JPS6035112B2 - 新抗生物質sf−1130−x↓2物質、その製造方及び免疫賦活剤 - Google Patents
新抗生物質sf−1130−x↓2物質、その製造方及び免疫賦活剤Info
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- JPS6035112B2 JPS6035112B2 JP59100439A JP10043984A JPS6035112B2 JP S6035112 B2 JPS6035112 B2 JP S6035112B2 JP 59100439 A JP59100439 A JP 59100439A JP 10043984 A JP10043984 A JP 10043984A JP S6035112 B2 JPS6035112 B2 JP S6035112B2
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ストレプトミセス属のうちから選択された微
生物の培養物から単離された新抗生物質SF−1130
−×2物質、及びそれらの製造法及び免疫賦宿剤として
用いる用途に関するものである。
生物の培養物から単離された新抗生物質SF−1130
−×2物質、及びそれらの製造法及び免疫賦宿剤として
用いる用途に関するものである。
本発明者らは、ストレプトミセス属に属する微生物の培
養液中にグラム陰性菌に対して、発育阻止作用を示す抗
生物質が生産されることを見し、出し、その有効物質を
単離し、SF−1130一×2物質と命名した。さらに
、本物質は更に担ガン又は制ガン剤投与によって惹起さ
れる免疫の低下を抑制する作用を有することを発見して
、本発明を完成させた。
養液中にグラム陰性菌に対して、発育阻止作用を示す抗
生物質が生産されることを見し、出し、その有効物質を
単離し、SF−1130一×2物質と命名した。さらに
、本物質は更に担ガン又は制ガン剤投与によって惹起さ
れる免疫の低下を抑制する作用を有することを発見して
、本発明を完成させた。
すなわち、第1の本発明においては、次の理化学的性状
を示す、すなわち、元素分析値:炭素43.84%、水
素6.41%、窒素1.08%、酸素49.67%(差
):比旋光度+155o(水)であり、紫外部に吸収極
大を有さず、添附図面の第1図に示した赤外線吸収スペ
クトル、第2図に示した水素核磁気共鳴吸収スペクトル
を有し、水・ジメチルスルホキシ日こ易溶、アルコール
に難溶、アセトン、酢酸エチル、クロロホルム、ベンゼ
ンに不溶であり、硝酸銀、レッドテトラゾリウム、アン
スロン、ニンヒドリン、グレーク、リーパックの各試験
に陽性であり、ペーパークロマトグラフィーにて酢酸エ
チル・ピリジン・水(10:4:3)の展開溶媒を用い
るRラフィノースが0.57、nーブタノール・ピリジ
ン・酢酸・水(6:4:1:3)の展開溶媒を用いると
Rラフィノースが0.33を示す白色弱塩基性粉末状で
あることを特徴とするSF−1130一&物質を要旨と
するものである。第2の本発明においては、ストレプト
ミセス属に属するSF−1130−を物質生産菌を、好
気的条件下に培養して、培養液中にSF−1130−×
2物質を蓄積させ、これを採取することを特徴とする新
抗生物質SF−1130−均物質の製造法を要旨とする
。また、第3の本発明は有効成分としてSF−1130
一均物質を含むことを特徴とする免疫賦活剤を要旨とす
る。
を示す、すなわち、元素分析値:炭素43.84%、水
素6.41%、窒素1.08%、酸素49.67%(差
):比旋光度+155o(水)であり、紫外部に吸収極
大を有さず、添附図面の第1図に示した赤外線吸収スペ
クトル、第2図に示した水素核磁気共鳴吸収スペクトル
を有し、水・ジメチルスルホキシ日こ易溶、アルコール
に難溶、アセトン、酢酸エチル、クロロホルム、ベンゼ
ンに不溶であり、硝酸銀、レッドテトラゾリウム、アン
スロン、ニンヒドリン、グレーク、リーパックの各試験
に陽性であり、ペーパークロマトグラフィーにて酢酸エ
チル・ピリジン・水(10:4:3)の展開溶媒を用い
るRラフィノースが0.57、nーブタノール・ピリジ
ン・酢酸・水(6:4:1:3)の展開溶媒を用いると
Rラフィノースが0.33を示す白色弱塩基性粉末状で
あることを特徴とするSF−1130一&物質を要旨と
するものである。第2の本発明においては、ストレプト
ミセス属に属するSF−1130−を物質生産菌を、好
気的条件下に培養して、培養液中にSF−1130−×
2物質を蓄積させ、これを採取することを特徴とする新
抗生物質SF−1130−均物質の製造法を要旨とする
。また、第3の本発明は有効成分としてSF−1130
一均物質を含むことを特徴とする免疫賦活剤を要旨とす
る。
本発明の方法で使用されるストレプトミセス属に属する
SF−1130一&物質生産菌として、例えば本発明者
らによって土壌より分離したSF−113功珠がある。
SF−1130一&物質生産菌として、例えば本発明者
らによって土壌より分離したSF−113功珠がある。
この菌は、工業技術院微生物工業技術研究所に昭和43
王9月4日以来、微生物受託番号徴工研菌寄第676号
として寄託されている。SF−113の珠の菌学的性状
は次の通りである。1形態 基生菌糸は、多くの培地でよく伸長するが、気菌糸の形
成は一般に不良である。
王9月4日以来、微生物受託番号徴工研菌寄第676号
として寄託されている。SF−113の珠の菌学的性状
は次の通りである。1形態 基生菌糸は、多くの培地でよく伸長するが、気菌糸の形
成は一般に不良である。
気菌糸着生のみられるスターチ寒天、澱粉酵母エキス(
または澱粉、酵母エキス)寒天等ではよく伸長した基生
菌糸から短く密集した気菌糸が形成される。分岐は単純
分岐で車軸分岐はみられない。気菌糸の先端は大部分コ
ンパクトな閉鎖型のらせん糸からなるが、不完全ならせ
ん糸及び開放型らせん糸も観察される。菌核形成は認め
られない。電子顕微鏡による胞子の表面構造は平滑型で
ある。胞子は楕円ないし円筒型で0.6〜0.7×0.
9〜1.0ミクロンの大きさを有する。2 各種培地上
の性状 −− 1 3 生理的性状 ゼラチンの液化:陽性 澱粉の加水分解:陽一性 チロシナーゼの生成:陽一性 硫化水素の生成:陽性 クロモゲニック作用:陽・性 繊維素の分解:陰性 硝酸塩の還元:陰性 脱脂乳のべプトン化:陰性 脱脂乳の凝固:陰性 レフラー凝固血清の液化:陰性 以上のような生理的性状のほかに、SF−1130株は
寒天培地及び液体培地で粘買物を産生する性質を有して
おり、これは本菌株の大きな特徴である。
または澱粉、酵母エキス)寒天等ではよく伸長した基生
菌糸から短く密集した気菌糸が形成される。分岐は単純
分岐で車軸分岐はみられない。気菌糸の先端は大部分コ
ンパクトな閉鎖型のらせん糸からなるが、不完全ならせ
ん糸及び開放型らせん糸も観察される。菌核形成は認め
られない。電子顕微鏡による胞子の表面構造は平滑型で
ある。胞子は楕円ないし円筒型で0.6〜0.7×0.
9〜1.0ミクロンの大きさを有する。2 各種培地上
の性状 −− 1 3 生理的性状 ゼラチンの液化:陽性 澱粉の加水分解:陽一性 チロシナーゼの生成:陽一性 硫化水素の生成:陽性 クロモゲニック作用:陽・性 繊維素の分解:陰性 硝酸塩の還元:陰性 脱脂乳のべプトン化:陰性 脱脂乳の凝固:陰性 レフラー凝固血清の液化:陰性 以上のような生理的性状のほかに、SF−1130株は
寒天培地及び液体培地で粘買物を産生する性質を有して
おり、これは本菌株の大きな特徴である。
澱粉酵母エキス(または澱粉・酵母エキス)寒天・スタ
ーチ寒天、グルコース・アスパラギン寒天等の寒天塔地
では粘買物が培養10日目頃から菌体の上にもり上って
生成されるのが観察される。また適当な炭素源(グルコ
ース、澱粉等)と窒素源(酵母エキス、大豆粉、小麦豚
芽等)を含む液体培地でSF−113功朱を振濠培養す
ると培養液が次第に粘碗となり、粘買物の生成が認めら
れる。
ーチ寒天、グルコース・アスパラギン寒天等の寒天塔地
では粘買物が培養10日目頃から菌体の上にもり上って
生成されるのが観察される。また適当な炭素源(グルコ
ース、澱粉等)と窒素源(酵母エキス、大豆粉、小麦豚
芽等)を含む液体培地でSF−113功朱を振濠培養す
ると培養液が次第に粘碗となり、粘買物の生成が認めら
れる。
4 炭素源の利用性
1 利用する:キシロース、グルコース、ガラクトース
、マルトース、サツカロース、ラクトース、ラフィノー
ス、デキストリン、澱粉、グリセロール、ィノシトール
、酢酸ソ−ダ、クエン酸ソーダ、マンノース2 利用が
凝わしい:アラビノース、フラクトース、サリシン3
利用しない:ラムノース、イヌリン、ダル「・・ェット
、マンニツト、ソルビツト、コハク酸ソーダ、セルロー
ス以上より、SF−113の朱の菌学的特徴を要約する
と、‘1} 気菌糸の先端は主にらせん状(閉鎖型)で
胞子表面は平滑型である。
、マルトース、サツカロース、ラクトース、ラフィノー
ス、デキストリン、澱粉、グリセロール、ィノシトール
、酢酸ソ−ダ、クエン酸ソーダ、マンノース2 利用が
凝わしい:アラビノース、フラクトース、サリシン3
利用しない:ラムノース、イヌリン、ダル「・・ェット
、マンニツト、ソルビツト、コハク酸ソーダ、セルロー
ス以上より、SF−113の朱の菌学的特徴を要約する
と、‘1} 気菌糸の先端は主にらせん状(閉鎖型)で
胞子表面は平滑型である。
{2) 気菌糸は灰褐色ないし灰色を呈するが、着生能
はきわめて貧弱である。
はきわめて貧弱である。
(3} 合成塔地での発育は褐色ないし灰褐色である。
‘4) 有機塔地ではクロモゲニックの性状となる。(
5)寒天培地及び液体塔地で粘買物を産生する。
5)寒天培地及び液体塔地で粘買物を産生する。
上記の菌学的性状からSF−1130株の近緑菌種とし
てストレプトミセス・フェオクロモゲス、ストレプトミ
セス・プルプレオクロモゲネス、及びストレプトミセス
・ノボリトェンシスがあげられるが、次に示すようにS
F−1130株はいずれの菌種とも一致しない。
てストレプトミセス・フェオクロモゲス、ストレプトミ
セス・プルプレオクロモゲネス、及びストレプトミセス
・ノボリトェンシスがあげられるが、次に示すようにS
F−1130株はいずれの菌種とも一致しない。
即ち、ストレフ。
トミセス・フエオクロモゲネスは気菌糸を豊富に着生し
、シュークロース・硝酸塩寒天及びリンゴ酸カルシウム
寒天で褐色の可溶性色素を生成するのに対し、SF−1
130株は気菌糸着生能が貧弱で、上記塔地で可溶性色
素を生成しない点で両者は明瞭に区別される。ストレプ
トミセス・プルプレオクロモゲスは馬鈴薯の発育が燈色
〜燈赤色で硫化水素を生成せず、脱脂乳を凝固するのに
対してSF−1130株は馬鈴薯片での発育が褐色で、
硫化水素を生成し、脱脂乳の凝固がみられない等の明瞭
な相違点を有している。
、シュークロース・硝酸塩寒天及びリンゴ酸カルシウム
寒天で褐色の可溶性色素を生成するのに対し、SF−1
130株は気菌糸着生能が貧弱で、上記塔地で可溶性色
素を生成しない点で両者は明瞭に区別される。ストレプ
トミセス・プルプレオクロモゲスは馬鈴薯の発育が燈色
〜燈赤色で硫化水素を生成せず、脱脂乳を凝固するのに
対してSF−1130株は馬鈴薯片での発育が褐色で、
硫化水素を生成し、脱脂乳の凝固がみられない等の明瞭
な相違点を有している。
またストレプトミセス・ノボリトエンシスはらせん糸を
形成せず、スターチ寒天で緑色の可溶性色素を生成する
(文献では緑色可溶性色素の生成は言己戦されていない
が、タイプ株では顕著に認められる)。
形成せず、スターチ寒天で緑色の可溶性色素を生成する
(文献では緑色可溶性色素の生成は言己戦されていない
が、タイプ株では顕著に認められる)。
一方、SF−113の粥まらせん糸を形成し、スターチ
寒天では可溶性色素を生成しない。さらに両者はマンニ
ット、サッカロースの利用性においても相違しており、
SF−113の粉まストレプトミセス・ノボリトェンシ
スから区別される。
寒天では可溶性色素を生成しない。さらに両者はマンニ
ット、サッカロースの利用性においても相違しており、
SF−113の粉まストレプトミセス・ノボリトェンシ
スから区別される。
さらに、SF−1130株は粘着物を産生するという特
異的な性質を有するが、上記三繭種を含めてストレプト
ミセス属の菌種で粘質物を産生するという報告はなく、
この点でもSF−1130株は既知菌種中に一致するも
のがない。
異的な性質を有するが、上記三繭種を含めてストレプト
ミセス属の菌種で粘質物を産生するという報告はなく、
この点でもSF−1130株は既知菌種中に一致するも
のがない。
従って、本発明者らはSF−1130株を分離した当時
、この菌株をストレプトミセス属の新菌種と考え、スト
レプトミセス・ミキソゲネス(Streptomyce
sm磯ogenesSP.nov.)と命名した。
、この菌株をストレプトミセス属の新菌種と考え、スト
レプトミセス・ミキソゲネス(Streptomyce
sm磯ogenesSP.nov.)と命名した。
SF−113の舵ま他のストレプトミセス属の繭種の場
合にみられるように、その性状が変化しやすく、例えば
紫外線、エックス線、高周波、放射線、薬品等の人工的
変異手段で変異しうるものであり、このような変異株を
含めて、ストレプトミセス属に属する菌株であってSF
−1130一−物質を生産する生産能を有するものは、
すべて本発明の方法に使用することができる。
合にみられるように、その性状が変化しやすく、例えば
紫外線、エックス線、高周波、放射線、薬品等の人工的
変異手段で変異しうるものであり、このような変異株を
含めて、ストレプトミセス属に属する菌株であってSF
−1130一−物質を生産する生産能を有するものは、
すべて本発明の方法に使用することができる。
本発明の方法では前記菌株を通常の微生物が利用しうる
栄養物を含有する培地で培養する。
栄養物を含有する培地で培養する。
栄養源としては、従来ストレプトミセス属の培養に利用
される公知のものが使用できる。例えば炭素源として、
澱粉、水あめ、糖みつ等を使用しうる。また窒素源とし
て、大豆粉、小麦舵芽、乾燥酵母、ベプトン、肉エキス
、コーンステープリカー、硫酸アンモニウム、硝酸ソー
ダ等を使用しうる。その他必要に応じて炭酸カルシウム
、塩化ナ−トリウム、塩化カリ、燐酸塩等の無機塩類を
添加するほか、菌の発育を助けSF−1130一梅物質
の生産を促進するごとき有機及び無機物を適当に添加す
ることができる。培養法としては、一般抗生物質生産の
方法と同じく、液体培養法、特に深部培養法が最も適し
ている。
される公知のものが使用できる。例えば炭素源として、
澱粉、水あめ、糖みつ等を使用しうる。また窒素源とし
て、大豆粉、小麦舵芽、乾燥酵母、ベプトン、肉エキス
、コーンステープリカー、硫酸アンモニウム、硝酸ソー
ダ等を使用しうる。その他必要に応じて炭酸カルシウム
、塩化ナ−トリウム、塩化カリ、燐酸塩等の無機塩類を
添加するほか、菌の発育を助けSF−1130一梅物質
の生産を促進するごとき有機及び無機物を適当に添加す
ることができる。培養法としては、一般抗生物質生産の
方法と同じく、液体培養法、特に深部培養法が最も適し
ている。
培養は好気的条件下で行なわれ、培養に適当な温度は2
500〜38ooであるが、多くの場合28午○付近で
培養する。かくして、SF−1130−×2物質の生産
は、振濠培養、タンク培養共に2〜5日で最高に達する
。SF−1130−私物質の検定に当っては、次の方法
が用いられる。
500〜38ooであるが、多くの場合28午○付近で
培養する。かくして、SF−1130−×2物質の生産
は、振濠培養、タンク培養共に2〜5日で最高に達する
。SF−1130−私物質の検定に当っては、次の方法
が用いられる。
検定用の培地としては、0.125%のマルトトリオー
スを含有したマィシン・アッセィ寒天塔地(ベプトン0
.5%、ミートエキス0.3%、寒天1.5%、pH6
)を用い、検定菌には、大腸菌、ェシェリヒア・コリ(
Eecherichiacoli)K−12Rを使用す
る。検定法は通常のペーパーディスク法が用いられる。
SF−1130−杉物質は後記するような理化学的性状
を示す弱塩基性のオリゴ糖であるため、その性質に従っ
て、培養液中から採取、精製することができる。
スを含有したマィシン・アッセィ寒天塔地(ベプトン0
.5%、ミートエキス0.3%、寒天1.5%、pH6
)を用い、検定菌には、大腸菌、ェシェリヒア・コリ(
Eecherichiacoli)K−12Rを使用す
る。検定法は通常のペーパーディスク法が用いられる。
SF−1130−杉物質は後記するような理化学的性状
を示す弱塩基性のオリゴ糖であるため、その性質に従っ
て、培養液中から採取、精製することができる。
例えば、カーボン吸着、含水アルコール溶離法、又は水
−エタノール再沈澱法によって精製できる。即ち、SF
−113功珠の培養液をpH3で酸性炉遇することによ
って菌体と炉別後、直ちにカーボンカラムに吸着させ、
50%アセトン水で溶離し、溶離液を渡額乾固したのち
、水に溶解し、再度カーボンカラムに吸着させて、5〜
25%のエタノール水で順次溶離し、SF−1130−
×2物質を含有する区分を濃縮後、エタノールで沈澱さ
せれば、容易に粗粉末を得ることができる。
−エタノール再沈澱法によって精製できる。即ち、SF
−113功珠の培養液をpH3で酸性炉遇することによ
って菌体と炉別後、直ちにカーボンカラムに吸着させ、
50%アセトン水で溶離し、溶離液を渡額乾固したのち
、水に溶解し、再度カーボンカラムに吸着させて、5〜
25%のエタノール水で順次溶離し、SF−1130−
×2物質を含有する区分を濃縮後、エタノールで沈澱さ
せれば、容易に粗粉末を得ることができる。
このようにして得られた粗粉末には通常、中性のオリゴ
糖、特にマルトデキストリンが多量に混入しており、S
F−1130一杉物質の高純品を得るためには次の方法
が好ましい。即ち、酉醗酵液を、ダウェックス50W×
2(H+)の強酸性イオン交換樹脂に通しSF−113
0−私物質を該樹脂に吸着させる。充分水洗したのち、
0.1Nアンモニア水で溶離する。溶離液を乾団後、水
に溶解し、pH3.5でカーボンカラムに吸着させ、水
洗後、30〜35%のエタノール水で溶出し、濃縮乾固
する。次いでこれを、再びダウェックス50W×2(N
H4十)のレジンに吸着させ、水洗後、0.1Nアンモ
ニア水で溶離し、乾固する。さらにこれをダウェツクス
50W×2(ピリジニウム塩型)のレジンに吸着させ、
0.1Mピリジン・ギ酸緩衝液(pH3.1)で展開し
、抗菌活性分画を濃縮乾固して、SF−1130−×2
物質と同時に生産されるSF−1130一×.物質(特
磯昭51一99757号明細書参照)との混合物が白色
の粉末として得られる。本粉末はこのま)で生理活性試
験に充分提供できるが、この混合物をセルロースカラム
に吸着させ、展開溶媒(n−プロパノール・酢酸エチル
・水=6:1:3)で展開し、ペーパークロマトグラフ
ィー(酢酸エチル・ピリジン・水=10:4:3)にお
いて、Rラフイノース=0.39(ラフイノースのRf
を1.00として)の単一スポットを示す分画を濃綾乾
固すれば、副成のSF−1130一×,物質が無色の粉
末で得られる。同時に、Rラフィノースこ0.57の分
画を濃縮乾団して、無色の粉末として本発明のSF−1
130一×2物質が得られる。なお、本発明の方法にお
いてSF−113の朱を培養した場合には、培養物中に
は、SF−1130−×,及び−を物質以外に、マルト
ベンタオース、マルトヘキサオース(本出願人の同日出
願に係る侍願昭51−99756号参照)も生産、蓄積
されている。
糖、特にマルトデキストリンが多量に混入しており、S
F−1130一杉物質の高純品を得るためには次の方法
が好ましい。即ち、酉醗酵液を、ダウェックス50W×
2(H+)の強酸性イオン交換樹脂に通しSF−113
0−私物質を該樹脂に吸着させる。充分水洗したのち、
0.1Nアンモニア水で溶離する。溶離液を乾団後、水
に溶解し、pH3.5でカーボンカラムに吸着させ、水
洗後、30〜35%のエタノール水で溶出し、濃縮乾固
する。次いでこれを、再びダウェックス50W×2(N
H4十)のレジンに吸着させ、水洗後、0.1Nアンモ
ニア水で溶離し、乾固する。さらにこれをダウェツクス
50W×2(ピリジニウム塩型)のレジンに吸着させ、
0.1Mピリジン・ギ酸緩衝液(pH3.1)で展開し
、抗菌活性分画を濃縮乾固して、SF−1130−×2
物質と同時に生産されるSF−1130一×.物質(特
磯昭51一99757号明細書参照)との混合物が白色
の粉末として得られる。本粉末はこのま)で生理活性試
験に充分提供できるが、この混合物をセルロースカラム
に吸着させ、展開溶媒(n−プロパノール・酢酸エチル
・水=6:1:3)で展開し、ペーパークロマトグラフ
ィー(酢酸エチル・ピリジン・水=10:4:3)にお
いて、Rラフイノース=0.39(ラフイノースのRf
を1.00として)の単一スポットを示す分画を濃綾乾
固すれば、副成のSF−1130一×,物質が無色の粉
末で得られる。同時に、Rラフィノースこ0.57の分
画を濃縮乾団して、無色の粉末として本発明のSF−1
130一×2物質が得られる。なお、本発明の方法にお
いてSF−113の朱を培養した場合には、培養物中に
は、SF−1130−×,及び−を物質以外に、マルト
ベンタオース、マルトヘキサオース(本出願人の同日出
願に係る侍願昭51−99756号参照)も生産、蓄積
されている。
SF−1130−×,、−池物質は抗菌性及び弱塩基性
を示すオリゴ糖に属し水に易溶、メタノール、エタノー
ルに雛溶、アセトンに不溶な物質である。これに対して
、前記のマルトベンタオース、マルトヘキサオースは中
性で水に易溶、エタノール、アセトンに不溶なオリゴ糖
であるから、上記の如き性質の差を利用して相互に分離
できる。すなわち、例えばSF−1130株の培養液を
酸性炉遇して得られた炉液を強酸性イオン交換樹脂を通
すと、SF−1130−×,、−&物質は該樹脂に吸着
される力ミ、マルトベンタオース、マルトヘキサオース
は吸着されずに通過する。該樹脂を0.1Nアンモニア
水で処理するとSF−1130−x2、一×2物質は溶
出される。本発明のSF−1130−×2物質の理化学
的性質は表−2に示す通りである。
を示すオリゴ糖に属し水に易溶、メタノール、エタノー
ルに雛溶、アセトンに不溶な物質である。これに対して
、前記のマルトベンタオース、マルトヘキサオースは中
性で水に易溶、エタノール、アセトンに不溶なオリゴ糖
であるから、上記の如き性質の差を利用して相互に分離
できる。すなわち、例えばSF−1130株の培養液を
酸性炉遇して得られた炉液を強酸性イオン交換樹脂を通
すと、SF−1130−×,、−&物質は該樹脂に吸着
される力ミ、マルトベンタオース、マルトヘキサオース
は吸着されずに通過する。該樹脂を0.1Nアンモニア
水で処理するとSF−1130−x2、一×2物質は溶
出される。本発明のSF−1130−×2物質の理化学
的性質は表−2に示す通りである。
なお、参考としてSF−1130−×.物質の性質も表
−2に併記する。SF−1130−×,及び−×2物質
は、酸性レジンを吸着すること及びpHI.9の炉紙電
気泳動法において、陰極に移動することから、弱塩基性
物質であり、酸加水分解で多量のグルコースを与えるこ
とから、オリゴ糖であると考えられる。表−2 なお、SF−1130−×,及びSF−1130−×2
物質は 次の一般式で表わされ、SF−1130−×
,物質については(m+n)=5でSF−1130一×
2物質については(m+n)=4であることが判明した
。
−2に併記する。SF−1130−×,及び−×2物質
は、酸性レジンを吸着すること及びpHI.9の炉紙電
気泳動法において、陰極に移動することから、弱塩基性
物質であり、酸加水分解で多量のグルコースを与えるこ
とから、オリゴ糖であると考えられる。表−2 なお、SF−1130−×,及びSF−1130−×2
物質は 次の一般式で表わされ、SF−1130−×
,物質については(m+n)=5でSF−1130一×
2物質については(m+n)=4であることが判明した
。
SF−1130−私物質の各種微生物に対する抗菌スペ
クトルは、表−2に示す通りで、グラム腸性菌に対して
活性を有するが、グラム陰性菌及び抗酸菌には無効であ
る。
クトルは、表−2に示す通りで、グラム腸性菌に対して
活性を有するが、グラム陰性菌及び抗酸菌には無効であ
る。
更に本発明者らは、SF−1130−&物質の抗菌力は
、マルトース、マルトトリオース、マルトテトラオース
、マルトベンタオース、マルトヘキサオース等のマルト
デキストリンが共存すると、活性が著しく増加すること
を発見した。但し、この場合、クレブジーラ・ニュー*
*モニィーに対しては例外的に増加が認めら;しなかっ
た。その試験例を表−3に示す。表−3 ※ マルトトリォースは、平板上層培地(マィシンァッ
セィ寒天)中に、1.25概/ccの割合で添加した。
、マルトース、マルトトリオース、マルトテトラオース
、マルトベンタオース、マルトヘキサオース等のマルト
デキストリンが共存すると、活性が著しく増加すること
を発見した。但し、この場合、クレブジーラ・ニュー*
*モニィーに対しては例外的に増加が認めら;しなかっ
た。その試験例を表−3に示す。表−3 ※ マルトトリォースは、平板上層培地(マィシンァッ
セィ寒天)中に、1.25概/ccの割合で添加した。
本条件ではマルトトリォース自体には、抗菌活性はない
。SF−1130一私物質の毒性は極めて弱く、夫々マ
ウスを用いた急性毒性試験では、皮下注射の場合、40
0の9/kgでも、全例生存した。SF−1130−×
2物質はSarcoma180の腹水腫湯を移植したマ
ウスにおける免疫賦活試験(遅延型皮膚反応法)におい
て、免疫低下の防止作用のあることが発見された。この
作用は、更に制ガン剤投与の際におこる免疫低下の防止
にも有効なことも判明した。この場合、抗菌活性の場合
と同様にマルトデキストリンの添加によって免疫賦活の
増強がみられた。その1試験例を表−4に示す。試験方
法は、ICR系マウス(1群6匹)にSarcoma1
80の腹水自重湯を移植し、24時間後、各検体(薬物
)及び制ガン剤(Endoxan)を夫々皮下及び腹腔
内投与し、移植2日目に剃毛腹部に6%塩化ピクリルェ
タノール溶液を塗布して感作し、その後検体を1日1回
4日間投与。4日目にはEndo滋nを再投与し、9日
目に、1%塩化ピクリルオリーブ油溶液を両耳の表裏に
塗布して、2次感作させる。
。SF−1130一私物質の毒性は極めて弱く、夫々マ
ウスを用いた急性毒性試験では、皮下注射の場合、40
0の9/kgでも、全例生存した。SF−1130−×
2物質はSarcoma180の腹水腫湯を移植したマ
ウスにおける免疫賦活試験(遅延型皮膚反応法)におい
て、免疫低下の防止作用のあることが発見された。この
作用は、更に制ガン剤投与の際におこる免疫低下の防止
にも有効なことも判明した。この場合、抗菌活性の場合
と同様にマルトデキストリンの添加によって免疫賦活の
増強がみられた。その1試験例を表−4に示す。試験方
法は、ICR系マウス(1群6匹)にSarcoma1
80の腹水自重湯を移植し、24時間後、各検体(薬物
)及び制ガン剤(Endoxan)を夫々皮下及び腹腔
内投与し、移植2日目に剃毛腹部に6%塩化ピクリルェ
タノール溶液を塗布して感作し、その後検体を1日1回
4日間投与。4日目にはEndo滋nを再投与し、9日
目に、1%塩化ピクリルオリーブ油溶液を両耳の表裏に
塗布して、2次感作させる。
その2狐時間後の耳の厚さの増加度を測定して、その増
加率により、遅延型皮膚反応の程度を判定したものであ
る。表−4 泰一5は、Sarcoma180固型ガンを用いた免疫
賦活試験を示す。
加率により、遅延型皮膚反応の程度を判定したものであ
る。表−4 泰一5は、Sarcoma180固型ガンを用いた免疫
賦活試験を示す。
試験方法はSarcoma180をICR系マウス(1
群5匹)に皮下移植前、6日目と5日目‘こ、実施例2
で得られたSF−1130−×2物質とマルトベンタオ
ースの混合物を腹腔内投与し、移植後10日目‘こ自重
湯を摘出し、それらの大きさ及び重量を測定した。表−
5にみられる如く、本発明の化合物の事前投与によって
、固型腫湯の顕著な縮退がみられた。表−5一方、Sa
rcoma180をマウス腹腔内にあらかじめ移植し、
その後でSF−1130一×2物質を用いて治療試験し
た結果では全く無効であった。
群5匹)に皮下移植前、6日目と5日目‘こ、実施例2
で得られたSF−1130−×2物質とマルトベンタオ
ースの混合物を腹腔内投与し、移植後10日目‘こ自重
湯を摘出し、それらの大きさ及び重量を測定した。表−
5にみられる如く、本発明の化合物の事前投与によって
、固型腫湯の顕著な縮退がみられた。表−5一方、Sa
rcoma180をマウス腹腔内にあらかじめ移植し、
その後でSF−1130一×2物質を用いて治療試験し
た結果では全く無効であった。
従ってSF−1130−×2物質は宿主の免疫抵抗力を
賦活化することによって間接的に治癒効果を示すことは
明らかである。近年、原虫症或いはガン患者の免疫抵抗
力が正常状態に比べて著るしく低下していることが判明
し、この低下を防止して治療効果を高める所謂、免疫療
法が臨床的に用いられ始めている。
賦活化することによって間接的に治癒効果を示すことは
明らかである。近年、原虫症或いはガン患者の免疫抵抗
力が正常状態に比べて著るしく低下していることが判明
し、この低下を防止して治療効果を高める所謂、免疫療
法が臨床的に用いられ始めている。
このための免疫賦宿剤としては、BCG菌体或いは各種
多糖体がよく知られているが、いづれも高分子であり、
本発明に示したような分子量一方以下のオリゴ糖に免疫
賦活作用のあることは、これまで全く報告がなく、実に
予想外のことである。このような低分子オリゴ糖は、吸
収・排他、結核の感染性、アレルギー反応の頻度等の点
で多糖体よりは実用上優れていることは明らかである。
更に、SF−1130−&物質は細菌感染症に対して感
染防御作用を示して免疫賦活剤として有効であることは
、次の試験例によっても明らかである。
多糖体がよく知られているが、いづれも高分子であり、
本発明に示したような分子量一方以下のオリゴ糖に免疫
賦活作用のあることは、これまで全く報告がなく、実に
予想外のことである。このような低分子オリゴ糖は、吸
収・排他、結核の感染性、アレルギー反応の頻度等の点
で多糖体よりは実用上優れていることは明らかである。
更に、SF−1130−&物質は細菌感染症に対して感
染防御作用を示して免疫賦活剤として有効であることは
、次の試験例によっても明らかである。
即ち、JCL:ICR系雄マウスを1群8匹として用い
、SF−1130−x2物質をpH7.2の燐酸緩衝液
に溶解し、1日当たり50の9/K9又は10爪9′k
9の用量で4斑時間間隔で3回腹腔内投与した。最終投
与終了7幼時間後に、スタフィロコツカス・アウレウス
・スミスS−424朱の培養液を生理食塩水で稀釈後、
5%ムチンを加えた細菌懸濁液を腹腔内に接種した。菌
接種容量は0.物上/マウスとした。接種後5日間、マ
ウスの生存数を観察して、下記の表−6に示す結果を得
た。SF−1130−x2は無処置対照群(コントロー
ル)に比べて50の9/k9投与では細菌接種菌量のL
D5。
、SF−1130−x2物質をpH7.2の燐酸緩衝液
に溶解し、1日当たり50の9/K9又は10爪9′k
9の用量で4斑時間間隔で3回腹腔内投与した。最終投
与終了7幼時間後に、スタフィロコツカス・アウレウス
・スミスS−424朱の培養液を生理食塩水で稀釈後、
5%ムチンを加えた細菌懸濁液を腹腔内に接種した。菌
接種容量は0.物上/マウスとした。接種後5日間、マ
ウスの生存数を観察して、下記の表−6に示す結果を得
た。SF−1130−x2は無処置対照群(コントロー
ル)に比べて50の9/k9投与では細菌接種菌量のL
D5。
(感染防御効果の目安となる)について約11.4倍、
10の9′k9投与では約8.1倍の増加がみられた。
なおSF−1130−&物質自体は表−4に示す如く、
スタフィロコッカス・アウレゥスには全く抗菌力を有し
ない。表−6 また、免疫賦活剤は関節炎(リュウマチ)の如き自己免
疫疾患の治療にも有効である場合が知られている。
10の9′k9投与では約8.1倍の増加がみられた。
なおSF−1130−&物質自体は表−4に示す如く、
スタフィロコッカス・アウレゥスには全く抗菌力を有し
ない。表−6 また、免疫賦活剤は関節炎(リュウマチ)の如き自己免
疫疾患の治療にも有効である場合が知られている。
今回、以下に示す試験例によって、本発明のSF−11
30−×2物質はリュウマチと密接な関連があると言わ
れる実験的関節炎の発現を防止するのに有効であると認
められた。即ち、この試験では、生理食塩水にリブん濁
した細菌、ミコバクテリュウム・ブチリカムの繭体の5
.8雌/羽を含む細菌懸濁液をSD系ラツト(雄、平均
体重180夕、1群10匹)の右の足魔に皮下注射して
起炎ごせた。
30−×2物質はリュウマチと密接な関連があると言わ
れる実験的関節炎の発現を防止するのに有効であると認
められた。即ち、この試験では、生理食塩水にリブん濁
した細菌、ミコバクテリュウム・ブチリカムの繭体の5
.8雌/羽を含む細菌懸濁液をSD系ラツト(雄、平均
体重180夕、1群10匹)の右の足魔に皮下注射して
起炎ごせた。
この糧炎のための細菌注射の1日後にSF−1130−
×物質(SF−1130−×,)とSF−1130−×
2との1:2重量比の混合物)を燐酸緩衝液(pH7.
2)にとかした溶液を毎日1回、連続10日間皮下注射
した。1回当りの投与量は150の9/k9とした。
×物質(SF−1130−×,)とSF−1130−×
2との1:2重量比の混合物)を燐酸緩衝液(pH7.
2)にとかした溶液を毎日1回、連続10日間皮下注射
した。1回当りの投与量は150の9/k9とした。
細菌の接種後14日目に、ラットの脚、耳、鼻、目、尾
に生じた炎症の徴候(発症度)を調べ、0〜3の4段階
(スコア)で評価をし平均値を算出した。更に、左の足
疎の容積を測定してSF−1130−×物質の消炎効力
を判定した。比較のため、SF−1130−×物質に代
えて、フェニルブタゾンを毎日1回、11日間20雌/
k9/日の用量で経口投与した。また、SF−1130
−×及びフェニルブタゾンの投与を省略した以外は全く
同様にして対照(コントロール)試験も行った。この結
果を次の表−7に示す。±−7 この試験により、SF−1130一×2物質は実験的関
節炎の防止に有効であると認められた。
に生じた炎症の徴候(発症度)を調べ、0〜3の4段階
(スコア)で評価をし平均値を算出した。更に、左の足
疎の容積を測定してSF−1130−×物質の消炎効力
を判定した。比較のため、SF−1130−×物質に代
えて、フェニルブタゾンを毎日1回、11日間20雌/
k9/日の用量で経口投与した。また、SF−1130
−×及びフェニルブタゾンの投与を省略した以外は全く
同様にして対照(コントロール)試験も行った。この結
果を次の表−7に示す。±−7 この試験により、SF−1130一×2物質は実験的関
節炎の防止に有効であると認められた。
SF−1130−均物質を投与する場合は、点滴静注、
局部注射、筋注、胸腔又は腹腔注射が可能で、毎日又は
週2〜3回、50〜400mo′k9、好ましくは10
0の9/k9前後を投与する。
局部注射、筋注、胸腔又は腹腔注射が可能で、毎日又は
週2〜3回、50〜400mo′k9、好ましくは10
0の9/k9前後を投与する。
次に本発明の実施例を示す。
実施例 1
ストレブトミセス・ミキソゲネスSF−1130株(徴
工研菌寄第676号)を水あめ5.0%、大豆粉2.5
%、小麦豚芽1.0%、塩化ナトリウム0.25%の液
体塔地200夕(pH7.0)に接種し、ジャーファー
メンターにて、2800で64時間通気縄枠培養を行な
った。
工研菌寄第676号)を水あめ5.0%、大豆粉2.5
%、小麦豚芽1.0%、塩化ナトリウム0.25%の液
体塔地200夕(pH7.0)に接種し、ジャーファー
メンターにて、2800で64時間通気縄枠培養を行な
った。
培養終了後、培養液をpH3で酸性炉過し、炉液140
〆を得た。
〆を得た。
この炉液をダウェツクス50W×2(日十)の強酸性イ
オン交換樹脂20そをつめたカラムに吸着させ、充分水
洗したのち0.1Nアンモニア水、計80〆で溶出し、
溶出液のうちEcoliK−1駅に対して、抗菌活性の
ある区分を濃縮乾団して、褐色の粉末250夕を得た。
素通り液150そを再び塩酸でpH3.0に調整し、ダ
ウェツクス50W×22(H+)のレジン20そをつめ
たカラムに吸着させ、水洗後、0.1Nアンモニア水、
計80そで溶出し、抗菌活性区分を膿縦乾固して更に褐
色の粉末51夕を得た。
オン交換樹脂20そをつめたカラムに吸着させ、充分水
洗したのち0.1Nアンモニア水、計80〆で溶出し、
溶出液のうちEcoliK−1駅に対して、抗菌活性の
ある区分を濃縮乾団して、褐色の粉末250夕を得た。
素通り液150そを再び塩酸でpH3.0に調整し、ダ
ウェツクス50W×22(H+)のレジン20そをつめ
たカラムに吸着させ、水洗後、0.1Nアンモニア水、
計80そで溶出し、抗菌活性区分を膿縦乾固して更に褐
色の粉末51夕を得た。
最初に得られた粉末47夕を水250の‘に溶解し、p
H30に調整したのち、和光製活性炭600の‘を充填
したカラム(5.5×26cm)に吸着させ、水洗後、
30%エタノール水、次いで35%メタノール水で熔出
し、各分画のうち、大腸菌K−i波に対して抗菌活性の
ある区分4夕を濃縮乾固して、黄褐色の粉末5.6夕を
得た。
H30に調整したのち、和光製活性炭600の‘を充填
したカラム(5.5×26cm)に吸着させ、水洗後、
30%エタノール水、次いで35%メタノール水で熔出
し、各分画のうち、大腸菌K−i波に対して抗菌活性の
ある区分4夕を濃縮乾固して、黄褐色の粉末5.6夕を
得た。
この粉末を再び水100の乙に溶解し、塩酸でpH3に
調整したのち、ダウェックス50W× 2(N比+)の
レジン600のZを充填したカラムに吸着させ、充分水
洗したのち、0.1Nアンモニア水で藩出し、抗菌活性
区分を濃縮乾固して黄褐色の粉末1.5夕を得た。
調整したのち、ダウェックス50W× 2(N比+)の
レジン600のZを充填したカラムに吸着させ、充分水
洗したのち、0.1Nアンモニア水で藩出し、抗菌活性
区分を濃縮乾固して黄褐色の粉末1.5夕を得た。
次いでこのうち1夕を緩衝溶液(0.1Mピリジン・ギ
酸溶液、pH=3.1)70の‘に熔解し、ピリジニウ
ム型のダウェツクス50W×2(200〜400メッシ
ュ)500の‘を充填したカラム(3.5×60cの)
に吸着させ、緩衝溶液で溶出した。
酸溶液、pH=3.1)70の‘に熔解し、ピリジニウ
ム型のダウェツクス50W×2(200〜400メッシ
ュ)500の‘を充填したカラム(3.5×60cの)
に吸着させ、緩衝溶液で溶出した。
溶出液は10の【づつ分取し、各分画について高圧炉紙
電気泳動法を用いて、硝酸銀試薬でRアラニン0.53
(アラニンのRfを1.00として)の単一スポットを
示す抗菌活性区分フラクションNo.63〜79を濃縮
乾固して、SF−1130一×,物質とSF−1130
−×2物質の混合物として白色粉末380他を得た。次
にこの粉末を少量の水で溶解し、それに混合溶媒(nー
プロパノール・酢酸エチル・水=6:1:3)を加え、
セルロース200の上を充填したカラム(3×30cの
)に吸着させ、混合溶媒で展開した。
電気泳動法を用いて、硝酸銀試薬でRアラニン0.53
(アラニンのRfを1.00として)の単一スポットを
示す抗菌活性区分フラクションNo.63〜79を濃縮
乾固して、SF−1130一×,物質とSF−1130
−×2物質の混合物として白色粉末380他を得た。次
にこの粉末を少量の水で溶解し、それに混合溶媒(nー
プロパノール・酢酸エチル・水=6:1:3)を加え、
セルロース200の上を充填したカラム(3×30cの
)に吸着させ、混合溶媒で展開した。
溶出液を7の上づっ分取し、各フラクションについて、
酢酸エチル・ピリジン・水(10:4:3)の混合溶媒
でペーパー・クロマトグラフィーを行ない、硝酸銀試薬
によってRラフィノース0.57(ラフィノースを1.
00として)の単一スポットを示す抗菌活性区分、フラ
クションNO.351〜445を濃縮乾固して、SF−
1130−×2物質の白色の粉末150脚を得た。同時
に、Rラフイノース0.39の単一スポットを示す杭菌
活性区分フラクションNO.503〜550を濃綾乾固
して、SF−1130−×,物質70柵を得た。
酢酸エチル・ピリジン・水(10:4:3)の混合溶媒
でペーパー・クロマトグラフィーを行ない、硝酸銀試薬
によってRラフィノース0.57(ラフィノースを1.
00として)の単一スポットを示す抗菌活性区分、フラ
クションNO.351〜445を濃縮乾固して、SF−
1130−×2物質の白色の粉末150脚を得た。同時
に、Rラフイノース0.39の単一スポットを示す杭菌
活性区分フラクションNO.503〜550を濃綾乾固
して、SF−1130−×,物質70柵を得た。
更に、SF−1130−×2物質の粉末150の9を水
6のとに溶解し、活性炭15の‘を充填したカラム(2
×5.5cm)に吸着させ、水洗後30%及び35%エ
タノールで溶出し、抗菌活性区分130花{を濃縮乾固
して白色の粉末120の9を得た。融点195q○(分
解)。SF−1130−×,物質の粉末70の9も同様
に処理して、白色の粉末として55の9を得た。融点2
0300(分解)。2番目に得られたダウェツクス50
W×2(H+)レジンのアンモニア溶雛物51夕を同様
に処理して、SF−1130−×,物質210の9、S
F−1130−×2物質520の9を回収した。
6のとに溶解し、活性炭15の‘を充填したカラム(2
×5.5cm)に吸着させ、水洗後30%及び35%エ
タノールで溶出し、抗菌活性区分130花{を濃縮乾固
して白色の粉末120の9を得た。融点195q○(分
解)。SF−1130−×,物質の粉末70の9も同様
に処理して、白色の粉末として55の9を得た。融点2
0300(分解)。2番目に得られたダウェツクス50
W×2(H+)レジンのアンモニア溶雛物51夕を同様
に処理して、SF−1130−×,物質210の9、S
F−1130−×2物質520の9を回収した。
実施例 2
ストレプトミセス・ミキソゲネスSF−1130株(徴
工研菌寄第676号)を、実施例1と同じ組成の液体培
地20夕に接種し、ジャーファーメンターにて2が0で
6斑時間通気燈梓培養を行なった。
工研菌寄第676号)を、実施例1と同じ組成の液体培
地20夕に接種し、ジャーファーメンターにて2が0で
6斑時間通気燈梓培養を行なった。
培養終了後、培養液を酸性炉逸し、炉液15そを得た。
この炉液を、和光製活性炭1夕をつめたカラム(6×3
6cの)に吸着させ、充分水洗したのちPH8の50%
アセトン5そで港出し、溶出液のうち大腸菌K−12R
に対して杭菌活性のある区分を濃縮乾固して、黄褐色の
粉末67.5夕を得た。このうち、45夕を水200叫
に溶解し、和光製活性炭1そを充填したカラム(5.6
×42肌)に吸着させ、水洗後、5、10、15、20
、25%の各エタノール水で順次溶出し、溶出液を15
叫づつ分取した。抗菌活性区分フラクションNo.36
6〜510を濃縮乾固して白色の粉末5.7夕を得た。
この白色粉末5夕を15の(の水に溶解し、炉過後、炉
液にエタノール180叫を徐々に加えて、再沈澱させ、
SF−1130一x2物質(10%)及びマルトベンタ
オース(99%)の混合物4.6夕を得た。
この炉液を、和光製活性炭1夕をつめたカラム(6×3
6cの)に吸着させ、充分水洗したのちPH8の50%
アセトン5そで港出し、溶出液のうち大腸菌K−12R
に対して杭菌活性のある区分を濃縮乾固して、黄褐色の
粉末67.5夕を得た。このうち、45夕を水200叫
に溶解し、和光製活性炭1そを充填したカラム(5.6
×42肌)に吸着させ、水洗後、5、10、15、20
、25%の各エタノール水で順次溶出し、溶出液を15
叫づつ分取した。抗菌活性区分フラクションNo.36
6〜510を濃縮乾固して白色の粉末5.7夕を得た。
この白色粉末5夕を15の(の水に溶解し、炉過後、炉
液にエタノール180叫を徐々に加えて、再沈澱させ、
SF−1130一x2物質(10%)及びマルトベンタ
オース(99%)の混合物4.6夕を得た。
第1図と第2図は夫々に、本発明のSF−1130一物
物質の赤外線吸収スペクトル(KBr錠中)と100M
Hz水素核磁気共鳴スペクトル(重水中)の曲線図を示
す。 第3図と第4図は夫々に、SF−1130−×,物質赤
外線吸収スペクトル(KBr錠中)と水の100M舷水
素核磁気共鳴吸収スペクトル(重水中)の曲線図を示す
。第「図 第2図 第3図 第4図
物質の赤外線吸収スペクトル(KBr錠中)と100M
Hz水素核磁気共鳴スペクトル(重水中)の曲線図を示
す。 第3図と第4図は夫々に、SF−1130−×,物質赤
外線吸収スペクトル(KBr錠中)と水の100M舷水
素核磁気共鳴吸収スペクトル(重水中)の曲線図を示す
。第「図 第2図 第3図 第4図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 次の理化学的性状を示す、すなわち、元素分析値:
炭素43.84%、水素6.41%、窒素1.08%、
酸素49.67%(差);比旋光度+155°(水)で
あり、紫外部に吸収極大を有さず、添附図面の第1図に
示した赤外線吸収スペクトル、第2図に示した水素核磁
気共鳴吸収スペクトルを有し、水・ジメチルスルホキシ
ドに易溶、アルコールに難溶、アセトン、酢酸エチル、
クロロホルム、ベンゼンに不溶であり、硝酸銀、レツド
テトラゾリウム、アンスロン、ニンヒドリン、グレーク
・リーパツクの各試薬に陽性であり、ペーパークロマト
グラフイーにて酢酸エチル、ピリジン・水(10:4:
3)の展開溶媒を用いるとRラフイノースが0.57、
n−ブタノール・ピリジン・酢酸・水(6:4:1:3
)の展開溶媒を用いるとRラフイノースが0.33を示
す白色弱塩基性粉末状であることを特徴とするSF−1
130−x_2物質。 2 ストレプトミセス属に属するSF−1130−x_
2物質生産菌を、好気的条件下に培養して、培養液中に
SF−1130−x_2物質を蓄積させ、これを採取す
ることを特徴とする新抗生物質SF−1130−x_2
物質の製造法。 3 有効成分としてSF−1130−x_2物質を含む
ことを特徴とする免疫賦活剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59100439A JPS6035112B2 (ja) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | 新抗生物質sf−1130−x↓2物質、その製造方及び免疫賦活剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59100439A JPS6035112B2 (ja) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | 新抗生物質sf−1130−x↓2物質、その製造方及び免疫賦活剤 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP51099757A Division JPS5946597B2 (ja) | 1976-08-23 | 1976-08-23 | 新抗生物質sf−1130−x1物質,その製造法及び免疫賦活剤 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6054691A JPS6054691A (ja) | 1985-03-29 |
| JPS6035112B2 true JPS6035112B2 (ja) | 1985-08-13 |
Family
ID=14273970
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59100439A Expired JPS6035112B2 (ja) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | 新抗生物質sf−1130−x↓2物質、その製造方及び免疫賦活剤 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6035112B2 (ja) |
-
1984
- 1984-05-21 JP JP59100439A patent/JPS6035112B2/ja not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6054691A (ja) | 1985-03-29 |
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