JP7702384B2 - Vmat2阻害剤、及びその調製方法、及びその使用 - Google Patents
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Description
式(I)中、
「---」は、単結合又は二重結合から選択され;
「---」が単結合である場合には、Rは、OH、H、又は
「---」が二重結合である場合には、Rは、Oであり;
R1は、水素、メチル、又はエチルから選択され;
R2は、C2~10アルキル、C3~6シクロアルキル、C3~6シクロアルキル-C1~6アルキル、3~6員のヘテロシクロアルキル-C1~3アルキル、C2~6アルケニル、又はC1~6ヘテロアルキルであり、非置換であるか又は1個、2個、若しくは3個のR3で置換されているC1~6ヘテロアルキルから選択され;
及び
R3は、F、Cl、Br、OH、SH、又はNH2から選択される、
化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩を提供する。
R2は、C2~10アルキル、C3~6シクロアルキル、C3~6シクロアルキル-C1~3アルキル、C2~6アルケニル、C1~6ヘテロアルキルであり、非置換であるか又は1個、2個、若しくは3個のR3で置換されているC1~6ヘテロアルキルから選択され、R3は、F、Cl、Br、OH、及びNH2から選択される、化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩も提供する。
R2は、C2~10アルキル、C3~6シクロアルキル、C3~6シクロアルキル-C1~3アルキル、C2~6アルケニル、C1~6ヘテロアルキルであり、非置換であるか又は1個、2個、若しくは3個のR3で置換されているC1~6ヘテロアルキルから選択され、R3は、F、Cl、Br、OH、及びNH2から選択される、化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩も提供する。
R2は、C2~10アルキル、C3~6シクロアルキル、C3~6シクロアルキル-C1~3アルキル、C2~6アルケニル、C1~6ヘテロアルキルであり、非置換であるか又は1個、2個、若しくは3個のR3で置換されているC1~6ヘテロアルキルから選択され、R3は、F、Cl、Br、OH、及びNH2から選択される、化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩を提供する。
間群に属しており、単位格子パラメータは、a=27.14408(13)Å, b=16.24056(7)Å, c=6.13775(3)Å, α=90°, β=90°, γ=90°, V=2705.74(2)、及びZ=4である。
工程1:
工程2:
工程3:
Xは、脱離基であり、R2は、上記の式(II)の化合物と同一の定義を有し、R2は、好ましくは、エチル、プロピル、イソブチル、モノフルオロブチル、モノフルオロペンチル、トリフルオロエチル、トリフルオロプロピル、トリフルオロブチル、トリフルオロペンチル、ビスフルオロエチル、又はシクロプロパンメチレンであり、より好ましくは、トリフルオロエチル又はシクロプロパンメチレンである、
方法も提供する。
還元剤として水素化ホウ素ナトリウムが使用され、R2は、上記の式(III)の化合物と同一の定義を有し、R2は、好ましくは、エチル、プロピル、イソブチル、モノフルオロブチル、モノフルオロペンチル、トリフルオロエチル、トリフルオロプロピル、トリフルオロブチル、トリフルオロペンチル、ビスフルオロエチル、又はシクロプロパンメチレンであり、より好ましくは、トリフルオロエチル又はシクロプロパンメチレンである、
方法も提供する。
R2は、上記の式(IV)の化合物と同一の定義を有し、R2は、好ましくは、エチル、プロピル、イソブチル、モノフルオロブチル、モノフルオロペンチル、トリフルオロエチル、トリフルオロプロピル、トリフルオロブチル、トリフルオロペンチル、ビスフルオロエチル、又はシクロプロパンメチレンであり、より好ましくは、トリフルオロエチル又はシクロプロパンメチレンである、
方法も提供する。基pは、アミノ保護基であり、好ましくは、ベンジルオキシカルボニル(Cbz)、tert-ブトキシカルボニル(Boc)、フルオレニルメトキシカルボニル(Fmoc)、アリルオキシカルボニル(Alloc)、トリメチルシリルエトキシカルボニル(Teoc)等である。保護基の除去には、当該技術分野での一般的な方法を使用し得、詳細に関しては、Protective Groups in Organic Synthesis,Third Edition,Author(s):Theodora W. Greene Ph.D.,chapter 7を参照し得る。
方法も提供する。この調製方法は、キラルクロマトグラフィーカラムを使用する式(I)の化合物の分割を含み、このキラルクロマトグラフィーカラムは、好ましくは、Daicel CHIRALPAK AD-Hクロマトグラフィーカラムである。
断片1:
合成経路:
合成経路:
実施例11の方法と類似の方法を使用することにより、実施例12~20を合成した。
実施例21の方法と類似の方法を使用することにより、実施例22~25を合成した。
実施例11の方法と類似の方法を使用することにより、化合物26~28を合成した。
2Lのシングルネックフラスコに、原料である断片I(106g、350mmol、1eq)及び無水炭酸カリウム(145g、1050mmol、3eq)を入れ、無水N,N-ジメチルホルムアミド(700mL)を入れ、次いで、1,1,1-トリフルオロ-2-ヨードエタン(184g、875mmol、2.5eq)を入れた。この混合物を、11時間にわたり140℃で反応させた。TLC(PE:EA=3:1)モニタリングにより示されるように、一部の原料が残存していた。1,1,1-トリフルオロ-2-ヨードエタン(73.5g、350mmol、1eq)をさらに添加した。この混合物を、さらに8時間にわたり140℃で反応させた。反応の完了後、この反応混合物を室温まで冷却した。この反応系を、水(3.5L)及び飽和ブライン(700mL)の混合溶液に注ぎ、酢酸エチル(700mL)で4回抽出した。酢酸エチル相をまとめた。まとめた酢酸エチル相を、水(700mL)で1回洗浄し、飽和塩化ナトリウム溶液(700mL)で1回洗浄した。酢酸エチル相を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、ろ過して無水硫酸ナトリウムを除去した。酢酸エチル相を、減圧下で濃縮した。残留物を、酢酸エチル(175mL)及び石油エーテル(175mL)の混合溶液でスラリー化し、ろ過した。固体を回収した。この固体を、酢酸エチル(175ml)及び石油エーテル(175mL)の混合溶液で合計3回洗浄した。乾燥後、淡黄色固体 50gが得られた。淡黄色固体(50g)を、還流で95%エタノール(700mL)に溶解させ、この混合物を4時間にわたり自然に冷却した。結晶を析出させた。この混合物をろ過し、結晶を回収した。この結晶を、室温にて、95%エタノール(175mL)で合計3回洗浄した。乾燥後、中間体I(38.4g、淡黄色結晶)を得、収率は28.5%であった。
MSm/z(ESI):386.2[M+H]+,1H NMR(600MHz,CDCl3):δ 6.75(s,1H),6.59(s,1H),4.38-4.34(m,2H),3.82(s,3H),3.53-3.51(m,1H),3.32-3.28(m,1H),3.15-3.09(m,2H),2.91-2.88(m,1H),2.75-2.72(m,2H),2.61-2.53(m,2H),2.38-2.34(m,1H),1.82-1.78(m,1H),1.69-1.62(m,1H),1.06-1.01(m,1H),0.92-0.90(m,6H).
1Lのシングルネックフラスコで、中間体I(38.46g、100mmol、1eq)及びテトラヒドロフラン(150mL)を入れた。氷浴下で、水素化ホウ素ナトリウム(4.56g、120mmol、1.2eq)を入れ、次いで無水メタノール(150ml)を入れ、この混合物を、2時間にわたり氷浴下で撹拌した。反応の完了後、この反応を、氷浴下にて窒素雰囲気中において、1N HCl(300mL、300mmol、3eq)でクエンチした。氷浴下において、飽和炭酸ナトリウム溶液(300mL)を滴下して、淡黄色固体を得た。この混合物をろ過し、固体を回収した。この固体を、水(300mL)で合計3回洗浄した。乾燥後、淡黄色固体 39gを得た。この固体を、80℃の温度で、酢酸エチル(300mL)に溶解させた。次いで、石油エーテル(100mL)を添加した。この混合物を、4時間にわたり自然に冷却した。白色固体が析出した。この固体を回収し、酢酸エチル(50mL)及び石油エーテル(50mL)の混合溶液で合計3回洗浄した。乾燥後、化合物11(23.07g、白色固体)を得、収率は59.6%であった。MSm/z(ESI):388.2[M+H]+;1H NMR(600MHz,CDCl3):δ 6.71(s,1H),6.70(s,1H),4.38-4.31(m,2H),3.82(s,3H),3.41-3.35(m,1H),3.13-2.96(m,4H),2.64-2.54(m,2H),2.47-2.40(m,1H),2.04-1.94(m,1H),1.75-1.66(m,3H),1.61-1.45(m,2H),1.08-1.02(m,1H),0.92-0.90(m,6H).
化合物11 12.33gを秤量した。Daicel Preparativeクロマトグラフィー及びDaicelキラルカラムを使用して、HPLC法により、キラル異性体を分離した。その対応するコンポーネントを回収し、ロータリーエバポレーションに供して溶媒を除去し、それにより純粋な光学的異性体が得られた。分離方法及び検出結果を、表3~4で見出し得た。
MSm/z(ESI):388.2[M+H]+;
1HNMR(600MHz,CDCl3):δ 6.72(s,1H),6.71(s,1H),4.33-4.37(q,J=8.0Hz,2H),3.82(s,3H),3.37-3.40(m,1H),3.12-3.14(d,J=12.0Hz,1H),3.06-3.08(m,1H),3.02-3.05(m,1H),2.98-3.00(m,1H),2.60-2.63(m,1H),2.55-2.58(m,1H),2.45-2.46(m,1H),1.95-1.99(t,J=12.0Hz,1H),1.72-1.74(m,1H),1.68-1.71(m,1H),1.55-1.60(m,1H),1.47-1.53(m,1H),1.03-1.07(m,1H),0.91-0.92(d,J=6.0Hz,3H),0.93-0.94(d,J=6.0Hz,3H).
13CNMR(150Hz,CDCl3):δ 148.5,145.53,132.85,126.84,120.80-126.34,117.66,109.29,74.46,67.66-68.36,60.94,59.99,56.09,51.74,41.51,40.44,39.64,28.83,25.33,24.15,21.74。
I.化合物11-P4Sの結晶形A
工程1:化合物11-P4からのモノ-p-トルエンスルホネートの形成:
1)11-P4S 9mgを秤量し、1.5mLのHPLCバイアルに入れた。
2)この固体に、エタノール(450μL)を添加した。温度を40℃まで上昇させ、次いで、固体が完全に溶解して透明な溶液が得られるまで、40℃で一定に保った。
3)この溶液を、静置したまま0.3℃/分で25℃まで冷却した。
4)結晶が析出し、この反応バイアルを顕微鏡で観察した。結晶を定量し、XRSD実験を実行した。
3.1 機器パラメータ及びデータ収集:
3.1.1 機器パラメータ:
単結晶回折計:Rigaku Oxford Diffraction XtaLAB Synergy 4円回折計
検出器:HyPix-6000HE平面検出器;
低温システム:Oxford Cryostream 800;
光源:Cu標的微焦点光源;λ=1.54184Å、50W;
結晶とCCD検出器との距離:d=35mm;
管電圧:50kV;
管電流:1mA
この回折実験では、48459個の回折点を収集し、ここで、4803個の独立した回折点が含まれ(Rint=0.0672)、回折収集範囲:2θ=6.342~133.2°、及び回折指数範囲:-32≦h≦32、-19≦k≦19、-7≦l≦6であった。SHELXT(Sheldrick,G.M.2015.Acta Cryst.A71,3-8)を使用して構造解析を実行し、(F2に対して)SHELXL(Sheldrick,G.M.2015.Acta Cryst.C71,3-8)を使用して構造精密化を実行した。4803個の独立した回折点の内、構造精密化に関与するパラメータは、348個であった。精密化後、S=1.046、R1=0.0318、及びwR2=0.0828であった。残留電子密度値は、0.26及び-0.32eÅ-3であった。
化合物11-P4Sの結晶形Aは、無色の塊(0.20×0.10×0.10mm3)であり、斜方晶P21212空間群に属していた。単位格子パラメータ:a=27.14408(13)Å、b=16.24056(7)Å、c=6.13775(3)Å、α=90°、β=90°、γ=90°、V=2705.74(2)Å3、Z=4。密度の計算値:Dc=1.374g/cm3、単位格子の電子数:F(000)=1184.0、単位格子の線吸収係数:μ(CuKα)=1.613mm-1、及び回折実験温度:T=99.99(11)K。
4.1 XPRDキャラクタリゼーション
4.1.1 キャラクタリゼーション方法:XRPDを、PANalytical製のX線粉末回折計で取得し、走査パラメータは、下記の表11に示される通りであった。
XPRDスペクトルを図2-1に見出し得、このスペクトルの解析データを表12に見出し得た。
4.2.1 キャラクタリゼーション方法:TGAスペクトル及びDSCスペクトルを、TA Q5000/5500熱重量分析装置及びTA 2500示差走査熱量計でそれぞれ取得し、試験パラメータを表13に見出し得た。
4.3.1 方法:液体状態核磁気共鳴スペクトルを、Bruker 400M核磁気共鳴分光計で取得し、溶媒としてDMSO-d6を使用した。
工程1.調製方法
化合物11-P4Sの結晶形A 109mgを、MeOH(2mL)に溶解させた。次いで、貧溶媒であるTHF 18mLを添加した。この混合物を-20℃に置き、撹拌し、ろ別して固体を分離した。この固体を室温に置いて風乾し、化合物11-P4Sの結晶形Bを得た。
2.1 キャラクタリゼーション方法:XPRD、TGA/DSC、及び1H NMRのキャラクタリゼーション方法は、化合物11-P4Sの結晶形Aのものと同一であった。
2.2.1 XPRD
XPRDスペクトルを図3-1に見出し得、このスペクトルの解析データを表14に見出し得た。
化合物11-P4Sの結晶形BのTGA/DSCスペクトルを図3-2に見出し得、このスペクトルから、試料が200℃まで加熱された場合には、重量減少は6.8%であり、且つ120.5℃、221.8℃、及び252.6℃にて3つの吸熱ピーク(ピーク温度)が存在することが示された。
1H NMRスペクトルを図3-3に見出し得、このスペクトルから、この試料では、p-トルエンスルホン酸と遊離塩基とのモル比が1.0:1.0であり、THFと遊離塩基とのモル比が0.5であり、対応する重量減少が6.5%であり、且つメタノールの残留が検出されないことが示された。
工程1.調製方法
化合物11-P4Sの結晶形A 121.2mgを秤量し、MeOH(2.2mL)に溶解させた。次いで、DCM(75mL)を添加し、清澄溶液が生じた。この溶液は、室温での2時間にわたる撹拌後も透明なままであった。この溶液を室温に移して風乾し、化合物11-P4Sの結晶形Cを得た。
2.1 キャラクタリゼーション方法:XPRD、TGA/DSC、及び1H NMRのキャラクタリゼーション方法は、化合物11-P4Sの結晶形Aのものと同一であった。
2.2.1 XPRD
XPRDスペクトルを図4-1に見出し得、このスペクトルの解析データを表15に見出し得た。
化合物11-P4Sの結晶形CのTGA/DSCスペクトルを図4-2に見出し得、このスペクトルから、試料が200℃まで加熱された場合には、重量減少は17.4%であり、且つ112.5℃、210.7℃、及び249.6℃にて3つの吸熱ピーク(ピーク温度)が存在することが示された。
1H NMRスペクトルを図4-3に見出し得、このスペクトルから、この試料では、p-トルエンスルホン酸と遊離塩基とのモル比が1.0:1.0であり、DCMと遊離塩基とのモル比が0.2であり、溶媒の質量分率が3.1%であり、且つメタノールの残留が検出されないことが示された。
工程1.調製方法
化合物11-P4Sの結晶形A 93.3mgを秤量した。これに、1,4-ジオキサン(3mL)を添加した。この混合物を室温に置き、4日にわたり撹拌した。次いで、試料を吸引ろ別した。フィルタケーキを150℃に置き、約5分にわたり加熱して、化合物11-P4Sの結晶形Dを得た。
2.1 キャラクタリゼーション方法:XPRD、TGA/DSC、及び1H NMRのキャラクタリゼーション方法は、化合物11-P4Sの結晶形Aのものと同一であった。
2.2.1 XPRD
XPRDスペクトルを図5-1に見出し得、このスペクトルの解析データを表16に見出し得た。
化合物11-P4Sの結晶形DのTGA/DSCスペクトルを図5-2に見出し得、このスペクトルから、試料が200℃まで加熱された場合には、重量減少は1.3%であり、且つ249.9℃にて1つの吸熱ピーク(ピーク温度)が存在し、及び188.0℃にて1つの発熱ピーク(ピーク温度)が存在することが示された。
1H NMRを図5-3に見出し得、これから、この試料では、p-トルエンスルホン酸と遊離塩基とのモル比が1.0:1.0であり、且つ1,4-ジオキサンの残留が検出されないことが示された。
工程1.調製方法
化合物11-P4Sの結晶形A 62.1mgを秤量した。これに、IPA(10mg
)を添加した。この混合物を50℃に置き、2時間にわたり撹拌した。ろ液を緩や
かに冷却して(50℃~5℃、0.1℃/分)、適切な量の個体を析出させた。次いで、
吸引ろ過を実施して、化合物11-P4Sの結晶形Eを得た。
2.1 キャラクタリゼーション方法:XPRD、TGA/DSC、及び1H NMRのキャラクタリゼーション方法は、化合物11-P4Sの結晶形Aのものと同一であった。
2.2.1 XPRD
XPRDスペクトルを図6-1に見出し得、このスペクトルの解析データを表17に見出し得た。
化合物11-P4Sの結晶形EのTGA/DSCスペクトルを図6-2に見出し得、このスペクトルから、試料が200℃まで加熱された場合には、重量減少は2.8%であり、且つ244.6℃にて1つの吸熱ピーク(ピーク温度)が存在することが示された。
1H NMRスペクトルを図6-3に見出し得、このスペクトルから、この試料では、p-トルエンスルホン酸と遊離塩基とのモル比が1.0:1.0であり、且つMTBEの残留が検出されないことが示された。
工程1:化合物11-P3からのモノ-p-トルエンスルホネートの形成:
1)11-P3S 11.6mgを秤量し、1.5mLのHPLCバイアルに入れた。
2)この固体に、エタノール(348μL)を添加した。温度を60℃まで上昇させ、次いで、固体が完全に溶解して透明な溶液が得られるまで、60℃で一定に保った。
3)この溶液を、静置したまま0.5℃/分で25℃まで冷却した。
4)結晶が析出し、この反応バイアルを顕微鏡で観察した。結晶を定量し、XRSD実験を実行した。
3.1 機器パラメータ及びデータ収集
3.1.1 機器パラメータ:化合物11-P4Sの結晶形Aの第3.1.1節のものと同一
化合物11-P3Sの結晶形は、無色の塊(0.20×0.20×0.10mm3)であり、斜方晶P21212空間群に属していた。単位格子パラメータ:a=27.1619(4)Å、b=16.2359(2)Å、c=6.13160(10)Å、α=90°、β=90°、γ=90°、V=2704.02(7)Å3、Z=4。密度の計算値:Dc=1.375g/cm3、単位格子の電子数:F(000)=1184.0、単位格子の線吸収係数:μ(CuKα)=1.614mm-1、及び回折実験温度:T=99.99(11)K。化合物11-P3Sの分子構造の楕円グラフを図7に見出し得、この化合物の構造は、
工程1:化合物19P2からのモノ-p-トルエンスルホネートの形成:
19P2S 10mgを秤量し、1.5mLのHPLCバイアルに入れた。この固体に、エタノール(500μL)を添加した。温度を40℃まで上昇させ、次いで、固体が完全に溶解して透明な溶液が得られるまで、40℃で一定に保った。この溶液を、静置したまま0.3℃/分で25℃まで冷却した。結晶が析出し、この反応バイアルを顕微鏡で観察した。結晶を定量し、XRSD実験を実行した。
(1)機器パラメータ:化合物11-P4Sの結晶形Aの第3.1.1節のものと同一。
この回折実験では、24167個の回折点を収集し、ここで、4899個の独立した回折点が含まれ(Rint=0.0646)、回折収集範囲:2θ=6.33~133.182°、及び回折指数範囲:-7≦h≦5、-18≦k≦17、-33≦l≦33であった。SHELXT(Sheldrick,G.M.2015.Acta Cryst.A71,3-8)を使用して構造解析を実行し、(F2に対して)SHELXL(Sheldrick,G.M.2015.Acta Cryst.C71,3-8)を使用して構造精密化を実行した。4899個の独立した回折点の内、構造精密化に関与するパラメータは、339個であった。精密化後、S=1.020、R1=0.0373、及びwR2=0.0920であった。残留電子密度値は、0.38及び-0.33eÅ-3であった。
工程1:断片2
工程1:断片3
合成経路:
MSm/z(ESI):282.2[M+H]+
比較例43~44の調製に関しては、比較例42の方法を参照し得、比較例43~44の化合物を、エタノール及び水素化ホウ素ナトリウムの溶液による還元によって調製した。
MSm/z(ESI):565.4[M+1]
I.ラットでの、VMAT2に結合する化合物の活性の放射能検出(結合アッセイ)
1.実験目的:
ラットにおいてVMAT2への様々な化合物の結合のIC50及びKi値を決定すること、並びにVMAT2に対する化合物の親和性を評価すること
リガンド:[3H]ジヒドロテトラベナジン(DHTBZ)(10nM)
試験化合物:
化合物1~9、11、12、14、16~19、20、27、28、32、11-P3、11-P4、及び21-P3:上記の対応する実施例に従って調製した
比較例35~43の化合物:比較例35~43に従って調製した
TBZ:Jiangsu Vcare Pharmatech Co.,Ltd.、ロット番号:TBZ-113030
DHTBZ:Jiangsu Vcare Pharmatech Co.,Ltd.、ロット番号:67-25-1521-59C
DHTBZ-X(ラセミ体):原材料としてTBZを使用して、国際公開第2008058261号パンフレットの反応スキーム1に従って調製した
VBZ:下記の方法に従って調製した:VBZキシレンスルホネート(0.5g、0.65mmol)を、水(10mL)に溶解させた。この混合物を飽和NaHCO3溶液でpH=8に調整し、EA(20mL×3回)で抽出した。有機相をまとめ、無水硫酸で脱水し、濃縮して、VBZ(0.26g)を白色固体として得た。
3.1 ラット脳胞膜の調製
体重175±25gの雄のWistarラットを選択し、このラットの脳全体(小脳を除く)を外科的に分離し、予め冷やしたスクロース溶液(20mL、0.32M)に入れ、Teflon乳房ホモジナイザーでホモジナイズした。ホモジネートを4℃で12分にわたり1000gにて遠心分離し、上清を吸引して、4℃でさらに10分にわたり22,000gにて遠心分離を実行した。上清を廃棄し、得られた沈殿物を氷冷MilliQ水(18mL、Millipore Corporation,Billerica,MA)に入れ、5分にわたりインキュベートし、浸透圧ショックを与えて細胞膜を粉砕した。次いで、HEPES溶液(25mM、2mL)及び酒石酸カリウム溶液(100mM、2mL)の添加により、モル浸透圧濃度を回復させた。得られた試料を、4℃で20分にわたり20,000gにて遠心分離した。上清を吸引し、MgSO4溶液(1mM、20μL)を添加した。この溶液を、4℃で45分にわたり100,000gにて遠心分離した。沈殿物を回収し、氷冷アッセイ緩衝液(25mM HEPES、100mM 酒石酸カリウム、5mM MgSO4、0.1mM EDTA、及び0.05mM EGTA、pH 7.5)に再懸濁させて、小胞懸濁液を得た。
検出では96ウェルプレートを使用し、2重又は3重のウェルを配置した。この96ウェルプレートの各ウェルに、小胞懸濁液(50μL、タンパク質(32μg)を含む)、[3H]ジヒドロテトラベナジン(DHTBZ)(10nM)、及び試験化合物を含む溶液(50μL)(阻害剤は、1nM~1000nMの濃度であるか又は他の所望の濃度である)を入れ、30分にわたり25℃でインキュベートした。非特異的リガンドRo4-1284(10μM)を使用して、非特異的結合を決定して予測し、薬理学的特性が明確なテトラベナジン(TBZ)、DHTBZ、VBZ、又はDHTBZラセミ体を、陽性コントロールとして使用し、且つ新規化後物の活性との比較に使用した。インキュベーションの完了後、反応溶液をフィルタプレートにろ過し(細菌フィルタ及び回収器、PerkinElmer Life and Analytical Sciences)、続いて、フィルタ膜を、氷冷緩衝液(25mM HEPES、100mM 酒石酸カリウム、5mM MgSO4、及び10mM NaCl、pH7.5)350μLで5回洗浄した。このフィルタプレートを乾燥させ、底面を密封した。各ウェルに、シンチレーションカクテル(MicroScint 20;PerkinElmer Life and Analytical Sciences)40μLを添加した。フィルタ上の放射能を、液体シンチレーション分光法(TopCount NXT;PerkinElmer Life and Analytical Sciences)により決定した。
上記の放射能アッセイ結果に基づいて、IC50及びKiを算出した。IC50を、MathIQTM(ID Business Solutions Ltd.,UK)を使用する非線形最小二乗回帰分析により算出した。Cheng及びPrusoffの方程式(Cheng,Y.,Prusoff,W.H.,Biochem.Pharmacol.22:3099-3108,1973)を使用して、Ki値を算出した。Ki値を、試験化合物のIC50、及びEurofins Panlabs社の放射能検出方法での過去のKDと組み合わせて算出した。
1.目的
化合物VMAT2の取り込みアッセイの実行
(1)試薬及び材料
3H-ドーパミン、スクロース、HEPES、酒石酸カリウム、EGTA、EDTA、ATP、MgCl2、MgSO4、アスコルビン酸、TBZ、BCA Protein Assayキット
凍結小胞懸濁液:SDラットの線条体を使用する抽出により、小胞懸濁液を調製した。氷浴下で、スクロース溶液(0.32M、28mL)に、新鮮なラットの線条体を添加し、ホモジナイザーにより、1回のホモジナイズ当たり10秒で10回ホモジナイズした。4℃で、ホモジネートを10分にわたり2000gにて遠心分離した。上清を吸引し、さらに30分にわたり10000gにて4℃で遠心分離を実行した。沈殿物を分離し、スクロース溶液(4mL、0.32M)に再懸濁させた。MilliQ水(14mL、氷浴下)を添加し、この混合物に浸透圧ショックを与えた。1分後、HEPES緩衝液(0.25M、1.8mL)及び酒石酸カリウム溶液(1M、1.8mL)を添加した。4℃で、この混合物を30分にわたり20000gにて遠心分離した。上清を回収し、さらに60分にわたり55000gにて4℃で遠心分離を実行した。上清を廃棄した。MgSO4(200μL、10mM)、HEPES(200μL、0.25M)、及び酒石酸カリウム(200μL、1M)を添加した。4℃で、この混合物を45分にわたり55000gにて遠心分離した。沈殿物を回収し、検出緩衝液(10mL、25mM HEPES、100mM 酒石酸カリウム、50μM EGTA、100μM EDTA、20mM MgCl2、及び2mM ATP、pH7.4)に再懸濁させ、500μL/チューブでサブパッケージし(sub-packaged)、-80℃で凍結させて使用した。
アッセイ緩衝液:25mM HEPES、100mM 酒石酸カリウム、50μM EGTA、100μM EDTA、20mM MgCl2、1.7mM アスコルビン酸、2mM ATP、pH 7.4。アスコルビン酸及びATPを、アッセイ前に添加した。
洗浄緩衝液:25mM HEPES、100mM 酒石酸カリウム、50μM EGTA、100μM EDTA、pH 7.4。
化合物11~15、18~20、26~28、32、11-P4、及び21ーP3;上記の対応する実施例に従って調製した
DHTBZ、DHTBZ-X、VBZ:上記の結合アッセイでのものと同一の供給源
Unifilter-96 GF/Bフィルタプレート、Perkin Elmer(カタログ番号6005177);
96-ウェルV-底ポリプロピレンプレート、Agilent(カタログ番号5042-1385);
TopSeal-A密封フィルム、Perkin Elmer(カタログ番号6050185);
MicroBeta2(PerkinElmer);
Cell harvester C961961(Perkin Elmer);
SpectraMax 340PC(Molecular Devices);
(1)試験試料及びTBZを、最高濃度0.2mM及び最低1μMの8種の濃度勾配へとDMSOで4回希釈した。希釈した試験化合物及びTBZ 1μlを、ピペットで検出プレートに移した。
(2)TBZ(1μl、2mM)を、非特異的結合コントロール(LC)と使用するために添加し、DMSO 1μlを、全結合コントロール(HC)として使用した。
(3)希釈した小胞懸濁液100μl(ストック溶液15μlを含む)を96ウェルプレートに入れ、15分にわたり37℃でインキュベートした。
(4)3H-ドーパミン(17.92μM)を、アッセイ緩衝液で0.2μMに希釈した。検出プレートに3H-ドーパミン(100μl、0.2μM)を添加して最終濃度0.1μMにし、10分にわたり37℃でインキュベートした。
(5)この反応混合物を、回収器のGF/Bプレートに通してろ過し、このGF/Bプレートを、予め冷やしたリンス緩衝液で4回すすいだ。
(6)このプレートを、少なくとも1時間にわたり0℃で乾燥させた。
(7)乾燥後、Perkin Elmer Unifilter-96底密封テープを使用して、このフィルタプレートを密封した。Perkin Elmer Microscint 20カクテル50μlを添加した。Perkin Elmer TopSeal-A密封フィルムを使用して、このフィルタプレートの上部を密封した。
(8)Perkin Elmer MicroBeta2 Readerを使用して、このろ過膜上で捕捉された3Hの数を計数した。
(9)データを、Prism 5.0ソフトウェアで解析した。モデル「log(Inhibitor)vs.response- Variable Slope」を使用してIC50を算出し、方程式IC何か=IC50*(何か/(100-何か))1/傾斜を使用してIC90を算出した。
1.実験材料
a)試験化合物
化合物11、16、21~23;比較例44及び45;対応する実施例に従って調製した
DHTBZ:Jiangsu Vcare Pharmatech Co.,Ltd.、ロット番号67-25-1521-59C
VBZ:実験例1で述べた方法に従って調製した
b)ビヒクル:20% ソルトール(solutol)溶液、ソルトールロット番号BCBQ5646V、Sigma社
c)試験動物:SDラット、クリーングレード、雄、体重約220g
化合物11、化合物16、比較例44の化合物、及びDHTBZをそれぞれ、雄のSDラットに、強制経口により投与した(4匹の動物/群)。投薬量は、10μmol/kgであった。投薬後0.25、0.5、1、2、3、4、6、8、及び12時間で、血液サンプル(約0.2mL/時点/ラット)をヘパリン処理チューブに採取した。採取後30分以内に、このサンプルを遠心分離して血漿を分離して1.5mlのEPチューブに移し、-20℃で保存して検出した。
VBZ、化合物21、化合物22、化合物23、及び比較例45の化合物を、雄のSDラットに、強制経口により投与した(3匹の動物/群)。投薬量は、12μmol/kgであった。投薬後0.5時間、2時間、及び6時間で、血液サンプル(約1mL/時点/ラット)をヘパリン処理チューブに採取した。採取後30分以内に、このサンプルを遠心分離して血漿を分離して1.5mlのEPチューブに移し、-20℃で保存して検出した。ラットを屠殺した後、脳組織を摘出し、生理食塩水で洗浄し、ろ紙で乾燥させた。脳血管を剥離し、残存する脳組織を秤量し、-20℃で保存した。
サンプルの前処理に、タンパク質を沈殿させる方法を使用し、この方法を、下記のように簡単に説明し得る:内部標準を含むアセトニトリル200μL/400μLそれぞれを使用することにより、血漿25μL/脳組織ホモジネート50μLで、タンパク質沈殿を実行した。高速遠心分離後、上清を水で希釈し(1:1(V/V))、分析に供した。
5.1 薬物動態試験
化合物11、化合物16、比較例44の化合物、及びDHTBZを強制経口により投与したSDラットで実行した試験の結果を、図9に見出し得、この結果から、比較例44の化合物及びDHTBZと比較して化合物11は曝露量が多いことが示された。
5.2.1 脳中の濃度:
SDラットでの、VBZ、化合物21,化合物22、化合物23、及び比較例45の強制経口投与後の脳組織中での原化合物の分布を表10に見出し得、脳組織中での活性代謝産物(DHTBZ、化合物11、化合物12、化合物13、及び比較例44の化合物)の分布を図11に見出し得た。
SDラットでの、VBZ、化合物21、化合物22、化合物23、及び比較例45の強制経口投与後の原化合物の脳/血漿比を図12に見出し得、実験結果から下記が示された:投薬後様々な時点で、化合物21の脳/血漿比は、VBZの脳/血漿比の3.4~6.8倍であり、且つ他の化合物の脳/血漿比と比べて高い。
1.試験材料:
a)試験化合物
11-P4:実施例29に従って調製した
21-P3:実施例31に従って調製した
VBZ:実験例1で述べた方法に従って調製した
DHTBZ:Jiangsu Vcare Pharmatech Co.,Ltd.、ロット番号67-25-1521-59C
b)ビヒクル:20% ソルトール溶液、ソルトールロット番号BCBQ5646V、Sigma社
c)試験動物:24匹のSDラット、クリーングレード、雄、体重約220g、無作為化群分け、3匹のラット/群(強制経口投与用の3匹;静脈内投与用の3匹)。
(1)医薬溶液の調合:21-P3、11-P4、VBZ、及びDHTBZのそれぞれ約20mgを正確に秤量し、それぞれの化合物の濃度が1μmol/mLとなるまで、適量のビヒクルに溶解させた。
LC-MS/MS法を使用することにより、SDラット血漿中で、化合物VBZ、DHTBZ、21-P3、及び11-P4の濃度を決定し、VBZ及び21-P3の投与群の場合には、それぞれの代謝産物DHTBZ及び11-P4の濃度も決定した。サンプルの前処理に、タンパク質を沈殿させる方法を使用し、内部標準を含むアセトニトリル200μLを使用することにより、血漿25μLでタンパク質沈殿を実行した。高速遠心分離後、上清を水で希釈し(1:1(V/V))、注入して分析した。
(1)化合物11-P4は、インビボでの曝露量(AUC)が有意に増加しており、
静脈内投与の曝露量は、DHTBZの場合のほぼ3倍であり、強制経口投与の曝露量は、DHTBZの場合の約ほぼ4倍であり;
(2)静脈内投与により、化合物11-P4は、半減期がより長くなり、従って投与頻度を減少させ得;
VBZからDHTBZへの変換率は、15.9%であり、化合物21-P3から11-P4への変換率は、26.8%であり;VBZと比較して、化合物21-P3は、変換率が高かった。VBZ及び21-P3のVMAT2結合活性は、DHTBZ及び11-P4の結合活性と比べてはるかに低いことから、試験結果から、等モル用量では、VBZと比較して、化合物21-P3はアベイラビリティが高く、且つはるかに強い有効性を生じ得ることが示された。
(3)強制経口投与により、VBZ及びDHTBZと比較して、化合物21-P3及び化合物11-P4は、バイオアベイラビリティが高かった。
1.目的
この試験では、SDラット自立活動モデルを使用した。VBZキシレンスルホネートを、コントロールとして使用した。化合物21及び21-P3の等モル用量を、単回強制経口投与で投与した。オープンフィールドでのマウスの移動距離を比較して、化合物21、21-P3と、コントロール薬物VBZキシレンスルホネートとの薬力学的差違を調べた。
2.1 試験動物:32匹のSDラット、SPF-グレード、雄、5~7週齢、体重:200~220g、試験前少なくとも1週間にわたり予め慣れさせた。動物の供給源:Ji’nan Pengyue Laboratory Animal Technique Co.,Ltd.;Animal Certification Number:SCXK(LU)20140007
化合物21:実施例21に従って調製した
化合物21-P3:実施例31に従って調製した
VBZキシレンスルホネート:Jiangsu Vcare Pharmatech Co.,Ltd.、ロット番号334-1-1517-15
調製方法:適量の薬物を秤量し、少量のCMS(総量の1%以下)に溶解させた。次いで、20% ソルトールを添加して所望の薬物濃度を得、DMSOの最終濃度は<4%であった。
試験前日に、ラットを、体重に従って下記の4つの群に無作為に分類した:コントロー
ル群(NS、溶媒中に試験薬物が入っていない)、VBZキシレンスルホネート群、化合物21群、21-P3群(8匹の動物/群)。ラットを検出ボックスに入れ、10分にわたり予め慣れさせ、次いで絶食させた。動物の群分け及び投薬の情報を、表35で詳述した。
試験日に、動物を、試験室で少なくとも1時間にわたり慣れさせた。各群のラットに、1回の単回強制経口で、表35での用量に従ってビヒクル又は対応する薬物それぞれを投与し、次いで、活動室に入れた。投薬後2~3時間でのラットの総移動距離を記録し、TopScanモニタリングシステムを使用して分析した。同一群のラットは、8つの活動室の内の1つの同室に入れるべきではなく、試験の各ラウンドでのコントロール群から少なくとも1匹を存在させて、相互干渉を予防した。試験の各ラウンドの終了時に、排泄物を掃き出し、活動室を清掃して、ラットの運動活動への無関係な妨害因子(臭気等)の影響を回避した。
投薬後2時間~3時間でのラット総移動距離を記録して、TopScanモニタリングシステムを使用して分析し、総移動距離の減少率(RR)を算出し、ここで、RR=(コントロール群移動距離-投与群移動距離)/コントロール群移動距離×100%であった。
試験データを、平均±平均の標準誤差(平均±SEM)で表した。一元配置分散分析(ANOVA)によりPASW Statistics 18.0ソフトウェアを使用することにより、各時点での様々な群間の距離を比較した。全ての検定は両側検定であり、p<0.05は、差違が統計的に有意であることを示した。
コントロール群(移動距離=16210±3465mm)と比較して、VBZ群は、ラット自律活動距離が有意に減少しており(移動距離=4882±1022mm、P<0.05);化合物21群は、自律活動距離が減少しており(移動距離=11630±2839mm、P>0.05);化合物21-P3群は、ラットの自律活動距離が有意に減少しており(移動距離=2956±1101mm、P<0.01)、コントロール群との比較において有意差があった。VBZ群、化合物21群、及び化合物21-P3群の総移動の減少率は、それぞれ、69.9%、28.3%、及び81.8%であった。VBZ群と比較して、化合物21-P3群は、強い有効性を示した。
試験方法は、実験例4と同一であった。動物の群分け及び投薬の情報を、表36で詳述した。
1.試験化合物
化合物11~13、15、及び16;比較例44の化合物:上記の対応する実施例に従って調製した。
インキュベーション:100μLのインキュベーション系は、下記を含んだ:肝ミクロソーム(ヒト、ラット、マウス、サル、又はイヌ)(0.5mg/mL)、リン酸ナトリウム緩衝液(100mM)、及び塩化マグネシウム(10mM)。このインキュベーション系に、化合物11~13、15、及び16、並びに比較例44の化合物を、1μMの最終濃度まで添加した。3分にわたる37℃でのこの系のプレインキュベーション後、NADPHを、1mMの最終濃度まで添加した。反応を開始させた。0分、5分、15分、30分、及び60分にわたり、この系をインキュベートした後、氷冷アセトニトリル200μLを添加して反応を終了させ、この反応系を-20℃で保存して検出した。各時点での各試料を2重に平行して処理し、補酵素を含まないブランクコントロール群及び陽性コントロール群を用意した。
アセトニトリルによる終了後、この試料に、ある特定の量の内部標準を添加した。10分にわたる13000rpmでの遠心分離後、上清を水で1:1(V/V)に希釈し、LC-MS/MS法を使用して、化合物11~13、15、及び16、並びに比較例44の化合物の濃度を決定した。相対的残存量を縦軸に取り、時間を横軸に取った。半対数プロットを使用して各化合物の排出速度定数kを算出し、方程式t1/2=0.693/kを使用して、肝ミクロソームインキュベーション系における各化合物の排出半減期(t1/2)を算出し、結果を表38に見出し得た。
1.試験薬物
化合物11-P4:実施例29に従って調製した
化合物11-P4Sの結晶形A:実施例30に従って調製した。
化合物11-P4と、化合物11-P4Sの結晶形Aとを、それぞれ、1:20の比で賦形剤と混合した。次いで、この混合物を、5日にわたり60℃にて開放で置いた。化合物11-P4/化合物11-P4Sの結晶形Aをサンプリングし、純度を検出した。
1.試験薬物
化合物11-P4Sの結晶形A/D/E:実施例30に従って調製した。
11P4S結晶形AのIPA及びIPAc飽和溶液(2mL)に、11-P4S結晶形A/D/E(各5mg)をそれぞれ添加し、懸濁させ、17時間にわたり室温/50℃で撹拌した。次いで、固体に対してXRPDを実行した。
Claims (24)
- 下記式(I)
[式(I)中、
「---」は、単結合及び二重結合から選択され;
「---」が単結合である場合には、Rは、OH及び以下の基:
から選択され;
「---」が二重結合である場合には、Rは、Oであり;
R1は、メチルであり;
R2は、非置換C2~10アルキル、C3~6シクロアルキル-C1~6アルキル、及び2個若しくは3個のR3で置換されているC2~10アルキルから選択され;
及び
R3は、F、Cl、及びBrから選択される]
で表される化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩。 - R2は、非置換C2~5アルキル及び2個若しくは3個のR3で置換されているC2~5アルキルから選択される、請求項1に記載の化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩。
- R1は、メチルであり;
R2は、エチル、プロピル、イソブチル、トリフルオロエチル、トリフルオロプロピル、トリフルオロブチル、トリフルオロペンチル、ビスフルオロエチル及びシクロプロパンメチレンから選択され;
「---」は単結合であり、RはOH及び以下の基:
から選択されるか、又は「---」は二重結合であり且つRはOである、請求項1又は2に記載の化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩。 - 下記式:
により表される化合物から選択される請求項1に記載の化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩。 - 下記式:
により表される化合物である請求項1~4の何れか一項に記載の化合物、又はその立体異性体若しくは薬学的に許容される塩。 - 下記式:
により表される化合物の結晶であって、前記結晶は、斜方晶P2 1 2 1 2 1 空間群に属する結晶形Aであり、a=27.14408(13)Å、b=16.24056(7)Å、c=6.13775(3)Å、α=90°、β=90°、γ=90°、V=2705.74(2)Å3、Z=4である、結晶。 - 下記式:
により表される化合物の結晶であって、前記結晶は結晶形Aであり、Cu-Kα放射線により得られたX線粉末回折パターンは、下記の2θ反射角:6.33±0.2°、10.87±0.2°、及び18.89±0.2°で決定された特徴的なピークを含む、結晶。 - 前記結晶形Aが、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される6.33±0.2°、10.87±0.2°、16.61±0.2°、18.89±0.2°、19.27±0.2°、及び22.19±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む、請求項7に記載の結晶。
- 前記結晶形Aが、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される6.33±0.2°、10.87±0.2°、13.77±0.2°、16.61±0.2°、18.20±0.2°、18.89±0.2°、19.27±0.2°、20.05±0.2°、22.19±0.2°、24.60±0.2°、及び24.77±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む、請求項8に記載の結晶。
- 下記式:
により表される化合物の結晶であって、前記結晶が、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される6.32±0.2°、5.42±0.2°、及び10.85±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む結晶形Bである、結晶。 - 前記結晶形Bが、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される6.32±0.2°、5.42±0.2°、10.85±0.2°、16.60±0.2°、18.88±0.2°、及び22.02±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む、請求項10に記載の結晶。
- 下記式:
により表される化合物の結晶であって、前記結晶が、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される5.81±0.2°、6.33±0.2°、及び12.86±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む結晶形Cである、結晶。 - 前記結晶形Cが、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される5.81±0.2°、6.33±0.2°、7.99±0.2°、12.86±0.2°、19.09±0.2°、及び23.17±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む、請求項12に記載の結晶。
- 前記結晶形Cが、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される5.81±0.2°、6.33±0.2°、7.99±0.2°、10.31±0.2°、11.63±0.2°、12.86±0.2°、18.16±0.2°、19.09±0.2°、23.17±0.2°、24.00±0.2°、及び27.32±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む、請求項13に記載の結晶。
- 下記式:
により表される化合物の結晶であって、前記結晶が、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される6.02±0.2°、及び23.91±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む結晶形Dである、結晶。 - 前記結晶形Dが、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される5.31±0.2°、6.02±0.2°、18.88±0.2°、22.12±0.2°、及び23.91±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む、請求項15に記載の結晶。
- 下記式:
により表される化合物の結晶であって、前記結晶が、Cu-Kα放射線を用いたX線粉末回折により測定される6.06±0.2°、18.32±0.2°、及び30.79±0.2°に2θ回折角の特徴的なピークを含む結晶形Eである、結晶。 - 下記式:
により表される化合物の結晶形Aの結晶であって、前記結晶形Aが、P212121空間群とa=6.28880(10)Å、b=15.7958(3)Å、c=27.9234(6)Å、α=90°、β=90°、γ=90°、V=2773.82(9)Å3、Z=4の単位格子パラメータとを有する斜方晶系に属する、結晶。 - 請求項1~5のいずれか一項に記載の化合物、その立体異性体若しくは薬学的に許容される塩、又は請求項6~18のいずれか一項に記載の結晶と、薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物。
- 請求項1~5のいずれか一項に記載の化合物、その立体異性体若しくは薬学的に許容される塩、又は請求項6~18のいずれか一項に記載の結晶、又は請求項19に記載の医薬組成物を含む、運動亢進障害の処置のための医薬。
- 前記運動亢進障害が、ハンチントン舞踏病、遅発性ジスキネジア、トゥレット症候群、又は痙攣を含む、請求項20に記載の医薬。
- 下記の調製工程:
(1)上記左式のフラグメント1化合物をR 2 -Xと反応させて式(II)の化合物を製造する工程;
(2)上記左式の反応物I化合物をR 2 -Xと反応させて上記中央式の中間体化合物を製造し、その後、中間体化合物を3-ジメチルアミノメチル-5-メチル-2-ヘキサノンと反応させて式(II)の化合物を製造する工程;又は
(3)上記左式の反応物I化合物を3-ジメチルアミノメチル-5-メチル-2-ヘキサノンと反応させて上記中央式のフラグメント1化合物を製造し、その後、フラグメント1化合物をR 2 -Xと反応させて式(II)の化合物を製造する工程
を含む、式(II)の化合物を調製するための方法であって、
R2は、非置換C2~10アルキル、C3~6シクロアルキル-C1~6アルキル、及び、2個、若しくは3個のR3で置換されているC2~10アルキルから選択され、R3は、F、Cl及びBrから選択され;
Xは、脱離基である、
方法。 - R2が、非置換C2~5アルキル、及び、2個、若しくは3個のR3で置換されているC2~5アルキルから選択される、請求項22に記載の方法。
- R2が、エチル、プロピル、イソブチル、トリフルオロエチル、トリフルオロプロピル、トリフルオロブチル、トリフルオロペンチル、ビスフルオロエチル及びシクロプロパンメチレンから選択され;
XがCl、Br及びIから選択される、請求項22又は23に記載の方法。
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