JP7704986B2 - 3,4-ジヒドロイソキノリン類化合物の塩及びその応用 - Google Patents
3,4-ジヒドロイソキノリン類化合物の塩及びその応用 Download PDFInfo
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Description
本発明のいくつかの実施形態によれば、Xは無機酸であり、硫酸およびリン酸から選択される。
本発明のいくつかの実施形態によれば、nは1~1.5から選択され、好ましくは1、1.1、1.2、1.3、1.4または1.5であり、さらに好ましくは1、1.3、1.4または1.5であり、よりさらに好ましくは1である。
特に明記しない限り、本明細書で使用される以下の用語およびフレーズは、次の意味を有することを意図する。1つの特定のフレーズまたは用語は、特に定義されていない場合、不確定または不明確と見なされるべきではなく、その一般的な意味に従って理解されるべきである。当本明細書に商品名が現れる場合、その対応する商品名またはその有効成分を指すことを意図する。
本出願で使用されるすべての溶媒は、すべて市販され、さらに精製せずに使用することができる。
機器型式:Bruker 400M核磁気共鳴装置(Bruker、GER)
内容及びテスト溶媒:1H~NMR、テスト溶媒はDMSO-d6である。
検出機器:Perkin Elmer Spectrum 100 FT-IR赤外分光分析装置
テスト方法:サンプルを3mg秤量し、KBrで錠剤を希釈し、室温で検出を行う。具体的なパラメータは、検出範囲:4000~400cm-1波数、分解能:4cm-1である。
FaSSIF:人間が食事する前の飢餓状態での小腸内の腸液を模擬する;FeSSIF: 人間が食事した後の飽食状態での小腸内の腸液を模擬する;SGF:人間が飢餓状態である際に、空腹時の胃液を模擬する。
製造例1のサンプル(0.5g)を秤量し、イソプロパノール(5mL)に溶解させ、L-リンゴ酸(2eq)を加え、室温で約10h撹拌し、濾過し、50℃±5℃の条件下で8時間乾燥させ、固体を得、収率は92.5%であった。検出を行ったところ、すでに塩が生成されており、且つアルカリ/酸の比が1:1であったことを確認した。IR(KBr,cm-1):3301.35,2939.94,1610.73,1528.35,1455.99,1367.93,1045.03。
実施例1で得られたサンプル(30mg)を秤量し、テトラヒドロフラン(1.1mL)を加えて溶液とし、n-ヘプタン(0.4mL)を滴下し、室温で7日間撹拌し、濾過し、50℃の温度で2時間真空乾燥させ、固体を得た。サンプルを取ってX線粉末回折を行ったところ、結晶状固体(結晶形II)であることを示した。結晶が良くできており、パターンを図2に示し、XRPD回折ピークのデータを表2に示す。サンプルを取ってDSC-TGAテストを行ったところ、DSCチャートには89.8℃及び103.58℃にそれぞれ1つの吸熱ピークを有し、TGAチャートにはサンプルは室温~80℃の間に2.6358%の重量減少があることを示した。
実施例1のサンプル(約50mg)をサンプル瓶に秤量し、アセトニトリル(1.5mL)を加え、室温で7日間撹拌し、濾過して固体を得た。サンプルを取ってX線粉末回折を行ったところ、結晶状固体(結晶形III)であることを示した。結晶が良くできており、パターンは図3に示し、XRPD回折ピークのデータは表3に示す。サンプルを取ってDSC-TGAテストを行ったところ、DSCチャートには70.82℃と117.93℃に吸熱ピークがあり、TGAチャートにはサンプルは室温~75℃の間に3.0001%の重量減少があることを示した。
実施例1のサンプル(約50mg)をサンプル瓶に秤量し、メタノール/メチル-t-ブチルエーテルの混合溶液(1.5mL、v/v=1/3)を加え、室温で7日間撹拌し、濾過して固体を得た。サンプルを取ってX線粉末回折を行ったところ、結晶状固体(結晶形IV)であることを示した。結晶が良くできており、パターンは図4に示し、XRPD回折ピークのデータは表4に示す。サンプルを取ってDSC-TGAテストを行ったところ、DSCチャートには77.91℃及び113.27℃に2つの吸熱ピークを有し、TGAチャートにはサンプルは室温~60℃の間の2.6271%の重量減少があることを示した。
実施例1のサンプル(約50mg)をサンプル瓶に秤量し、アセトン(1.5mL)を加え、室温で7日間撹拌し、濾過して固体を得た。サンプルを取ってX線粉末回折を行ったところ、結晶状固体(結晶形V)であることを示した。結晶が良くできており、パターンを図5に示し、XRPD回折ピークのデータを表5に示す。サンプルを取ってDSC-TGAテストを行ったところ、DSCチャートには68.38℃及び104.69℃に2つの吸熱ピークを有し、TGAチャートにはサンプルは室温~75℃の間の3.6041%の重量減少があることを示した。
実施例4で得られた結晶形IVを適量秤量し、50℃の温度で2日間真空乾燥させ、固体を得た。サンプルを取ってX線粉末回折を行ったところ、結晶状固体(結晶形VI)であることを示した。結晶が良くできており、パターンは図6に示し、XRPD回折ピークのデータは表6に示す。サンプルを取ってDSC-TGAテストを行ったところ、DSCチャートには113.29℃に吸熱ピークがあり、TGAチャートにはサンプルは室温~120℃の間に0.34%の重量減少があることを示した。
製造例1で得られたサンプル(501.3mg)を20mLの反応フラスコに秤量し、エタノール(12mL)を加えて溶液に調製し、L-リンゴ酸(131.6mg)を加え、室温で8日間磁気撹拌し、固体を遠心分離し、室温で1日真空乾燥し、純度98.22%を得た。核磁気検出により、すでに塩が生成されており、且つアルカリ/酸の比が1:1.5であったことを確認した。
製造例1のサンプル(0.5g)を秤量し、イソプロパノール(5mL)に溶解させ、シュウ酸(2eq)を加え、室温で約10h撹拌し、濾過し、50℃±5℃の条件下で6時間乾燥させ、固体を得、収率は90%であった。検出を行ったところ、すでに塩が生成されていることが確認された。IR(KBr,cm-1): 3319.96,2936.96,1615.04,1526.12,1455.78,1368.16,1046.84。
シュウ酸二水和物(6.4mg)を秤量してバイアル瓶に入れ、製造例1のサンプルのエタノール溶液(40mg/mL、0.5mL)を加え、室温で3日間磁気撹拌し、固体を遠心分離し、室温で1日真空乾燥し、純度98.56%を得た。検出したところ、すでに塩が生成されており、且つアルカリ/酸の比は約1:1.5であったことを確認した。
シュウ酸二水和物(6.3mg)を秤量してバイアル瓶に入れ、製造例1のサンプルの2-メチルテトラヒドロフラン溶液(40mg/mL、0.5mL)を加え、室温で3日間磁気撹拌し、固体を遠心分離し、室温で1日間真空乾燥した。検出したところ、すでに塩が生成されており、且つアルカリ/酸の比は約1:1であったことを確認した。
シュウ酸二水和物(123.9mg)と製造例1のサンプル(503.0mg)を秤量して反応フラスコに入れ、エタノール(10mL)を加え、室温で2日間磁気撹拌し、固体を遠心分離し、室温で3日間真空乾燥させ、純度98.96%を得た。検出したところ、すでに塩が生成されており、且つアルカリ/酸の比は約1:1であったことを確認した。
製造例1のサンプル(41mg)とシュウ酸二水和物(12.9mg)をガラス瓶に秤量し、アセトン/水混合溶媒(0.5mL、v/v=1/1)を加え、80℃に昇温して12時間撹拌した後、室温まで徐々に降温し、式(C)の化合物単結晶(酸アルカリ比:1:1)を得た。Cu-Kα線を用いて得られた単結晶は三斜晶系、P1空間群であり、その単位胞パラメータは、{a=5.55690 (10) Å,b=16.9102(2) Å,c=18.9473 (2) Å,α=99.1280(10)°,β=90.1780(10)°,γ=95.1340(10)°,V=1750.57 (4) Å3}であった。
製造例1のサンプルをそれぞれ以下の表に示す溶剤に溶解して、濃度40mg/mLの溶液に調製し、それぞれ異なる酸を秤量してバイアル瓶に加え、さらに調製しておいた製造例1のサンプル溶液(0.5mL)を加え、具体的な試験方法は以下の表に示すように、固体を遠心分離し、室温で1日間真空乾燥した。
実施例2(式(B)の化合物の結晶形II)、実施例3(式(B)の化合物の結晶形III)及び実施例4(式(B)の化合物の結晶形IV)のサンプルを適量秤量してバイアル瓶に入れ、23℃/33%RH及び25℃/60%RHの条件下でそれぞれ7日間放置し、サンプルを取ってそれぞれX線粉末回折を行い、サンプルの異なる条件での安定性を調べた結果を以下の表に示す。
実施例2(式(B)の化合物の結晶形II)、実施例5(式(B)の化合物の結晶形V)のサンプルを適量秤量してバイアル瓶に入れ、高温(60℃、密封)の条件で7日間放置し、サンプルを取ってそれぞれX線粉末回折を行い、サンプルの異なる条件での安定性を調べた結果を以下の表に示す。
実施例1(式(B)の化合物の結晶形I)のサンプルを適量秤量してバイアル瓶に入れ、長期安定性の考察を行い、結果を以下の表に示す。
以上の実施例で得られた式(A)の化合物の塩は、水及び生体溶媒媒体において良好な溶解度を有し、代表的な例を以下に示す。
1.酵素学的実験方法
放射性同位体FlashPlate技術を利用し、PRMT5で被験物質のIC50を検出した。
阻害率=(変換率コントロールウェル-変換率化合物孔)/(変換率コントロールウェル-変換率ブランクウェル)×100%。
XLFit 5.4.0.8でフィッティングしてIC50を得た。
フィッティング式:Y=Bottom+(Top-Bottom)/(1+(IC50/X)^HillSlope)
実験用ヒト急性単球性白血病細胞MV4-11(上海細胞バンク)培養に必要な完全培地はIMDM(Cat NO. 12440-053、gibco)に10%血清FBS(Cat NO. SA311.02、cellmax)を添加したものである。細胞を37℃で、5% CO2 インキュベーターで培養した。実験用試薬には、ジメチルスルホキシド(天津市科密欧化学試薬有限公司)、MTT(THIAZOLYL BLUE TETRAZOLIUM BROMIDE、CAS. NO. 298-93-1、VWR)が含まれる。試験用対照物GSK3326595は自ら製造するか市販品から購入する。被験物質を密封し、4℃で保存した。
各濃度の阻害率から、SPSSソフトウェアにより半数阻害濃度IC50を計算し、結果を表18に示す。
SPF、4~5週齡、試験用雌NOD-SCIDマウスは、Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Co.,Ltd.から購入した。細胞接種の前日に、マウスにシクロホスファミドを100mg/kgの用量で腹腔内投与した。マウスの前肢腋窩にヒト急性単球性白血病細胞MV4-11(1×107/0.1ml/匹)を皮下注射し、皮下移植腫瘍モデルを構築した。腫瘍体積が約110mM3(接種後10日目)になった時、腫瘍体積に基づいてマウスを5匹ずつ均等に群分けし、それぞれ溶媒対照群(2%DMSO+98%(0.2g/mL)ヒドロキシプロピルβ-シクロデキストリン)と被験薬投与群とした。被験薬投与群の投与量が100mg/kgであり、投与容量が10mL/kgであり、投与頻度がBIDであり、腫瘍直径を週2回測定し、データを記録した。11日間の連続投与後に試験が終了し、腫瘍を摘出して腫瘍重量を測定した。
体重増加率=X(Wi-W0)/XW0×100%
式中、Wiは、各実験群のマウスのn日目の体重を表し、W0は、各実験群のマウスの投与開始時の体重を表す。
腫瘍体積(V)=1/2×a×b2
式中、a及びbはそれぞれ、腫瘍の長径及び短径を表し、d0はケージに分けて投与される前であり、d9は投与9日目である。
相対腫瘍体積(RTV)=d9腫瘍体積/d0腫瘍体積
腫瘍重量抑制率=(腫瘍重量溶媒対照群-腫瘍重量被験薬投与群)/腫瘍重量溶媒対照群×100%。
結果を表19に示す。
SDラット(雄、180~200g、Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Co.,Ltd.)に被験化合物(溶媒:2%DMSO+98%(0.2g/mL)ヒドロキシプロピルβ-シクロデキストリン、投与容量:5mL/kg)を胃内投与し、投与後の異なる時点(0.25、0.5、1、2、4、8、24h)にラットの眼窩から採血し、採取した全血をヘパリンナトリウムで血液凝固を防止し、3000gで遠心分離した後、ラットの血漿サンプルを得た。メタノールによりタンパク質を沈殿させ、HPLC-MS/MS法により投与後のラット血漿における薬物濃度を測定し、薬物-時間曲線を描き、薬物動態パラメータを計算し、ノンコンパートメントモデルの統計モーメントのパラメータにより化合物投与後のラットのインビボ薬物動態挙動を表し、結果を表20に示す。
Claims (11)
- 前記式(A)で表される化合物の無機酸付加塩又は有機酸付加塩において、前記式(A)で表される化合物と有機酸又は無機酸分子との化学配合比が1:1~1.5である、請求項1に記載の化合物。
- 前記有機酸付加塩がL-リンゴ酸塩及びシュウ酸塩から選択され、前記式(A)で表される化合物とL-リンゴ酸分子又はシュウ酸分子との化学配合比が1:1~1.5である、請求項1に記載の化合物。
- 前記有機酸付加塩がL-リンゴ酸塩及びシュウ酸塩から選択され、前記式(A)で表される化合物とL-リンゴ酸分子又はシュウ酸分子との化学配合比が1:1である、請求項3に記載の化合物。
- 式(B)で表される化合物の結晶形であって、
(ここで、nは1~1.5である。)
前記結晶形が、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.2±0.2°、6.5±0.2°、13.3±0.2°、及び19.1±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形I、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.9±0.2°、6.6±0.2°、13.2±0.2°、18.7±0.2°、及び19.8±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形II、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.3±0.2°、6.9±0.2°、及び20.3±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形III、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.4±0.2°、7.6±0.2°、8.9±0.2°、13.9±0.2°、及び20.6±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形IV、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:5.0±0.2°、13.6±0.2°、18.6±0.2°、19.6±0.2°、及び20.2±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形V、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.5±0.2°、7.0±0.2°、9.0±0.2°、12.9±0.2°、20.2±0.2°、及び21.6±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形VI、並びに、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.3±0.2°、6.9±0.2°、13.2±0.2°、19.1±0.2°、及び20.0±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形VIIからなる群から選択される、結晶形。 - 式(C)で表される化合物の結晶形であって、
(ここで、nは1~1.5である。)
前記結晶形が、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.7±0.2°、7.1±0.2°、10.7±0.2°、17.4±0.2°、21.2±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形I、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.6±0.2°、13.0±0.2°、及び21.6±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形II、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.6±0.2°、18.7±0.2°、及び19.4±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形III、並びに、
Cu-Kα線によるX線粉末回折パターンが以下の2θ角:4.6±0.2°、13.7±0.2°、19.5±0.2°、20.0±0.2°、及び22.9±0.2°に特徴的な回折ピークを有する結晶形IVからなる群から選択される、結晶形。 - 請求項1~4のいずれか1項に記載の化合物と、薬学的に許容される担体とを含む、医薬組成物。
- 薬物の製造における請求項1~4のいずれか1項に記載の化合物の使用であって、前記薬物が腫瘍を治療するためのものである、使用。
- 前記腫瘍が血液腫瘍または固形腫瘍である、請求項8に記載の使用。
- 前記腫瘍が、肺がん、骨がん、胃がん、膵臓がん、腺様嚢胞がん、皮膚がん、頭頸部がん、子宮がん、卵巣がん、精巣がん、輸卵管がん、子宮内膜がん、子宮頸がん、膣がん、脳がん、下垂体腺腫、メラノーマ、表皮がん、並びに慢性および急性白血病から選択される、請求項8に記載の使用。
- 前記急性白血病が急性骨髄性白血病である、請求項10に記載の使用。
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