JPS6018395B2 - Method for producing all-trans polyprenyl alcohol - Google Patents
Method for producing all-trans polyprenyl alcoholInfo
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- JPS6018395B2 JPS6018395B2 JP4080677A JP4080677A JPS6018395B2 JP S6018395 B2 JPS6018395 B2 JP S6018395B2 JP 4080677 A JP4080677 A JP 4080677A JP 4080677 A JP4080677 A JP 4080677A JP S6018395 B2 JPS6018395 B2 JP S6018395B2
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は全トランス型ポリブレニルアルコールの製造法
に関し、さらに詳しくは一般式(D)(式中、nは2〜
10の整数を表わす)で示される全トランス型ポリプレ
ニルピロホスフェートをジャガイモの芽から分離したホ
スフアターゼの作用により加水分解することを特徴とす
る一般式(1)(式中、nは一般式(ロ)におけると同
じ意味を有する)で示される全トランス型ポリプレニル
アルコールの製造法および一般式(m)(式中、1は2
〜4の整数を表わす)
で示される全トランス型ピロホスフェートとイソベンテ
ニルピロホスフェートを微生物起源の(微生物から分離
した)ポリプレニルピロホスフェ−トシンセターゼの作
用により反応させて一般式(〇′)(式中、mは8また
は9の整数を表わす)で示される全トランス型ピロホス
フェートを合成し、ついで談ピロホスフェートをジャガ
イモの芽から分離したホスフアターゼの作用により加水
分解することを特徴とする一般式(1′)(式中、mは
一般式(『)におけると同じ意味を有する)で示される
全トランス型ポリプレニルアルコールの製造法に関する
。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for producing all-trans polybrenyl alcohol, and more specifically, the present invention relates to a method for producing all-trans polybrenyl alcohol, and more specifically, it has the general formula (D) (where n is 2 to
General formula (1), characterized in that all-trans polyprenyl pyrophosphate represented by the general formula (representing an integer of 10) is hydrolyzed by the action of phosphatase isolated from potato sprouts (where n is ) has the same meaning as in )) and general formula (m) (where 1 is 2
(representing an integer of ~4) and isobentenyl pyrophosphate are reacted by the action of polyprenyl pyrophosphate synthetase of microbial origin (separated from microorganisms) to form the general formula (〇′). (In the formula, m represents an integer of 8 or 9) All-trans pyrophosphate is synthesized, and then the pyrophosphate is hydrolyzed by the action of phosphatase isolated from potato sprouts. The present invention relates to a method for producing all-trans polyprenyl alcohol represented by formula (1') (where m has the same meaning as in general formula (')).
本発明の方法により得られる一般式(1)または(1′
)で示される全トランス型ポリプレニルアルコールはュ
ピキノン−n(橘酵素Q一n)の合成中間体として有用
である。General formula (1) or (1') obtained by the method of the present invention
The all-trans polyprenyl alcohol represented by ) is useful as a synthetic intermediate for upiquinone-n (Tachibana Enzyme Q1n).
たとえば、上記一般式(1)で示されるオクタプレニル
アルコールやデカプレニルアルコール等のポリプレニル
アルコールと2・3−ジメトキシー5−メチルハイドロ
キノンを三弗化棚秦等のアルコール酸性縮合剤の存在下
に反応させ、ついでこの縮合生成物を酸化銀等の酸化剤
で酸化することにより補酵素Q−n(下記一般式(W)
を有する)を得ることができる(袴公昭39−1751
3号公報参照)。この反応を図式で表わすと以下のとお
りである。補酵素Q−nにおいてその側鎖部分の立体配
直に関して全トランス体のものが特に生体内活性型補酵
素Q−nとされている。For example, a polyprenyl alcohol such as octaprenyl alcohol or decaprenyl alcohol represented by the above general formula (1) and 2,3-dimethoxy-5-methylhydroquinone are reacted in the presence of an alcoholic acidic condensing agent such as trifluoride trifluoride. Then, this condensation product is oxidized with an oxidizing agent such as silver oxide to obtain coenzyme Q-n (the following general formula (W)
) can be obtained (Hakama Kosho 39-1751
(See Publication No. 3). This reaction is represented diagrammatically as follows. Regarding coenzyme Q-n, the all-trans form of coenzyme Q-n in terms of the configuration of its side chain portion is particularly considered to be an in vivo active type of coenzyme Q-n.
この生体内活性型補酵素Q−nを合成的に得るためには
当然全トランス型ポリプレニルアルコールの合成が要求
される。ポリプレニルアルコールの合成法は種々知られ
ており、たとえば、イスラー等によるデカプレノール合
成法は以下に示すとおりである〔Helv.Chim.
Acね.42.2616(1959)参照〕。また、佐
藤らはポリプレニルアルコールの合成法として、次の方
法を提案した(特関昭51一141804号公報参照)
。しかし、従来法により炭素鎖の長いポリブレニルアル
コールをステップワィズに合成する場合にはその合成工
程が非常に長くかつ煩雑であってしかも目的とするトラ
ンス体の生成率が極めて低いか、あるいは高価な試薬を
必要とし、かかる方法は工業的に全トランス型ポリプレ
ニルアルコールを得る目的には不向きである。In order to synthetically obtain this in vivo-active coenzyme Q-n, synthesis of all-trans polyprenyl alcohol is naturally required. Various methods for synthesizing polyprenyl alcohol are known; for example, the decaprenol synthesis method by Isler et al. is shown below [Helv. Chim.
Ac. 42.2616 (1959)]. In addition, Sato et al. proposed the following method for synthesizing polyprenyl alcohol (see Tokusekki Sho 51-141804).
. However, when polybrenyl alcohol with a long carbon chain is synthesized stepwise by conventional methods, the synthesis process is extremely long and complicated, and the production rate of the desired trans isomer is extremely low, or it is expensive. This method requires reagents and is not suitable for industrially obtaining all-trans polyprenyl alcohol.
他方、種々のプレニルピロホスフェートシンセターゼを
用いる酵素反応によってポリプレニルピロホスフェート
を合成し、これをポリプレニルアルコールに導くことも
試みられている。On the other hand, attempts have also been made to synthesize polyprenyl pyrophosphate by enzymatic reactions using various prenyl pyrophosphate synthetases and to convert this into polyprenyl alcohol.
しかし、従来の研究では、得られる炭素鎖の長いポリプ
レニルピロホスフェートの立体構造は明らかにされてお
らず、また該ポリブレニルピロホスフェートを容易にポ
リブレニルアルコールに変換する方法も見出されていな
い。However, in previous studies, the three-dimensional structure of the obtained polyprenyl pyrophosphate with a long carbon chain has not been clarified, and no method has been found to easily convert the polyprenyl pyrophosphate into polybrenyl alcohol. Not yet.
本発明者らは先に市販の酵母起源のホスフアターゼまた
は豚の腎臓より抽出したホスフアターゼを用いてポリプ
レニルピロホスフェートの加水分解を試みたが、対応す
るポリプレニルアルコールは得られなかった〔Bioc
hem.andBiophys.Res.Commu.
、4う 251(1971)〕。The present inventors previously attempted to hydrolyze polyprenyl pyrophosphate using commercially available yeast-derived phosphatase or phosphatase extracted from pig kidney, but the corresponding polyprenyl alcohol could not be obtained [Bioc
hem. andBiophys. Res. Commu.
, 4, 251 (1971)].
またブロックらはトリクロル酢酸を用いてボリプレニル
ビロホスフェートの加水分解を詠みているが、生成する
ポリプレニルアルコールの収率は極めて低い〔J.Bi
ol.Chem.、24公8)、1895(1967)
〕。本発明老らは全トランス型ポリプレニルアルコール
の有利な製造法を関発すべく引続き鋭意研究を重ねた結
果、このたび、ジャガイモの芽から分離した、ホスファ
ターゼが一般式(0)の全トランス型ポリブレニルピロ
ホスフヱートを加水分解して対応する一般式(1)の全
トランス型ポリプレニルアルコールに導く優れた酵素活
性を有することを見出した。また本発明者らはイソベン
テニルピロホスフェートと一般式(m)の全トランス型
ピロホスフェートを微生物起源のポリプレニルピロホス
フェートシンセターゼの作用により反応させて得られる
ポリプレニルピロホスフェートが全トランス型のオクタ
プレニルピロホスフェートまたは/およびノナプレニル
ピロホスフエートであることを見出し、この知見と上記
ジャガイモの芽から分離したホスフアターゼの作用に関
する知見を結合することにより、一般式(m)の全トラ
ンス型ピロホスフェート(すなわち、ゲラニルピロホス
フエート、フアルネシルピロホスフエートまたはゲラニ
ルゲラニルピロホスフエート)とイソベンテニルピロホ
スフェートとを微生物起源のポリプレニルピロホスフェ
ートシンセターゼの作用により反応させて一般式(ロ′
)の全トランス型ポリプレニルピロホスフェートを得る
工程と該一般式(D′)の全トランス型ポリプレニルピ
ロホスフェートをジャガイモの芽から分離したホスファ
ターゼの作用により加水分解する工程からなる方法によ
り、容易にかつ収率よく一般式(1′)の全トランス型
ポリプレニルアルコールを得ることに成功した。In addition, Block et al. described the hydrolysis of polyprenyl birophosphate using trichloroacetic acid, but the yield of polyprenyl alcohol produced was extremely low [J. Bi
ol. Chem. , 24 Ko 8), 1895 (1967)
]. As a result of continued intensive research into an advantageous method for producing all-trans polyprenyl alcohol, the inventors of the present invention have now discovered that phosphatase isolated from potato sprouts has been found to be an all-trans polyprenyl alcohol of the general formula (0). It has been found that the present invention has excellent enzymatic activity for hydrolyzing brenyl pyrophosphate into the corresponding all-trans polyprenyl alcohol of general formula (1). The present inventors also discovered that polyprenyl pyrophosphate obtained by reacting isobentenyl pyrophosphate with all-trans pyrophosphate of the general formula (m) by the action of polyprenyl pyrophosphate synthetase of microbial origin is an all-trans pyrophosphate. By discovering that it is octaprenyl pyrophosphate or/and nonaprenyl pyrophosphate, and combining this knowledge with the above-mentioned knowledge regarding the action of phosphatase isolated from potato sprouts, all-trans pyrophosphate of general formula (m) (i.e., geranyl pyrophosphate, phalnesyl pyrophosphate, or geranylgeranyl pyrophosphate) and isobentenyl pyrophosphate are reacted by the action of polyprenyl pyrophosphate synthetase of microbial origin, and the general formula (ro'
) and hydrolyzing the all-trans polyprenyl pyrophosphate of general formula (D') by the action of phosphatase isolated from potato sprouts. Moreover, we succeeded in obtaining all-trans polyprenyl alcohol of general formula (1') in good yield.
本発明に用いるホスフアターゼは酵素を分離取得するた
めに一般的手法によってジャガイモの芽を処理すること
によって得られる。The phosphatase used in the present invention can be obtained by treating potato sprouts by conventional techniques to separate and obtain the enzyme.
たとえば、ジャガイモの芽をpH5.0〜8.咳序まし
くは6.5〜8.0の緩衝液中にすりおろし、搾り汁を
とって遠心分離すれば上燈液としてホスフアターゼ含有
液が得られる。本発明においては上記の上燈液をそのま
ま全トランス型ポリプレニルピロホスフヱートの加水分
解反応に供することができる。分離されたホスフアター
ゼの物理化学的性質を以下に示す。至適PH:7.4至
適温度:370
基質特異性:一般式(D)の全トランス型ポリプレニル
ホスフェートを加水分解する。For example, potato sprouts have a pH of 5.0 to 8. If the mixture is grated in a buffer solution of preferably 6.5 to 8.0, the juice is squeezed out and centrifuged, a phosphatase-containing solution is obtained as a supernatant solution. In the present invention, the above-mentioned supernatant solution can be directly subjected to the hydrolysis reaction of all-trans polyprenyl pyrophosphate. The physicochemical properties of the isolated phosphatase are shown below. Optimum pH: 7.4 Optimum temperature: 370 Substrate specificity: Hydrolyzes all-trans polyprenyl phosphate of general formula (D).
本発明における一般式(ロ)で示される全トランス型ポ
リブレニルピロホスフェ−トのホスフアターゼによる加
水分解反応は、トリス−塩酸緩衝液等の緩衝液中で全ト
ランス型ポリブレニルピロホスフェートにホスフアター
ゼを作用させることにより行なわれる。In the present invention, the hydrolysis reaction of all-trans polybrenyl pyrophosphate represented by general formula (b) with phosphatase is carried out to convert all-trans polybrenyl pyrophosphate in a buffer such as Tris-HCl buffer. This is done by the action of phosphatase.
この反応は一般にpH5.0〜8.5好ましくは6.5
〜8.0反応温度25〜60qo好ましくは30〜40
00で1時間程度行なえばよい。最適反応条件は使用さ
れる基質の種類に応じて若干変化するので適宜選択する
のがよい。一般式(m)で示される全トランス型ピロホ
スフエートとイソベンテニルピロホスフエートとの微生
物起源のポリプレニルピロホスフェートシンセターゼに
よる縮合反応は、上記のホスフアタ−ゼによる全トラン
ス型ポリプレニルピロホスフェートの加水分解反応の場
合とほぼ同等の反応条件下で行なうことができる。This reaction is generally carried out at a pH of 5.0 to 8.5, preferably 6.5.
~8.0 Reaction temperature 25-60qo, preferably 30-40qo
00 for about an hour. The optimal reaction conditions vary slightly depending on the type of substrate used, so it is best to select them appropriately. The condensation reaction of all-trans pyrophosphate represented by general formula (m) and isobentenyl pyrophosphate by polyprenyl pyrophosphate synthetase of microbial origin is carried out by the hydration of all-trans polyprenyl pyrophosphate by the above-mentioned phosphatase. The reaction can be carried out under almost the same reaction conditions as for the decomposition reaction.
本発明で用いるポリプレニルピロホスフェートシンセタ
ーゼは任意の微生物から分離されるポリプレニルピロホ
スフエートシンセターゼでよいが、その代表例としてミ
クロコツカス・リソダイクティカス(MicrMocc
uslysodeiktjcus)菌体(ATCC46
98)から分離したものを挙げることができる。The polyprenyl pyrophosphate synthetase used in the present invention may be polyprenyl pyrophosphate synthetase isolated from any microorganism, and a representative example is Micrococcus lithodecticus (MicrMocc).
uslysodeiktjcus) bacterial body (ATCC46
98).
このミクロコツカス・リソダイクテイカス菌体からのポ
リプレニルピロホスフェートシンセターゼの分離はたと
えば次の方法により行なうことができる。25夕の粉末
乾燥したミクロコッカス・リソダィクティカス菌体から
ブロックらの方法〔J.Biol.Chem.242、
1895(1967)〕で得た抽出液(60.000夕
、1時間遠心して得られる上澄液)を30〜50%飽和
の硫酸アンモニウムで分画し、その沈澱を集める。Isolation of polyprenyl pyrophosphate synthetase from Micrococcus lysodiecteicus cells can be carried out, for example, by the following method. The method of Block et al. [J. Biol. Chem. 242,
1895 (1967)] (supernatant liquid obtained by centrifugation for 1 hour at 60,000 yen) is fractionated with ammonium sulfate at a saturation of 30 to 50%, and the precipitate is collected.
沈澱を0.08M塩化カリウムを含む0.09Mりン酸
緩衝液pH6.8(緩衝液1とする)に溶解し、緩衝液
1で平衡化したセファデックスG一25のカラム(スウ
ェ−デン、ファルマシア社製)を通して脱塩、平衡化す
るかまたは透析により緩衝液1に平衡化する。この溶液
を緩衝液1で平衡化したDEAEーセフアデックスA−
50のカラム(1.5×20加、スウェーデン、フアイ
ルマシア社製)にかけ、未吸着部分が漆出された後、緩
衝液1を用いて該緩衝液に含まれる塩化カリウムの濃度
を0.08Mから108Mまで徐々に直線的に上げてタ
ンパクを溶出する。その分画に際してはフラクション・
コレクターを用い緩衝液の量を各々5の‘ずつ分取する
。用いる緩衝液の全容は500肌とする。ポリプレニル
ピ。ホスフェートシンセターゼは画分番号40〜5の蚤
(塩化カリウム濃度0.45〜0.59M)の間に溶出
されてくる。この方法によって得られるポリプレニルピ
ロホスフェートシンセターゼの物理化学的性質を以下に
示す。分子量:78000
至適母:7.0〜7.6
至適温度:370
基質特異性および生成物;ィソベンテニルピロホスフエ
ートとゲラニルピロホスフエート、フアルネシルピロホ
スフェートまたはゲラニルゲラニルピロホスフェートか
ら全トランス型のオクタプレニルピロホスフエートおよ
びノナプレニルピロホスフェートを5:3の割合で生成
する。The precipitate was dissolved in 0.09M phosphate buffer pH 6.8 (referred to as buffer 1) containing 0.08M potassium chloride, and the column of Sephadex G-25 equilibrated with buffer 1 (Sweden) was prepared. (manufactured by Pharmacia) and equilibrated, or equilibrated to Buffer 1 by dialysis. This solution was equilibrated with buffer 1 to DEAE-Sephadex A-
50 column (1.5 x 20, manufactured by Feilmacia, Sweden), and after the unadsorbed portion was removed, the concentration of potassium chloride contained in the buffer solution was adjusted from 0.08M using buffer solution 1. The protein is eluted in a gradual linear manner up to 108M. During the fractionation, the fraction
Using a collector, aliquot the amount of buffer solution into 5' portions. The total volume of buffer used is 500 skins. Polyprenylpi. Phosphate synthetase is eluted between fraction numbers 40 and 5 (potassium chloride concentration 0.45 to 0.59M). The physicochemical properties of polyprenyl pyrophosphate synthetase obtained by this method are shown below. Molecular weight: 78,000 Optimum base: 7.0-7.6 Optimum temperature: 370 Substrate specificity and products; Trans-octaprenyl pyrophosphate and nonaprenyl pyrophosphate are produced in a ratio of 5:3.
酵素反応速度:ゲラニルピロホスフェート〉フアルネシ
ルピロホスフエート>ゲラニルゲラニルピロホスフェー
ト、酵素反応速度比は100:25:20である。Enzyme reaction rate: geranyl pyrophosphate > phalnesyl pyrophosphate > geranylgeranyl pyrophosphate, the enzyme reaction rate ratio is 100:25:20.
本発明のポリプレニルピロホスフェートの製造工程およ
びポリプレニルピロホスフェートの加水分解工程は連続
式、バッチ式のいずれでも可能であるが、使用する酵素
が生成物阻害を起さない連続式を用いることが望ましい
。The polyprenyl pyrophosphate production process and the polyprenyl pyrophosphate hydrolysis process of the present invention can be carried out either continuously or batchwise, but it is preferable to use a continuous process in which the enzyme used does not inhibit the product. desirable.
連続式製造法としては固定化酵素法がとくに好ましい。
固定イ協酵素の調製は従来知られている包括法、イオン
化法、共有結合法のいずれでもよい。以下に、本発明で
用いるホスフアクターゼの調製法の一実施態様を参考例
1に示すとともに、本発明を実施例および比較例により
具体的に説明する。As a continuous production method, an immobilized enzyme method is particularly preferred.
The immobilized coenzyme may be prepared by any of the conventionally known entrapment methods, ionization methods, and covalent bonding methods. Below, one embodiment of the method for preparing phosphatase used in the present invention is shown in Reference Example 1, and the present invention will be specifically explained using Examples and Comparative Examples.
参考例 1
ホスフアターゼの調製
ジャガイモを階所で発芽させた若い芽(5〜10肌)9
.5夕をlmMの3−メルカブトヱタノールを含む10
mMのトリスー塩酸緩衝液柵7.も7.6泌中にすりお
ろし、ガーゼで搾り汁をとる。Reference example 1 Preparation of phosphatase Young sprouts (5 to 10 skins) of potatoes sprouted in the basement 9
.. 10 containing lmM 3-mercabutethanol.
mM Tris-HCl buffer 7. 7.6 Grate the juice and squeeze out the juice with gauze.
この搾り汁を500夕、2分間遠心する。得られた上燈
液10の‘がホスフアターゼの酵素液である。実施例
1ゲラニルピロホスフヱート20山M、イソベンテニル
ピロホスフェート50山M、塩化マグネシウム10のM
およびトリスー塩酸緩衝液解7.4100mMからなる
混合液にミクロコツカス・リソダイクティカス菌体(A
TCC46灘)から分離したポリブレニルピロホスフェ
ートシンセターゼの酵素液20机‘を加えた反応混合液
100肌を370で3時間反応させたところ、全トラン
ス型のオクタプレニルピロホスフエートとノナプレニル
ピロホスフエートからなるポリプレニルピロホスフェー
ト混合物(組成比5:3)が約50%の収率(ィソベン
テニルピロホスフェートを基準とする)で得られた。This squeezed juice is centrifuged for 2 minutes at 500 °C. The obtained supernatant solution 10' is a phosphatase enzyme solution. Example
1 geranyl pyrophosphate 20 M, isobentenyl pyrophosphate 50 M, magnesium chloride 10 M
Micrococticus lithodecticus cells (A
When a reaction mixture containing 20 units of enzyme solution of polybrenyl pyrophosphate synthetase isolated from TCC 46 Nada) was reacted at 370°C for 3 hours, all-trans octaprenyl pyrophosphate and nonaprenyl pyro were detected. A polyprenyl pyrophosphate mixture of phosphates (composition ratio 5:3) was obtained in a yield of approximately 50% (based on isobentenyl pyrophosphate).
ついで、得られたポリプレニルビロホスフェート混合物
に参考例1で得たホスフアターゼの酵素液10の‘を加
え、さらに非イオン性界面活性剤(トリトン×−100
)を0.2%M/Vになるように加えて370で2脚時
間反応させた。その後、6規定の水酸化ナトリウム水溶
液で反応液を弱アルカリ性としたのち、nーヘキサンお
よび石油エーテルで抽出すると全トランス型のオクタプ
レノールとノナプレノールが約5:3の割合で得られた
。これをクロマトグラフィー(高速液クロ、充填剤:日
立ゲル#3011、溶媒:メタノール/nーヘキサン)
により分離、精製した。加水分解反応による収量はほと
んど定量的であった。比較例 1
実施例1で使用したホスフアターゼの代りに市販のホス
フアターゼ(酵母起源べ−リンガーマンハイム社製〔E
.C.3、6、1、1〕)を用いて、実施例1において
同様の加水分解反応を試みたところ、対応するポリプレ
ニルアルコールは生成しなかつた。Next, 10 parts of the phosphatase enzyme solution obtained in Reference Example 1 was added to the obtained polyprenyl birophosphate mixture, and a nonionic surfactant (Triton x-100
) was added to give a concentration of 0.2% M/V, and the mixture was reacted at 370° C. for two hours. Thereafter, the reaction solution was made slightly alkaline with a 6N aqueous sodium hydroxide solution, and extracted with n-hexane and petroleum ether to obtain all-trans octaprenol and nonaprenol in a ratio of about 5:3. This was chromatographed (high performance liquid chromatography, packing material: Hitachi gel #3011, solvent: methanol/n-hexane)
It was separated and purified by The yield from the hydrolysis reaction was almost quantitative. Comparative Example 1 In place of the phosphatase used in Example 1, commercially available phosphatase (yeast origin, manufactured by Boehringer Mannheim [E
.. C. 3, 6, 1, 1]), the same hydrolysis reaction as in Example 1 was attempted, but the corresponding polyprenyl alcohol was not produced.
実施例 2
ゲラニルゲラニルピロホスフェート50山M、塩化マグ
ネシウムlowMおよびトリス−塩酸緩衝液PH7.4
、100mMからなる混合液100泌に参考例1におけ
ると同様の方法で得たホスフアターゼの酵素液l0w上
を加え、さらに非イオン性界面活性剤(トリトン×一1
00)を0.2%M/Vになるように加えて370で3
時間反応させたところ、ほとんど定量的にゲラニルゲラ
ニオールを得た。Example 2 Geranylgeranyl pyrophosphate 50 M, magnesium chloride low M and Tris-HCl buffer pH 7.4
, 10w of a phosphatase enzyme solution obtained in the same manner as in Reference Example 1 was added to a mixture of 100mM and 100mM, and a nonionic surfactant (Triton x 1
00) to 0.2% M/V and 3 at 370.
When the reaction was allowed to proceed for several hours, geranylgeraniol was obtained almost quantitatively.
実施例 3
岡定イQ酵素の調製
ポリプレニルピロホスフエートシンセターゼ:ミクロコ
ッカス・リングィクティカス菌体から分離したポリブレ
ニルピロホスフェートシンセターゼの酵素液60泌を0
.09M塩化カリウムを外液として塩化カリウムを透析
したのち、0.09M塩化カリウムを含むリン酸緩衝液
で平衡化し、同緩衝液で平衡化したDEAE−セフアデ
ツクスA−50のカラム(1.5×20弧)に吸着させ
て固定化酵素を調製した。Example 3 Preparation of Oka Sadai Q Enzyme Polyprenyl pyrophosphate synthetase: 60 ml of enzyme solution of polyprenyl pyrophosphate synthetase isolated from Micrococcus lingicticus cells was diluted to 0.
.. After dialyzing potassium chloride using 0.09M potassium chloride as an external solution, it was equilibrated with a phosphate buffer containing 0.09M potassium chloride, and a DEAE-Sephadex A-50 column (1.5 x 20 The immobilized enzyme was prepared by adsorbing the enzyme to the molecule (Arc).
ホスフアターゼ:参考例1におけると同様の方法で得た
ホスフアターゼの酵素液10叫にアクリルアミドモノマ
−15夕、N・N′−メチレンビスアクリルアミド8夕
、5%8−ジメチルアミノプロピオニトリル10の‘、
2.5%過硫酸カリウム10叫を加えて混合し、37q
0に静直してゲル化させた。Phosphatase: To 10 parts of the phosphatase enzyme solution obtained in the same manner as in Reference Example 1, 15 parts of acrylamide monomer, 8 parts of N·N'-methylenebisacrylamide, 10 parts of 5% 8-dimethylaminopropionitrile,
Add 10 ml of 2.5% potassium persulfate and mix to make 37 q.
0 and allowed to gel.
得られたゲルをワーリングブレンダーによって粉砕し、
粒状の固定イ技酵素を調製した。上記の得られた固定化
ポリプレニルピロホスフェートシンセターゼと固定化ホ
スフアターゼを別々のカラムにつめ、カラムとカラムを
連結した。The resulting gel was crushed using a Waring blender,
A granular immobilized enzyme was prepared. The immobilized polyprenyl pyrophosphate synthetase and immobilized phosphatase obtained above were packed into separate columns, and the columns were connected.
Claims (1)
をジヤガイモの芽から分離したホスフアターゼの作用に
より加水分解することを特徴とする一般式▲数式、化学
式、表等があります▼ (式中、nは上記の意味を有する) で示される全トランス型ポリプレニルアルコールの製造
法。 2 一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ (式中、1は2〜4の整数を表わす) で示される全トランス型ピロホスフエートとイソペンテ
ニルピロホスフエートを微生物起源のポリプレニルピロ
ホスフエートシンセターゼの作用により反応させて一般
式▲数式、化学式、表等があります▼ (式中、mは8または9の整数を表わす)で示される全
トランス型ピロホスフエートを合成し、ついで該ピロホ
スフエートをジヤガイモの芽から分離したホスフアター
ゼの作用により加水分解することを特徴とする一般式▲
数式、化学式、表等があります▼ (式中、mは上記の意味を有する) で示される全トランス型ポリプレニルアルコールの製造
法。[Scope of Claims] 1. All-trans polyprenyl pyrophosphate represented by the general formula ▲ Numerical formula, chemical formula, table, etc. ▼ (wherein n represents an integer from 2 to 10) isolated from ginger sprouts A method for producing all-trans polyprenyl alcohol, which is characterized by its hydrolysis due to the action of phosphatase, which is represented by the general formula ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ (wherein n has the meaning above). 2 All-trans pyrophosphate and isopentenyl pyrophosphate represented by the general formula ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ (in the formula, 1 represents an integer from 2 to 4) All-trans pyrophosphate represented by the general formula ▲Mathematical formula, chemical formula, table, etc.▼ (in the formula, m represents an integer of 8 or 9) is synthesized by reacting with the action of tase, and then the pyrophosphate is injected into a potato. General formula ▲ characterized by hydrolysis by the action of phosphatase isolated from buds
There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ (In the formula, m has the meaning above) A method for producing all-trans polyprenyl alcohol.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4080677A JPS6018395B2 (en) | 1977-04-08 | 1977-04-08 | Method for producing all-trans polyprenyl alcohol |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4080677A JPS6018395B2 (en) | 1977-04-08 | 1977-04-08 | Method for producing all-trans polyprenyl alcohol |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS53127889A JPS53127889A (en) | 1978-11-08 |
| JPS6018395B2 true JPS6018395B2 (en) | 1985-05-10 |
Family
ID=12590873
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4080677A Expired JPS6018395B2 (en) | 1977-04-08 | 1977-04-08 | Method for producing all-trans polyprenyl alcohol |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6018395B2 (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4002833B2 (en) * | 2000-12-28 | 2007-11-07 | 株式会社豊田中央研究所 | Method for producing polypeptide, polynucleotide, recombinant nucleic acid, recombinant, prenyl alcohol |
-
1977
- 1977-04-08 JP JP4080677A patent/JPS6018395B2/en not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS53127889A (en) | 1978-11-08 |
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