JP7748389B2 - 抗cd47抗体およびその使用 - Google Patents
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Description
(1)配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号2に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(2)配列番号3に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号4に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(3)配列番号5に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(4)配列番号6に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;および
(5)配列番号7に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL
から選択される抗CD47抗体またはその抗原結合断片が提供される。
(1)配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号2に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(2)配列番号3に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号4に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(3)配列番号5に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(4)配列番号6に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;および
(5)配列番号7に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL
から選択される。
特に明記しない限り、本発明は、当技術分野の技術的範囲内である分子生物学(組換え技術を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学および免疫学における従来技術を用いて行われる。
本発明の抗体は、抗体を産生するための任意の適切な方法によって産生され得る。任意の適切な形態のCD47を、抗体を産生するための免疫原(抗原)として用いることができる。限定ではなく一つの例として、任意のCD47バリアントまたはその断片を免疫原として用いることができる。いくつかの実施形態において、マウスモノクローナル抗ヒトCD47抗体を産生するハイブリドーマ細胞は、当技術分野において周知の方法によって産生され得る。これらの方法としては、限定されないが、Kohler et al., (1975) (Nature 256: 495-497)によって最初に開発されたハイブリドーマ技術が挙げられる。好ましくは、標準プロトコルに従って、マウス脾臓細胞を単離し、PEGまたは電気融合によってマウスミエローマ細胞株と融合させた。次いで、CD47結合活性を有する抗体を分泌するハイブリドーマ細胞をスクリーニングした。本発明のハイブリドーマ細胞の免疫グロブリン可変領域のDNA配列は、縮重プライマーPCRに基づく方法により検出することができる。
本発明は、1つ以上の発現ベクターを含む宿主細胞、および本発明の任意の抗体またはその抗原結合断片を産生する方法であって、宿主細胞を培養すること、抗体または抗原結合断片を精製および回収することを含む方法に関する。
本明細書において提供される抗CD47抗体の物理的/化学的特性および/または生物学的活性は、当技術分野において知られている様々な決定方法によって同定、スクリーニングまたは特性化することができる。一つの態様において、本発明の抗体の抗原結合活性は、例えば、ELISAやウエスタンブロット等の公知の方法により試験される。当技術分野において知られている方法を用いてCD47への結合を決定することができ、例示的な方法が本明細書に開示されている。
いくつかの実施形態において、本発明によれば、本発明により提供される任意の抗CD47抗体またはその抗原結合断片および他の物質を含む免疫複合体が提供される。一つの実施形態において、他の物質は、例えば、細胞に有害な任意の薬剤を含む細胞傷害剤である。
「医薬組成物」という用語は、その中に含有される有効成分の生物学的活性を有効にする形態で存在することを可能にし、調製物/製剤が投与される対象に対して許容できない毒性を有する追加の成分を含有しないような調製物/製剤を指す。
一つの態様において、本発明によれば、対象におけるCD47関連疾患を予防、診断または治療する方法が提供される。この方法は、それを必要とする患者に、本明細書に記載される抗CD47抗体もしくはその抗原結合断片、または免疫複合体もしくは免疫融合体またはそれらを含む医薬組成物、または本明細書に記載される核酸、ベクターもしくは宿主細胞の有効量を投与することを含む。
(a)サンプルと本発明の抗体もしくはその抗原結合断片、またはコンジュゲート、または融合体とを接触させること;および
(b)上記抗体もしくはその抗原結合断片、またはコンジュゲート、または融合体とCD47タンパク質との複合体の形成を検出すること
を含む。
抗CD47抗体は、ハイブリドーマ技術によって得られた。Fcタグを有するヒトCD47の細胞外ドメインを含む組換えタンパク質CD47-Fc(ACROBiosystems社、カタログ番号CD7-H5256)を、マウスを免疫化するための抗原として用いた。組換えタンパク質CD47-Fcと完全または不完全フロイントアジュバント(Sigma-Aldrich社)とを混合および乳化した後、SJLマウス(Beijing Vital River Laboratory Animal Technology社)およびBALB/cマウス(Yangzhou University Medical Center)を免疫した。マウスを1回の免疫(完全フロイントアジュバント)および2回の追加免疫(不完全フロイントアジュバント)に供し、各追加免疫後に採血した。免疫後のマウス血清と組換えヒトCD47-Fc(ACROBiosystems社、カタログ番号CD7-H5256)タンパク質との結合活性をELISAアッセイで検出し、同時に、マウス血清とヒトCD47を過剰発現するCHO細胞(GenScriptにより構築)との結合能をフローサイトメトリー(FACS)により検出した。より高い血清力価を有するマウスの脾臓細胞を選択して、骨髄腫細胞株SP2/0(ATCC)と融合させた。融合の4日前に、ヒトCD47細胞外ドメインの組換えタンパク質CD47-Fcを追加免疫のためにマウスに腹腔内注射した。融合当日、マウスを安楽死させ、次いで、マウス脾臓細胞をホモジナイズして単一細胞懸濁液を得た。マウス脾臓細胞とマウス骨髄腫細胞株SP2/0とを(3:1)、電気融合装置によって融合した。融合細胞をHAT(ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンデオキシヌクレオチド、GIBCO社、カタログ番号21060016)を含有する培地に再懸濁して、融合に成功したハイブリドーマ細胞をスクリーニングした。ハイブリドーマ細胞の上清を回収し、ヒトCD47に特異的に結合する抗体を分泌したハイブリドーマ細胞を2回のELISAによってスクリーニングした。次いで、ハイブリドーマの分泌上清の活性を、CD47関連機能スクリーニング試験(ヒトCD47またはカニクイザルCD47との結合特異性;赤血球凝集誘導活性なし;マクロファージによる腫瘍細胞の食作用促進活性等)によりハイブリドーマの存在を確認し、次いで、陽性ハイブリドーマクローンを選択し、単一ラウンドまたは複数ラウンドのサブクローニングを行って単一クローンを得た。スクリーニング後、125G4A4を最終的にハイブリドーマクローンとして選択した。
ヒトCD47タンパク質(NCBIアクセッション番号:NP_001768.1)をハムスター卵巣細胞株CHO-K1中で過剰発現させ、ヒトCD47タンパク質を過剰発現するCHO-K1細胞株を樹立した。細胞を、段階希釈した抗体125G4A4および参照抗体C0774CK230-C(すなわち、Hu5F9)(最大濃度300nM、3倍希釈、全部で12の濃度点)と共に4℃で50分間インキュベートした。氷冷PBSで2回洗浄した後、細胞をiFluor647標識ヤギ抗マウスIgG(H+L)抗体(Genscript社)と共に4℃の暗所で40分間インキュベートした。細胞を氷冷PBSで2回洗浄し、次いでCalibur(BD Biosciences社)フローサイトメトリーにより蛍光シグナルを検出し、シグナルの平均蛍光強度(MFI)に従って、GraphPadを用いて濃度依存曲線をフィッティングし、EC50を計算した。表1に示すように、最終的に得られたハイブリドーマ由来抗体125G4A4は、ヒトCD47タンパク質を過剰発現するCHO-K1に対する高い結合活性を有し、EC50は0.22nMであった。
ヒトCD47は、ヒトバーキットリンパ腫細胞株Rajiの細胞表面に内在的に発現していた。抗体125G4A4および参照抗体Hu5F9を、2%のウシ胎児血清(FBS、Gibco社、カタログ番号10100147)を含有するPBSで段階希釈した(最大濃度46.3nM、3倍希釈、全部で8の濃度点)。希釈した抗体をRaji細胞(ATCCから購入)と混合し(5×105細胞/ウェル)、4℃で1時間共培養した。2%のウシ胎児血清(FBS)を含有するPBSで3回洗浄した後、PE標識マウス抗ヒトIgG Fc抗体(Biolegend社、カタログ番号409304)を添加し、4℃の暗所で1時間インキュベートした。細胞を2%のウシ胎児血清(FBS)を含有するPBSで3回洗浄し、次いで蛍光シグナルをCantoII(BD Biosciences社)フローサイトメトリーで検出し、シグナルの平均蛍光強度(MFI)に従って、GraphPadを用いて濃度依存曲線をフィッティングし、EC50を計算した。表1に示すように、ハイブリドーマ由来抗体125G4A4は、0.84±0.02nMのEC50でRaji細胞に対する結合活性を有していた。
125G4A4がヒトCD47とSIRPαとの間の相互作用を遮断する能力を検出するために、ELISAアッセイを行った。ヒトIgG Fc断片と融合したヒトCD47の細胞外ドメインを含む組換えタンパク質hCD47-Fc(ACROBiosystems社、カタログ番号CD7-H5256)を96ウェルプレートにコーティングし、4℃で一晩インキュベートした。プレートをPBST(0.5%のTween-20を含有するPBS)で3回洗浄した後、1%のBSAを含有するPBSTを添加してプレートを2時間ブロッキングした。プレートをPBSTで3回洗浄した後、段階希釈した抗体125G4A4または参照抗体Hu5F9(最大濃度66.7nM、3倍希釈、全部で8の濃度点)を、最終濃度2.5μg/mlのSIRPα-His組換えタンパク質(ACROBiosystems社、カタログ番号SIA-5225)と共に添加し、室温で1時間インキュベートした。プレートをPBSTで3回洗浄し、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギ抗Hisタグ二次抗体(CWBIO社、カタログ番号CW0285M)を添加して、コーティングされたCD47タンパク質によって捕捉されたSIRPαを検出した。96ウェルプレートを37℃で30分間インキュベートした後、プレートをPBSTで5回洗浄し、TMD(Surmodics社、カタログ番号TMBW-1000-01)展開液を添加し、暗所で15分間インキュベートした。2NのH2SO4を添加して発色反応を停止させた。マイクロプレートリーダーでOD450を読み取った。吸光度の値は、CD47に結合したSIRPαの量を反映していた。Graphpadを用いて濃度依存曲線をフィッティングし、CD47とSIRPαとの結合を遮断するための抗CD47抗体のIC50を計算した。表1に示すように、125G4A4は3.06nMのIC50でCD47/SIRPα相互作用を効果的に遮断することができた。
先行技術において、抗CD47抗体のほとんどが赤血球凝集を誘導する特性を有することが知られている。この特性は、治療用抗CD47抗体による治療に存在する貧血等の臨床的副作用と密接に関連していると広く信じられている。したがって、我々は、本発明における抗CD47抗体をin vitroでの赤血球凝集実験により評価し、赤血球凝集を誘導する性質のない抗体をスクリーニングした。方法は以下のとおりである:健康なドナーの新鮮なヒト血液を採取し、細胞をPBSで5回洗浄し、次いで細胞を希釈して10%のヒト赤血球を含有する懸濁液を作製した;赤血球懸濁液と実験用抗体(抗体125G4A4および参照抗体Hu5F9、最大濃度667nM、3倍希釈、全部で12の濃度点)とを混合し、次いで混合物を丸底96ウェルプレートに添加した;室温で16時間インキュベートし、次いで写真を撮り、ウェル内の細胞の現象に従って結果を決定した。赤血球凝集が起こった場合、細胞を網のように各ウェルに播種し、ネガティブコントロールのウェルよりも大きな直径を有するウェルに、より大きなシート状の細胞層が現れたが;一方で、赤血球凝集が起こらなかった場合、赤血球はウェルの底に沈着し、小さな点状の細胞ペレットの沈殿物がウェルに現れた。125G4A4は、実験において赤血球凝集を誘導する明らかな現象を示さなかった。
マクロファージによる腫瘍細胞の食作用を促進する本発明の抗体125G4A4の能力を、フローサイトメトリーに基づくアッセイによって検出した。ヒト血液を健康なドナーから新たに採取し、Ficoll-Paque PLUS(GE Healthcare社、カタログ番号17-1440-02)を用いた密度勾配遠心分離によって末梢血単核細胞(PBMC)を分離した。ヒト全単球分離キット(Miltenyi biotec、カタログ番号130-096-537)を用いて単球をさらに分離して得た。単球のマクロファージへの分化を誘導するために、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF、R&D Systems社、カタログ番号216-MC)を添加し、単球を7日間連続して付着培養に供した。細胞の食作用実験の当日、上述した分化したマクロファージを無血清培地で2時間飢餓状態にした。同時に、標的腫瘍細胞Rajiを指示により推奨される手順に従って、CFSE(eBioscience社、カタログ番号65-0850-85)により蛍光標識した。CFSEで標識した腫瘍細胞とマクロファージとを4:1の比率で混合し、検出濃度の実験抗体を添加して37℃で2時間インキュベートした。次いで、細胞をPBSで2回洗浄し、次いでトリプシン(Gibco社、カタログ番号25200072)で消化し;APCで標識した抗CD14抗体(Biolegend社、カタログ番号325608)を添加し、2%のウシ胎児血清を含有するPBS中で、氷上の暗所で30分間インキュベートした。細胞を2回洗浄し、フローサイトメトリーで分析した。CD14陽性マクロファージ集団におけるCFSE陽性細胞のパーセンテージを計算した。表1に示すように、125G4A4は腫瘍細胞上のマクロファージの食細胞機能を効果的に促進することができた。
2.1 ハイブリドーマ由来抗体の可変領域配列の決定
ハイブリドーマシーケンシングの方法に従って、ハイブリドーマクローン125G4A4の細胞を拡大培養し;全RNAをTRIzol(Ambio社から購入)で抽出し、抗体特異的プライマー(Takara社、PrimerScript 1st Strand cDNA Synthesis Kit)でDNAに逆転写し;マウス免疫グロブリンV領域をコードする遺伝子断片を抗体特異的プライマーによる増幅に供した。ハイブリドーマ由来抗体の可変領域配列を、シーケンシング分析によって得た。125G4A4抗体の重鎖可変領域および軽鎖可変領域のアミノ酸配列はそれぞれ配列番号1および2に示される通りであり、ヌクレオチド配列はそれぞれ配列番号19および20に示される通りであった。
CD47の作用機序に従って、本発明の特定の実施形態において、ヒトIgG4の定常領域(S228P)を抗体の重鎖定常領域として用い、ヒトκ軽鎖定常領域鎖を抗体の軽鎖定常領域として用いた。IgG4コアヒンジ領域の228位のセリンからプロリンへの変異(S228P)は、コアヒンジ領域のジスルフィド結合接続を強化し、IgG4のFabアームの交換を低減し、それによって半分子の形成を大幅に低減することができる。重鎖定常領域および軽鎖定常領域をコードする遺伝子を合成した後、重鎖可変領域および軽鎖可変領域の遺伝子を、EcoRIおよびBamHIによる二重酵素消化によりベクターPTT5に相同組換えした。正確に配列決定した後、抗体の重鎖と軽鎖とをモル比1.5:1でHEK293細胞に同時トランスフェクトした。120時間培養した後、遠心分離により上清を回収し、精製してキメラ抗体を得た。
ヒト化のためにキメラ抗体125G4A4mと最も高い相同性を有するヒト抗体バックボーン配列を選択するために、キメラ抗体125G4A4mの可変領域配列をPDB抗体データベースを用いてBlastアラインメントした。125G4A4mの重鎖可変領域は生殖細胞系IGHV1-69とより高い配列相同性を有し、その軽鎖可変領域はヒト生殖細胞系IGKV1-16とより高い配列相同性を有していた。次いで、可変領域CDRのアミノ酸配列およびその正確な境界が、Kabat割り当てシステムによって定義された。次いで、マウス抗体の可変領域のCDRセグメントをヒト骨格配列に移植して、ヒト化抗体を得た。
上述した設計されたヒト化重鎖および軽鎖可変領域をコードするDNA断片を増幅し、ヒト抗体を発現する定常領域を含むベクターにクローニングして、抗体発現プラスミド(pCDNA3.4、Thermo社から購入、カタログ番号A14697)を構築した。重鎖および軽鎖の発現ベクターをExpire293細胞(Thermo社、カタログ番号A14525)に共トランスフェクトした。37℃で6日間培養した後、上清を回収した。上述した方法に従って、組み換え抗体を、抗体のさらなる特性化のためにProtein A親和性精製によって得た。ヒト化抗体はIgG4のS228P(IgG4P)サブタイプであった。
ヒト化抗体のカニクイザルB細胞への結合能、ヒトマクロファージの腫瘍細胞に対する食作用、および赤血球凝集誘導能を検出することにより、活性の高いヒト化抗体をスクリーニングした。
ヒトCD47を、ヒトバーキットリンパ腫細胞株Raji細胞(Shanghai Institutes for Biological Sciences、SIBS、CCL-86(商標)/ATCC)、ヒトびまん性大細胞型リンパ腫Toledo細胞(ATCC(登録商標)CRL-2631(商標))およびヒトマントル細胞リンパ腫REC-1細胞(ATCC(登録商標)CRL-3004(商標))の表面に内在的に発現する。上述した実施例1.2に記載される検出方法に従って、フローサイトメトリーを用いて、上述した腫瘍細胞株の表面におけるヒト化抗体HMA02h14-48のCD47への結合を検出した。抗体の最大濃度は667nMであり、抗体を段階希釈して、全部で8の濃度点で試験した。
Biacoreを用いて、表面プラズモン共鳴(SPR)を測定することにより結合動力学パラメーターを決定した。この技術を用いて、抗体と抗原の結合(ka)および解離(kd)の微視的な速度定数を検出した。kaおよびkdの値に基づいて、抗体と抗原との親和性値を得ることができた。Biacore機器(Biacore T200)および試薬は、いずれもGE Healthcare社から購入した。抗ヒトFc抗体をセンサーチップCM5に固定化した。精製された抗体(HMA02H14-48およびHu5F9)を移動相バッファー(10mMのHEPES、150mMのNaCl、3mMのEDTA、0.05%のTween-20、pH7.4)で希釈し、抗ヒトFc抗体でコーティングされたCM5チップに流した。次いで、段階希釈したヒトCD47-His(ACROBiosystems社、カタログ番号CD7-H5227)融合タンパク質を検出チップに流して、抗原と抗体との結合を測定し、次いで移動相バッファーをチップに流して、抗体からの抗原の解離を検出した。抗原と抗体との結合および解離のシグナルデータを異なる濃度で収集し、ラングミュアモデルによって1:1 でフィッティングして、抗原と抗体との親和性を計算した。
上述した実施例1.3に記載された方法に従って、ELISAを用いて、ヒトCD47とSIRPαとの間の相互作用を遮断するHMA02h14-48の能力を検出した。抗体の最大濃度は67nMであり、抗体を段階希釈し、全部で8の濃度点で試験した。
実施例1.5に記載される方法に従って、ヒトマクロファージによるヒトバーキットリンパ腫細胞株Raji細胞、ヒトびまん性大細胞型リンパ腫Toledo細胞、ヒトマントル細胞リンパ腫REC-1細胞およびヒト前骨髄球性白血病細胞株HL-60の食作用の促進に対するHMA02h14-48の効果を検出した。抗体の最大濃度は100μg/mLであり、抗体を段階希釈し、全部で8の濃度点で試験した。
ヒト赤血球をPBSで10%に希釈し、丸底96ウェルプレートに添加したCD47抗体と共に室温で16時間インキュベートした。沈殿していない赤血球の存在は、赤血球凝集を証明する証拠である。非凝集赤血球の沈殿によって形成された白い点と比較して、非沈殿赤血球は、ネガティブコントロールアイソタイプ抗体の網状領域よりも大きい網状領域を形成した(図9を参照されたい)。ネガティブコントロールアイソタイプ抗体(アイソタイプ)の結果を、標準的な基準として用いた。
先行技術において、治療用抗CD47抗体が臨床的に用いられる場合、貧血等の副作用がしばしば起こることが知られている。一般に、抗CD47抗体は赤血球の表面にあるCD47に結合し、マクロファージによる赤血球の食作用を引き起こすと考えられている。これは、貧血の別の主要な原因である可能性がある。本発明においては、フローサイトメトリーを用いてHMA02h14-48のヒト赤血球への結合能を検出して、抗体のリスクを評価した。具体的には、健康なドナーからの赤血球を、2%のウシ胎児血清を含有するPBS中で、希釈したHMA02h14-48(最大濃度667nM、全部で8の試験濃度点)と共に4℃で30分間インキュベートした。次いで、細胞を3回洗浄し、2%のウシ胎児血清を含有するPBS中で、二次抗体(PE標識マウス抗ヒトIgG Fc抗体、Biolegend社、カタログ番号409304)と共に4℃の暗所で30分間インキュベートした。細胞を、2%のウシ胎児血清(FBS)を含有するPBSで3回洗浄し、次いで蛍光シグナルをCanto II(BD Biosciences社)フローサイトメトリーで検出した。シグナルの平均蛍光強度(MFI)に従って、GraphPadを用いて濃度依存曲線をフィッティングし、EC50を計算した。
目的:本発明の抗体の抗腫瘍活性を調査するために、NOD-ScidマウスにおいてToledo皮下腫瘍モデルを確立した。
方法:ヒトびまん性大細胞型B細胞リンパ腫細胞Toledo(ATCC(登録商標)CRL-2631(商標))を、10%のウシ胎児血清を含有するRPMI 1640培地で培養した。腫瘍細胞をRPMI 1640に懸濁し、雄NOD-Scidマウス(Shanghai Lingchang Biotechnology社)の右側腹部皮下に1×107細胞/マウスの用量で移植した。
実験結果を表11および図11に示す。
目的:本発明の抗体の抗腫瘍活性を調査するために、NOD-ScidマウスにおいてREC-1皮下腫瘍モデルを確立した。
方法:ヒトマントル細胞リンパ腫細胞REC-1(ATCC(登録商標)CRL-3004(商標))を、10%のウシ胎児血清を含有するRPMI 1640培地で培養しました。腫瘍細胞をRPMI 1640に懸濁し、雄NOD-Scidマウス(Shanghai Lingchang Biotechnology社)の右側腹部皮下に5×106細胞/マウスの用量で移植した。
実験結果を表13および図12に示す。
Claims (22)
- 単離された抗CD47抗体またはその抗原結合断片であって、
重鎖可変領域(VH)のHCDR1、HCDR2およびHCDR3、ならびに
軽鎖可変領域(VL)のLCDR1、LCDR2およびLCDR3
を含み、
前記VHおよびVLが:
(1)配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号2に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(2)配列番号3に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号4に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(3)配列番号5に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(4)配列番号6に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;および
(5)配列番号7に示されるアミノ酸配列を含むVH、および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL
から選択される、前記抗体またはその抗原結合断片。 - 単離された抗CD47抗体またはその抗原結合断片であって、
VHのHCDR1、HCDR2およびHCDR3、ならびに
VLのLCDR1、LCDR2およびLCDR3を含み、
(1)前記HCDR1が配列番号11に示されるアミノ酸配列を含み、前記HCDR2が配列番号12に示されるアミノ酸配列を含み、かつ前記HCDR3が配列番号17に示されるアミノ酸配列を含み;かつ
前記LCDR1が配列番号14に示されるアミノ酸配列を含み、前記LCDR2が配列番号18に示されるアミノ酸配列を含み、かつ前記LCDR3が配列番号16に示されるアミノ酸配列を含むか;または
(2)前記HCDR1が配列番号11に示されるアミノ酸配列を含み、前記HCDR2が配列番号12に示されるアミノ酸配列を含み、かつ前記HCDR3が配列番号13に示されるアミノ酸配列を含み;かつ
前記LCDR1が配列番号14に示されるアミノ酸配列を含み、前記LCDR2が配列番号15に示されるアミノ酸配列を含み、かつ前記LCDR3が配列番号16に示されるアミノ酸配列を含む、
前記抗体またはその抗原結合断片。 - 単離された抗CD47抗体またはその抗原結合断片であって、
VHのHCDR1、HCDR2およびHCDR3、ならびに
VLのLCDR1、LCDR2およびLCDR3を含み、
(1)前記HCDR1が配列番号11に示されるアミノ酸配列からなり、前記HCDR2が配列番号12に示されるアミノ酸配列からなり、かつ前記HCDR3が配列番号17に示されるアミノ酸配列からなり;かつ
前記LCDR1が配列番号14に示されるアミノ酸配列からなり、前記LCDR2が配列番号18に示されるアミノ酸配列からなり、かつ前記LCDR3が配列番号16に示されるアミノ酸配列からなるか;または
(2)前記HCDR1が配列番号11に示されるアミノ酸配列からなり、前記HCDR2が配列番号12に示されるアミノ酸配列からなり、かつ前記HCDR3が配列番号13に示されるアミノ酸配列からなり;かつ
前記LCDR1が配列番号14に示されるアミノ酸配列からなり、前記LCDR2が配列番号15に示されるアミノ酸配列からなり、かつ前記LCDR3が配列番号16に示されるアミノ酸配列からなる、
前記抗体またはその抗原結合断片。 - (1)配列番号7に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)を含み;かつ
配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)を含むか;
(2)配列番号1に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)を含み;かつ
配列番号2に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)を含むか;
(3)配列番号3に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)を含み;かつ
配列番号4に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)を含むか;
(4)配列番号5に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)を含み;かつ
配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)を含むか;または
(5)配列番号6に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)を含み;かつ
配列番号9または10に示されるアミノ酸配列と同一であるかまたは少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)を含む、
請求項1~3のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片。 - 重鎖可変領域(VH)および軽鎖可変領域(VL)を含み、前記VHおよびVLが
(1)配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むVH;および配列番号2に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(2)配列番号3に示されるアミノ酸配列を含むVH;および配列番号4に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(3)配列番号5に示されるアミノ酸配列を含むVH;および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;
(4)配列番号6に示されるアミノ酸配列を含むVH;および配列番号9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL;および
(5)配列番号7に示されるアミノ酸配列を含むVH;および配列番号8、9または10に示されるアミノ酸配列を含むVL
から選択される、請求項4に記載の抗体またはその抗原結合断片。 - 重鎖可変領域(VH)および/または軽鎖可変領域(VL)を含み、前記VHが配列番号7に示されるアミノ酸配列を含み、かつ前記VLが配列番号8に示されるアミノ酸配列を含む、請求項5に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- 前記抗体が重鎖定常領域を含む、請求項1~6のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖定常領域が、ヒトIgG1定常領域、ヒトIgG1TM定常領域、ヒトIgG4定常領域およびヒトIgG4P定常領域から選択される、請求項7に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- 前記抗体が軽鎖定常領域を含む、請求項1~8のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- 前記軽鎖定常領域がヒトκ軽鎖定常領域である、請求項9に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- マウス抗体、キメラ抗体またはヒト化抗体である、請求項1~10のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- 完全長抗体、Fab、Fab’、Fab’-SH、(Fab’) 2 、一本鎖抗体、Fvまたはビス(マルチ)特異的抗体である、請求項1~11のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片。
- 請求項1~12のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片をコードする、単離された核酸。
- 請求項1~12のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片の組換え産生に適した、1つ以上の請求項13に記載の核酸を含む、組換えベクターまたは発現ベクター。
- 1つ以上の請求項14に記載の組換えベクターまたは発現ベクターを含む、宿主細胞。
- 請求項1~12のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片を含む、免疫複合体または免疫融合体。
- 請求項1~12のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片、請求項13に記載の核酸、請求項14に記載のベクター、請求項15に記載の宿主細胞、または請求項16に記載の免疫複合体もしくは免疫融合体を含む、医薬組成物。
- 薬学的に許容可能な賦形剤を含む、請求項17に記載の医薬組成物。
- 癌を治療または予防するための、請求項17または18に記載の医薬組成物。
- 前記癌が血液癌および固形腫瘍を含む、請求項17~19のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記癌が、膀胱癌、膵臓癌、リンパ腫、白血病、多発性骨髄腫、(慢性)黒色腫、平滑筋腫、平滑筋肉腫、神経膠腫、神経膠芽腫、骨髄腫、子宮内膜癌、腎臓癌、(良性)黒色腫、前立腺癌、甲状腺癌、子宮頸癌、胃癌、肝臓癌、結腸癌、卵巣癌、尿路上皮癌から選択される、請求項20に記載の医薬組成物。
- CD47タンパク質を検出する方法であって:
(a)試料と請求項1~12のいずれか一項に記載の単離された抗体もしくはその抗原結合断片、または請求項16に記載の免疫複合体もしくは免疫融合体とを接触させること;および
(b)前記抗体もしくはその抗原結合断片、または免疫複合体もしくは免疫融合体とCD47タンパク質との間の複合体の形成を検出すること
を含む、前記方法。
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