JP7702871B2 - 腫瘍細胞外マトリックスにおける腫瘍性タンパク質に特異的なペプチドpet/spectプローブ - Google Patents
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Description
本出願は、2019年1月17日に出願された米国仮出願第62/793,789号の優先権を主張し、その主題は参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本発明は、国立衛生研究所(NIH)によって授与された助成金番号CA211762およびCA194518の下で政府の支援によって行われた。米国政府は、本発明において一定の権利を有している。
式中、Pは、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号5、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号9、配列番号19、配列番号20、配列番号21、配列番号22、配列番号23、配列番号24、およびそれらのレトロインベルソ型アミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むペプチドであり、Cは、PETまたはSPECT造影剤であり、Lは、ペプチドをPET/SPECT造影剤に共有結合させる任意選択的なリンカーである。
式中、
P1は、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号5、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号9、配列番号19、配列番号20、配列番号21、配列番号22、配列番号23、配列番号24、およびそれらのレトロインベルソ型アミノ酸配列からなる群から選択され、
R1は、任意選択的であり、存在する場合、-(CH2)n-、-(OCH2CH2)n、もしくはアリーレンなどのアルキレン、アルキレンオキシド、アリーレン、またはアルキレンアリーレンリンカーを含むことができ、nは、1~18の整数であり、
Mは、67Ga、68Ga、64Cu、99mTc、111In、89Zr、90Y、153Sm、もしくは89Srからなる群から選択される金属、またはそれらの塩である。
当該技術分野で認識されている用語であり、注射などの経腸および局所投与以外の投与方法が含まれ、静脈内、筋肉内、胸膜内、血管内、心膜内、動脈内、くも膜下腔内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、気管内、皮下、表皮下、関節内、被膜下、くも膜下、脊髄内および胸骨内の注射および注入が含まれるが、これらに限定されない。
式中、Pは、標的化ペプチドであり、Cは、PET/SPECT造影剤であり、Lは、ペプチドを造影剤に共有結合させる任意選択的なリンカーである。
式中、
P1は、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号5、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号9、WNYPFRL(配列番号19)、SNTSYVN(配列番号20)、SFSYTSG(配列番号21)、WSPAPMS(配列番号22)、TREHPAQ(配列番号23)、ARIIDNA(配列番号24)、およびそれらのレトロインベルソ型アミノ酸配列からなる群から選択され、
R1は、任意選択的であり、存在する場合、アルキレン、アルキレンオキシド、アリーレン、またはアルキレンアリーレンリンカーを含み、例えば、
-(CH2)n-、-(OCH2CH2)n、またはアリーレンなどが挙げられ、nは1~18の整数であり、
Mは、67Ga、68Ga、64Cu、99mTc、111In、89Zr、90Y、153Sm、もしくは89Srからなる群から選択される金属、またはそれらの塩である。
および67Ga、68Ga、64Cu、99mTc、111In、89Zr、90Y、153Sm、もしくは89Srからなる群から選択されるか、またはそれらの塩であるPET/SPECT放射性核種を有することができる。
本発明者らは、ZD264Cu-DOTAコンジュゲートをEDB-FNのためのPETプローブとして開発し、その有効性を侵攻性PC3および遅増殖性LNCaPヒト前立腺腫瘍異種移植片を担持するマウスにおけるPETイメージングについて評価した。本発明者らは、EDB-FNは侵攻性PC3腫瘍で高度に発現され、遅増殖性で非転移性のLNCaP腫瘍では無視できる程度で発現されたことを示した。EDB-FNを標的とした造影剤ZD2-Gd(HP-DO3A)を用いたMRIは、LNCaP腫瘍よりもPC3腫瘍で強いコントラスト増強を示した。64Cuの使用は、その半減期が12.74時間であるため特に魅力的であり、特に膀胱からの最小限のバックグラウンド推測で、前立腺における癌検出のための延長されたイメージング時間枠を提供する。PETプローブは、ZD2ペプチドを大環状配位子であるDOTAにコンジュゲートし、それに続く64CuCl2との錯体形成によって合成した。癌の検出および腫瘍侵攻性の特徴付けにおけるPETプローブの能力を、PC3およびLNCaP腫瘍を担持するマウスで評価した。
ZD2-PEG-DOTAおよびキレートの合成
化学合成に使用される試薬は、特に明記されていない限り、Sigma-Aldrich(Saint Louis,MO,USA)から購入した。Fmoc保護アミノ酸および2-クロロトリチルクロリド樹脂は、Chem-Impex International,Inc.(Wood Dale,IL)から入手した。スペーサーであるFmoc-8-アミノ-3,6-ジオキサオクタン酸(Fmoc-NH-(CH2CH2O)2-CH2COOH)は、Chempep(Wellington,FL)から入手した。1,4,7,10-テトラアザ-シクロドデカン-1,4,7-トリス-tert-ブチルアセテート-10-酢酸(DOTA-トリス(t-Bu))は、TCI America(Port-land,OR)から購入した。
動物試験は、Case Western Reserve University(CWRU)のInstitutional Animal Care and Use Committee(施設内動物管理使用委員会)によって承認されており、すべての対象がインフォームドコンセントフォームに署名した。PC3およびLNCaP細胞は、American Type Culture Collection(ATCC,Manassas,VA,USA)から入手し、10%ウシ胎児血清、100U/mLペニシリン、および0.1mg/mLストレプトマイシンを補充したRoswell Park Memorial Institute培地(Thermo Fisher Scientific,Waltham,MA)中で、37℃および5%CO2に維持した加湿インキュベータ内で培養した。雄の無胸腺ヌードマウス(4~6週齢)は、Case Comprehensive Cancer Center(Cleveland,OH,USA)から入手し、CWRU Animal Core Facilityで飼育した。高濃度Matrigel(Corning,Tewksbury,MA)中の300万個の細胞を、腫瘍接種に使用した。LNCaP細胞を、マウスの左側腹部に皮下接種した。4週間後、PC3細胞をPETイメージングのために同じマウスの右側腹部に接種した。
放射性同位体64Cu(II)は、University of Wisconsin-Madison(Madison,WI)から入手した。ZD2-PEG-DOTAのCu(II)とのキレート化は、放射性標識と同様の条件で0.1N HCl水溶液中の非放射性CuCl2を用いて最初に試験した。PBS緩衝液(pH7.4)中のZD2-DA-DOTAおよびCuCl2溶液の等モルを混合し、45℃で30分間撹拌した。ZD2-DA-(Cu-DOTA)の形成は、MALDI-TOF質量分析によって検証された(M+1:1487.8、実測;1486.04、計算)。放射性標識のために、10mCiの64Cu(II)を200μLの0.1N HClに溶解した。20マイクロリットルの64Cu(II)溶液(約1mCi)を1.5mLマイクロ遠心チューブ中で480μLのZD2-DA-DOTA(0.05mg/mL、大過剰、PBS)と混合した。次に、容器は、断続的に振とうしながら45℃で30分間加熱して維持した。溶液の最終pHは、注射前にNaOH溶液を使用して中性に調整した。
すべてのインビボイメージング試験は、CWRU Animal Research Committee(動物研究委員会)が承認したプロトコルおよびガイドラインに従って実行された。マウスは、酸素中2%イソフルランで麻酔し、約200μCi[約7.4MBq]のZD2-DA-64Cu(DOTA)を、尾静脈を介して注射した。マウスは、4時間および22時間の取り込み期間のPETスキャン(Inveon microPET,Siemens Medical Solutions USA Inc.)の後に10分間の静的PETスキャンを受けた。画像は、3Dヒストグラムおよびズーム係数1.0で3D-OSEMを使用して再構成した(2回の反復とそれに続く18回反復のMAP)。CTスキャン(Siemens Medical Solutions USA Inc.)を、解剖学的同時登録のためにPET処置後に実施した。AMIDEバージョン1.0.557およびAMIRAソフトウェアを使用してPET/CT画像gを分析した。ROIをPC3およびLNCaP腫瘍について描画して、非特異的(筋肉)結合に対する特異的結合の比を計算した。
注射後22時間の最後のマイクロPET/CTイメージングの後、3匹のマウスを安楽死させ、器官および血液を収集して秤量し、放射能をガンマカウンターで決定した。組織1グラムあたりの注射量の割合は、注射量の2%を含む標準を使用して計算した。
画像取得後、マウスを安楽死させた。腫瘍を採取し、最適な切断温度メディウムに包埋し、-80℃で凍結し、5μmで凍結切片化し、冷アセトンで透過処理した。組織を、PBS中のウシ血清アルブミン(1%)によって室温で1時間ブロックした。抗EDB-FN BC1抗体(Abcam,Cambridge,MA)を、PC3およびLNCaP腫瘍の組織切片とともにインキュベートした。広範に洗浄した後、二次抗マウスAlexa Fluor488抗体を1時間インキュベートした。組織切片を、4’6-ジアミジノ-2-フェニル-インドール(Thermo Fisher,Waltham,MA)を添加したProlong Gold退色防止封入剤によって対比染色した。染色された組織は、Olympus FV1000共焦点レーザー走査型顕微鏡で画像化した。
ZD264Cu-DOTAコンジュゲートは、固相ペプチド化学を使用してZD2ペプチドを大環状キレートDOTAにコンジュゲートさせ、続いて64CuCl2との錯体形成によって合成した(図1)。8-アミノ-3,6-ジオキサオクタン酸の2回反復を有する短いスペーサーを、ペプチドとキレート剤との間に導入した。標的化配位子ZD2-DA-DOTAは、分取高性能液体クロマトグラフィー(HPLC)によって精製し、マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間型(MALDI-TOF)質量分析によって特性評価した[m/z=1425.8(M+1)、実測;1425.5、計算]。標的化PETプローブの調製は、リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)緩衝液(pH7.4)中のZD2-DA-DOTAおよび希HCl(0.1N)中の非放射性CuCl2の等モルの45℃で30分間の錯体形成によって実証され、同じ条件を放射性標識のために使用した。ZD2-DA-(Cu-DOTA)の形成は、MALDI-TOF質量分析によって検証された[m/z=1487.8(M+1)、実測;1486.04、計算]。
本発明者らは、EDB-FNは、ヒト膵臓癌(PaCa)標本およびマウスPaCaモデルからのPaCa組織で高度に発現されており、どちらの事例でも正常な膵臓組織では発現していないことを示した。PaCa腫瘍ECMにおけるEDB-FNの存在は、高感度の分子イメージングおよびPaCa診断のために標的化トレーサーの迅速かつ特異的な結合を可能にする。EDBフラグメントのペプチド配列は、すべての哺乳動物種で保存されている。
材料
ペプチド合成のための保護アミノ酸は、Novabiochem(Burlington,MA,USA)から購入した。N、N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)は、MP Biomedical LLC(Santa Ana,CA,USA)から購入した。O-ベンゾトリアゾール-N,N,N’,N’-テトラメチル-ウロニウム-ヘキサフルオロホスフェート(HBTU)は、Anaspec Inc(Fremont,CA,USA)から購入した。Fmoc-6-アミノヘキサン酸は、Chem-IMPEX International(WD,IL,USA)から購入した。t-ブチルブロモアセテートは、Sigma-Aldrich(St.Louis,MO,USA)から購入した。他のすべての化学試薬は、Thermo Fisherから購入した。1H-NMRスペクトルは、内部標準としてTMSを使用して、500MHz Varian Inova NMR分光計(供給者および住所)で取得した。マトリックス支援レーザー脱離/イオン化飛行時間型(MALDI-TOF)質量スペクトルは、Voyager DE-STR分光計(PerSeptive BioSystems)で、マトリックスとして2,5-ジヒドロキシ安息香酸を用いた線形モードで取得した。ZORBAX 300 SB-C18カラムセミ分取HPLCを備えたAgilent 1100を、以下の条件で配位子の精製のために使用した:溶離液A、H2O/TFA(0.1%);B、MeCN/TFA(0.1%);0%Bで15分、0~50%Bで30分、50%Bで5分、50%~100%Bで2分、100%Bで5分、流速2mL/分、210nmでUV検出。Gaは、0.1M HClで溶離された68Ge/68Gaジェネレータ(ITG isotope technologies Garching GmbH,Germany)から得た。
1,4-ビス(tert-ブトキシカルボニルメチル)-1,4,7-トリアザノナンの合成
1,4,7-トリアザシクロノナン(1.5g、11.62mmol)を氷浴中の無水CHCl3(15mL)に溶解し、CHCl3(30mL)中のブロモ酢酸tert-ブチル(4.98g、25.56mmol)を1.5時間かけてゆっくり加えた。混合物を室温で24時間撹拌し、溶媒を除去した。残留物をDI水(15mL)で処理し、1M HClでpH3に調整し、エーテル(50mL×2)で抽出した。有機相を除去し、水相を1M NaOHでpH8~9に調整し、CH2Cl2(25mL×3)で再度抽出した。最後に、有機相を蒸発させて生成物を得た。収率:36%、1H NMR(500MHz,CDCl3):δ=1.48(s,18H),2.79(s,4H),3.03~3.07(m,4H),3.24(s,4H),3.37(s,4H),9.46(s,H).
1,4-ビス(tert-ブトキシカルボニルメチル)-1,4,7-トリアザノナン(0.3g、0.84mmol)およびブロモ酢酸(0.415g、3mmol)をメタノール(3mL)に溶解し、水(3mL)のK2CO3(0.53g、3.84mmol)を加えた。混合物を室温で一晩撹拌し、濃縮した。次に、残留物を水に溶解し、1M HClによってpH4に調整した。回転蒸発によって水を除去し、生成物をフラッシュクロマトグラフィー(メタノール:酢酸エチルが6.5:3.5)によって精製した。収率:64%、1H NMR(500MHz,D2O):δ=1.48(s,18H),2.84(s,4H),3.08(m,4H),3.35(s,4H),3.47(s,4H).
ZD2-HAは、固相化学を使用して合成した。10mLの無水DMF中の6-アミノヘキサン酸(1.5当量)、HBTU(1.5当量)、DIPEA(1.5当量)の混合物をペプチド合成(0.5mmolペプチド)の最後に樹脂に加え、ニンヒドリンが変色しなくなるまで振とうした(カイザー試験)。次に、樹脂をDMF(10mL×3)およびDCM(10mL×3)を使用して洗浄した。続いて、TFA:H2O:TIBS(96.5:2.5:1)のカクテルを使用して、ZD2-HAを樹脂から3時間切断した。ZD2-HAを冷エチルエーテル中で沈殿させ、遠心分離して凍結乾燥した。生成物をMALDI-TOF質量分析によって特性評価した:[M]について計算したm/z、C47H83N15O18、1146.25;実測(M+H+)、1147.56。
10mLのNaAc-Ac緩衝液(0.1M、pH5.5)に溶解したZD2-HA-NOTA(0.11g、0.1mmol)の溶液に、Ga(NO3)3(0.076g、0.3mmol)を加えた。溶液を室温で一晩撹拌し、最後に、生成物は分取HPLCを使用して精製し、凍結乾燥して、綿状の白色粉末を得た。収率:43%。生成物をMALDI-TOF質量分析によって特性評価した:[M]について計算したm/z、C47H81GaN15O18、1212.51;実測(M+H+)、1213.54。
化学および放射化学
ZD2-HA-NOTAの合成を図6に示した。NOTA-ビス(t-Buエステル)は、出発物質としてTACNから、2回の置換によって調製した。次に、前駆体ZD2-HA-NOTAは、固相ペプチドを使用してNOTA-ビス(t-Buエステル)およびZD2-HAとコンジュゲートすることによって成功裏に合成され、RP-HPLCによって精製されている。精製されたZD2-HA-NOTAは、MALDI-TOF(m/z=1147.56)およびHPLC(純度:約98%)によって特性評価した。NatGa-ZD2-HA-NOTAも調製され、MALDI-TOF(m/z=1213.54)およびRP-HPLC(純度:約96%)によって特性評価した。
EDB-FNの発現は、BXPC3、Capan-1、Panc10.05、およびPanc-1細胞を含む4つの異なるヒト膵臓癌細胞株で、ウエスタンブロッティングによって最初に実証された。これらのヒトPaCa細胞株は、前臨床試験においてマウスPaCa癌モデルを展開するために一般的に使用されている。試験したすべての癌細胞株は、EDB-FNの高発現を有する、図9A。腫瘍モデルは、ATCCの説明に従って、雌ヌードマウスの脇腹における癌細胞の皮下移植によって発達させた。EDB-FNの発現は、BC-1抗EDB-FNモノクローナル抗体を用いた免疫蛍光染色を使用して、ヒトPaCa細胞の腫瘍異種移植片において実証される。図9Bに示すように、EDB-FNの実質的な発現は4つのPaCaサブタイプすべてで観察され、正常な膵臓および筋肉では発現は観察されず、報告された結果と一致した。EDB-FNの高発現が、PaCa腫瘍のECMで観察された。結果は、EDB-FNがPaCa細胞および腫瘍によって高度に発現され、PaCaの分子イメージングおよび検出のための有望な腫瘍性タンパク質標的であることを示す。
ZD2ペプチド(Thr-Val-Arg-The-Ser-Ala-Asp)標的化蛍光トレーサーZD2-Cy5.5は、PaCa腫瘍におけるEDB-FNとのペプチドの結合を評価するために報告された方法に従って合成した。膵臓癌におけるEDB-FNとのZD2ペプチドの結合特異性は、上記の腫瘍異種移植片の腫瘍スライドとのZD2-Cy5.5のインキュベーションによって試験されている。図10に示されるように、ZD2-Cy5.5(赤)の強い結合が、図9Bにおける免疫蛍光染色と同様に、試験した4つの腫瘍組織すべてにおいて観察された。ZD2-Cy5.5の正常な膵臓および筋肉との有意な結合は観察されなかった。PaCaにおけるEDB-FNとのZD2-Cy5.5の強い結合は、BC-1抗EDB-FNモノクローナル抗体(BC-1/ZD2)によってブロックされた。BC-1抗体、続いてZD2-Cy5.5(BC-1/ZD2)とプレインキュベートしたPaCa標本では、赤色蛍光染色はほとんど観察されなかった。結果は、ZD2-Cy5.5およびBC-1の両方が腫瘍組織において同じEDB-FNタンパク質標的に特異的に結合することを示唆する。ZD2ペプチドは、PaCa腫瘍におけるEDB-FNの特異的結合のための有望な標的化剤である。
ヒト膵臓癌におけるEDB-FN発現は、ヒト膵臓癌標本をZD2-Cy5.5で染色することによって示される。図11に示すように、強い赤色蛍光がヒトPaCa標本で観察され、正常な膵臓ではほとんど蛍光が観察されないが、ある程度の蛍光強度が前癌性膵臓上皮内新生物で示された。蛍光強度は、PaCaにおける高いEDB-FN発現、前癌組織における低い発現、および正常な膵臓における無発現を示唆する。
EDB-FNの高感度分子イメージングおよびPaCaの検出におけるZD2-(68Ga-NOTA)の有効性
を、Capan1およびBXPC3ヒトPaCa異種移植片を担持するマウスモデルにおいてマイクロPET/CTで評価した。腫瘍モデルは、C.1と同様に雌ヌードマウスで展開した。上記の方法を使用して合成されたトレーサーは、マウスあたり300μCiの用量で静脈内注射した。図12は、トレーサーの注射後1時間および2時間で、腫瘍を示す代表的な2D冠状PET/CT画像を示す。トレーサーの強い取り込みが、腫瘍および膀胱において両時点で観察された。正常な組織および器官、特に脳、肝臓、および肺において、取り込みは注射後1時間でほとんど観察されなかった。バックグラウンドノイズが注射後2時間でわずかに増加したが、おそらく放射能の低下およびスキャン時間の延長に起因する。両方の腫瘍のシグナル強度は、注射後1時間および2時間の筋肉におけるシグナル強度の約5倍だった。三次元PET画像はまた、腫瘍への強い取り込みを、腎臓および膀胱以外の周囲の正常組織および器官への非特異的な取り込みをほとんど伴わずに示した、図13。腎臓および膀胱の高いシグナル強度は、トレーサーが主に腎臓濾過を介して排泄されることを示す。これらの結果は、EDB-FNの分子イメージングおよびPaCaの早期検出におけるZD2-(68Ga-NOTA)の有効性および高い特異性を実証し、さらにPaCaにおけるEDB-FNの特異的発現を検証する。ZD2ペプチド標的化68Gaキレートは、臨床診療における膵臓癌の高感度な早期検出のために有望である。
ZD2-HBED-CCの合成
ZD2ペプチドは、標準的な固相化学を使用して合成した。次に、HBED-CC-トリス(tBu)エステルを樹脂上のZD2ペプチドのN末端にコンジュゲートさせた。その後、TFA/水/TIBS(96.5/2.5/1)のカクテルを使用して、ペプチドを樹脂から切断した。生成物をエチルエーテル中で沈殿させ、分取HPLCで精製し、凍結乾燥し、MALDI-TOF質量分析によって特性評価した。(M+1)m/z、実測で1264.02;C55H82N12O22について計算で1264.32。
ZD2ペプチドは、標準的な固相化学を使用して合成した。次に、Fmoc-6-アミノヘキサン酸を樹脂上のZD2ペプチドのN末端にコンジュゲートさせた。その後、HBED-CC-トリス(tBu)エステルをペプチドと反応させ、TFA/水/TIBS(96.5/2.5/1)のカクテルを使用して樹脂からの切断を続けた。生成物ZD2-AH-HBED-CCをエチルエーテル中で沈殿させ、分取HPLCで精製し、凍結乾燥し、MALDI-TOF質量分析によって特性評価した。(M+1)m/z、実測で1377.1;C61H93N13O23について計算で1377.48。
配位子、リンカーのないZD2-HBED-CC、および硝酸ガリウムをPBS中で90℃、2分間混合した。次に、生成物ZD2-(Ga-HBED-CC)を分取HPLCで精製し、MALDI-TOF質量分析で特性評価した。(M+1)m/z、実測で1329.8;C55H79GaN12O22について計算で1329.47。
配位子、リンカーのあるZD2-HBED-CC、および硝酸ガリウムをPBS中で90℃、2分間混合した。次に、生成物ZD2-AH-(Ga-HBED-CC)を分取HPLCで精製し、MALDI-TOF質量分析で特性評価した。(M+1)m/z、実測で1442.9;C61H90GaN13O23について計算で1442.55。
すべてのインビボイメージング試験は、CWRU Animal Research Committee(動物研究委員会)が承認したプロトコルおよびガイドラインに従って実行された。BxPC3またはCapan-1ヒト膵臓異種移植片を担持するマウスを、酸素中の2%イソフルランで麻酔した。トレーサーZD2-(68Ga-HBED-CC)またはZD2-AH-(68Ga-HBED-CC)を、100~300μCi[5.3~13.0MBq]の用量で尾静脈から注射した。次に、マウスは、30分または60分の取り込み期間後に、10分または20分の静的PETスキャン(Inveon microPET,Siemens Medical Solutions USA Inc.)を受けた。すべてのPET処置の後に、解剖学的同時登録のためにCTスキャンを続けた。PET/CT画像は、Inveon Research Workplaceバージョン3.0およびHorosソフトウェアを使用して分析した。関心対象領域(ROI)は、腫瘍、主要器官、および筋肉について描画して、特異的および非特異的な組織取り込みの比率を計算した。画像は、3D-OSEMを2回反復、続いてMAPを18回反復で用いて、ズーム係数1.0の3D再構成で処理した。
本発明を説明しているように、以下が請求される。
Claims (4)
- 以下の式を含むPET/SPECTプローブであって、
式中、Pが、配列番号1のアミノ酸配列を含むペプチドであり、Cが、PET/SPECT造影剤であり、Lが、前記ペプチドを前記PET/SPECT造影剤に共有結合させる任意の6-アミノヘキサン酸リンカーであり、
前記造影剤が、1,4,7-トリアザシクロノナン-1,4,7-三酢酸(NOTA)、N,N’-ビス(2-ヒドロキシ-5-(エチレン-ベータ-カルボキシ)ベンジル)エチレンジアミンN,N’-二酢酸(HBED-CC)、およびそれらの誘導体のうちの少なくとも1つを含む、金属キレート剤と、キレート金属を含み、
前記PET/SPECTプローブが、膵臓癌細胞を含む癌細胞を検出、監視、および/またはイメージングするのに使用するためのものである、PET/SPECTプローブ。 - 前記キレート金属が、67Ga、68Ga、64Cu、99mTc、111In、89Zr、90Y、153Sm、または 89Srからなる群から選択される、請求項1に記載のプローブ。
- 癌細胞および/または癌細胞侵攻性を検出、監視、および/またはイメージングするのに使用するための、請求項1に記載のプローブ。
- 癌侵攻性を決定するのに使用するための、請求項3に記載のプローブ。
Priority Applications (1)
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