JP7691682B2 - 創傷被覆材 - Google Patents
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Description
特に、ゼラチンを主成分とするハイドロゲル不織布を用いることで、細胞増殖因子を用いなくても、血管が創傷被覆材の内部へ侵入すること、すなわち血管新生を促進することができ、創傷部位における血管新生が誘導され、糖尿病患者や悪性腫瘍患者にも適用することができる。また、コラゲナーゼによる6時間処理後の厚み保持率が86%以上であることで、該創傷被覆材を使用した際、例えば、創傷被覆材を移植した後の1~2週間の早期に、創傷被覆材の内部への細胞と血管の侵入を可能とする連通孔構造が維持され、早期の血管新生を誘導可能である。
厚み保持率(%)=Hb/Ha×100
圧縮強度保持率(%)=Fb/Fa×100
また、ノズル吐出口3の後方に位置し、ノズル吐出口3とは非接触状態の流体噴射口5から前方に向けて圧力流体7を噴射させる。流体噴射口5にはコンプレッサー6から圧力流体(例えば圧空)が供給される。流体噴射口5とノズル吐出口3との距離は5mm以上30mm以下であることが好ましく、5mm以上15mm以下であることがより好ましい。
押し出された紡糸液は圧力流体7に随伴されてゼラチン繊維8となり、巻き取りロール11上でゼラチン不織布9となって堆積される。この時、堆積された繊維は水分を含み、完全には固化していないので、繊維交点の少なくとも一部において接している繊維が互いに溶着する。なお、巻き取りロールに変えてネット等の他の捕集手段を用いてもよい。
<厚み及び厚み保持率>
膨潤状態のハイドロゲル不織布において、コラゲナーゼによる処理前の厚み(Ha)とコラゲナーゼによる処理後の厚み(Hb)を山電社製のクリープメータで測定した。また、厚み保持率を下記の通りに算出した。
厚み保持率(%)=Hb/Ha×100
<圧縮強度>
膨潤状態のハイドロゲル不織布において、コラゲナーゼによる処理前の70%ひずみ時の応力(Fa)及びコラゲナーゼによる処理後の70%ひずみ時の応力(Fb)を山電社製のクリープメータで測定し、圧縮強度とした。また、圧縮強度保持率を下記の通りに算出した。
圧縮強度保持率(%)=Fb/Fa×100
<コラゲナーゼによる処理>
(1)コラゲナーゼD(シグマアルドリッチ社)をD-PBS(+)(ナカライテスク社のダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)に、富士フイルム和光純薬社の塩化カルシウム(100μg/mL)及び塩化マグネシウム(46.8μg/mL)を加えたD-PBS(+))に溶解し、濃度が1.25μg/mLのコラゲナーゼD/PBS(+)溶液を得た。
(2)膨潤状態のハイドロゲル不織布(乾燥質量約1mg)を2mLのコラゲナーゼDの溶液に浸漬し、37℃で6時間インキュベートした。
<平均繊維径>
膨潤状態のハイドロゲル不織布をマイクロスコープ(キーエンス社、BZ-X700)で観察し、任意に選択した50本の繊維の繊維径をそれぞれ測定し、それらを平均して、膨潤状態の平均繊維径を算出した。
<目付(単位面積あたりの質量)>
ゼラチン不織布の目付は、JIS L 1913:2010に準じて測定した。
<孔径>
ゼラチン不織布の孔径は、Wrotnowskiの仮定に基づいて、下記計算式1にて算出した。
ゼラチンとして新田ゼラチン社製(ゼリー強度262g、原料:アルカリ処理牛骨)を使用し、ゼラチン:水=3:5の質量比(ゼラチン濃度37.5質量%)とし、温度60℃で溶解した。60℃におけるゼラチン水溶液の粘度は960~970mPa・sであった。このゼラチン水溶液を紡糸液とし、図11に示す製造装置を使用して、ゼラチン不織布を作製した。紡糸液の温度は60℃、ノズル直径(内径)250μm、吐出圧0.2MPa、ノズル高さ5mm、エアー圧力0.375MPa、エアー温度100℃、流体噴射口とノズル吐出口との距離は5mm、捕集距離100cmとした。ゼラチン不織布は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度140℃、48時間とした。得られたゼラチン不織布の目付は約65g/m2であった。
次に、乾燥状態のゼラチン不織布を直径約5mmの円盤状に打ち抜き(乾燥質量約1mg)、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に室温で10分間静置して膨潤させた。膨潤状態のハイドロゲル不織布の直径は約7mmであった。
捕集距離を50cmにした以外は、実施例1の場合と同様にして、ゼラチン不織布を作製した。ゼラチン不織布は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度140℃、48時間とした。得られたゼラチン不織布の目付は約100g/m2であった。
次に、乾燥状態のゼラチン不織布を直径約4mmの円盤状に打ち抜き(乾燥質量約1mg)、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に室温で10分間静置して膨潤させた。膨潤状態のハイドロゲル不織布の直径は約6mmであった。
<ハイドロゲル不織布の作製>
紡糸液の吐出量を増加させた以外は、実施例2の場合と同様にして、ゼラチン不織布を作製した。ゼラチン不織布は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度140℃、48時間とした。得られたゼラチン不織布の目付は約150g/m2であった。
次に、乾燥状態のゼラチン不織布を直径約3mmの円盤状に打ち抜き、1.25枚を(乾燥質量約1mg)、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に室温で10分間静置して膨潤させた。膨潤状態のハイドロゲル不織布の直径は約5mmであった。
吐出圧を0.1MPa、エアー圧力を0.275MPaにした以外は、実施例2の場合と同様にして、ゼラチン不織布を作製した。ゼラチン不織布は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度140℃、48時間とした。得られたゼラチン不織布の目付は約300g/m2であった。
次に、乾燥状態のゼラチン不織布を直径約2mmの円盤状に打ち抜き(乾燥質量約1mg)、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に室温で10分間静置して膨潤させた。膨潤状態のハイドロゲル不織布の直径は約3mmであった。
紡糸液の吐出量を減少させた以外は、実施例2の場合と同様にして、ゼラチン不織布を作製した。ゼラチン不織布は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度140℃、48時間とした。得られたゼラチン不織布の目付は約50g/m2であった。
次に、乾燥状態のゼラチン不織布を直径約6mmの円盤状に打ち抜き(乾燥質量約1mg)、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に室温で10分間静置して膨潤させた。膨潤状態のハイドロゲル不織布の直径は約9mmであった。
コラーゲンスポンジを、直径約8mmの円盤状に打ち抜き(乾燥質量約1mg)、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に室温で10分間静置して膨潤させた。膨潤状態のコラーゲンスポンジの直径は約8mmであった。
正常マウス(C57BL/6J、8週齢、オス、清水実験材料社から入手)の背部皮下に、膨潤状態の直径が約6mmの円盤状の実施例1のハイドロゲル不織布、比較例1のハイドロゲル不織布及び比較例2のコラーゲンスポンジを移植した。なお、膨潤状態の直径が約6mmの円盤状の実施例1のハイドロゲル不織布、比較例1のハイドロゲル不織布及び比較例2のコラーゲンスポンジは、移植する前に乾燥状態にてエチレンオキサイドガスにて滅菌した。
移植後10日目に移植材を回収し、円盤状移植材の厚み方向の最大割面にて10μm厚みの凍結切片を作製した。
該凍結切片を用いて、HE染色及びCD31免疫染色を行い、切片の中心から左右250μmの範囲において、全細胞数(HE染色)及びCD31陽性細胞数(CD31免疫染色)を計測した。また、深さ別の細胞の割合及び全細胞中のCD31陽性細胞の割合を算出した。nは3とした。その結果を下記表2に示した。下記表2において、深さは皮下組織に接した面からの距離を意味する。
CD31免疫染色は、CD31抗体(セルシグナリングテクノロジー社製、「ウサギモノクローナル抗体CST 77699」)を用い、DABを用いたペルオキシダーゼ発色法で行った。
図4は、実施例1のハイドロゲル不織布を移植材として用いた移植10日目の移植材の断面(深さ200-400μm)のCD31免疫染色の結果を示す写真(40倍)である。
図5は、比較例2のコラーゲンスポンジを移植材として用いた移植10日目の移植材の断面(深さ200-400μm)のHE染色の結果を示す写真(40倍)である。
図6は、比較例2のコラーゲンスポンジを移植材として用いた移植10日目の移植材の断面(深さ200-400μm)のCD31免疫染色の結果を示す写真(40倍)である。
正常マウス(C57BL/6J、8週齢、オス、清水実験材料社から入手)の背部皮下に、膨潤状態の直径が約6mmの円盤状の実施例2のハイドロゲル不織布、及び比較例2のコラーゲンスポンジを移植した。
移植後7日目及び14日目に移植材を回収し、円盤状移植材の厚み方向の最大割面にて10μm厚みの凍結切片を作製した。
該凍結切片を用いて、HE染色及びCD31免疫染色を行い、切片の中心から左右250μmの範囲において、全細胞数(HE染色)及びCD31陽性細胞数(CD31免疫染色)を計測した。また、深さ別の細胞の割合及び全細胞中のCD31陽性細胞の割合を算出した。nは3とした。移植後7日目の結果を下記表3に示し、移植後14日目の結果を下記表4に示した。下記表3及び4において、深さは皮下組織に接した面からの距離を意味する。
CD31免疫染色は、CD31抗体(セルシグナリングテクノロジー社製、「ウサギモノクローナル抗体CST 77699」)を用い、DABを用いたペルオキシダーゼ発色法で行った。
図8は、実施例2のハイドロゲル不織布を移植材として用いた移植7日目の移植材の断面(深さ400-600μm)のCD31免疫染色の結果を示す写真(40倍)である。
図9は、比較例2のコラーゲンスポンジを移植材として用いた移植7日目の移植材の断面(深さ400-600μm)のHE染色の結果を示す写真(40倍)である。
図10は、比較例2のコラーゲンスポンジを移植材として用いた移植7日目の移植材の断面(深さ400-600μm)のCD31免疫染色の結果を示す写真(40倍)である。
[1] ゼラチンを主成分とするハイドロゲル不織布を含む創傷被覆材であって、
前記ハイドロゲル不織布は、コラゲナーゼによる6時間処理後の厚み保持率が86%以上であることを特徴とする創傷被覆材。
[2] 前記ハイドロゲル不織布は、コラゲナーゼによる6時間処理後の圧縮強度保持率が70%以上である、[1]に記載の創傷被覆材。
[3] 前記ハイドロゲル不織布は、膨潤状態の厚みが0.1mm以上5mm以下であり、目付が40g/m2以上500g/m2以下である、[1]又は[2]に記載の創傷被覆材。
[4] 前記ハイドロゲル不織布は、膨潤状態の孔径が30μm以上700μm以下である、[1]~[3]のいずれかに記載の創傷被覆材。
[5] 前記ハイドロゲル不織布を構成する繊維は、膨潤状態の平均繊維径が10μm以上200μm以下である、[1]~[4]のいずれかに記載の創傷被覆材。
[6] 前記ハイドロゲル不織布は、熱脱水架橋されている、[1]~[5]のいずれかに記載の創傷被覆材。
[7] 前記ハイドロゲル不織布は、細胞増殖因子を含まない、[1]~[6]のいずれかに記載の創傷被覆材。
[8] 前記ハイドロゲル不織布の一方又は両方の表面には保護フィルムが配置されている、[1]~[7]のいずれかに記載の創傷被覆材。
2 紡糸液
3 ノズル吐出口
4、6 コンプレッサー
5 流体噴射口
7 圧力流体
8 ゼラチン繊維
9 ハイドロゲル不織布
10 不織布製造装置
11 巻き取りロール
12 保温容器
Claims (7)
- ゼラチンを主成分とするハイドロゲル不織布を含む創傷被覆材であって、
前記ハイドロゲル不織布は、コラゲナーゼによる6時間処理後の厚み保持率が86%以上であり、
前記ハイドロゲル不織布は、ハイドロゲル不織布を水、又は緩衝液からなる群から選ばれる一つ以上の液体中に10分以上浸漬することで膨潤させた膨潤状態の孔径が30μm以上700μm以下であることを特徴とする創傷被覆材。 - 前記ハイドロゲル不織布は、コラゲナーゼによる6時間処理後の圧縮強度保持率が70%以上である、請求項1に記載の創傷被覆材。
- 前記ハイドロゲル不織布は、前記膨潤状態の厚みが0.1mm以上5mm以下であり、目付が40g/m2以上500g/m2以下である、請求項1又は2に記載の創傷被覆材。
- 前記ハイドロゲル不織布を構成する繊維は、前記膨潤状態の平均繊維径が10μm以上200μm以下である、請求項1~3のいずれかに記載の創傷被覆材。
- 前記ハイドロゲル不織布は、熱脱水架橋されている、請求項1~4のいずれかに記載の創傷被覆材。
- 前記ハイドロゲル不織布は、細胞増殖因子を含まない、請求項1~5のいずれかに記載の創傷被覆材。
- 前記ハイドロゲル不織布の一方又は両方の表面には保護フィルムが配置されている、請求項1~6のいずれかに記載の創傷被覆材。
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