JP7664366B2 - グリコシル化ペプチドの検出及び定量 - Google Patents

Description

発明の分野
本発明は、バイオ医薬品に関するものであり、治療用抗体及びそのフラグメントなどのタンパク質のインビボでの翻訳後グリコシル化の検出及び定量化に関する。

背景
治療用モノクローナル抗体（ｍＡｂ）は、翻訳後修飾（ＰＴＭ）から生じる変種を含む、多くの生成物の変種を有する哺乳動物細胞で産生される不均一な分子である。Ｎ－結合型グリコシル化は、治療用抗体の主要なＰＴＭである。医薬品の品質を定義し、ロット間の一貫性を示し、製造プロセスの制御を確実にするために、Ｎ結合型グリカン構造の特徴付け及び個々のグリコフォームの定量化が、規制当局によって要求される。従来、抗体内のＮ結合型グリカンは、抗体からグリカンを酵素的に遊離させてから蛍光試薬で標識することによって、定量化される。あるいは、グリコシル化は、抗体のトリプシン消化により生成された糖ペプチドを分析することによって、ペプチドレベルで特徴付けされ得る。ただし、不均一なグリコフォームを持つ糖ペプチドは、ペプチドマッピングに伝統的に使用されている逆相ベースの液体クロマトグラフィー（ＲＰＬＣ）では十分に分離されないことが多い。さらに、オンライン質量分析（ＭＳ）によって誘発される糖ペプチドの糖鎖のインソースフラグメンテーションは、切断されたグリコフォームアーティファクトを生成し得、これによってＭＳを使用したさまざまなグリコフォームの相対存在量の正確な定量が損なわれる。

一態様では、本発明は、糖ペプチドを精製及び／または分離する方法であって、（ａ）糖ペプチドが親水性濃縮基材に結合することを可能にする条件下で、糖ペプチドを含む試料を親水性濃縮基材に接触させること；（ｂ）当該親水性濃縮基材を洗浄して、当該親水性濃縮基材から非糖ペプチド混入物質を除去すること；ならびに（ｃ）ギ酸アンモニウム及びアセトニトリル（ＡＣＮ）の水溶液を使用して、当該親水性濃縮基材から糖ペプチドを溶出させ、それによって濃縮糖ペプチド試料を作製すること、を含む方法を提供する。必要に応じて、この方法は、濃縮糖ペプチド試料を分離カラムに適用すること、及びこの分離カラムから糖ペプチドを溶出させることを含む。

いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、固相抽出（ＳＰＥ）クロマトグラフィー基材を含む。

いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、シリカベースのアミノプロピル吸着剤材料を含む。

いくつかの実施形態では、ギ酸アンモニウム及びＡＣＮの水溶液は、水中に約１００～４００ｍＭのギ酸アンモニウム及び約２．５％～約１０％のＡＣＮを含む。

いくつかの実施形態では、ギ酸アンモニウムＡＣＮ溶液は、水中に２００ｍＭのギ酸アンモニウム及び５％のＡＣＮを含む。

いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、ギ酸及びＡＣＮ洗浄溶液で洗浄され、この溶液は、０．５体積％～約５体積％のギ酸及び約８５体積％～約９５体積％のＡＣＮを含み、残りの水は、非糖ペプチド混入物質を除去するためである。

いくつかの実施形態では、ギ酸及びＡＣＮ洗浄溶液は、１体積％のギ酸、９体積％のＨ_２Ｏ、９０体積％のＡＣＮを含む。

いくつかの実施形態では、分離カラムは、親水性相互作用（ＨＩＬＩＣ）カラムを含む。

いくつかの実施形態では、分離カラムから糖ペプチドを溶出させることは、糖ペプチドを１つ以上の画分に分離することをさらに含む。

いくつかの実施形態では、糖ペプチドを１つ以上の画分に分離することは、分離カラムに移動相勾配を適用することを含む。

いくつかの実施形態では、移動相勾配は、１０ｍＭギ酸アンモニウム（ｐＨ４．５）から９０％ＡＣＮ（１０ｍＭギ酸アンモニウム、ｐＨ４．５）までである。

いくつかの実施形態では、移動相勾配は、Ｈ_２Ｏ中の０．０５％ＴＦＡまたはＡＣＮ中の０．０４５％ＴＦＡである。

いくつかの実施形態では、この方法は、１つ以上の画分に存在する糖ペプチドを同定することをさらに含む。

いくつかの実施形態では、この方法は、１つ以上の画分に存在する糖ペプチドに結合しているグリカンを同定することをさらに含む。

いくつかの実施形態では、このグリカンは、Ｎ－グリカンを含む。

いくつかの実施形態では、この糖ペプチドは、モノクローナル抗体から得られる。

いくつかの実施形態では、モノクローナル抗体は、アイソタイプＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、または混合アイソタイプのものである。

いくつかの実施形態では、この方法は、モノクローナル抗体をプロテアーゼで消化することをさらに含む。

いくつかの実施形態では、プロテアーゼは、トリプシンを含む。

いくつかの実施形態では、この方法は、溶出された糖ペプチドに対して質量分光分析を実施することをさらに含む。

いくつかの実施形態では、この方法は、溶出された糖ペプチドの糖ペプチドレベルでのグリコシル化プロファイリングをさらに含む。

いくつかの実施形態では、この方法は、親水性濃縮基材をアセトニトリル（ＡＣＮ）の水溶液で予備洗浄することをさらに含む。

いくつかの実施形態では、この方法は、親水性濃縮基材との接触の前に、ＡＣＮの水溶液中に糖ペプチドを含む試料を希釈することをさらに含む。
[本発明１００１]
糖ペプチドを分離する方法であって、
糖ペプチドが親水性濃縮基材に結合することを可能にする条件下で、前記糖ペプチドを含む試料を前記親水性濃縮基材に接触させる工程；
前記親水性濃縮基材を洗浄して、前記親水性濃縮基材から非糖ペプチド混入物質を除去する工程；
ギ酸アンモニウム及びアセトニトリル（ＡＣＮ）の水溶液を用いて前記親水性濃縮基材から前記糖ペプチドを溶出させて、濃縮糖ペプチド試料を作製する工程；
前記濃縮糖ペプチド試料を分離カラムに適用する工程；ならびに
前記分離カラムから前記糖ペプチドを溶出させる工程であって、それによって前記試料中の糖ペプチドを分離する、溶出させる工程
を含む、前記方法。
[本発明１００２]
前記親水性濃縮基材が固相抽出（ＳＰＥ）クロマトグラフィー基材を含む、本発明１００１の方法。
[本発明１００３]
前記親水性濃縮基材がシリカベースのアミノプロピル吸着剤材料を含む、本発明１００１または本発明１００２の方法。
[本発明１００４]
前記ギ酸アンモニウム及びＡＣＮの水溶液が、水中に約１００～４００ｍＭのギ酸アンモニウム及び約２．５％～約１０％のＡＣＮを含む、本発明１００１～１００３のいずれかの方法。
[本発明１００５]
前記ギ酸アンモニウムＡＣＮ溶液が、水中に約２００ｍＭのギ酸アンモニウム及び約５％のＡＣＮを含む、本発明１００４の方法。
[本発明１００６]
前記親水性濃縮基材を、約０．５体積％～約５体積％のギ酸、及び約８５体積％～約９５％のＡＣＮ、残りは水を含む、ギ酸及びＡＣＮの洗浄溶液で洗浄して、非糖ペプチド混入物質を除去する、本発明１００１～１００５のいずれかの方法。
[本発明１００７]
前記ギ酸及びＡＣＮの洗浄溶液が、約１体積％のギ酸、約９％のＨ_２Ｏ、及び約９０体積％のＡＣＮを含む、本発明１００６の方法。
[本発明１００８]
前記分離カラムが親水性相互作用（ＨＩＬＩＣ）カラムを含む、本発明１００１～１００７のいずれかの方法。
[本発明１００９]
前記分離カラムから前記糖ペプチドを溶出させる工程が、前記糖ペプチドを１つ以上の画分に分離することをさらに含む、本発明１００１～１００８のいずれかの方法。
[本発明１０１０]
前記糖ペプチドを１つ以上の画分に分離することが、前記分離カラムに移動相勾配を適用することを含む、本発明１００９～１０１１のいずれかの方法。
[本発明１０１１]
前記移動相勾配が、約１０ｍＭのギ酸アンモニウム（ｐＨ４．５）から約９０％のＡＣＮと１０ｍＭのギ酸アンモニウム（ｐＨ４．５）までを含む、本発明１０１０の方法。
[本発明１０１２]
前記移動相勾配が、Ｈ_２Ｏ中の約０．０５％のＴＦＡまたはＡＣＮ中の約０．０４５％のＴＦＡを含む、本発明１０１０の方法。
[本発明１０１３]
前記１つ以上の画分に存在する前記糖ペプチドを同定する工程をさらに含む、本発明１００９～１０１２のいずれかの方法。
[本発明１０１４]
前記１つ以上の画分に存在する前記糖ペプチドに結合しているグリカンを同定する工程をさらに含む、本発明１００９～１０１３のいずれかの方法。
[本発明１０１５]
前記グリカンがＮ－グリカンを含む、本発明１０１４の方法。
[本発明１０１６]
前記糖ペプチドがモノクローナル抗体から得られる、本発明１００９～１０１５のいずれかの方法。
[本発明１０１７]
前記モノクローナル抗体が、アイソタイプＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、または混合アイソタイプである、本発明１０１６の方法。
[本発明１０１８]
前記モノクローナル抗体をプロテアーゼで消化する工程をさらに含む、本発明１０１６または１０１７の方法。
[本発明１０１９]
前記プロテアーゼがトリプシンを含む、本発明１０１８の方法。
[本発明１０２０]
溶出された前記糖ペプチドに対して質量分析を実施する工程をさらに含む、本発明１００１～１０１９のいずれかの方法。
[本発明１０２１]
溶出された前記糖ペプチドの糖ペプチドレベルでのグリコシル化プロファイリングをさらに含む、本発明１００１～１０２０のいずれかの方法。
[本発明１０２２]
前記親水性濃縮基材をアセトニトリル（ＡＣＮ）の水溶液で予備洗浄する工程をさらに含む、本発明１００１～１０２１のいずれかの方法。
[本発明１０２３]
前記親水性濃縮基材との接触の前に、ＡＣＮの水溶液中に糖ペプチドを含む前記試料を希釈する工程をさらに含む、本発明１００１～１０２２のいずれかの方法。

質量分析（ＬＣ／ＭＳ）と組み合わせた液体クロマトグラフィーによる糖ペプチド定量の現在の標準的な方法を示す概略ワークフロー図を示している。 遊離されたグリカンの定量と比較した、図１のワークフローに示される糖ペプチド定量の方法の結果を示す表を示す。すなわち、１つは糖ペプチドの検出に基づいており、もう１つは遊離されたグリカンの検出に基づいている。 糖ペプチドによるグリコフォーム定量化と遊離グリカン法との間の不一致（図２を参照）が、糖ペプチド分析におけるＭＳによる糖骨格のインソースフラグメンテーションに起因する可能性が高く、切断されたグリカンアーティファクト（すなわち、Ｇ０Ｆ－ＧｌｃＮＡｃ及びＧ１Ｆ－ＧｌｃＮＡｃ）の増加、ならびに主要なグリカン（すなわち、Ｇ０Ｆ及びＧ１Ｆ）の減少を引き起こすことを実証している質量スペクトルを示す。遊離グリカン法は、ＭＳシグナルではなく、遊離されたグリカンに結合した標識の蛍光によってグリコフォームを定量化する。 本明細書において開示される糖ペプチド定量化方法のワークフロー図を示す。 ２つの異なる方法によってトリプシン消化物から得られたｍＡｂ１ペプチドの分離の結果を示している、ｍＡｂ１ペプチドの一連のＨＩＬＩＣ－ＵＶクロマトグラムを示す。 図５に示されるトレースの糖ペプチド部分の拡大図を示しており、これによって、２番の方法がより良好な分離、より鋭いピーク、及びより大きなＳ／Ｎ比を有することが実証される。 糖ペプチドにズームインするｍＡｂ１糖ペプチドの一連のＨＩＬＩＣ－ＴＩＣクロマトグラムを示す。示されているように、２番の方法は、ＭＳシグナルのＳ／Ｎ比が大きかった。 ｍＡｂ１糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳ１スペクトルを示す。 ｍＡｂ１糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳ１スペクトルを示す。 遊離グリカン分析を伴うＨＩＬＩＣカラムでの糖ペプチド分離によるグリコフォーム定量の比較を示している、一連のトレース及び表を示す。 ペプチド消化物の乾燥が、糖ペプチドの濃縮を助け得るが、グリカンのＵＶシグナル及び相対的なＰＡ％に影響を及ぼさなかったことを実証している一連のトレース及び表を示す。 水及びＡＣＮ中のそれぞれ０．０５％及び０．０４５％のＴＦＡを使用することによって、移動相の調製を単純化し、ピーク統合を改善するために行われた変更を示す一連のトレースを示す（ＲＰ－ＬＣペプチドマッピング移動相）。 移動相変化が糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳシグナルに影響を及ぼさなかったことを実証している一連の質量スペクトルの結果を示す。 移動相変化が糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳシグナルに影響を及ぼさなかったことを実証している一連の質量スペクトルの結果を示す。 移動相変化が糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳシグナルに影響を及ぼさなかったことを実証している一連の質量スペクトルの結果を示す。 移動相変化が糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳシグナルに影響を及ぼさなかったことを実証している一連の質量スペクトルの結果を示す。 ８０％ＡＣＮに希釈されたｍＡｂ１糖ペプチドの溶液安定性を実証している一連のトレースを示す。 ミス切断された糖ペプチドを有するトリプシン消化物がＵＶによる糖ペプチドの定量を複雑にすることを実証している一連のトレースを示す。 オンラインＭＳデータによって、ＥＩＣを使用して、グリコフォームの定量化に役立つ各ピークにおけるミス切断された糖ペプチドの割合（％）を見つけ得ることを実証している一連のトレース及び表を示す。 トリプシンによるｍＡｂ２の再消化が、ミス切断された糖ペプチドを除去してグリコフォームの定量化を助けたことを実証している一連のトレース及び表を示す。 ギ酸アンモニウムがＨＩＬＩＣ ＳＰＥからの糖ペプチドの溶出を有意に改善したことを実証している一連のトレースを示す。 乾燥またはＳＰＥ精製／乾燥がｍＡｂ１糖ペプチドの定量に影響を及ぼさなかったことを実証している一連のトレース及び表を示す。 糖ペプチド及び遊離グリカン分析による同様のｍＡｂ３グリコフォーム定量化を実証している一連のトレース及び表を示す。 糖ペプチド及び遊離グリカン分析による還元及び非還元のｍＡｂ３トリプシン消化物を使用した、同様のグリコフォーム定量化を実証している一連のトレース及び表を示す。 糖ペプチド及び遊離グリカン分析による還元及び非還元のｍＡｂ３トリプシン消化物を使用した、同様のグリコフォーム定量化を実証している一連のトレース及び表を示す。 フコシル化を伴う場合と伴わない場合の、ＩｇＧ１及びＩｇＧ４糖ペプチドの分離の比較を示している一連のトレースを示す。 本明細書に開示される方法を含む糖ペプチド定量化の方法を示す概略ワークフロー図を示す。

発明の詳細な説明
本発明が記載される前に、本発明は、記載された特定の方法及び実験条件に限定されないことを理解されたい（そのような方法及び条件は変動し得るからである）。本発明の範囲は添付の特許請求の範囲によってのみ限定されるので、本明細書で使用される用語は特定の実施形態を説明することのみを目的としており、限定することを意図しないことも理解されたい。任意の実施形態または実施形態の特徴は、互いに組み合わせてもよく、そのような組み合わせは、本発明の範囲内に明示的に含まれる。

別段の定義がない限り、本明細書で使用される全ての技術用語及び科学用語は、本発明が属する当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書で使用される場合、「約」という用語は、特定の列挙された数値に関して使用される場合、その値が列挙された値から１％以下変化し得ることを意味する。例えば、本明細書で使用される場合、「約１００」という表現は、９９及び１０１、ならびにその間の全ての値（例えば、９９．１、９９．２、９９．３、９９．４など）を含む。

本明細書に記載されているものと類似または同等の任意の方法及び材料を、本発明の実施または試験に使用してもよいが、好ましい方法及び材料をここで説明する。本明細書に記載されている全ての特許、出願、及び非特許刊行物は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。

本明細書において使用される略語
ＰＴＭ：翻訳後修飾
ＲＰ－ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ：逆相液体クロマトグラフィータンデム質量分析法
ｍＡｂ：モノクローナル抗体
ＩｇＧ：免疫グロブリンＧ
ＬＣ：軽鎖
ＨＣ：重鎖
ＭＳ：質量分析法
ＳＰＥ：固相抽出
ＨＩＬＩＣ：親水性相互作用液体クロマトグラフィー
ＵＶ：紫外線
ＴＦＡ：トリフルオロ酢酸
ＡＣＮ：アセトニトリル

定義
本明細書で使用される「抗体」という用語は、ジスルフィド結合によって相互接続された、４つのポリペプチド鎖、２つの重（Ｈ）鎖及び２つの軽（Ｌ）鎖からなる免疫グロブリン分子（すなわち、「完全な抗体分子」）、ならびにその多量体（例えば、ＩｇＭ）またはその抗原結合フラグメントを指すものとする。各重鎖は、重鎖可変領域（「ＨＣＶＲ」または「Ｖ_Ｈ」）及び重鎖定常領域（ドメインＣ_Ｈ１、Ｃ_Ｈ２、及びＣ_Ｈ３で構成される）で構成されている。様々な実施形態では、重鎖は、ＩｇＧアイソタイプであってもよい。場合によっては、重鎖はＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、またはＩｇＧ４から選択される。いくつかの実施形態では、重鎖は、アイソタイプＩｇＧ１またはＩｇＧ４の重鎖であり、必要に応じて、アイソタイプＩｇＧ１／ＩｇＧ２またはＩｇＧ４／ＩｇＧ２のキメラヒンジ領域を含む。各軽鎖は、軽鎖可変領域（「ＬＣＶＲ」または「Ｖ_Ｌ」）及び軽鎖定常領域（Ｃ_Ｌ）で構成されている。Ｖ_Ｈ及びＶ_Ｌ領域は、フレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれる、より保存された領域が点在する、相補性決定領域（ＣＤＲ）と呼ばれる超可変性の領域にさらに細分化され得る。各Ｖ_Ｈ及びＶ_Ｌは、３つのＣＤＲ及び４つのＦＲで構成され、これはアミノ末端からカルボキシ末端に向かって、ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４の順序で配置されている。「抗体」という用語は、任意のアイソタイプまたはサブクラスのグリコシル化及び非グリコシル化免疫グロブリンの両方への言及を含む。「抗体」という用語は、抗体を発現するようにトランスフェクトされた宿主細胞から単離された抗体などの組換え手段によって調製、発現、作製または単離された抗体分子を含む。抗体構造のレビューについては、Ｌｅｆｒａｎｃ ｅｔ ａｌ．，ＩＭＧＴ ｕｎｉｑｕｅ ｎｕｍｂｅｒｉｎｇ ｆｏｒ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ａｎｄ Ｔ ｃｅｌｌ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｖａｒｉａｂｌｅ ｄｏｍａｉｎｓ ａｎｄ Ｉｇ ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ Ｖ－ｌｉｋｅ ｄｏｍａｉｎｓ，２７（１）Ｄｅｖ．Ｃｏｍｐ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．５５－７７（２００３）；及びＭ．Ｐｏｔｔｅｒ，Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｓ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ，２（１）Ｓｕｒｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｓ．２７－４２（１９８３）を参照のこと。

抗体という用語は、複数の異なるエピトープに結合し得るヘテロ四量体免疫グロブリンを含む「二重特異性抗体」も包含する。単一の重鎖及び単一の軽鎖及び６つのＣＤＲを含む二重特異性抗体の半分は、１つの抗原またはエピトープに結合し、抗体の残りの半分は異なる抗原またはエピトープに結合する。場合によっては、二重特異性抗体は、同じ抗原に、ただし異なるエピトープまたは重複しないエピトープに結合し得る。場合によっては、二重特異性抗体の両方の半分とも、二重特異性を保持しながら同一の軽鎖を有する。二重特異性抗体は、一般に、米国特許出願番号２０１０／０３３１５２７（２０１０年１２月３０日）に記載されている。

抗体（または「抗体フラグメント」）の「抗原結合部分」という用語は、抗原に特異的に結合する能力を保持する抗体の１つ以上のフラグメントを指す。抗体の「抗原結合部分」という用語に包含される結合フラグメントの例としては、（ｉ）Ｆａｂフラグメント、ＶＬ、ＶＨ、ＣＬ及びＣＨ１ドメインからなる一価フラグメント；（ｉｉ）Ｆ（ａｂ’）２フラグメント、ヒンジ領域でジスルフィド架橋によって連結された２つのＦａｂフラグメントを含む二価フラグメント；（ｉｉｉ）ＶＨ及びＣＨ１ドメインからなるＦｄフラグメント；（ｉｖ）抗体の単一アームのＶＬ及びＶＨドメインからなるＦｖフラグメント、（ｖ）ＶＨドメインからなるｄＡｂフラグメント（Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｎａｔｕｒｅ ２４１：５４４－５４６）、（ｖｉ）単離されたＣＤＲ、ならびに（ｖｉｉ）Ｆｖフラグメントの２つのドメイン、ＶＬ及びＶＨからなるｓｃＦｖであって、合成リンカーによって結合されて、ＶＬ及びＶＨ領域が対になって一価分子を形成する単一のタンパク質鎖を形成するｓｃＦｖが挙げられる。ダイアボディなどの他の形態の一本鎖抗体も「抗体」という用語に含まれる（例えば、Ｈｏｌｌｉｇｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９３）９０ ＰＮＡＳ Ｕ．Ｓ．Ａ．６４４４－６４４８；及びＰｏｌｊａｋｅｔ ｅｔ ａｌ．（１９９４）２ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ １１２１－１１２３を参照のこと）。

さらに、抗体及びその抗原結合フラグメントは、当技術分野で一般に知られている標準的な組換えＤＮＡ技術を使用して得てもよい（Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，１９８９を参照のこと）。

「ヒト抗体」という用語は、ヒト生殖系列免疫グロブリン配列に由来する可変及び定常領域を有する抗体を含むものとする。本発明のヒトｍＡｂは、例えば、ＣＤＲ、特にＣＤＲ３において、ヒト生殖系列免疫グロブリン配列によってコードされないアミノ酸残基（例えば、インビトロでのランダムもしくは部位特異的突然変異誘発によって、またはインビボでの体細胞突然変異によって導入される変異）を含み得る。しかしながら、本明細書で使用される「ヒト抗体」という用語は、別の哺乳動物種（例えば、マウス）の生殖系列に由来するＣＤＲ配列がヒトＦＲ配列に移植されたｍＡｂを含むことは意図しない。この用語は、非ヒト哺乳動物で、または非ヒト哺乳動物の細胞で組換え的に産生された抗体を含む。この用語は、ヒト対象から単離されるか、またはヒト対象において生成された抗体を含むことは意図しない。

本明細書で使用される用語「糖ペプチド／糖タンパク質」は、共有結合した炭水化物またはグリカンを有する、それらの合成中または合成後に修飾されたペプチド／タンパク質である。特定の実施形態では、糖ペプチドは、モノクローナル抗体から、例えば、モノクローナル抗体のプロテアーゼ消化物から得られる。

本明細書で使用される用語「グリカン」とは、一般にグルコース（Ｇｌｃ）、ガラクトース（Ｇａｌ）、マンノース（Ｍａｎ）、フコース（Ｆｕｃ）、Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、Ｎ－アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）及びＮ－アセチルノイラミン酸（ＮｅｕＮＡｃ）を含む１つ以上の糖単位を含む化合物である（Ｆｒａｎｋ Ｋｊｅｌｄｓｅｎ、ｅｔ ａｌ．Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．２００３，７５，２３５５－２３６１）。モノクローナル抗体などの糖タンパク質のグリカン部分は、その機能または細胞の位置を特定するための重要な特性である。例えば、特定のモノクローナル抗体は、特定のグリカン部分で修飾されている。

「親水性相互作用クロマトグラフィー」またはＨＩＬＩＣという用語は、親水性化合物が疎水性化合物よりも長く保持される、親水性固定相及び疎水性有機移動相を使用するプロセスを含むことを意図している。特定の実施形態では、このプロセスは、水混和性溶媒移動相を利用する。

本明細書で使用される「試料」という用語は、モノクローナル抗体から得られるような、少なくとも分析物分子、例えば、糖ペプチドを含む分子の混合物であって、例えば、分離、分析、抽出、濃縮、またはプロファイリングを含む、本発明の方法以下に従って操作される混合物を指す。

本明細書で使用される「分析」または「分析すること」という用語は、交換可能に使用され、目的の分子（例えば、糖タンパク質）を分離、検出、単離、精製、可溶化、検出及び／または特徴付ける任意の様々な方法を指す。例としては、限定するものではないが、固相抽出、固相マイクロ抽出、電気泳動、質量分析、例えば、ＳＰＥ ＨＩＬＩＣ、ＭＡＬＤＩ－ＭＳまたはＥＳＩ、液体クロマトグラフィー、例えば、高性能、例えば、逆相、順相、またはサイズ排除、イオン対液体クロマトグラフィー、液－液抽出、例えば、加速流体抽出、超臨界流体抽出、マイクロ波支援抽出、膜抽出、ソックスレット抽出、沈殿、清澄化、電気化学的検出、染色、元素分析、エドマンド分解、核磁気共鳴、赤外線分析、フローインジェクション分析、キャピラリーエレクトロクロマトグラフィー、紫外線検出、及びそれらの組み合わせが挙げられる。

本明細書で使用される「プロファイリング」という用語は、試料中の糖ペプチドの含有量、組成、または特徴的な比率を得るために組み合わせて使用される、任意の様々な分析方法を指す。

本明細書で使用される「親水性濃縮基材」とは、結合を可能にする条件下、例えば、ｐＨ、イオン強度などの下で親水性材料に優先的に結合するクロマトグラフィー材料である。いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、ＳＰＥに使用される。

本明細書で使用される「クロマトグラフィー表面」という用語は、試料または分析物に曝露される表面を含む。クロマトグラフィー表面は、化学的に修飾されてもよいし、官能化されてもよいし、もしくは活性化されてもよいし、または微細構造、例えば、細孔を有してもよい。特定の実施形態では、クロマトグラフィー表面は、疎水性であっても、親水性（極性）であっても、またはイオン性であってもよい。他の実施形態では、クロマトグラフィー表面は完全に多孔性、表面的に多孔性、または非多孔性である。

本明細書で使用される「クロマトグラフィーコア」という用語は、本発明の材料の内部を形成する粒子、モノリス、または別の適切な構造の形態のシリカなどの有機材料を含むがこれらに限定されないクロマトグラフィー材料を含む。特定の態様では、クロマトグラフィーコアの表面とは、本明細書で定義されるように、クロマトグラフィー表面を表すか、またはクロマトグラフィー表面によって包まれた材料を表す。クロマトグラフィー表面の材料は、離散遷移もしくは明確な遷移が識別できるように、クロマトグラフィーコア上に配置されてもよいし、または結合もしくはアニーリングされてもよく、あるいはクロマトグラフィーコアの表面と混ざり合って、材料の漸次的変化を生じ、内部コア表面の離別を生じないようにクロマトグラフィーコアに結合されてもよい。特定の態様では、クロマトグラフィー表面材料は、クロマトグラフィーコアの材料と同じであっても、または異なってもよく、細孔容積、表面積、平均細孔径、炭素含有量または加水分解ｐＨ安定性を含むがこれらに限定されない、クロマトグラフィーコアとは異なる物理的または物理化学的特性を示してもよい。

本明細書で使用される「親水性」という用語は、水に対して親和性を有すること、水を引き寄せること、水を吸着すること、または水を吸収することを述べる。

本明細書で使用される「疎水性」という用語は、水に対する親和性の欠如、水をはじくこと、または水を吸着もしくは吸収ができないことを述べる。

「固相抽出」または「ＳＰＥ」とは、定量的化学分析、例えば、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）またはガスクロマトグラフィー（ＧＣ）と組み合わせて使用される場合が多いクロマトグラフィー技術である。ＳＰＥの目標は、不要な混入物質を含む複雑な試料マトリックスから標的の分析物を分離することである。分離された標的の分析物は、定量分析と適合し得る溶液中に回収される。標的化合物を含むこの最終溶液は、分析に直接使用してもよいし、または蒸発させて、標的化合物をさらに濃縮し、検出及び測定をより容易にする目的で、より少ない容積の別の溶液中で再構成してもよい。

本明細書で使用される「クロマトグラフィー」とは、混合物、例えば、糖ペプチドを含む混合物を分離するプロセスを指す。これは、混合物を固定相に通すことを含み、これにより、目的の分子が混合物中の他の分子から分離され、目的の１つ以上の分子を単離することが可能になる。クロマトグラフィー分離の方法の例としては、なかでも、キャピラリーアクションクロマトグラフィー、例えば、ペーパークロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）、カラムクロマトグラフィー、高速タンパク質液体クロマトグラフィー（ＦＰＬＣ）、ナノ逆相液体クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルクロマトグラフィー、例えば、ゲルろ過クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、親水性相互作用液体クロマトグラフィー（ＨＩＬＩＣ）、及び逆相高速液体クロマトグラフィー（ＲＰ－ＨＰＬＣ）が挙げられる。

本明細書で使用される「接触」とは、溶液または固相中の少なくとも２つの物質を一緒にすること、例えば、クロマトグラフィー材料の固定相を試料と接触させることを含む。

概要
モノクローナル抗体（ＭＡｂ）は、標的抗原に対するこれらの薬物の特異性に起因して、例えば、免疫系を活性化して腫瘍細胞を殺すこと、腫瘍細胞が増殖するためのシグナル伝達を遮断すること、腫瘍細胞に薬物を運ぶことによって、または放射線標的として、がん及び他の慢性疾患に対する効果的な生物製剤として浮上している。免疫グロブリンのグリコシル化は、それらの物理化学的特性と、補体の結合及び活性化などのそれらの細胞媒介性エフェクター機能との両方に影響する。これらの生物学的機能は、Ｎ－結合型オリゴ糖の有無だけでなく、オリゴ糖の特定の構造にも依存している場合がある。さらに、抗体のＮ－グリコシル化は、バイオ医薬品の製造において慣用的に特徴付けられている。特に、モノクローナル抗体のグリカンプロファイルは、有効性、免疫原性、及び製造条件の尺度となり得るので、重要な品質属性として定義されることもある。したがって、グリカン分析のアプローチは、詳細な特徴付けを容易にするために高感度を示すことが重要である。治療用モノクローナル抗体の製造では、部位特異的なＮ－グリコシル化及びＮ－グリカン部位の占有率の評価が重要である。したがって、モノクローナル抗体から得られた糖ペプチドを分離するための高効率／高分解能の方法が必要である。開示された本発明はその必要性を満たす。

本明細書に開示されるのは、固相抽出（ＳＰＥ）を、親水性相互作用液体クロマトグラフィー（ＨＩＬＩＣ）カラムと組み合わせて、グリコシル化及び非グリコシル化トリプシンペプチドを分離する、糖ペプチド分析及び定量化のための新しい方法である。様々な実施形態では、これらの分離技術は、グリカン構造を解明するために、紫外線（ＵＶ）検出及びオンライン質量分析（ＭＳ）検出と組み合わされる。一部の方法では、グリカンの特徴付けは、ペプチド鎖からグリカンを遊離すること、次いで、ペプチドとは別にグリカンを分析することに依存している（例えば、図１～３を参照）。グリカンはＵＶ検出に適していないため、遊離されたグリカンは多くの場合、蛍光検出用のアントラニルアミド、アントラニル酸もしくは２－アミノピリジンなどのフルオロフォアタグ、または、ＭＳ検出を可能にするために有意な塩基性を有するプロカインアミドなどの分子で標識されている。ただし、グリカン分析へのこのアプローチでは、グリコシル化のグローバルな評価しか得られない。特に、このワークフローは遊離手順に依存しているので、グリカンに関する部位特異的な情報は失われる。対照的に、開示された方法では、単離された糖ペプチドは、同じクロマトグラフィー分離内のグリコフォーム構造の違いに基づいて分離される。さらに、ＨＩＬＩＣカラムを使用して達成された、異なるグリカン異性体を含む糖ペプチドの分離は、標準のＲＰ－ＬＣ法を使用しても観察されなかった（例えば、図１～３を参照のこと）。希釈、真空乾燥、及び／または固相抽出（ＳＰＥ）を含む、ＨＩＬＩＣの試料前処理条件を最適化することにより、さまざまなタイプのペプチドマッピング試料前処理からの糖ペプチドの分析を可能にするワークフローが開発された（例えば、図２２を参照のこと）。本明細書に開示されるように、本発明者らは、方法及びワークフローが、オンラインＭＳ検出と組み合わせたＵＶ検出を使用して、ペプチドレベルでの抗体における個々のグリコフォームの相対レベルの同定及び定量化に適していることを実証した（例えば、図４及び２２を参照のこと）。

本明細書に開示される方法は、糖ペプチド、例えば、１つ以上のプロテアーゼで消化された抗体などのモノクローナル抗体から得られた糖ペプチドの精製及び／または分離及び／または分析を含む。開示された方法は、分離及び分析の改善された結果、ならびにグリカンがそれらの抗体フラグメントに共有結合しままである間に、グリカンを研究する能力を提供する。グリコフォームのこのペプチドレベルの分析は、単一の試料を逆相ペプチドマッピング、例えば、トリプシン消化、及びＨＩＬＩＣベースの糖ペプチドマッピングに利用できるという点で、生物製剤の特徴付けにも利点をもたらす。さらに、グリカンとペプチド／タンパク質間の結合を維持することで、糖ペプチドのタンパク質成分に基づくＵＶ及びＭＳの検出が容易になり、例えば、遊離したグリカンを標識する必要がなくなる。

特定の実施形態では、この方法は、糖ペプチドを親水性濃縮基材に結合させることを可能にするか、及び／または引き起こす条件下で、糖ペプチドを含む試料を親水性濃縮基材と接触させることを含む。この試料を一旦、親水性濃縮基材にロードすると、一連の調整された洗浄及び溶出溶液を、親水性濃縮基材上に通して、糖ペプチドから混入物質を分離し、次いで、さらに分析するために糖ペプチドを収集してもよい。いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材を洗浄して、試料から非糖ペプチド混入物質を除去する。したがって、有意な程度まで、糖ペプチドを、親水性濃縮基材のクロマトグラフィー表面などの親水性濃縮基材上で濃縮する。特定の実施形態では、親水性濃縮基材は、シリカベースのアミノプロピル吸着剤材料を含む。特定の実施形態では、親水性濃縮基材は、固相抽出（ＳＰＥ）用に構成される。

ＳＰＥ用に設計されたデバイスは、典型的には、ユーザーが標的成分、この場合は糖ペプチドを優先的に保持することを可能にするクロマトグラフィー吸着剤（例えば、シリカベースのアミノプロピル吸着剤などの親水性濃縮基材）を含む。ＳＰＥデバイスは、通常、試料保持リザーバー、吸着剤を収容するための手段、及び流体導管、またはデバイスを出る流体を適切な収集容器に向けるための注ぎ口を備える。ＳＰＥデバイスは、少数の試料を調製するのに便利で費用効果の高いシングルウェルフォーマットであっても、または多数の試料を並行して調製するのに非常に適したマルチウェルフォーマットであってもよい。マルチウェルフォーマットは、ロボット流体分注システムで一般的に使用される。典型的なマルチウェルフォーマットには、４８ウェル、９６ウェル、及び３８４ウェルの標準プレートフォーマットが含まれる。流体は通常、特別に設計された真空マニホールドを使用してデバイス全体に真空を引くことによって、または遠心力もしくは重力を使用することによって、ＳＰＥデバイスを通って収集コンテナに押し込まれる。遠心力は、ＳＰＥデバイスを適切な収集トレイと一緒に、意図された目的のために特別に設計された遠心分離機に配置することによって生成される。ＳＰＥデバイスは、幅広いクロマトグラフィー極性の標的化合物を保持する高い能力を有し、試料混入物質が洗浄されて廃棄されるときに標的化合物の保持を維持し得、次にその標的化合物を、可能な限り少ない溶出量で、溶出させる機能を提供し、それによって、ＳＰＥ中に得られる標的化合物濃度の程度を最大化することが有利である。

開示された方法に従って、様々な固相抽出デバイスを使用してもよい。一実施形態では、ＳＰＥデバイスは、マイクロ溶出プレート、クロマトグラフィーカラム、薄層プレート、試料精製デバイス、注入カートリッジ、マイクロタイタープレート、及びクロマトグラフィー調製デバイスからなる群より選択される。

ＳＰＥ材料を含むシリカベースのアミノプロピル吸着剤材料は、当技術分野で公知であり、例えば、ＧｌｙｃｏＷｏｒｋｓ ＨＩＬＩＣ ＳＰＥプレートの形態などで、例えばＷａｔｅｒｓ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから商業的に入手し得る（例えば、米国特許第６，７２３，２３６号、同第７，０５２，６１１号、及び同第７，１９２，５２５号を参照のこと）。いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、洗浄、例えば、予備洗浄ステップによる試料の添加のために調製される。いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、糖ペプチド試料と接触する前に洗浄される。いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、水（Ｈ_２Ｏ）及び／またはＡＣＮ溶液（例えば、ＡＣＮ水溶液）、例えば、約６０体積％～約９５体積％のＡＣＮ溶液、例えば、約６０体積％、６５体積％、７０体積％、７５体積％、８０体積％、８５体積％、９０体積％、または９５体積％のＡＣＮ溶液（残りは水）で洗浄される。

様々な実施形態では、親水性濃縮基材は、濃縮のために糖ペプチドを含む試料と接触させられる。試料溶液に関しては、それは、糖ペプチドが可溶性であり、糖ペプチドが親水性濃縮基材に結合する、溶媒に溶解された糖ペプチドを含むであろう。好ましくは、結合は強く、糖ペプチドのかなりの部分の結合をもたらす。場合によっては、実質的に全ての糖ペプチドが結合する。様々な実施形態では、溶媒は水溶液であり、典型的には、糖ペプチドを可溶化及び安定化するための緩衝液、塩、及び／または界面活性剤を含む。いくつかの実施形態では、糖ペプチド試料は、約０．１体積％～約０．５体積％のＴＦＡを含有する約６０体積％～９０体積％のＡＣＮ及び１０体積％～約４０体積％の水の溶液であり、例えば、０．２％のＴＦＡを含有する約８０：２０のＡＣＮ：水（ｖ／ｖ）である。低ｐＨを使用して、高度に有機的な溶媒、例えば、約６．５、６．０、５．５、５．０、４．５、４．０、３．５または３．０未満などの約６．５未満のｐＨを有する溶液へのペプチド溶解度を維持し得る。

次に、親水性濃縮基材を洗浄して、親水性濃縮基材に有意に結合しない非グリコシル化ペプチドなどの混入物質を除去する。このような混入物質は、廃棄され得る。いくつかの実施形態では、親水性濃縮基材は、ギ酸及び／またはトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）の水（Ｈ_２Ｏ）溶液及びアセトニトリル（ＡＣＮ）などの酸及びアセトニトリル（ＡＣＮ）の水（Ｈ_２Ｏ）溶液中で洗浄される。特定の実施形態では、ギ酸及びＡＣＮの水溶液は、体積で約０．５％～約５％のギ酸、及び体積で約８５％～約９５％のＡＣＮ（残りは水）を含み、例えば、体積で約０．５％、１．０％、１．５％、２．０％、２．５％、３．０％、３．５％、４．０％、４．５％、または５．０％のギ酸、及び体積で約８０％、８５％、９０％、または９５％のＡＣＮを含む。特定の実施形態では、ＴＦＡ及びＡＣＮの水溶液は、体積で約０．５％～約５％のＴＦＡ及び体積で約８５％～約９５％のＡＣＮ（残りは水）を含み、例えば、体積で約０．５％、１．０％、１．５％、２．０％、２．５％、３．０％、３．５％、４．０％、４．５％、または５．０％のＴＦＡ、及び体積で約８０％、８５％、９０％、または９５％のＡＣＮを含む。特定の例では、洗浄溶液は、体積で１％ギ酸、９％Ｈ_２Ｏ、９０％ＡＣＮ溶液である。特定の例では、洗浄溶液は、体積で１％ＴＦＡ、９％Ｈ_２Ｏ、９０％ＡＣＮ溶液である。

混入物質が一旦、除去されたら、親水性濃縮基材を溶出溶液と接触させて、親水性濃縮基材から糖ペプチドを溶出させる。シリカベースのアミノプロピル吸着剤は、弱塩基性の表面及び陰イオン交換の可能性を有している。ただし、シリカベースのアミノプロピル吸着剤からの糖ペプチドの相対的及び全体的な回収率は、溶出条件に特に敏感である可能性がある。偏った回収またはスペシエーションは、試料調製手順にとって問題となる場合がある。試料に存在する種の正確な表現を提供しないことに加えて、堅調ではなく、特に最も回収率の低い種に関して、得られた相対存在量プロファイルを再現性よく決定できない方法を示している可能性がある。例えば、本開示の対象である糖ペプチドとは対照的に、誘導体化されたグリカンの回収のために、ＡＣＮ中の酢酸アンモニウムを溶出溶液として使用することが推奨される。ただし、糖ペプチドの場合、ＡＣＮ中の酢酸アンモニウムは良好な結果をもたらさない。したがって、特定の実施形態では、糖ペプチドは、ギ酸アンモニウム及びＡＣＮの水溶液を用いてシリカベースのアミノプロピル吸着剤から溶出される。いくつかの実施形態では、ギ酸アンモニウム及びＡＣＮの水溶液は、約１００～４００ｍＭのギ酸アンモニウム及び約２．５～約１０％のＡＣＮ、例えば、約１００ｍＭのギ酸アンモニウム、約１５０ｍＭのギ酸アンモニウム、約２００ｍＭのギ酸アンモニウム、約２５０ｍＭのギ酸アンモニウム、約３００ｍＭのギ酸アンモニウム、約３５０ｍＭのギ酸アンモニウム、または約４００ｍＭのギ酸アンモニウム、及び約２．５％、３．０％、３．５％、４．０％、４．５％、５．０％、５．５％、６．０％、６．５％、７．０％、７．５％、８．０％、８．５％、９．０％、９．５％、または１０．０％のＡＣＮを含む。特定の実施例では、ギ酸アンモニウム及びＡＣＮの水溶液は、約２００ｍＭのギ酸アンモニウム及び約５％のＡＣＮを含む。

糖ペプチドが一旦、親水性濃縮基材から溶出されると、得られた濃縮糖ペプチド試料は、さらなる分離及び分析、例えば、クロマトグラフィー及び／または質量分析に供され得る。実施形態では、濃縮糖ペプチド試料は、分離カラムに適用され、続いて、例えば、移動相勾配を使用して糖ペプチドの個々の種を分離するために、分離カラムから溶出される。

いくつかの実施形態では、溶媒勾配、ステップ溶出、及び／または多次元溶出を実施して、糖ペプチドを分離カラムから溶出及び／または分離する。勾配の使用は、クロマトグラフィーの分野で周知である。基本的な原理は、分析物を分離カラムに吸着させること、次いで、脱着溶媒勾配で溶出させることを含む。勾配とは、溶媒の少なくとも１つの特徴の変化、例えば、ｐＨ、イオン強度、極性、または結合相互作用の強度に影響を与えるある因子の濃度の変化を指す。

使用される勾配は、漸進的であってもよいし、または段階的に加えられてもよい。一実施形態では、１つ以上の次元で変化する脱着溶媒の２つ以上のボーラスを使用する。例えば、２つ以上のボーラスは、ｐＨ、イオン強度、疎水性などにおいて変化し得る。洗浄溶液を使用する場合は、結合した糖ペプチドへの損失または損傷を最小限に抑えて、望ましくない混入物質を除去するように選択し得る。洗浄溶液の特性は、試料と脱着溶液の特性の中間であってもよい。例えば溶出勾配の溶媒は、糖ペプチド及び最終的な検出方法と互換性があるように選択される。一般的に、使用される溶媒は、既知の従来の溶媒である。様々な実施形態では、適切な溶媒を選択し得る溶媒としては、水酸化アンモニウム、トリエチルアミン、リン酸二アンモニウム、塩化メチレン、アセトニトリル（少量の塩基性または酸性修飾剤を含むまたは含まない）、メタノール（より多くの修飾剤、例えば酢酸もしくはトリエチルアミン、または水とメタノールもしくはアセトニトリルのいずれかとの混合物を含む）、酢酸エチル、クロロホルム、ヘキサン、イソプロパノール、アセトン、アルカリ緩衝液、高イオン強度緩衝液、酸性緩衝液、強酸、強塩基、酸／塩基との有機混合物、酸性または塩基性メタノール、テトラヒドロフラン及び水が挙げられる。

ＨＰＬＣを含む液体クロマトグラフィーを、糖ペプチドなどの構造を分析するために使用してもよい。陰イオン交換クロマトグラフィー、逆相ＨＰＬＣ、サイズ排除クロマトグラフィー、高速陰イオン交換クロマトグラフィー、及び順相（ＮＰ）クロマトグラフィー、例としては、ＮＰ－ＨＰＬＣを含む、さまざまな形態の液体クロマトグラフィーを使用してこれらの構造を研究し得る（例えば、Ａｌｐｅｒｔ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．Ａ６７６：１９１－２０２（１９９４）を参照のこと）。親水性相互作用クロマトグラフィー（ＨＩＬＩＣ）は、部分的に水性の移動相で実行され得るＮＰ－ＨＰＬＣの変法であり、ペプチド、炭水化物、核酸、及び多くのタンパク質の順相分離を可能にする。ＨＩＬＩＣの溶出順序は、逆相ＨＰＬＣの場合とは逆に、最低の極性から最高の極性である。ＨＰＬＣは、例えば、ＷａｔｅｒｓのＨＰＬＣシステム（例えば、Ｗａｔｅｒｓ ２６９５ Ａｌｌｉａｎｃｅ ＨＰＬＣシステム）、Ａｇｉｌｅｎｔ，Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ，Ｇｉｌｓｏｎなどで実施し得る。

ＮＰ－ＨＰＬＣ、好ましくはＨＩＬＩＣは、本明細書に記載の方法で使用され得るＨＰＬＣの特に有用な形態である。ＮＰ－ＨＰＬＣは、分析物と固定相（例えば、基材）との間の極性相互作用に基づいて分析物を分離する。極性分析物は、極性固定相と会合し、極性固定相によって保持される。吸着強度は、分析物の極性の増大とともに増大し、極性分析物と極性固定相（移動相と比較して）との間の相互作用によって溶出時間が増大する。移動相でより極性の高い溶媒を使用すると、分析物の保持時間が短縮されるが、溶媒の疎水性が高いほど保持時間が長くなる傾向がある。

シリカ、アミノ、アミド、セルロース、シクロデキストリン及びポリスチレン基材を含む、様々なタイプの基材を、例えば、カラムクロマトグラフィーのために、ＮＰ－ＨＰＬＣと共に使用してもよい。カラムクロマトグラフィーで使用できる有用な基材の例としては、ポリスルホエチルアスパルタミド（ｐｏｌｙＳｕｌｆｏｅｔｈｙｌＡｓｐａｒｔａｍｉｄｅ）（例えば、ＰｏｌｙＬＣから）、スルホベタイン基材、例えば、ＺＩＣ（登録商標）－ＨＩＬＩＣ（例えば、ＳｅＱｕａｎｔから）、ＰＯＲＯＳ（登録商標）ＨＳ（例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓから）、ＰＯＲＯＳ（登録商標）Ｓ（例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓから）、ポリヒドロエチルアスパルタミド（ＰｏｌｙＨｙｄｒｏｅｔｈｙｌ Ａｓｐａｒｔａｍｉｄｅ）（例えば、ＰｏｌｙＬＣから）、Ｚｏｒｂａｘ ３００ ＳＣＸ（例えば、Ａｇｉｌｅｎｔから）、ＰｏｌｙＧＬＹＣＯＰＬＥＸ（登録商標）（例えば、ＰｏｌｙＬＣから）、Ａｍｉｄｅ－８０（例えば、Ｔｏｓｏｈａａｓから）、ＴＳＫ ＧＥＬ（登録商標）Ａｍｉｄｅ－８０（例えば、Ｔｏｓｏｈａａｓから）、Ｐｏｌｙｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ Ａ（例えば、ＰｏｌｙＬＣから）、Ｇｌｙｃｏ－Ｓｅｐ－Ｎ（例えば、Ｏｘｆｏｒｄ ＧｌｙｃｏＳｃｉｅｎｃｅｓから）、及びＡｔｌａｎｔｉｓ ＨＩＬＩＣ（例えば、Ｗａｔｅｒｓから）が挙げられる。開示された方法で使用され得るカラムとしては、以下の官能基の１つ以上を利用するカラムが挙げられる：カルバモイル基、スルホプロピル基、スルホエチル基（例えば、ポリ（２－スルホエチルアスパルタミド））、ヒドロキシエチル基（例えば、ポリ（２－ヒドロキシエチルアスパルタミド））及び芳香族スルホン酸基。

使用される移動相は、イオン対剤、例えば、アセトニトリル及び水の有無がある緩衝液を含んでもよい。イオン対剤としては、ギ酸塩、酢酸塩、ＴＦＡ、及び塩が挙げられる。緩衝液の勾配を使用してもよく、例えば、２つの緩衝液を使用する場合、第１の緩衝液の濃度またはパーセンテージは減少し得、一方で、第２の緩衝液の濃度またはパーセンテージはクロマトグラフィーの実行の経過にわたって増加する。例えば、第１の緩衝液のパーセンテージは、クロマトグラフィーの実行の経過にわたって約１００％、約９９％、約９５％、約９０％、約８５％、約８０％、約７５％、約７０％、約６５％、約６０％、約５０％、約４５％、または約４０％～約０％、約１％、約５％、約１０％、約１５％、約２０％、約２５％、約３０％、約３５％、または約４０％減少し得る。別の例として、第２の緩衝液のパーセンテージは、同じ実行の経過にまたがって、約０％、約１％、約５％、約１０％、約１５％、約２０％、約２５％、約３０％、約３５％、または約４０％～約１００％、約９９％、約９５％、約９０％、約８５％、約８０％、約７５％、約７０％、約６５％、約６０％、約５０％、約４５％、または約４０％増大し得る。必要に応じて、第１及び第２の緩衝液の濃度またはパーセンテージは、クロマトグラフィーの実行の終了時に開始値に戻り得る。例として、第１の緩衝液のパーセンテージは、８５％～６３％～５９％～１０％～８５％まで５段階で変更し得るが、同じステップの第２の緩衝液のパーセンテージは、１５％～３７％～４１％～９０％～１５％に変化する。このパーセンテージは、線形勾配として、または非線形（例えば、段階的）様式で徐々に変化し得る。例えば、この勾配は、多相性、例えば、二相性、三相性などであってもよい。好ましい実施形態では、本明細書に記載の方法は、イオン対形成剤を使用せずに、移動相の極性の増大に対応する、漸減するアセトニトリル緩衝液勾配を使用する。

カラム温度は、例えば、市販のカラムヒーターを使用して、クロマトグラフィーの実行全体を通して一定の温度に維持され得る。いくつかの実施形態では、カラムは、約１８℃～約７０℃、例えば、約３０℃～約６０℃、約４０℃～約５０℃、例えば、約２０℃、約２５℃、約３０℃、約３５℃、約４０℃、約４５℃、約５０℃、約５５℃、約６０℃、約６５℃、または約７０℃の温度に維持される。好ましい温度は約４５℃である。

移動相の流速は、約０～約１００ｍｌ／分であり得る。分析の提案の場合の流速は通常０～１０ｍｌ／分の範囲であり、分取用ＨＰＬＣの場合は１００ｍｌ／分以上の流速を使用してもよい。例えば、流速は、約０．５、約１、約１．５、約２、約２．５、約３、約３．５、約４、約４．５、または約５ｍｌ／分であってもよい。同じパッキング、同じ長さ、ただし直径が小さいカラムに置き換えるには、より広い直径のカラムで見られるのと同じピークの保持時間及び分離能を維持するために、流速を下げる必要がある。好ましくは、４．６×１００ｍｍ、５μｍカラムにおいて約１ｍｌ／分に相当する流速を使用する。

この実行時間は、約１５～約２４０分、例えば、約２０～約７０分、約３０～約６０分、約４０～約９０分、約５０分～約１００分、約６０～約１２０分、約５０～約８０分であってもよい。

ＮＰ－ＨＰＬＣは、例えば、内径が約７５μｍのカラムを使用して、ナノスケールで実施されるように調整してもよい（例えば、Ｗｕｈｒｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７６：８３３－８３８（２００４）；Ｗｕｈｒｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔｅｒｎａｔ．Ｊ．Ｍａｓｓ．Ｓｐｅｃ．２３２：５１－５７（２００４）を参照のこと）。

特定の実施形態では、分離カラムは、親水性相互作用（ＨＩＬＩＣ）分離カラムであり、その後、糖ペプチドは、例えば、移動相勾配を使用して、ＨＩＬＩＣ分離カラムから溶出されて糖ペプチドの個々の種を分解し、それにより、試料中の糖ペプチドを精製及び／または分離する。特定の例では、ＨＩＬＩＣから溶出された糖ペプチドは１つ以上の画分に分離される。このような画分は、ＭＳ分析などの後続の分析に使用され得る。特定の実施形態では、この方法は、１つ以上の画分に存在する糖ペプチド及び／またはグリカンを同定することを含む。特定の実施形態では、グリカンは、Ｎ－グリカンである。特定の実施形態では、移動相勾配は、１０ｍＭのギ酸アンモニウム（ｐＨ４．５）から９０％ＡＣＮ（１０ｍＭギ酸アンモニウム、ｐＨ４．５）までである。特定の実施形態では、移動相勾配は、Ｈ_２Ｏ中の０．１％ＴＦＡであり、ＡＣＮ中の０．１％ＴＦＡになる。

糖ペプチドは、モノクローナル抗体などのグリコシル化タンパク質から得られる。グリコシル化モノクローナル抗体は、還元、酵素消化、変性、断片化、化学的切断、及びそれらの組み合わせによって調製され得る。本明細書に開示される方法は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、または混合アイソタイプなどの任意の抗体アイソタイプに適用可能である。

還元とは、モノクローナル抗体などの３次元タンパク質においてジスルフィド結合を２つのチオールに還元することである。還元は、還元剤、例えば、ＴＣＥＰ－ＨＣｌの存在下で、熱変性、界面活性剤の添加、または変性剤、例えば、グアニジンＨＣｌ（６Ｍ）の添加によって実施し得る。酵素分解とは、タンパク質をプロテアーゼ、例えば、トリプシンまたはアクロモバクター（Ａｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒ）プロテアーゼＩ（Ｌｙｓ－Ｃ）で消化することである。さらに、糖タンパク質は、熱または化学物質、あるいはそれらの組み合わせによって変性され得る。断片化には、モノクローナル抗体などの単一またはマルチサブユニットのタンパク質のタンパク質部分を、物理的、生物学的、または化学的方法で切断することが含まれる。例えば、Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ（ＩｄｅＳ）の免疫グロブリン分解酵素は、抗体サブユニットの断片化に一般的に使用される。

様々な実施形態では、試料中の抗体は、親水性濃縮基材と接触する前に、還元、酵素分解、変性または断片化によって処理及び調製され得る。この方法は、フラグメントによるモノクローナル抗体（ｍＡｂ）治療薬などのタンパク質のグリコシル化を特徴付ける新規のクロマトグラフィー方法、及びペプチドレベルのＨＩＬＩＣ－ＵＶ－ＭＳ分析を提供する。特定の実施形態では、試料は、任意の介在するステップで、濃縮、脱塩などされ得る。

いくつかの実施形態では、この方法は、例えば、糖ペプチドのペプチド部分からのＵＶシグナルを使用して、糖ペプチドを検出することをさらに含む。これは、試料の画分に対して実行され得、質量分析法（ＭＳ）分析などのさらなる分析のために特定の画分を選択することが可能になる。したがって、さらなる実施形態では、検出ステップは、質量分析法または液体クロマトグラフィー－質量分析法（ＬＣ－ＭＳ）を含む。生体分子の分析のための質量分析の適用では、分子は、液相または固相から気相及び真空相に移される。多くの生体分子は大きくて壊れやすいので（タンパク質が代表的な例である）、真空相に移行するための最も効果的な方法の２つは、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）またはエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）である。これらの方法の使用の態様、及び試料調製要件は、当業者に公知である。一般に、ＥＳＩはより感度が高く、一方でＭＡＬＤＩはより高速である。重要なことに、一部のペプチドはＥＳＩよりもＭＡＬＤＩモードでイオン化が良好であり、その逆も同様である（Ｇｅｎｏｍｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｊｕｎｅ ２２０，ｐ５２）。本発明の抽出チャネル方法及びデバイスは、ＭＳ分析のための試料、特に糖ペプチドなどの生体分子試料を調製するのに特に適している。本発明の重要な利点は、濃縮または脱塩などの介入プロセスステップを必要とせずに、直接分析され得る濃縮試料の調製を可能にすることである。

ＥＳＩは、試料を揮発性酸及び有機溶媒と混合し、高電圧で充電された導電性針を通してそれを注入することによって実行される。針の端から噴霧（または排出）された帯電液滴は質量分析計に送られ、それが飛んでくるにつれて熱及び真空によって乾燥される。液滴が乾燥した後、残りの帯電分子は電磁レンズによって質量検出器に向けられて、質量分析される。一実施形態では、溶出された試料は、キャピラリーからエレクトロスプレーノズルに直接沈着され、例えば、キャピラリーは、試料ローダーとして機能する。別の実施形態では、キャピラリー自体が、抽出デバイス及びエレクトロスプレーノズルの両方として機能する。

ＭＡＬＤＩの場合、分析物分子（例えば、タンパク質）は、金属標的上に沈着され、有機マトリックスと共結晶化される。試料は乾燥され、質量分析計に挿入され、通常、飛行時間（ＴＯＦ）検出によって分析される。一実施形態では、溶出された試料は、キャピラリーから金属標的上に直接沈着され、例えば、キャピラリー自体が試料ローダーとして機能する。一実施形態では、抽出された分析物は、ＭＡＬＤＩ標的上に沈着され、ＭＡＬＤＩイオン化マトリックスが追加され、試料は、例えば、ＴＯＦ検出によってイオン化及び分析される。

いくつかの実施形態では、他のイオン化モード、例えば、ＥＳＩ－ＭＳ、ターボスプレーイオン化質量分析、ナノスプレーイオン化質量分析、サーモスプレーイオン化質量分析、ソニックスプレーイオン化質量分析、ＳＥＬＤＩ－ＭＳ及びＭＡＬＤＩ－ＭＳが使用される。一般に、これらの方法の利点は、試料の「ジャストインタイム」精製及びイオン化環境への直接導入が可能になることである。さまざまなイオン化及び検出モードにより、使用する脱着溶液の性質に独自の制約が生じることに注意することが重要であり、脱着溶液が両方と適合性があることが重要である。例えば、多くのアプリケーションの試料マトリックスは、イオン強度が低いか、特定のｐＨ範囲内にある必要があるなど。ＥＳＩでは、試料中の塩がイオン化を低下させることによって、または、ノズルを詰まらせることによって、検出を妨げ得る。この問題は、分析物を低塩で提示することによって、及び／または揮発性塩を使用することによって対処される。ＭＡＬＤＩの場合、分析物は、標的へのスポッティング及び使用するイオン化マトリックスと適合性のある溶媒に含まれている必要がある。

以下の実施例は、当業者に本発明の方法を作製及び使用する方法の完全な開示及び説明を提供するために提示するものであり、発明者がその発明と見なす範囲を制限することを意図するものではない。使用される数値（例えば、量、温度など）に関して正確性を確保するための努力が払われているが、ある程度の実験誤差と偏差を考慮すべきである。特に明記されていない限り、部品は重量部、分子量は平均分子量、温度は摂氏温度、室温は約２５℃、圧力は大気圧またはそれに近い圧である。

実施例１：糖ペプチド及び遊離されたグリカンのＲＰＬＣ－ＵＶ－ＭＳに基づく以前の方法の比較。
図１は、糖ペプチド定量の現在の方法を図示する概略ワークフロー図である。治療用抗体は、変性、還元、及びアルキル化された後、トリプシンで消化された。相対的な定量は、糖ペプチドの質量ピークのピーク強度（高さ）によって行った。遊離グリカン法は、ＭＳシグナルではなく、遊離グリカンに結合した標識の蛍光によってグリコフォームを定量化する。図２は、遊離されたグリカン（蛍光試薬、ＷａｔｅｒｓのＲａｐｉＦｌｕｏｒ－ＭＳで標識）及び糖ペプチドによって定量化された各糖鎖の相対定量の比較を示す表である。方法間の定量の主な違いを３、５、７、及び８行目に示す。図３は、糖ペプチドによるグリコフォームの定量と遊離グリカン方法との間の不一致が、糖ペプチド分析においてＭＳによる糖骨格のインソースフラグメンテーションによる可能性が高く、切断されたグリカンアーティファクト（すなわち、Ｇ０Ｆ－ＧｌｃＮＡｃ及びＧ１Ｆ－ＧｌｃＮＡｃ）が増加し、主なグリカン（すなわち、Ｇ０Ｆ及びＧ１Ｆ）が減少することを実証している質量スペクトルである。この結果は、ペプチドレベルでのグリカン分析には、新しくかつ改良された方法が必要であることを実証している。

実施例２：ＨＩＬＩＣ－ＵＶ－ＭＳを使用した糖ペプチド分析の新しい方法。
治療用抗体由来のペプチドは、日常的に実施される還元または非還元ペプチドマッピング法のいずれかによって調製された。次に、ＨＩＬＩＣ－ＵＶ－ＭＳ分析の前に、消化物を最終８０％ＡＣＮ（ｖ／ｖ）に希釈した。
ＬＣシステム：ＰＤＡ（ＵＶ）検出器を備えたＷａｔｅｒｓ ＡＣＱＵＩＴＹ Ｉ－Ｃｌａｓｓ ＵＰＬＣ（登録商標）Ｓｙｓｔｅｍ
ＭＳシステム：Ｗａｔｅｒｓ ＸＥＶＯ Ｇ２－Ｓ ＱＴｏｆまたはＴｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｑ Ｅｘａｃｔｉｖｅ Ｐｌｕｓ
カラム：Ｗａｔｅｒｓ ＡＣＱＵＩＴＹ ＵＰＬＣ（登録商標）Ｇｌｙｃａｎ ＢＥＨ Ａｍｉｄｅ ＨＩＬＩＣ Ｃｏｌｕｍｎ

図５は、２つの異なる方法によってトリプシン消化物から得られたｍＡｂ１ペプチドの分離の結果を示す、ｍＡｂ１ペプチドの一連のＨＩＬＩＣ－ＵＶクロマトグラムである。１番の方法は、ギ酸アンモニウムを使用し、一方で２番の方法はＴＦＡを使用する。さまざまなグリコフォームの相対レベルは、オンラインＭＳ検出を備えたＰＤＡ検出器を使用してＵＶによって定量化された。図６は、図５に示したトレースの糖ペプチド部分の拡大図であり、２番の方法の分離が優れており、ピークがシャープで、Ｓ／Ｎ比が高いことを実証している。図７は、糖ペプチド部分を拡大したｍＡｂ１糖ペプチドの一連のＨＩＬＩＣ－ＴＩＣクロマトグラムである。示されているように、２番の方法は、ＭＳシグナルのＳ／Ｎ比が大きかった。図８Ａ及び図８Ｂは、ｍＡｂ１糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳ１スペクトルである。グリカンのＭＳインソースフラグメンテーションは、ＵＶによるグリコフォーム定量の要因ではなかった。図９は、ＨＩＬＩＣカラムでの糖ペプチド分離と遊離グリカン分析の比較を示している一連のトレース及び表である。糖ペプチド及び遊離グリカン分析による同様のグリコフォームの定量化を、ｍＡｂ１で観察した。重要なことに、２つの方法間でグリコフォームの定量に大きな違いは観察されず、ＨＩＬＩＣカラム分離がグリコペプチド分析で実行可能であることが実証されている。さらに、総フコシル化及びガラクトシル化レベルは、２つの分析間で一貫していた。切断されたグリカンアーティファクトは、ＨＩＬＩＣ－ＵＶによる糖ペプチドの定量に影響を与えない。これは、以前のＲＰＬＣ分析で観察されたアーティファクトが、ＭＳによって誘導されたグリカンのインソースフラグメンテーションに起因したことを示唆している。

薄い消化物は乾燥により濃縮され得る：消化物の濃度が０．５ｍｇ／ｍＬ未満の場合、試料を、真空乾燥、及び乾燥ペプチドを、０．２％ＴＦＡを含む８０：２０のＡＣＮ：水（ｖ／ｖ）に再懸濁することによって、０．５ｍｇ／ｍＬ以上まで濃縮してもよい。有機溶媒へのペプチドの溶解性を高く維持するには、低いｐＨが必要である。図１０は、ペプチドの乾燥がペプチドの濃縮に役立ち、異なる試料量（例えば、５～２０μｇ、左上）を使用しても一貫しているが、グリカンのＵＶシグナル（左下）及び相対ＰＡ％（右の表）には影響しなかったことを実証している、一連のトレース及び表である。図１１は、移動相の準備を簡素化し、ピーク積分を改善するために行われた変更を示している一連のトレースである。移動相は、水／ＡＣＮ中の０．１％ＴＦＡから、ペプチドマッピングに使用したのと同じ移動相緩衝液（水及びＡＣＮ中のＴＦＡは、それぞれ０．０５％及び０．０４５％）に変化した。図１２Ａ、１２Ｂ、１２Ｃ、及び１２Ｄは、移動相変化が糖ペプチド（Ｍ^２＋イオン）のＭＳシグナルに影響を与えなかったことを示している一連の質量スペクトルの結果である。図１３は、８０％ＡＣＮに希釈されたｍＡｂ１糖ペプチドの溶液安定性を実証している一連のトレースである。

ミス切断された糖ペプチドの同定：図１４は、ミス切断された糖ペプチドを有する消化物がＵＶによる糖ペプチドの定量を複雑にすることを実証している一連のトレースである。図１５は、オンラインＭＳデータによれば、抽出イオンクロマトグラフィー（ＥＩＣ）を使用して、各ピークのミス切断された糖ペプチドの割合（％）を見出し得ることを実証している、一連のトレース及び表である。オンラインＭＳ検出からのＥＩＣを使用して、各共溶出ピークでのミス切断されたペプチド（複数可）と通常のトリプシン消化された糖ペプチド（複数可）との比率を計算し、グリコフォーム定量のミス切断に起因するＵＶシグナルをフィルターで除去した。あるいは、その消化物をトリプシンで再消化して、ミス切断された糖ペプチドを通常のトリプシン消化された糖ペプチドに変換してもよい。

再消化のために、以下のプロトコルを使用した：３Ｍトリス塩基で消化物のｐＨを約８．０に上げる。Ｅ：Ｓ比（ｗ／ｗ）が１：５のトリプシンを追加し、５０℃で１時間インキュベートする。ＨＩＬＩＣ分析のために０．２％ＴＦＡ（最終）を追加し、８０％ＡＣＮ（最終）に希釈する。図１６は、トリプシンによるｍＡｂ２の再消化により、グリコフォーム定量のためのミス切断された糖ペプチドの干渉が除去されたことを実証している一連のトレース及び表である。

試薬が混入した消化物は、固相抽出で精製され、乾燥によって濃縮され得る：消化物の濃度が０．５ｍｇ／ｍＬ未満の場合、真空乾燥すること、及び乾燥ペプチドを、０．２％ＴＦＡを含む８０：２０のＡＣＮ：水（ｖ／ｖ）に再懸濁することによって０．５ｍｇ／ｍＬ以上まで濃縮してもよい。有機溶媒へのペプチドの溶解性を高く維持するには、低ｐＨが必要である。

消化物は、固相抽出（ＳＰＥ）によって塩、試薬、または界面活性剤から浄化され、次いで真空乾燥されてもよい。

Ｗａｔｅｒｓ ＧｌｙｃｏＷｏｒｋｓ ＨＩＬＩＣ μＥｌｕｔｉｏｎ Ｐｌａｔｅ（部品番号１８６００２７８０）：水で洗浄し、次に８０：１５のＡＣＮ：水（ｖ／ｖ）で洗浄する。ペプチド消化物（８０％ＡＣＮ（ｖ／ｖ）に希釈されている）を追加する。１：９：９０のギ酸水：ＡＣＮ（ｖ／ｖ）で２回洗浄する。２００ｍＭのギ酸アンモニウム、５％ＡＣＮで溶出させる。溶出した糖ペプチドを真空乾燥させて、０．５ｍｇ／ｍＬになるように、０．２％ＴＦＡを含む８０：２０のＡＣＮ：水（ｖ／ｖ）で再懸濁させる。

図１７は、ギ酸アンモニウムがＨＩＬＩＣ ＳＰＥからの糖ペプチドの溶出を有意に改善することを実証している一連のトレースである。

図１８は、乾燥またはＳＰＥ精製／乾燥が、ｍＡｂ１糖ペプチドの定量に影響を及ぼさないことを実証している一連のトレース及び表である。

図１９は、糖ペプチド及び遊離グリカン分析による同様のｍＡｂ３グリコフォーム定量化を実証している一連のトレース及び表である。

図２０Ａ及び２０Ｂは、糖ペプチド及び遊離グリカン分析による還元及び非還元ｍＡｂ３トリプシン消化物を使用した、同様のグリコフォーム定量化を実証している一連のトレース及び表である。

図２１は、フコシル化を伴う場合と伴わない場合の、ＩｇＧ１及びＩｇＧ４糖ペプチドの分離の比較を示している一連のトレースである。

本発明は、本明細書に記載の特定の実施形態によって範囲が限定されるべきではない。実際、本明細書に記載されたものに加えて本発明の様々な改変が、前述の説明及び添付の図から当業者に明らかになるであろう。このような改変は、添付の特許請求の範囲内に含まれるものとする。

Claims (16)

1. １つ以上の抗体を含む試料中の１つ以上の糖ペプチドを特徴付ける及び／または定量する方法であって、
   （ａ）前記１つ以上の抗体を含む試料を１つ以上のプロテアーゼと接触させ、１つ以上の糖ペプチドを生成させる工程；
   （ｂ）糖ペプチドが親水性濃縮基材に結合することを可能にする条件下で、前記糖ペプチドを前記親水性濃縮基材に接触させる工程；
   （ｃ）前記親水性濃縮基材を洗浄して、前記親水性濃縮基材から非糖ペプチド混入物質を除去する工程；
   （ｄ）ギ酸アンモニウム及びアセトニトリル（ＡＣＮ）の水溶液を用いて前記親水性濃縮基材から前記糖ペプチドを溶出させて、濃縮糖ペプチド試料を作製する工程；
   （ｅ）前記濃縮糖ペプチド試料を分離カラムに適用する工程；
   （ｆ）前記分離カラムから前記糖ペプチドを溶出させ、それによって前記試料中の糖ペプチドを１つ以上の画分に分離する工程；ならびに
   （ｇ）前記１つ以上の画分を質量分光分析に供し、前記１つ以上の画分における糖ペプチドを特徴付ける及び／または定量する工程
   を含む、前記方法。
2. 前記親水性濃縮基材が、固相抽出（ＳＰＥ）クロマトグラフィー基材を含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記親水性濃縮基材が、シリカベースのアミノプロピル吸着剤材料を含む、請求項１に記載の方法。
4. 前記質量分光分析が、液体クロマトグラフィーシステムと組み合わされた質量分析計を含む、請求項１に記載の方法。
5. 前記質量分光分析が、ＵＶ検出器と組み合わされた質量分析計を含む、請求項１に記載の方法。
6. 前記ギ酸アンモニウム及びＡＣＮの水溶液が、水中に約１００～約４００ｍＭのギ酸アンモニウム及び約２．５％～約１０％のＡＣＮを含む、請求項１に記載の方法。
7. 前記親水性濃縮基材が、ギ酸及びＡＣＮ洗浄溶液で洗浄され、前記溶液が、約０．５体積％～約５体積％のギ酸及び約８５体積％～約９５体積％のＡＣＮを含み、残りの水が、非糖ペプチド混入物質を除去するためのものである、請求項１に記載の方法。
8. 前記分離カラムが、親水性相互作用（ＨＩＬＩＣ）カラムを含む、請求項１に記載の方法。
9. 前記糖ペプチドを１つ以上の画分に分離することが、分離カラムに移動相勾配を適用することを含む、請求項１に記載の方法。
10. 前記移動相勾配が、約１０ｍＭのギ酸アンモニウム（ｐＨ４．５）から約９０％のＡＣＮと１０ｍＭのギ酸アンモニウム（ｐＨ４．５）までを含む、請求項９に記載の方法。
11. 前記移動相勾配が、Ｈ_２Ｏ中の約０．０５％ＴＦＡまたはＡＣＮ中の約０．０４５％ＴＦＡを含む、請求項９に記載の方法。
12. 前記１つ以上の画分に存在する糖ペプチドに結合しているグリカンを同定する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
13. 前記１つ以上のプロテアーゼが、トリプシンを含む、請求項１に記載の方法。
14. 溶出された糖ペプチドの糖ペプチドレベルでのグリコシル化プロファイリングをさらに含む、請求項１に記載の方法。
15. 前記親水性濃縮基材をアセトニトリル（ＡＣＮ）の水溶液で予備洗浄することをさらに含む、請求項１に記載の方法。
16. 前記親水性濃縮基材との接触の前に、ＡＣＮの水溶液中に糖ペプチドを含む試料を希釈することをさらに含む、請求項１に記載の方法。

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