JPS6112680B2 - - Google Patents
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- JPS6112680B2 JPS6112680B2 JP56124764A JP12476481A JPS6112680B2 JP S6112680 B2 JPS6112680 B2 JP S6112680B2 JP 56124764 A JP56124764 A JP 56124764A JP 12476481 A JP12476481 A JP 12476481A JP S6112680 B2 JPS6112680 B2 JP S6112680B2
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
本発明は、ムラサキ科植物の組織培養によつて
得られる未成分の細胞群(カルス)を利用してそ
の二次代謝産物であるナフトキノン系化合物を効
率よく製造する方法に関する。更に詳しくは、未
分化の細胞群の生育に適した液体培地で予め増殖
させた細胞群を、更にナフトキノン系化合物の生
産に適した改変液体培地で組織培養することによ
り、ナフトキノン系化合物の製造を効率よく行う
方法に関する。
植物の未分化の細胞群(カルス)を組織培養し
てその二次代謝産物を得る試みは、従来からいく
つかなされている。例えばムラサキ科の植物であ
るムラサキの根には、シコニン等のナフトキノン
系化合物が含まれており、各種医療用途が知られ
ているため、組織培養を利用して、ムラサキの未
分化の細胞を増殖させ、ナフトキノン系化合物を
製造することが試みられている。
しかし従来の方法は、寒天固体培地を用いるも
のであり、製造時の運転、操作が複雑で大量生産
には適しておらず、また得られるナフトキノン系
化合物の生成量も良好なものとはいえない。
そこで液体培地を利用する方法を検討し、従来
ムラサキの組織培養に用いられていた固体培地の
成分をそのまま用い、寒天を添加することなく液
体培地の形態で用いたが、細胞群は増殖するもの
の、シコニン等のナフトキノン系の化合物の生成
量はわずかであり、またその生成量もバラツキが
大きく、安定していなかつた。
本発明者らはさらに検討を進め、特定の関係に
ある2種類の液体培地で段階的に組織培養すれ
ば、ムラサキ科植物の未分化の細胞群から得られ
るナフトキノン系化合物の量が著しく増大するこ
とを見出し本発明に到達した。
すなわち本発明は無機成分および炭素源を必須
成分とし、これに植物ホルモン類、ビタミン類お
よびアミノ酸類から選ばれる少なくとも1種類以
上の成分を加えた液体培地で培養すること(第一
段階)によつて得られるムラサキ科植物の細胞
を、当該液体培地の成分のうち少なくとも一成分
の濃度を低下させた改変液体培地で培養すること
(第二段階)を特徴とするムラサキ科植物のナフ
トキノン系化合物の製造方法に関する。
本発明の第一段階で使用される液体培地Aは、
植物の組織培養に通常用いられる培地であり、無
機成分および炭素源を必須成分とし、これに植物
ホルモン類、ビタミン類およびアミノ酸類の中の
1種類以上を加えた液体培地である。
無機成分としては、窒素、リン、カリウム、カ
ルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マンガ
ン、亜鉛、ホウ素、銅、モリブデン、塩素、ナト
リウム、ヨウ素、コバルト等があり、具体的には
硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸カルシウ
ム、リン酸1カリウム、リン酸2ナトリウム、塩
化カリウム、塩化カルシウム、硫酸マグネシウ
ム、硫酸ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸第二鉄、
硫酸マンガン、硫酸亜鉛、ホウ酸、硫酸銅、モリ
ブデン酸ナトリウム、三酸化モリブデン、ヨウ化
カリウム、塩化コバルトなどが例示される。
また炭素源には、ジヨ糖等の炭化水素、その誘
導体、脂肪酸等の有機酸、エタノール等の1級ア
ルコールなどが例示される。
植物ホルモン類には、インドール酢酸
(IAA)、ナフタレン酢酸(NAA)、p―クロロフ
エノキシイソ酪酸、2,4―ジクロロフエノキシ
酢酸(2,4―D)などのオーキシン類、カイネ
チン、ゼアチン、ジヒドロゼアチン等のサイトカ
イニン類が例示される。
ビタミン類には、ビオチン、チアミン(ビタミ
ンB1)、ピリドキシン(ビタミンB6)、パントテ
ン酸、アスコルビン酸(ビタミンC)、イノシト
ール、ニコチン酸などが例示される。
アミノ酸類にはグリシン、アラニン、グルタミ
ン、システインなどが例示される。
液体培地A中の各成分の濃度は広い範囲で変え
ることができる。通常は無機成分を約0.1μM〜
約100mM程度、炭素源を約1g/l〜30g/l程
度、さらに植物ホルモン類を約0.01μM〜約10μ
M程度、ビタミン類およびアミノ酸類を、それぞ
れ約0.1mg/l〜約100mg/l程度添加して調製さ
れる。
液体培地Aはムラサキ科植物の未分化の細胞群
の育成増殖促進に好適であるものが望ましい。具
体的にはリンスマイヤー・スクーグの培地、ガン
ボルグのB―5培地およびこれらの改変培地が例
示される。
本発明に使用されるムラサキ科植物の未分化の
細胞群は、ムラサキ科植物の植物体、例えば根、
生長点、葉、茎、種子などから採取された組織片
を殺菌処理後、固体培地に添加し、組織片の一部
を未分化の細胞群に増殖させたものが通常用いら
れる。
ムラサキ科の植物の場合は、好適例として以下
のものがある。すなわち、ムラサキ科の植物の植
物体の組織片を殺菌処理後、寒天で固めたリンス
マイヤー・スクーグの固体培地上に置床し、約10
〜35℃で約7〜30日程度経過後、組織片の一部を
カルス化させる。このようにして得られた細胞群
を継代培養すると生育速度が漸次高まり、安定化
した細胞群が得られる。この細胞群を前記の液体
培地Aに添加して培養が行われる。
液体培地A中の細胞群の初期濃度は、広い範囲
で変えることができる。通常は液体培地1lに対し
て細胞群を約1g〜約200g(新鮮重量)程度添加
することが望ましい。
第一段階において、液体培地Aは、細胞群の増
殖に適したものであることが望ましく、さらに細
胞群は、液体培地A中において継代培養し、漸次
生育速度を高めておくことが望ましい。
ムラサキ科の植物の場合、第一段階においても
ナフトキノン系の化合物からなる二次代謝産物が
ある程度生成する場合もあるが、その量は少な
く、細胞群の増殖に適した条件が必ずしもナフト
キノン系化合物の生成に良好な条件とはならな
い。
本発明においては、第一段階の組織培養におい
て、細胞群の増殖を、とくに旺盛に行わせしめる
ことが好ましく、このような経歴をもつ細胞群を
用いれば、第二段階の改変液体培地Bにおけるナ
フトキノン系化合物などの二次代謝産物の生成量
をさらにいつそう増大させることができる。
ムラサキの場合においては、とくに第一段階で
細胞群にナフトキノン系化合物を生産させること
なく、増殖のみを行わせた後、第二段階へ進める
ことが好適である。
第一段階の液体培地Aで組織培養された細胞群
は、液体培地Aから分離されて、第二段階の改変
液体培地Bに添加して、組織培養が続行させる。
改変液体培地Bの成分構成は、液体培地Aの培
地成分のうち、少なくとも一成分の濃度を低下さ
せたものである。
液体培地Bにおいて、液体培地Aよりも濃度を
低下させる成分としては、無機成分、植物ホルモ
ン類、ビタミン類およびアミノ酸類の中から選ば
れる少なくとも1種類以上の成分が好ましい。
これらのうちでも、濃度を低下させる成分とし
て、とくにアンモニウムイオン、硝酸イオン、リ
ン酸イオン、カリウムイオン、カルシウムイオ
ン、鉄イオン、マンガンイオン、コバルトイオ
ン、ヨウ素イオン、ナトリウムイオン、塩素イオ
ンなどの無機成分、サイトカイニン類、ビタミン
類およびアミノ酸類から選ばれる少なくとも1種
類以上の成分が好適である。
上記の好適な成分の濃度を低下させる限りにお
いては、その他の成分の濃度を変化させてもナフ
トキノン系化合物の生産は大きな影響を受けない
場合が多い。
ムラサキ科の植物の場合は、かえつて上記以外
の成分の濃度を増加させることが好ましい場合が
ある。このような成分として銅イオンおよび硫酸
イオンがある。
濃度を低下させる成分の液体培地Bにおける濃
度は、液体培地Aにおける濃度の約1/2以下とす
ることがとくに望ましい。また濃度を低下させる
成分の濃度をさらに低下させて約1/10以下あるい
は実質上その成分が添加されていない液体培地B
を用いることも可能である。
第二段階の液体培地Bにおける細胞群の生育速
度は、液体培地Aに比べると低下するが、ナフト
キノン系化合物などの二次代謝産物の量は、逆に
著しく増大する。
液体培地Bにおける細胞群の初期濃度も、液体
培地Aの場合と同様に広い範囲で変えることがで
きる。
本発明によればムラサキ科の植物を利用して、
二次代謝産物であるシコニン等のナフトキノン系
の化合物が好適に効率よく得られる。
ムラサキ科の植物の場合、組織培養において光
は必ずしも必要ではなく、かえつて暗所での培養
がシコニン等の二次代謝産物の生育に望ましく、
培養温度は約10℃〜約35℃、とくに約23℃〜約28
℃が好適である。約10℃未満では細胞群の増殖速
度が小さく、約35℃を越えても同様に細胞群の増
殖速度は小さくなる。
細胞群および液体培地Bからナフトキノン系化
合物を分離採取するには、従来から天然品の「紫
根」に適用されている抽出等の方法を採用するこ
とができる。
本発明によれば、ムラサキ科植物の未分化の細
胞群(カルス)からナフトキノン系化合物を効率
よく製造することができる。また液体培地が用い
られるので、スケールアツプや連続操作が容易で
あり、簡便な操作でナフトキノン系化合物を多量
に製造することができる。
本発明の方法は、必ずしも2種類の液体培地を
用いて、2段階の培養を行う場合のみばかりか、
本発明の条件を満たす関係にある3種類以上の液
体培地を用いて、3段階以上の態様で組織培養す
ることも可能である。
実施例1〜3および比較例
〔第一段階の培養〕
100mlのエルレンマイヤーフラスコに第1表に
示した組成からなるリンスマイヤー・スクーグの
改変液体培地(ただしインドール酢酸1μM、カ
イネチン10μMおよびシヨ糖30g/lを含む)30
mlを入れ、120℃、10分間滅菌した。
冷却後0.5gのムラサキの新鮮カルス(予め静置
培養法により得た。)を入れて25℃で14日間ロー
タリーシエーカー上で振幅25mm、100rpmで旋回
培養した。
上記培養で得られたカルス0.5gを用いて、上記
操作を繰り返す(通常2回)。これにより改変液
体培地における細胞の生育が安定する。
〔第二段階の培養〕
第一段階で使用した改変液体培地Aの組成のう
ち、少なくとも1種類の成分の濃度を低下させた
第1表に示す培地(B1,B2またはB3)を用いて行
つた。
すなわち培地(B1,B2またはB3)30mlに、第
一段階で得られた湿潤カルスを0.5g入れ、第一段
階と同様の方法で旋回培養した。
培養後のムラサキのカルスを過により採取
し、35℃で24時間乾燥させた後、その重量(乾
重)を測定し、液体培地1lあたりの培養細胞の生
育乾重を求めた。
また得られたカルスから抽出により、シコニン
を分離し、その重量を測定し、液体培地1lあたり
の総シリコン生成量を求めた。
結果を第2表に示す。
The present invention relates to a method for efficiently producing naphthoquinone compounds, which are secondary metabolites thereof, by utilizing uncomposed cell groups (callus) obtained by tissue culture of plants of the family Prunusaceae. More specifically, the production of naphthoquinone compounds can be achieved by culturing a cell group preliminarily grown in a liquid medium suitable for the growth of undifferentiated cell groups in a modified liquid medium suitable for producing naphthoquinone compounds. Concerning how to do it efficiently. Several attempts have been made to obtain secondary metabolites by tissue culturing undifferentiated plant cell groups (callus). For example, the roots of the purple plant, a plant belonging to the family Purple, contain naphthoquinone compounds such as shikonin, and are known to have various medical uses, so tissue culture is used to grow undifferentiated cells of the purple plant. Attempts have been made to produce naphthoquinone compounds. However, the conventional method uses an agar solid medium, which requires complicated operation and operation during production, making it unsuitable for mass production, and the amount of naphthoquinone compounds produced is also not good. . Therefore, we considered a method of using a liquid medium, and used the components of the solid medium that had been conventionally used for tissue culture of purple thorns in the form of a liquid medium without adding agar, but although the cell population grew, The amount of naphthoquinone compounds such as , shikonin, etc. produced was small, and the amount produced also varied widely and was not stable. The present inventors further investigated and found that by stepwise tissue culture in two types of liquid media with a specific relationship, the amount of naphthoquinone compounds obtained from undifferentiated cell groups of plants of the family Prunusaceae was significantly increased. This discovery led to the present invention. That is, the present invention uses an inorganic component and a carbon source as essential components, and is cultured in a liquid medium containing at least one component selected from plant hormones, vitamins, and amino acids (first step). of the naphthoquinone-based compound of the Murasaceae plant, which is characterized by culturing the cells of the Murasaceae plant in a modified liquid medium in which the concentration of at least one of the components of the liquid medium is reduced (second step). Regarding the manufacturing method. The liquid medium A used in the first step of the present invention is
It is a liquid medium that is commonly used for plant tissue culture, and contains inorganic components and carbon sources as essential components, and one or more of plant hormones, vitamins, and amino acids added thereto. Inorganic components include nitrogen, phosphorus, potassium, calcium, magnesium, sulfur, iron, manganese, zinc, boron, copper, molybdenum, chlorine, sodium, iodine, cobalt, etc. Specifically, potassium nitrate, sodium nitrate, nitric acid Calcium, monopotassium phosphate, disodium phosphate, potassium chloride, calcium chloride, magnesium sulfate, sodium sulfate, ferrous sulfate, ferric sulfate,
Examples include manganese sulfate, zinc sulfate, boric acid, copper sulfate, sodium molybdate, molybdenum trioxide, potassium iodide, and cobalt chloride. Examples of carbon sources include hydrocarbons such as diosaccharide, derivatives thereof, organic acids such as fatty acids, and primary alcohols such as ethanol. Plant hormones include auxins such as indoleacetic acid (IAA), naphthaleneacetic acid (NAA), p-chlorophenoxyisobutyric acid, and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), kinetin, and zeatin. Examples include cytokinins such as , dihydrozeatin and the like. Examples of vitamins include biotin, thiamine (vitamin B 1 ), pyridoxine (vitamin B 6 ), pantothenic acid, ascorbic acid (vitamin C), inositol, and nicotinic acid. Examples of amino acids include glycine, alanine, glutamine, and cysteine. The concentration of each component in liquid medium A can vary within a wide range. Usually the inorganic component is about 0.1 μM ~
Approximately 100mM, carbon source approximately 1g/l to 30g/l, and plant hormones approximately 0.01μM to approximately 10μ
It is prepared by adding about 0.1 mg/l to about 100 mg/l of vitamins and amino acids, respectively. The liquid medium A is preferably one suitable for promoting the growth and proliferation of undifferentiated cell groups of plants belonging to the family Murasakiceae. Specific examples include Linsmeyer-Skoog's medium, Gamborg's B-5 medium, and modified media thereof. The undifferentiated cell group of the Murasaceae plant used in the present invention is the plant body of the Murasaceae plant, for example, the roots,
Tissue pieces collected from growing points, leaves, stems, seeds, etc. are sterilized and then added to a solid medium to allow some of the tissue pieces to grow into undifferentiated cell groups. In the case of plants of the family Murasakiceae, suitable examples include the following. In other words, after sterilizing a piece of tissue from a plant belonging to the family Purple, it was placed on a Linsmeyer-Skoog solid medium solidified with agar and incubated for about 10 minutes.
After about 7 to 30 days at ~35°C, a part of the tissue piece is turned into a callus. When the cell population thus obtained is subcultured, the growth rate gradually increases and a stabilized cell population is obtained. This cell group is added to the liquid medium A and cultured. The initial concentration of the cell population in liquid medium A can be varied within a wide range. Usually, it is desirable to add about 1 g to about 200 g (fresh weight) of the cell group to 1 liter of liquid medium. In the first stage, it is desirable that the liquid medium A is suitable for the proliferation of the cell group, and furthermore, it is desirable that the cell group be subcultured in the liquid medium A to gradually increase the growth rate. In the case of plants of the family Prunusaceae, a certain amount of secondary metabolites consisting of naphthoquinone compounds may be produced even in the first stage, but the amount is small and the conditions suitable for the growth of cell groups are not necessarily the same as those of naphthoquinone compounds. This does not provide good conditions for formation. In the present invention, it is preferable to allow the cell group to proliferate particularly vigorously in the first stage of tissue culture, and if a cell group with such a history is used, naphthoquinone in the modified liquid medium B of the second stage can be used. The amount of secondary metabolites produced, such as system compounds, can be further increased at any time. In the case of purple violet, it is particularly preferable to allow the cell group to proliferate without producing naphthoquinone compounds in the first stage, and then proceed to the second stage. The cell population cultured in the liquid medium A in the first stage is separated from the liquid medium A and added to the modified liquid medium B in the second stage to continue the tissue culture. The composition of the modified liquid medium B is such that the concentration of at least one of the medium components of the liquid medium A is reduced. In liquid medium B, the component that lowers the concentration compared to liquid medium A is preferably at least one component selected from inorganic components, plant hormones, vitamins, and amino acids. Among these, inorganic components such as ammonium ions, nitrate ions, phosphate ions, potassium ions, calcium ions, iron ions, manganese ions, cobalt ions, iodine ions, sodium ions, and chloride ions are particularly important as components that lower the concentration. At least one component selected from , cytokinins, vitamins, and amino acids is suitable. As long as the concentration of the above-mentioned preferred components is reduced, the production of naphthoquinone compounds is often not significantly affected by changes in the concentrations of other components. In the case of plants belonging to the family Murasakiceae, it may be preferable to increase the concentration of components other than those listed above. Such components include copper ions and sulfate ions. It is particularly desirable that the concentration of the component that lowers the concentration in liquid medium B be about 1/2 or less of the concentration in liquid medium A. In addition, the concentration of the component that lowers the concentration is further reduced to about 1/10 or less, or liquid medium B in which the component is not substantially added.
It is also possible to use Although the growth rate of the cell group in liquid medium B in the second stage is lower than that in liquid medium A, the amount of secondary metabolites such as naphthoquinone compounds is, on the contrary, significantly increased. The initial concentration of the cell population in liquid medium B can also be varied within a wide range, as in liquid medium A. According to the present invention, using a plant of the family Murasakiceae,
A naphthoquinone compound such as shikonin, which is a secondary metabolite, can be obtained preferably and efficiently. In the case of plants belonging to the Murasakiceae family, light is not necessarily necessary for tissue culture; on the contrary, culturing in the dark is preferable for the growth of secondary metabolites such as shikonin.
The culture temperature is about 10°C to about 35°C, especially about 23°C to about 28°C.
°C is preferred. Below about 10°C, the proliferation rate of the cell group is low, and even above about 35°C, the proliferation rate of the cell group is similarly low. In order to separate and collect the naphthoquinone compound from the cell group and liquid medium B, methods such as extraction that have been conventionally applied to the natural product "Shikon" can be employed. According to the present invention, a naphthoquinone compound can be efficiently produced from an undifferentiated cell group (callus) of a plant belonging to the family Murasaceae. Furthermore, since a liquid medium is used, scale-up and continuous operation are easy, and naphthoquinone compounds can be produced in large quantities with simple operations. The method of the present invention is applicable not only to cases where two types of liquid media are used to perform two-stage culture, but also to cases where two types of liquid media are used.
It is also possible to culture tissue in three or more stages using three or more types of liquid media that satisfy the conditions of the present invention. Examples 1 to 3 and Comparative Examples [First stage culture] A modified Linsmeyer-Skoog liquid medium having the composition shown in Table 1 was placed in a 100 ml Erlenmeyer flask (with the exception of 1 μM indoleacetic acid, 10 μM kinetin, and sucrose). (including 30g/l)30
ml and sterilized at 120°C for 10 minutes. After cooling, 0.5 g of fresh purple callus (previously obtained by the static culture method) was added and cultured at 25°C for 14 days on a rotary shaker with an amplitude of 25 mm and rotation at 100 rpm. Repeat the above operation (usually twice) using 0.5 g of callus obtained in the above culture. This stabilizes cell growth in the modified liquid medium. [Second stage culture] A culture medium (B 1 , B 2 or B 3 ) shown in Table 1 in which the concentration of at least one component of the modified liquid medium A used in the first stage has been reduced is used. I used it. That is, 0.5 g of the wet callus obtained in the first step was added to 30 ml of the medium (B 1 , B 2 or B 3 ), and cultured by rotation in the same manner as in the first step. After culturing, the callus of the purple callus was collected by filtration, dried at 35°C for 24 hours, and its weight (dry weight) was measured to determine the growth dry weight of the cultured cells per liter of liquid medium. In addition, shikonin was extracted from the obtained callus, its weight was measured, and the total amount of silicon produced per liter of liquid medium was determined. The results are shown in Table 2.
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
Claims (1)
に植物ホルモン類、ビタミン類およびアミノ酸類
から選ばれる少なくとも1種類以上の成分を加え
た液体培地で培養すること(第一段階)によつて
得られるムラサキ科植物の細胞を、当該液体培地
の成分のうち少なくとも1成分の濃度を低下させ
た改変液体培地で培養すること(第二段階)を特
徴とするナフトキノン系化合物の製造方法。 2 第二段階で濃度を低下させる成分が、アンモ
ニウムイオン、硝酸イオン、リン酸イオン、カリ
ウムイオン、カルシウムイオン、鉄イオン、マン
ガンイオン、コバルトイオン、ヨウ素イオン、ナ
トリウムイオン、塩素イオン、サイトカイニン
類、ビタミン類およびアミノ酸類から選ばれる少
なくとも1種類以上の成分であることを特徴とす
る特許請求の範囲第1項に記載の方法。 3 第二段階において、当該成分の濃度を多くと
も第一段階において用いる濃度の1/2以下に低下
させることを特徴とする特許請求の範囲第1項ま
たは第2項記載の方法。[Scope of Claims] 1 Cultivation in a liquid medium containing inorganic components and carbon sources as essential components and at least one component selected from plant hormones, vitamins, and amino acids (first step) ) The production of a naphthoquinone compound characterized by culturing the cells of a plant belonging to the family Murasaceae obtained by (second step) in a modified liquid medium in which the concentration of at least one of the components of the liquid medium is reduced. Method. 2 The components that reduce the concentration in the second stage are ammonium ions, nitrate ions, phosphate ions, potassium ions, calcium ions, iron ions, manganese ions, cobalt ions, iodine ions, sodium ions, chloride ions, cytokinins, and vitamins. The method according to claim 1, characterized in that the component is at least one type selected from amino acids and amino acids. 3. The method according to claim 1 or 2, characterized in that in the second step, the concentration of the component is reduced to at most one-half or less of the concentration used in the first step.
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56124764A JPS5828290A (en) | 1981-08-11 | 1981-08-11 | Preparation of secondary metabolism product of vegetable |
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| DE8282107140T DE3270112D1 (en) | 1981-08-11 | 1982-08-06 | Method for producing secondary metabolites of plants |
| US06/766,672 US4717664A (en) | 1981-08-11 | 1985-08-16 | Method for producing secondary metabolites of plants |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56124764A JPS5828290A (en) | 1981-08-11 | 1981-08-11 | Preparation of secondary metabolism product of vegetable |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5828290A JPS5828290A (en) | 1983-02-19 |
| JPS6112680B2 true JPS6112680B2 (en) | 1986-04-09 |
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ID=14893526
Family Applications (1)
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| JP56124764A Granted JPS5828290A (en) | 1981-08-11 | 1981-08-11 | Preparation of secondary metabolism product of vegetable |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5828290A (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2502308B2 (en) * | 1987-04-02 | 1996-05-29 | 三井石油化学工業株式会社 | Method for culturing protoplasts of herbaceous plant |
-
1981
- 1981-08-11 JP JP56124764A patent/JPS5828290A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5828290A (en) | 1983-02-19 |
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