 1.36 (t, J=7.2 Hz, 6H, Me). MS (ESI) m/z 472.17 [M+H]+.
25mLナスフラスコで5(125.3mg、0.27mmol)をテトラヒドロフラン(3mL)に溶解させた。氷浴で10min攪拌した後、反応液にLiOH H2O(45.3mg、1.08mmol)の水(1mL)溶液を滴下した。30min攪拌し続けた後、室温で一晩攪拌しながら反応させた。完全反応となるようにTLCにより監視した後、氷水混合溶液(10mL)を反応液に注いで、溶液のpH値が2~3となるように4N塩酸で調整した。酢酸エチル(5mL×3)で抽出し、有機相を合併して飽和塩化ナトリウム溶液(20mL×1)で洗浄し、無水Na2SO4で乾燥してろ過し、溶媒を減圧条件で蒸発によって除去した。比較的に純粋な化合物(E)-3-(3-(3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル)-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イル)-2-(ピリミジン-5-イル)アクリル酸(99.4mg、収率85.8%、純度89%)を得た。白色固体である。次のステップに直接使用した。MS (ESI) m/z 427.92 [M-H]-。
25mLナスフラスコで6(125.3mg、0.27mmol)をジクロロエタン(3mL)に溶解させた。氷浴で10min攪拌した後、反応液にEDCI(20.3mg、1.08mmol)及びHOBT(70.5mg、1.5mmol)を入れた。30min攪拌し続けた後、室温でDIPEA(54.5mg、3.0mmol)及びメトキシヒドロキシルアミン塩酸塩(23.4mg、1.0mmol)を滴下して、一晩攪拌しながら反応させた。完全反応となるようにTLCにより監視した後、氷水混合溶液(10mL)を反応液に注いだ。酢酸エチル(5mL×3)で抽出し、有機相を合併して飽和塩化ナトリウム溶液(20mL×1)で洗浄し、無水Na2SO4で乾燥してろ過し、溶媒を減圧条件で蒸発によって除去した。化合物(E)-3-(3-(3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル)-1H-1,2,4-トリアゾール-1-イル)-N-メトキシ-2-(ピリミジン-5-イル)アクリルアミド(35.4mg、収率40%、純度89%)を得た。白色固体である。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 8.78 (d, J = 5.9 Hz, 2H, Pyridine), 8.40 (s, 2H, Ph), 8.33 (s, 1H, NCH), 7.92 (s, 1H, Ph), 7.87 (s, 1H, COCCH), 7.28 (d, J = 1.6 Hz, 2H, Pyridine), 4.34 (t, J = 7.1Hz, 3H, Me).MS (ESI) m/z 459.10 [M+H]+.
1. 細胞の凍結保存
(1) 細胞を収穫した後、常温で1000rpmで5min遠心分離し、PBSで洗浄した。
(2) 7%DMSOと10%ウシ胎児血清を含む1640培地で再懸濁させた。
(3) 凍結保存管に分注し、細胞凍結保存ボックスに置き、-80℃で一晩処理してから、液体窒素で保存した。
(1) 凍結保存管を液体窒素タンクから取り出し、37℃温水に置き、ゆっくりと振動させて、細胞液を解凍させる。
(2) 無菌遠心分離管に移動し、10%ウシ胎児血清を含む1640培養液を入れて、ゆっくりと懸濁液となるように吹き込む。
(3) 室温で1000rpmで5min遠心分離し、上清を捨て、10%ウシ胎児血清を含む1640培養液を入れて、ゆっくりと懸濁液となるように吹き込む。
(4) 培養瓶に移動し、37℃、5%CO2、飽和湿度のインキュベータで1~2日間培養してから液体を交換した。
元の培地を捨て、無菌PBSを入れて、1回洗浄し、1mLの0.25%のパンクレアチンを入れて1分間ほどインキュベートした。顕微鏡で観察し、細胞の大半が丸くなった後に、パンクレアチンをきれいに吸い取り、新鮮な培地を入れて消化を終了させ、細胞懸濁液となるように細胞を均一に吹き込み、インキュベータに移動してから培養し続けた。
(1) 対数増殖期のRPMI8226細胞を1000個/wellで384ウェルプレートに入れて、体積18μL/wellで、37℃、5%CO2で24hインキュベートした。
(2) 保存濃度10mMの対象化合物をDMSOで10倍希釈させ、更に血清を含まない1640培地で100倍希釈させて、1%DMSOを含む10μM作業濃度となった。その後、2倍勾配で希釈させ、1%DMSOの無血清1640培地で10個の濃度で希釈させ、10番目濃度点が溶媒対照群(薬物無し)である。希釈された化合物を吸い取り、1ウェルにつき2μLでプレーティングされた細胞プレートに入れて、化合物を得た。最終濃度が1000nMであり、2倍勾配で希釈し、10個の濃度勾配で、1個の濃度で4つ繰り返して設定する。1%DMSOを溶媒対照とし、KPT-8602を陽性対照とする。
(3) 37℃で72hインキュベートしてから、1ウェルにつき10μLのCell-Titer測定用試薬を入れて、更にインキュベータで10minインキュベートした。
(4) 均一に振動させてから、マイクロプレートリーダーでCell-Titerプログラムを稼動させて測定し、GraphPad Prism 5でinhibition%とIC50値(μM)を計算した。
25匹のBALB/Cマウスをランダムで5群に分ける。溶媒対照群(Control)、陽性対照KPT-8602(30mg/kg、1日1回)群、KPT-8602(60mg/kg、1日1回)群、化合物I(30mg/kg、1日1回)群、化合物I(60mg/kg、1日1回)群である。各群は全て5匹である。対応する濃度の受検物、KPT-8602及び化合物Iを3mL/kgの投与量で各群に胃内投与し、毎日連続投与し、計21日間投与した。
10%スルホブチル-β-シクロデキストリンの調製:
5.0gのスルホブチル-β-シクロデキストリン粉末を量り取り、フラスコに入れ、ピペッターで50mLのクエン酸緩衝液を吸い取り、フラスコに入れて、溶解させてから容器に移動した。
24mgの化合物Iを量り取り、1.6mLの20%ポリエチレングリコール水溶液を入れて、溶解させてから更に10%スルホブチル-β-シクロデキストリン水溶液6.4mLを入れて、3mg/mLの化合物Iの受検物溶液を得た。
24mgの化合物KPT-8602を量り取り、1.6mLの20%ポリエチレングリコール水溶液を入れて、溶解させてから更に10%スルホブチル-β-シクロデキストリン水溶液6.4mLを入れて、3mg/mLのKPT-8602の受検物溶液を得た。
図に示されるように、KPT-8602の60mg/kg群は7日間目に2匹のマウスが死亡し、10日間目に全部死亡し、KPT-8602の30mg/kg群は体重が顕著に減少した。化合物Iの30mg/kg及び化合物Iの60mg/kg群は21日間後の体重がブランクに相当し、良好な安全性を示している。
Claims (9)
- 前記Rは、水酸基、C1-4アルコキシ基又は-C(OR1)(=NR2)から選ばれ、
R1及びR2は、各々独立に水素又はC1-4アルキル基である、請求項1に記載のトリアゾール系誘導体又はその薬学的に許容される塩。 - 請求項1~3の何れか1項に記載のトリアゾール系誘導体又はその薬学的に許容される塩と、薬学的に許容される担体と、を含むことを特徴とする、CRM1活性に関する障害を治療するための医薬組成物であって、
前記CRM1活性に関する障害は、増殖性障害、がん、炎症性障害、自己免疫性障害、ウイルス感染、眼科障害、神経変性障害、異常組織成長障害、食物摂取に関する障害、アレルギー、又は呼吸障害であることを特徴とする、医薬組成物。 - 前記CRM1活性に関する障害はがんであることを特徴とする、請求項4に記載の医薬組成物。
- 前記がんは多発性骨髄腫であることを特徴とする、請求項5に記載の医薬組成物。
- 請求項1~3の何れか1項に記載のトリアゾール系誘導体又はその薬学的に許容される塩の、CRM1活性に関する障害を治療するための薬物の製造における使用であって、
前記CRM1活性に関する障害は、増殖性障害、がん、炎症性障害、自己免疫性障害、ウイルス感染、眼科障害、神経変性障害、異常組織成長障害、食物摂取に関する障害、アレルギー、又は呼吸障害であることを特徴とする、使用。 - 前記CRM1活性に関する障害はがんであることを特徴とする、請求項7に記載の使用。
- 前記がんは多発性骨髄腫であることを特徴とする、請求項8に記載の使用。
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